WO2018034522A1 - 코어와 그의 표면에 결합된 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체를 포함하는 결합체 및 그의 용도 - Google Patents

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Definitions

  • the present invention relates to a conjugate comprising a sialic acid, sialylactose or derivatives thereof bonded to the core and its surface and to the use thereof.
  • Influenza virus is an RNA virus belonging to the family Orthomyxoviridae, and serotypes are classified into three types, type A, type B and type C. Among them, type B and C have been identified only in humans, and type A has been identified in humans, horses, pigs, other mammals, and various types of poultry and wild birds.
  • the serotypes of influenza A viruses are classified according to the two types of proteins on the surface of the virus: hemagglutinin (HA) and neuraminidase (NA) .To date, 144 types (16 HA proteins and NA) 9 proteins) are known. HA acts as a virus to attach to somatic cells, and NA allows the virus to penetrate into cells.
  • HA acts as a virus to attach to somatic cells
  • NA allows the virus to penetrate into cells.
  • Influenza A (H1N1) virus which is of recent interest, is also known as the "H1N1" or "H1N1” virus, a new type of virus that contains a mixture of genetic material from human, swine and avian influenza viruses. May was first discovered. The path of virus transmission has not yet been clearly identified, but similar to the existing seasonal influenza virus, it is mainly a person-to-person, close contact between infected and close contact with an infected person (through infection of a droplet, ie coughing or sneezing of an infected person). It is known to propagate within about 2m). In addition, in the case of food, cooking by heating at 70 ° C. or higher is known to kill the virus present in the food.
  • the incubation period of the swine flu virus is estimated to be about 1 to 7 days, and symptoms include upper respiratory symptoms such as fever, chills, headache, cough, sore throat, runny nose and dyspnea in confirmed patients, myalgia, joint pain, fatigue, vomiting or Diarrhea and the like are known to appear. It is usually reported to be contagious from one day before the onset of symptoms to seven days after the onset, and may be longer than 10 days in children.
  • studies have been actively conducted to develop a method for early diagnosis of H1N1 virus infection. For example, Korean Patent Laid-Open Publication No.
  • 2011-0064174 discloses a novel influenza virus A / H1N1 specific monoclonal antibody and fusion cells that produce the same, except for other influenza viruses, a diagnostic kit including the monoclonal antibody, and a new influenza virus A using the same.
  • a method for diagnosing / H1N1 is disclosed, and
  • Korean Patent Laid-Open No. 2011-0096940 discloses a type A H1N1 influenza virus using a rapid immunochromatography method using an antibody against hemagglutinin (HA) antigen of the H1N1 influenza virus. (Influenza A, H1N1) has been disclosed a diagnostic kit, Korean Patent Laid-Open No.
  • 2011-0127034 discloses influenza A virus common PCR primer for detecting influenza A virus and swine-derived influenza (H1N1, A / Korea / 01/2009 (H1N1)) Virus Detection Specific PCR Primer A method for quickly and accurately detecting a swine flu virus (A / Korea / 01/2009 (H1N1)) is disclosed.
  • the present inventors have made intensive studies to develop a method for effectively treating an influenza virus infection, and have included sialic acid, sialylactose or derivatives thereof bound to a core and its surface, and the sialic acid, sialylactose.
  • the derivatives of these derivatives can be used to treat influenza virus infections, as well as to treat infections caused by viruses that are resistant to conventional antiviral agents when the conjugates are characterized in that they are arranged at equal intervals.
  • the present invention was completed.
  • One object of the present invention comprises a sialic acid, sialylactose or derivatives thereof bonded to a core and its surface, wherein the sialic acid, sialylactose or derivatives thereof are arranged at equal intervals from each other. It is to provide a conjugate.
  • Another object of the present invention to provide a pharmaceutical composition for the prevention or treatment of influenza virus infection comprising the conjugate.
  • Still another object of the present invention is to provide a food composition for preventing or ameliorating influenza virus infection, comprising the conjugate.
  • Still another object of the present invention is to provide a method of inhibiting infection of an influenza virus, comprising treating the conjugate with an isolated influenza virus.
  • the conjugate provided by the present invention binds to the hemagglutinin present on the surface of the influenza virus and inhibits the infection process of the influenza virus, thereby preventing or treating influenza virus infection and exhibiting resistance to antiviral agents. Since the influenza virus can also be prevented or treated, it can be widely used for the development of a preparation for the prevention or treatment of influenza virus infection.
  • 1A is a scheme showing reductive amination of primary amino groups of reducing sugars, 6SL and PAMAM dendrimers (G2 to G5) using NaCNBH3.
  • Figure 1b is a graph showing the results of analyzing the properties of the 6SL-PAMAM conjugate by MALDI-TOF MS method.
  • Figure 1c is a graph showing the results of analyzing the characteristics of the 6SL-PAMAM conjugate by the 1 H-NMR method.
  • Figure 1d is a schematic diagram showing the structure of the various 6SL-PAMAM conjugates synthesized in the present invention.
  • Figure 1e shows the results of analyzing the structure of the S3-G4 conjugate
  • the left side is a schematic diagram showing the specific structure of the S3-G4 conjugate
  • the right side is the 1 H-NMR spectrum of each component constituting it
  • the top is 6SL
  • the interruption indicates PAMAM dendrimer (G4) and the lower part indicates their conjugate (S3-G4).
  • Figure 2a is a graph showing the results of analyzing the effects of influenza virus infection of the various 6SL-PAMAM conjugates synthesized in the present invention.
  • Figure 2b is a graph showing the results of analyzing the influenza virus infection inhibitory effect of the 6SL-PAMAM conjugate according to the ligand interval.
  • Figure 3a is a result of analyzing the reactivity between the 6SL-PAMAM conjugate and HA
  • the left side is an SPR sensorgram showing the interaction of the 6SL-PAMAM conjugate and HA
  • the right side the binding affinity of the 6SL-PAMAM conjugate to HA (in graph showing response units (RU).
  • Figure 3b is a schematic diagram showing the structure of the HA trimer, the red portion represents the binding site of 6SL, the black dotted line represents the spacing between the binding sites of the 6SL.
  • 3C is a schematic diagram showing the interaction between the 6SL-PAMAM conjugate (S3-G4 or S6-G4) and the binding site of the HA trimer.
  • Figure 4 is a TEM photograph showing the results of analyzing the binding properties between the 6SL-PAMAM conjugate (S3-G4) and H1N1 virus, the upper left shows the 6SL-PAMAM conjugate (S3-G4), the upper right shows the H1N1 virus. , The lower left shows the reaction result of the PAMAM dendrimer (G4) and the H1N1 virus, and the lower right shows the reaction result of the 6SL-PAMAM conjugate (S3-G4) and the H1N1 virus.
  • FIG. 5 is a fluorescence micrograph showing the results of measuring the effects of S3-G4 on single stained virus (R18 labeled HIN1) and double stained virus (DiOC18 and R18 labeled H1N1) over time.
  • 7A is a graph showing the effect of S3-G4 conjugates on the titer of H1N1 virus infected with mice.
  • 7B is a micrograph showing the effect of S3-G4 conjugates on histopathological status of lung tissue of mice infected with H1N1 virus.
  • 7C is a graph showing the effect of S3-G4 conjugates on the expression levels of cytokines in lung tissue of mice infected with H1N1 virus.
  • 7D is a graph showing the effect of S3-G4 conjugates on survival of mice infected with H1N1 virus.
  • 7E is a graph showing the effect of S3-G4 conjugates on the weight change of mice infected with H1N1 virus.
  • 8A is a fluorescence micrograph showing the effect of the S3-G4 conjugate on the infection of antiviral agent resistant H1N1 virus.
  • 8B is a graph showing the results of analyzing the inhibitory activity of S3-G4 conjugate against antiviral agent resistant H1N1 virus.
  • 8C is a photograph showing the results of analyzing the proliferation inhibitory activity of the S3-G4 conjugate against the antiviral agent resistant H1N1 virus.
  • the present invention comprises a sialic acid, sialylactose or derivatives thereof bonded to a core and its surface, and the sialic acid, sialylactose or derivatives thereof Provides a combination, characterized in that arranged at equal intervals from each other.
  • core of the present invention combines with sialic acid, sialylactose or derivatives thereof to allow the sialic acid, sialylactose or derivatives thereof to be arranged at equal intervals. Means to carry out the material.
  • the material constituting the core is not particularly limited as long as it includes a reactor capable of bonding with sialic acid, sialylactose or derivatives thereof, and as an example, polyamidoamine (PAAMAM) , Polyhydroxybutyrate, polyhydroxyvalerate, polylysine, polylactic acid, polyglycolide, polycaprolactone, polypropylene fumerate, polydioxenone, polynucleotide, and copolymers thereof may be used alone or in combination. .
  • PAAMAM polyamidoamine
  • the core has a diameter of a predetermined level or more because a plurality of sialic acid, sialylactose or derivatives thereof are bonded to each other and arranged at equal intervals.
  • the diameter of the core is not particularly limited as long as a plurality of sialic acid, sialylactose or derivatives thereof are bonded to each other and arranged at the same intervals, but may be 3.0 to 6.0 nm, for example. In another example, it may be 3.5 to 5.5 nm, as another example, may be 4.0 to 6.0 nm, and as another example, may be 4.5 to 5.4 nm.
  • the shape of the core provided by the present invention is not particularly limited thereto, but may be, for example, a spherical shape composed of a polymer of the core component.
  • the linear polymer of the core component may be It may be in an overlapped form through folding, or as another example, may be in the form of a dendrimer formed by using the core component as a base compound.
  • the reactor included in the core constituents are arranged regularly, so that the sialic acid, sialylactose or derivatives thereof bonded thereto may be arranged at equal intervals, to produce a dendrimer type core It was.
  • the term “dendrimer” refers to a macromolecule in which a base compound overlaps with a dendron-like molecular chain to form a spherical structure. Since it is easy and has many reactors in the outermost part, it exhibits chemical or physically unique characteristics, and it is possible to introduce various derivatives and reactors in the densified terminal group of the surface. In particular, the dendrimer is easier to control than the linear polymer form, the structure is easy to predict and can be applied to various fields.
  • the generation of the dendrimer can be specified.
  • one base compound when one base compound is polymerized without being bonded to each other, it may be expressed as a first generation dendrimer (G1), and one base compound is further bound to the terminal of the base compound included in the first generation dendrimer.
  • the third generation dendrimer When one base compound is further bonded to the terminal of the base compound included in the second generation dendrimer can be represented as a third generation dendrimer (G3), the third generation dendrimer
  • G4 When one base compound is further bonded to the terminal of the base compound included in, it may be expressed as a fourth generation dendrimer (G4), and one base compound is further bonded to the terminal of the base compound included in the fourth generation dendrimer.
  • G5 fifth generation dendrimer
  • the dendrimer may be used as the base compound using the materials constituting the core described above, the base compound is a plurality of sialic acid, sialyl lactose or derivatives thereof bonded to the surface, arranged at equal intervals As long as it can form a core that can be, but is not particularly limited thereto, it may be, for example, polyamidoamine, polylysine, polynucleotide, and the like, and as another example, polyamidoamine.
  • sialic acid in the present invention is also referred to as sialic acid or neuramic acid, and n-acetylated, n-glycolated or o-acetylated neuraminic acid, which is an aldol condensate of pyruvic acid and mannoseamine It means a kind of amino sugar having a chemical structure.
  • the sialic acid may be used as a ligand that binds to hemagglutinin (HA) of a virus and inhibits its function.
  • HA hemagglutinin
  • the ligand not only sialic acid but also a derivative thereof may be used.
  • the term “derivative” refers to a similar compound obtained by chemically changing a part of a target compound, and may be a compound in which a hydrogen atom or a specific atomic group in the target compound is replaced by another atom or atomic group. have.
  • the derivative may be interpreted as a derivative of sialic acid or sialylactose, and the sialic acid or derivative of sialylactose is particularly limited thereto, as long as it can bind HA and inhibit its function.
  • it may be a sialyl oligosaccharide in which a saccharide is bound to sialic acid, and as another example, 3'-Sialyllactose, 6'-Sialyllactose ), Sialyl lacto-N-tetraose, disialyl lacto-N-tetraose, and the like.
  • the spacing between sialic acid, sialylactose or derivatives thereof included in the conjugate provided in the present invention is not particularly limited, but may be 1.0 nm or more, 1.2 nm or more, and 1.6 nm or more.
  • the spacing between the 6SL is not particularly limited.
  • the spacing between the 6SL may be 1.0 to 4.0 nm, as another example may be 1.6 to 3.5 nm, as another example may be 2.0 to 3.1 nm, as another example, 2.4 or 3.1 nm
  • 6SL 6'-sialylactose
  • the term “conjugate” refers to a substance in which a plurality of sialic acid, sialylactose or derivatives thereof are bound to one core.
  • the conjugate may be a form in which sialic acid, sialylactose or derivatives thereof are bound to the core at equal intervals.
  • the conjugate of the present invention may be in the form in which sialic acid, sialylactose or derivatives thereof are bonded through a reactor of the core, or a plurality of sialic acid, sialylactose or derivatives thereof are bound to the core through a linker. have.
  • the reactor of the core is not particularly limited as long as sialic acid, sialylactose or derivatives thereof can be bound to the core, and reactors known in the art may be used.
  • the binder may be combined with the core and sialic acid, sialylactose or By various combinations of derivatives of, it can be formed in various forms.
  • PAMAM dendrimers As an example, as a binder containing a polyamidoamine (PAMAM) dendrimer as a core and 6'-sialylactose (6SL) as a sialic acid derivative bonded to the core, PAMAM dendrimers of generations 2 to 5 It may be a conjugate of the form (6SL-PAMAM) of 10 to 128 6SL bonded to the terminal amine group of.
  • PAMAM dendrimers of generations 2 to 5 It may be a conjugate of the form (6SL-PAMAM) of 10 to 128 6SL bonded to the terminal amine group of.
  • the 6SL-PAMAM conjugate may vary according to the generation of the PAMAM dendrimer used, and the number of 6SL bound thereto may be changed.
  • the 6SL-PAMAM conjugate including the third generation PAMAM dendrimer may be a terminal amine group of the dendrimer. 10 to 32 6SL may be bonded to each other.
  • the 6SL-PAMAM conjugate including the fourth generation PAMAM dendrimer may be 20 to 64 6SL to the terminal amine group of the dendrimer.
  • 20 to 128 6SL may be bonded to the terminal amine group of the dendrimer.
  • dendrimers More specifically, the generation of dendrimers used is as follows:
  • 20 to 64 6SL may be bonded to the terminal amine group of the dendrimer, and as another example, 20 to 40 6SL may be bonded.
  • 20 to 31 6SLs may be combined, as another example, 20 to 26 6SLs may be combined, and as another example, 20 6SLs may be combined.
  • the 6SL-PAMAM conjugate including the fifth generation PAMAM dendrimer as an example, 20 to 128 6SL may be bonded to the terminal amine group of the dendrimer, and as another example, 30 to 80 6SL may be bonded.
  • 30 to 77 6SL can be combined, as another example 30 to 56 6SL can be combined, as another example 30 to 48 6SL can be combined, another For example, 30 to 40 6SLs may be combined, and as another example, 37 6SLs may be combined.
  • various types of 6SL-PAMAM conjugates are prepared by reductive amination of an aldehyde group of a reducing sugar of 6SL with an amino group of a PAMAM dendrimer having an ethylene diamine core (G2 to G5) (FIGS. 1A and 1D). ). The number of 6SLs contained therein was determined (Table 4).
  • the influenza virus infection inhibitory ability of the 6SL-PAMAM conjugate was analyzed in vitro, and it was confirmed that a constant size of the dendrimer was required (FIG. 2A), and that the interval between 6SL ligands and the infection inhibition efficiency of the H1N1 virus were correlated (Table 2). 5, Figure 2b).
  • the inhibitor of neuraminidase (NA) is combined with the 6SL-PAMAM conjugate, it was confirmed that the effect of inhibiting H1N1 virus infection was increased (Table 6).
  • 6SL-PAMAM conjugates (S3-G4, S4-G4 and S7-G5) having a spacing between 6SL ligands of 2.4 nm or more were highly bound to the HA protein. It was confirmed that affinity was shown (FIG. 3A).
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for preventing or treating influenza virus infection, comprising the conjugate.
  • influenza virus refers to a major causative agent of viral respiratory disease, and is classified into types A, B, and C due to antigenic differences between NP (nuleocapsid) and M (matrix) proteins. Are distinguished. Among them, A type is classified into H1 type to H16 type according to hemagglutinin protein antigen characteristics, and N1 type to N9 subtype according to neuramidase protein antigen characteristics.
  • influenza virus is not particularly limited thereto, but may be an influenza A virus or an influenza B virus as an example, and may be a new influenza A (H1N1) virus as another example.
  • swine flu A (H1N1) virus of the present invention is also referred to as “swine flu virus", “H1N1” or “H1N1 virus” in the specification of the present invention, the type A influenza virus is produced by mutating, virus
  • HA hemagglutinin
  • NA neuraminidase
  • influenza virus infection refers to a pathological disease caused by infection of an influenza virus in a subject.
  • H1N1 a disease caused by a mutant strain of influenza A virus, can cause upper airway symptoms such as fever, chills, headache, cough, sore throat, runny nose, and shortness of breath, muscle pain, joint pain, fatigue, and vomiting. It is known to show symptoms such as diarrhea.
  • prevention means any action that inhibits or delays the symptoms of an influenza virus infection by administration of the conjugate provided herein or a pharmaceutical composition comprising the same.
  • treatment means any action that ameliorates or beneficially alters the symptoms of an influenza virus infection by administration of the conjugate provided herein or a pharmaceutical composition comprising the same.
  • the content of the binder included in the pharmaceutical composition provided by the present invention is not particularly limited as long as it can have an effect of preventing or treating influenza virus infection, but as an example, 0.0001 to 50% by weight relative to the total weight of the composition. And as another example, it may be from 0.01% to 10% by weight.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may further comprise a pharmaceutically acceptable carrier, excipient or diluent commonly used in the manufacture of the pharmaceutical composition, which carrier may comprise a non-naturally occuring carrier. have.
  • pharmaceutically acceptable means to exhibit properties that are not toxic to cells or humans exposed to the composition.
  • the pharmaceutical composition may be formulated in the form of oral dosage forms, external preparations, suppositories, and sterile injectable solutions, such as powders, granules, tablets, capsules, suspensions, emulsions, syrups, and aerosols, respectively, according to conventional methods.
  • sterile injectable solutions such as powders, granules, tablets, capsules, suspensions, emulsions, syrups, and aerosols, respectively, according to conventional methods.
  • carriers, excipients and diluents that may be included in the pharmaceutical composition include lactose, dextrose, sucrose, sorbitol, mannitol, xylitol, erythritol, maltitol, starch, acacia rubber, alginate, gelatin, calcium phosphate, Calcium silicate, cellulose, methyl cellulose, microcrystalline cellulose, polyvinyl pyrrolidone, water, methylhydroxybenzoate, propylhydroxybenzoate, talc, magnesium stearate and mineral oil.
  • Solid form preparations for oral administration include tablets, pills, powders, granules, capsules and the like, and such solid form forms at least one excipient such as starch, calcium carbonate, sucrose or lactose. (lactose), gelatin, etc. are mixed and prepared.
  • lubricants such as magnesium styrate and talc are also used.
  • Liquid preparations for oral use may include various excipients, such as wetting agents, sweeteners, fragrances, preservatives, etc., in addition to water and liquid paraffin, which are commonly used to include suspensions, solutions, emulsions, and syrups. have.
  • Formulations for parenteral administration include sterile aqueous solutions, non-aqueous solvents, suspensions, emulsions, lyophilized preparations, suppositories.
  • non-aqueous solvent and suspending agent propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oil such as olive oil, injectable ester such as ethyl oleate and the like can be used.
  • As the base of the suppository witepsol, macrogol, tween 61, cacao butter, laurin butter, glycerogelatin and the like can be used.
  • the 6SL-PAMAM conjugate provided by the present invention as a result of analyzing the effect on the virus infection
  • the result of the 6SL-PAMAM conjugate is present on the surface of the virus hemaggluti
  • nin hemagglutinin, HA
  • the immunofluorescence assay showed that the 6SL-PAMAM conjugate was involved in the viral entry into the virus (FIG. 5).
  • the 6SL-PAMAM conjugate was confirmed to exhibit an effect of lowering the expression level of NA increased by the infection of the virus (Fig. 6).
  • the 6SL- of the present invention also relates to the infection of the influenza virus that is resistant to the existing antiviral agent. It was found that the PAMAM conjugate exhibited inhibitory activity (FIGS. 8A to 8C).
  • the present invention provides a method for preventing influenza virus infection, comprising administering the conjugate or a pharmaceutical composition comprising the combination to a subject suspected of developing influenza virus infection or having an influenza virus infection. Or a method of treatment.
  • the term "individual” means a living organism that may develop or develop an influenza virus infection, which may be, for example, a higher vertebrate including a respiratory tract, and in another example, a mammal. In another example, it may be a primate, and in another example, it may be a rat including a human, a mouse, a livestock, and the like.
  • administration refers to the action of introducing a predetermined substance to a patient in an appropriate manner, and may be administered by various routes after the active ingredient is formulated for human or veterinary use.
  • the route of administration of the pharmaceutical composition comprising the conjugate of the present invention is not particularly limited, but may be administered by, for example, parenteral routes such as intravascular, intravenous, intraarterial, intramuscular or subcutaneous, As another example, it may be administered by inhalation route via oral, nasal, rectal, transdermal or aerosol, as another example, may be administered by bolus or slowly infused.
  • the conjugate of the present invention or a pharmaceutical composition comprising the same may be administered in a pharmaceutically effective amount.
  • the term "pharmaceutically effective amount” means an amount sufficient to treat a disease at a reasonable benefit / risk ratio applicable to medical treatment and that does not cause side effects, and the effective dose level is the sex of the patient.
  • Factors including age, weight, health condition, type of disease, severity, drug activity, drug sensitivity, mode of administration, time of administration, route of administration, and rate of release, duration of treatment, combination or drug used and other It can be easily determined by those skilled in the art according to factors well known in the medical arts.
  • the conjugate of the present invention may be, for example, 1 ⁇ 10 7 to 1 ⁇ 10 11 at a single dose, 1 ⁇ 10 8 to 5 ⁇ 10 10 as another example, and 5 ⁇ 10 as another example. 8 to 2 ⁇ 10 10 can be administered, but is not limited thereto.
  • the pharmaceutical composition of the present invention when based on the pharmaceutical composition of the present invention, it can be administered at 0.0001 to 100 mg / kg body weight per day, more specifically 0.001 to 100 mg / kg body weight based on solids. Dosing may include administering the recommended dose once daily, or in divided doses.
  • the route of administration and mode of administration for administering the pharmaceutical composition are not particularly limited, and any pharmaceutical composition comprising the conjugate at the desired site of interest can be reached.
  • the pharmaceutical composition may be administered through various routes of oral or parenteral, non-limiting examples of the route of administration, oral, rectal, topical, intravenous, intraperitoneal, intramuscular, intraarterial, transdermal, And administered via nasal or inhalation.
  • the present invention provides a food composition for preventing or ameliorating influenza virus infection, comprising the conjugate.
  • the term “improvement” refers to any action that at least reduces the parameters associated with the condition to be treated with the administration of a composition comprising a conjugate of the invention, e.
  • the term "food” of the present invention meat, sausage, bread, chocolate, candy, snacks, confectionery, pizza, ramen, other noodles, gum, dairy products, including ice cream, various soups, drinks, tea, drinks, alcoholic beverages , Vitamin complexes, nutraceuticals and health foods, and includes all foods in the usual sense.
  • the food composition of the present invention can be consumed on a daily basis, it can be expected to have an effect of improving influenza virus infection at a high level, and thus can be very useful for health promotion purposes.
  • the functional food is the same term as a food for special health use (Food for special health use, FoSHU), in addition to the nutritional supply, the processed food, so that the bioregulatory function appears efficiently, high medical effect Means food.
  • Food for special health use Food for special health use, FoSHU
  • the term 'function (sex)' refers to obtaining a useful effect for health purposes such as nutrient control or physiological action on the structure and function of the human body.
  • the food of the present invention can be prepared by a method commonly used in the art, and the preparation can be prepared by adding the raw materials and ingredients commonly added in the art.
  • the formulation of the food may also be prepared without limitation as long as the formulation is recognized as a food.
  • Food composition of the present invention can be prepared in a variety of formulations, unlike the general drug has the advantage that there is no side effect that may occur when taking a long-term use of the drug as a food raw material, because the portability is excellent,
  • the food of the invention can be consumed as an adjuvant for enhancing the effect of improving influenza virus infection.
  • the health food refers to foods having active health maintenance or promotion effect as compared to general foods
  • the health supplement food refers to foods for health supplementation purposes.
  • nutraceutical, health food, dietary supplement are used.
  • the health functional food is a food prepared by adding the compound of the present invention to food materials such as beverages, teas, spices, gums, confections, or the like, encapsulated, powdered, suspensions, etc.
  • food materials such as beverages, teas, spices, gums, confections, or the like, encapsulated, powdered, suspensions, etc.
  • the food composition may further include a physiologically acceptable carrier, and the type of carrier is not particularly limited and may be any carrier that is commonly used in the art.
  • the food composition may include additional ingredients that are commonly used in food compositions to improve the smell, taste, time and the like.
  • additional ingredients may include vitamins A, C, D, E, B1, B2, B6, B12, niacin, biotin, folate, panthotenic acid, and the like.
  • minerals such as zinc (Zn), iron (Fe), calcium (Ca), chromium (Cr), magnesium (Mg), manganese (Mn), copper (Cu) and chromium (Cr); And amino acids such as lysine, tryptophan, cysteine, valine and the like.
  • the food composition is a preservative (potassium sorbate, sodium benzoate, salicylic acid, sodium dehydroacetic acid, etc.), fungicides (bleaching powder and highly bleaching powder, sodium hypochlorite, etc.), antioxidants (butylhydroxyanisol (BHA), butylhydride) Oxytoluene (BHT), etc.), colorant (such as tar pigment), colorant (sodium nitrite, sodium nitrite, etc.), bleach (sodium sulfite), seasoning (MSG glutamate, etc.), sweetener (ducin, cyclate, saccharin Foods such as sodium, etc.), fragrances (vanillin, lactones, etc.), swelling agents (alum, potassium D-tartrate, etc.), reinforcing agents, emulsifiers, thickeners (foils), coatings, gum herbicides, foam inhibitors, solvents, modifiers, etc. It may include food additives.
  • the additive may be
  • An example of the food composition of the present invention may be used as a health beverage composition, in which case it may contain various flavors or natural carbohydrates and the like as additional ingredients, such as a general beverage.
  • the above-mentioned natural carbohydrates include monosaccharides such as glucose and fructose; Disaccharides such as maltose and sucrose; Polysaccharides such as dextrin, cyclodextrin; Sugar alcohols such as xylitol, sorbitol, and erythritol.
  • Sweeteners include natural sweeteners such as taumartin, stevia extract; Synthetic sweeteners such as saccharin and aspartame;
  • the ratio of the natural carbohydrate may generally be about 0.01 to 0.04 g, specifically about 0.02 to 0.03 g, per 100 mL of the health beverage composition of the present invention.
  • the health beverage composition includes various nutrients, vitamins, electrolytes, flavors, colorants, pectic acid, salts of pectic acid, alginic acid, salts of alginic acid, organic acids, protective colloid thickeners, pH regulators, stabilizers, preservatives, glycerin, Alcohol or carbonation agent and the like.
  • Others may contain fruit flesh for the production of natural fruit juices, fruit juice drinks, or vegetable drinks. These components can be used independently or in combination.
  • the ratio of such additives is not critical, but is generally selected from 0.01 to 0.1 parts by weight per 100 parts by weight of the health beverage composition of the present invention.
  • the present invention provides a method of inhibiting infection of an influenza virus, comprising treating the conjugate or the conjugate with an influenza virus.
  • the conjugate of the present invention forms vesicles by combining sialic acid, sialylactose or derivatives thereof with hemagglutinin present on the surface of an influenza virus, thereby attaching the virus, It may inhibit the cellular entry and endosomal fusion / release process, participate in the viral entry into the virus, and may have an effect of lowering the expression level of NA increased by infection of the virus.
  • the conjugates of the present invention can be used to inhibit infection of influenza virus in vitro, in vivo or ex vivo.
  • the conjugate is diluted in a buffer at an appropriate concentration. Subsequently, the virus solution or the cells infected with the virus can be treated to suppress infection of the influenza virus against the cells.
  • the 6SL-PAMAM conjugate was prepared by reductive amination of the aldehyde group of the reducing sugar of 6SL with the amino group of the PAMAM dendrimer having ethylene diamine cores (G2 to G5) (FIG. 1A).
  • the reaction solution was allowed to react continuously for 5 days at dark and room temperature with gentle stirring.
  • MALDI-TOF MS analysis was performed using a 337 nm nitrogen laser. At this time, 50% acetonitrile containing 2,5-dihydroxy benzoic acid (10 mg / ml) was used as the matrix, and the analyte-matrix solution was 1: 2 (analyte: matrix, v / v). Made with.
  • the analyte-matrix solution (1 ⁇ l) prepared above was added to the sample plate and dried by vacuum evaporation. In addition, at least 100 images were taken per spectrum using the linear cation mode. The photographed data analysis was performed using Bruker Daltonics Microflex Analysis Software (FIG. 1B), and the average value of 6SL bound to PAMAM was calculated through the data analysis (Table 2).
  • Average value of 6SL bound to PAMAM measured by MALDI-TOF MS analysis concrete Number of 6SL S1-G2S2-G3S3-G4S4-G4S5-G4S6-G4S7-G5S8-G5S9-G5S10-G5 N.D.25.120.727.132.141.437.248.652.272.2
  • NMR spectra of G2-G5 dendrimers, 6SL and their combinations were measured in deuterium oxide using Bruker AscendTM 500 spectrometer (FIG. 1C) and the data analysis yielded the average value of 6SL bound to PAMAM (Table 3). And FIG. 1C).
  • the 1 H NMR spectrum of the PAMAM dendrimer showed a signal at 2.45-2.50 ppm corresponding to -CH2- adjacent to the amide bond in the PAMAM dendrimer, and this overall signal was 56H for G2 and 120H for G3. , 248H for G4 and 504H for G5, were used as internal standards, and a unique overall signal at 2.07 ppm corresponding to -CH3 of 6SL acetyl group was used to determine the number of 6SL ligands on each dendrimer.
  • Average value of 6SL bound to PAMAM measured by 1 H-NMR analysis concrete Number of 6SL S1-G2S2-G3S3-G4S4-G4S5-G4S6-G4S7-G5S8-G5S9-G5S10-G5 12.825.520.426.430.840.337.448.155.776.9
  • Inhibition assays in vitro were performed using the ability assessment method of 6SL-PAMAM conjugates to inhibit influenza infection.
  • a half-log serial dilution of the binder to be tested was prepared using PBS. 50 ⁇ l of the dilution prepared above was mixed with H1N1 strain (A / California / 04/2009 or oseltamivir-resistant H1N1, A / Gyeongnam / 1820/2009) of 1 ⁇ 10 3 TCID50 of the same volume. The mixture was incubated at 37 ° C. for 1 hour, and then 100 ⁇ l of 1.5 ⁇ 10 5 cells / ml of MDCK cells were added thereto, followed by further culture for 18 hours at 5% CO 2 and 37 ° C. conditions.
  • H1N1 strain A / California / 04/2009 or oseltamivir-resistant H1N1, A / Gyeongnam / 1820/2009
  • FIG. 2A shows that as the number of 6SLs bound to the PAMAM conjugate increases, the inhibitory efficiency of H1N1 virus decreases, which indicates that the binding affinity of the polyvalent ligand is dependent on the ligand valency (eg, the number of ligands). The increase was not consistent with the results of the previous studies.
  • the surface area (4 ⁇ r 2 ) of the dendrimer is calculated using the diameter of the PAMAM dendrimer included in the 6SL-PAMAM conjugate, the surface area is divided by the number of 6SL ligands, and the spacing between 6SL ligands is calculated.
  • the association between the ligand spacing and the inhibition of infection of the H1N1 virus was analyzed (Table 5, FIG. 2B).
  • NA neuraminidase
  • the carboxy methyl group on the surface of the CM5 chip was added 35 ml of an equal molar mixture of N-ethyl-N- (dimethylaminopropyl) carbodiimide and N-hydroxysuccinimide (final concentration 0.05M) (flow rate, 5 Ml / min) activated.
  • HA was then added to 100 ⁇ g / ml in 100 mM sodium acetate buffer (pH 5.0) buffer and added to the activated CM5 chip surface.
  • 35 ⁇ l of 1M ethanolamine was treated to inactivate unreacted sites on the surface of the CM5 chip.
  • 6-SL PAMAM conjugate was diluted in HBS-EP buffer (0.01 M HEPES, 0.15 M NaCl, 3 mM EDTA, 0.005% surfactant P20, pH 7.4). Dilutions of different levels of 6-SL PAMAM conjugate were added to the HA-bound CM5 chip at a flow rate of 50 ⁇ l / min. Then, HBS-EP buffer was added to the CM5 chip to promote dissociation. After 3 minutes, 50 ⁇ l of 2 M NaCl was added to the CM5 chip to regenerate the surface of the CM5 chip.
  • Reaction results were analyzed using BIAcore 3000 (GE healthcare, Uppsala, Sweden) using BIAcore 3000 control and BIAevaluation software (version 4.0.1) and expressed as a function of time (sensor grams) at 25 ° C. (FIG. 3A). .
  • 6SL-PAMAM conjugates (S3-G4, S4-G4 and S7-G5) having a spacing of 2.4 nm or more between 6SL ligands all exhibit high binding affinity with HA protein.
  • 6SL-PAMAM conjugates (S2-G3, S6-G4, S9-G5 and S10-G5) with less than 1.9 nm spacing between 6SL ligands showed significantly lower binding affinity with HA proteins, most of them (S6 -G4, S9-G5 and S10-G5) contain more 6SL ligands than 6SL-PAMAM conjugates (S3-G4, S4-G4 and S7-G5) with a spacing between the 6SL ligands greater than 2.4 nm, It was confirmed that it showed a significantly low binding affinity with the HA protein.
  • the 6SL-PAMAM conjugate is preferably in a form including an ethylene diamine core of G4 and G5, and preferably contains an appropriate level of 6SL ligand, depending on the type of the ethylene diamine core.
  • the 6SL-PAMAM conjugate comprising G4 preferably contains about 20 to 30 6SL ligands
  • the 6SL-PAMAM conjugate comprising G5 preferably comprises about 30 to 6 6SL ligands.
  • the assay was plotted using S3-G4 and S6-G4 in the 6SL-PAMAM conjugate (FIG. 3C).
  • the S3-G4 having a 6SL ligand spacing of about 3.1 nm is similar to the spacing between ligand binding sites present in the HA protein, the surface antigen of H1N1 virus, and the 6SL ligand spacing included in the S3-G4.
  • the S3-G4 was strongly bound to HA protein, which is the surface antigen of H1N1 virus.
  • S6-G4 having a 6SL ligand spacing of about 1.6 nm differs between the ligand binding site present in the HA protein, which is the surface antigen of H1N1 virus, and the 6SL ligand spacing included in S6-G4 is different.
  • -G4 was found to bind weakly to HA protein, the surface antigen of H1N1 virus.
  • Influenza virus (A / California / 07/2009) was purified by known methods.
  • follicles of eggs infected with influenza virus (A / California / 07/2009) were collected and centrifuged (3000 rpm, 10 minutes) to obtain supernatants. The obtained supernatant was centrifuged at high speed (19,000 x g, 2 hours) to obtain a precipitate. The obtained precipitate is suspended in 1 ml of TNE buffer (50 mM Tris-HCl, pH 7.4), 100 mM NaCl and 1 mM EDTA, and comprises a three stage discontinuous sucrose gradient (50, 40 and 30% sucrose). Virus fractions were obtained by centrifugation (26,000 xg, 2 hours) under conditions of 2 mL TNE buffer).
  • the obtained virus fractions were suspended in PBS and again centrifuged (100,000 ⁇ g, 1 h, 4 ° C.) to give a precipitate which was then suspended in 2 ml of PBS.
  • 20 ⁇ l of the suspended virus solution and 20 ⁇ l of S3-G4 solution were mixed and applied to a Tecnai G2 spirit TEM (FEI company, Hillsboro, OR) operated at an acceleration voltage of 120 kV to transmit electrons. microscopy) analysis was performed (FIG. 4). At this time.
  • 5 ⁇ l of the virus solution was added to a carbon coated grid that was glow discharged in air for 3 minutes, and then stained with 2% uranyl acetate.
  • the vesicle formation (lower right panel) formed on the surface of H1N1 by the combination of S3-G4 particles having a spherical (top left panel) of about 7 nm and the S3-G4 was confirmed. It was not confirmed when the G4 PAMAM dendrimer was treated without the 6SL ligand (bottom left panel). The vesicle formation is expected to be due to the surface aggregation of S3-G4, thereby inhibiting the process of virus attachment, intracellular entry and endosomal fusion / release.
  • influenza virus (A / PR / 8/34) was purified and suspended in 1 ml PBS to obtain a viral solution. 100 ⁇ M of R18 solution (6 ⁇ l) was added to the virus solution, and reacted at room temperature for 1 hour to label with R18 alone; Alternatively, an ethanol solution (6 ⁇ l) containing DiOC18 (33 ⁇ M) and R18 (67 ⁇ M) was added to the virus solution, and then double-labeled with DiOC18 and R18 by reaction with gentle shaking at room temperature for 1 hour. The reaction solution was filtered using a 0.22 ⁇ m membrane filter (Millipore).
  • MDCK cells were incubated at 37 ° C. and 5% CO 2 conditions for 24 hours.
  • the filtered virus solution was added to the cultured cells, and reacted at 4 ° C. for 20 minutes. After the reaction was completed, the liquid component was removed, and the cells were washed three times with cold PBS.
  • the cells were taken with confocal microscopy (LSM700, Carl Zeiss) at 488 and 594 nm wavelength at 37 ° C. and 5% CO 2 conditions (FIG. 5).
  • S3-G4 is involved in the intracellular entry of the virus.
  • MDCK cells were seeded in 48 well plates and treated with or without S3-G4 (10 or 100 nmol / ml), various H1N1 viruses (A / NWS / 33, A / Puerto Rico / 8/43 and A / California / 07/2009) or H3N2 virus (A / Shandong / 9/93) were infected at 37 ° C. for 24 hours.
  • the infected cells were treated with 4% paraformaldehyde and fixed at room temperature for 10 minutes, and then the fixed cells were washed with cold PBS and reacted for 10 minutes by adding PBS containing 0.25% Triton X-100. Again, washed three times with 5 minutes each with PBS.
  • the washed cells were treated with influenza virus A NP-specific monoclonal antibody for 1 hour, and then reacted for 1 hour with the addition of Alexa 488-goat anti-mouse secondary antibody, photographed with a reversed-phase fluorescence microscope (FIG. 6). .
  • the nuclei of the cells were counterstained using NucBLue fixed cell stain (Life technologies), and the actin of the cells was stained using ActinRed 555 ReadyProbes Reagent (Life technologies).
  • Example 8-1 Construction of Mice Infected with Influenza Virus
  • mice were anesthetized with Avertin (375 mg / kg) intraperitoneally, followed by nasal administration of S3-G4, and after 10 minutes, 10 4 EID50 (50% egg infective dose) of H1N1 virus (A / NWS / 33). Infection was administered.
  • Avertin 375 mg / kg
  • EID50 50% egg infective dose
  • H1N1 virus A / NWS / 33
  • Infection was administered.
  • it was classified into four test groups: positive control group (viral alone administration), negative control group (S3-G4 administration alone), comparison group (PBS administration alone) and experimental group (virus).
  • 50 ⁇ mol / kg S3-G4 administration The mice of each test group were raised for 14 days, and then the experiments were performed.
  • Example 8-2 Lung tissue virus Titer analysis
  • the virus titer detected in the lungs of mice administered S3-G4 showed a level 10 times lower than that of the control group not administered S3-G4.
  • mice After the lungs were removed from each of the mice bred for 14 days, they were fixed with 10% formalin, their tissue slices were obtained, stained with hematoxylin and eosin, and their histopathological examination was performed (Fig. 7b).
  • Example 8-4 Lung tissue Cytokine Level Analysis
  • mice were removed from each of the mice bred for 14 days, and the levels of cytokines (IL-6, IL-10, TNF- ⁇ , CXCL1, CXCL2 or CCL2) contained in their lysates were measured and compared (FIG. 7C). ).
  • cytokines IL-6, IL-10, TNF- ⁇ , CXCL1, CXCL2 or CCL2
  • the levels of TNF- ⁇ , IL-10, CXCL1 and CXCL2 did not show a difference between the positive control group (H1N1) and the experimental group (H1N1 + S3-G4), but the level of IL-6 and CCL2 is positive Compared with the control group (H1N1), it was confirmed that significantly reduced in the experimental group (H1N1 + S3-G4).
  • the survival rate of the negative control group (S3-G4 (50 ⁇ mol / kg)) and the control group (PBS) did not change even after the breeding period, but the survival rate of the positive control group (H1N1) decreased from day 6 It was confirmed that all started to die at the time 10 days passed. In contrast, in the experimental group (H1N1 + S3-G4), the survival rate was reduced to about 75% on day 8, but it was confirmed that the survival rate did not change thereafter.
  • the negative control group (S3-G4 (50 ⁇ mol / kg)) and the control group (PBS) showed a tendency to gradually increase in weight as the breeding period, but both positive control group (H1N1) It was confirmed that body weight decreased as the breeding period elapsed until 9 days immediately before death. On the contrary, in the experimental group (H1N1 + S3-G4), the weight was reduced by the breeding period up to 9 days, after which the weight was recovered as the breeding period was confirmed.
  • Example 9-1 Antiviral Against resistant viruses Immunofluorescence
  • Example 9-2 Antiviral MN against resistant virus Microneutralization ) analysis
  • Oseltamivir was performed by the method of Example 3, except that oseltamivir resistant H1N1 virus (A / Gyeongnam / 1820/2009) was used as a virus and S3-G4 was used as the 6SL-PAMAM conjugate. Inhibition activity of S3-G4 against resistant H1N1 virus (A / Gyeongnam / 1820/2009) was analyzed (FIG. 8B).
  • H1N1 virus (A / Gyeongnam / 1820/2009) with or without S3-G4 was added to MDCK cells for 1 hour of infection, washed with PBS to remove unbound virus, and then various concentrations of oseltamivir Then, the cells were cultured in an agarose solid medium, superimposed the medium containing 1% agarose in the cultured solid medium, and then incubated for 48 hours at 37 °C. After the incubation was completed, the lower solid medium was stained with 1% crystal violet and plaques were counted (FIG. 8C).

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Abstract

본 발명은 코어와 그의 표면에 결합된 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체를 포함하는 결합체 및 그의 용도에 관한 것이다. 본 발명에서 제공하는 결합체는 인플루엔자 바이러스의 표면에 존재하는 헤마글루티닌과 결합하여 인플루엔자 바이러스의 감염과정을 억제함으로써, 인플루엔자 바이러스 감염증을 예방 또는 치료할 수 있을 뿐만 아니라, 항 바이러스 제제에 대하여 내성을 나타내는 인플루엔자 바이러스에 대하여도 그의 감염증을 예방 또는 치료할 수 있으므로, 인플루엔자 바이러스 감염증의 예방 또는 치료용 제제의 개발에 널리 활용될 수 있다.

Description

코어와 그의 표면에 결합된 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체를 포함하는 결합체 및 그의 용도
본 발명은 코어와 그의 표면에 결합된 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체를 포함하는 결합체 및 그의 용도에 관한 것이다.
인플루엔자 바이러스(Influenza virus)는 오르소믹소 계통(Family Orthomyxoviridae)에 속하는 RNA 바이러스로서 혈청형은 A형, B형, C형 등 3가지로 구분된다. 그 중 B형과 C형은 사람에서만 감염이 확인되고 있으며, A형은 사람, 말, 돼지, 기타 포유류 그리고 다양한 종류의 가금과 야생조류에서 감염이 확인되고 있다. A형 인플루엔자 바이러스의 혈청형은 바이러스 표면의 두 가지 단백질인 혈구응집소(Hemagglutinin; HA)와 뉴라미니다제(Neuraminidase:NA)의 종류에 따라 구분되는데, 지금까지 144종류(HA 단백질 16종과 NA 단백질 9종)가 알려져 있다. HA는 바이러스가 체세포에 부착하는 역할을 하며, NA는 바이러스가 세포 내로 침투할 수 있도록 한다. 이러한 인플루엔자 바이러스는 매년 겨울이면 새로운 항원성을 지닌 인플루엔자 바이러스가 유행하며 사람을 포함한 가축, 조류에 거쳐 바이러스가 유행하며 이러한 바이러스의 모니터링은 매우 중요하다. 따라서 이에 따른 특이성과 민감성이 높은 프라이머와 프로브의 개발이 요구되고 있다.
최근 관심이 집중되고 있는 신종 인플루엔자 A(H1N1) 바이러스는 "신종 플루" 또는 "신종 플루 바이러스"라고도 하는데, 이는 사람, 돼지, 조류 인플루엔자 바이러스의 유전물질이 혼합되어 있는 새로운 형태의 바이러스로서 2009년 4월 처음 발견되었다. 바이러스의 전파 경로에 대해서는 아직까지 명확하게 밝혀지지 않았지만, 기존의 계절 인플루엔자 바이러스와 유사하게 비말(飛沫) 감염, 곧 감염된 사람의 기침이나 재채기 등을 통하여 주로 사람 대 사람으로, 감염자와 가까운 접촉자 사이(약 2m이내)에서 전파되는 것으로 알려져 있다. 또한, 음식의 경우 70℃ 이상으로 가열 조리하면 음식에 존재하는 바이러스가 사멸하는 것으로 알려져 있다.
상기 신종 플루 바이러스의 잠복기는 대략 1~7일 사이로 추정되고, 증상으로는 확진 환자에게서 발열, 오한, 두통, 기침, 인후통, 콧물, 호흡곤란 등의 상기도 증상, 근육통, 관절통, 피로감, 구토 또는 설사 등이 나타난다고 알려져 있다. 보통 증상이 발생하기 하루 전부터 발생 후 7일까지 전염력이 있는 것으로 보고되었으며, 어린이의 경우는 10일 이상으로 길어질 수도 있다. 상기 신종 플루 바이러스의 감염으로 인한 피해를 감소시키기 위하여, 신종 플루 바이러스의 감염을 조기에 진단할 수 있는 방법을 개발하려는 연구가 활발히 진행되어왔다. 예를 들어, 한국공개특허 제2011-0064174호에는 타종 인플루엔자 바이러스를 제외한 신종 인플루엔자 바이러스 A/ H1N1에만 특이적인 단클론 항체와 이를 생산하는 융합 세포, 상기 단클론 항체를 포함한 진단 키트 및 이를 이용한 신종 인플루엔자 바이러스 A/H1N1을 진단하는 방법이 개시되어 있고, 한국공개특허 제2011-0096940호에는 신종 인플루엔자 바이러스의 헤마글루티닌(HA) 항원에 대한 항체를 이용한 신속 면역크로마토그라피법을 이용하여 A형 신종 인플루엔자 바이러스(Influenza A, H1N1)를 진단할 수 있는 진단 키트가 개시되어 있으며, 한국공개특허 제2011-0127034호에는 인플루엔자 A형 바이러스를 검출하기 위한 인플루엔자 A형 바이러스 공통 PCR 프라이머 및 돼지 유래 인플루엔자(신종플루, A/Korea/01/2009(H1N1)) 바이러스 검출 특이 PCR 프라이머를 이용하여 신종플루(A/Korea/01/ 2009(H1N1)) 바이러스를 신속하고 정확하게 검출할 수 있는 방법이 개시되어 있다.
그러나, 이처럼 바이러스의 감염을 진단한다 하여도 감염된 인플루엔자 바이러스를 치료할 수 있는 제제로는 오셀타미비르(Oseltamivir, 상품명 타미플루), 자나미비어(Zanamivir, 상품명 리렌자) 등에 불과하고, 이러한 제제를 사용하여도 이에 대한 내성을 갖는 바이러스가 발생됨에 따라, 상기 바이러스를 치료하는 방법의 개발은 여전히 미미한 실정이다.
본 발명자들은 인플루엔자 바이러스 감염증을 효과적으로 치료하는 방법을 개발하고자 예의 연구노력한 결과, 코어(core)와 그의 표면에 결합된 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체를 포함하고, 상기 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체는 서로 동일한 간격으로 배열된 것을 특징으로 하는 결합체를 사용할 경우, 인플루엔자 바이러스 감염증을 치료할 수 있을 뿐만 아니라, 종래의 항 바이러스 제제에 대하여 내성을 나타내는 바이러스에 의한 감염까지도 치료할 수 있음을 확인하고, 본 발명을 완성하였다.
본 발명의 하나의 목적은 코어와 그의 표면에 결합된 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체를 포함하고, 상기 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체는 서로 동일한 간격으로 배열된 것을 특징으로 하는 결합체를 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 상기 결합체를 포함하는 인플루엔자 바이러스 감염증 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 결합체를 포함하는 인플루엔자 바이러스 감염증 예방 또는 개선용 식품 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 결합체를 인플루엔자 바이러스 감염이 의심되거나 또는 인플루엔자 바이러스에 감염된 개체에 투여하는 단계를 포함하는 인플루엔자 바이러스 감염증을 예방 또는 치료하는 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 결합체를 분리된 인플루엔자 바이러스에 처리하는 단계를 포함하는, 인플루엔자 바이러스의 감염을 억제하는 방법을 제공하는 것이다.
본 발명에서 제공하는 결합체는 인플루엔자 바이러스의 표면에 존재하는 헤마글루티닌과 결합하여 인플루엔자 바이러스의 감염과정을 억제함으로써, 인플루엔자 바이러스 감염증을 예방 또는 치료할 수 있을 뿐만 아니라, 항 바이러스 제제에 대하여 내성을 나타내는 인플루엔자 바이러스에 대하여도 그의 감염증을 예방 또는 치료할 수 있으므로, 인플루엔자 바이러스 감염증의 예방 또는 치료용 제제의 개발에 널리 활용될 수 있다.
도 1a는 NaCNBH3를 사용한, 환원당, 6SL 및 PAMAM 덴드리머(G2 내지 G5)의 1차 아미노기의 환원성 아미노화를 나타내는 반응식이다.
도 1b는 6SL-PAMAM 결합체의 특성을 MALDI-TOF MS 방법으로 분석한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 1c는 6SL-PAMAM 결합체의 특성을 1H-NMR 방법으로 분석한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 1d는 본 발명에서 합성한 다양한 6SL-PAMAM 결합체의 구조를 나타내는 개략도이다.
도 1e는 S3-G4 결합체의 구조를 분석한 결과를 나타내는데, 좌측은 S3-G4 결합체의 구체적인 구조를 나타내는 개략도이고, 우측은 이를 구성하는 각 성분의 1H-NMR 스펙트럼으로서, 상단은 6SL를 나타내고, 중단은 PAMAM 덴드리머(G4)를 나타내며, 하단은 이들의 결합체(S3-G4)를 나타낸다
도 2a는 본 발명에서 합성한 다양한 6SL-PAMAM 결합체의 인플루엔자 바이러스 감염억제효과를 분석한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 2b는 리간드 간격에 따른 6SL-PAMAM 결합체의 인플루엔자 바이러스 감염억제효과를 분석한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 3a는 6SL-PAMAM 결합체와 HA 사이의 반응성을 분석한 결과로서, 좌측은 6SL-PAMAM 결합체와 HA의 상호작용을 나타내는 SPR 센서그램이고, 우측은 HA에 대한 6SL-PAMAM 결합체의 결합 친화력(in response units, RU)을 나타내는 그래프이다.
도 3b는 HA 삼량체의 구조를 나타내는 개략도로서, 적색부분은 6SL의 결합부위를 나타내고, 검은 점선은 상기 6SL의 결합부위 간의 간격을 나타낸다.
도 3c는 6SL-PAMAM 결합체(S3-G4 또는 S6-G4)와 HA 삼량체의 결합부위 사이의 상호 작용을 나타내는 개략도이다.
도 4는 6SL-PAMAM 결합체(S3-G4)와 H1N1 바이러스 간의 결합특성을 분석한 결과를 나타내는 TEM 사진으로서, 좌측 상단은 6SL-PAMAM 결합체(S3-G4)를 나타내고, 우측 상단은 H1N1 바이러스를 나타내며, 좌측 하단은 PAMAM 덴드리머(G4)와 H1N1 바이러스의 반응결과를 나타내고, 우측 하단은 6SL-PAMAM 결합체(S3-G4)와 H1N1 바이러스의 반응결과를 나타낸다.
도 5는 단일 염색된 바이러스(R18 표지된 HIN1)와 이중 염색된 바이러스(DiOC18 및 R18 표지된 H1N1)에 대한 S3-G4의 효과를 시간의 경과에 따라 측정한 결과를 나타내는 형광현미경 사진이다.
도 6은 H3N2 바이러스(A/Shandong/3/93) 및 다른 종류의 H1N1(A/NWS/33, A/Puerto Rico/8/43 및 A/California/07/2009)에 대한 S3-G4의 감염억제활성을 나타내는 형광현미경 사진이다.
도 7a는 마우스에 감염된 H1N1 바이러스의 역가에 미치는 S3-G4 결합체의 효과를 나타내는 그래프이다.
도 7b는 H1N1 바이러스에 감염된 마우스의 폐조직의 조직병리학적 상태에 미치는 S3-G4 결합체의 효과를 나타내는 현미경 사진이다.
도 7c는 H1N1 바이러스에 감염된 마우스의 폐조직에서 사이토카인의 발현수준에 미치는 S3-G4 결합체의 효과를 나타내는 그래프이다.
도 7d는 H1N1 바이러스에 감염된 마우스의 생존율에 미치는 S3-G4 결합체의 효과를 나타내는 그래프이다.
도 7e는 H1N1 바이러스에 감염된 마우스의 체중변화에 미치는 S3-G4 결합체의 효과를 나타내는 그래프이다.
도 8a는 항 바이러스제 내성 H1N1 바이러스의 감염에 미치는 S3-G4 결합체의 효과를 나타내는 형광현미경 사진이다.
도 8b는 항 바이러스제 내성 H1N1 바이러스에 대한 S3-G4 결합체의 감염억제 활성을 분석한 결과를 나타내는 그래프이다.
도 8c는 항 바이러스제 내성 H1N1 바이러스에 대한 S3-G4 결합체의 증식억제 활성을 분석한 결과를 나타내는 사진이다.
상술한 목적을 달성하기 위한 일 실시양태로서, 본 발명은 코어(core)와 그의 표면에 결합된 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체를 포함하고, 상기 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체는 서로 동일한 간격으로 배열된 것을 특징으로 하는, 결합체를 제공한다.
본 발명의 용어 “코어(core)”란, 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체와 결합하여, 상기 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 서로 동일한 간격으로 배열될 수 있게 하는 지지체로서의 역할을 수행하는 물질을 의미한다.
본 발명에 있어서, 상기 코어를 구성하는 물질은 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체와 결합할 수 있는 반응기를 포함하는 한 특별히 이에 제한되지 않으나, 일 예로서, 폴리아미도아민(polyamidoamine, PAMAM), 폴리하이드록시부티레이트, 폴리하이드록시발레르에이트, 폴리라이신, 폴리락트산, 폴리글리콜리드, 폴리카프로락톤, 폴리프로필렌퓨머레이트, 폴리다이옥세논, 폴리뉴클레오티드, 이들의 공중합체을 단독으로 또는 조합하여 사용할 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 코어는 그의 표면에 복수개의 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 결합하여, 서로 동일한 간격으로 배열되어야 하기 때문에, 일정 수준 이상의 직경을 갖고 있는 것이 바람직하다. 상기 코어의 직경은 그의 표면에 복수개의 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 결합하여, 서로 동일한 간격으로 배열될 수 있는 한, 특별히 이에 제한되지 않으나, 일 예로서, 3.0 내지 6.0 nm가 될 수 있고, 다른 예로서, 3.5 내지 5.5 nm가 될 수 있으며, 또 다른 예로서, 4.0 내지 6.0 nm가 될 수 있고, 또 다른 예로서, 4.5 내지 5.4 nm가 될 수 있다.
본 발명에서 제공하는 상기 코어의 형태는 특별히 이에 제한되지 않으나, 일 예로서, 상기 코어 구성물질의 고분자체로 구성된 구상의 형태가 될 수 있고, 다른 예로서, 상기 코어 구성물질의 선형 고분자체가 다수의 폴딩을 통해 중첩된 형태가 될 수도 있으며, 또 다른 예로서, 상기 코어 구성물질을 기반 화합물로 사용하여 형성된 덴드리머 형태가 될 수도 있다.
본 발명의 일 실시예에서는, 상기 코어 구성물질에 포함된 반응기가 규칙적으로 배열되어, 이에 결합된 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 동일한 간격으로 배열될 수 있는, 덴드리머 형태의 코어를 제작하였다.
본 발명의 용어 "덴드리머(dendrimer)"란, 기반 화합물이 나무(dendron)가지 모양의 분자사슬로 중첩되어 구형의 구조를 이루는 거대분자를 의미하는데, 정확한 분자량과 구조를 갖는 나노 크기의 입자 형성이 용이하고, 최외각에 반응기를 다수 보유하고 있기 때문에, 화학적 또는 물리적으로 독특한 특성을 나타내며, 표면의 밀집된 말단기에 다양한 유도체와 반응기를 도입하는 것이 가능하다. 특히, 덴드리머는 선형 고분자 형태에 비해서 조절이 쉽고, 구조 예측이 용이하여 다양한 분야에 적용하는 것이 가능하다.
덴드리머를 형성하는 기반 화합물의 중첩 수준에 따라, 덴드리머의 세대를 특정할 수 있다. 예를 들어, 하나의 기반 화합물이 상호간에 결합되지 않은 상태로 중합된 경우 1세대 덴드리머(G1)라 표현할 수 있고, 상기 1세대 덴드리머에 포함된 기반 화합물의 말단에 1개의 기반 화합물이 추가로 결합된 경우 2세대 덴드리머(G2)라 표현할 수 있으며, 상기 2세대 덴드리머에 포함된 기반 화합물의 말단에 1개의 기반 화합물이 추가로 결합된 경우 3세대 덴드리머(G3)라 표현할 수 있고, 상기 3세대 덴드리머에 포함된 기반 화합물의 말단에 1개의 기반 화합물이 추가로 결합된 경우 4세대 덴드리머(G4)라 표현할 수 있으며, 상기 4세대 덴드리머에 포함된 기반 화합물의 말단에 1개의 기반 화합물이 추가로 결합된 경우 5세대 덴드리머(G5)라 표현할 수 있다. 즉, 기반 화합물이 1개 추가로 결합됨에 따라, 세대수로 1세대씩 증가한다.
본 발명에 있어서, 상기 덴드리머는 상술한 코어를 구성하는 물질을 기반 화합물로 사용할 수 있는데, 상기 기반 화합물은 표면에 복수개의 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 결합하여, 서로 동일한 간격으로 배열될 수 있는 코어를 형성할 수 있는 한 특별히 이에 제한되지 않으나, 일 예로서, 폴리아미도아민, 폴리라이신, 폴리뉴클레오티드 등이 될 수 있고, 다른 예로서, 폴리아미도아민이 될 수 있다.
본 발명의 용어 “시알산(sialic acid)”이란, 시알린산 또는 뉴라민산 이라고도 호칭되며, 피루브산과 만노사민의 알돌축합체인 노이람산이 n-아세틸화, n-글리콜화 또는 o-아세틸화된 화학구조를 갖는 아미노당의 일종을 의미한다.
본 발명에 있어서, 상기 시알산은 바이러스의 헤마글루티닌(HA)과 결합하여 그의 기능을 억제하는 리간드로서 사용될 수 있는데, 상기 리간드로는 시알산 뿐만 아니라 그의 유도체가 사용될 수도 있다.
본 발명의 용어 “유도체(derivative)”란, 목적 화합물의 일부를 화학적으로 변화시켜서 얻어지는 유사한 화합물을 의미하는데, 대체로 목적 화합물 중의 수소원자 또는 특정 원자단이 다른 원자 또는 원자단에 의하여 치환된 화합물이 될 수 있다.
본 발명에 있어서, 상기 유도체는 시알산 또는 시알릴락토스의 유도체로 해석될 수 있는데, 상기 시알산 또는 시알릴락토스의 유도체는 바이러스의 HA와 결합하여 그의 기능을 억제할 수 있는 한, 특별히 이에 제한되지 않으나, 일 예로서, 시알산에 당류가 결합된 시알릴올리고당이 될 수 있고, 다른 예로서, 3'-시알릴락토스(3'-Sialyllactose), 6'-시알릴락토스(6'-Sialyllactose), 시알릴락토-N-테트라오스(sialyl lacto-N-tetraose), 디시알릴락토-N-테트라오스(disialyl lacto-N-tetraose) 등이 될 수 있다.
본 발명에서 제공하는 결합체에 포함된 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체 간의 간격은 특별히 이에 제한되지 않으나, 1.0 nm 이상이 될 수 있고, 1.2 nm 이상이 될 수 있으며, 1.6 nm 이상이 될 수 있고, 1.9 nm 이상이 될 수 있으며, 2.0 nm 이상이 될 수 있고, 2.1 nm 이상이 될 수 있으며, 2.4 nm 이상이 될 수 있고, 3.1 nm 이상이 될 수 있으며, 1.0 내지 4.0 nm 가 될 수 있고, 1.2 내지 4.0 nm 가 될 수 있으며, 1.6 내지 4.0 nm 가 될 수 있고, 1.9 내지 4.0 nm 가 될 수 있으며, 2.0 내지 4.0 nm 가 될 수 있고, 2.1 내지 4.0 nm 가 될 수 있으며, 2.4 내지 4.0 nm 가 될 수 있고, 3.1 내지 4.0 nm 가 될 수 있다.
하나의 예시로서, 폴리아미도아민 덴드리머를 코어로서 포함하고, 6'-시알릴락토스(6SL)를 상기 코어에 결합되는 시알산 유도체로서 포함하는 결합체의 경우, 상기 6SL 간의 간격은 특별히 이에 제한되지 않으나, 일 예로서, 1.0 내지 4.0 nm가 될 수 있고, 다른 예로서, 1.6 내지 3.5 nm가 될 수 있으며, 또 다른 예로서, 2.0 내지 3.1 nm가 될 수 있고, 또 다른 예로서, 2.4 또는 3.1 nm가 될 수 있다.
본 발명의 용어 “결합체(conjugate)”란, 하나의 코어에 다수의 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 결합된 형태의 물질을 의미한다. 구체적으로, 상기 결합체는 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 동일한 간격으로 코어에 결합된 형태일 수 있다. 또한, 본 발명의 결합체는 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 코어의 반응기를 통해 결합되거나, 또는 링커를 통해 다수의 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 코어에 결합된 형태일 수 있다. 이때, 상기 코어의 반응기는 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 코어에 결합될 수 있는 한, 특별히 제한되지 않으며, 당업계에 공지된 반응기를 사용할 수 있다.
상술한 바와 같이, 상기 코어는 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 결합될 수 있는 한, 그의 구성물질 또는 형태면에서 제한되지 않기 때문에, 상기 결합체는 코어와 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체의 다양한 조합에 의하여, 다양한 형태로 형성될 수 있다.
하나의 예시로서, 폴리아미도아민(PAMAM) 덴드리머를 코어로서 포함하고, 6'-시알릴락토스(6SL)를 상기 코어에 결합되는 시알산 유도체로서 포함하는 결합체로는, 2 내지 5세대의 PAMAM 덴드리머의 말단 아민그룹에 10 내지 128개의 6SL이 결합된 형태(6SL-PAMAM)의 결합체가 될 수 있다.
상기 6SL-PAMAM 결합체는 사용된 PAMAM 덴드리머의 세대에 따라, 이에 결합된 6SL의 갯수가 변화될 수 있는데, 일 예로서, 3세대의 PAMAM 덴드리머를 포함하는 6SL-PAMAM 결합체는 상기 덴드리머의 말단 아민그룹에 10 내지 32개의 6SL이 결합될 수 있고, 다른 예로서, 4세대의 PAMAM 덴드리머를 포함하는 6SL-PAMAM 결합체는 상기 덴드리머의 말단 아민그룹에 20 내지 64개의 6SL이 결합될 수 있으며, 또 다른 예로서, 5세대의 PAMAM 덴드리머를 포함하는 6SL-PAMAM 결합체는 상기 덴드리머의 말단 아민그룹에 20 내지 128개의 6SL이 결합될 수 있다.
보다 상세하게, 사용된 덴드리머의 세대별로 살펴보면 다음과 같다:
먼저, 4세대의 PAMAM 덴드리머를 포함하는 6SL-PAMAM 결합체의 경우, 일 예로서 상기 덴드리머의 말단 아민그룹에 20 내지 64개의 6SL이 결합될 수 있고, 다른 예로서 20 내지 40개의 6SL이 결합될 수 있으며, 또 다른 예로서 20 내지 31개의 6SL이 결합될 수 있고, 또 다른 예로서 20 내지 26개의 6SL이 결합될 수 있으며, 또 다른 예로서 20개의 6SL이 결합될 수 있다.
다음으로, 5세대의 PAMAM 덴드리머를 포함하는 6SL-PAMAM 결합체의 경우, 일 예로서 상기 덴드리머의 말단 아민그룹에 20 내지 128개의 6SL이 결합될 수 있고, 다른 예로서 30 내지 80개의 6SL이 결합될 수 있으며, 또 다른 예로서 30 내지 77개의 6SL이 결합될 수 있고, 또 다른 예로서 30 내지 56개의 6SL이 결합될 수 있으며, 또 다른 예로서 30 내지 48개의 6SL이 결합될 수 있고, 또 다른 예로서 30 내지 40개의 6SL이 결합될 수 있으며, 또 다른 예로서 37개의 6SL이 결합될 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 의하면, 에틸렌 디아민 코어(G2 내지 G5)를 갖는 PAMAM 덴드리머의 아미노기로 6SL의 환원당의 알데히드 그룹을 환원성 아미노화 함으로써 다양한 형태의 6SL-PAMAM 결합체를 제조하고(도 1a 및 1d). 이에 포함된 6SL의 수를 결정하였다(표 4).
이어, 상기 6SL-PAMAM 결합체의 인플루엔자 바이러스 감염억제능을 시험관 조건에서 분석한 결과, 일정한 크기의 덴드리머가 필요하고(도 2a), 6SL 리간드 간의 간격과 H1N1 바이러스의 감염억제 효율이 연관됨을 확인하였다(표 5, 도 2b). 또한, 뉴라미니다제(neuraminidase, NA)의 억제제를 상기 6SL-PAMAM 결합체와 병용처리할 경우, H1N1 바이러스 감염억제 효과가 증가됨을 확인하였다(표 6).
다음으로, HA에 대한 6SL-PAMAM 결합체의 결합 친화력을 분석한 결과, 6SL 리간드 간의 간격이 2.4 nm 이상인 6SL-PAMAM 결합체(S3-G4, S4-G4 및 S7-G5)는 모두 HA 단백질과 높은 결합친화도를 나타냄을 확인하였다(도 3a).
다른 실시양태로서, 본 발명은 상기 결합체를 포함하는 인플루엔자 바이러스 감염증 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공한다.
본 발명의 용어 "인플루엔자 바이러스(influenza virus)"란, 바이러스성 호흡기 질환의 주요 원인 병원체를 의미하는데, NP(nuleocapsid)와 M(matrix) 단백질의 항원성 차이에 의해 크게 A, B 및 C형으로 구분된다. 이 중 A형은 다시 헤마글루티닌(hemagglutinin) 단백질 항원 특성에 따라 H1형에서 H16형까지, 뉴라미다아제(Neuramidase) 단백질 항원 특성에 따라 N1형에서 N9형의 아형으로 분류된다
본 발명에 있어서, 상기 인플루엔자 바이러스는 특별히 이에 제한되지 않으나, 일 예로서 인플루엔자 A 바이러스 또는 인플루엔자 B 바이러스가 될 수 있고, 다른 예로서 신종 인플루엔자 A(H1N1) 바이러스가 될 수 있다.
본 발명의 용어 "신종 인플루엔자 A(H1N1) 바이러스"란, 본 발명의 명세서에서 "신종 플루 바이러스", "H1N1" 또는 "H1N1 바이러스"라고도 표시하고, A형 인플루엔자 바이러스가 변이를 일으켜 생성되며, 바이러스 표면의 두 가지 단백질인 혈구응집소(Hemagglutinin; HA)와 뉴라미니다제(Neuraminidase:NA)의 종류에 의해 결정되는 혈청형은 H1N1이고, 사람에게 감염되어 새로운 호흡기 질환을 유발시키는 바이러스를 의미한다.
본 발명의 용어 “인플루엔자 바이러스 감염증”이란, 개체에 인플루엔자 바이러스가 감염되어 나타나는 병리학적 질환을 의미한다. 예를 들어, A형 인플루엔자 바이러스의 변이주의 감염에 의해 발생되는 질환인 "신종 플루"는 발열, 오한, 두통, 기침, 인후통, 콧물, 호흡곤란 등의 상기도 증상, 근육통, 관절통, 피로감, 구토, 설사 등의 증상을 나타낸다고 알려져 있다.
본 발명의 용어, "예방"이란, 본 발명에서 제공하는 상기 결합체 또는 이를 포함하는 약학 조성물의 투여에 의해 인플루엔자 바이러스 감염증의 증상을 억제시키거나 또는 지연시키는 모든 행위를 의미한다.
본 발명의 용어, "치료"란, 본 발명에서 제공하는 상기 결합체 또는 이를 포함하는 약학 조성물의 투여에 의해 인플루엔자 바이러스 감염증의 증상을 호전시키거나 이롭게 변경시키는 모든 행위를 의미한다.
본 발명에서 제공하는 약학 조성물에 포함된 결합체의 함량은 인플루엔자 바이러스 감염증을 예방 또는 치료하는 효과를 나타낼 수 있는 한 특별히 이에 제한되지 않으나, 일 예로서, 총 조성물의 중량 대비 0.0001 내지 50 중량%가 될 수 있고, 다른 예로서, 0.01 중량% 내지 10 중량%가 될 수 있다.
본 발명의 약학 조성물은 약학 조성물의 제조에 통상적으로 사용하는 약학적으로 허용가능한 담체, 부형제 또는 희석제를 추가로 포함할 수 있고, 상기 담체는 비자연적 담체(non-naturally occuring carrier)를 포함할 수 있다.
본 발명의 용어, "약학적으로 허용가능한"이란, 상기 조성물에 노출되는 세포나 인간에게 독성이 없는 특성을 나타내는 것을 의미한다.
구체적으로, 상기 약학 조성물은, 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀젼, 시럽, 에어로졸 등의 경구형 제형, 외용제, 좌제 및 멸균 주사용액의 형태로 제형화하여 사용될 수 있다. 본 발명에서, 상기 약학 조성물에 포함될 수 있는 담체, 부형제 및 희석제로는 락토즈, 덱스트로즈, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유를 들 수 있다. 제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제된다. 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 적어도 하나 이상의 부형제 예를 들면, 전분, 칼슘카보네이트(calcium carbonate), 수크로스(sucrose) 또는 락토오스(lactose), 젤라틴 등을 섞어 조제된다. 또한 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스티레이트, 탈크 같은 윤활제들도 사용된다. 경구를 위한 액상 제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는 데 흔히 사용되는 단순희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조 제제, 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁제로는 프로필렌글리콜(propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로제라틴 등이 사용될 수 있다.
본 발명의 일 실시예에 의하면, 본 발명에서 제공하는 6SL-PAMAM 결합체가 바이러스의 감염에 어떠한 영향을 미치는지 전자현미경을 통해 분석한 결과, 상기 6SL-PAMAM 결합체가 바이러스의 표면에 존재하는 헤마글루티닌(hemagglutinin, HA)과 결합하여 바이러스의 표면에 소포를 형성하고, 이로 인하여 바이러스의 부착, 세포내 진입 및 엔도좀 융합/방출 과정을 억제할 것으로 분석되었다(도 4). 또한, 면역형광분석을 통하여 상기 6SL-PAMAM 결합체가 바이러스의 세포내 진입에 관여함을 알 수 있었다(도 5). 아울러, 상기 6SL-PAMAM 결합체는 바이러스의 감염에 의하여 증가되는 NA의 발현수준을 저하시키는 효과를 나타냄을 확인하였다(도 6).
이에, 생체내에서 바이러스의 감염에 대한 6SL-PAMAM 결합체의 효과를 분석한 결과, 감염된 숙주의 폐조직내의 바이러스 역가를 감소시키고(도 7a), 바이러스 감염에 의한 조직병리학적 증상을 감소시키며(도 7b), 바이러스 감염에 의한 사이토카인(IL-6 및 CCL2)의 수준을 감소시키고(도 7c), 감염된 숙주의 생존율을 증가시키며(도 7d), 바이러스 감염에 의하여 감소된 체중을 회복시키는 효과를 나타냄(도 7e)을 확인하였다.
끝으로, 항 바이러스 제제에 대하여 내성을 나타내는 바이러스의 감염에 대한 6SL-PAMAM 결합체의 효과를 분석한 결과, 현존하는 항 바이러스 제제에 대하여 내성을 나타내는 인플루엔자 바이러스의 감염에 대하여도, 본 발명의 6SL-PAMAM 결합체가 억제활성을 나타냄을 알 수 있었다(도 8a 내지 8c).
또 다른 실시양태로서, 본 발명은 상기 결합체 또는 상기 결합체를 포함하는 약학 조성물을, 인플루엔자 바이러스 감염증의 발병이 의심되거나 또는 인플루엔자 바이러스 감염증이 발병된 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 인플루엔자 바이러스 감염증을 예방 또는 치료하는 방법을 제공한다.
본 발명의 용어 "개체"란, 인플루엔자 바이러스 감염증이 발병하였거나 발병할 수 있는 살아있는 유기체를 의미하는데, 일 예로서, 호흡기관을 포함하는 고등 척추동물이 될 수 있고, 다른 예로서, 포유동물이 될 수 있으며, 또 다른 예로서, 영장류가 될 수 있고, 또 다른 예로서, 인간을 포함한 쥐, 생쥐, 가축 등이 될 수 있다.
본 발명의 용어 "투여"란, 적절한 방법으로 환자에게 소정의 물질을 도입하는 행위를 의미하며, 유효성분을 인체 또는 수의용으로 제형화시킨 후, 다양한 경로로 투여할 수 있다. 본 발명의 결합체를 포함하는 약학 조성물의 투여경로는 특별히 이에 제한되지 않으나, 일 예로서, 비경구 경로, 예컨대 혈관내, 정맥내, 동맥내, 근육내 또는 피하 등의 경로로 투여될 수 있고, 다른 예로서, 경구, 비강, 직장, 경피 또는 에어로졸을 통한 흡입 경로로 투여될 수도 있으며, 또 다른 예로서, 볼루스로 투여하거나 또는 서서히 주입할 수도 있다.
본 발명의 결합체 또는 이를 포함하는 약학 조성물은 약학적으로 유효한 양으로 투여될 수 있다.
본 발명의 용어, "약학적으로 유효한 양"이란, 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 질환을 치료하기에 충분하며 부작용을 일으키지 않을 정도의 양을 의미하며, 유효 용량 수준은 환자의 성별, 연령, 체중, 건강상태, 질병의 종류, 중증도, 약물의 활성, 약물에 대한 민감도, 투여 방법, 투여 시간, 투여 경로, 및 배출 비율, 치료 기간, 배합 또는 동시에 사용되는 약물을 포함한 요소 및 기타 의학 분야에 잘 알려진 요소에 따라 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다.
일 예로서, 본 발명의 결합체는, 일 예로서, 1회 투여시 1×107 내지 1×1011개, 다른 예로서 1×108 내지 5×1010개, 또 다른 예로서 5×108 내지 2×1010개가 투여될 수 있으나, 이에 제한되지 않는다.
다른 예로서, 본 발명의 약학 조성물을 기준으로 하는 경우에는, 고형분을 기준으로 1일 0.0001 내지 100 mg/체중 kg으로, 더욱 구체적으로 0.001 내지 100 mg/체중 kg으로 투여할 수 있다. 투여는 상기 권장 투여량을 하루에 한 번 투여할 수도 있고, 수회 나누어 투여할 수도 있다.
본 발명의 인플루엔자 바이러스 감염증의 예방 또는 치료 방법에서, 상기 약학 조성물을 투여하는 투여 경로 및 투여 방식은 특별히 제한되지 않으며, 목적하는 해당 부위에 상기 결합체를 포함하는 약학 조성물이 도달할 수 있는 한 임의의 투여 경로 및 투여 방식에 따를 수 있다. 구체적으로, 상기 약학 조성물은 경구 또는 비경구의 다양한 경로를 통하여 투여될 수 있으며, 그 투여 경로의 비제한적인 예로는, 구강, 직장, 국소, 정맥내, 복강내, 근육내, 동맥내, 경피, 비측내 또는 흡입 등을 통하여 투여되는 것을 들 수 있다.
또 다른 실시양태로서, 본 발명은 상기 결합체를 포함하는 인플루엔자 바이러스 감염증 예방 또는 개선용 식품 조성물을 제공한다.
본 발명의 용어 "개선"이란, 본 발명의 결합체를 포함하는 조성물의 투여로 치료되는 상태와 관련된 파라미터, 예를 들면 증상의 정도를 적어도 감소시키는 모든 행위를 의미한다.
본 발명의 용어 "식품"이란, 육류, 소시지, 빵, 초콜릿, 캔디류, 스낵류, 과자류, 피자, 라면, 기타 면류, 껌류, 아이스크림류를 포함한 낙농제품, 각종 스프, 음료수, 차, 드링크제, 알코올음료, 비타민 복합제, 건강 기능 식품 및 건강 식품 등이 있으며, 통상적인 의미에서의 식품을 모두 포함한다.
본 발명의 식품 조성물은, 일상적으로 섭취하는 것이 가능하기 때문에 높은 수준으로 인플루엔자 바이러스 감염증을 개선시킬 수 있는 효과를 기대할 수 있으므로, 건강 증진 목적으로 매우 유용하게 사용될 수 있다.
상기 건강 기능(성) 식품(functional food)이란, 특정보건용 식품(food for special health use, FoSHU)과 동일한 용어로, 영양 공급 외에도 생체조절기능이 효율적으로 나타나도록 가공된 의학, 의료효과가 높은 식품을 의미한다. 여기서 '기능(성)'이라 함은 인체의 구조 및 기능에 대하여 영양소를 조절하거나 생리학적 작용 등과 같은 보건용도에 유용한 효과를 얻는 것을 의미한다. 본 발명의 식품은 당 업계에서 통상적으로 사용되는 방법에 의하여 제조가능하며, 상기 제조시에는 당 업계에서 통상적으로 첨가하는 원료 및 성분을 첨가하여 제조할 수 있다. 또한 상기 식품의 제형 또한 식품으로 인정되는 제형이면 제한 없이 제조될 수 있다. 본 발명의 식품용 조성물은 다양한 형태의 제형으로 제조될 수 있으며, 일반 약품과는 달리 식품을 원료로 하여 약품의 장기 복용 시 발생할 수 있는 부작용 등이 없는 장점이 있고, 휴대성이 뛰어나므로, 본 발명의 식품은 인플루엔자 바이러스 감염증 개선 효과를 증진시키기 위한 보조제로 섭취가 가능하다.
상기 건강 식품(health food)은 일반식품에 비해 적극적인 건강유지나 증진 효과를 가지는 식품을 의미하고, 건강보조식품(health supplement food)은 건강보조 목적의 식품을 의미한다. 경우에 따라, 건강 기능 식품, 건강식품, 건강보조식품의 용어는 호용된다.
구체적으로, 상기 건강 기능 식품은 본 발명의 화합물을 음료, 차류, 향신료, 껌, 과자류 등의 식품 소재에 첨가하거나, 캡슐화, 분말화, 현탁액 등으로 제조한 식품으로, 이를 섭취할 경우 건강상 특정한 효과를 가져오는 것을 의미하나, 일반 약품과는 달리 식품을 원료로 하여 약품의 장기 복용 시 발생할 수 있는 부작용이 없는 장점이 있다.
상기 식품 조성물은 생리학적으로 허용 가능한 담체를 추가로 포함할 수 있는데, 담체의 종류는 특별히 제한되지 않으며 당해 기술 분야에서 통상적으로 사용되는 담체라면 어느 것이든 사용할 수 있다.
또한, 상기 식품 조성물은 식품 조성물에 통상 사용되어 냄새, 맛, 시각 등을 향상시킬 수 있는 추가 성분을 포함할 수 있다. 예들 들어, 비타민 A, C, D, E, B1, B2, B6, B12, 니아신(niacin), 비오틴(biotin), 폴레이트(folate), 판토텐산(panthotenic acid) 등을 포함할 수 있다. 또한, 아연(Zn), 철(Fe), 칼슘(Ca), 크롬(Cr), 마그네슘(Mg), 망간(Mn), 구리(Cu), 크륨(Cr) 등의 미네랄; 및 라이신, 트립토판, 시스테인, 발린 등의 아미노산을 포함할 수 있다.
또한, 상기 식품 조성물은 방부제(소르빈산 칼륨, 벤조산나트륨, 살리실산, 데히드로초산나트륨 등), 살균제(표백분과 고도 표백분, 차아염소산나트륨 등), 산화방지제(부틸히드록시아니졸(BHA), 부틸히드록시톨류엔(BHT) 등), 착색제(타르색소 등), 발색제(아질산 나트륨, 아초산 나트륨 등), 표백제(아황산나트륨), 조미료(MSG 글루타민산나트륨 등), 감미료(둘신, 사이클레메이트, 사카린, 나트륨 등), 향료(바닐린, 락톤류 등), 팽창제(명반, D-주석산수소칼륨 등), 강화제, 유화제, 증점제(호료), 피막제, 검기초제, 거품억제제, 용제, 개량제 등의 식품 첨가물(food additives)을 포함할 수 있다. 상기 첨가물은 식품의 종류에 따라 선별되고 적절한 양으로 사용될 수 있다.
본 발명의 식품 조성물의 일 예로 건강음료 조성물로 사용될 수 있으며, 이 경우 통상의 음료와 같이 여러 가지 향미제 또는 천연 탄수화물 등을 추가 성분으로 함유할 수 있다. 상술한 천연 탄수화물은 포도당, 과당과 같은 모노사카라이드; 말토스, 슈크로스와 같은 디사카라이드; 덱스트린, 사이클로덱스트린과 같은 폴리사카라이드; 자일리톨, 소르비톨, 에리트리톨 등의 당알콜일 수 있다. 감미제는 타우마틴, 스테비아 추출물과 같은 천연 감미제; 사카린, 아스파르탐과 같은 합성 감미제 등을 사용할 수 있다. 상기 천연 탄수화물의 비율은 본 발명의 건강음료 조성물 100 mL 당 일반적으로 약 0.01 ～ 0.04 g, 구체적으로 약 0.02 ～ 0.03 g이 될 수 있다.
상기 외에 건강음료 조성물은 여러 가지 영양제, 비타민, 전해질, 풍미제, 착색제, 펙트산, 펙트산의 염, 알긴산, 알긴산의 염, 유기산, 보호성 콜로이드 증점제, pH 조절제, 안정화제, 방부제, 글리세린, 알코올 또는 탄산화제 등을 함유할 수 있다. 그 밖에 천연 과일주스, 과일주스 음료, 또는 야채 음료의 제조를 위한 과육을 함유할 수 있다. 이러한 성분은 독립적으로 또는 혼합하여 사용할 수 있다. 이러한 첨가제의 비율은 크게 중요하진 않지만 본 발명의 건강음료 조성물 100 중량부당 0.01 내지 0.1 중량부의 범위에서 선택되는 것이 일반적이다.
또 다른 실시양태로서, 본 발명은 상기 결합체 또는 상기 결합체를 인플루엔자 바이러스에 처리하는 단계를 포함하는, 인플루엔자 바이러스의 감염을 억제하는 방법을 제공한다.
상술한 바와 같이, 본 발명의 결합체는 이에 포함된 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체가 인플루엔자 바이러스의 표면에 존재하는 헤마글루티닌과 결합하여 소포를 형성하고, 이로 인하여 상기 바이러스의 부착, 세포내 진입 및 엔도좀 융합/방출 과정을 억제하며, 바이러스의 세포내 진입에 관여하고, 바이러스의 감염에 의하여 증가되는 NA의 발현수준을 저하시키는 효과를 나타낼 수 있다.
따라서, 본 발명의 결합체는 시험관 조건(in vitro), 생체내 조건(in vivo) 또는 탈체 조건(ex vivo)에서 인플루엔자 바이러스의 감염을 억제하기 위하여 사용할 수 있다.
특히, 목적하는 세포에 대한 인플루엔자 바이러스의 감염성 연구를 수행하기 위하여 시험관 조건(in vitro) 또는 탈체 조건(ex vivo)에서 인플루엔자 바이러스의 감염을 억제하고자 하는 경우, 상기 결합체를 적절한 농도로 완충액에 희석시킨 후, 바이러스 용액 또는 바이러스에 감염된 세포에 처리하여, 상기 세포에 대한 인플루엔자 바이러스의 감염을 억제할 수 있다.
이하 본 발명을 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나 이들 실시예는 본 발명을 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1: 6SL - PAMAM 결합체의 합성
에틸렌 디아민 코어(G2 내지 G5)를 갖는 PAMAM 덴드리머의 아미노기로 6SL의 환원당의 알데히드 그룹을 환원성 아미노화 함으로써 6SL-PAMAM 결합체를 제조하였다(도 1a).
대략적으로, 50mM NaCNBH3을 포함하는 0.1M 소듐 보레이트 완충액(pH 9.5)에서, 각각의 PAMAM 덴드리머(20mg)와 서로 다른 양의 6SL 용액과 혼합하였다(표 1).
PAMAM 덴드리머와 6SL 리간드의 혼합비
결합체 반응몰비(PAMAM:6SL)
S1-G2S2-G3S3-G4S4-G4S5-G4S6-G4S7-G5S8-G5S9-G5S10-G5 1:641:1281:321:641:1281:2561:641:1281:2561:512
반응액을 서서히 교반하면서, 암소 및 실온에서 5일동안 연속적으로 반응시켰다.
반응이 종료된 후, 적절한 크기(MWCO 3 K 또는 10 K)의 Amicon centrifugal filters (Millipore)를 사용하여 여과함으로써, 반응하지 않은 제제를 제거하고, 탈이온수로 용매를 교체하였다.
여과 후, 용액을 동결건조시키고, 얻어진 백색 분말의 시료를 사용시까지 건조하에 저장하였다.
실시예 2: 6SL - PAMAM 결합체의 특성분석
상기 실시예 1에서 합성된 6SL-PAMAM 결합체의 특성을 MALDI-TOF MS(Bruker Daltonics) 및 1H-NMR을 사용하여 분석하였다.
실시예 2-1: MALDI - TOF MS 분석
337 nm 질소 레이저를 사용하여 MALDI-TOF MS 분석을 수행하였다. 이때, 매트릭스로서 2,5-디히드록시 벤조산(10 mg/㎖)을 포함하는 50% 아세토니트릴을 사용하였는데, 분석물-매트릭스 용액을 1:2(분석물:매트릭스, v/v)의 비율로 제조 하였다. 상기 제조된 분석물-매트릭스 용액(1 ㎕)을 시료용 플레이트에 가하고 진공증발하여 건조시켰다. 또한, 선형 양이온 모드를 사용하여 스펙트럼 당 최소 100 회 촬영하였다. 상기 촬영된 데이터 분석은 Bruker Daltonics Microflex Analysis Software를 사용하여 수행하고(도 1b), 상기 데이터 분석을 통해 PAMAM에 결합된 6SL의 평균값을 산출하였다(표 2).
MALDI-TOF MS 분석을 통해 측정된 PAMAM에 결합된 6SL의 평균값
결합체 6SL의 수
S1-G2S2-G3S3-G4S4-G4S5-G4S6-G4S7-G5S8-G5S9-G5S10-G5 N.D.25.120.727.132.141.437.248.652.272.2
실시예 2- 2: 1 H -NMR 분석
G2-G5 덴드리머, 6SL 및 이들의 결합체에 대한 NMR 스펙트럼을 Bruker AscendTM 500 분광기를 사용하여 중수소 옥사이드에서 측정하고(도 1c), 상기 데이터 분석을 통해 PAMAM에 결합된 6SL의 평균값을 산출하였다(표 3 및 도 1c).
도 1c에서 보듯이, PAMAM 덴드리머의 1H NMR 스펙트럼은 PAMAM 덴드리머 내의 아미드 결합에 인접한 -CH2-에 해당하는 2.45 내지 2.50 ppm에서 신호를 나타내었고, 이러한 전체적인 신호는 G2의 경우 56H, G3의 경우 120H, G4의 경우 248H 및 G5의 경우 504H를 나타내는 내부 표준으로 사용되었으며, 6SL 아세틸기의 -CH3에 해당하는 2.07 ppm에서의 특유의 전체적인 신호는 각 덴드리머상의 6SL 리간드의 수를 결정하는데 사용되었다.
1H-NMR 분석을 통해 측정된 PAMAM에 결합된 6SL의 평균값
결합체 6SL의 수
S1-G2S2-G3S3-G4S4-G4S5-G4S6-G4S7-G5S8-G5S9-G5S10-G5 12.825.520.426.430.840.337.448.155.776.9
상기 얻어진 결과로부터, 합성된 6SL-PAMAM 결합체의 대략적인 구조를 예상할 수 있었다(표 4 및 도 1d).
PAMAM에 결합된 6SL의 수
결합체 6SL의 수
S1-G2S2-G3S3-G4S4-G4S5-G4S6-G4S7-G5S8-G5S9-G5S10-G5 13262026314037485677
상기 결과로부터 얻어진 S3-G4 결합체의 1H-NMR 분석결과 및 이로부터 추론된 결합체의 구조를 도 1e에 도시하였다.
실시예 3: 시험관 조건에서 6SL- PAMAM 결합체의 인플루엔자 바이러스 감염 억제분석
인플루엔자 감염을 억제하는 6SL-PAMAM 결합체의 능력평가 방법을 이용하여 시험관 조건에서의 감염억제 분석을 수행하였다.
먼저, PBS를 이용하여 시험하고자 하는 결합체의 반-로그 연속 희석액(half-log serial dilution)을 제조하였다. 상기 제조된 희석액 50 ㎕를 동일부피의 1 × 103 TCID50의 H1N1 균주(A/California/04/2009 or oseltamivir-resistant H1N1, A/Gyeongnam/1820/2009)와 혼합하였다. 상기 혼합액을 37℃에서 1시간 동안 배양하고, 이어 1.5 × 105세포수/㎖의 MDCK 세포를 100 ㎕씩 가한 다음, 5% CO2 및 37℃ 조건에서 18시간 동안 추가로 배양하였다. 배양이 종료된 후, 상기 배양된 MDCK 세포에 고정액(아세톤:PBS=4:1, v/v)을 가하고 10 내지 15분 동안 고정시켰다. 이어, 항-NA 마우스 항체(Millipore) 및 항-마우스 염소 항체-HRP 결합체(Jackson Immunoresearch)를 사용한 ELISA 분석을 수행하여, 상기 각 MDCK 세포에 포함된 인플루엔자 핵 단백질(NP)을 검출하였다(도 2a). 이때, 음성 대조군(미감염 세포, 감염율 0%) 및 양성 대조군(억제제 없이 감염된 세포, 감염율 100%)에 대한 흡광도를 사용하여 상기 각 MDCK 세포에 대한 감염율을 산출하고, 상기 산출된 감염율의 통계분석은 GraphPad Prism 6.0 (GraphPad Software, San Diego, CA)을 사용하여 수행하였다.
도 2a에서 보듯이, 크기가 비교적 작은 S1-G2 및 S2-G3의 경우(G2 및 G3 덴드리머는 4 nm 미만의 직경), 감염억제는 관찰되지 않았고, S6-G4를 제외한, G4 및 G5 덴드리머(4.5 nm 초과의 직경)를 포함한 모든 6SL 결합체는 H1N1 감염을 억제함을 확인하였다.
상기 결과는 시험관 조건에서 H1N1 감염을 억제하기 위해서는 일정한 크기의 덴드리머 지지체가 필요함을 시사한다.
또한, 상기 도 2a는 PAMAM 결합체에 결합된 6SL의 수가 증가할 수록 H1N1 바이러스의 감염억제 효율이 감소하는 결과를 보여주었는데, 이는 다가 리간드의 결합 친화력이 리간드 원자가 (예를 들면, 리간드의 수)에 따라 증가한다는 지금까지의 연구결과에 부합되지 않았다.
탄저 독소의 경우, 이에 대한 억제제의 개발에 사용되는 요인으로서 원자가 뿐만 아니라 리간드 간의 간격이 사용된다는 점을 감안하여, 6SL-PAMAM 결합체에 포함된 6SL 리간드 간의 간격이 상기 H1N1 바이러스의 감염억제 효율과 연관되는지 확인하고자 하였다.
이에 따라, 6SL-PAMAM 결합체에 포함된 PAMAM 덴드리머의 직경을 이용하여 상기 덴드리머의 표면적(4πr2)을 산출하고, 상기 표면적을 6SL 리간드의 수로 나누어 6SL 리간드 간의 간격을 산출한 다음, 상기 산출된 6SL 리간드 간의 간격과 H1N1 바이러스의 감염억제 효율 간의 연관성을 분석하였다(표 5, 도 2b).
시험관 조건에서, H1N1 감염을 억제하는 6SL-PAMAM 결합체의 효과
결합체 PAMAM 덴드리머 직경(nm) PAMAM에 결합된 6SL의 수 6SL의 평균간격(nm) IC50(μM) logIC50(M)
S1-G2S2-G3S3-G4S4-G4S5-G4S6-G4S7-G5S8-G5S9-G5S10-G5 2.93.64.54.54.54.55.45.45.45.4 13262026314037485677 2.11.63.12.42.01.62.41.91.61.2 --3.41258-8.110.721.8220 ---5.5±0.3-4.9±0.3-4.2±0.3--5.1±0.4-5.0±0.3-4.7±0.3-3.7±0.7
상기 표 5 및 도 2b에서 보듯이, 6SL 리간드 간의 간격과 H1N1 바이러스의 감염억제 효율이 연관됨을 확인하였다.
구체적으로, G2 및 G3를 포함하는 6SL-PAMAM 결합체(S1-G2 및 S2-G3)의 경우에는 6SL 리간드 간의 간격이 좁고, H1N1 바이러스의 감염억제 효과를 나타내지 않았다. 이에 반하여, G4를 포함하는 6SL-PAMAM 결합체(S3-G4, S4-G4, S5-G4 및 S6-G4)의 경우에는 6SL 리간드 간의 간격이 감소될 수록 H1N1 바이러스의 감염억제 효과가 저하되었다. 또한, G5를 포함하는 6SL-PAMAM 결합체(S7-G5, S8-G5, S9-G5 및 S10-G5)의 경우에도 6SL 리간드 간의 간격이 감소될 수록 H1N1 바이러스의 감염억제 효과가 저하되었다.
그러나, 동일한 6SL 리간드 간의 간격을 갖더라도, 6SL-PAMAM 결합체에 포함된 에틸렌 디아민 코어(G4 또는 G5)에 따라, H1N1 바이러스의 감염억제 효과가 차이를 나타냄을 알 수 있었다.
한편, H1N1 바이러스의 뉴라미니다제(neuraminidase, NA)는 6SL 리간드를 가수분해 할 수 있어, 6SL-PAMAM 결합체의 H1N1 바이러스 감염억제 효과를 제한 시킬 수 있다.
이에, 상기 NA의 억제제인 오셀타미비르 카르복실레이트(oseltamivir carboxylate, OC)의 처리여부가 6SL-PAMAM 결합체의 H1N1 바이러스 감염억제 효과에 영향을 미칠 수 있는지 확인하고자 하였다.
대략적으로, 1μM의 OC를 처리하거나 또는 처리하지 않은 조건에서 6SL-PAMAM 결합체와 H1N1 균주를 혼합하는 단계를 포함하는 것을 제외하고는, 상술한 바와 동일한 실험을 수행하여, 6SL-PAMAM 결합체의 H1N1 바이러스 감염억제 효과를 분석하였다(표 6).
OC의 처리여부에 따른 H1N1 감염을 억제하는 6SL-PAMAM 결합체의 효과
결합체 IC50(μM) logIC50(M)
OC 미처리 1μM OC OC 미처리 1μM OC
S1-G2S2-G3S3-G4S4-G4S5-G4S6-G4S7-G5S8-G5S9-G5S10-G5 --3.41258-8.110.721.8220 --1.73.413.6-2.53.24.419.7 ---5.5±0.3-4.9±0.3-4.2±0.3--5.1±0.4-5.0±0.3-4.7±0.3-3.7±0.7 ---5.8±0.6-5.5±0.5-4.9±0.5--5.6±0.7-5.5±0.7-5.4±0.5-4.7±0.5
실시예 4: HA에 대한 6SL- PAMAM 결합체의 결합 친화력 분석
표준 아민 커플 링 프로토콜(GE healthcare, Uppsala, Sweden)에 따라 H1N1 바이러스의 표면항원인 HA 단백질을 CM5 칩에 고정시키고, 이로부터 6-SL PAMAM 결합체와 HA 단백질 간의 분자반응/속도 데이터를 수득하는 SPR(Surface plasmon resonance) 분석을 통해, HA와 6SL-PAMAM 결합체의 결합 친화력을 분석하였다.
대략적으로, CM5 칩 표면의 카르복시 메틸기는 N-에틸-N-(디메틸아미노프로필) 카르보디이미드와 N-히드록시석신이미드의 동일몰량 혼합물(최종농도 0.05M) 35㎖을 가하여(유속, 5㎖/분) 활성화시켰다. 그런 다음, HA를 100 mM 소듐아세테이트 완충액(pH 5.0) 완충액에 50㎍/㎖가 되도록 가하고, 상기 활성화된 CM5 칩 표면에 가하였다. 이어, 35㎕의 1M 에탄올아민을 처리하여 상기 CM5 칩 표면의 미반응 부위를 불활성화 시켰다.
한편, N-에틸-N-(디메틸아미노프로필) 카르보디이미드와 N-히드록시숙신이미드(최종농도 0.05M)의 동일몰량 혼합물(최종농도 0.05M) 35㎖을 가한 다음(유속, 5㎖/분), 35㎕의 1M 에탄올아민을 처리하여 대조군을 제작하였다.
다음으로, 6-SL PAMAM 결합체를 HBS-EP 완충액(0.01 M HEPES, 0.15 M NaCl, 3 mM EDTA, 0.005% surfactant P20, pH 7.4)에 희석시켰다. 서로 다른 수준의 6-SL PAMAM 결합체의 희석액을 50㎕/분의 유속으로 상기 HA가 결합된 CM5 칩에 가하였다. 그런 다음, 상기 CM5 칩에 HBS-EP 완충액을 가하여, 해리를 촉진시켰다. 3분이 경과한 후, 상기 CM5 칩에 2 M NaCl 50 ㎕를 가하여, 상기 CM5 칩의 표면을 재생하였다. 반응결과는 BIAcore 3000 control 및 BIAevaluation software (version 4.0.1)를 사용한 BIAcore 3000 (GE healthcare, Uppsala, Sweden)를 이용하여 분석하였고, 25℃에서 시간(센서 그램)의 함수로 표시하였다(도 3a).
도 3a에서 보듯이, 사용된 6SL-PAMAM 결합체 중에서 일부 6SL-PAMAM 결합체(S3-G4, S4-G4, S7-G5 및 S8-G5) 만이 HA 단백질과 높은 결합 친화도를 나타냄을 확인하였다.
특히, 6SL 리간드 간의 간격이 2.4 nm 이상인 6SL-PAMAM 결합체(S3-G4, S4-G4 및 S7-G5)는 모두 HA 단백질과 높은 결합친화도를 나타냄을 확인하였다.
반면, 6SL 리간드 간의 간격이 1.9 nm 보다 작은 6SL-PAMAM 결합체(S2-G3, S6-G4, S9-G5 및 S10-G5)는 HA 단백질과 현저히 낮은 결합친화도를 나타내었고, 이들의 대부분(S6-G4, S9-G5 및 S10-G5)은 상기 6SL 리간드 간의 간격이 2.4 nm 이상인 6SL-PAMAM 결합체(S3-G4, S4-G4 및 S7-G5) 보다도 더 많은 6SL 리간드를 포함하고 있음에도 불구하고, HA 단백질과 현저히 낮은 결합친화도를 나타냄을 확인하였다.
한편, HA 삼량체의 결정을 분석한 결과, H1N1의 삼량체형 HA 내부에 존재하는 6SL 결합 부위간의 거리가 약 4 nm인 것으로 확인되었다(도 3b).
따라서, 상기 결과를 종합하면, 상기 6SL-PAMAM 결합체에 포함된 6SL 리간드 간의 간격이 2.4 내지 4.0nm인 경우, HA 단백질에 효과적으로 결합할 수 있음을 알 수 있었다.
또한, 상기 6SL-PAMAM 결합체는 G4 및 G5의 에틸렌 디아민 코어를 포함하는 형태가 바람직하고, 상기 에틸렌 디아민 코어의 종류에 따라, 적절한 수준의 6SL 리간드를 포함함이 바람직함을 알 수 있었다.
구체적으로, G4를 포함하는 6SL-PAMAM 결합체는 약 20 내지 30개의 6SL 리간드를 포함함이 바람직하고, G5를 포함하는 6SL-PAMAM 결합체는 약 30 내지 40개의 6SL 리간드를 포함함이 바람직함을 알 수 있었다.
상기 6SL-PAMAM 결합체 중에서 S3-G4 및 S6-G4를 사용하여, 상기 분석내용을 도식화하였다(도 3c).
도 3c에서 보듯이, 약 3.1nm의 6SL 리간드 간격을 갖는 S3-G4는 H1N1 바이러스의 표면항원인 HA 단백질에 존재하는 리간드 결합부위 사이의 간격과 상기 S3-G4에 포함된 6SL 리간드 간격이 유사하므로, 상기 S3-G4는 H1N1 바이러스의 표면항원인 HA 단백질에 강하게 결합할 것으로 분석되었다. 이에 반하여, 약 1.6nm의 6SL 리간드 간격을 갖는 S6-G4는 H1N1 바이러스의 표면항원인 HA 단백질에 존재하는 리간드 결합부위 사이의 간격과 상기 S6-G4에 포함된 6SL 리간드 간격이 상이하므로, 상기 S6-G4는 H1N1 바이러스의 표면항원인 HA 단백질에 약하게 결합할 수 밖에 없을 것으로 분석되었다.
실시예 5: 전자현미경 분석
공지된 방법으로 인플루엔자 바이러스(A/California/07/2009)를 정제하였다.
대략적으로, 인플루엔자 바이러스(A/California/07/2009)에 감염된 계란의 난포액을 수집하고 원심분리(3000 rpm, 10 분) 하여 상등액을 수득하였다. 상기 수득한 상등액을 고속원심분리(19,000 x g, 2시간)하여, 침전물을 수득하였다. 상기 수득한 침전물을 TNE 완충액(50 mM Tris-HCl (pH 7.4), 100 mM NaCl 및 1 mM EDTA) 1㎖에 현탁시키고, 3 단계 불연속 수크로스 구배 (50, 40 및 30% 수크로스를 포함하는 TNE 완충액 2㎖) 조건하에서 원심분리하여(36,000 x g, 2시간), 바이러스 분획을 수득하였다. 상기 수득한 바이러스 분획을 PBS에 현탁시키고, 다시 원심분리하여(100,000 x g, 1시간, 4℃), 침전물을 수득한 다음, 이를 PBS 2㎖에 현탁시켰다. 상기 현탁된 바이러스 용액 20㎕와 S3-G4 용액(100 nmol/㎖) 20㎕를 혼합하고, 이를 가속 전압 120kV에서 작동되는 Tecnai G2 spirit TEM(FEI company, Hillsboro, OR)에 적용하여 TEM(Transmission electron microscopy) 분석을 수행하였다(도 4). 이때. 대조군으로는 상기 바이러스 용액 5㎕를 공기 중에서 3분 동안 글로우 방전시킨 탄소코팅 그리드에 가한 후, 2% 우라닐아세테이트를 사용하여 염색한 것을 사용하였다.
도 4에서 보듯이, 약 7nm의 구형(좌측상단 패널)의 S3-G4 입자와, 상기 S3-G4의 결합에 의해 H1N1의 표면에 형성된 소포형성(우측하단 패널)을 확인하였으나, 상기 소포형성은 6SL 리간드가 포함되지 않은 G4 PAMAM 덴드리머를 처리한 경우에는 확인되지 않았다(좌측하단 패널). 상기 소포형성은 S3-G4의 표면 응집에 의한 것으로 예상되며, 이로 인하여 바이러스의 부착, 세포내 진입 및 엔도좀 융합/방출 과정을 억제할 것으로 분석되었다.
실시예 6: 바이러스 감염과정 분석
먼저, 인플루엔자 바이러스(A/PR/8/34)를 정제하고, 1㎖ PBS에 현탁시켜서 바이러스 용액을 수득하였다. 상기 바이러스 용액에 100μM의 R18 용액(6 ㎕)을 가하고, 1시간 동안 실온에서 반응시켜서 R18로 단독 표지하거나; 또는 상기 바이러스 용액에 DiOC18(33μM)과 R18(67μM)를 포함하는 에탄올 용액(6㎕)을 가한 다음, 실온에서 1시간 동안 서서히 진탕시키면서 반응시켜서 DiOC18 및 R18로 이중표지하였다. 반응이 종료된 용액을 0.22㎛ 멤브레인 필터(Millipore)를 사용하여 여과하였다.
다음으로, MDCK 세포를 37℃ 및 5% CO2 조건에서 24시간 동안 배양하였다. 상기 배양된 세포에 상기 여과된 바이러스 용액을 가하고, 4℃에서 20분 동안 반응시켰으며, 반응이 종료된 후, 액상성분을 제거하고, 상기 세포를 차가운 PBS로 3회 세척하였다. 상기 세포를 37℃ 및 5% CO2 조건에서 488 및 594 nm 파장의 공초점 현미경으로(LSM700, Carl Zeiss) 촬영하였다(도 5).
도 5에 도시된 R18로 단독 표지된 바이러스를 이용한 분석결과에서 보듯이, MDCK 세포의 표면에 R18 표지된 바이러스가 부착되는 것을 S3-G4가 억제함을 확인하였다.
또한, 도 5에 도시된 DiOC18과 R18로 함께 표지된 바이러스를 이용한 분석결과에서 보듯이, R18 및 DiOC18로 표지된 대조군 바이러스를 처리한 경우에는 녹색 및 노란색 바이러스 입자가 확인되었으나, S3-G4를 전처리한 바이러스를 처리한 경우에는 녹색 및 노란색 바이러스 입자가 확인되지 않음을 확인하였다.
따라서, S3-G4가 바이러스의 세포내 진입에 관여함을 알 수 있었다.
실시예 7: 면역형광분석
MDCK 세포를 48웰 플레이트에 접종하고, S3-G4(10 또는 100 nmol/㎖)를 처리하거나 또는 처리하지 않은 조건에서, 다양한 H1N1 바이러스(A/NWS/33, A/Puerto Rico/8/43 and A/California/07/2009) 또는 H3N2 바이러스(A/Shandong/9/93)를 37℃에서 24시간 동안 감염시켰다. 상기 감염된 세포에 4% 파라포름알데히드를 처리하고 실온에서 10분동안 고정시킨다음, 상기 고정된 세포를 차가운 PBS로 세척하고, 0.25 % Triton X-100를 포함하는 PBS를 가하여 10분동안 반응시킨 후, 다시 PBS로 5분씩 3회 세척하였다. 상기 세척된 세포에 인플루엔자 바이러스 A NP-특이적 단클론 항체를 1시간 동안 처리한 다음, Alexa 488-염소 항-마우스 2차 항체를 가하여 1시간 동안 반응시키고, 역상 형광현미경으로 촬영하였다(도 6). 이때, 상기 세포의 핵은 NucBLue fixed cell stain(Life technologies)을 사용하여 대조염색하고, 상기 세포의 액틴은 ActinRed 555 ReadyProbes Reagent(Life technologies)를 사용하여 염색하였다.
도 6에서 보듯이, H1N1에 감염된 MDCK 세포(대조군)에서는 녹색으로 표시된 NP 단백질의 발현수준이 급격히 증가하였으나, S3-G4 결합체를 처리한 경우에는 NP 단백질의 발현수준이 낮은 수준을 나타냄을 확인하였다
실시예 8: 생체내 조건에서 6SL- PAMAM 결합체의 인플루엔자 바이러스 감염 억제분석
실시예 8-1: 인플루엔자 바이러스에 감염된 마우스의 제작
6주령의 18-20g의 자성 무균 BALB/c 마우스를 사용하여, 6SL-PAMAM 결합체의 인플루엔자 바이러스 감염 억제능을 분석하였다.
상기 마우스에 Avertin(375 mg/kg)을 복강주사하여 마취시키고, S3-G4를 비강투여하였으며, 10분 후에 104 EID50(50% egg infective dose)의 H1N1 바이러스(A/NWS/33)를 비강투여하여 감염시켰다. 이때, S3-G4 및 바이러스의 투여수준에 따라, 4개 시험군으로 분류하였다: 양성대조군(바이러스 단독투여), 음성대조군(S3-G4 단독투여), 비교군(PBS 단독투여) 및 실험군(바이러스 및 50μmol/kg S3-G4 투여). 상기 각 시험군의 마우스를 14일 동안 사육한 다음, 이후의 실험을 수행하였다.
실시예 8-2: 폐조직의 바이러스 역가 분석
상기 14일 동안 사육한 각 마우스로부터 폐를 적출한 후, 이의 파쇄물을 수득하고, 원심분리(1400 x g, 4℃, 20분)하여 상등액을 수득하였으며, 상기 상등액에 PBS를 가하여 10배 부피로 희석하였다. 상기 희석된 상등액을 MDCK 세포에 처리하여, 상등액에 포함된 바이러스의 역가를 TCID50(tissue culture infective dose)로 산출하였다(도 7a).
도 7a에서 보듯이, S3-G4를 투여한 마우스의 폐에서 검출된 바이러스 역가는 S3-G4를 투여하지 않은 대조군의 것 보다도 10배 낮은 수준을 나타냄을 확인하였다.
실시예 8-3: 폐조직의 조직병리학적 분석
상기 14일 동안 사육한 각 마우스로부터 폐를 적출한 후, 이를 10% 포르말린으로 고정시키고, 이의 조직박편을 수득한 다음, 헤마톡실린과 에오신으로 염색하고, 이의 조직병리학적 검사를 수행하였다(도 7b).
도 7b에서 보듯이, 양성대조군(H1N1)의 경우 폐의 곁에있는 기관지 영역에서 염증세포인 단핵구와 림프구의 침윤이 확인되었고, 폐포벽의 비후와 중증도의 출혈이 확인되었으며, 병변은 전엽 전체에 퍼져있음을 확인하였다. 이에 반하여, 실험군(H1N1+S3-G4)의 경우 염증성 병변이 감소되었고, 폐의 곁에있는 기관지 영역과 폐포 영역에서 단핵구와 림프구의 침윤이 감소됨을 확인하였다.
실시예 8-4: 폐조직의 사이토카인 수준 분석
상기 14일 동안 사육한 각 마우스로부터 폐를 적출하고, 이의 파쇄물에 포함된 사이토카인(IL-6, IL-10, TNF-α, CXCL1, CXCL2 또는 CCL2)의 수준을 측정하고 비교하였다(도 7c).
도 7c에서 보듯이, TNF-α, IL-10, CXCL1 및 CXCL2의 수준은 양성대조군(H1N1)과 실험군(H1N1+S3-G4)에서 별다른 차이를 나타내지 않았으나, IL-6 및 CCL2의 수준은 양성대조군(H1N1)에 비하여, 실험군(H1N1+S3-G4)에서 유의하게 감소됨을 확인하였다.
실시예 8-5: 마우스의 생존율 분석
상기 14일 동안 사육한 각 마우스의 생존율 변화를 분석하였다(도 7d).
도 7d에서 보듯이, 음성대조군(S3-G4(50μmol/kg)) 및 비교군(PBS)은 사육기간이 경과하여도 생존율이 변화되지 않았으나, 양성대조군(H1N1)의 경우 6일째 부터 생존율이 감소하기 시작하여 10일이 경과된 시점에서 모두 사멸함을 확인하였다. 이에 반하여, 실험군(H1N1+S3-G4)의 경우 8일째에 생존율이 약 75%로 감소되었으나, 이후에는 상기 생존율이 변화되지 않음을 확인하였다.
실시예 8-6: 마우스의 체중변화 분석
상기 14일 동안 사육한 각 마우스의 생존율 변화를 분석하였다(도 7e).
도 7e에서 보듯이, 음성대조군(S3-G4(50μmol/kg)) 및 비교군(PBS)은 사육기간이 경과함에 따라, 체중이 서서히 증가하는 경향을 나타내었으나, 양성대조군(H1N1)의 경우 모두 사멸하기 직전인 9일까지 사육기간이 경과함에 따라 체중이 감소함을 확인하였다. 이에 반하여, 실험군(H1N1+S3-G4)의 경우 9일까지 사육기간이 경과함에 따라 체중이 감소하였으나, 이후에는 사육기간이 경과함에 따라 체중이 회복됨을 확인하였다.
실시예 9: 항 바이러스제 내성 바이러스에 대한 6SL- PAMAM 결합체의 효과
실시예 9-1: 항 바이러스제 내성 바이러스에 대한 면역형광분석
일반적으로 사용되는 NA 억제성 항 바이러스제의 사용에 의해 오셀타미비르(oseltamivir) 내성 돌연변이가 증가됨이 보고되었는 바, 본 발명에서 제공하는 6SL-PAMAM 결합체의 일종인 S3-G4가 오셀타미비르 내성 H1N1 바이러스의 감염을 억제할 수 있는지 확인하고자 하였다.
대략적으로, 오셀타미비르 및 페라미비르(peramivir) 치료를 받았으나, 입원 중 사망한 1세 여성 환자에게서 분리된 오셀타미비르 내성 H1N1 바이러스(A/Gyeongnam/1820/2009)에 대한 S3-G4의 감염억제능을 면역형광분석방법을 이용하여 평가하였다(도 8a).
도 8a에서 보듯이, 10 nmol/㎖의 S3-G4는 오셀타미비르 내성 H1N1 바이러스의 감염을 90% 억제함을 확인하였다.
실시예 9-2: 항 바이러스제 내성 바이러스에 대한 MN( Microneutralization ) 분석
바이러스로서 오셀타미비르 내성 H1N1 바이러스(A/Gyeongnam/1820/2009)를 사용하고, 6SL-PAMAM 결합체로서 S3-G4를 사용하는 것을 제외하고는, 상기 실시예 3의 방법을 수행하여, 오셀타미비르 내성 H1N1 바이러스(A/Gyeongnam/1820/2009) 대한 S3-G4의 감염억제 활성을 분석하였다(도 8b).
도 8b에서 보듯이, H1N1 바이러스(A/California/04/2009)에 대한 S3-G4의 억제활성(IC50 = 3.4 μM)과 유사한 수준으로, 오셀타미비르 내성 H1N1 바이러스(A/Gyeongnam/1820/2009)에 대하여도 S3-G4가 억제활성(IC50 = 5.8 μM)을 나타냄을 확인하였다.
실시예 9-3: 항 바이러스제 내성 바이러스에 대한 플라크 감소 분석
S3-G4를 처리하거나 또는 처리하지 않은 H1N1 바이러스(A/Gyeongnam/1820/2009)를 MDCK 세포에 가하여 1시간 동안 감염시키고, PBS로 세척하여 결합되지 않은 바이러스를 제거한 다음, 다양한 농도의 오셀타미비르를 처리하였다, 이어, 상기 세포를 아가로스 고체배지에서 배양하고, 배양된 고체배지에 1% 아가로스를 포함하는 중층배지를 중첩시킨 다음, 37℃에서 48시간 동안 배양하였다. 배양이 종료된 후, 하부의 고체배지를 1% crystal violet으로 염색하고, 플라크를 계수하였다(도 8c).
도 8c에서 보듯이, 오셀타미비르를 단독으로 투여한 경우에 비하여, 오셀타미비르와 S3-G4를 병용 투여할 경우, 오셀타미비르 내성 H1N1 바이러스에 감염된 MDCK 세포에서 플라크 형성이 유의하게 감소됨을 확인하였다.
상기 결과를 종합하면, 항 바이러스제에 대하여 내성을 나타내는 바이러스에 대하여도, 본 발명의 6SL-PAMAM 결합체가 억제활성을 나타냄을 알 수 있었다.
이상의 설명으로부터, 본 발명이 속하는 기술분야의 당업자는 본 발명이 그 기술적 사상이나 필수적 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 실시될 수 있다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 이와 관련하여, 이상에서 기술한 실시 예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적인 것이 아닌 것으로서 이해해야만 한다. 본 발명의 범위는 상기 상세한 설명보다는 후술하는 특허 청구범위의 의미 및 범위 그리고 그 등가 개념으로부터 도출되는 모든 변경 또는 변형된 형태가 본 발명의 범위에 포함되는 것으로 해석되어야 한다.

Claims (19)

  1. 코어(core)와 그의 표면에 결합된 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체를 포함하고, 상기 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체는 서로 동일한 간격으로 배열된 것을 특징으로 하는, 결합체.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 코어는 폴리아미도아민, 폴리하이드록시부티레이트, 폴리하이드록시발레르에이트, 폴리라이신, 폴리락트산, 폴리글리콜리드, 폴리카프로락톤, 폴리프로필렌퓨머레이트, 폴리다이옥세논, 폴리뉴클레오티드, 이들의 공중합체 및 이들의 조합으로 구성된 군으로부터 선택되는 물질로 구성된 것인, 결합체.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 코어는 덴드리머인 것인, 결합체.
  4. 제1항에 있어서,
    상기 코어는 3.0 내지 6.0 nm의 직경을 갖는 것인, 결합체.
  5. 제1항에 있어서,
    상기 코어는 3.5 내지 5.5 nm의 직경을 갖는 것인, 결합체.
  6. 제1항에 있어서,
    상기 코어는 4.0 내지 6.0 nm의 직경을 갖는 것인, 결합체.
  7. 제1항에 있어서,
    상기 코어는 4.5 내지 5.4 nm의 직경을 갖는 것인, 결합체.
  8. 제1항에 있어서,
    상기 시알산 유도체는 시알릴올리고당(sialyloligosaccharide)인 것인, 결합체.
  9. 제1항에 있어서,
    상기 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체는 3'-시알릴락토스(3'-Sialyllactose), 6'-시알릴락토스(6'-Sialyllactose), 시알릴락토-N-테트라오스(sialyl lacto-N-tetraose), 디시알릴락토-N-테트라오스(disialyl lacto-N-tetraose) 및 이들의 조합으로 구성된 군으로부터 선택되는 화합물인 것인, 결합체.
  10. 제1항에 있어서,
    상기 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체는 코어의 반응기와 결합하거나 또는 링커를 통해 코어와 결합하는 것인, 결합체.
  11. 제1항에 있어서,
    상기 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체는 1.0 내지 4.0 nm의 간격으로 배열된 것인, 결합체.
  12. 제1항에 있어서,
    상기 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체는 1.6 내지 3.5 nm의 간격으로 배열된 것인, 결합체.
  13. 제1항에 있어서,
    상기 시알산, 시알릴락토스 또는 이들의 유도체는 2.0 내지 3.1 nm의 간격으로 배열된 것인, 결합체.
  14. 제1항 내지 제13항 중 어느 한 항의 결합체를 포함하는, 인플루엔자 바이러스 감염증 예방 또는 치료용 약학 조성물.
  15. 제1항 내지 제13항 중 어느 한 항의 결합체를 포함하는, 인플루엔자 바이러스 감염증 예방 또는 개선용 식품 조성물.
  16. 제1항 내지 제13항 중 어느 한 항의 결합체를, 인플루엔자 바이러스 감염이 의심되거나 또는 인플루엔자 바이러스에 감염된 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 인플루엔자 바이러스 감염증을 예방 또는 치료하는 방법.
  17. 제16항에 있어서,
    상기 인플루엔자 바이러스는 인플루엔자 A 바이러스 또는 인플루엔자 B 바이러스인 것인, 방법.
  18. 제16항에 있어서,
    상기 결합체는 인플루엔자 바이러스의 헤마글루티닌(hemagglutinin, HA)과 결합하여 상기 바이러스의 감염을 억제하는 것인, 방법.
  19. 제1항 내지 제13항 중 어느 한 항의 결합체를, 인플루엔자 바이러스에 처리하는 단계를 포함하는, 인플루엔자 바이러스의 감염을 억제하는 방법.
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