WO2017146532A1 - 생물학적 시료로부터 핵산 추출 방법 - Google Patents

생물학적 시료로부터 핵산 추출 방법 Download PDF

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WO2017146532A1
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nucleic acid
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bead
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민준홍
백창윤
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Industry Academic Cooperation Foundation of Chung Ang University
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    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids

Definitions

  • the present invention relates to a method for extracting nucleic acids from a biological sample, and more specifically, to a nucleic acid extracting method, which is different from a conventional nucleic acid extraction method using a commercial biological sample, to effectively remove impurities from a complex environment and a biological sample, thereby improving nucleic acid recovery. It relates to an extraction method.
  • Biological detection methods such as assays or enzyme reactions with antibodies are difficult to achieve without pretreatment due to the complex components of the sample, and furthermore, this enrichment process is difficult to apply to targets that cannot be cultured, such as Norovirus.
  • the existing commercialized process uses a lot of methods to separate stools from nucleic acids by precipitating the stool in the process of separating the stool sample.
  • MoBio Laboratories Inc. (Carlsbad, USA) flocculates impurities using a trivalent cation such as aluminum, and concentrates / purifies DNA using boom technology.
  • important features are Al 3 +, NH 4 or the like and a method of precipitation using a 3+, is very effective in complex samples such as soil or sides, but showing the highest efficiency of the existing technology, the recovery rate is less than a mere 1% .
  • Qiagen (Hilden, Germany) uses a carbohydrate based adsorptive matrix to adsorb and remove substances that inhibit the polymerase chain reaction (PCR). Very effective in purifying the sample, but with a recovery of less than 0.1%.
  • Zymo Research Corp. (Irvine, USA) proposes a method of extracting nucleic acid present in the feces by applying a physical force using 500 ⁇ m beads, but does not remove various impurities present in the feces sample. It has a limit of low rate.
  • the present invention provides a method for extracting nucleic acids from biological samples that can improve bacterial and nucleic acid recovery by using surfactants and cosmomotropic salts to effectively extract nucleic acids from biological samples.
  • One aspect of the invention is (a) a buffer solution (buffer solution) in a biological sample; Surfactants; And crushing the biological sample through bead beating the biological sample-bead solution prepared by adding beads. (b) separating the crushed biological sample-bead solution; (c) refining by adding a cosmomotropic salt solution to the purified solution; And (d) extracting the nucleic acid from the repurified solution.
  • buffer solution buffer solution
  • Surfactants And crushing the biological sample through bead beating the biological sample-bead solution prepared by adding beads.
  • separating the crushed biological sample-bead solution (c) refining by adding a cosmomotropic salt solution to the purified solution; And (d) extracting the nucleic acid from the repurified solution.
  • the surfactant may be an anionic surfactant.
  • the surfactant may be 1 to 20% (v / v) based on the total weight of the biological sample.
  • step (a) may be to crush the biological sample by beading the biological sample-bead solution at 10 to 80 Hz.
  • the purification may be performed by centrifugation or filtration.
  • the refining may be performed through centrifugation or heat treatment.
  • the heat treatment may be carried out at 50 to 90 °C.
  • the cosmotropic salt solution may be a sodium sulfate (Na- 2 SO 4 ) solution.
  • the cosmotropic salt solution may be a solution of 1.0 to 5.0M.
  • the biological sample may be any one selected from the group consisting of feces, blood and soil.
  • One aspect of the present invention is (a) a buffer in a biological sample; Surfactants; And crushing the biological sample by beading the biological sample-bead solution prepared by adding the beads; (b) centrifuging and purifying the biological sample-bead solution from which the biological sample is crushed; (c) refining by adding a cosmotropic salt solution to the purified solution and centrifuging; And (d) extracting the nucleic acid from the refined solution.
  • Another aspect of the invention is (a) a buffer in a biological sample; Surfactants; And crushing the biological sample by beading the biological sample-bead solution prepared by adding the beads; (b) filtering and purifying the biological sample-bead solution from which the biological sample is crushed; (c) adding a cosmotropic salt solution to the purified solution and refining by heat treatment; And (d) extracting the nucleic acid from the refined solution.
  • the impurities in the sample are effectively removed, thereby improving the recovery rate of bacteria and nucleic acids, thereby more accurately and accurately detecting pathogens.
  • the effect which makes it possible to detect is shown.
  • 1 shows total bacterial recovery, bacterial recovery, nucleic acid recovery, and fecal separation according to surfactant concentration.
  • Figure 2 shows the total bacterial recovery, and stool separation according to sodium sulfate (Na 2 SO 4 ) concentration.
  • 3 shows total bacterial recovery, bacterial recovery, and nucleic acid recovery following heat treatment.
  • 5 shows the total bacterial recovery, bacterial recovery, and nucleic acid recovery according to the stool sample type.
  • Figure 6 shows the results of separation and purification of dog (top) and human (bottom) stool samples according to the amount of stool samples.
  • Figure 7 shows the results of the separation and purification of human blood samples according to the sample amount (a) and virus recovery and gram positive bacteria recovery (b) according to the present invention and commercial kits (Qiagen).
  • nucleic acid extraction rate (a) from fecal samples according to various bead sizes and Staphylococcus aureus nucleic acid recovery (b) according to various bead sizes.
  • Fig. 11 shows the result of refining the stool sample (a) and the blood sample (b) through heat treatment and the nucleic acid recovery rate (c) in the stool sample.
  • Figure 12 shows the result of the separation and purification of the stool sample using a non-centrifugal separation method, the purification step through filtration, the refining step through a heat treatment.
  • One aspect of the invention is (a) a buffer solution (buffer solution) in a biological sample; Surfactants; And crushing the biological sample through bead beating the biological sample-bead solution prepared by adding beads. (b) separating the crushed biological sample-bead solution; (c) refining by adding a cosmomotropic salt solution to the purified solution; And (d) extracting the nucleic acid from the repurified solution.
  • buffer solution buffer solution
  • Surfactants And crushing the biological sample through bead beating the biological sample-bead solution prepared by adding beads.
  • separating the crushed biological sample-bead solution (c) refining by adding a cosmomotropic salt solution to the purified solution; And (d) extracting the nucleic acid from the repurified solution.
  • the inventors of the present invention while researching and developing a method for extracting nucleic acids from biological samples, when surfactants and cosmotropic salts are added during the crushing and purifying biological samples, respectively, Overall bacterial recovery, bacterial recovery rate and nucleic acid recovery rate has been found to be able to detect pathogens more sensitively and accurately, thus completing the present invention.
  • One aspect of the present invention is (a) a buffer in a biological sample; Surfactants; And crushing the biological sample by beading the biological sample-bead solution prepared by adding the beads; (b) purifying the biological sample-bead solution from which the biological sample is crushed; (c) refining by adding a cosmotropic salt solution to the purified solution; And (d) extracting the nucleic acid from the refined solution.
  • biological sample refers to all samples that are likely to contain nucleic acids, as well as samples obtainable from living organisms. Specific examples include blood of humans and animals, body fluids of humans and animal waste, microbial cultures, cell cultures, virus cultures, biopsy cultures, soil, and air, and preferably include feces, blood, and soil. It is not limited to this.
  • buffer solution is not particularly limited in kind, and may be, for example, tris buffer buffer solution, sodium phosphate buffer solution or potassium phosphate buffer solution, but is not limited thereto. no. Preferably it is a tris-HCl solution, More preferably, it is a 5-15 mM tris- hydrochloric acid solution.
  • surfactant may be anionic, cationic, amphoteric or nonionic surfactants, but more preferably are anionic surfactants.
  • Anionic surfactants are, for example, sodium dodecyl sulfate (SDS), sodium octylbenzene sulfonate (NaOBS), sodium dodecyl benzene sulfate (SDBS), sodium dodecyl sulfonate (SDSA), sodium dodecyl benzene sulfo Nate, Sodium Butylbenzoate (NaBBS), Ammonium Lauryl Sulfate, Sodium Deoxycholate, Sodium Lauryl Ether Sulfate (SLES), Sodium Mireth Sulfate (SMES), Dioctyl Sodium Sulfosuccinate, Perfluorooctanesulfo Carbonate (PFOS), perfluorobutanesulfonate, sodium stearate, sodium
  • SDS sodium
  • the reason for adding the surfactant in the present invention is to increase the target substance destruction effect in the sample and to prevent inhibition of nucleic acid separation by impurities.
  • the surfactant may be 1 to 20% (v / v) based on the total weight of the biological sample, nucleic acid recovery may be inhibited when less than 1% or more than 20%.
  • the term "bead beating” is a method of physically crushing a solid material in a sample, and is performed by shaking the sample solution containing the beads by hand or using an automatic vibrator. In the present invention, a method of vibrating the beads by an automatic vibration method was used.
  • the material of the "bead” is not limited, but glass beads may be preferably used.
  • the diameter of the beads is preferably 0.03 to 2mm, preferably 0.1mm to 0.5mm size beads or mixtures thereof, but is not limited thereto.
  • the amount of beads contained in the sample solution is preferably 10 to 200 mg, more preferably 1 to 25% by weight of the biological sample-bead solution.
  • the biological sample can be crushed through the bead beating the biological sample-bead solution at 10 to 80Hz, but is not limited thereto.
  • the bead beating is preferably performed for 3 to 10 minutes, but is not limited thereto.
  • the purification step refers to a process of primarily separating impurities having a large size from a liquid material including nucleic acids, which may be performed by centrifugation or filtration.
  • the crushed biological sample-bead solution may be centrifuged at 6000 to 9000 rpm for 30 to 90 seconds to separate only the supernatant from solid impurities, but is not limited thereto. .
  • the refining step of the present specification refers to a process of secondary separation by adding a cosmotropic salt solution to the purified solution by floating impurities having a small particle size on top of a liquid material containing nucleic acid, which is centrifuged. Or through heat treatment.
  • kosmotropic salt as used herein, SO 4 2-, HPO 4 2 - means a salt consisting of a cationic -, OH -, F -, HCOO -, CH 3 COO - or Cl.
  • Mg + 2 does not have, with the exception of kosmotropic properties when combined with the kosmotropic anion, Mg + 2 are excluded.
  • the cation is a stay may be NH 4 +, Rb +, K +, Na +, Cs +, Li +, Ca 2 + or Ba + 2.
  • the cosmotropic salt may preferably be sodium sulfate (Na 2 SO 4 ), sodium chloride (NaCl), ammonium sulfate ((NH 4 ) 2 SO 4 ), sodium acetate (NaOAc), but is not limited thereto. Is most preferred.
  • the concentration of the sodium sulfate solution is preferably 1.0 to 5.0M, but is not limited thereto.
  • the reason for adding the cosmotropic salt solution is to separate the nucleic acid and the impurities.
  • the mixture can be removed once more by centrifugation or heat treatment.
  • the centrifugation may be performed by centrifugation at 6000 to 9000 rpm for 30 to 90 seconds, but is not limited thereto.
  • the heat treatment may be performed at 50 to 90 ° C., but is not limited thereto.
  • nucleic acid extraction as used herein may be carried out by methods known in the art, specifically see US Patent No. 5234809.
  • the purification step and the refining step may be carried out by arbitrarily selecting the disclosed method.
  • both the purification step and the refining step may be carried out by centrifugation, or ii) the refining step may be carried out by filtration and the refining step may be performed by heat treatment.
  • the method of i) is suitable for application to the device automation method when the method of ii) is used for the kitting method.
  • the sample side of Salmonella prepared in a concentration of 10 6 cfu / ml in 200mg (salmonella, ATCC) or 10 6 Staphylococcus aureus derived from the concentration of cfu / ml add the DNA of (staphylococcus aureus, ATCC) and add SDS so that each concentration based on the buffer volume is 1.2%, 3%, 4%, 5%, 6%, 10%, 20%. Performed the same overall process as in Example 1 (see (d) of FIG. 1).
  • Nucleic acid extraction was performed using boom technology and nucleic acid was extracted, and the isolated nucleic acid was subjected to PCR (Polymerase Chain Reaction) using Universal Bacteria primer to compare the amount of the total bacteria. , Bacterial and nucleic acid recovery was calculated using ((concentration of extracted bacteria or nucleic acid) / (concentration of initially added bacteria or nucleic acid) * 100 (%)).
  • the amount of nucleic acid extraction and bacterial recovery rate is that the stool sample is not heat treated (O min). And it was confirmed that the DNA recovery is measured high (see Fig. 3 (a) to (c)).
  • kits require about 200-250 mg of sample to be used, but in order to confirm that nucleic acid can be extracted from a smaller amount of sample, varying amounts of samples of two species of dogs and humans, ie , 10mg (10mg stools + 190 ⁇ l distilled water), 20mg (20mg stools + 180 ⁇ l distilled water), 50mg (50mg stools + 150 ⁇ l distilled water), 100mg (100mg stools + 100 ⁇ l distilled water), 150mg (150mg stools + 50 ⁇ l distilled water) , 200mg (200mg stool) and 250mg (except that using a sample of 250mg stool was carried out the same overall process as in Examples 1 and 2, the total bacterial recovery, bacterial recovery and nucleic acid recovery was compared.
  • the method used for separation of the stool sample was also applied to the blood (whole blood) sample, which is one of the complex samples, to confirm the removal of impurities. Since the amount of blood sample recommended in the commercialized kit is 200 ⁇ l, the experiment was performed based on the volume of the sample 200 ⁇ l.
  • nucleic acid recovery was confirmed using the method described in Example 2 using a 100 ⁇ l sample of blood.
  • the adenovirus showed a 70% recovery compared to the Qiagen DNA mini kit, and in the case of Gram-positive bacteria, about 40-fold recovery based on the Qiagen DNA mini kit (Fig. 7 (b)). Reference).
  • the method used for separation of the stool sample was also applied to the soil sample, which is one of the other complicated samples, to confirm the removal of impurities.
  • a sample prepared by adding 100 ⁇ l of distilled water to 250 mg of two soil samples collected at different places was prepared, and impurities were separated and purified by the method described in Example 1 above. As a result, it was confirmed that the separation and purification of impurities were performed in both soils (see FIG. 8A).
  • the crushing of the side was not performed well in beads having a diameter of 2 mm, which showed a lower efficiency in the nucleic acid extraction rate than other sizes of beads. Therefore, it was confirmed that the beads having excellent nucleic acid recovery efficiency were beads having a diameter of 0.1 mm to 0.5 mm or a mixture thereof.
  • the first purification process using centrifugation after crushing the fecal sample and the complex sample can be purified using a non-centrifugal separation method.
  • the following experiment was conducted to see if the first purification process could be replaced by filtration.
  • Example 1 Except for using the method of filtration instead of centrifugation in Example 1, the experiment was carried out in the same manner as in Example 1. After the stool sample and the complex sample object were crushed by the method described in Example 1, the first purified solution was obtained by passing the object having a gap through which beads and large impurities did not escape. The purified solution was subjected to refining process using a conventional centrifugation, and nucleic acid recovery was performed from the refined solution.
  • the centrifugal separation was used, but the impurity was refined by heat treatment without centrifugation.
  • 200 mg fecal sample was placed in a tube containing buffer with pH of 8 or higher, 6% (v / v) of surfactant SDS, and 0.4 g of glass beads of 70 to 100 ⁇ m for stool sample destruction and detection object destruction.
  • the solution excluding large impurities and glass beads, was transferred to a new tube, and 2.5M Na 2 SO 4 solution was added to heat the mixture at 45 ° C, 55 ° C, 65 ° C, 75 ° C, 85 ° C and After 5 or 10 minutes at 95 °C, the results were compared with the results of re-purification using centrifugation.
  • PCR was performed on the stool sample treated for 10 minutes at the above temperatures to measure nucleic acid extraction concentration (Total bacteria) and compared with the sample by centrifugation.
  • Example 1 Experiments were carried out in the same manner as in Example 1, except that the sides having three different shapes and shapes were used for filtration instead of primary centrifugation and heat treatment instead of secondary centrifugation in Example 1.

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Abstract

본 발명은 생물학적 시료로부터 핵산을 추출하는 방법에 관한 것으로서, 상기 추출 방법은 효율적으로 핵산을 추출하기 위한 새로운 방법을 제시한다. 종래 생물학적 시료로부터 핵산을 추출할 경우, 생물학적 시료에 존재하는 다양한 불순물을 제대로 제거하지 못하여 정제율이 낮았으나, 본 발명에 의하면 생물학적 시료를 파쇄하는 단계 및 정제하는 단계에서 계면활성제 및 황산나트륨(Na2SO4) 용액을 첨가함으로써, 박테리아 회수율 및 핵산 회수율이 향상된 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법을 제공하여, 보다 민감하고 정확하게 병원균을 검출할 수 있도록 한다.

Description

생물학적 시료로부터 핵산 추출 방법
본 발명은 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 기존의 상업적인 생물학적 시료를 이용한 핵산 추출방법과 차별화되는 방법으로 복잡한 환경 및 생물학적 시료로부터 불순물을 효과적으로 제거하여 핵산 회수율을 향상시킨 핵산 추출 방법에 관한 것이다.
최근 선택적배지 방법(selective media method), 특정 항체 또는 항원을 이용한 특이적 반응법, 또는 핵산 증폭법과 같은 방법과 같이 민감하고 정확하게 병원균을 검출하는 다양한 방법이 개발되어 왔다. 상기 방법들의 검출 한계점은 나노 파티클(Nano particle), 효소(Enzyme), 화학발광시약(chemiluminescent reagent), 또는 리포좀 (Liposome)과 같은 몇몇의 생물학적 또는 화학적 재료들을 이용한 검출 신호 증폭의 도입에 의하여 급격하게 발전되어왔으며, 이 중에서 몇몇 개의 방법은 이미 상업화 되고 있다.
그러나 샘플 전처리 과정(농축, 정제)은 계속 긴 시간을 필요로 하기 때문에, 여전히 시료로부터의 병원균 검출 방법에서 신호 증폭법의 개발과 검출 시간의 단축은 중요한 발전 과제로 남아있다.
항체를 이용한 검사법 또는 효소반응과 같은 생물학적 검출 방법은 시료의 복잡한 성분들 때문에 전처리 과정 없이 이루어지기 어려우며, 게다가 이러한 농축 프로세스는 노로바이러스(Norovirus)와 같이 배양이 불가능한 타겟의 경우 적용하기 어렵다.
식수와 과일, 야채와 같은 간단한 음식 샘플에 내재되어 있는 병원균의 물리적, 화학적 또는 생물학적 농축 방법은 원심분리법, 폴리에틸렌글리콜 (polyethylene glycol; PEG)을 이용한 퇴적법, 전하를 띈 필터를 이용한 농축법, NaCl을 이용한 이온세기 증가를 통한 흡착법, 2가 양이온(Ca2 +, Mg2 +)을 이용한 농축법 및 항체를 이용한 분리법과 같이 다양하게 개발되고 있다.
그러나 현장에서 박테리아 또는 바이러스를 빠르고 생산성 있게 검출하기 위해서는 긴 전처리 시간의 단축과 저농도에서의 검출 효율 증가라는 두 가지 중요한 문제점이 남아있다. 따라서, 과학적으로나 상업적으로 간단하게 병원균을 농축 및 파괴하는 방법이 지속적으로 요구되고 있다.
생물학적 시료가 변인 경우, 기존의 상업화된 공정은 변 시료를 분리하는 과정에서 변을 침전시켜 핵산과 분리하는 방법을 많이 사용하고 있다. 예를 들면, MoBio Laboratories Inc.(Carlsbad, USA)에서는 알루미늄(Aluminum)과 같은 3가 양이온을 이용하여 불순물을 응집(flocculation) 시키는데, 붐 테크놀러지(Boom technology)를 이용하여 DNA를 농축/정제하는데 있어 중요 특징은 Al3 +, NH4 3+를 이용하여 침전시키는 방법 등에 있으며, 변 또는 흙과 같은 복잡한 시료에 매우 효과적이며 현존하는 기술 중 가장 높은 효율을 보이고 있으나, 회수율이 1% 미만에 그친다. 퀴아젠(Qiagen, Hilden, Germany)에서는 탄수화물계 흡착 매트릭스(Carbohydrate based adsorptive matrix)를 사용하여 중합효소 연쇄반응(polymerase chain reaction; PCR)을 저해하는 물질을 흡착시켜 제거하는데, 이는 변 시료와 같은 복잡한 시료를 정제하는데 매우 효과적이지만, 회수율이 0.1% 미만이다. 또한, Zymo Research Corp.(Irvine, USA)에서는 500㎛ 비드를 이용하여 물리적인 힘을 가함으로써 변 내에 존재하는 핵산을 추출하는 방법을 제안하고 있으나, 변 시료에 존재하는 다양한 불순물을 제거하지 못하여 정제율이 낮다는 한계점을 가지고 있다.
따라서, 상기 변과 같은 복잡한 시료에 존재하는 다양한 불순물을 제거하여 핵산 추출률을 높일 수 있는 방법에 대한 개발이 필요한 실정이다.
본 발명은 생물학적 시료로부터 효과적으로 핵산을 추출하기 위하여 계면활성제 및 코스모트로픽 염(Kosmotropic salt)을 사용함으로써, 박테리아 및 핵산 회수율을 향상시킬 수 있는 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법을 제공한다.
본 발명의 일 양상은 (a) 생물학적 시료에 완충용액(buffer solution); 계면활성제; 및 비드(bead)를 첨가하여 제조된 생물학적 시료-비드 용액을 비드 비팅(bead beating)을 통하여 생물학적 시료를 파쇄하는 단계; (b) 상기 파쇄된 생물학적 시료-비드 용액을 분리하는 단계; (c) 상기 정제된 용액에 코스모트로픽 염(Kosmotropic salt) 용액을 첨가하여 재정제하는 단계; 및 (d) 상기 재정제된 용액으로부터 핵산을 추출하는 단계를 포함하는 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법을 제공한다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 계면활성제는 음이온성 계면활성제일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 계면활성제는 상기 생물학적 시료의 총중량을 기준으로 1 내지 20%(v/v)일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 단계 (a)는 상기 생물학적 시료-비드 용액을 10 내지 80Hz 조건으로 비드 비팅하여 생물학적 시료를 파쇄하는 것일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 정제는 원심분리 또는 여과를 통하여 수행되는 것일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 재정제는 원심분리 또는 열 처리를 통하여 수행되는 것일 수 있다. 본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 열 처리는 50 내지 90℃에서 수행될 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 코스모트로픽 염 용액은 황산나트륨(Na-2SO4) 용액인 것일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 코스모트로픽 염 용액은 1.0 내지 5.0M의 용액일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 따르면, 상기 생물학적 시료는 변, 혈액 및 흙으로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나인 것일 수 있다.
본 발명의 일 양상은 (a) 생물학적 시료에 완충용액; 계면활성제; 및 비드를 첨가하여 제조된 생물학적 시료-비드 용액을 비드 비팅함으로써 생물학적 시료를 파쇄하는 단계; (b) 상기 생물학적 시료가 파쇄된 생물학적 시료-비드 용액을 원심분리하여 정제하는 단계; (c) 상기 정제된 용액에 코스모트로픽 염 용액을 첨가하고 원심분리하여 재정제하는 단계; 및 (d) 상기 재정제된 용액으로부터 핵산을 추출하는 단계를 포함하는, 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법을 제공한다.
본 발명의 또다른 일 양상은 (a) 생물학적 시료에 완충용액; 계면활성제; 및 비드를 첨가하여 제조된 생물학적 시료-비드 용액을 비드 비팅함으로써 생물학적 시료를 파쇄하는 단계; (b) 상기 생물학적 시료가 파쇄된 생물학적 시료-비드 용액을 여과하여 정제하는 단계; (c) 상기 정제된 용액에 코스모트로픽 염 용액을 첨가하여고 열처리하여재정제하는 단계; 및 (d) 상기 재정제된 용액으로부터 핵산을 추출하는 단계를 포함하는, 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법을 제공한다.
본 발명에 따르면, 생물학적 시료를 파쇄하는 단계 및 정제하는 단계에서 각각 계면활성제 및 코스모트로픽 염용액을 첨가함으로써, 시료 중의 불순물을 효과적으로 제거하여 박테리아 및 핵산 회수율이 향상되고, 이로써 보다 민감하고 정확하게 병원균을 검출할 수 있게 하는 효과를 나타낸다.
도 1은 계면활성제 농도에 따른 전체 박테리아 회수, 박테리아 회수율, 핵산 회수율, 및 변 분리를 나타낸다.
도 2는 황산나트륨(Na2SO4) 농도에 따른 전체 박테리아 회수, 및 변 분리를 나타낸다.
도 3은 열처리에 따른 전체 박테리아 회수, 박테리아 회수율, 및 핵산 회수율을 나타낸다.
도 4는 원심분리 세기에 따른 전체 박테리아 회수, 박테리아 회수율, 핵산 회수율, 및 변 분리를 나타낸다.
도 5는 변 시료 종류에 따른 전체 박테리아 회수, 박테리아 회수율, 및 핵산 회수율을 나타낸다.
도 6은 변 시료 양에 따른 개(상단) 및 인간(하단) 변 시료의 분리 및 정제 결과를 나타낸다.
도 7은 시료 양에 따른 인간 혈액 시료의 분리 및 정제 결과(a) 및 본 발명 및 시판 키트(퀴아젠(Qiagen)사)에 따른 바이러스 회수율 및 그람 양성 박테리아의 회수율(b)을 나타낸다.
도 8은 흙 시료의 분리 및 정제 결과(a) 및 흙 시료에서의 그람 양성 박테리아의 회수율(b)을 나타낸다.
도 9는 다양한 비드 크기에 따른 변 시료로부터 핵산 추출률(a), 및 다양한 비드 크기에 따른 스타필로코커스 아우레우스 핵산 회수율(b)을 나타낸다.
도 10은 여과 및 원심분리를 이용한 변 시료 분리 및 정제 결과를 나타낸다.
도 11은 열처리를 통하여 변 시료(a) 및 혈액 시료(b)를 재정제한 결과 및 변 시료에서의 핵산 회수율(c)를 나타낸다.
도 12는 정제 단계를 여과를 통하여, 재정제 단계를 열처리를 통하여 수행한, 비원심분리 방법을 이용한 변 시료 분리 및 정제 결과를 나타낸다.
본 발명의 일 양상은 (a) 생물학적 시료에 완충용액(buffer solution); 계면활성제; 및 비드(bead)를 첨가하여 제조된 생물학적 시료-비드 용액을 비드 비팅(bead beating)을 통하여 생물학적 시료를 파쇄하는 단계; (b) 상기 파쇄된 생물학적 시료-비드 용액을 분리하는 단계; (c) 상기 정제된 용액에 코스모트로픽 염(Kosmotropic salt) 용액을 첨가하여 재정제하는 단계; 및 (d) 상기 재정제된 용액으로부터 핵산을 추출하는 단계를 포함하는 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법을 제공한다.
이하, 본 발명을 보다 상세하게 설명한다.
본 발명의 발명자들은 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법을 연구 개발하던 중, 생물학적 시료를 파쇄하는 단계 및 정제하는 단계에서 각각 계면활성제 및 코스모트로픽 염을 첨가하는 경우, 불순물을 침전시키는 대신 상부로 띄움으로써 전체 박테리아 회수, 박테리아 회수율 및 핵산 회수율이 향상되어 보다 민감하고 정확하게 병원균을 검출할 수 있음을 밝혀내었는바, 이에 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 일 양상은 (a) 생물학적 시료에 완충용액; 계면활성제; 및 비드를 첨가하여 제조된 생물학적 시료-비드 용액을 비드 비팅함으로써 생물학적 시료를 파쇄하는 단계; (b) 상기 생물학적 시료가 파쇄된 생물학적 시료-비드 용액을 정제하는 단계; (c) 상기 정제된 용액에 코스모트로픽 염 용액을 첨가하여 재정제하는 단계; 및 (d) 상기 재정제된 용액으로부터 핵산을 추출하는 단계를 포함하는, 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법을 제공한다.
본 명세서에 사용되는 용어 "생물학적 시료"는 생물로부터 수득가능한시료뿐만 아니라, 핵산을 함유할 소지가 있는 모든 시료를 지칭한다. 구체적으로는 인간 및 동물의 혈액, 식물의 체액, 인간 및 동물의 배설물, 미생물 배양액, 세포 배양액, 바이러스 배양액, 생검 배양액, 흙, 공기 등을 포함하며, 바람직하게는 변, 혈액, 흙을 포함하나, 이에 한정되지 않는다.
본 명세서에서 사용되는 용어 "완충용액"은 그 종류가 특별히 제한되지 않으며, 그 예로 트리스　완충용액, 인산나트륨(Sodium phosphate)　완충용액 또는 인산칼륨(Potassium phosphate)　완충용액일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 바람직하게는 트리스-염산(tris-HCl) 용액이며, 보다 바람직하게는 5 내지 15 mM의 트리스-염산용액이다.
본 명세서에서 사용되는 용어 "계면활성제"는 음이온성, 양이온성, 양쪽성 또는 비이온성 계면활성제일 수 있으나, 음이온성 계면활성제인 것이 보다 바람직하다. 음이온성 계면활성제는, 예를 들어, 소듐 도데실 설페이트(SDS), 소듐 옥틸벤젠 설포네이트(NaOBS), 소듐 도데실 벤젠 설페이트(SDBS), 소듐 도데실 설포네이트(SDSA), 소듐 도데실 벤젠 설포네이트, 소듐 부틸벤조에이트(NaBBS), 암모늄 라우릴 설페이트, 소듐 데옥시콜레이트, 소듐 라우릴 에테르 설페이트 (SLES), 소듐 미레쓰 설페이트(SMES), 디옥틸 나트륨 설포석시네이트, 퍼플루오로옥탄설포네이트(PFOS), 퍼플루오로부탄설포네이트, 소듐 스테아레이트, 소듐 라우로일 사르코시네이트, 퍼플루오로노나노에이트 및 퍼플루오로옥타네이트(PFOA 또는 PFO) 및 이들의 조합으로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며, 바람직하게는 소듐 도데실 설페이트이다. 본 발명에서 계면활성제를 첨가하는 이유는 시료 내 타겟 물질 파괴 효과를 증대시킬 수 있으며 불순물에 의한 핵산 분리 저해를 방지하기 위함이다. 본 발명에서 상기 계면활성제는 생물학적 시료의 총중량을 기준으로 1 내지 20%(v/v)일 수 있는데, 1% 미만이거나 20% 초과인 경우에는 핵산 회수율이 저해될 수 있다.
본 명세서에서 사용되는 용어 "비드 비팅"은 시료 중의 고체 물질을 물리적인 힘으로 파쇄하는 방법으로서, 비드가 포함된 시료 용액을 손으로 흔들거나 자동진동기를 이용하여 수행한다. 본 발명에서는 자동진동 방법으로 비드를 진동시키는 방법을 사용하였다. 상기 "비드"의 소재는 제한이 없으나, 바람직하게는 글라스 비드가 사용될 수 있다. 상기 비드의 직경은 0.03 내지 2㎜, 바람직하게는 0.1mm 내지 0.5mm 크기의 비드 또는 이들의 혼합물인 것이 바람직하나, 이에 한정되는 것은 아니다. 시료 용액 중에 포함되는 비드의 양은 10 내지 200㎎이 바람직하며, 보다 바람직하게는 생물학적 시료-비드 용액의 1 내지 25중량%일 수 있다. 본 발명에서 있어서, 생물학적 시료-비드 용액을 10 내지 80Hz 조건으로 비드 비팅을 통하여 생물학적 시료를 파쇄할 수 있으며, 이에 한정되는 것은 아니다. 상기 비드 비팅은 3 내지 10분 동안 수행되는 것이 바람직하나, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 명세서에서의 정제 단계는 입자의 크기가 큰 불순물을 핵산이 포함된 액상 물질로부터 1차적으로 분리하는 과정을 의미하며, 이는 원심분리 또는 여과를 통하여 수행될 수 있다. 원심분리를 통하여 정제하는 경우, 바람직하게는, 상기 파쇄된 생물학적 시료-비드 용액을 6000 내지 9000rpm에서 30 내지 90초 동안 원심분리하여 그 상층액만을 고체 불순물로부터 분리할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 명세서의 재정제 단계는 상기 정제된 용액에 코스모트로픽 염 용액을 첨가함으로써 입자의 크기가 작은 불순물을 핵산이 포함된 액상 물질의 상부로 띄움으로써 2차적으로 분리하는 과정을 의미하며, 이는 원심분리 또는 열처리를 통하여 수행될 수 있다.
본 명세서에서 사용되는 용어 "코스모트로픽 염"은 SO4 2-, HPO4 2 -, OH-, F-, HCOO-, CH3COO- 또는 Cl-와 양이온으로 이루어진 염을 의미한다. 다만, 상기 양이온으로서 Mg2 +는 상기　코스모트로픽　음이온과 결합하는 경우, 예외적으로　코스모트로픽　특성을 가지지 않으므로, Mg2 +는 제외한다. 상기 양이온은 NH4 +, Rb+, K+, Na+, Cs+, Li+, Ca2 + 또는 Ba2 +일 수 있으다. 상기　코스모트로픽　염은 바람직하게는, 황산나트륨(Na2SO4), 염화나트륨(NaCl), 황산암모늄((NH4)2SO4), 아세트산나트륨(NaOAc)일 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니며, 황산나트륨이 가장 바람직하다. 상기 황산나트륨 용액의 농도는 1.0 내지 5.0M인 것이 바람직하나, 이에 한정되는 것은 아니다. 코스모트로픽염 용액을 첨가하는 이유는 핵산과 불순물을 분리하기 위함이다. 코스모트로픽 염 용액을 첨가한 후, 이 혼합물을 원심분리 또는 열처리함으로써 상부로 분리되는 불순물을 한 번 더 제거할 수 있다. 상기 원심분리는 6000 내지 9000rpm에서 30 내지 90초 동안 원심분리함으로써 수행될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 상기 열처리는 50 내지 90℃에서 수행될 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 명세서에서 사용되는 용어 "핵산 추출"은 당업계에 공지된 방법에 의하여 수행될 수 있으며, 구체적으로는 문헌[미국 특허등록 제5234809호]을 참조한다.
상기 정제 단계와 재정제 단계는 상기 개시된 방법을 임의로 선택함으로써 수행할 수 있다. 바람직하게는 i) 정제 단계와 재정제 단계를 모두 원심분리를 통하여 수행할 수 있으며, 또는 ii) 정제 단계는 여과를 통하여 수행하고 재정제 단계는 열처리를 통하여 수행할 수 있다. 특히, i)의 방법은 키트화 방식에 ii)의 방법을 이용하는 경우에는 기기자동화 방식에 적용하기에 적합하다.
이하, 하기 실시예에 의해 본 발명을 보다 상세하게 설명한다. 다만, 이러한 실시예에 의해 본 발명이 한정되는 것은 아니다.
실시예 1. 변 시료의 분리 및 정제
변 시료 200㎎에 완충용액으로서 10mM의 트리스-염산(pH 8 이상) 400㎕ 및 계면활성제인 소듐 도데실 설페이트(SDS, AMRESCO) 완충용액 부피 기준의 농도가 6%(v/v)가 되도록 첨가하고, 변 시료 및 검측대상 파쇄를 위하여 100㎛ 유리 비드 0.4g(대한과학)을 투입한 후, 50㎐의 조건에서 5분 동안 비드 비팅(Scientific Industries)을 수행하였다. 이후, 8,000rpm에서 1분 동안 원심분리(LABOGENE)하여 상층액을 옮겨 담고, 분리된 상층액에 2.5M의 황산나트륨(Na2SO4 , Sigma-Aldrich) 용액을 첨가하여 고루 혼합되도록 교반시킨 후, 다시 8,000rpm에서 1분 동안 원심분리하였다. 1분 후, 액체 상단에 불순물이 띄워지면 하단의 용액만을 새로운 튜브에 옮겼다. 옮겨진 용액은 붐 테크놀러지(Boom technology)를 이용하여 핵산을 추출하였다(문헌[US005234809A] 참고]).
실시예 2. 계면활성제 농도에 따른 변 시료로부터의 박테리아 및 핵산의 회수율 확인
2.1. 계면활성제의 농도를 달리하여 변 시료를 분리 및 정제
변 시료에서 SDS 농도에 따른 박테리아 및 핵산의 회수율을 확인하기 위하여, 변 시료 200㎎에 106cfu/ml의 농도로 준비된 살모넬라(salmonella, ATCC) 또는 106cfu/ml의 농도에서 추출한 황색포도상구균(staphylococcus aureus, ATCC)의 DNA를 추가하고, SDS를 완충용액 부피를 기준의 각 농도가 1.2%, 3%, 4%, 5%, 6%, 10%, 20%가 되도록 첨가하는 것을 제외하고는 상기 실시예 1과 같은 전체 공정을 수행하였다(도 1의 (d) 참조).
2.2. 분리된 시료로부터 전체 박테리아 양, 박테리아 회수율, 핵산 회수율의 측정
핵산 추출은 붐 테크놀러지를 이용하였고여 핵산을 추출하였고, 분리된 핵산은 전체 박테리아 양을 측정하기 위해서 유니버셜 박테리아 프라이머(Universal Bacteria primer)를 이용하여 PCR(Polymerase Chain Reaction)을 수행하여 그 양을 비교하였고, 박테리아 및 핵산 회수율은((추출된 박테리아 또는 핵산의 농도)/(초기 첨가된 박테리아 또는 핵산의 농도)*100(%))을 이용하여 계산하였다.
실험 결과, SDS가 6%의 농도로 첨가된 경우에 있어 전체 박테리아 양 측정(도 1의 (a) 참조), 박테리아 회수율(도 1의 (b) 참조), 핵산 회수율(도 1의 (c) 참조)이 가장 우수한 효과를 나타내었다. 또한 변 시료 추출에 있어 가장 많이 사용되는 MO BIO사에서 판매하는 키트와 비교했을 때에도 전체 완충용액 부피 기준의 6%의 SDS를 사용하였을 때 가장 회수율이 높게 측정되는 것을 확인하였다.
실시예 3. 황산나트륨 용액의 농도에 따른 변 시료로부터의 박테리아 회수량 확인
3.1. 황산나트륨 용액의 농도를 달리하여 변 시료를 분리 및 정제
효과적으로 변 시료를 분리하면서 핵산을 추출할 수 있는 황산나트륨(Na2SO4) 용액의 농도를 확인하기 위하여, 황산나트륨 용액의 농도별(0.25M(0.1X), 1.25M(0.5X), 및 2.5M(1X))로 달리하여 첨가한 것을 제외하고는 상기 실시예 1과 같은 전체 공정을 수행하였다(도 2의 (b) 참조).
3.2. 분리된 시료로부터 전체 박테리아 양의 측정
상기 실시예 2.2.에 기재된 방법으로 전체 박테리아 회수량을 측정한 결과, 2.5M(최종 농도 0.7M)의 황산나트륨 용액을 사용한 경우의 전체 박테리아 회수량이 가장 높게 나타났으며(도 2의 (a) 참조), 2.5M의 경우에만 변 시료가 용액 상단으로 뜨는 결과를 나타내었다(도 2의 (b) 참조).
실시예 4. 열처리에 따른 핵산 추출량의 확인
정제 단계 전 변 시료에 열처리가 필요한지 여부를 확인하기 위하여 (뚜껑이 저절로 열리지 않는) 40℃의 조건에서 시간별(처리하지 않음, 5분, 10분 및 20분)로 열처리를 수행하는 것을 제외하고는 상기 실시예 1 및 2와 같은 전체 공정을 수행하여 핵산 추출량을 확인하였다.
실험 결과, 현재 변을 분리 하는 과정에서 변 시료를 열처리를 하여 핵산 추출을 수행하는 상업화된 키트 중 퀴아젠 사의 키트와 달리, 변 시료에 열처리를 하지 않는 것(O분)이 핵산 추출량, 박테리아 회수율 및 DNA 회수율이 높게 측정되는 것을 확인하였다(도 3의 (a) 내지 (c) 참조).
실시예 5. 원심분리 세기에 따른 핵산 추출량의 확인
변 시료를 분리하기 위한 효과적인 원심분리 세기를 확인하기 위하여, 원심분리를 수행하는 세기를 2,000rpm, 4,000rpm, 6,000rpm 및 8,000rpm의 조건으로 달리하는 것을 제외하고는 상기 실시예 1 및 2와 같은 전체 공정을 수행하였다.
실험 결과, 원심 분리의 세기를 8,000rpm의 조건으로 원심분리를 수행할 경우, Ct(Threshold of Cycle) 값이 가장 낮게 나타났으며(도 4의 (a)참조), 가장 많은 양의 핵산이 존재함을 확인하였다.
실시예 6. 대상 시료의 종류에 따른 박테리아 및 핵산 회수율의 확인
개의 변과 인간의 변에 따른 박테리아 및 핵산의 회수율을 확인하기 위하여, 각 시료에 대하여 상기 실시예 1 및 2와 동일한 실험을 수행하는 한편, 시료의 종류에 상관 없이 가장 많이 사용되는 MO BIO사의 키트로 동일한 결과 내용을 측정하였다.
실험 결과, MO BIO사의 키트와 비교했을 때, 전체 박테리아 회수량, 박테리아 회수율 및 핵산 회수율 부분에서 모두 우수한 성능을 나타내는 것을 확인하였다.
실시예 7. 시료의 양에 따른 박테리아 및 핵산 회수율의 확인
현재 상업화된 키트는 약 200 내지 250㎎의 시료를 사용하도록 요구하고 있으나, 보다 적은 양의 시료에서도 핵산 추출이 가능함을 확인하기 위하여, 개와 인간의 변 2종의 시료의 양을 달리하는 것, 즉, 10mg(변 10mg + 증류수 190㎕), 20mg(변 20mg + 증류수 180㎕), 50mg(변 50mg + 증류수 150㎕), 100mg(변 100mg + 증류수 100㎕), 150mg(변 150mg + 증류수 50㎕), 200mg(변 200mg) 및 250mg(변 250mg의 시료를 이용한 것을 제외하고는 상기 실시예 1 및 2와 같은 전체 공정을 수행하여, 전체 박테리아 회수량, 박테리아 회수율 및 핵산 회수율을 비교하였다.
실험 결과, 개의 변 시료는 50mg 이상, 인간의 변 시료는100mg 이상이 포함된 경우 불순물 분리가 가능하였으며, 이는 모두 기존에 판매되고 있는 상업 키트가 요구하는시료인 양보다 현저히 적은 시료의 양만으로 핵산의 검출이 가능함을 나타내고, 변의 양에 상관 없이 모두 우수한 성능을 나타내는 것을 확인하였다(도 6 참조).
실시예 8. 혈액 시료의 분리 및 정제 관찰
상기 변 시료의 분리에 이용되었던 방법을 복잡한 시료 중의 하나인 혈액(전혈) 시료에도 적용하여 불순물 제거를 확인하였다. 상업화된 키트에서 권장하는 혈액 시료의 양은 200㎕이기 때문에, 시료의 부피를 200㎕를 기준으로 하여 실험을 진행하였다.
인간의 전혈을 이용하여, 각각 20㎕(전혈 20㎕ + 증류수 180㎕), 50㎕(전혈 50㎕ + 증류수 150㎕), 100㎕(전혈 100㎕ + 증류수 100㎕) 및 200㎕(전혈 200㎕)을 준비하였다. 상기 준비된 시료를 상기 실시예 1에 기재된 방법으로 불순물을 분리 및 정제하였다. 실험 결과, 전혈이 100㎕ 이상 포함된 시료에서 불순물이 분리 및 정제되는 것을 확인하였다(도 7의 (a) 참조).
혈액 100㎕ 시료를 이용하여 상기 실시예 2에 기재된 방법을 이용하여 핵산 회수율을 확인하였다. 실험 결과, 아데노바이러스는 퀴아젠 사의 DNA 미니 키트 대비 70%의 회수율을 보였고, 그람 양성 박테리아의 경우에는 퀴아젠 사의 DNA 미니 키트를 기준으로 약 40배의 회수율을 나타내었다(도 7의 (b) 참조).
실시예 9. 흙 시료의 분리 및 정제 관찰
상기 변 시료의 분리에 이용되었던 방법을 또다른 복잡한 시료 중의 하나인 흙 시료에도 적용하여 불순물 제거를 확인하였다. 먼저, 각기 다른 장소에서 채취한 2종의 흙 시료 250mg에 증류수를 100㎕ 첨가한 시료를 준비하고, 상기 실시예 1에 기재된 방법으로 불순물을 분리 및 정제하였다. 실험 결과, 2종의 흙 모두에서 불순물의 분리 및 정제가 수행되었음을 확인하였다(도 8의 (a) 참조).
흙 250mg 시료를 이용하여 상기 실시예 2에 기재된 방법을 이용하여 핵산 회수율을 확인하였다. 실험 결과, 2종의 흙 시료 모두에서 그람 양성 박테리아 중 하나인 스타필로코커스 아우레우스(Staphylococcus aureus)에 대하여 MO BIO 사의 키트를 기준으로 약 2배의 회수율을 나타내었다(도 8의 (b) 참조).
실시예 10. 비드 크기에 따른 변 시료로부터 핵산 추출 확인
유리 비드를 이용한 변 시료 파쇄 단계에서 다양한 비드 크기에 따른 변 시료로부터 핵산 추출율을 확인하기 위해 다음과 같은 실험을 수행하였다.
직경 2mm, 0.5mm 및 0.1mm의 비드와 이들 비드의 2mm + 0.5mm, 2mm + 0.1mm, 0.5mm + 0.1mm 혼합물을 각각 동량 첨가하고, 스타필로코커스 아우레우스 (Staphylococcus aureus)를 동일한 농도로 넣은 변을 파쇄한 뒤 변에 존재하는 핵산 추출율과 스타필로코커스 아우레우스 핵산 회수율을 확인하였다(도 9 참조).
실험 결과, 직경 2mm의 비드에서는 변의 파쇄가 부분적으로 잘 수행되지 않은 것을 확인할 수 있었고 이는 핵산 추출율에서도 다른 크기의 비드에 비해 낮은 효율을 보였다. 따라서, 핵산 회수 효율이 우수한 비드의 크기는 직경 0.1mm 내지 0.5mm 크기의 비드 또는 이들의 혼합물임을 확인하였다.
실시예 11. 여과 및 열처리에 의한 핵산 추출 확인
11.1. 여과에 의한 시료의 정제
기존 복잡시료를 분리하는 방법에서, 변 시료 및 복잡시료를 파쇄한 후 이루어지는 원심분리를 이용한 첫번째 정제 과정을 비원심분리 방법을 이용하여 정제할 수 있다. 첫 번째 정제과정이 여과로 대체될 수 있는지를 확인하기 위하여 다음과 같은 실험을 수행하였다.
상기 실시예 1에서 원심분리 대신 여과를 사용하는 방법을 사용한 것을 제외하고는, 실시예 1과 동일한 방법으로 실험을 수행하였다. 실시예 1에 기재한 방법으로 변 시료 및 복잡시료 대상을 파쇄한 후, 비드 및 큰 불순물이 빠져 나가지 않는 틈이 있는 물체를 통과시켜 1차 정제된 용액을 수득하였다. 상기 정제된 용액을 기존의 원심분리를 이용하여 재정제를 과정을 거치고, 재정제된 용액으로부터 핵산 회수를 수행하였다.
3가지 다른 모양 및 형태를 가진 종류의 변 시료를 이용하여 실험한 결과, 핵산 회수율에서 원심분리 방법에 비해 유의한 차이를 나타나지 않았으므로, 대체 가능한 공정임을 확인하였다(도 10 참조).
11.2. 열에 의한 시료의 재정제
상기 복잡시료를 분리하는 방법에는 원심분리를 이용하여 재정제하지만, 원심분리를 이용하지 않고 열처리를 함으로써 불순물을 재정제하였다.
변 시료 200mg을 pH가 8 이상인 완충제와 6%(v/v)의 계면활성제 SDS와 변시료 파괴 및 검측대상 파괴를 위한 70 내지 100㎛ 의 유리 비드 0.4g를 튜브에 넣고 5분 동안 비드 비팅을 수행하였다. 이후 원심분리를 이용하여 큰 불순물과 유리 비드를 제외한 용액을 새로운 튜브에 옮겨 담고, 2.5M의 Na2SO4 용액을 첨가하여 열처리를 각각 45℃, 55℃, 65℃, 75℃, 85℃ 및 95℃에서 5분 또는 10분 동안 수행한 후, 원심분리를 이용하여 재정제한 결과와 비교 관찰하였다. 또한, 상기 온도들로 10분 동안 처리한 변 시료에 PCR을 수행하여 핵산 추출 농도(Total bacteria)를 측정하여 원심분리에 의한 시료와 비교하였다.
실험 결과, 다양한 온도의 조건에서도 변의 분리가 성공적으로 이루어지는 것을 확인할 수 있었으며, 그 차이는 원심분리에 의한 것과 유의한 차이를 나타내지 않았다(도 11의 (a) 참조). 동일한 방법을 혈액 시료에도 적용한 결과 원심분리 대신 열처리에 의해 불순물이 성공적으로 분리되는 것을 확인하였다(도 11의 (b) 참조). 또한, 변 시료에 대하여 PCR을 수행한 결과, 온도에 영향 없이 모든 온도에서 원심분리와 유사한 Ct 값을 나타냄을 확인하였다(도 11의 (c) 참조).
11.3. 여과 및 열처리에 의한 변 시료의 분리 및 정제
3가지 다른 모양 및 형태를 가진 변에 대하여, 상기 실시예 1에서 1차 원심분리 대신 여과를, 2차 원심분리 대신 열처리를 사용한 것을 제외하고는, 실시예 1과 동일한 방법으로 실험을 수행하였다.
실험 결과, 정제 및 재정제 단계를 모두 원심분리를 사용한 것과 유사한 결과를 나타냄을 확인하였으며, 따라서 비 원심분리를 이용한 복잡 시료 분리 및 정제가 가능함을 확인하였다(도 12 참조).
이제까지 본 발명에 대하여 그 바람직한 실시예들을 중심으로 살펴보았다. 본 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자는 본 발명이 본 발명의 본질적인 특성에서 벗어나지 않는 범위에서 변형된 형태로 구현될 수 있음을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로, 개시된 실시예들은 한정적인 관점이 아니라 설명적인 관점에서 고려되어야 한다. 본 발명의 범위는 전술한 상세한 설명보다는 후술하는 특허청구범위에 의하여 나타내어지며, 특허청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 균등 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.

Claims (12)

  1. (a) 생물학적 시료에 완충용액(buffer solution); 계면활성제; 및 비드(bead)를 첨가하여 제조된 생물학적 시료-비드 용액을 비드 비팅(bead beating)함으로써 생물학적 시료를 파쇄하는 단계;
    (b) 상기 생물학적 시료가 파쇄된 생물학적 시료-비드 용액을 정제하는 단계;
    (c) 상기 정제된 용액에 코스모트로픽 염(Kosmotropic salt) 용액을 첨가하여 재정제하는 단계; 및
    (d) 상기 재정제된 용액으로부터 핵산을 추출하는 단계
    를 포함하는, 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법.
  2. 청구항 1에 있어서,
    상기 계면활성제는 음이온성 계면활성제인 것을 특징으로 하는 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법.
  3. 청구항 1에 있어서,
    상기 계면활성제는 상기 생물학적 시료의 총중량을 기준으로 1 내지 20%(v/v)인 것을 특징으로 하는 생물학적 시료료부터의 핵산 추출 방법.
  4. 청구항 3에 있어서,
    상기 단계 (a)는 상기 생물학적 시료-비드 용액을 10 내지 80Hz조건으로 비드 비팅하여 생물학적 시료를 파쇄하는 것을 특징으로 하는 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법.
  5. 청구항 1에 있어서,
    상기 정제는 원심분리 또는 여과를 통하여 수행되는 것을 특징으로 하는 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법.
  6. 청구항 1에 있어서,
    상기 재정제는 원심분리 또는 열 처리를 통하여 수행되는 것을 특징으로 하는 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법.
  7. 청구항 6에 있어서,
    상기 열 처리는 50 내지 90℃에서 수행되는 것을 특징으로 하는 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법.
  8. 청구항 1에 있어서,
    상기 코스모트로픽 염 용액은 황산나트륨(Na-2SO4) 용액인 것을 특징으로 하는 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법.
  9. 청구항 1에 있어서,
    상기 코스모트로픽 염 용액은 1.0 내지 5.0M의 용액인 것을 특징으로 하는 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법.
  10. 청구항 1에 있어서,
    상기 생물학적 시료는 변, 혈액 및 흙으로 이루어진 군으로부터 선택되는어느 하나인 것을 특징으로 하는 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법.
  11. (a) 생물학적 시료에 완충용액; 계면활성제; 및 비드를 첨가하여 제조된 생물학적 시료-비드 용액을 비드 비팅함으로써 생물학적 시료를 파쇄하는 단계;
    (b) 상기 생물학적 시료가 파쇄된 생물학적 시료-비드 용액을 원심분리하여 정제하는 단계;
    (c) 상기 정제된 용액에 코스모트로픽 염 용액을 첨가하고 원심분리하여 재정제하는 단계; 및
    (d) 상기 재정제된 용액으로부터 핵산을 추출하는 단계
    를 포함하는, 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법.
  12. (a) 생물학적 시료에 완충용액; 계면활성제; 및 비드를 첨가하여 제조된 생물학적 시료-비드 용액을 비드 비팅함으로써 생물학적 시료를 파쇄하는 단계;
    (b) 상기 생물학적 시료가 파쇄된 생물학적 시료-비드 용액을 여과하여 정제하는 단계;
    (c) 상기 정제된 용액에 코스모트로픽 염 용액을 첨가하여고 열처리하여재정제하는 단계; 및
    (d) 상기 재정제된 용액으로부터 핵산을 추출하는 단계
    를 포함하는, 생물학적 시료로부터의 핵산 추출 방법.
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