WO2019045052A1 - 糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体及び測定方法 - Google Patents

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    • G01N2333/906—Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.7)
    • G01N2333/9065—Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.7) acting on CH-NH groups of donors (1.5)
    • G01N2333/90672—Oxidoreductases (1.) acting on nitrogen containing compounds as donors (1.4, 1.5, 1.7) acting on CH-NH groups of donors (1.5) with oxygen as acceptor (1.5.3) in general

Definitions

  • the present invention relates to glycated hemoglobin oxidase having activity against a plurality of glycated hemoglobins, and a method of measuring glycated hemoglobin using the same.
  • a glycated protein is produced by non-enzymatic covalent bond formation between the aldehyde group of an aldose (monosaccharide and its derivative potentially having an aldehyde group) such as glucose and the amino group of the protein, and Amadori transfer It is.
  • HbA1c hemoglobin A1c
  • ⁇ -chain a protein in which glucose is bound to the ⁇ -amino group of Val (valine) at the N-terminus (amino terminus) of hemoglobin “ ⁇ -chain”. Since the concentration of HbA1c in the blood reflects the average blood glucose level in the past for a fixed period, the value of HbA1c is an important indicator in the diagnosis and management of diabetes symptoms.
  • enzymatic methods using amadoriase are known as methods for measuring HbA1c rapidly and simply.
  • Amadoriase catalyzes a reaction that oxidizes iminodiacetic acid or a derivative thereof (also referred to as "Amadori compound”) in the presence of oxygen to form glyoxylic acid or ⁇ -ketoaldehyde, amino acid or peptide, and hydrogen peroxide.
  • Amadoriase is known as an enzyme useful for measuring HbA1c by an enzymatic method.
  • As a substrate that is oxidized by amadoriase for example, ⁇ -fructosyl valyl histidine (hereinafter referred to as ⁇ FVH) is known.
  • Amadoriases have been found so far from bacteria, yeasts and fungi, for example, Coniochaeta, Eupenicillium, Pyrenochaeta, Arthrinium, Curvularia. , Neocosmospora (Neocosmospora), Cryptococcus (Cryptococcus), Phaeosphaeria, Aspergillus (Aspergillus), Emericella, Urocladium, Penicillium, Fusarium ), Achaetomiella (Achaetomiella), Acaetotomium (Achaethomium), Sierrala (Thielavia), Caetomium (Chaetomium), Gerasinospora, Microascus (Microascus), Leptosphaeria (Optobolas) Ophiobolus, Pleospora, Conioketidium (Co Amadoriases from the genus niochhaetidium, Pichia
  • HbA1c As a method of measuring HbA1c quickly and simply using various amadoriases as described above, HbA1c is decomposed with a protease for excision of protease or peptidase (hereinafter referred to as protease etc.), and from the ⁇ -chain amino terminal end of HbA1c There is known a method of releasing a specific measuring substance and quantifying the released measuring substance using an amadoriase as described above (see, for example, Patent Documents 1 to 7).
  • ⁇ F6P ⁇ -fructosyl hexapeptide
  • ⁇ F6P ⁇ -fructosyl valyl histidyl leucyl threonyl prolyl glutamate
  • amadoriase that directly oxidizes the ⁇ chain of HbA1c to generate hydrogen peroxide without requiring pretreatment with a protease, and a method for measuring HbA1c using it have been reported (Patent Documents 20, 21, 22) ).
  • Such amadoriases can be referred to as A1c oxidases (A1cOX).
  • the present inventors have reported a method for measuring HbA1c using an amadoriase that directly oxidizes the ⁇ chain of HbA1c to generate hydrogen peroxide, ie, A1cOX, without requiring pretreatment with a protease (Patent Documents 20 and 21).
  • HbC1c hemoglobin C
  • HbS1c hemoglobin S
  • ⁇ -fructosyl octapeptides (herein referred to as HbA1c type ⁇ F8P)
  • HbA1c type ⁇ F8P ⁇ -fru-VHLTPVEK
  • HbC1c type ⁇ F8P ⁇ -fru-VHLTPKEK
  • HbA1c type ⁇ F8P means ⁇ -fructosylvalylhistylleusylthreonylprolylglutaylglutamyllysine, which is a glycation substrate corresponding to the N-terminal eight amino acids of HbA1c.
  • the 6th position is glutamic acid (E6).
  • position 6 is valine (E6V mutation).
  • HbC1c ⁇ F8P position 6 is a lysine (E6K mutation). That is, HbS1c ⁇ F8P and HbC1c ⁇ F8P are mutated at the sixth position, and the mutations correspond to HbS1c and HbC1c, respectively.
  • Hemoglobin S is a heritable variant of hemoglobin A found in part of the population, and is the sixth from the N-terminus of the hemoglobin A beta chain (ie, when the N-terminal valine is at position 1) Glutamic acid is valine (E6V mutation).
  • Hemoglobin C is a heritable variant of hemoglobin A found in part of the population, and is the sixth from the N-terminus of the hemoglobin A beta chain (ie, valine at the N-terminus is at position 1) Glutamate at position 6) is a lysine (E6K mutation).
  • the measured value is a true value in view of the low relative activity of the ⁇ F8P substrate corresponding to these genotypes of hemoglobin for a subject having a genotype of HbS or HbC. There is a possibility of divergence.
  • the present inventor has found a new problem that it is necessary to provide glycated hemoglobin oxidase that can cope with not only HbA1c but also genotypes such as HbS1c and HbC1c. That is, the problem to be solved by the present invention is to provide glycated hemoglobin oxidase which acts not only on HbA1c but also on HbS1c and / or HbC1c, and a measuring method using the same.
  • the present invention includes the following.
  • a method for measuring HbS1c or HbC1c in a sample comprising the step of causing glycated hemoglobin oxidase to act on a sample that may contain HbS1c or HbC1c.
  • the method according to embodiment 2, wherein the reduced compound to be measured is hydrogen peroxide.
  • the glycated hemoglobin oxidase has the properties of (a) and / or (b), (a) The ratio of the activity to HbS1c ⁇ F8P to the activity to HbA1c ⁇ F8P, ie the relative activity [HbS1c / HbA1c] is at least 0.45, (b) The ratio of the activity to HbC1c ⁇ F8P to the activity to HbA1c ⁇ F8P, ie, the relative activity [HbC1c / HbA1c] is at least 0.15.
  • glycated hemoglobin oxidase is a glycosylated hemoglobin oxidase modified product selected from the group consisting of (i) to (viii) below:
  • the amino acid sequence of glycated hemoglobin oxidase is aligned with the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 1, the amino acid at the position corresponding to position 113 in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 is glutamic acid, aspartic acid, alanine, serine
  • the amino acid sequence of glycated hemoglobin oxidase is aligned with the amino acid sequence described in SEQ ID NO:
  • the full-length amino acid sequence of the glycated hemoglobin oxidase is 70% or more identical in sequence identity to the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 45
  • the amino acid at the position corresponding to position 60 of SEQ ID NO: 1 is glycine
  • the amino acid at the position corresponding to position 239 of SEQ ID NO: 1 is tryptophan, phenylalanine or tyrosine
  • SEQ ID NO: 1 The amino acid at the position corresponding to position 282 of the amino acid is glutamic acid
  • the amino acid at the position corresponding to position 376 of SEQ ID NO: 1 is glycine
  • the amino acid at the position corresponding to position 418 of SEQ ID NO: 1 is arginine
  • the amino acid sequence of the position corresponding to positions 15 to 20 of 1 is Gly-Xaa-Gly
  • glycated hemoglobin oxidase modified product which is an amino acid.
  • a glycated hemoglobin oxidase for measuring HbS1c or HbC1c in a sample is arginine, and the amino acid sequence at the position corresponding to positions 15 to 20 of SEQ ID NO. 1 is Gly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly (where Xaa is any one
  • Xaa is any one
  • the glycated hemoglobin oxidase modified product which is an amino acid.
  • the optimum pH range of glycated hemoglobin oxidase is 6-8, the working pH range is 5-9, the optimum temperature range is 25-40 ° C., and the molecular weight on SDS-PAGE is about 45-55 KDa
  • the glycated hemoglobin oxidase according to any one of the embodiments 7 to 11, wherein the glycated hemoglobin oxidase is selected from the group consisting of the following (i) to (viii): (i) When the amino acid sequence of glycated hemoglobin oxidase is aligned with the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 1, the amino acid at the position corresponding to position 113 in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 is glutamic acid, aspartic acid, alanine, serine A glycated hemoglobin oxidase variant modified to an amino acid selected from the group consisting of threonine, asparagine, glutamine, cysteine, glycine, proline, valine, isoleucine, leucine, methionine, phenylalanine, tyrosine and tryptophan, (ii) When the amino acid sequence of glycated hemoglobin oxida
  • the full-length amino acid sequence of the glycated hemoglobin oxidase is 70% or more identical in sequence identity to the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 45
  • the amino acid at the position corresponding to position 60 of SEQ ID NO: 1 is glycine
  • the amino acid at the position corresponding to position 239 of SEQ ID NO: 1 is tryptophan, phenylalanine or tyrosine
  • SEQ ID NO: 1 The amino acid at the position corresponding to position 282 of the amino acid is glutamic acid
  • the amino acid at the position corresponding to position 376 of SEQ ID NO: 1 is glycine
  • the amino acid at the position corresponding to position 418 of SEQ ID NO: 1 is arginine
  • the amino acid sequence of the position corresponding to positions 15 to 20 of 1 is Gly-Xaa-Gly
  • a glycation according to any of embodiments 7-12 which is based on an amadoriase of the genus Pheaosphaeria, Aspergillus, Emericella, Ulocladium, or Penicillium. Hemoglobin oxidase.
  • Amadoriase is Coniochaeta sp. (Coniochaeta sp.), Eupenicillium terrenum (Eupenicillium terrenum), Pyrenocha sp. (Pyrenochaeta sp.), Arsulinium sp.
  • a reagent composition for measuring HbS1c or HbC1c which comprises the glycated hemoglobin oxidase according to any one of Embodiments 7 to 14.
  • a vector comprising the gene of embodiment 16.
  • a host cell comprising the vector of embodiment 17.
  • a method for producing glycated hemoglobin oxidase comprising the following steps: (I) culturing the host cell described in Embodiment 18 under conditions that can express glycated hemoglobin oxidase, and (ii) isolating glycated hemoglobin oxidase from the culture or culture solution.
  • a method for producing glycated hemoglobin oxidase by modifying amadoriase or A1c oxidase comprising the following steps: (i) obtaining an amadoriase gene or an A1c oxidase gene, (ii) Amadoriase gene or A1c oxidase gene is incorporated into the vector, the host cell is transformed, amadoriase or A1c oxidase is expressed, and the expression product is isolated, (iii) relative activity of the expression product [HbS1c / HbA1c] and And / or the relative activity [HbC1c / HbA1c] is measured, (iv) when the amino acid sequence of amadoriase or A1c oxidase is aligned with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, position 113 in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 The amino acid corresponding to position 109, position 106 or position 102 is glut
  • the present specification includes the disclosure content of Japanese Patent Application No. 2017-167890 based on which the priority of the present application is based.
  • a glycated hemoglobin oxidase which recognizes not only HbA1c but also glycated hemoglobin of heritable type such as HbS1c or HbC1c.
  • This can be a glycated hemoglobin measurement reagent that can cope with various genotypes.
  • Figure 1-2 is a continuation of Figure 1-1.
  • Figure 1-3 is a continuation of Figure 1-2.
  • Figure 1-4 is a continuation of Figure 1-3.
  • Fig. 1-5 is a continuation of Fig. 1-4. It is a figure which illustrates the identity and similar amino acids in the amino acid sequences of various known amadoriases. In addition to the amadoriase shown in FIG. 1, Ao2, Af2, At, Fo, Ao1, Af1, Pi, Dh were aligned.
  • Figure 2-2 is a continuation of Figure 2-1.
  • Figure 2-3 is a continuation of Figure 2-2.
  • Figure 2-4 is a continuation of Figure 2-3.
  • Figure 2-5 is a continuation of Figure 2-4.
  • Figure 2-6 is a continuation of Figure 2-5.
  • Figure 2-7 is a continuation of Figure 2-6.
  • Figure 2-8 is a continuation of Figure 2-7.
  • Figure 2-9 is a continuation of Figure 2-8.
  • Figure 2-10 is a continuation of Figure 2-9.
  • Hemoglobin includes, in addition to hemoglobin A (HbA) which is normal hemoglobin, abnormal hemoglobin such as hemoglobin S (HbS) and hemoglobin C (HbC).
  • HbA hemoglobin A
  • HbS hemoglobin S
  • HbC hemoglobin C
  • glycated hemoglobin refers to nonenzymatically glycated hemoglobin.
  • glycated hemoglobin this term is intended to encompass not only glycated HbA, but also glycated abnormal hemoglobin, such as glycated HbS and glycated HbC.
  • Glycated hemoglobin is present in blood or the like in the living body.
  • glycated hemoglobin in which valine at the amino terminal of the ⁇ chain of HbA is glycated is particularly referred to as hemoglobin A1c (HbA1c).
  • HbA1c hemoglobin A1c
  • glycated HbS or HbC may have various glycated HbS or glycated HbC depending on the type of sugar linked to the ⁇ chain.
  • glycated HbS refers to glycated valine at the amino terminal of the ⁇ chain of HbS (also referred to as HbS1c) unless otherwise specified.
  • glycated HbC refers to glycated valine at the amino end of the ⁇ chain of HbC (also referred to as HbC1c) unless otherwise specified.
  • the glycated peptide in the present invention refers to a non-enzymatic glycated peptide derived from a glycated protein, which is directly glycated in non-enzymatic form, or the product of degradation of glycated protein by protease etc.
  • a glycated form of the (poly) peptide constituting the glycated protein is included.
  • the glycated peptide may also be referred to as fructosyl peptide.
  • examples of the amino group on the side of the peptide to be glycated include the ⁇ -amino group at the amino terminus, the ⁇ -amino group of the lysine residue side chain inside the peptide, and the like. More specifically, it is ⁇ -glycated peptide ( ⁇ -fructosyl peptide) in which the ⁇ -amino group is glycated.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention acts directly on HbA1c, more specifically on the ⁇ chain of HbA1c.
  • the direct action here means that the amadoriase acts on the fructosyl group at the N-terminus of the ⁇ -chain of glycated hemoglobin in the presence of oxygen to generate 2-keto-D glucose and hydrogen peroxide, and the ⁇ -chain of hemoglobin.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention acts on HbA1c type ⁇ F8P.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention acts not only on HbA1c ⁇ F8P but also on HbS1c ⁇ F8P and / or HbC1c ⁇ F8P. Since it is known that the amadoriase acting on HbA1c type ⁇ F8P acts on HbA1c (Patent Document 21), the glycated hemoglobin oxidase of the present invention acts not only on HbA1c but also on glycated HbS and / or glycated HbC It is considered rationally. That is, in one embodiment, the glycated hemoglobin oxidase of the present invention acts not only on HbA1c but also on glycated HbS and / or glycated HbC.
  • the glycosylated hemoglobin oxidase variant of the present invention has an improved relative activity to HbS1c ⁇ F8P as compared to the A1c oxidase before modification.
  • the relative activity to HbS1c ⁇ F8P is the ratio of the activity to HbS1c ⁇ F8P and the activity to HbA1c ⁇ F8P (normal ⁇ F8P) when the amount of enzyme and reaction conditions are constant, ie, (activity to HbS1c ⁇ F8P / HbA1c activity against ⁇ F8P).
  • Activity against HbS1c ⁇ F8P / HbA1c Activity against ⁇ F8P may be referred to as relative activity [HbS1c / HbA1c] in the present specification for convenience.
  • the glycosylated hemoglobin oxidase variant of the present invention has an improved relative activity to HbC1c-type ⁇ F8P as compared to the A1c oxidase before modification.
  • the relative activity against HbC1c ⁇ F8P is the ratio of the activity against HbC1c ⁇ F8P to the activity against HbA1c ⁇ F8P when the amount of enzyme and reaction conditions are fixed, ie, (activity against HbC1c ⁇ F8P / activity against HbA1c ⁇ F8P) Say.
  • Activity against HbC1c ⁇ F8P / HbA1c The activity against HfA1c may be referred to as relative activity [HbC1c / HbA1c] in the present specification for convenience.
  • the glycated hemoglobin oxidase variant of the present invention has an increased relative activity [HbS1c / HbA1c] and / or relative activity [HbC1c / HbA1c] as compared to the A1c oxidase before modification.
  • the relative activity is defined in relation to the model substrate ⁇ F8P, but this is for convenience only, and it is reasonable if the properties relative to the various activities against glycated hemoglobin are similarly reflected. Be considered.
  • the glycated hemoglobin oxidase variant of the present invention has a relative activity after modification [HbS1c / HbA1c] of at least 1.1-fold, at least 1.2-fold, as compared to the relative activity of the amadoriase before modification [HbS1c / HbA1c]. 1.3 times or more, 1.4 times or more, 1.5 times or more, 2.0 times or more, 2.5 times or more, for example, 2.6 times or more.
  • the glycated hemoglobin oxidase variant of the present invention has a relative activity after modification [HbC1c / HbA1c] of at least 1.1-fold, at least 1.2-fold as compared to the relative activity of the amadoriase before modification [HbC1c / HbA1c]. , 1.3 times or more, 1.4 times or more, 1.5 times or more, 2.0 times or more, 2.5 times or more, 3.0 times or more, 4.0 times or more, 5.0 times or more, 6.0 times or more, 7.0 times or more, 8.0 times or more, for example, 8.3 times or more It may be done.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention has a relative activity [HbS1c / HbA1c] of 0.4 or more, 0.41 or more, 0.42 or more, 0.42 or more, 0.43 or more, 0.44 or more, 0.45 or more, 0.5 or more, 0.55 or more, 0.6 or more, 0.65 It may be 0.7 or more, 0.75 or more, 0.8 or more, 0.85 or more, 0.9 or more, for example, 0.95 or more.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention has a relative activity [HbC1c / HbA1c] of 0.10 or more, 0.11 or more, 0.12 or more, 0.13 or more, 0.14 or more, 0.15 or more, 0.16 or more, 0.16 or more, 0.17 or more, 0.18 or more, 0.19 or more, 0.19. It may be 0.2 or more, 0.25 or more, 0.3 or more, 0.35 or more, 0.4 or more, 0.5 or more, 0.6 or more, 0.7 or more, 0.8 or more, for example, 0.9 or more.
  • the glycated hemoglobin oxidase variant of the present invention not only acts on HbA1c, but also has increased relative activity [HbS1c / HbA1c] and / or relative activity [HbC1c / HbA1c], so it is a sample containing glycated HbS or glycated HbC. Can be used to measure the problem of the difference between the measured value and the true value.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention can accurately measure glycated hemoglobin in a sample, and does not result in the difference between the measured value and the true value.
  • not causing a difference between the measured value and the true value means, for example, that the measured value is 90 (arbitrary unit) when glycated hemoglobin actually contained in the sample is 100 (arbitrary unit). To indicate a value less than or greater than 110.
  • Amadoriases are also called ketoamine oxidase, fructosyl amino acid oxidase, fructosyl peptide oxidase, and fructosyl amine oxidase.
  • Amadoriase is an enzyme that catalyzes a reaction that oxidizes iminodiacetic acid or its derivative (Amadori compound) in the presence of oxygen to produce glyoxylic acid or ⁇ -ketoaldehyde, amino acid or peptide, and hydrogen peroxide.
  • Amadoriases are widely distributed in nature and can be obtained by searching for microorganisms or enzymes of animal or plant origin. Microorganisms can be obtained, for example, from filamentous fungi, yeast, or bacteria.
  • amadoriases include, but are not limited to, Koniokaeta spp, Eupenicillium spp, Pyrenocata spp., Arsrinium spp., Cabularia spp., Neocosmospora spp., Cryptococcus spp., Phenosphaeria spp., Aspergillus spp. Genus Acheetommium, Sierravia, Caettomium, Geracinospora, Gerasinospora, Microascus, Leptospheria, Ophioboras, Preospora, Conioketidium, Pichia, Corynebacterium, Agrobacterium, or Arthrobacter Can be obtained from
  • amadoriase gene In order to obtain a gene encoding amadoriase (hereinafter, also simply referred to as "amadoriase gene"), a commonly used gene cloning method is used. For example, chromosomal DNA or mRNA can be extracted from microbial cells capable of producing amadoriase and various cells according to a conventional method, for example, the method described in Current Protocols in Molecular Biology (WILEY Interscience, 1989). Furthermore, cDNA can be synthesized using mRNA as a template. The chromosomal DNA or cDNA thus obtained can be used to produce a library of chromosomal DNA or cDNA.
  • a suitable probe DNA is synthesized based on the amino acid sequence of the above amadoriase and a method of selecting an amadoriase gene from a library of chromosomal DNA or cDNA using this, or an appropriate primer DNA based on the above amino acid sequence.
  • the DNA fragment containing the gene fragment of interest encoding amadoriase is amplified by an appropriate polymerase chain reaction (Polymerase Chain Reaction, PCR method) such as 5 'RACE method or 3' RACE method, and these DNA fragments are prepared. Can be ligated to obtain a DNA containing the full length of the desired amadoriase gene.
  • amadoriase gene the amadoriase gene derived from the genus Koniokaeta (Japanese Patent Laid-Open No. 2003-235585) can be mentioned.
  • an amadoriase gene derived from Phaeosphaeria an amadoriase gene derived from Neocosmospora, an amadoriase gene derived from Aspergillus, an amadoriase gene derived from Cryptococcus, an amadoriase gene derived from Curvularia, and an amadoriase gene derived from Eupenicillium can be mentioned.
  • the amadoriase gene may be linked to a vector.
  • the vector include any vector such as plasmid, bacteriophage, cosmid and the like, and examples include pBluescript II SK + (manufactured by Stratagene).
  • the amadoriase gene from Coniochaeta sp. NISL 9330 and a plasmid containing the same are disclosed in WO 2007/125779.
  • the amadoriase gene from Eupenicillium terrenum strain ATCC 18547 and a plasmid containing the same are disclosed in WO 2007/125779.
  • the amadoriase gene from Aspergillus nidulans FGSC A26 strain and a plasmid containing the same are disclosed in WO 2012/018094.
  • the amadoriase gene from Cryptococcus neoformans and a plasmid containing the same are disclosed in WO 2012/018094.
  • the amadoriase gene from Neocosmospora vasinfecta and a plasmid containing the same are disclosed in WO 2012/018094.
  • the plasmid can be obtained according to a conventional method.
  • GenElute Plasmid Miniprep Kit manufactured by Sigma-Alcrich
  • a plasmid containing an amadoriase gene can be extracted and purified.
  • the resulting amadoriase gene can be manipulated to produce an A1cOX gene or to obtain a purified enzyme.
  • the mutation treatment of the amadoriase gene can be performed by any known method depending on the intended mutation form. That is, a method of contacting / acting an amadoriase gene or a recombinant DNA into which the gene is incorporated with a drug serving as a mutagen; UV irradiation method; genetic engineering method; or a method using protein engineering methods widely It can be used.
  • mutagenic agents used for the above-mentioned mutation treatment include hydroxylamine, N-methyl-N'-nitro-N-nitrosoguanidine, nitrous acid, sulfurous acid, hydrazine, formic acid, or 5-bromouracil. be able to.
  • the conditions of the contact and action can be set according to the type of drug used and the like, and are not particularly limited as long as the desired mutation can be actually induced in the amadoriase gene.
  • the desired mutation can be induced by contact / action at a reaction temperature of 20 to 80 ° C. for 10 minutes or more, preferably 10 to 180 minutes.
  • ultraviolet irradiation it can be carried out according to the conventional method as described above (conventional chemistry, 024-30, June 1989).
  • a method known as Site-Specific Mutagenesis can be used.
  • the Kramer method Nucleic Acids Res., 12, 9441 (1984): Methods Enzymol., 154, 350 (1987): Gene, 37, 73 (1985)
  • the Eckstein method Nucleic Acids Res., 13, 8749 ( 1985): Nucleic Acids Res., 13, 8765 (1985): Nucleic Acids Res, 14, 9679 (1986)
  • Kunkel method Proc. Natl. Acid. Sci. USA, 82, 488 (1985): Methods Enzymol. , 154, 367 (1987)
  • a general PCR method can be used (see Technique, 1, 11 (1989)).
  • a desired modified amadoriase gene or glycated hemoglobin oxidase gene can be directly synthesized by an organic synthesis method or an enzyme synthesis method.
  • amadoriase gene can be confirmed, for example, by Multicapillary DNA analysis system Applied Biosystems 3130xl Genetic Analyzer (manufactured by Life Technologies).
  • the amadoriase gene can be routinely incorporated into vectors such as bacteriophage, cosmid, or plasmids used for transformation of prokaryotic or eukaryotic cells. Using this, a host corresponding to each vector can be transformed or transduced by a conventional method.
  • Hosts of E. coli include, but are not limited to, various E. coli strains such as K-12 strain, JM 109 strain (Takara Bio), DH5 ⁇ strain (Takara Bio), and the like.
  • A1cOX A1c oxidase
  • A1cOX A1c oxidase
  • the A1 cOX gene can be generated from the above amadoriase gene based on the teaching of Patent Documents 20-22. These equivalents may also be used in the present invention.
  • Patent Documents 20 and 21 disclose A1cOX based on Amadoriase (SEQ ID NO: 1) derived from Coniochaeta sp. NISL 9330.
  • Patent Document 21 discloses A1cOX having a high specific activity to ⁇ F8P. The entire contents of which are incorporated herein by reference.
  • the following table shows mutations that A1cOX may have and their positions.
  • the left amino acid (one letter code) of the position shown is the wild type amino acid and the right is the amino acid after substitution.
  • each candidate is shown separated by a punctuation mark.
  • Patent Document 22 discloses a variant based on Emericella nidulans derived amadoriase (FPOX). The entire content of which is incorporated herein by reference.
  • the following table shows the mutations that FPOX variants can have and their positions.
  • the position shown in the left column is the position corresponding to SEQ ID NO: 1 in the present specification
  • the position in the right column is the position in the amadoriase.
  • the left amino acid at the position shown is the wild type amino acid and the right is the amino acid after substitution.
  • each candidate is shown separated by a punctuation mark.
  • A1 cOX may have the mutations described above. Those skilled in the art can produce the A1cOX gene with reference to the descriptions in Patent Documents 20 to 22 and the above description.
  • A1 cOX is substituted at the position corresponding to position 62 of SEQ ID NO: 1 with an amino acid other than arginine, for example, substitution with the amino acids shown in the above table, and further, lysine, histidine, phenylalanine, tryptophan , Tyrosine and the like.
  • A1 cOX is substituted by one or more, for example, two or more, for example, three amino acid substitutions at a position selected from the group consisting of a position corresponding to position 63 of SEQ ID NO: 1, a position corresponding to position 355 and a position corresponding to position 419. It can have.
  • the substituted amino acids may be as described in the above table.
  • A1 cOX is a position corresponding to position 63 of SEQ ID NO: 1, a position corresponding to position 64, a position corresponding to position 72, a position corresponding to position 109, a position corresponding to position 116, a position corresponding to position 76 , A position corresponding to position 67, a position corresponding to position 96, and a position corresponding to position 355, one or more, for example two or more, for example three or more, for example four or more, for example five or more For example, it may have 6 or more, for example 7 or more, for example 8 or more, for example 9 amino acid substitutions.
  • the substituted amino acids may be as described in the above table.
  • A1 cOX is further one or more at a position selected from the group consisting of a position corresponding to position 68, a position corresponding to position 356, a position corresponding to position 64, and a position corresponding to position 99 of SEQ ID NO: 1
  • it may have 2 or more, for example 3 or more, for example 4 amino acid substitutions.
  • the substituted amino acids may be as described in the above table.
  • A1cOX variants can be produced to produce glycated hemoglobin oxidase having an increased relative activity to glycated HbS or glycated HbC.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention may have a mutation at a position corresponding to positions 113, 109, 106 and / or 102 of SEQ ID NO: 1. The corresponding positions are described below.
  • A1 cOX based on Coniochaeta sp.
  • the amino acid corresponding to the position corresponding to (a) position 113, (a ') position 109, (b) position 106 and / or (c) position 102 of SEQ ID NO: 1 Amino acids other than lysine, histidine, arginine), such as aspartic acid, glutamic acid, serine, threonine, asparagine, glutamine, cysteine, glycine, glycine, proline, alanine, valine, isoleucine, leucine, methionine, phenylalanine, tyrosine, tryptophan, for example glutamic acid, asparagine
  • the acid, alanine, leucine, valine, glutamine, asparagine such as glutamic acid, aspartic acid, alanine can be substituted.
  • the replacement amino acid is excluded from back mutation to an amino acid (natural amino acid) in the natural amadoriase sequence.
  • the substituted amino acid at the position corresponding to position 102, 106, 109 or 113 of SEQ ID NO: 1 may be identical to the amino acid at that position (natural amino acid) in the native amadoriase sequence. This looks like a back mutation. However, when the naturally occurring amino acid is substituted for another amino acid in producing the A1c oxidase from the naturally occurring amadoriase, it is understood that it is a preferable configuration or a required configuration for the A1 c oxidase.
  • the present invention encompasses this as an amino acid substitution that can solve the problem of the present invention even if the substitution appears to be a reverse mutation to a naturally occurring amino acid.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention has a specific activity of 20 mU / mg or more, 30 mU / mg or more, 40 mU / mg or more, 50 mU / mg or more, 60 mU / mg or more, 70 mU / mg or more with respect to 10 ⁇ M HbS1c ⁇ F8P 80 mU / mg or more, 90 mU / mg or more, 100 mU / mg or more, 110 mU / mg or more, 120 mU / mg or more, 130 mU / mg or more, 140 mU / mg or more, 150 mU / mg or more, 160 mU / mg or more, 170 mU / mg or more
  • the above may be, for example, 180 mU / mg or more.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention has a specific activity of 20 mU / mg or more, 30 mU / mg or more, 40 mU / mg or more, 50 mU / mg or more, 60 mU / mg or more, 70 mU / mg or more for 10 ⁇ M HbC1c ⁇ F8P 80 mU / mg or more, 90 mU / mg or more, 100 mU / mg or more, 110 mU / mg or more, 120 mU / mg or more, 130 mU / mg or more, 140 mU / mg or more, 150 mU / mg or more, 160 mU / mg or more, 170 mU / mg or more
  • the above may be, for example, 180 mU / mg or more.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention has a specific activity of 20 mU / mg or more, 30 mU / mg or more, 40 mU / mg or more, 50 mU / mg or more, 60 mU / mg or more, 70 mU / mg or more for 10 ⁇ M HbA1c ⁇ F8P 80 mU / mg or more, 90 mU / mg or more, 100 mU / mg or more, 110 mU / mg or more, 120 mU / mg or more, 130 mU / mg or more, 140 mU / mg or more, 150 mU / mg or more, 160 mU / mg or more, 170 mU / mg or more
  • the above may be, for example, 180 mU / mg or more.
  • the amino acid sequences are compared using a known algorithm such as Lippmann-Person method, and the largest conserved amino acid residue is present in the amino acid sequence of each amadoriase. It can be done by giving identity.
  • a known algorithm such as Lippmann-Person method
  • the amino acid sequences of amadoriases are aligned in this manner, it is possible to determine the positions in the respective amadoriase sequences of the homologous amino acid residues regardless of the insertions and deletions present in the amino acid sequences.
  • the corresponding positions (homologous positions) are considered to be present at the same position in the three-dimensional structure, and it can be inferred that they have similar effects on the specific function of the amadoriase of interest.
  • the “position corresponding to position 113 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1” refers to the position 113 of SEQ ID NO: 1 when the amino acid sequence of the amadoriase of interest is compared with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 The corresponding position is said. This can be identified from FIG. 1 or FIG. 2 in which the amino acid sequences are aligned by the method described above. The same applies to the position corresponding to position 109 of SEQ ID NO: 1, the position corresponding to position 106, and the position corresponding to position 102.
  • the homology, identity or similarity of amino acid sequences can be determined by programs such as GENENETYX (made by GENETYX) for maximum matching or search homology, or DNASIS Pro (made by Hitachi Solutions) for maximum matching or multiple alignment, or multiples of CLUSTAL W It can be calculated by a program such as alignment.
  • GENENETYX made by GENETYX
  • DNASIS Pro made by Hitachi Solutions
  • amino acid sequence identity when two or more amadoriases are aligned, positions of amino acids which are identical in the two or more amadoriases can be determined. Based on such information, the same region in the amino acid sequence can be determined.
  • % identity refers to the total number of amino acids in the alignable region as a denominator when alignment of two or more amino acid sequences is performed using an algorithm such as Blosum 62, It refers to the percentage of the number of positions occupied by the same amino acid as a molecule. Therefore, in general, when there is a region in which two or more amino acid sequences show no identity at all, for example, in the case where an additional sequence with no identity at the C terminus is found in one amino acid sequence, the region without such identity. Is not used to calculate percent identity because it is not possible to align.
  • the positions of amino acids that are similar in two or more amadoriases can be determined.
  • CLUSTALW can be used to align multiple amino acid sequences, in this case using Blosum 62 as an algorithm and calling amino acids that are judged to be similar when multiple amino acid sequences are aligned as similar amino acids There is.
  • the amino acid substitution may be by substitution between such similar amino acids.
  • Such an alignment makes it possible to determine, for a plurality of amino acid sequences, regions in which the amino acid sequences are identical and positions occupied by similar amino acids. Based on such information, homologous regions (conserved regions) in the amino acid sequence can be determined.
  • homologous region refers to a region in which the amino acids at corresponding positions of a reference amadoriase and the reference amadoriase are identical or consist of similar amino acids when two or more amadoriases are aligned. It refers to a region consisting of 3 or more, 4 or more, 5 or more, 6 or more, 7 or more, 8 or more, 9 or more or 10 or more amino acids. For example, in FIG. 1, an amadoriase was aligned in which the sequence identity of the full-length amino acid sequence is 74% or more based on the amadoriase of SEQ ID NO: 1.
  • positions 10 to 32 consist of identical or similar amino acids based on Coniochaeta sp.-derived amadoriase shown in SEQ ID NO: 1, and thus correspond to a homologous region.
  • Positions 423 and 431 may correspond to homologous regions.
  • the homologous region of amadoriase is a region consisting of these positions.
  • positions corresponding to these positions in SEQ ID NO: 1 may also correspond to the homology regions.
  • the homology region of amadoriase is 11 to 32, 36 to 41, 50 to 52, 54 to 58, 84 based on Coniochaeta sp. Derived amadoriase represented by SEQ ID NO: 1 -86, 88-90, 145-150, 157-168, 202-205, 207-212, 215-225, 236-248, 258-261, 266-268, 270 It is a region consisting of the amino acid sequences of -273, 275-287, 347-354, 357-363, 370-383, 385-387 and 405-410.
  • the homology region of the amadoriase is 10th to 31st, 35th to 40th, 49th to 51st, 53 to 57 of SEQ ID NO: 45 based on Americlyase derived from Emericella nidulans shown in SEQ ID NO: 45 Positions 83-85, 87-89, 144-149, 156-167, 202-205, 207-212, 215-225, 236-248, 258-261, 266-268 The region consists of the amino acid sequences of positions 270-273, 275-287, 347-354, 357-363, 370-383, 385-387 and 405-410. The same applies to SEQ ID NO: 11, which is the source of SEQ ID NO: 45.
  • the homology region of the amadoriase is 11-18, 20-32, 50-52, 54-58, 266-268 relative to the amadoriase derived from Coniochaeta sp. It is a region consisting of the amino acid sequences at positions 270-273, 277-286 and 370-383.
  • the homology region of the amadoriase is 10th to 17th, 19th to 31st, 49th to 51st, 53 to 57 of SEQ ID NO: 45 based on Americlyase derived from Emericella nidulans shown by SEQ ID NO: 45 It is a region consisting of the amino acid sequences at positions 266-268, 270-273, 277-286, and 370-383. The same applies to SEQ ID NO: 11, which was the source of SEQ ID NO: 45.
  • amadoriase Certain amino acid residues of amadoriase are known to interact with the sugar moiety (eg, fructosyl group) of a substrate. And such amino acid residues are highly conserved in various amadoriases.
  • the amino acid at the position corresponding to position 239 of SEQ ID NO: 1 is tryptophan, phenylalanine or tyrosine
  • the amino acid at the position corresponding to position 282 of SEQ ID NO: 1 is glutamic acid
  • the amino acid at the position corresponding to position 376 is glycine
  • the amino acid at the position corresponding to position 418 of SEQ ID NO: 1 is arginine.
  • These amino acid residues are known to recognize the sugar moiety (fructosyl group) of the substrate (J. Biol. Chem., 283, 27007-27016 (2008); Proteins, 84, 744-758 (2016) )).
  • Amadoriases are known to bind to coenzymes through specific amino acid sequence motifs.
  • the motif sequence that binds to coenzyme FAD is Gly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly (where Xaa represents any amino acid) (Eur. J. Biochem., 242, 499-505 (1996)), which is highly conserved in various FAD-linked amadoriases.
  • the same motif sequence is found in the amino acid sequence at the position corresponding to positions 15 to 20 of SEQ ID NO: 1.
  • the amadoriase is such that the amino acid sequence at the position corresponding to positions 15 to 20 of SEQ ID NO: 1 is Gly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly (wherein Xaa represents any amino acid) .
  • the amino acid at the position corresponding to position 60 of SEQ ID NO: 1 be glycine in order for the amadoriase to use not only glycated amino acids but also glycated peptides (WO 2012/018094) ).
  • the amino acid at the position corresponding to position 60 of SEQ ID NO: 1 in amadoriase is not serine, glutamic acid, histidine or glutamine.
  • the glycosylated hemoglobin oxidase variant of the present invention has 50% or more, 55% or more, 60% or more, 61% or more, 62% or more, 62% or more when aligned with the amadoriase having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 , 63% or more, 64% or more, 65% or more, 66% or more, 67% or more, 68% or more, 69% or more, 70% or more, 71% or more, 72% or more, 73% or more, 74% or more, 75 %, 76% or more, 77% or more, 78% or more, 79% or more, 80% or more, 81% or more, 82% or more, 83% or more, 84% or more, 85% or more, 86% or more, 87% or more , 88% or more, 89% or more, 90% or more, 91% or more, 92% or more, 93% or more, 94% or more, 95% or more, 96% or more, 97% or more, 98% or more, 90% or
  • amino acid sequence in the homologous region of the glycosylated hemoglobin oxidase variant of the present invention is 65%, 66%, 67%, 68%, 69%, 70%, 71% with the amino acid sequence of the homologous region in SEQ ID NO: 1 , 72%, 73%, 74%, 75%, 76%, 77%, 78%, 80%, 81%, 82%, 82%, 83%, 84%, 85%, 86%, 87%, 88 %, 89%, 90%, 91%, 92%, 93%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, eg, 99% or more of the sequence identity.
  • the glycated hemoglobin oxidase variant of the present invention has one or more amino acids modified or mutated at positions other than the positions corresponding to positions 113, 109, 106 and 102 of SEQ ID NO: 1 Or the relative activity [HbS1c / HbA1c] and / or the relative activity [HbC1c / HbA1c] is increased as compared to the A1cOX having the amino acid sequence deleted or substituted, added, and / or inserted, and before modification ing.
  • one or several amino acids are 1 to 15, 1 to 10, 1 to 7, 1 to 5, 1 to 4, for example 1 to 3, for example 1 or 2 amino acids. Say.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention is (i) amino acids at positions corresponding to positions 113, 109, 106 and / or 102 in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 when aligned with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 are glutamic acid, alanine, aspartic acid, Modified into an amino acid selected from the group consisting of serine, threonine, asparagine, glutamine, cysteine, glycine, proline, valine, isoleucine, leucine, methionine, phenylalanine, tyrosine, and tryptophan, (ii) in (i), one or several amino acids at positions other than the positions corresponding to positions 113, 109, 106 and 102 in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 are substituted, deleted or added Consisting of the amino acid sequence (iii) In the above (i) or (ii), the full-length amino acids at positions
  • the full-length amino acid sequence of the glycated hemoglobin oxidase is 70% or more, 71% or more, 72% or more with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 11 or SEQ ID NO: 45 73% or more, 74% or more, 75% or more, 76% or more, 77% or more, 78% or more, 80% or more, 81% or more, 82% or more, 83% or more, 84% or more, 85% or more More than or 90% or more
  • the column is Gly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly (where Xaa represents any amino acid).
  • This glycated hemoglobin oxidase is (a) the ratio of the activity to HbS1c ⁇ F8P to the activity to HbA1c ⁇ F8P is increased as compared to the A1c oxidase before modification, ie, the relative activity [HbS1c / HbA1c] is increased, and / or (b) The ratio of the activity to HbC1c ⁇ F8P to the activity to HbA1c ⁇ F8P is increased as compared to the A1c oxidase before modification, ie, the relative activity [HbC1c / HbA1c] is increased, and And / or (c) The ratio of the activity to HbS1c ⁇ F8P to the activity to HbA1c ⁇ F8P, ie, the relative activity [HbS1c / HbA1c] is at least 0.45, at least 0.5, at least 0.6, at least 0.7, at least 0.8
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention is (i) When the amino acid sequence of glycated hemoglobin oxidase is aligned with the amino acid sequence described in SEQ ID NO: 1, it corresponds to positions 113, 109, 106 and / or 102 in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 From the group consisting of glutamic acid, aspartic acid, alanine, serine, threonine, asparagine, glutamine, cysteine, glycine, proline, valine, isoleucine, leucine, methionine, phenylalanine, tyrosine, and tryptophan from the amino acid at position 1 Modified to a selected amino acid, and (a) the ratio of the activity to HbS1c ⁇ F8P to the activity to HbA1c ⁇ F8P, ie, the relative activity [HbS1c / HbA1c] is at least
  • the present inventors found that glycated hemoglobin oxidase having an amino acid substitution for an amino acid that is not a positively charged amino acid at a position corresponding to 102, 106, 109, or 113 of SEQ ID NO: It was found that relative activity [HbS1c / HbA1c] and / or relative activity [HbC1c / HbA1c] was increased as compared to the enzyme.
  • amino acids for amino acids that are not positively charged at positions corresponding to positions 102, 106, 109, or 113 in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 It is understood that other A1cOx having substitution also increases relative activity [HbS1c / HbA1c] and / or relative activity [HbC1c / HbA1c] and acts on glycated hemoglobin of various genotypes and can be used for the measurement. .
  • the present invention comprises the steps of culturing a strain capable of producing glycated hemoglobin oxidase under conditions that can express the glycated hemoglobin oxidase, and isolating the glycated hemoglobin oxidase from the culture or culture solution.
  • the present invention provides a method for producing glycated hemoglobin oxidase.
  • host cells transformed with a vector into which a gene encoding glycated hemoglobin oxidase of the present invention has been incorporated can be used.
  • the conditions under which glycated hemoglobin oxidase can be expressed mean that the glycated hemoglobin oxidase gene is transcribed and translated to produce a polypeptide encoded by the gene.
  • sodium chloride or dihydrogen phosphate is added to one or more nitrogen sources such as yeast extract, tryptone, peptone, meat extract, corn steep liquor or soybean or wheat bran exudates.
  • nitrogen sources such as yeast extract, tryptone, peptone, meat extract, corn steep liquor or soybean or wheat bran exudates.
  • inorganic salts such as potassium, dipotassium hydrogen phosphate, magnesium sulfate, magnesium chloride, ferric chloride, ferric sulfate or manganese sulfate, and if necessary, add carbohydrate raw materials, vitamins, etc. as needed Is used.
  • the target enzyme can be obtained by adding to the culture medium a substrate on which the glycated hemoglobin oxidase can act or a similar compound thereof, such as glycated amino acids, glycated peptides, glycated protein degradation products, or glycated proteins such as glycated hemoglobin or glycated albumin.
  • the amount of production can be improved.
  • the initial pH of the culture medium is suitably adjusted to pH 7-9.
  • the culture is carried out by agitating submerged culture, shaking at a culture temperature of 20 to 42 ° C., preferably at about 25 to 37 ° C. for 4 to 24 hours, more preferably at about 25 to 37 ° C. for 8 to 16 hours. It is preferable to carry out by culture, static culture and the like.
  • the cells After completion of the culture, in order to collect glycated hemoglobin oxidase from the culture, it can be obtained using a conventional enzyme collection means.
  • the cells are subjected to ultrasonic destruction treatment, grinding treatment, etc. according to a conventional method, or this enzyme is extracted using a lytic enzyme such as lysozyme, or shaken or left in the presence of toluene etc.
  • the enzyme can be excreted out of the fungus.
  • this solution is filtered, centrifuged or the like to remove the solid portion, and if necessary nucleic acid is removed by streptomycin sulfate, protamine sulfate, manganese sulfate or the like, to which ammonium sulfate, alcohol, acetone or the like is added. Fractionate, collect precipitate and obtain crude enzyme.
  • a purified enzyme preparation further than a crude enzyme for example, gel filtration using Sephadex, Superdex or Ultrogel etc., ion exchange carrier, hydrophobic carrier, adsorption elution using hydroxyapatite, polyacrylamide gel etc.
  • electrophoresis a sedimentation method such as sucrose density gradient centrifugation, an affinity chromatography method, a molecular sieve membrane or a hollow fiber membrane, etc.
  • a purified glycated hemoglobin oxidase enzyme preparation can be obtained.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention preferably recognizes HbA1c as a substrate and recognizes glycated HbS and / or glycated HbC, As a function, it oxidizes the ⁇ chain of glycated hemoglobin to form hydrogen peroxide, Has an optimum pH range between pH 6 and 8, Have a working pH range in the range of pH 5 to 9, The working temperature is 25-40 ° C, The molecular weight on SDS-PAGE may be about 45-55 kDa, such as about 48-50 kDa.
  • the glycated hemoglobin oxidase of the present invention may have a residual activity of 50% or more, 60% or more, 70% or more, for example 80% or more after heat treatment at 30 to 40 ° C., for example, 35 ° C. for 30 minutes.
  • the glycated hemoglobin oxidase variant of the present invention excludes amadoriases which do not show any activity against glycated hemoglobin.
  • the present invention provides a reagent composition, measurement reagent or kit for measuring glycated hemoglobin, which comprises glycated hemoglobin oxidase.
  • the present invention provides a reagent composition, measurement reagent or kit for measuring HbS1c or HbC1c, which comprises glycated hemoglobin oxidase.
  • the composition, reagent or kit may contain a reagent for measuring a reduced compound, a reagent for measuring hydrogen peroxide, a buffer, a surfactant, salts, a preservative, and the like.
  • solubilizers, stabilizers, reactivity improvers, glycated hemoglobin modifiers, reducing agents, bovine serum albumin, saccharides (glycerin, lactose, sucrose, etc.) may be added.
  • the composition, reagent or kit may, if necessary, be added with other known stabilizers, contaminating agents, and the like.
  • Techniques used in various conventional reagents and kits for measuring glycated peptides by an enzymatic method using a protease or the like that acts on glycated hemoglobin may be appropriately modified and used in the composition, reagent or kit of the present invention it can.
  • the composition, measurement reagent or kit of the present invention may or may not contain a protease.
  • the surfactant may, for example, be a nonionic surfactant or an ionic surfactant such as a cationic surfactant, an anionic surfactant or an amphoteric surfactant.
  • nonionic surfactant examples include polyoxyethylene alkyl ether, fatty acid sorbitan ester, alkyl polyglucoside, fatty acid diethanolamide, alkyl monoglyceryl ether and the like.
  • alkyl trimethyl ammonium salt dialkyl dimethyl ammonium salt, alkyl benzyl dimethyl ammonium salt, pyridinium salt such as alkyl pyridinium salt, phosphonium salt such as alkyl phosphonium salt, imidazolium salt such as alkyl imidazolium Salts, isoquinonium salts such as alkyl isoquinonium salts and the like.
  • the reagent for measuring hydrogen peroxide may include peroxidase and / or a chromogenic substrate.
  • a chromogenic substrate in addition to 4-aminoantipyrine, for example, ADOS (N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -m-anisidine), ALOS (N-ethyl-N- (2-) Hydroxy-3-sulfopropyl) aniline), TOOS (N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -m-toluidine sodium), DA-67 (10- (carboxymethylaminocarbonyl) -3, Examples include 7-bis (dimethylamino) -phenothiazine), DA-64 (N- (carboxymethylaminocarbonyl) -4, 4′-bis (dimethylamino) -diphenylamine) and the like.
  • the present invention provides a method of measuring glycated hemoglobin.
  • Glycated hemoglobin measurement can be a qualitative or quantitative method.
  • the determination method may include the steps of contacting a sample containing glycated hemoglobin with the glycated hemoglobin oxidase of the present invention, and measuring the reaction product or the consumable.
  • the glycated hemoglobin may be native or denatured.
  • the term "contacting" as used in the quantitative method includes all aspects in which the enzyme and the sample are physically brought together so that glycated hemoglobin oxidase can catalyze the oxidation reaction of glycated hemoglobin. Not only mixing of glycated hemoglobin and glycated hemoglobin, but also an embodiment in which a solution sample containing glycated hemoglobin is added or dropped to an enzyme carried on a solid phase carrier.
  • the present invention provides a method of measuring HbS1c or HbC1c. This method comprises the steps of causing glycated hemoglobin oxidase to act on a sample that may contain HbS1c or HbC1c. In one embodiment, the amount of reduced compound produced by the action of glycated hemoglobin oxidase is measured. In one embodiment, the reduced compound to be measured is hydrogen peroxide.
  • sample can be any biological sample that may contain glycated hemoglobin, such as a sample derived from blood, body fluid, lymph fluid and the like.
  • the sample may be appropriately processed.
  • denatured glycated hemoglobin may be used.
  • modification treatment include surfactant treatment, heat treatment, acid / alkali modification treatment, and a combination thereof.
  • the absorbance of the luminescent substrate detected decreases proportionally as the amount of glycated hemoglobin added decreases, the glycated hemoglobin concentration range
  • a calibration curve can be prepared in advance by performing regression analysis such as least squares method from measured values such as absorbance of a control containing glycated hemoglobin whose concentration is known.
  • the glycated hemoglobin concentration in the sample can be quantified by plotting measured values of the sample whose glycated hemoglobin concentration is unknown with respect to the prepared calibration curve.
  • the time for which glycated hemoglobin oxidase is allowed to act on a sample containing glycated hemoglobin is, for example, 5 seconds or more, 10 seconds or more, 20 seconds or more, 30 seconds or more, 1 minute or more, less than 60 minutes, less than 30 minutes, less than 10 minutes, for example 5 It may be less than a minute, for example, 0.5 to 60 minutes, 1 to 30 minutes, 1 to 20 minutes, for example, 1 to 10 minutes, for example, 1 to 5 minutes.
  • the action temperature depends on the optimum temperature of the enzyme used, it is, for example, 20 to 45 ° C., and the temperature used for a normal enzyme reaction can be appropriately selected.
  • the amount of enzyme of glycated hemoglobin oxidase to be used depends on the amount of substrate contained in the sample solution, for example, the final concentration is 0.1 to 50 U / mL, for example 0.2 to 10 U / mL. It can be added.
  • the pH at which it is allowed to act can be adjusted using a buffer in consideration of the pH at which the amadoriase can act, for example, the optimum pH.
  • the reaction pH is, for example, 3 to 11, 5 to 9, eg 6 to 8.
  • the measurement of hydrogen peroxide can be carried out simultaneously with the step of producing hydrogen peroxide and can proceed simultaneously with the action of the amadoriase.
  • Consumables may be measured instead of products, and the consumables to be measured include dissolved oxygen, and the amount of dissolved oxygen in the reaction solution can be measured using a dissolved oxygen meter or the like.
  • HbA1c type alpha F 8 P HbS 1 c type alpha F 8 P, or Hb C 1c type alpha F 8 P
  • a measuring method is not restricted to this.
  • substrates may be synthetic substrates (manufactured by Peptide Laboratories).
  • the enzyme titer is defined as 1 U, which is the amount of enzyme that generates 1 ⁇ mol of hydrogen peroxide in 1 minute when HbA1c type ⁇ F8P is measured as a substrate.
  • glycated peptides such as ⁇ FV and ⁇ FVH can be, for example, those synthesized and purified based on the method of Sakagami et al. (Japanese Patent Laid-Open No. 2001-95598).
  • ⁇ F6P is obtained by treating HbA1c with endoproteinase Glu-C (Clin. Chem., 43, 1994-1951 (1997)). It is also possible to use ⁇ F6P (manufactured by Peptide Laboratories) provided as a synthetic substrate.
  • Reagent 1 5 U / ml peroxidase (Toyobo Co., Ltd.), 0.1 M phosphate buffer solution containing 0.49 mM 4-aminoantipyrine (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) pH 6.5
  • Reagent 2 Dissolve 500 mg of TOOS solution in 15 mM TOOS (N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -m-toluidine sodium, Dojin Chemical Laboratory) solution in deionized water, and add to 100 ml. Settle.
  • Reagent 3 300 ⁇ MH b A 1 c type, Hb C 1 c type, or H b S 1 c type ⁇ F 8 P (manufactured by Peptide Laboratories) solution (final concentration 10 ⁇ M)
  • B Activity measurement method Mix 2.7 ml of reagent 1, 100 ⁇ l of reagent 2 and 100 ⁇ l of enzyme solution, and preheat at 37 ° C. for 5 minutes. Then, 100 ⁇ l of reagent 3 is added and mixed well, and the change with time of absorbance at 555 nm is observed at 37 ° C.
  • the control solution measures the change ( ⁇ A0) per minute of absorbance at 555 nm in the same manner as described above except that 100 ⁇ l of ion exchanged water is added instead of 100 ⁇ l of reagent 3.
  • the micromole number of hydrogen peroxide generated per minute at 37 ° C. is defined as the activity unit (U) in the enzyme solution, and is calculated according to the following equation.
  • the present inventors have found a new problem that glycated hemoglobin oxidase capable of coping with HbA1c as well as HbS1c and HbC1c is necessary, and by introducing specific amino acid substitution into A1cOX to produce glycated hemoglobin oxidase I solved this problem.
  • the mutations of the present invention can be combined as appropriate. Further, further modifications can be made based on the findings of the present invention.
  • the present invention provides a method of producing glycated hemoglobin oxidase by modifying amadoriase or A1c oxidase, which comprises the following steps: (i) obtaining an amadoriase gene or an A1c oxidase gene, (ii) Amadoriase gene or A1c oxidase gene is incorporated into the vector, the host cell is transformed, amadoriase or A1c oxidase is expressed, and the expression product is isolated, (iii) relative activity of the expression product [HbS1c / HbA1c] and And / or the relative activity [HbC1c / HbA1c] is measured, (iv) when the amino acid sequence of amadoriase or A1c oxidase is aligned with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, position 113 in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 The amino acid corresponding to position 109, position
  • the evaluation substrate in the steps (iii) and (vi) may be ⁇ F8P for convenience, but other fructosyl substrates having a chain length of 6 amino acids or more, HbA1c, HbS1c, HbC1c may be used.
  • the culture was collected by centrifugation at 10,000 ⁇ g for 1 minute to obtain cells.
  • the recombinant plasmid pKK223-3-CFP-T7-H38-GY is extracted and purified from this cell using GenElute Plasmid Miniprep Kit (Sigma-Aldrich), and 2.5 ⁇ g of the recombinant plasmid pKK223 is used.
  • GenElute Plasmid Miniprep Kit Sigma-Aldrich
  • the resulting DNA was treated with a restriction enzyme DpnI (manufactured by NEW ENGLAND BioLabs) to cleave the remaining template DNA, and then E. coli JM109 was transformed and developed in LB-amp agar medium. The grown colonies were inoculated in LB-amp medium, shake cultured, and plasmid DNA was isolated by a conventional method.
  • the nucleotide sequence of the amadoriase-encoding DNA in the plasmid was determined using Multicapillary DNA analysis system Applied Biosystems 3130x1 Genetic Analyzer (manufactured by Life Technologies) to confirm that the mutation was introduced.
  • a recombinant plasmid (pKK223-3-CFP-T7-H39-1M) encoding a modified amadoriase into which the objective mutation was introduced was obtained.
  • the obtained DNA was treated with a restriction enzyme DpnI (manufactured by NEW ENGLAND BioLabs) to cleave the remaining template DNA.
  • DpnI restriction enzyme
  • Add 2 ⁇ l of Dpn I-treated reaction solution, 5 ⁇ l of Ligation high Ver. 2 (Toyobo Co., Ltd.) and 5 Units of T4 Polynucleotide Kinase (Toyobo Co., Ltd.) to a total volume of 15 ⁇ l with sterile water and perform ligation reaction at 16 ° C for 1 hour
  • the resulting circular DNA was used to transform E. coli JM109 and developed on LB-amp agar medium.
  • the grown colonies were inoculated in LB-amp medium, shake cultured, and plasmid DNA was isolated by a conventional method.
  • the nucleotide sequence of the amadoriase-encoding DNA in the plasmid was determined using Multicapillary DNA analysis system Applied Biosystems 3130x1 Genetic Analyzer (manufactured by Life Technologies) to confirm that the mutation was introduced.
  • a recombinant plasmid (pKK223-3-CFP-T7-H39-3M) encoding a modified amadoriase into which the objective mutation was introduced was obtained.
  • the resulting DNA was treated with a restriction enzyme DpnI (manufactured by NEW ENGLAND BioLabs) to cleave the remaining template DNA, and then E. coli JM109 was transformed and developed in LB-amp agar medium. The grown colonies were inoculated in LB-amp medium, shake cultured, and plasmid DNA was isolated by a conventional method.
  • the nucleotide sequence of the amadoriase-encoding DNA in the plasmid was determined using Multicapillary DNA analysis system Applied Biosystems 3130x1 Genetic Analyzer (manufactured by Life Technologies) to confirm that the mutation was introduced.
  • a recombinant plasmid (pKK223-3-CFP-T7-H40-3M) encoding a modified amadoriase into which the objective mutation was introduced was obtained.
  • each crude enzyme solution containing the prepared mutant amadoriase is applied to make the amadoriase an anion exchange resin Combined with Thereafter, 20 column volumes are sent with 10 mM potassium phosphate buffer (pH 7.5) to elute contaminating proteins, and then the NaCl concentration in 10 mM potassium phosphate buffer (pH 7.5) is 0 mM to 250 mM.
  • the protein bound to the resin was eluted with a linear increase in pH and fractions showing amadoriase activity were collected.
  • the resulting fractions exhibiting amadoriase activity were concentrated by Amicon Ultra Ultracel-30K (manufactured by Millipore), and purified by HiLoad 26/60 Superdex 200.
  • 10 mM potassium phosphate buffer (pH 7.0) containing 150 mM NaCl was used for equilibration and elution of the resin.
  • the purity of each eluted fraction was evaluated by SDS-PAGE, and the fraction not containing contaminating proteins was collected and used as a purified preparation of amadoriase. It was confirmed that the substrate specificities of H40 and H40-3M were the same.
  • the K102A and K102E mutations improved the relative activity of the amadoriase to the HbS1c type substrate.
  • the relative activity [HbS1c / HbA1c] increased about 1.97 times for the K102A mutant and about 1.74 times for the K102E mutant.
  • Tests were performed on three substrates for additional variants.
  • the activity of each of the various purified enzyme preparations obtained was measured using HbA1c, HbS1c, and HbC1c ⁇ F8P as a substrate.
  • the results are shown in the following table.
  • the relative activity to HbS1c type ⁇ F8P and HbC1c type ⁇ F8P is shown, where the activity of each enzyme to HbA1c type ⁇ F8P is 100%.
  • the K106A, K106D, K113A, K113EK113S, K113T, K113N, K113Q, K113D and K113H mutations improved the relative activity of the amadoriases to HbS1c and HbC1c substrates.
  • the modification increased the relative activity [HbS1c / HbA1c] by about 2.1 times to about 3.3 times, and the relative activity [HbC1c / HbA1c] increased by about 2.8 times to about 9.4 times.
  • the specific activity of each mutant to each substrate was confirmed to be at least 20 mU / mg.
  • amino acids other than the positively charged amino acids such as D, E, S, T, N, Q, C, G, P
  • D, E, S, T, N, Q, C, G, P can be used at positions K113, K106 and K102.
  • the relative activity will be improved also by mutating to A, V, I, L, M, F, Y, W.
  • mutating the K113 position to C, G, P, V, I, L, M, F, Y or W is also expected to improve the relative activity.
  • mutating position K106 to E, S, T, N, Q, C, G, P, V, I, L, M, F, Y or W is expected to improve the relative activity as well.
  • mutating to D, S, T, N, Q, C, G, P, V, I, L, M, F, Y or W is expected to improve the relative activity as well.
  • SEQ ID NO: 45 is a glycated hexapeptide oxidase derived from Emericella nidulans (FPOX-42, herein referred to as En 42 FX) disclosed in WO 2015/005258. (SEQ ID NO: 46) and is encoded by the gene of SEQ ID NO: 46.
  • the following mutations were introduced using pET22b-En42FX obtained by subcloning the En42FX gene into a pET22b plasmid vector (for the preparation method, see WO 2016/063984) as a template, and using the following primers.
  • Plasmid preparation was carried out by the same method as (1. Preparation of recombinant plasmid encoding Amadoriase derived from Coniochaeta) and (2. Site-specific modification of recombinant plasmid encoding Amadoriase derived from Coniochaeta). PCR at the time of mutation introduction was carried out using pET22b-En42FX as a template and the following primers, according to the method described in (2. Site-specific modification of a recombinant plasmid encoding an amadoriase derived from Coniochaeta genus). PCR reaction conditions, sequence confirmation of introduced mutation, etc. were carried out under the same conditions as (2.
  • the plasmid confirmed to have introduced the target mutation was transduced into E. coli BL21 (DE3) strain to obtain each modified En42FX producing strain.
  • Each modified En42FX producing strain was cultured at 50 ° C. for 16 hours in 50 ml of LB-amp medium supplemented with 0.1 mM IPTG. Thereafter, each bacterial cell was washed with 10 mM phosphate buffer, pH 7.0, sonicated, and centrifuged at 15,000 rpm for 10 minutes to prepare 4.0 ml of each crude enzyme solution. Each crude enzyme solution was concentrated to approximately 1.0 ml using Amicon Ultra Ultracel-30K (manufactured by Millipore) and used for activity measurement.
  • the R105A, R105S, R105L, R105N, R105N, R105Q, R105D, R105E, R108A, R108S, R108Q, R108D, R108E, S112D, S112E mutations against En42FX are amadoriases against the HbS1c and HbC1c type substrates of amadoriase.
  • the relative activity was improved.
  • the modification increased the relative activity [HbS1c / HbA1c] by about 1.4 times to about 3.7 times, and the relative activity [HbC1c / HbA1c] increased by about 1.1 times to about 10.8 times.
  • R105 and R108 can be amino acids other than positively charged amino acids (K, H, R), such as D, E, S, T, N, Q, C, G, P, A, V, It is expected that the relative activity [HbS1c / HbA1c] and the relative activity [HbC1c / HbA1c] will be improved similarly by mutating to I, L, M, F, Y, W. It is expected that the relative activity [HbS1c / HbA1c] and the relative activity [HbC1c / HbA1c] will be improved by mutating S112 to negatively charged amino acids (D, E).
  • K, H, R positively charged amino acids
  • the A1c oxidase introduced with a mutation that improves the relative activity to HbS1c type and / or HbC1c type ⁇ F8P found in the present invention is considered to have improved relative activity to glycated HbS and / or glycated HbC as well as HbA1c Be This can be used to measure a group of subjects having various genotypes of glycated hemoglobin, and is expected to have industrial utility value.
  • SEQ ID NO: 1 Amadoriase (CFP-T7) from the genus Coniochaeta SEQ ID NO: 2 CFP-T7 gene SEQ ID NO: 3 Amadoriase from Eupenicillium terrenum SEQ ID NO: 4 Ketoamine oxidase from Pyrenocha sp. SEQ ID NO: 5 Ketoamine oxidase from Arthrinium sp.
  • SEQ ID NO: 6 Ketoamine oxidase from Curvularia clavata SEQ ID NO: 7 Ketoamine Oxidase from Neocosmospora vasinfecta SEQ ID NO: 8 Fructosyl Amino Acid Oxidase from Cryptococcus neoformans SEQ ID NO: 9 Fructosyl Peptide Oxidase from Phaeosphaeria nodorum SEQ ID NO: 10 Fructosyl Amino Acid Oxidase from Aspergillus nidulans SEQ ID NO: 11 Fructosyl from Emericella nidulans Peptide oxidase SEQ ID NO: 12 Fructosyl amino acid oxidase from Ulocladium sp.

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Abstract

糖化された異常ヘモグロビンを含む試料についても、測定誤差の少ない、或いは測定値と真の値との乖離を生じない糖化ヘモグロビンオキシダーゼを提供すること。　配列番号１のアミノ酸配列における１１３位、１０９位、１０６位又は１０２位に対応する位置のアミノ酸を正電荷を帯びたアミノ酸以外のアミノ酸、例えばグルタミン酸、アラニン、又はアスパラギン酸に置換した糖化ヘモグロビンオキシダーゼ並びにこれを用いた糖化ヘモグロビンの測定方法及び測定試薬キット。種々の遺伝型に対応し、糖化された異常ヘモグロビンを含む試料についても精度よく糖化ヘモグロビンを測定することができる。

Description

糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体及び測定方法
　本発明は、複数の糖化ヘモグロビンに対する活性を有する糖化ヘモグロビンオキシダーゼ、及びこれを用いた糖化ヘモグロビン測定方法に関する。
　糖化タンパク質は、グルコースなどのアルドース（アルデヒド基を潜在的に有する単糖およびその誘導体）のアルデヒド基と、タンパク質のアミノ基が非酵素的に共有結合を形成し、アマドリ転移することにより生成したものである。
　中でも血糖コントロールマーカーとして、ヘモグロビンＡ１ｃ（ＨｂＡ１ｃ）が注目されている。ＨｂＡ１ｃは、へモグロビン「β鎖」のＮ末端（アミノ末端）のＶａｌ（バリン）の、α－アミノ基にグルコースが結合したタンパク質である。血液中のＨｂＡ１ｃ濃度は、過去の一定期間の平均血糖値を反映することから、ＨｂＡ１ｃの値は糖尿病の症状の診断や管理において重要な指標となっている。
　このＨｂＡ１ｃを迅速かつ簡便に測定する方法として、従来、アマドリアーゼを用いる数種類の酵素的方法が知られている。
　アマドリアーゼは、酸素の存在下で、イミノ２酢酸若しくはその誘導体（「アマドリ化合物」とも言う）を酸化して、グリオキシル酸若しくはα－ケトアルデヒド、アミノ酸若しくはペプチド、および過酸化水素を生成する反応を触媒する酵素の総称である。アマドリアーゼは、ＨｂＡ１ｃを酵素的方法により測定するために有用な酵素として知られている。アマドリアーゼにより酸化される基質としては、例えば、α－フルクトシルバリルヒスチジン（以降αＦＶＨと表す）が知られている。
　アマドリアーゼはこれまでに、細菌、酵母、真菌から見出されており、例えば、コニオカエタ(Coniochaeta)属、ユーペニシリウム(Eupenicillium)属、ピレノケータ(Pyrenochaeta)属、アルスリニウム(Arthrinium)属、カーブラリア(Curvularia)属、ネオコスモスポラ(Neocosmospora)属、クリプトコッカス(Cryptococcus)属、フェオスフェリア(Phaeosphaeria)属、アスペルギルス(Aspergillus)属、エメリセラ(Emericella)属、ウロクラディウム(Ulocladium)属、ペニシリウム(Penicillium)属、フザリウム(Fusarium)属、アカエトミエラ(Achaetomiella)属、アカエトミウム(Achaetomium)属、シエラビア(Thielavia)属、カエトミウム(Chaetomium)属、ゲラシノスポラ(Gelasinospora)属、ミクロアスカス(Microascus)属、レプトスフェリア(Leptosphaeria)属、オフィオボラス(Ophiobolus)属、プレオスポラ(Pleospora)属、コニオケチジウム(Coniochaetidium)属、ピチア(Pichia)属、デバリオマイセス(Debaryomyces)属、コリネバクテリウム(Corynebacterium)属、アグロバクテリウム(Agrobacterium)属、アルスロバクター(Arthrobacter)属由来のアマドリアーゼが報告されている（例えば、特許文献１、６～１５、非特許文献１～９参照。）。これらの属のことを本明細書においてコニオカエタ(Coniochaeta)属等と呼ぶことがある。なお、上記報告例の中で、アマドリアーゼは、文献によってはケトアミンオキシダーゼやフルクトシルアミノ酸オキシダーゼ、フルクトシルペプチドオキシダーゼ、フルクトシルアミンオキシダーゼ等の表現で記載されている場合もある。
　上述のような各種のアマドリアーゼを用いて、ＨｂＡ１ｃを迅速かつ簡便に測定する方法としては、プロテアーゼまたはペプチダーゼ（以下、プロテアーゼ等という）の切り出し用酵素でＨｂＡ１ｃを分解し、ＨｂＡ１ｃのβ鎖アミノ末端より特定の測定用物質を遊離させ、遊離した測定用物質を、上述のようなアマドリアーゼを用いて定量する方法が知られている（例えば、特許文献１～７参照）。
　具体的には、ＨｂＡ１ｃを特定のプロテアーゼ等で分解し、そのβ鎖アミノ末端よりαＦＶＨを遊離させたのちに、遊離したαＦＶＨを定量する方法が知られている。
　さらに、ＨｂＡ１ｃをプロテアーゼで消化し、α－フルクトシルヘキサペプチド（α－フルクトシルバリルヒスチジルロイシルスレオニルプロリルグルタミン酸、以降αＦ６Ｐと表す）を遊離させたのちに、遊離したαＦ６Ｐを定量する方法がある（例えば、特許文献１６－１８参照）。この方法は、ＩＦＣＣ（International Federation of Clinical Chemistry and Laboratory Medicine）により定められたＨｂＡ１ｃ測定法（非特許文献１０参照）に則った、酵素によるＨｂＡ１ｃの測定方法である。
　さらに、プロテアーゼでの前処理を必要とせず、直接ＨｂＡ１ｃのβ鎖を酸化して過酸化水素を生成させるアマドリアーゼと、それを利用したＨｂＡ１ｃ測定法が報告されている（特許文献２０、２１、２２）。このようなアマドリアーゼは、Ａ１ｃオキシダーゼ（A1cOX）と呼ぶことができる。
国際公開第２００４／１０４２０３号 国際公開第２００５／４９８５７号 特開２００１－９５５９８号公報 特公平０５－３３９９７号公報 特開平１１－１２７８９５号公報 国際公開第９７／１３８７２号 特開２０１１－２２９５２６号公報 特開２００３－２３５５８５号公報 特開２００４－２７５０１３号公報 特開２００４－２７５０６３号公報 特開２０１０－３５４６９号公報 特開２０１０－５７４７４号公報 国際公開第２０１０／４１７１５号 国際公開第２０１０／４１４１９号 国際公開第２０１１／１５３２５号 国際公開第２００４／３８０３４号 国際公開第２００８／１０８３８５号 国際公開第２０１３／１６２０３５号 国際公開第２０１５／００５２５７号 国際公開第２０１５／０６０４２９号 国際公開第２０１６／１５９３８４号 国際公開第２０１５／００５２５７号 国際公開第２０１２／０１８０９４号
Biochem. Biophys. Res. Commun. 311, 104-11, 2003 Biotechnol. Bioeng. 106, 358-66, 2010 J. Biosci. Bioeng. 102, 241-3, 2006 Appl. Microbiol. Biotechnol. 74, 813-9, 2007 Eur. J. Biochem. 242, 499-505, 1996 Mar. Biotechnol. 6, 625-32, 2004 Biosci. Biotechnol. Biochem. 66, 1256-61, 2002 Biosci. Biotechnol. Biochem. 66, 2323-29, 2002 Biotechnol. Letters 27, 27-32, 2005 Jeppsson JO, et al.;Approved IFCC reference method for the measurement of HbA1c in human blood. Clin. Chem. Lab. Med. 40, 78-89,2002 J. Biol. Chem., 283, 27007-27016 (2008) Proteins, 84, 744-758 (2016)
　本発明者は、プロテアーゼでの前処理を必要とせず、直接HbA1cのβ鎖を酸化して過酸化水素を生成させるアマドリアーゼ、すなわちA1cOXを用いるHbA1c測定法を報告した（特許文献２０、２１）。そして、このような酵素を用いて種々の試験を行ったところ、A1cOXの、β鎖Ｎ末端のＶａｌのα－アミノ基が糖化されたヘモグロビンC（本明細書においてHbC1cという）やβ鎖Ｎ末端のＶａｌのα－アミノ基が糖化されたヘモグロビンS（本明細書においてHbS1cという）に対する相対活性が、HbA1cに対する活性と比較して、予想外に低いであろうことを示す知見を得た。
　すなわちモデル基質として、下記３種のα－フルクトシルオクタペプチド(αF8P)を用意した：
α-fru-V-H-L-T-P-E-E-K（本明細書においてHbA1c型αF8Pという）
α-fru-V-H-L-T-P-V-E-K（本明細書においてHbS1c型αF8Pという）
α-fru-V-H-L-T-P-K-E-K（本明細書においてHbC1c型αF8Pという）
　HbA1c型αF8Pとは、HbA1cのN末端８アミノ酸に対応する糖化基質であるα－フルクトシルバリルヒスチジルロイシルスレオニルプロリルグルタミルグルタミルリジンを意味する。HbA1c型αF8Pでは６位はグルタミン酸である（E6）。HbS1c型αF8Pでは６位がバリンである（E6V変異）。HbC1c型αF8Pでは６位がリシンである（E6K変異）。すなわちHbS1c型αF8PとHbC1c型αF8Pは第6位が変異しており、変異はそれぞれ、HbS1c及びHbC1cに対応する。
　これらの基質（10μM）に対する、A1cOXの相対活性を比較したところ、HbA1c型αF8Pに対する活性を１００％とした場合、HbS1c型αF8Pに対する活性が３９％であり、HbC1c型αF8Pに対する活性が１１％であることを見出した。
　ヘモグロビンS(HbS)は人口の一部に見られるヘモグロビンAの遺伝性のバリアントであり、へモグロビンAのβ鎖のＮ末端から数えて６つ目（すなわちN末端のバリンを１位とすると６位）のグルタミン酸がバリンとなっている（E6V変異）。またヘモグロビンC（HbC）は人口の一部に見られるヘモグロビンAの遺伝性のバリアントであり、へモグロビンAのβ鎖のＮ末端から数えて６つ目（すなわちN末端のバリンを１位とすると６位）のグルタミン酸がリシンとなっている（E6K変異）。A1cOXを用いて糖化ヘモグロビンを測定する場合、HbSやHbCの遺伝型を有する被験体については、これらの遺伝型ヘモグロビンに対応するαF8P基質の相対活性が低いことに鑑みれば、測定値が真の値と乖離する可能性がある。
　以上より、本発明者は、HbA1cのみならずHbS1cやHbC1cといった遺伝型にも対応可能な糖化ヘモグロビンオキシダーゼを提供する必要がある、という新規の課題を見出した。すなわち、本発明が解決しようとする課題は、HbA1cのみならずHbS1c及び／又はHbC1cにも作用する糖化ヘモグロビンオキシダーゼ及びこれを用いた測定方法を提供することである。
　本発明者は、鋭意研究を重ねた結果、A1cOXに特定のアミノ酸置換を導入することにより、HbA1cに対する活性と比較して、HbS1c及び／又はHbC1cに対する相対活性の向上した改変アマドリアーゼが得られることを見出し、本発明を完成させた。
　すなわち、本発明は以下を包含する。 　
[１]　HbS1cまたはHbC1cを含み得る試料に糖化ヘモグロビンオキシダーゼを作用させる工程を含む、試料中のHbS1cまたはHbC1cを測定する方法。 　
[２]　糖化ヘモグロビンオキシダーゼの作用により生じる還元型化合物の量を測定する、実施形態１に記載の方法。 　
[３]　測定される還元型化合物が過酸化水素である、実施形態２に記載の方法。 　
[４]　糖化ヘモグロビンオキシダーゼが(a)及び／又は(b)の性質を有する、実施形態１～３のいずれかに記載の方法、
(a)　HbS1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbS1c/HbA1c]が0.45以上である、
(b)　HbC1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbC1c/HbA1c]が0.15以上である。 　
[５]　糖化ヘモグロビンオキシダーゼの至適pH範囲が６～８、作用pH範囲が５～９、至適温度範囲が２５～４０℃であり、SDS-PAGE上での分子量が約４５～５５ＫＤａである、実施形態１～４のいずれかに記載の方法。 　
[６]　糖化ヘモグロビンオキシダーゼが、以下の(i)～(viii)からなる群より選択される糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体である、実施形態１～５のいずれかに記載の方法、
(i)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アスパラギン酸、アラニン、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(ii)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０９位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アラニン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(iii)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０６位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アラニン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(iv)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０２位に対応する位置のアミノ酸がアラニン、アスパラギン酸、グルタミン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(v)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位、１０９位、１０６位、及び１０２位に対応する位置以外の位置における１又は数個のアミノ酸が置換、欠失又は付加されたアミノ酸配列からなる糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(vi)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有し、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼにおける、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の２３９位に対応する位置のアミノ酸がトリプトファン、フェニルアラニン又はチロシンであり、配列番号１の２８２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸であり、配列番号１の３７６位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の４１８位に対応する位置のアミノ酸がアルギニンであり、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列がGly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）である、糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(vii)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有し、配列番号１又は配列番号４５の相同性領域におけるアミノ酸配列と当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの対応する位置の相同性領域におけるアミノ酸配列とが９０％以上の配列同一性を有する糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、或いは
(viii)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と５０％以上の配列同一性を有し、配列番号１又は配列番号４５の相同性領域におけるアミノ酸配列と当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの対応する位置の相同性領域におけるアミノ酸配列とが７０％以上の配列同一性を有し、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼにおける、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の２３９位に対応する位置のアミノ酸がトリプトファン、フェニルアラニン又はチロシンであり、配列番号１の２８２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸であり、配列番号１の３７６位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の４１８位に対応する位置のアミノ酸がアルギニンであり、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列がGly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）である、糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体。 　
[７]　試料中のHbS1cまたはHbC1cを測定するための糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。 　
[８]　HbS1cまたはHbC1cに糖化ヘモグロビンオキシダーゼを作用させて生じる還元型化合物の量を測定するためのものである、実施形態７に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。 　
[９]　生じる還元型化合物が過酸化水素である、実施形態８に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。 　
[１０]　糖化ヘモグロビンオキシダーゼが(a)及び／又は(b)の性質を有する、実施形態７～９のいずれかに記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ、
(a)　HbS1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbS1c/HbA1c]が0.45以上である、
(b)　HbC1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbC1c/HbA1c]が0.15以上である。 　
[１１]　糖化ヘモグロビンオキシダーゼの至適pH範囲が６～８、作用pH範囲が５～９、至適温度範囲が２５～４０℃であり、SDS-PAGE上での分子量が約４５～５５ＫＤａである、実施形態７～１０のいずれかに記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。 　
[１２]　糖化ヘモグロビンオキシダーゼが、以下の(i)～(viii)からなる群より選択されるものである、実施形態７～１１のいずれかに記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ、
(i)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アスパラギン酸、アラニン、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(ii)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０９位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アラニン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(iii)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０６位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アラニン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(iv)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０２位に対応する位置のアミノ酸がアラニン、アスパラギン酸、グルタミン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(v)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位、１０９位、１０６位、及び１０２位に対応する位置以外の位置における１又は数個のアミノ酸が置換、欠失又は付加されたアミノ酸配列からなる糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(vi)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有し、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼにおける、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の２３９位に対応する位置のアミノ酸がトリプトファン、フェニルアラニン又はチロシンであり、配列番号１の２８２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸であり、配列番号１の３７６位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の４１８位に対応する位置のアミノ酸がアルギニンであり、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列がGly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）である、糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
(vii)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有し、配列番号１又は配列番号４５の相同性領域におけるアミノ酸配列と当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの対応する位置の相同性領域におけるアミノ酸配列とが９０％以上の配列同一性を有する糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、或いは
(viii)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と５０％以上の配列同一性を有し、配列番号１又は配列番号４５の相同性領域におけるアミノ酸配列と当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの対応する位置の相同性領域におけるアミノ酸配列とが７０％以上の配列同一性を有し、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼにおける、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の２３９位に対応する位置のアミノ酸がトリプトファン、フェニルアラニン又はチロシンであり、配列番号１の２８２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸であり、配列番号１の３７６位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の４１８位に対応する位置のアミノ酸がアルギニンであり、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列がGly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）である、糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体。 　
[１３]　コニオカエタ(Coniochaeta)属、ユーペニシリウム(Eupenicillium)属、ピレノケータ(Pyrenochaeta)属、アルスリニウム(Arthrinium)属、カーブラリア(Curvularia)属、ネオコスモスポラ(Neocosmospora)属、クリプトコッカス(Cryptococcus)属、フェオスフェリア(Phaeosphaeria)属、アスペルギルス(Aspergillus)属、エメリセラ(Emericella)属、ウロクラディウム(Ulocladium)属、またはペニシリウム(Penicillium)属のアマドリアーゼに基づくものである、実施形態７～１２のいずれかに記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。 　
[１４]　アマドリアーゼがコニオカエタ　エスピー(Coniochaeta sp.)、ユーペニシリウム　テレナム(Eupenicillium terrenum)、ピレノケータ　エスピー(Pyrenochaeta sp.)、アルスリニウム　エスピー(Arthrinium sp.)、カーブラリア　クラベータ(Curvularia clavata)、ネオコスモスポラ　バシンフェクタ(Neocosmospora vasinfecta)、クリプトコッカス　ネオフォルマンス(Cryptococcus neoformans)、フェオスフェリア　ノドラム(Phaeosphaeria nodorum)、アスペルギルス　ニードランス(Aspergillus nidulans)、エメリセラ　ニードランス(Emericella nidulans)属、ウロクラディウム　エスピー(Ulocladium sp.)、またはペニシリウム　ヤンシネラム(Penicillium janthinelum)もしくはペニシリウム　クリソゲナム（Penicillium chrysogenum）由来である、実施形態１３に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。 　
[１５]　実施形態７～１４のいずれかに記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼを含む、HbS1cまたはHbC1c測定用試薬組成物。 　
[１６]　実施形態７～１４のいずれかに記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼをコードする、遺伝子。 　
[１７]　実施形態１６に記載の遺伝子を含む、ベクター。 　
[１８]　実施形態１７に記載のベクターを含む、宿主細胞。 　
[１９]　以下の工程を含む、糖化ヘモグロビンオキシダーゼの製造方法、
（i）実施形態１８に記載の宿主細胞を、糖化ヘモグロビンオキシダーゼを発現しうる条件下で培養する工程、及び
（ii）培養物又は培養液から糖化ヘモグロビンオキシダーゼを単離する工程。 
[２０]　以下の工程を含む、アマドリアーゼ又はA1cオキシダーゼを改変して糖化ヘモグロビンオキシダーゼを作製する方法、
(i) アマドリアーゼ遺伝子又はA1cオキシダーゼ遺伝子を取得する、
(ii) アマドリアーゼ遺伝子又はA1cオキシダーゼ遺伝子をベクターに組み入れ、宿主細胞を形質転換し、アマドリアーゼ又はA1cオキシダーゼを発現させ、発現産物を単離する、(iii) 発現産物の相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]を測定する、(iv) アマドリアーゼ又はA1cオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位、１０９位、１０６位又は１０２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アスパラギン酸、アラニン、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されるよう、前記アマドリアーゼ遺伝子又はA1cオキシダーゼ遺伝子を改変する、
(v) 改変後の遺伝子をベクターに組み入れ、宿主細胞を形質転換し、改変体を発現させ、発現産物を単離する、
(vi) 改変体の発現産物の相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]を測定し、工程(iii)の値と比較する、
(vii) 改変前のアマドリアーゼ若しくはA1cオキシダーゼの相対活性[HbS1c/HbA1c]と比較して、改変後の改変体の相対活性[HbS1c/HbA1c]が1.1倍以上増大している、かつ／又は改変前のアマドリアーゼ若しくはA1cオキシダーゼの相対活性[HbC1c/HbA1c]と比較して、改変後の改変体の相対活性[HbC1c/HbA1c]が1.1倍以上増大している場合、当該改変体を糖化ヘモグロビンオキシダーゼとする、並びに
(viii) 必要に応じて、工程(vii)の糖化ヘモグロビンオキシダーゼについて、工程(iv)～(vi)を繰り返す。
　本明細書は本願の優先権の基礎となる日本国特許出願番号2017-167890号の開示内容を包含する。
　本発明によれば、HbA1cのみならずHbS1cやHbC1cといった遺伝型の糖化ヘモグロビンをも認識する糖化ヘモグロビンオキシダーゼが提供される。これは種々の遺伝型に対応可能な糖化ヘモグロビン測定試薬とすることができる。
各種公知のアマドリアーゼのアミノ酸配列における同一性を例示する１番目の図である。Co（Coniochaeta sp.）、Et（Eupenicillium terrenum）、Py（Pyrenochaeta sp.）、Ar（Arthrinium sp.）、Cc（Curvularia clavata）、Nv（Neocosmospora vasinfecta）のほか、Cn（Cryptococcus neoformans）、Pn（Phaeosphaeria nodorum）、An（Aspergillus nidulans）、En（Emericella nidulans）、Ul（Ulocladium sp.）及びPj（Penicillium janthinelum）をアライメントした。 図１－２は、図１－１のつづきである。 図１－３は、図１－２のつづきである。 図１－４は、図１－３のつづきである。 図１－５は、図１－４のつづきである。 各種公知のアマドリアーゼのアミノ酸配列における同一性及び類似アミノ酸を例示する図である。図１に示すアマドリアーゼに加え、Ao2、Af2、At、Fo、Ao1、Af1、Pi、Dhをアライメントした。 図２－２は、図２－１の続きである。 図２－３は、図２－２の続きである。 図２－４は、図２－３の続きである。 図２－５は、図２－４の続きである。 図２－６は、図２－５の続きである。 図２－７は、図２－６の続きである。 図２－８は、図２－７の続きである。 図２－９は、図２－８の続きである。 図２－１０は、図２－９の続きである。
　以下、本発明を詳細に説明する。
（糖化ヘモグロビン、ヘモグロビンＡ１ｃ、糖化されたHbS、糖化されたHbC）
　ヘモグロビンとしては、正常ヘモグロビンであるヘモグロビンA(HbA)の他に、異常ヘモグロビン、例えばヘモグロビンS(HbS)やヘモグロビンC(HbC)が挙げられる。本明細書において糖化ヘモグロビンとは、非酵素的に糖化されたヘモグロビンをいう。本明細書において糖化ヘモグロビンという場合、この用語は、糖化されたHbAのみならず、糖化された異常ヘモグロビン、例えば糖化されたHbS及び糖化されたHbCも包含するものとする。糖化ヘモグロビンは生体内では血液等に存在する。糖化ヘモグロビンの中でもHbAのβ鎖アミノ末端のバリンが糖化された糖化ヘモグロビンを特にヘモグロビンA1c(HbA1c)と言う。ここで、糖化されたHbSまたはHbCには、β鎖に結合した糖の種類に応じて種々の糖化HbSまたは糖化HbCがあり得る。しかしながら本明細書では、便宜上、糖化HbSという場合、特に断らない限り、これはHbSのβ鎖アミノ末端のバリンが糖化されたものをいうものとする（HbS1cということもできる）。また本明細書では、便宜上、糖化HbCという場合、特に断らない限り、これはHbCのβ鎖アミノ末端のバリンが糖化されたものをいうものとする（HbC1cということもできる）。
（糖化ペプチド、フルクトシルペプチド）
　本発明における糖化ペプチドとは、糖化タンパク質由来の非酵素的に糖化されたペプチドを指し、ペプチドが直接非酵素的に糖化されたものや、プロテアーゼ等により糖化タンパク質が分解された結果生じたものや糖化タンパク質を構成する（ポリ）ペプチドが糖化されたものが含まれる。糖化ペプチドをフルクトシルペプチドと表記することもある。糖化タンパク質において、糖化を受けるペプチド側のアミノ基としては、アミノ末端のα－アミノ基、ペプチド内部のリジン残基側鎖のε－アミノ基などが挙げられるが、本発明における糖化ペプチドとは、より具体的には、α－アミノ基が糖化されたα－糖化ペプチド（α－フルクトシルペプチド）である。
（基質特異性）
　本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、HbA1c、より具体的にはHbA1cのβ鎖に直接作用する。ここで直接作用する、とは、アマドリアーゼが酸素の存在下で糖化ヘモグロビンのβ鎖のＮ末端のフルクトシル基に作用し、2-ケト-Dグルコースおよび過酸化水素、ヘモグロビンのβ鎖が生じることをいう。また本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、HbA1c型αF8Pに作用する。さらに、重要なこととして、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、HbA1c型αF8Pのみならず、HbS1c型αF8P及び／又はHbC1c型αF8Pにも作用する。HbA1c型αF8Pに作用するアマドリアーゼがHbA1cにも作用することが知られていることから（特許文献２１）、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼはHbA1cのみならず、糖化HbS及び／又は糖化HbCにも作用すると合理的に考えられる。すなわちある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、HbA1cのみならず、糖化HbS及び／又は糖化HbCにも作用する。
（糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体の相対活性）
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体は、改変前のA1cオキシダーゼと比較してHbS1c型αF8Pに対する相対活性が向上している。HbS1c型αF8Pに対する相対活性とは、酵素量や反応条件を一定とした場合のHbS1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8P（正常型αF8P）に対する活性との比、すなわち（HbS1c型αF8Pに対する活性／HbA1c型αF8Pに対する活性）をいう。HbS1c型αF8Pに対する活性／HbA1c型αF8Pに対する活性を便宜上、本明細書において相対活性[HbS1c/HbA1c]と表記することがある。
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体は、改変前のA1cオキシダーゼと比較してHbC1c型αF8Pに対する相対活性が向上している。HbC1c型αF8Pに対する相対活性とは、酵素量や反応条件を一定とした場合のHbC1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち（HbC1c型αF8Pに対する活性／HbA1c型αF8Pに対する活性）をいう。HbC1c型αF8Pに対する活性／HbA1c型αF8Pに対する活性を、便宜上、本明細書において相対活性[HbC1c/HbA1c]と表記することがある。
　すなわち、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体は、改変前のA1cオキシダーゼと比較して、相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]が増大している。なお、本明細書では相対活性をモデル基質αF8Pとの関係で規定したが、これはあくまで便宜上のものであり、各種の糖化ヘモグロビンに対する相対的な活性についてもこの性質は同様に反映されると合理的に考えられる。
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体は、改変前のアマドリアーゼの相対活性[HbS1c/HbA1c]と比較して、改変後の相対活性[HbS1c/HbA1c]が1.1倍以上、1.2倍以上、1.3倍以上、1.4倍以上、1.5倍以上、2.0倍以上、2.5倍以上、例えば2.6倍以上増大していてもよい。例えば改変前のA1cOXの相対活性[HbS1c/HbA1c]が0.39であり、改変後の糖化ヘモグロビンオキシダーゼの相対活性[HbS1c/HbA1c]が0.77である場合、改変の前後で相対活性[HbS1c/HbA1c]は、約1.97倍増大している。
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体は、改変前のアマドリアーゼの相対活性[HbC1c/HbA1c]と比較して、改変後の相対活性[HbC1c/HbA1c]が1.1倍以上、1.2倍以上、1.3倍以上、1.4倍以上、1.5倍以上、2.0倍以上、2.5倍以上、3.0倍以上、4.0倍以上、5.0倍以上、6.0倍以上、7.0倍以上、8.0倍以上、例えば8.3倍以上増大していてもよい。例えば改変前のA1cOXの相対活性[HbC1c/HbA1c]が0.11であり、改変後の糖化ヘモグロビンオキシダーゼの相対活性[HbC1c/HbA1c]が0.91である場合、改変の前後で相対活性[HbC1c/HbA1c]は、約8.3倍増大している。
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、相対活性[HbS1c/HbA1c]が、0.4以上、0.41以上、0.42以上、0.43以上、0.44以上、0.45以上、0.5以上、0.55以上、0.6以上、0.65以上、0.7以上、0.75以上、0.8以上、0.85以上、0.9以上、例えば0.95以上であり得る。ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、相対活性[HbC1c/HbA1c]が、0.10以上、0.11以上、0.12以上、0.13以上、0.14以上、0.15以上、0.16以上、0.17以上、0.18以上、0.19以上、0.2以上、0.25以上、0.3以上、0.35以上、0.4以上、0.5以上、0.6以上、0.7以上、0.8以上、例えば0.9以上であり得る。
　本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体は、HbA1cに作用するのみならず、相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]が増大しているため、糖化HbSや糖化HbCを含む試料の測定に用いることができ、測定値が真の値と乖離する問題を回避することができる。
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、試料中の糖化ヘモグロビンを正確に測定することができ、測定値と真の値との乖離をもたらさない。ある実施形態において、測定値と真の値との乖離をもたらさないとは、試料中に実際に含まれる糖化ヘモグロビンが１００(任意単位)である場合に、例えば、測定値が９０(任意単位)未満または１１０を超える値を示すことをいう。
（アマドリアーゼ）
　アマドリアーゼは、ケトアミンオキシダーゼ、フルクトシルアミノ酸オキシダーゼ、フルクトシルペプチドオキシダーゼ、フルクトシルアミンオキシダーゼとも呼ばれる。アマドリアーゼは、酸素の存在下で、イミノ２酢酸若しくはその誘導体（アマドリ化合物）を酸化して、グリオキシル酸若しくはα－ケトアルデヒド、アミノ酸若しくはペプチド、および過酸化水素を生成する反応を触媒する酵素のことをいう。アマドリアーゼは、自然界に広く分布しており、微生物や、動物若しくは植物起源の酵素を探索することにより、得ることができる。微生物においては、例えば、糸状菌、酵母、若しくは細菌等から得ることができる。
　アマドリアーゼは、例えば、コニオカエタ属、ユーペニシリウム属、ピレノケータ属、アルスリニウム属、カーブラリア属、ネオコスモスポラ属、クリプトコッカス属、フェオスフェリア属、アスペルギルス属、エメリセラ属、ウロクラディウム属、ペニシリウム属、フザリウム属、アカエトミエラ属、アカエトミウム属、シエラビア属、カエトミウム属、ゲラシノスポラ属、ミクロアスカス属、レプトスフェリア属、オフィオボラス属、プレオスポラ属、コニオケチジウム属、ピチア属、コリネバクテリウム属、アグロバクテリウム属、又はアルスロバクター属の微生物から得ることができる。
（アマドリアーゼをコードする遺伝子の取得）
　アマドリアーゼをコードする遺伝子（以下、単に「アマドリアーゼ遺伝子」ともいう）を得るには、通常一般的に用いられている遺伝子のクローニング方法が用いられる。例えば、アマドリアーゼ生産能を有する微生物菌体や種々の細胞から常法、例えば、Current Protocols in Molecular Biology(WILEY Interscience,1989）記載の方法により、染色体ＤＮＡまたはｍＲＮＡを抽出することができる。さらにｍＲＮＡを鋳型としてｃＤＮＡを合成することができる。このようにして得られた染色体ＤＮＡまたはｃＤＮＡを用いて、染色体ＤＮＡまたはｃＤＮＡのライブラリーを作製することができる。
　次いで、上記アマドリアーゼのアミノ酸配列に基づき、適当なプローブＤＮＡを合成して、これを用いて染色体ＤＮＡまたはｃＤＮＡのライブラリーからアマドリアーゼ遺伝子を選抜する方法、あるいは、上記アミノ酸配列に基づき、適当なプライマーＤＮＡを作製して、５’ＲＡＣＥ法や３’ＲＡＣＥ法などの適当なポリメラーゼ連鎖反応（Polymerase Chain Reaction、ＰＣＲ法）により、アマドリアーゼをコードする目的の遺伝子断片を含むＤＮＡを増幅させ、これらのＤＮＡ断片を連結させて、目的のアマドリアーゼ遺伝子の全長を含むＤＮＡを得ることができる。
　アマドリアーゼ遺伝子の一例として、コニオカエタ属由来のアマドリアーゼ遺伝子（特開２００３－２３５５８５号公報）が挙げられる。また別の例として、Phaeosphaeria属由来のアマドリアーゼ遺伝子、Neocosmospora属由来のアマドリアーゼ遺伝子、Aspergillus属由来のアマドリアーゼ遺伝子、及びCryptococcus属由来のアマドリアーゼ遺伝子、及びCurvularia属由来のアマドリアーゼ遺伝子、及びEupenicillium属由来のアマドリアーゼ遺伝子が挙げられる。
　アマドリアーゼ遺伝子は、ベクターに連結されていてもよい。ベクターとしては、プラスミド、バクテリオファージ、コスミド等の任意のベクターが挙げられ、例えば、pBluescriptII SK+（Stratagene社製）が挙げられる。Coniochaeta sp. NISL 9330株由来のアマドリアーゼ遺伝子及びこれを含むプラスミドは国際公開第２００７／１２５７７９号に開示されている。Eupenicillium terrenum ATCC 18547株由来のアマドリアーゼ遺伝子及びこれを含むプラスミドは国際公開第２００７／１２５７７９号に開示されている。Aspergillus nidulans FGSC A26株由来のアマドリアーゼ遺伝子及びこれを含むプラスミドは国際公開第２０１２／０１８０９４号に開示されている。Cryptococcus neoformans由来のアマドリアーゼ遺伝子及びこれを含むプラスミドは国際公開第２０１２／０１８０９４号に開示されている。Neocosmospora vasinfecta由来のアマドリアーゼ遺伝子及びこれを含むプラスミドは国際公開第２０１２／０１８０９４号に開示されている。プラスミドは、常法に従い取得しうる。例えばGenElute Plasmid Miniprep Kit（Sigma-Alcrich社製）を用いることにより、アマドリアーゼ遺伝子を含むプラスミドを、抽出、精製し得る。例えば特許文献２０～２２の教示を参考に、得られたアマドリアーゼ遺伝子を操作してA1cOX遺伝子を作製したり精製酵素を得ることができる。
　（アマドリアーゼ遺伝子の変異処理）
　アマドリアーゼ遺伝子の変異処理は、企図する変異形態に応じた、公知の任意の方法で行うことができる。すなわち、アマドリアーゼ遺伝子あるいは当該遺伝子の組み込まれた組換え体ＤＮＡと変異原となる薬剤とを接触・作用させる方法；紫外線照射法；遺伝子工学的手法；または蛋白質工学的手法を駆使する方法等を広く用いることができる。
　上記変異処理に用いられる変異原となる薬剤としては、例えば、ヒドロキシルアミン、Ｎ－メチル－Ｎ’－ニトロ－Ｎ－ニトロソグアニジン、亜硝酸、亜硫酸、ヒドラジン、蟻酸、若しくは５－ブロモウラシル等を挙げることができる。
　この接触・作用の諸条件は、用いる薬剤の種類等に応じた条件を採ることが可能であり、現実に所望の変異をアマドリアーゼ遺伝子において惹起することができる限り特に限定されない。通常、好ましくは０．５～１２Ｍの上記薬剤濃度において、２０～８０℃の反応温度下で１０分間以上、好ましくは１０～１８０分間接触・作用させることで、所望の変異を惹起可能である。紫外線照射を行う場合においても、上記の通り常法に従い行うことができる（現代化学、０２４～３０、１９８９年６月号）。
　蛋白質工学的手法を駆使する方法としては、一般的に、Site-Specific Mutagenesisとして知られる手法を用いることができる。例えば、Kramer法（Nucleic Acids Res., 12, 9441 (1984)： Methods Enzymol., 154, 350 (1987)： Gene, 37, 73 (1985))、Eckstein法(Nucleic Acids Res., 13, 8749 (1985)： Nucleic Acids Res., 13, 8765 (1985)： Nucleic Acids Res, 14, 9679 (1986))、Kunkel法(Proc. Natl. Acid. Sci. U.S.A., 82, 488 (1985)： Methods Enzymol., 154, 367 (1987))等が挙げられる。
　また、一般的なＰＣＲ法を用いることもできる（Technique, 1, 11(1989)参照）。なお、上記遺伝子改変法の他に、有機合成法または酵素合成法により、直接所望の改変アマドリアーゼ遺伝子、或いは糖化ヘモグロビンオキシダーゼ遺伝子を合成することもできる。
　アマドリアーゼ遺伝子の塩基配列は、例えばマルチキャピラリーＤＮＡ解析システムApplied Biosystems 3130xlジェネティックアナライザ（Life Technologies社製）により確認し得る。
（形質転換・形質導入）
　アマドリアーゼ遺伝子は、常法により、バクテリオファージ、コスミド、または原核細胞若しくは真核細胞の形質転換に用いられるプラスミド等のベクターに組み込むことができる。これを用いて、各々のベクターに対応する宿主を、常法により形質転換又は形質導入しうる。大腸菌の宿主としては、各種大腸菌株、例えばＫ－１２株、ＪＭ１０９株（タカラバイオ社）、ＤＨ５α株（タカラバイオ社）等が挙げられるがこれに限らない。
（A1cOX）
　アマドリアーゼの中でもHbA1cに直接作用するものをA1cオキシダーゼ（A1cOX）と呼ぶことがある。A1cOX遺伝子は特許文献２０～２２の教示に基づき、上記のアマドリアーゼ遺伝子から作製しうる。これらの均等物も本発明に利用しうる。
　例えば特許文献２０及び２１は、Coniochaeta sp. NISL 9330由来アマドリアーゼ（配列番号１）に基づくA1cOXを開示している。特許文献２１は、αF8Pに対する比活性が高いA1cOXを開示している。参照によりこれら全内容を本明細書に組み入れる。下記の表に、A1cOXが有し得る変異とその位置を示す。表中、示される位置の左のアミノ酸（１文字表記）が野生型アミノ酸であり、右が置換後のアミノ酸である。置換後のアミノ酸として複数のアミノ酸が開示されている場合は、各候補を句点で区切って示してある。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　他の由来のアマドリアーゼの各配列における、配列番号１の６２位、６３位、１０２位、１０６位、１１０位、１１３位、３５５位、４１９位、６８位、３５６位、６４位及び９９位に対応するそれぞれの位置は次の表のとおりである。対応する位置については後述する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　また特許文献２２はEmericella nidulans由来アマドリアーゼ（FPOX）に基づく改変体を開示している。参照によりその全内容を本明細書に組み入れる。下記表に、FPOX改変体が有し得る変異とその位置を示す。表中、左欄に示される位置が、本明細書の配列番号１に対応する位置であり、右欄の位置がそれぞれ対応する、当該アマドリアーゼにおける位置である。また表中、示される位置の左のアミノ酸が野生型アミノ酸であり、右が置換後のアミノ酸である。置換後のアミノ酸として複数のアミノ酸が開示されている場合は、各候補を句点で区切って示してある。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　他の由来のアマドリアーゼの各配列における、配列番号１の６２位、６３位、６４位、７２位、１０９位、１１６位、７６位、６７位、９６位、１０６位、及び３５５位に対応するそれぞれの位置は次の表のとおりである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　A1cOXは上記の変異を有しうる。当業者であれば、特許文献２０～２２の記載、及び上記の記載を参考にA1cOX遺伝子を作製しうる。例えばある実施形態において、A1cOXは配列番号１の62位に対応する位置にアルギニン以外のアミノ酸へのアミノ酸置換、例えば上記の表に示されるアミノ酸への置換や、さらにはリシン、ヒスチジン、フェニルアラニン、トリプトファン、チロシン等へのアミノ酸置換を有しうる。さらにA1cOXは配列番号１の63位に対応する位置、355位に対応する位置及び419位に対応する位置からなる群より選択される位置において、1以上、例えば２以上、例えば３つのアミノ酸置換を有し得る。置換アミノ酸は、上記の表に記載にものであり得る。或いは、A1cOXはさらに配列番号１の63位に対応する位置、64位に対応する位置、72位に対応する位置、109位に対応する位置、116位に対応する位置、76位に対応する位置、67位に対応する位置、96位に対応する位置、及び355位に対応する位置からなる群より選択される位置において、1以上、例えば２以上、例えば３以上、例えば４以上、例えば５以上、例えば６以上、例えば７以上、例えば８以上、例えば９つのアミノ酸置換を有し得る。置換アミノ酸は、上記の表に記載にものであり得る。場合によりA1cOXはさらに、配列番号１の68位に対応する位置、356位に対応する位置、64位に対応する位置、及び99位に対応する位置からなる群より選択される位置において、1以上、例えば２以上、例えば３以上、例えば４つのアミノ酸置換を有し得る。置換アミノ酸は、上記の表に記載にものであり得る。
（A1cOXの改変体）
　A1cOX遺伝子に本発明の変異を導入することによりA1cOX改変体を作製し、糖化HbSや糖化HbCに対する相対活性の増大した糖化ヘモグロビンオキシダーゼを製造しうる。
（本発明の変異）
　本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、配列番号１の１１３位、１０９位、１０６位及び／又は１０２位に対応する位置に、変異を有しうる。対応する位置については下記に説明する。ある実施形態では、Coniochaeta sp. NISL 9330由来アマドリアーゼ（配列番号１）に基づくA1cOX又はEmericella nidulans由来アマドリアーゼ（配列番号１１）に基づくアマドリアーゼ（例えば配列番号４５）に、以下の位置において１又は複数のアミノ酸置換を導入しうる：
（ａ）配列番号１の１１３位に対応する位置
（ａ’）配列番号１の１０９位に対応する位置
（ｂ）配列番号１の１０６位に対応する位置
（ｃ）配列番号１の１０２位に対応する位置
　上記の位置に関し、配列番号１の（ａ）１１３位、（ａ’）１０９位、（ｂ）１０６位及び／又は（ｃ）１０２位に対応する位置のアミノ酸を、正電荷を帯びたアミノ酸（リシン、ヒスチジン、アルギニン）以外のアミノ酸、例えばアスパラギン酸、グルタミン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、アラニン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、例えばグルタミン酸、アスパラギン酸、アラニン、ロイシン、バリン、グルタミン、アスパラギン、例えばグルタミン酸、アスパラギン酸、アラニンに置換することができる。
　一部の限定的な実施形態では、置換後のアミノ酸から、天然アマドリアーゼ配列におけるアミノ酸（天然アミノ酸）への復帰変異は除かれる。別の実施形態では、配列番号１の１０２位、１０６位、１０９位又は１１３位に対応する位置の置換後のアミノ酸は、天然アマドリアーゼ配列における当該位置のアミノ酸（天然アミノ酸）と同一でありうる。これは見かけ上、復帰変異のように見える。しかしながら、当該天然アミノ酸が、当該天然アマドリアーゼから前記A1cオキシダーゼを作製するに当たり、別のアミノ酸へと置換されていた場合、それは、A1cオキシダーゼにとって好ましい構成又は必要な構成と理解される。そうすると、A1cオキシダーゼから出発してHbA1cのみならず糖化HbSや糖化HbCにも作用する糖化ヘモグロビンオキシダーゼを得る上では、そのような好ましい構成又は必要と考えられていた構成を改変するアミノ酸置換は、天然アマドリアーゼへの復帰変異ではなく、本発明の課題を解決するための基質特異性改変アミノ酸置換と理解される。したがって、ある実施形態において本発明は、見かけ上、天然アミノ酸への復帰変異に見える置換であっても、本発明の課題を解決することができるアミノ酸置換としてこれを包含する。
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、10μMのHbS1c型αF8Pに対する比活性が20mU/mg以上、30mU/mg以上、40mU/mg以上、50mU/mg以上、60mU/mg以上、70mU/mg以上、80mU/mg以上、90mU/mg以上、100mU/mg以上、110mU/mg以上、120mU/mg以上、130mU/mg以上、140mU/mg以上、150mU/mg以上、160mU/mg以上、170mU/mg以上、例えば180mU/mg以上でありうる。ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、10μMのHbC1c型αF8Pに対する比活性が20mU/mg以上、30mU/mg以上、40mU/mg以上、50mU/mg以上、60mU/mg以上、70mU/mg以上、80mU/mg以上、90mU/mg以上、100mU/mg以上、110mU/mg以上、120mU/mg以上、130mU/mg以上、140mU/mg以上、150mU/mg以上、160mU/mg以上、170mU/mg以上、例えば180mU/mg以上でありうる。ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、10μMのHbA1c型αF8Pに対する比活性が20mU/mg以上、30mU/mg以上、40mU/mg以上、50mU/mg以上、60mU/mg以上、70mU/mg以上、80mU/mg以上、90mU/mg以上、100mU/mg以上、110mU/mg以上、120mU/mg以上、130mU/mg以上、140mU/mg以上、150mU/mg以上、160mU/mg以上、170mU/mg以上、例えば180mU/mg以上でありうる。
（対応する位置）
　本明細書において、ある基準となるアミノ酸配列中の特定の位置が別の類似するアミノ酸配列中の特定の位置と対応する場合、これを対応する位置という。また対応する位置のアミノ酸を対応するアミノ酸という。本明細書では便宜上、配列番号１に示すConiochaeta属由来のアマドリアーゼのアミノ酸配列を基準として説明する。この場合、アミノ酸配列における「対応する位置」とは、配列番号１に示すConiochaeta属由来のアマドリアーゼのアミノ酸配列の特定の位置に対応する他の生物種由来のアマドリアーゼのアミノ酸配列における位置をいう。
　アミノ酸配列における「対応する位置」を特定する方法としては、例えばリップマン－パーソン法等の公知のアルゴリズムを用いてアミノ酸配列を比較し、各アマドリアーゼのアミノ酸配列中に存在する保存アミノ酸残基に最大の同一性を与えることにより行うことができる。アマドリアーゼのアミノ酸配列をこのような方法で整列させることにより、アミノ酸配列中にある挿入、欠失にかかわらず、相同アミノ酸残基の各アマドリアーゼ配列における配列中の位置を決めることが可能である。対応する位置（相同位置）は、三次元構造中で同位置に存在すると考えられ、対象となるアマドリアーゼの特異的機能に関して類似した効果を有することが推定できる。
（変異の対応位置）
　本明細書において、「配列番号１のアミノ酸配列の１１３位に対応する位置」とは、対象のアマドリアーゼのアミノ酸配列を、配列番号１のアミノ酸配列と比較した場合に、配列番号１の１１３位に対応する位置をいう。これは、上記の方法でアミノ酸配列を整列させた図１又は図２より特定することができる。配列番号１の１０９位に対応する位置、１０６位に対応する位置、及び１０２位に対応する位置についても同様である。
　各種アマドリアーゼ配列における、配列番号１の１０２位、１０６位、１０９位及び１１３位に対応する位置は次の表のとおりである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　さらに、種々のアマドリアーゼ配列における、配列番号１の１０２位、１０６位、１０９位及び１１３位に対応する位置を次の表に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
（アミノ酸配列の相同性、同一性又は類似性）
　アミノ酸配列の相同性、同一性又は類似性は、GENETYX（GENETYX社製）のマキシマムマッチングやサーチホモロジー等のプログラム、またはDNASIS Pro（日立ソリューションズ社製）のマキシマムマッチングやマルチプルアライメント、またはCLUSTAL Wのマルチプルアライメント等のプログラムにより計算することができる。アミノ酸配列同一性を計算するために、２以上のアマドリアーゼをアライメントしたときに、該２以上のアマドリアーゼにおいて同一であるアミノ酸の位置を調べることができる。こうした情報を基に、アミノ酸配列中の同一領域を決定できる。ここで２以上のアミノ酸配列について、同一性％とは、Blosum62等のアルゴリズムを利用して２以上のアミノ酸配列のアラインメントを行った際に、アラインメント可能であった領域の総アミノ酸数を分母とし、そのうち同一のアミノ酸によって占められる位置の数を分子としたときのパーセンテージをいう。故に、通常、２以上のアミノ酸配列に同一性が全く見られない領域がある場合、例えばＣ末端に同一性が全く見られない付加配列が一方のアミノ酸配列にある場合、当該同一性のない領域はアラインメント不可能であるため、同一性％の算出には利用されない。
　また、２以上のアマドリアーゼにおいて類似であるアミノ酸の位置を調べることもできる。例えばCLUSTALWを用いて複数のアミノ酸配列をアライメントすることができ、この場合、アルゴリズムとしてBlosum62を使用し、複数のアミノ酸配列をアライメントしたときに類似（similar）と判断されるアミノ酸を類似アミノ酸と呼ぶことがある。本発明の変異体において、アミノ酸置換はこのような類似アミノ酸の間の置換によるものであり得る。こうしたアライメントにより、複数のアミノ酸配列について、アミノ酸配列が同一である領域及び類似アミノ酸によって占められる位置を調べることができる。こうした情報を基に、アミノ酸配列中の相同性領域（保存領域）を決定できる。
（相同性領域）
　本明細書において「相同性領域」とは、２以上のアマドリアーゼをアライメントしたときに、ある基準となるアマドリアーゼと比較対象のアマドリアーゼの対応する位置におけるアミノ酸が同一であるか又は類似アミノ酸からなる領域であって、連続する３以上、４以上、５以上、６以上、７以上、８以上、９以上又は１０以上のアミノ酸からなる領域をいう。例えば、図１では全長アミノ酸配列の配列同一性が、配列番号１のアマドリアーゼを基準として７４％以上であるアマドリアーゼをアライメントした。このうち、配列番号１で示されるConiochaeta sp.由来アマドリアーゼを基準として第１０位～３２位は同一又は類似アミノ酸からなり、よって相同性領域に該当する。同様に、配列番号１で示されるConiochaeta sp. 由来アマドリアーゼを基準として、１０位～３２位、３６～４１位、４９～５２位、５４～５８位、６３～６５位、７３～７５位、８４～８６位、８８～９０位、１２０～１２２位、１４５～１５０位、１５６～１６２位、１６４～１７０位、１８０～１８２位、２０２～２０５位、２０７～２１１位、２１４～２２４位、２２７～２３０位、２３６～２４１位、２４３～２４８位、２５８～２６１位、２６６～２６８位、２７０～２７３位、２７５～２８７位、２９５～２９７位、３０６～３０８位、３１０～３１６位、３２４～３２９位、３３２～３３４位、３４１～３４４位、３４６～３５５位、３５７～３６３位、３７０～３８３位、３８５～３８７位、３８９～３９４位、４０５～４１０位及び４２３～４３１位は相同性領域に該当しうる。ある実施形態においてアマドリアーゼの相同性領域はこれらの位置からなる領域である。別のアマドリアーゼを基準とした場合、配列番号１のこれらの位置にそれぞれ対応する位置も相同性領域に該当しうる。例えば、同様に、配列番号４５で示されるEmericella nidulans由来アマドリアーゼを基準として、配列番号４５の９位～３１位、３５～４０位、４８～５１位、５３～５７位、６２～６４位、７２～７４位、８３～８５位、８７～８９位、１１９～１２１位、１４４～１４９位、１５５～１６１位、１６３～１６９位、１７９～１８１位、２０２～２０５位、２０７～２１１位、２１４～２２４位、２２７～２３０位、２３６～２４１位、２４３～２４８位、２５８～２６１位、２６６～２６８位、２７０～２７３位、２７５～２８７位、２９５～２９７位、３０６～３０８位、３１０～３１６位、３２４～３２９位、３３２～３３４位、３４１～３４４位、３４６～３５５位、３５７～３６３位、３７０～３８３位、３８５～３８７位、３８９～３９４位、４０５～４１０位及び４２４～４３２位は相同性領域に該当しうる。ある実施形態においてアマドリアーゼの相同性領域はこれらの位置からなる領域である。配列番号４５の元となった配列番号１１についても同様である。
　ある実施形態において、アマドリアーゼの相同性領域は、配列番号１で示されるConiochaeta sp. 由来アマドリアーゼを基準として、第１１位～３２位、３６～４１位、５０～５２位、５４～５８位、８４～８６位、８８～９０位、１４５～１５０位、１５７～１６８位、２０２～２０５位、２０７～２１２位、２１５～２２５位、２３６～２４８位、２５８～２６１位、２６６～２６８位、２７０～２７３位、２７５～２８７位、３４７～３５４位、３５７～３６３位、３７０～３８３位、３８５～３８７位、及び４０５～４１０位のアミノ酸配列からなる領域である。別の実施形態において、アマドリアーゼの相同性領域は、配列番号４５で示されるEmericella nidulans由来アマドリアーゼを基準として、配列番号４５の１０位～３１位、３５～４０位、４９～５１位、５３～５７位、８３～８５位、８７～８９位、１４４～１４９位、１５６～１６７位、２０２～２０５位、２０７～２１２位、２１５～２２５位、２３６～２４８位、２５８～２６１位、２６６～２６８位、２７０～２７３位、２７５～２８７位、３４７～３５４位、３５７～３６３位、３７０～３８３位、３８５～３８７位、及び４０５～４１０位のアミノ酸配列からなる領域である。配列番号４５の元となった配列番号１１についても同様である。
　ある実施形態において、アマドリアーゼの相同性領域は、配列番号１で示されるConiochaeta sp. 由来アマドリアーゼを基準として第１１～１８位、２０～３２位、５０～５２位、５４～５８位、２６６～２６８位、２７０～２７３位、２７７～２８６位、及び３７０～３８３位のアミノ酸配列からなる領域である。別の実施形態において、アマドリアーゼの相同性領域は、配列番号４５で示されるEmericella nidulans由来アマドリアーゼを基準として、配列番号４５の第１０～１７位、１９～３１位、４９～５１位、５３～５７位、２６６～２６８位、２７０～２７３位、２７７～２８６位、及び３７０～３８３位のアミノ酸配列からなる領域である。配列番号４５の元となた配列番号１１についても同様である。
（保存性の高いアミノ酸残基）
　アマドリアーゼの特定のアミノ酸残基は基質の糖部分（例えばフルクトシル基）と相互作用することが知られている。そしてそのようなアミノ酸残基は、各種アマドリアーゼにおいて保存性が高い。ある実施形態において、アマドリアーゼは、配列番号１の２３９位に対応する位置のアミノ酸がトリプトファン、フェニルアラニン又はチロシンであり、配列番号１の２８２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸であり、配列番号１の３７６位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の４１８位に対応する位置のアミノ酸がアルギニンである。これらのアミノ酸残基は、基質の糖部分（フルクトシル基）を認識することが知られている(J. Biol. Chem., 283, 27007-27016 (2008); Proteins, 84, 744-758 (2016))。
　アマドリアーゼは特定のアミノ酸配列モチーフを介して補酵素と結合することが知られている。FAD結合型アマドリアーゼでは、補酵素FADと結合するモチーフ配列は、Gly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）であり(Eur. J. Biochem., 242, 499-505 (1996))、これは各種のFAD結合型アマドリアーゼにおいて保存性が高い。同モチーフ配列は、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列に見られる。したがって、ある実施形態において、アマドリアーゼは、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列がGly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）である。
　ある実施形態において、アマドリアーゼが糖化アミノ酸のみならず、糖化ペプチドを基質とするためには、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸はグリシンであることが望ましい（国際公開第２０１２／０１８０９４号）。ある実施形態において、アマドリアーゼ中の、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸はセリン、グルタミン酸、ヒスチジン、グルタミンではない。
　各種アマドリアーゼ配列における、配列番号１の２３９位、２８２位、３７６位、４１８位、１５位、１７位、２０位及び６０位に対応する位置は次の表のとおりである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　さらに、種々のアマドリアーゼ配列における、配列番号１の２３９位、２８２位、３７６位、４１８位、１５位、１７位、２０位及び６０位に対応する位置を次の表に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体は、配列番号１に示されるアミノ酸配列を有するアマドリアーゼとアライメントしたときに５０％以上、５５％以上、６０％以上、６１％以上、６２％以上、６３％以上、６４％以上、６５％以上、６６％以上、６７％以上、６８％以上、６９％以上、７０％以上、７１％以上、７２％以上、７３％以上、７４％以上、７５％以上、７６％以上、７７％以上、７８％以上、７９％以上、８０％以上、８１％以上、８２％以上、８３％以上、８４％以上、８５％以上、８６％以上、８７％以上、８８％以上、８９％以上、９０％以上、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、例えば９９％以上の全長アミノ酸配列同一性を有し、かつ、改変前のA1cOXと比較して相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]が増大している。さらに、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体の相同性領域におけるアミノ酸配列は、配列番号１における相同性領域のアミノ酸配列と６５％、６６％、６７％、６８％、６９％、７０％、７１％、７２％、７３％、７４％、７５％、７６％、７７％、７８％、７９％、８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、９６％、９７％、９８％、例えば９９％以上の配列同一性を有するものであり得る。
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体は、配列番号１の１１３位、１０９位、１０６位、及び１０２位に対応する位置以外の位置に、１又は数個のアミノ酸が改変若しくは変異、または、欠失、置換、付加および／または挿入されたアミノ酸配列を有し、かつ改変前のA1cOXと比較して相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]が増大している。ここで１又は数個のアミノ酸とは、１～１５個、１～１０個、１～７個、１～５個、１～４個、例えば１～３個、例えば１又は２個のアミノ酸をいう。
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、
(i)　配列番号１記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位、１０９位、１０６位及び／又は１０２に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アラニン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている、
(ii)　前記(i)において、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位、１０９位、１０６位、及び１０２位に対応する位置以外の位置における１又は数個のアミノ酸が置換、欠失又は付加されているたアミノ酸配列からなる、
(iii)　前記(i)若しくは(ii)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１、配列番号２２、配列番号２４、配列番号１１又は配列番号４５のアミノ酸配列と７０％以上、７１％以上、７２％以上、７３％以上、７４％以上、７５％以上、７６％以上、７７％以上、７８％以上、７９％以上、８０％以上、８１％以上、８２％以上、８３％以上、８４％以上、８５％以上、８６％以上、８７％以上、８８％以上、８９％以上、または９０％以上、例えば９５％以上の配列同一性を有する、
(iv)　前記(i)、又は(ii)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号１１若しくは配列番号４５のアミノ酸配列と７０％以上、７１％以上、７２％以上、７３％以上、７４％以上、７５％以上、７６％以上、７７％以上、７８％以上、７９％以上、８０％以上、８１％以上、８２％以上、８３％以上、８４％以上、８５％以上、または９０％以上、例えば９５％以上の配列同一性を有し、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼにおける、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の２３９位に対応する位置のアミノ酸がトリプトファン、フェニルアラニン又はチロシンであり、配列番号１の２８２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸であり、配列番号１の３７６位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の４１８位に対応する位置のアミノ酸がアルギニンであり、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列がGly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）である、
(v)　前記(i)、(ii)若しくは(iii)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１、配列番号２２、配列番号２４、配列番号１１又は配列番号４５のアミノ酸配列と７０％以上、７１％以上、７２％以上、７３％以上、７４％以上、７５％以上、８０％以上、８５％以上、または９０％以上の配列同一性を有し、配列番号１または配列番号２２若しくは２４の第１０位～３２位、３６～４１位、４９～５２位、５４～５８位、７３～７５位、８４～８６位、８８～９０位、１２０～１２２位、１４５～１５０位、１５６～１６２位、１６４～１７０位、１８０～１８２位、２０２～２０５位、２０７～２１１位、２１４～２２４位、２２７～２３０位、２３６～２４１位、２４３～２４８位、２５８～２６１位、２６６～２６８位、２７０～２７３位、２７５～２８７位、２９５～２９７位、３０６～３０８位、３１０～３１６位、３２４～３２９位、３３２～３３４位、３４１～３４４位、３４６～３５５位、３５７～３６３位、３７０～３８３位、３８５～３８７位、３８９～３９４位、４０５～４１０位及び４２３～４３１位のアミノ酸配列からなる相同性領域におけるアミノ酸配列と当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの対応する位置の相同性領域におけるアミノ酸配列とが８０％以上、８５％以上、９０％、９５%以上、９８％以上、例えば９９％以上の配列同一性を有する、
(vi)　前記(i)又は(ii)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号１１若しくは配列番号４５のアミノ酸配列と５０％以上、５５％以上、６０％以上、６１％以上、６２％以上、６３％以上、６４％以上、６５％以上、６６％以上、６７％以上、６８％以上、６９％以上、７０％以上、７１％以上、７２％以上、７３％以上、７４％以上、７５％以上、７６％以上、７７％以上、７８％以上、７９％以上、８０％以上、８５％以上、例えば９０％以上の配列同一性を有し、配列番号１の第１０位～３２位、３６～４１位、４９～５２位、５４～５８位、６３～６５位、７３～７５位、８４～８６位、８８～９０位、１２０～１２２位、１４５～１５０位、１５６～１６２位、１６４～１７０位、１８０～１８２位、２０２～２０５位、２０７～２１１位、２１４～２２４位、２２７～２３０位、２３６～２４１位、２４３～２４８位、２５８～２６１位、２６６～２６８位、２７０～２７３位、２７５～２８７位、２９５～２９７位、３０６～３０８位、３１０～３１６位、３２４～３２９位、３３２～３３４位、３４１～３４４位、３４６～３５５位、３５７～３６３位、３７０～３８３位、３８５～３８７位、３８９～３９４位、４０５～４１０位及び４２３～４３１位のアミノ酸配列からなる相同性領域におけるアミノ酸配列と当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの対応する位置の相同性領域におけるアミノ酸配列とが６５％以上、６６％以上、６７％以上、６８％以上、６９％以上、７０％以上、７１％以上、７２％以上、７３％以上、７４％以上、７５％以上、７６％以上、７７％以上、７８％以上、７９％以上、８０％以上、８１％以上、８２上、８３％以上、８４％以上、８５％以上、８６％以上、８７％以上、８８％以上、８９％以上、９０％以上の配列同一性を有し、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼにおける、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の２３９位に対応する位置のアミノ酸がトリプトファン、フェニルアラニン又はチロシンであり、配列番号１の２８２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸であり、配列番号１の３７６位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の４１８位に対応する位置のアミノ酸がアルギニンであり、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列がGly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）である。この糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、
(a)　改変前のA1cオキシダーゼと比較して、HbS1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比が増大している、すなわち相対活性[HbS1c/HbA1c]が増大している、かつ／又は
(ｂ)　改変前のA1cオキシダーゼと比較して、HbC1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比が増大している、すなわち相対活性[HbC1c/HbA1c]が増大している、か、並びに／或いは、
(c)　HbS1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbS1c/HbA1c]が0.45以上、0.5以上、0.6以上、0.7以上、0.8以上、例えば0.9以上である、かつ／又は
(d)　HbC1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbC1c/HbA1c]が0.15以上、0.2以上、0.3以上、0.4以上、0.5以上、0.6以上、0.7以上、0.8以上、例えば0.9以上である。
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、
(i)糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位、１０９位、１０６位、及び／又は１０２位に対応する位置のアミノ酸の１、２または３つが、グルタミン酸、アスパラギン酸、アラニン、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されており、かつ、
(a)　HbS1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbS1c/HbA1c]が0.45以上である、及び／又は
(ｂ)　HbC1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbC1c/HbA1c]が0.15以上、例えば0.2以上である。
　本発明者は、配列番号１の１０２位、１０６位、１０９位、又は１１３位に対応する位置に、正電荷を帯びたアミノ酸ではないアミノ酸へのアミノ酸置換を有する糖化ヘモグロビンオキシダーゼが、改変前の酵素と比較して、相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]が増大していることを見出した。当業者であれば、これらの知見に基づき、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０２位、１０６位、１０９位、又は１１３位に対応する位置に、正電荷を帯びたアミノ酸ではないアミノ酸へのアミノ酸置換を有する他のA1cOxも同様に相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]が増大し、各種遺伝型の糖化ヘモグロビンに作用し、その測定に用いることができると理解する。
（糖化ヘモグロビンオキシダーゼの生産）
　ある実施形態において、本発明は、糖化ヘモグロビンオキシダーゼ産生能を有する菌株を当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼを発現しうる条件下で培養する工程、及び培養物又は培養液から糖化ヘモグロビンオキシダーゼを単離する工程を含む、糖化ヘモグロビンオキシダーゼの製造方法を提供する。この方法には、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼをコードする遺伝子を組み込んだベクターで形質転換された宿主細胞を用いることができる。ここで糖化ヘモグロビンオキシダーゼを発現しうる条件とは、糖化ヘモグロビンオキシダーゼ遺伝子が転写、翻訳され、当該遺伝子によりコードされるポリペプチドが産生されることをいう。
　また、上記菌株を培養する培地としては、例えば、酵母エキス、トリプトン、ペプトン、肉エキス、コーンスティープリカーあるいは大豆若しくは小麦ふすまの浸出液等の１種以上の窒素源に、塩化ナトリウム、リン酸２水素カリウム、リン酸水素２カリウム、硫酸マグネシウム、塩化マグネシウム、塩化第２鉄、硫酸第２鉄あるいは硫酸マンガン等の無機塩類の１種以上を添加し、さらに必要により糖質原料、ビタミン等を適宜添加したものが用いられる。
　また、培地に当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼが作用し得る基質やその類似化合物、例えば糖化アミノ酸、糖化ペプチド類、糖化タンパク質分解物、若しくは糖化ヘモグロビンや糖化アルブミン等の糖化タンパク質を添加することにより目的の酵素の製造量を向上させることができる。
　培地の初発ｐＨは、ｐＨ７～９に調整するのが適当である。培養は、２０～４２℃の培養温度、好ましくは２５～３７℃前後の培養温度で４～２４時間、さらに好ましくは２５～３７℃前後の培養温度で８～１６時間、通気攪拌深部培養、振盪培養、静置培養等により実施するのが好ましい。
　培養終了後、該培養物より糖化ヘモグロビンオキシダーゼを採取するには、通常の酵素採取手段を用いて得ることができる。例えば、常法により菌体を、超音波破壊処理、磨砕処理等するか、またはリゾチーム等の溶菌酵素を用いて本酵素を抽出するか、またはトルエン等の存在下で振盪若しくは放置して溶菌を行わせ、本酵素を菌体外に排出させることができる。そして、この溶液を濾過、遠心分離等して固形部分を除去し、必要によりストレプトマイシン硫酸塩、プロタミン硫酸塩、若しくは硫酸マンガン等により核酸を除去したのち、これに硫安、アルコール、アセトン等を添加して分画し、沈澱物を採取し、粗酵素を得る。
　粗酵素よりさらに精製酵素標品を得るには、例えば、セファデックス、スーパーデックス若しくはウルトロゲル等を用いるゲル濾過法、イオン交換性担体、疎水性担体、ヒドロキシアパタイトを用いる吸着溶出法、ポリアクリルアミドゲル等を用いる電気泳動法、蔗糖密度勾配遠心法等の沈降法、アフィニティクロマトグラフィー法、分子ふるい膜若しくは中空糸膜等を用いる分画法等を適宜選択し、またはこれらを組み合わせて実施することにより、精製された糖化ヘモグロビンオキシダーゼ酵素標品を得ることができる。
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、好ましくは
基質としてHbA1cを認識し、かつ、糖化HbS及び／又は糖化HbCを認識し、
作用として糖化ヘモグロビンのβ鎖を酸化して過酸化水素を生成し、
至適ｐＨ範囲をｐＨ６～８の範囲に有し、
作用ｐＨ範囲をｐＨ５～９の範囲に有し、
作用温度が２５～４０℃であり、
ＳＤＳ－ＰＡＧＥ上での分子量が約４５～５５ＫＤａ、例えば約４８～５０ＫＤａであるものであり得る。
　ある実施形態において、本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼは、３０～４０℃、例えば３５℃で30分熱処理後の残存活性が50%以上、60%以上、70%以上、例えば80%以上でありうる。
　本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体からは、糖化ヘモグロビンに対する活性を全く示さないアマドリアーゼは除くものとする。
（組成物、試薬、キット）
　ある実施形態において本発明は、糖化ヘモグロビンオキシダーゼを含む、糖化ヘモグロビン測定用試薬組成物、測定試薬又はキットを提供する。ある実施形態において本発明は、糖化ヘモグロビンオキシダーゼを含む、HbS1c又はHbC1c測定用試薬組成物、測定試薬又はキットを提供する。該組成物、試薬又はキットは、還元型化合物の測定用試薬、過酸化水素の測定用試薬、緩衝剤、界面活性剤、塩類、防腐剤などを含み得る。また、溶解補助剤、安定化剤、反応性向上剤、糖化ヘモグロビン変性剤、還元剤、牛血清アルブミン、糖類（グリセリン、乳糖、シュークロース等）等を添加してもよい。該組成物、試薬又はキットは、必要に応じ、その他の公知の安定化剤や夾雑物質の消去系などを追加しうる。糖化ヘモグロビンに作用するプロテアーゼ等を使用し糖化ペプチドを酵素法により測定する従来の各種の試薬やキットに用いられている技術を、適宜改変して本発明の組成物、試薬又はキットに用いることができる。本発明の組成物、測定試薬又はキットはプロテアーゼを含んでもよく、含まなくともよい。
　界面活性剤としては、非イオン性界面活性剤、イオン性の界面活性剤、例えば、カチオン性界面活性剤、アニオン性界面活性剤、両性界面活性剤等が挙げられる。
　非イオン界面活性剤としては、例えば、ポリオキシエチレンアルキルエーテル、脂肪酸ソルビタンエステル、アルキルポリグルコシド、脂肪酸ジエタノールアミド、アルキルモノグリセリルエーテルなどが挙げられる。
　カチオン性界面活性剤としては、例えば、アルキルトリメチルアンモニウム塩、ジアルキルジメチルアンモニウム塩、アルキルベンジルジメチルアンモニウム塩、ピリジニウム塩、例えばアルキルピリジニウム塩、ホスホニウム塩、例えばアルキルホスホニウム塩、イミダゾリウム塩、例えばアルキルイミダゾリウム塩、イソキノニウム塩、例えばアルキルイソキノニウム塩などが挙げられる。
　過酸化水素の測定用試薬は、ペルオキシダーゼ及び／又は発色基質を含みうる。発色基質としては、４－アミノアンチピリンの他に、例えば、ＡＤＯＳ（Ｎ－エチル－Ｎ－（２－ヒドロキシ－３－スルホプロピル）－ｍ－アニシジン）、ＡＬＯＳ（Ｎ－エチル－Ｎ－（２－ヒドロキシ－３－スルホプロピル）アニリン）、ＴＯＯＳ（N-エチル-N-(2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル)-m-トルイジンナトリウム）、ＤＡ－６７（１０－（カルボキシメチルアミノカルボニル）－３、７－ビス（ジメチルアミノ）－フェノシアジン）、ＤＡ－６４（Ｎ－（カルボキシメチルアミノカルボニル）－４、４’－ビス（ジメチルアミノ）－ジフェニルアミン）等が挙げられる。
（糖化ヘモグロビンの測定方法）
　ある実施形態において、本発明は糖化ヘモグロビンの測定方法を提供する。糖化ヘモグロビン測定は、定性的又は定量的な方法であり得る。定量法は、糖化ヘモグロビンを含む試料と本発明の糖化ヘモグロビンオキシダーゼとを接触させる工程、及び反応生成物又は消費物を測定する工程を含み得る。糖化ヘモグロビンは未変性でもよく、または変性したものでもよい。該定量法についていう接触とは、糖化ヘモグロビンオキシダーゼが糖化ヘモグロビンの酸化反応を触媒しうるように、該酵素と試料とを物理的に一緒にするあらゆる態様を包含し、例えば溶液中で遊離の酵素と糖化ヘモグロビンを混合する場合のみならず、固相担体に担持された酵素に糖化ヘモグロビンを含む溶液試料を添加又は滴下するような態様も包含する。
　ある実施形態において、本発明はHbS1cまたはHbC1cを測定する方法を提供する。この方法は、HbS1cまたはHbC1cを含み得る試料に糖化ヘモグロビンオキシダーゼを作用させる工程を含む。ある実施形態では、糖化ヘモグロビンオキシダーゼの作用により生じる還元型化合物の量が測定される。ある実施形態では、測定される還元型化合物は過酸化水素である。
　測定に用いる試料（サンプル）は、糖化ヘモグロビンを含む可能性のあるあらゆる生物学的試料、例えば血液、体液、リンパ液等に由来する試料とすることができる。試料は適宜、加工処理されたものでありうる。
　糖化ヘモグロビンオキシダーゼと糖化ヘモグロビンとの反応効率を高めるためには、変性処理された糖化ヘモグロビンを用いてもよい。変性処理としては界面活性剤処理、熱処理、酸・アルカリでの変性処理、及びこれらの組み合わせが挙げられる。
　用いる酵素量及び反応時間を一定とし、添加する糖化ヘモグロビンの量を変化させた場合に、糖化ヘモグロビン添加量が減少するにつれて、検出される発光基質の吸光度も比例的に減少する糖化ヘモグロビン濃度範囲を調べることで、当該アマドリアーゼを用いた場合の検出可能な最低糖化ヘモグロビン濃度（検出限界濃度）を決定することができる。検出限界が、測定試料中又は血中の糖化ヘモグロビン濃度よりも低くなるよう酵素量及び反応時間を設定しうる。
　定量的測定では、予め、濃度既知の糖化ヘモグロビンを含む対照の吸光度等の測定値から最小二乗法などの回帰分析を行うことによって検量線を作成しておくこともできる。作成した検量線に対し、糖化ヘモグロビン濃度が未知である試料の測定値をプロットすることで、当該試料中の糖化ヘモグロビン濃度を定量できる。
　糖化ヘモグロビンを含む試料に糖化ヘモグロビンオキシダーゼを作用させる時間は、例えば５秒以上、１０秒以上、２０秒以上、３０秒以上、１分以上、６０分未満、３０分未満、１０分未満、例えば５分未満、例えば０．５分以上～６０分未満、１分以上～３０分未満、１分以上～２０分未満、例えば１分以上～１０分未満、例えば１分以上～５分未満としうる。作用温度は、用いる酵素の至適温度にもよるが、例えば、２０～４５℃であり、通常の酵素反応に用いられる温度を適宜選択できる。
　使用する糖化ヘモグロビンオキシダーゼの酵素量は、試料溶液中に含まれる基質の量にもよるが、例えば、終濃度が、０．１～５０Ｕ／ｍＬ、例えば０．２～１０Ｕ／ｍＬとなるように添加しうる。作用させる際のｐＨは、アマドリアーゼが作用可能なｐＨ、例えば至適ｐＨを考慮して、緩衝剤を用いて調整しうる。反応pHは、例えば３～１１、５～９、例えば６～８である。
　過酸化水素の測定は、過酸化水素を生成する工程と同時に行うことができ、アマドリアーゼの作用時と同時に進行させることができる。生成物の代わりに消費物を測定してもよく、測定する消費物としては溶存酸素が挙げられ、溶存酸素計等を用いて反応液中の溶存酸素量を測定することができる。
（アマドリアーゼ活性の測定方法）
　以下に、モデル基質としてHbA1c型αF8P、HbS1c型αF8P、又はHbC1c型αF8Pを用いた、アマドリアーゼ活性の測定方法を例示するが、測定方法はこれに限らない。これらの基質は合成基質でありうる（ペプチド研究所製）。本明細書において、特に断らない限り、酵素力価は、HbA1c型αF8Pを基質として測定した時の、１分間に１μｍｏｌの過酸化水素を生成する酵素量を１Ｕと定義する。
　他の基質での評価が必要であれば、αＦＶ、αＦＶＨ等の糖化ペプチドは、例えば、阪上らの方法に基づき合成、精製したものを用いることができる（特開２００１－９５５９８号公報）。αF6Pは、HbA1cをエンドプロテイナーゼGlu-Cで処理することにより得られる（Clin.Chem.,43,1994-1951(1997))。合成基質として提供されるαF6P（ペプチド研究所製）を用いてもよい。
Ａ：活性測定用試薬
（試薬１）：５Ｕ／ｍｌ　パーオキシダーゼ（東洋紡製）、０．４９ｍＭ　４－アミノアンチピリン（和光純薬工業社製）を含む０．１Ｍ　リン酸緩衝液　ｐＨ６．５
（試薬２）：１５ｍＭ　ＴＯＯＳ（N-エチル-N-(2-ヒドロキシ-3-スルホプロピル)-m-トルイジンナトリウム、同仁化学研究所製）溶液
５００ｍｇのＴＯＯＳをイオン交換水に溶解し、１００ｍｌに定容する。 　
（試薬３）：３００μＭHbA1c型、HbC1c型、又はHbS1c型αF8P（ペプチド研究所製）溶液（終濃度１０μＭ）
Ｂ：活性測定法
　２．７ｍｌの試薬１、１００μｌの試薬２、および１００μｌの酵素液を混和し、３７℃で５分間予備加温する。その後、試薬３を１００μｌ加えて良く混ぜた後、分光光度計（Ｕ－３９００、日立ハイテクサイエンス社製）により、５５５ｎｍにおける吸光度の経時変化を３７℃で観測し、５５５ｎｍにおける吸光度の１分間あたりの変化量（ΔAs）を測定する。なお、対照液は、１００μｌの試薬３の代わりに１００μｌのイオン交換水を加える以外は前記と同様にして、５５５ｎｍにおける吸光度の１分間あたりの変化量（ΔA0）を測定する。３７℃で１分間当たりに生成される過酸化水素のマイクロモル数を酵素液中の活性単位(Ｕ)とし、下記の式に従って算出する。 　
活性(U/ml)＝｛(ΔAs－ΔA0)×3.0×df｝÷(39.2×0.5×0.1)
ΔAs：反応液の1分間あたりの吸光度変化
ΔA0：対照液の1分間あたりの吸光度変化
39.2：反応により生成されるキノイミン色素のミリモル吸光係数(mM-1・cm-1)
0.5：1 molの過酸化水素による生成されるキノイミン色素のmol数
df：希釈係数。
（さらなる糖化ヘモグロビンオキシダーゼの作製方法）
　本発明者は、HbA1cのみならずHbS1cやHbC1cにも対応可能な糖化ヘモグロビンオキシダーゼが必要である、という新規の課題を見出し、A1cOXに特定のアミノ酸置換を導入して糖化ヘモグロビンオキシダーゼを作製することによりこの課題を解決した。本発明の変異は適宜組み合わせることができる。また本発明の知見に基づいてさらなる改変体を作製することもできる。したがってある実施形態において本発明は、以下の工程を含む、アマドリアーゼ又はA1cオキシダーゼを改変して糖化ヘモグロビンオキシダーゼを作製する方法を提供する：
(i) アマドリアーゼ遺伝子又はA1cオキシダーゼ遺伝子を取得する、
(ii) アマドリアーゼ遺伝子又はA1cオキシダーゼ遺伝子をベクターに組み入れ、宿主細胞を形質転換し、アマドリアーゼ又はA1cオキシダーゼを発現させ、発現産物を単離する、(iii) 発現産物の相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]を測定する、(iv) アマドリアーゼ又はA1cオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位、１０９位、１０６位又は１０２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アスパラギン酸、アラニン、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されるよう、前記アマドリアーゼ遺伝子又はA1cオキシダーゼ遺伝子を改変する、
(v) 改変後の遺伝子をベクターに組み入れ、宿主細胞を形質転換し、改変体を発現させ、発現産物を単離する、
(vi) 改変体の発現産物の相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]を測定し、工程(iii)の値と比較する、
(vii) 改変前のアマドリアーゼ若しくはA1cオキシダーゼの相対活性[HbS1c/HbA1c]と比較して、改変後の改変体の相対活性[HbS1c/HbA1c]が1.1倍以上増大しているか、又は改変前のアマドリアーゼ若しくはA1cオキシダーゼの相対活性[HbC1c/HbA1c]と比較して、改変後の改変体の相対活性[HbC1c/HbA1c]が1.1倍以上増大している場合、当該改変体を糖化ヘモグロビンオキシダーゼとする、並びに
(viii) 必要に応じて、工程(vii)の改変体について、工程(iv)～(vi)を繰り返す。上記工程(iii)や(vi)の評価基質は、便宜上αF8Pとすることができるが、6アミノ酸以上の鎖長を有する他のフルクトシル基質やHbA1c、HbS1c、HbC1cを用いてもよい。
（実施例）
　以下、実施例により、本発明をさらに具体的に説明する。ただし、本発明の技術的範囲は、それらの例により何ら限定されるものではない。
１．Coniochaeta属由来アマドリアーゼをコードする組換え体プラスミドの調製
　Coniochaeta属由来アマドリアーゼ遺伝子（配列番号２３）の組換え体プラスミドを有する大腸菌ＪＭ１０９（ｐＫＫ２２３－３－ＣＦＰ－Ｔ７－Ｈ３８－ＧＹ）株（国際公開第２０１６／１５９３８４号参照）を、３ｍｌのＬＢ－ａｍｐ培地［１％（ｗ／ｖ）バクトトリプトン、０．５％（ｗ／ｖ）ペプトン、０．５％（ｗ／ｖ）ＮａＣｌ、５０μｇ／ｍｌ　アンピシリン］に接種して、３７℃で１６時間振とう培養し、培養物を得た。
　この培養物を１０，０００×ｇで、１分間遠心分離することにより集菌して菌体を得た。この菌体より、GenElute Plasmid Miniprep Kit（Sigma-Aldrich社製）を用いて組換え体プラスミドｐＫＫ２２３－３－ＣＦＰ－Ｔ７－Ｈ３８－ＧＹを抽出して精製し、２．５μｇの組換え体プラスミドｐＫＫ２２３－３－ＣＦＰ－Ｔ７－Ｈ３８－ＧＹを得た。
２．Coniochaeta属由来アマドリアーゼをコードする組換え体プラスミドの部位特異的改変操作
　得られた組換え体プラスミドｐＫＫ２２３－３－ＣＦＰ－Ｔ７－Ｈ３８－ＧＹを鋳型として、配列番号２５、２６の合成オリゴヌクレオチド、ＫＯＤ－Ｐｌｕｓ－Ｎｅｏ（東洋紡績社製）を用い、以下の条件でＰＣＲを行った。
　すなわち、10× PCR Buffer for KOD -Plus- Neoを５μｌ、ｄＮＴＰが各２ｍＭになるよう調製されたｄＮＴＰｓ混合溶液を５μｌ、２５ｍＭのＭｇＳＯ４溶液を３μｌ、鋳型となるプラスミドDNAを５０ｎｇ、上記合成オリゴヌクレオチドをそれぞれ１５ｐｍｏｌ、ＫＯＤ－Ｐｌｕｓ－Ｎｅｏを１Ｕｎｉｔ加えて、滅菌水により全量を５０μｌとした。調製した反応液をサーマルサイクラー（エッペンドルフ社製）を用いて、９４℃で２分間インキュベートし、続いて、「９４℃、１５秒」－「５０℃、３０秒」－「６８℃、３分」のサイクルを１５回繰り返した。
　得られたＤＮＡを制限酵素ＤｐｎＩ（NEW ENGLAND BioLabs社製）で処理し、残存している鋳型ＤＮＡを切断した後、大腸菌ＪＭ１０９を形質転換し、ＬＢ－ａｍｐ寒天培地に展開した。生育したコロニーをＬＢ－ａｍｐ培地に接種して振とう培養し、慣用法によりプラスミドＤＮＡを単離した。該プラスミド中のアマドリアーゼをコードするＤＮＡの塩基配列を、マルチキャピラリーＤＮＡ解析システムApplied Biosystems 3130xlジェネティックアナライザ（Life Technologies社製）を用いて決定し、変異が導入されていることを確認した。目的の変異が導入された、改変型アマドリアーゼをコードする組換え体プラスミド（ｐＫＫ２２３－３－ＣＦＰ－Ｔ７－Ｈ３９－１Ｍ）を得た。
　得られた組換え体プラスミドｐＫＫ２２３－３－ＣＦＰ－Ｔ７－Ｈ３９－Ｍを鋳型として、配列番号２７、２８の合成オリゴヌクレオチド、ＫＯＤ－Ｐｌｕｓ－Ｎｅｏ（東洋紡績社製）を用い、以下の条件でＰＣＲを行った。
　すなわち、10× PCR Buffer for KOD -Plus- Neoを５μｌ、ｄＮＴＰが各２ｍＭになるよう調製されたｄＮＴＰｓ混合溶液を５μｌ、２５ｍＭのＭｇＳＯ４溶液を３μｌ、鋳型となるプラスミドDNAを５０ｎｇ、上記合成オリゴヌクレオチドをそれぞれ１５ｐｍｏｌ、ＫＯＤ－Ｐｌｕｓ－Ｎｅｏを１Ｕｎｉｔ加えて、滅菌水により全量を５０μｌとした。調製した反応液をサーマルサイクラー（エッペンドルフ社製）を用いて、９４℃で２分間インキュベートし、続いて、「９４℃、１５秒」－「６８℃、３分」のサイクルを７回繰り返した。
　得られたＤＮＡを制限酵素ＤｐｎＩ（NEW ENGLAND BioLabs社製）で処理し、残存している鋳型ＤＮＡを切断した。ＤｐｎＩ処理後の反応液を２μｌ、Ligation high Ver.2（東洋紡製）を５μｌ、T4 Polynucleotide Kinase (東洋紡製)を５Ｕｎｉｔｓ加えて、滅菌水により全量を１５μｌとして、１６℃で１時間ライゲーション反応を行った。得られた環状ＤＮＡを用いて大腸菌ＪＭ１０９を形質転換し、ＬＢ－ａｍｐ寒天培地に展開した。生育したコロニーをＬＢ－ａｍｐ培地に接種して振とう培養し、慣用法によりプラスミドＤＮＡを単離した。該プラスミド中のアマドリアーゼをコードするＤＮＡの塩基配列を、マルチキャピラリーＤＮＡ解析システムApplied Biosystems 3130xlジェネティックアナライザ（Life Technologies社製）を用いて決定し、変異が導入されていることを確認した。目的の変異が導入された、改変型アマドリアーゼをコードする組換え体プラスミド（ｐＫＫ２２３－３－ＣＦＰ－Ｔ７－Ｈ３９－３Ｍ）を得た。
　得られた組換え体プラスミドｐＫＫ２２３－３－ＣＦＰ－Ｔ７－Ｈ３９－３Ｍを鋳型として、配列番号２９、３０の合成オリゴヌクレオチド、ＫＯＤ－Ｐｌｕｓ－Ｎｅｏ（東洋紡績社製）を用い、以下の条件でＰＣＲを行った。
　すなわち、10× PCR Buffer for KOD -Plus- Neoを５μｌ、ｄＮＴＰが各２ｍＭになるよう調製されたｄＮＴＰｓ混合溶液を５μｌ、２５ｍＭのＭｇＳＯ４溶液を３μｌ、鋳型となるプラスミドDNAを５０ｎｇ、上記合成オリゴヌクレオチドをそれぞれ１５ｐｍｏｌ、ＫＯＤ－Ｐｌｕｓ－Ｎｅｏを１Ｕｎｉｔ加えて、滅菌水により全量を５０μｌとした。調製した反応液をサーマルサイクラー（エッペンドルフ社製）を用いて、９４℃で２分間インキュベートし、続いて、「９４℃、１５秒」－「５０℃、３０秒」－「６８℃、３分」のサイクルを１５回繰り返した。
　得られたＤＮＡを制限酵素ＤｐｎＩ（NEW ENGLAND BioLabs社製）で処理し、残存している鋳型ＤＮＡを切断した後、大腸菌ＪＭ１０９を形質転換し、ＬＢ－ａｍｐ寒天培地に展開した。生育したコロニーをＬＢ－ａｍｐ培地に接種して振とう培養し、慣用法によりプラスミドＤＮＡを単離した。該プラスミド中のアマドリアーゼをコードするＤＮＡの塩基配列を、マルチキャピラリーＤＮＡ解析システムApplied Biosystems 3130xlジェネティックアナライザ（Life Technologies社製）を用いて決定し、変異が導入されていることを確認した。目的の変異が導入された、改変型アマドリアーゼをコードする組換え体プラスミド（ｐＫＫ２２３－３－ＣＦＰ－Ｔ７－Ｈ４０－３Ｍ）を得た。
３．Coniochaeta属由来アマドリアーゼの生産、精製
　上記のようにして得られたアマドリアーゼを生産する形質転換大腸菌（ＪＭ１０９）を、終濃度０．１ｍＭとなるようにＩＰＴＧを添加したＬＢ－ａｍｐ培地１００ｍｌに植菌し、２５℃で１６時間培養した。得られた培養菌体を１０ｍＭ　リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）で洗浄した後、同緩衝液に菌体を懸濁して超音波破砕処理を行い、２０，０００×ｇで１０分間遠心分離し、粗酵素液４０ｍｌを調製した。
　HiScreen CaptoQカラム（ＧＥヘルスケア社製）を１０ｍＭ　リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）で平衡化した後、調製した変異体アマドリアーゼを含む各粗酵素液をアプライして該アマドリアーゼを陰イオン交換樹脂に結合させた。その後、１０ｍＭ　リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）で２０カラム体積分送液し、夾雑タンパク質を溶出させた後、１０ｍＭ　リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．５）中のＮａＣｌ濃度を０ｍＭから２５０ｍＭのに直線的に増加させながら樹脂に結合したタンパク質を溶出させ、アマドリアーゼ活性を示す画分を回収した。
　得られたアマドリアーゼ活性を示す画分を、Ａｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ　Ｕｌｔｒａｃｅｌ－３０Ｋ（ミリポア社製）により濃縮し、ＨｉＬｏａｄ　２６／６０　Ｓｕｐｅｒｄｅｘ２００により精製した。樹脂の平衡化、溶出には１５０ｍＭのＮａＣｌを含む１０ｍＭ　リン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．０）を用いた。溶出した各フラクションの純度をＳＤＳ－ＰＡＧＥにより評価し、夾雑タンパク質を含んでいないフラクションを回収し、アマドリアーゼの精製標品とした。H40とH40-3Mの基質特異性は同じであることを確認した。
４．Coniochaeta属由来アマドリアーゼの活性測定
　精製CFP-T7-H40-3M標品を用いて10μM のHbA1c型、HbS1c型及びHbC1c型のαF8Pを基質とした時の活性を測定した。その結果CFP-T7-H40-3Mの、HbA1c型αF8Pに対する活性を１００％とした場合、HbS1c型αF8Pに対する活性は３９％であり、HbC1c型αF8Pに対する活性は１１％であった。
５．Coniochaeta属由来アマドリアーゼの改変体の作製
　上記のCFP-T7-H40-3M（A1cOX）に基づき、鋳型としてｐＫＫ２２３－３－ＣＦＰ－Ｔ７－Ｈ４０－３Ｍさらに以下のプライマーを使用し、下記の変異を導入した。プラスミド調製、導入変異の配列確認、精製酵素の調製等は上記と同様の方法により行った。変異導入時のPCRの班応益組成および反応条件は、下記プライマーを用いる点以外は、組み換体プラスミドｐＫＫ２２３－３－ＣＦＰ－Ｔ７－Ｈ３９－１Ｍを調製する時と同一の条件で実施した。 　
配列番号３１、３２　　導入変異：K102A
配列番号３１、３３　　導入変異：K102E
配列番号３４、３５　　導入変異：K106A
配列番号３４、３６　　導入変異：K106D
配列番号３７、３８　　導入変異：K113A
配列番号３７、３９　　導入変異：K113E
配列番号３７、４０　　導入変異：K113S
配列番号３７、４１　　導入変異：K113T
配列番号３７、４２　　導入変異：K113N
配列番号３７、４３　　導入変異：K113Q
配列番号３７、４４　　導入変異：K113D
６．Coniochaeta属由来アマドリアーゼの改変体の評価
　得られた各種の精製酵素標品を用いてHbA1c型及びHbS1c型のαF8Pを基質とした時の活性を測定した。結果を下記の表に示す。各酵素の、HbA1c型αF8Pに対する活性を１００％としたときの、HbS1c型αF8Pに対する相対活性を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　上記の表のとおり、K102A及びK102E変異は、アマドリアーゼの、HbS1c型基質に対する相対活性を向上させた。改変の前後で相対活性[HbS1c/HbA1c]は、K102A変異体について約1.97倍、K102E変異体について約1.74倍増大した。
　さらなる変異体について、３種の基質で試験を行った。得られた各種の精製酵素標品を用いてHbA1c型、HbS1c型及びHbC1c型のαF8Pを基質とした時の活性を測定した。結果を下記の表に示す。各酵素の、HbA1c型αF8Pに対する活性を１００％としたときの、HbS1c型αF8P及びHbC1c型αF8Pに対する相対活性を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
　上記の表のとおり、K106A、K106D、K113A、K113E K113S、K113T、K113N、K113Q、K113D及びK113H変異は、アマドリアーゼの、HbS1c型及びHbC1c型基質に対する相対活性を向上させた。改変により相対活性[HbS1c/HbA1c]は約2.1倍～約3.3倍増大し、相対活性[HbC1c/HbA1c]は約2.8倍～約9.4倍増大した。なお、各変異体の各基質に対する比活性はいずれも20mU/mg以上であることを確認した。これらの結果から、K113位、K106位、K102位を、正電荷を帯びたアミノ酸（K、H、R）以外のアミノ酸、例えばD、E、S、T、N、Q、C、G、P、A、V、I、L、M、F、Y、Wに変異させても同様に相対活性が向上すると期待される。例えば、K113位をC、G、P、V、I、L、M、F、Y又はWに変異させても同様に相対活性が向上すると期待される。例えば、K106位をE、S、T、N、Q、C、G、P、V、I、L、M、F、Y又はWに変異させても同様に相対活性が向上すると期待される。例えば、D、S、T、N、Q、C、G、P、V、I、L、M、F、Y又はWに変異させても同様に相対活性が向上すると期待される。
７．Emericella属由来アマドリアーゼをコードする組換え体プラスミドの部位
　配列番号４５は、国際公開第ＷＯ２０１５／００５２５８号に開示されているEmericella nidulans由来糖化ヘキサペプチドオキシダーゼ（FPOX-42、本明細書中ではEn42FXと表記する）のアミノ酸配列であり、配列番号４６の遺伝子にコードされている。En42FX遺伝子をpET22bプラスミドベクターにサブクローニングしたpET22b-En42FX（調製方法は国際公開第ＷＯ２０１６／０６３９８４号参照）を鋳型にして、以下のプライマーを使用し、下記の変異を導入した。プラスミド調製は（１．Coniochaeta属由来アマドリアーゼをコードする組換え体プラスミドの調製）および（２．Coniochaeta属由来アマドリアーゼをコードする組換え体プラスミドの部位特異的改変操作）と同様の方法により行った。変異導入時のPCRは（２．Coniochaeta属由来アマドリアーゼをコードする組換え体プラスミドの部位特異的改変操作）に記載の方法に沿って、pET22b-En42FXを鋳型として、下記プライマーを用いて実施した。PCR反応条件、導入変異の配列確認等は、（２．Coniochaeta属由来アマドリアーゼをコードする組換え体プラスミドの部位特異的改変操作）と同一の条件で実施した。 　
配列番号４７、４８　　導入変異：R105A
配列番号４７、４９　　導入変異：R105S
配列番号４７、５０　　導入変異：R105L
配列番号４７、５２　　導入変異：R105N
配列番号４７、５３　　導入変異：R105Q
配列番号４７、５４　　導入変異：R105D
配列番号４７、５５　　導入変異：R105E
配列番号５６、５７　　導入変異：R108A
配列番号５６、５８　　導入変異：R108S
配列番号５６、５９　　導入変異：R108L
配列番号５６、６１　　導入変異：R108Q
配列番号５６、６２　　導入変異：R108D
配列番号５６、６３　　導入変異：R108E
配列番号６４、６５　　導入変異：S112D
配列番号６４、６６　　導入変異：S112E
　目的の変異が導入されたことを確認したプラスミドは、大腸菌BL21(DE3)株に形質導入し、各改変型En42FX生産株を得た。
８．Emericella属由来アマドリアーゼの生産
　各改変型En42FX生産株を、０．１ｍＭのＩＰＴＧを添加したＬＢ－ａｍｐ培地５０ｍｌにおいて、２５℃で１６時間培養した。その後、各菌体をｐＨ７．０の１０ｍＭリン酸緩衝液で洗浄、超音波破砕、１５，０００ｒｐｍで１０分間遠心分離し、各粗酵素液４．０ｍｌを調製した。各粗酵素液はＡｍｉｃｏｎ　Ｕｌｔｒａ　Ｕｌｔｒａｃｅｌ－３０Ｋ（ミリポア社製）を用いて、およそ１．０ｍｌに濃縮して活性測定に使用した。
９．Emericella属由来アマドリアーゼの改変体の評価
　得られた各種の精製酵素標品を用いてHbA1c型及びHbS1c型のαF8Pを基質とした時の活性を測定した。結果を下記の表に示す。各酵素の、HbA1c型αF8Pに対する活性を１００％としたときの、HbS1c型αF8P及びHbS1c型αF8Pに対する相対活性を示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
 　上記の表のとおり、En42FXに対するR105A、R105S、R105L、R105N、R105Q、R105D、R105E、R108A、R108S、R108L、R108Q、R108D、R108E、S112D、S112E変異は、アマドリアーゼの、HbS1c型及びHbC1c型基質に対する相対活性を向上させた。改変により相対活性[HbS1c/HbA1c]は約１．４倍～約３．７倍増大し、相対活性[HbC1c/HbA1c]は約１．１倍～約１０．８倍増大した。これらの結果から、R105、R108を、正電荷を帯びたアミノ酸（K、H、R）以外のアミノ酸、例えばD、E、S、T、N、Q、C、G、P、A、V、I、L、M、F、Y、Wに変異させても同様に相対活性[HbS1c/HbA1c]及び相対活性[HbC1c/HbA1c]が向上すると期待される。S112を負電荷を帯びたアミノ酸（D、E）に変異させると相対活性[HbS1c/HbA1c]及び相対活性[HbC1c/HbA1c]が向上すると期待される。
　本発明で見出した、HbS1c型及び／又はHbC1c型αF8Pに対する相対活性を向上させる変異を導入したA1cオキシダーゼは、HbA1cのみならず、糖化HbS及び／又は糖化HbCに対する相対活性が向上していると考えられる。これは種々の遺伝型の糖化ヘモグロビンを有する被験者群についての測定に用いることができ、産業上の利用価値が期待される。
[配列表の簡単な説明]
配列番号１　Coniochaeta属由来のアマドリアーゼ（CFP-T7）
配列番号２　CFP-T7遺伝子配列
配列番号３　Eupenicillium terrenum由来のアマドリアーゼ
配列番号４　Pyrenochaeta sp.由来のケトアミンオキシダーゼ
配列番号５　Arthrinium sp.由来のケトアミンオキシダーゼ
配列番号６　Curvularia clavata由来のケトアミンオキシダーゼ
配列番号７　Neocosmospora vasinfecta由来のケトアミンオキシダーゼ
配列番号８　Cryptococcus neoformans由来のフルクトシルアミノ酸オキシダーゼ
配列番号９　Phaeosphaeria nodorum由来のフルクトシルペプチドオキシダーゼ
配列番号１０　Aspergillus nidulans由来のフルクトシルアミノ酸オキシダーゼ
配列番号１１　Emericella nidulans由来のフルクトシルペプチドオキシダーゼ
配列番号１２　Ulocladium sp.由来のフルクトシルアミノ酸オキシダーゼ
配列番号１３　Penicillium janthinellum由来のフルクトシルアミノ酸オキシダーゼ
配列番号１４　Ao2 (Aspergillus oryzae由来アマドリアーゼ、別称FaoAo2)
配列番号１５　Af2 (Aspergillus fumigatus由来アマドリアーゼ、別称AmadoriaseII)
配列番号１６　At (Aspergillus terreus由来アマドリアーゼ、別称FAOD-A)
配列番号１７　Fo (Fusarium oxysporum由来アマドリアーゼ)
配列番号１８　Ao1 (Aspergillus oryzae由来アマドリアーゼ、別称FaoAo 1)
配列番号１９　Af1 (Aspergillus fumigatus由来アマドリアーゼ、別称AmadoriaseI)
配列番号２０　Pi (Pichia sp.由来アマドリアーゼ)
配列番号２１　Dh (Debaryomyces hansenii由来アマドリアーゼ)
配列番号２２　CFP-T7-H38-GY　アミノ酸配列
配列番号２３　CFP-T7-H38-GY遺伝子配列
配列番号２４　CFP-T7-H40-3M　アミノ酸配列
配列番号２５～４４　プライマー
配列番号４５　En42FXアミノ酸配列
配列番号４６　En42FX遺伝子配列
配列番号４７～６６　プライマー
　本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願はそのまま引用により本明細書に組み入れられるものとする。他の文献と記載が齟齬する場合は本明細書が優先する。

Claims (20)

  1. 　HbS1cまたはHbC1cを含み得る試料に糖化ヘモグロビンオキシダーゼを作用させる工程を含む、試料中のHbS1cまたはHbC1cを測定する方法。
  2. 　糖化ヘモグロビンオキシダーゼの作用により生じる還元型化合物の量を測定する、請求項１に記載の方法。
  3. 　測定される還元型化合物が過酸化水素である、請求項２に記載の方法。
  4. 　糖化ヘモグロビンオキシダーゼが(a)及び／又は(b)の性質を有する、請求項１～３のいずれか１項に記載の方法、
    (a)　HbS1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbS1c/HbA1c]が0.45以上である、
    (b)　HbC1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbC1c/HbA1c]が0.15以上である。
  5. 　糖化ヘモグロビンオキシダーゼの至適pH範囲が６～８、作用pH範囲が５～９、至適温度範囲が２５～４０℃であり、SDS-PAGE上での分子量が約４５～５５ＫＤａである、請求項１～４のいずれか１項に記載の方法。
  6. 　糖化ヘモグロビンオキシダーゼが、以下の(i)～(viii)からなる群より選択される糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体である、請求項１～５のいずれか１項に記載の方法、
    (i)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アスパラギン酸、アラニン、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (ii)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０９位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アラニン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (iii)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０６位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アラニン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (iv)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０２位に対応する位置のアミノ酸がアラニン、アスパラギン酸、グルタミン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (v)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位、１０９位、１０６位、及び１０２位に対応する位置以外の位置における１又は数個のアミノ酸が置換、欠失又は付加されたアミノ酸配列からなる糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (vi)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有し、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼにおける、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の２３９位に対応する位置のアミノ酸がトリプトファン、フェニルアラニン又はチロシンであり、配列番号１の２８２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸であり、配列番号１の３７６位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の４１８位に対応する位置のアミノ酸がアルギニンであり、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列がGly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）である、糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (vii)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有し、配列番号１又は配列番号４５の相同性領域におけるアミノ酸配列と当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの対応する位置の相同性領域におけるアミノ酸配列とが９０％以上の配列同一性を有する糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、或いは
    (viii)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と５０％以上の配列同一性を有し、配列番号１又は配列番号４５の相同性領域におけるアミノ酸配列と当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの対応する位置の相同性領域におけるアミノ酸配列とが７０％以上の配列同一性を有し、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼにおける、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の２３９位に対応する位置のアミノ酸がトリプトファン、フェニルアラニン又はチロシンであり、配列番号１の２８２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸であり、配列番号１の３７６位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の４１８位に対応する位置のアミノ酸がアルギニンであり、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列がGly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）である、糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体。
  7. 　試料中のHbS1cまたはHbC1cを測定するための糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。
  8. 　HbS1cまたはHbC1cに糖化ヘモグロビンオキシダーゼを作用させて生じる還元型化合物の量を測定するためのものである、請求項７に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。
  9. 　生じる還元型化合物が過酸化水素である、請求項８に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。
  10. 　糖化ヘモグロビンオキシダーゼが(a)及び／又は(b)の性質を有する、請求項７～９のいずれか１項に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ、
    (a)　HbS1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbS1c/HbA1c]が0.45以上である、
    (b)　HbC1c型αF8Pに対する活性とHbA1c型αF8Pに対する活性との比、すなわち相対活性[HbC1c/HbA1c]が0.15以上である。
  11. 　糖化ヘモグロビンオキシダーゼの至適pH範囲が６～８、作用pH範囲が５～９、至適温度範囲が２５～４０℃であり、SDS-PAGE上での分子量が約４５～５５ＫＤａである、請求項７～１０のいずれか１項に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。
  12. 　糖化ヘモグロビンオキシダーゼが、以下の(i)～(viii)からなる群より選択されるものである、請求項７～１１のいずれか１項に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ、
    (i)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アスパラギン酸、アラニン、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (ii)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０９位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アラニン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (iii)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０６位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アラニン、アスパラギン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (iv)　糖化ヘモグロビンオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１０２位に対応する位置のアミノ酸がアラニン、アスパラギン酸、グルタミン酸、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されている糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (v)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位、１０９位、１０６位、及び１０２位に対応する位置以外の位置における１又は数個のアミノ酸が置換、欠失又は付加されたアミノ酸配列からなる糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (vi)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有し、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼにおける、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の２３９位に対応する位置のアミノ酸がトリプトファン、フェニルアラニン又はチロシンであり、配列番号１の２８２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸であり、配列番号１の３７６位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の４１８位に対応する位置のアミノ酸がアルギニンであり、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列がGly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）である、糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、
    (vii)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と７０％以上の配列同一性を有し、配列番号１又は配列番号４５の相同性領域におけるアミノ酸配列と当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの対応する位置の相同性領域におけるアミノ酸配列とが９０％以上の配列同一性を有する糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体、或いは
    (viii)　前記(i)、(ii)、(iii)、又は(iv)において、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの全長アミノ酸配列が配列番号１又は配列番号４５のアミノ酸配列と５０％以上の配列同一性を有し、配列番号１又は配列番号４５の相同性領域におけるアミノ酸配列と当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼの対応する位置の相同性領域におけるアミノ酸配列とが７０％以上の配列同一性を有し、当該糖化ヘモグロビンオキシダーゼにおける、配列番号１の６０位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の２３９位に対応する位置のアミノ酸がトリプトファン、フェニルアラニン又はチロシンであり、配列番号１の２８２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸であり、配列番号１の３７６位に対応する位置のアミノ酸がグリシンであり、配列番号１の４１８位に対応する位置のアミノ酸がアルギニンであり、配列番号１の１５～２０位に対応する位置のアミノ酸配列がGly-Xaa-Gly-Xaa-Xaa-Gly（ここでXaaは任意のアミノ酸を示す）である、糖化ヘモグロビンオキシダーゼ改変体。
  13. 　コニオカエタ(Coniochaeta)属、ユーペニシリウム(Eupenicillium)属、ピレノケータ(Pyrenochaeta)属、アルスリニウム(Arthrinium)属、カーブラリア(Curvularia)属、ネオコスモスポラ(Neocosmospora)属、クリプトコッカス(Cryptococcus)属、フェオスフェリア(Phaeosphaeria)属、アスペルギルス(Aspergillus)属、エメリセラ(Emericella)属、ウロクラディウム(Ulocladium)属、またはペニシリウム(Penicillium)属のアマドリアーゼに基づくものである、請求項７～１２のいずれか１項に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。
  14. 　アマドリアーゼがコニオカエタ　エスピー(Coniochaeta sp.)、ユーペニシリウム　テレナム(Eupenicillium terrenum)、ピレノケータ　エスピー(Pyrenochaeta sp.)、アルスリニウム　エスピー(Arthrinium sp.)、カーブラリア　クラベータ(Curvularia clavata)、ネオコスモスポラ　バシンフェクタ(Neocosmospora vasinfecta)、クリプトコッカス　ネオフォルマンス(Cryptococcus neoformans)、フェオスフェリア　ノドラム(Phaeosphaeria nodorum)、アスペルギルス　ニードランス(Aspergillus nidulans)、エメリセラ　ニードランス(Emericella nidulans)属、ウロクラディウム　エスピー(Ulocladium sp.)、またはペニシリウム　ヤンシネラム(Penicillium janthinelum)もしくはペニシリウム　クリソゲナム（Penicillium chrysogenum）由来である、請求項１３に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼ。
  15. 　請求項７～１４のいずれか１項に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼを含む、HbS1cまたはHbC1c測定用試薬組成物。
  16. 　請求項７～１４のいずれか１項に記載の糖化ヘモグロビンオキシダーゼをコードする、遺伝子。
  17. 　請求項１６に記載の遺伝子を含む、ベクター。
  18. 　請求項１７に記載のベクターを含む、宿主細胞。
  19. 　以下の工程を含む、糖化ヘモグロビンオキシダーゼの製造方法、
    （i）請求項１８に記載の宿主細胞を、糖化ヘモグロビンオキシダーゼを発現しうる条件下で培養する工程、及び
    （ii）培養物又は培養液から糖化ヘモグロビンオキシダーゼを単離する工程。
  20. 　以下の工程を含む、アマドリアーゼ又はA1cオキシダーゼを改変して糖化ヘモグロビンオキシダーゼを作製する方法、
    (i) アマドリアーゼ遺伝子又はA1cオキシダーゼ遺伝子を取得する、
    (ii) アマドリアーゼ遺伝子又はA1cオキシダーゼ遺伝子をベクターに組み入れ、宿主細胞を形質転換し、アマドリアーゼ又はA1cオキシダーゼを発現させ、発現産物を単離する、(iii) 発現産物の相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]を測定する、(iv) アマドリアーゼ又はA1cオキシダーゼのアミノ酸配列を、配列番号１に記載のアミノ酸配列とアライメントしたときに、配列番号１に示すアミノ酸配列における１１３位、１０９位、１０６位又は１０２位に対応する位置のアミノ酸がグルタミン酸、アスパラギン酸、アラニン、セリン、トレオニン、アスパラギン、グルタミン、システイン、グリシン、プロリン、バリン、イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、及びトリプトファンからなる群より選択されるアミノ酸に改変されるよう、前記アマドリアーゼ遺伝子又はA1cオキシダーゼ遺伝子を改変する、
    (v) 改変後の遺伝子をベクターに組み入れ、宿主細胞を形質転換し、改変体を発現させ、発現産物を単離する、
    (vi) 改変体の発現産物の相対活性[HbS1c/HbA1c]及び／又は相対活性[HbC1c/HbA1c]を測定し、工程(iii)の値と比較する、
    (vii) 改変前のアマドリアーゼ若しくはA1cオキシダーゼの相対活性[HbS1c/HbA1c]と比較して、改変後の改変体の相対活性[HbS1c/HbA1c]が1.1倍以上増大している、かつ／又は改変前のアマドリアーゼ若しくはA1cオキシダーゼの相対活性[HbC1c/HbA1c]と比較して、改変後の改変体の相対活性[HbC1c/HbA1c]が1.1倍以上増大している場合、当該改変体を糖化ヘモグロビンオキシダーゼとする、並びに
    (viii) 必要に応じて、工程(vii)の糖化ヘモグロビンオキシダーゼについて、工程(iv)～(vi)を繰り返す。
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