WO2020059961A1 - 돼지의 fc 단편과 융합된 항원 및 이를 포함하는 백신 조성물 - Google Patents

돼지의 fc 단편과 융합된 항원 및 이를 포함하는 백신 조성물 Download PDF

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    • C12N2770/32011—Picornaviridae
    • C12N2770/32111—Aphthovirus, e.g. footandmouth disease virus
    • C12N2770/32134—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein

Definitions

  • the present invention relates to an antigen fused with a Fc fragment of a pig, a vaccine composition comprising the same, and the like.
  • Vaccines for the prevention of infectious diseases induce specific and effective immune responses against pathogens, and the need for the prevention of various infectious diseases is gradually increasing.
  • various types of vaccines have been developed, such as dead vaccines, attenuated live vaccines, and autologous vaccines.
  • Vaccines made from live or attenuated bacteria are very effective in prevention, but have stability problems due to risks of regression and self-replication. Is often reported, and vaccines using dead bacteria contain toxic substances such as lipopolysaccharide (LPS), or there is a risk that live bacteria may exist. Therefore, the DNA vaccine developed to overcome this limitation is also inserted into the genome of the host to increase the incidence of mutagenesis (mutagenic), or the possibility of acting as an oncogenic gene has emerged.
  • LPS lipopolysaccharide
  • Subunit vaccines are more stable than other vaccines because they use purified antigens, but they lack immunogenicity, so strong immunoadjuvants are required to enhance the immunogenicity. Because the use of immuno-adjuvants can significantly reduce the amount of antigen used, it can not only play a decisive role in rapid vaccine production in situations such as epidemic outbreaks, but also reduce the number of additional vaccination cycles, etc. Cost and inconvenience can be significantly reduced. However, very few adjuvants have been approved for use in vaccines. “Alum”, an immunogen adjuvant, was the first immuno adjuvant admitted to be used in human vaccines in 1932, but it is still the most used immuno adjuvant. Since then, MF59, AS03, etc. have been developed and licensed for use, but there are very few immune antigen adjuvants that are still permitted to be used (Registration No. 10-0517114).
  • the present invention was devised to solve the problems in the prior art as described above, and an object thereof is to provide an antigen fused with an Fc fragment of a pig, a vaccine composition comprising the same, and a method for manufacturing the same.
  • the present invention provides a vaccine composition comprising an antigen fused with the Fc fragment of pig represented by SEQ ID NO: 4 as an active ingredient.
  • the present invention provides a method for preventing or treating infectious diseases, comprising administering to a subject a composition comprising an antigen fused with an Fc fragment of pig represented by SEQ ID NO: 4 as an active ingredient.
  • the present invention provides a preventive or therapeutic use of a composition comprising an antigen fused with an Fc fragment of pig represented by SEQ ID NO: 4 as an active ingredient.
  • the antigen is characterized by having a self-adjuvanting effect and increased solubility by being fused with an Fc fragment.
  • the fusion may be in the form that the antigen is linked to the N-terminal and / or C-terminal of the Fc fragment by a peptide bond, but is not limited thereto, as long as the Fc fragment and the antigen are bound.
  • the present invention provides an expression vector of a recombinant antigen having a self-immune enhancing effect comprising a polynucleotide encoding an antigen and a polynucleotide encoding a porcine Fc fragment represented by SEQ ID NO: 4.
  • the expression vector is a sequence of a promoter gene, a polynucleotide encoding an Fc fragment, and a polynucleotide encoding an antigen, or a promoter gene, a polynucleotide encoding a target protein, and an Fc fragment It may be sequentially connected in the order of the polynucleotide encoding.
  • the promoter is 35S promoter derived from cauliflower mosaic virus, 19S RNA promoter derived from cauliflower mosaic virus, plant actin protein promoter, ubiquitin protein promoter, CMV (Cytomegalovirus) promoter, SV40 (Simian virus 40) promoter, Respiratory syncytial virus (RSV) promoter, EF-1 ⁇ (Elongation factor-1 alpha) promoter, pEMU promoter, MAS promoter, histone promoter, Clp promoter, etc., but is not limited thereto. Does not.
  • the antigen is an antibody, fragment of an antibody, structural protein, regulatory protein, transcription factor, toxin protein, hormone, hormone analog, cytokine, enzyme, fragment of enzyme, enzyme inhibitor, transport protein, It may be a receptor, a fragment of a receptor, a biodefense inducer, a storage protein, a movement protein, an exploitive protein, a reporter protein, etc., but can act as an antigen in the body to induce an immune response. If there is a substance, it is not limited thereto.
  • the expression vector is a polynucleotide encoding a Caperone binding protein (BiP), a gene encoding a His-Asp-Glu-Leu (HDEL) peptide, a 5 'untranslational region (UTR) of M17 Site genes and the like may be further included.
  • BiP Caperone binding protein
  • HDEL His-Asp-Glu-Leu
  • UTR 5 'untranslational region
  • the expression vector is characterized by increasing the expression level of the target protein fused with the Fc fragment and increasing solubility.
  • the present invention provides a transformant transformed with the expression vector.
  • the transformants are microorganisms such as E. coli, Bacillus, Salmonella, yeast, etc., animal cells including human cells, animals such as mice, rats, dogs, monkeys, pigs, horses, cows, etc.
  • microorganisms such as E. coli, Bacillus, Salmonella, yeast, etc.
  • animal cells including human cells, animals such as mice, rats, dogs, monkeys, pigs, horses, cows, etc.
  • Agrobacterium tuberculosis may be plants, etc., the plants are rice, wheat, barley, corn, soybeans, potatoes, wheat, red beans, oats, and food crops including sorghum; Vegetable crops including Arabidopsis thaliana, Chinese cabbage, radish, pepper, strawberry, tomato, watermelon, cucumber, cabbage, melon, pumpkin, green onion, onion, and carrot; Special crops including ginseng, tobacco, cotton, sesame, sugar cane, sugar beet, perilla, peanut, and rapeseed; And fruit trees including apple, pear, jujube, peach, grape, citrus, persimmon, plum, apricot, and banana; And flowers including roses, carnations, chrysanthemums, lilies, and tulips, but are not limited to those that can be transformed with the expression vector of the present invention.
  • the present invention (a) culturing the transformant; And (b) isolating and purifying the antigen fused with the Fc fragment from the transformant or the culture medium.
  • the transformant may preferably be the cell itself, or a culture comprising cells, and the culture medium may be a culture medium in which cells are removed after culturing the cells, but if it contains the recombinant antigen of the present invention It is not limited to this.
  • the antigen fused with the Fc fragment of the pig according to the present invention has a self-immune enhancing effect, it is possible to increase the immunogenicity of the antigen itself without the use of an additional adjuvant, and to increase the solubility and stability of the antigen. It is easy to separate and store antigens.
  • the expression vector according to the present invention is expected to enable high-efficiency production of vaccines by fusion of various antigens with pFc fragments, thereby increasing the production of target antigens.
  • FIG. 1 is a view showing a pCAMBIA1300 vector map according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 2 is a diagram showing the arrangement of genes for pFc fusion VP1 recombinant protein expression according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 3 is a view showing the results of confirming the expression level of the pFc fusion VP1 recombinant protein according to an embodiment of the present invention by Western blotting.
  • FIG. 4 is a view showing the results of confirming the stability of the pFc fusion VP1 recombinant protein according to an embodiment of the present invention by Western blotting.
  • FIG. 5 is a view showing the results of confirming the solubility of pFc fusion VP1 recombinant protein according to an embodiment of the present invention by Western blotting.
  • FIG. 6 is a view showing the results of confirming the solubility of pFc fusion GP5 recombinant antigen according to an embodiment of the present invention by Western blotting.
  • FIG. 7 is a view showing the results of confirming the solubility and productivity of pFc fusion PCV2 recombinant protein according to an embodiment of the present invention by Western blotting.
  • FIG. 8 is a view showing the results confirming the production of pFc fusion E2 recombinant antigen according to an embodiment of the present invention.
  • FIG. 9 is a view showing the results of the pFc fusion E2 recombinant antigen once administered according to an embodiment of the present invention and confirming the immunogenicity.
  • FIG. 10 is a view showing the results of administering the pFc fusion E2 recombinant antigen twice according to an embodiment of the present invention and confirming immunogenicity.
  • an object of the present invention to provide an expression vector comprising an antigen, a polynucleotide encoding the Fc fragment of the pig and a polynucleotide encoding the antigen, and a method for producing a recombinant antigen using the expression vector.
  • Fc fragment (Fc fragment) when the immunoglobulin is digested by papain (papain), only the heavy chain (H chain) portion is connected by SS binding, does not have an antigen-binding site
  • the portion is referred to as an Fc fragment
  • the Fc fragment of the present invention is preferably a pig Fc fragment, more preferably a pig Fc fragment represented by SEQ ID NO: 4, or when fused with a target antigen, the amount of expression of the target antigen And Fc fragments that increase solubility, but are not limited thereto.
  • variants of SEQ ID NO: 4 are included in the scope of the present invention.
  • the gene may include a nucleotide sequence having a sequence homology of 90% or more, more preferably 95% or more, and most preferably 98% or more with the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 4.
  • the “% of sequence homology” to a polynucleotide is identified by comparing the comparison region with the optimally aligned sequence, and some of the polynucleotide sequences in the comparison region further reference sequences (not including additions or deletions) to the optimal sequence of the sequence. Comparison), or additions or deletions (ie, gaps).
  • antigen refers to all substances that cause an immune response in the body, preferably viruses, compounds, bacteria, pollen, cancer cells, shrimp, etc., or some peptides or proteins thereof, or in the body In the case of substances that can cause an immune response, it is not limited thereto.
  • vaccine is a biological agent containing an antigen that causes an immune response to a living body, and refers to an immunogen that immunizes the living body by injection or oral administration to humans or animals for the prevention of infectious diseases.
  • the animal is a human or non-human animal, and the non-human animal refers to pigs, cows, horses, dogs, goats, sheep, and the like, but is not limited thereto.
  • target protein refers to a protein to be produced by the genetic engineering method according to the present invention, preferably antigens that need to be produced in large quantities, which are used for commercial use, and more Preferably antigens, antibodies, fragments of antibodies, structural proteins, regulatory proteins, transcription factors, toxin proteins, hormones, hormone analogs, cytokines, enzymes, fragments of enzymes, enzyme inhibitors, transport proteins, receptors, receptors It is not limited to fragments, biodefense inducers, storage proteins, movement proteins, exploitive proteins, reporter proteins, etc., or proteins that can be produced with the recombinant expression vector of the present invention.
  • expression vector refers to a vector capable of expressing a peptide or protein encoded by a heterologous nucleic acid inserted in a vector, preferably a purpose in which a Fc fragment of pig is fused. It means a vector prepared to express an antigen.
  • the "vector” refers to any medium for introduction and / or transfer of a base into a host cell in vitro, in vivo, or in vivo, and a replication unit capable of binding of other DNA fragments to obtain replication of the bound fragments ( can be a replicon, and a “replica unit” is any genetic unit (eg, plasmid, phage, cosmid, that functions as an autologous unit of DNA replication in vivo, ie replicable by self-regulation). Chromosomes, viruses, etc.).
  • the recombinant expression vector of the present invention is preferably a transcription initiation factor to which RNA polymerase binds, a promoter, any operator sequence for regulating transcription, a sequence encoding a suitable mRNA ribosomal binding site, and termination of transcription and translation. It may include a sequence, terminator, and the like, more preferably, the 5 'UTR region gene of M17 to increase the amount of protein synthesis, the BiP gene for moving the target protein into the vesicle, and the protein is stable in the vesicle.
  • HDEL gene to minimize the degradation of the protein to be maintained as it may further include, and more preferably, a tag gene for easily separating a recombinant protein, an antibiotic resistance gene for selecting a transformant, etc.
  • the marker gene for selection may be further included.
  • the tag gene is included for easy separation in addition to the Fc fragment, which is the tag protein of the present invention, and representatively, Avi tag, Calmodulin tag, polyglutamate tag, E tag, FLAG tag, HA tag, His tag, Myc tag , S tag, SBP tag, IgG-Fc tag, CTB tag, Softag 1 tag, Softag 3 tag, Strep tag, TC tag, V5 tag, VSV tag, Xpress tag, and the like, and the selection marker gene is representative As herbicide-resistant genes such as glyphosate or phosphinothricin, kanamycin, G418, bleomycin, hygromycin, chloramphenicol, etc. Antibiotic resistance gene, aadA gene, etc.
  • the promoters are typically pEMU promoter, MAS promoter, histone promoter, Clp promoter, cauliflower mosaic bar 35S promoter from cauliflower mosaic virus, 19S RNA promoter from cauliflower mosaic virus, plant actin protein promoter, ubiquitin protein promoter, CMV (Cytomegalovirus) promoter, SV40 (Simian virus 40) promoter, RSV ( Respiratory syncytial virus (Promoter), EF-1 ⁇ (Elongation factor-1 alpha) promoter, etc.
  • the terminator is typically nopaline synthase (NOS), rice amylase RAmy1 A terminator, paseoline terminator, agrobacterium
  • NOS nopaline synthase
  • rice amylase RAmy1 A terminator rice amylase RAmy1 A terminator
  • paseoline terminator paseoline terminator
  • agrobacterium The terminator of the Octopine gene of Rium tumeric faciers, the rrnB1 / B2 terminator of E. coli, etc., but the above examples are only examples and are not limited thereto.
  • fusion antigen refers to a recombinant antigen in which a pig Fc fragment and a target antigen are fused, preferably by fusion with the Fc fragment, solubility is increased, and immunogenicity is increased at the same time.
  • a recombinant antigen but is not limited to, if it is a recombinant antigen bound to the pig Fc fragment of the present invention.
  • transformation refers to a change in the genetic properties of an organism by injected DNA
  • transgenic organism refers to injection of an external gene by molecular genetic method.
  • the living organism is not limited if it is a living organism such as microorganisms, eukaryotic cells, insects, animals, plants, and preferably E. coli, Salmonella, Bacillus, yeast, animal cells, mice, rats, dogs, monkeys, pigs, horses, cows, Agrobacterium tumefaciens, plants, and the like, but is not limited thereto.
  • the transformants include transformation, transfection, Agrobacterium-mediated transformation methods, particle gun bombardment, sonication, and electroporation.
  • PEG Polyethylen glycol
  • solubility means the degree to which a target protein or peptide can be dissolved in a solvent suitable for administration to the human body. Specifically, it may indicate that the solute is saturated for a given solvent at a specific temperature. Solubility can be measured by determining the saturation concentration of a solute, for example, by adding an excessive amount of solute to a solvent, stirring and filtering it, the concentration can be measured using a UV spectrometer or HPLC, but is not limited thereto. , High solubility is advantageous for separation and purification of the recombinant protein, and aggregation of the recombinant protein is suppressed, and thus has the advantage of maintaining the physiological or pharmacological activity of the recombinant protein.
  • prevention refers to all actions to inhibit or delay the onset of diseases such as infectious diseases and cancer by administration of the vaccine composition according to the present invention.
  • treatment refers to all actions in which symptoms of infection, cancer, etc. are improved or beneficially changed by administration of the vaccine composition according to the present invention.
  • “individual” refers to a subject to which the vaccine composition of the present invention can be administered, and the subject is not limited.
  • the “vaccine composition” of the present invention may be formulated and used in the form of oral dosage forms such as powders, granules, tablets, capsules, suspensions, emulsions, syrups, aerosols, and sterile injectable solutions, according to a conventional method.
  • oral dosage forms such as powders, granules, tablets, capsules, suspensions, emulsions, syrups, aerosols, and sterile injectable solutions, according to a conventional method.
  • it may be prepared using diluents or excipients such as fillers, extenders, binders, wetting agents, disintegrating agents, surfactants, etc., which are usually used.
  • Solid preparations for oral administration include tablets, pills, powders, granules, capsules, etc.
  • solid preparations include at least one excipient in the lecithin-like emulsifier, for example, starch, calcium carbonate, sucrose (sucrose) or lactose (lactose), can be prepared by mixing gelatin. It is also possible to use lubricants, such as magnesium stearate, in addition to simple excipients.
  • Liquid preparations for oral administration may include suspending agents, intravenous solutions, emulsions, syrups, etc. In addition to commonly used simple diluents such as water and liquid paraffin, various excipients such as wetting agents, sweeteners, fragrances, preservatives, etc. You can.
  • Formulations for non-oral administration include sterile aqueous solutions, non-aqueous agents, suspensions, emulsions, and lyophilized preparations.
  • Non-aqueous preparations, suspensions may include propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oils such as olive oil, and injectable esters such as ethyl oleate.
  • it may further include a previously known "immunoantigen adjuvant (adjuvant)".
  • the adjuvant may be used without limitation as long as it is known in the art, but may further increase immunity, for example, further including Freund's complete adjuvant or incomplete adjuvant.
  • the vaccine composition of the present invention can be used in the form of an oral dosage form such as powder, granule, tablet, capsule, suspension, emulsion, syrup, aerosol, external preparation, suppository, or sterile injectable solution, respectively, according to a conventional method. .
  • the route of administration of the vaccine composition according to the present invention is not limited to these, but oral, intravenous, intramuscular, intraarterial, intramedullary, intrathecal, intracardiac, transdermal, subcutaneous, intraperitoneal, intranasal, intestinal, topical, This includes sublingual or rectal. Oral or parenteral administration is preferred.
  • parenteral includes subcutaneous, intradermal, intravenous, intramuscular, intraarticular, synovial, intrasternal, epidural, intralesional and intracranial injection or infusion techniques.
  • the vaccine composition of the present invention can also be administered in the form of suppositories for rectal administration.
  • the dosage of the vaccine composition according to the present invention is selected in consideration of the age, weight, sex, and physical condition of the individual.
  • the amount required to induce an immune protective response in an individual without significant side effects may vary depending on the presence of recombinant proteins and excipients used as immunogens.
  • each dose contains 0.1 to 1000 ⁇ g of protein, preferably 0.1 to 100 ⁇ g per ml of sterile solution of the recombinant protein of the present invention.
  • the initial dose may be followed by optionally repeated antigen stimulation.
  • immunoadjuvant generally refers to any substance that increases the humoral and / or cellular immune response to an antigen
  • self-adjuvanting refers to an existing Compared to the antigen
  • the recombinant antigen itself refers to a reaction that increases the humoral and / or cellular immune response to the antigen, and preferably means that the immunogenicity of the antigen is increased by binding the pig's Fc fragment to the antigen.
  • Example 1 Preparation of pFc fusion VP1 recombinant protein expression vector
  • pFc1 SEQ ID NO: 1 of porcine immunoglobulin Fc fragment (pFc)
  • pFc2 SEQ ID NO: 3
  • pFc3 SEQ ID NO: 5
  • the protein was separated by size by electrophoresis on a 10% SDS-PAGE gel, and the separated protein was transferred to a PVDF membrane, followed by a blocking step using 5% skim milk, followed by antibody and protein.
  • the ECL solution was processed according to the method provided by the manufacturer to confirm pFc fusion recombinant protein. The results are shown in FIG. 3.
  • Example 2 In order to confirm the protein stability of the pFc fusion recombinant protein expression vector prepared in the same manner as in Example 1, the sample (0) at the time of extracting the recombinant protein and the sample (1) after storage at 4 ° C. for 1 hour were respectively used in Example 2.1. Western blotting was carried out in the same manner as described above. The results are shown in FIG. 4.
  • the Agrobacterium tumefaciens transformed with the vector was tobacco plant (Nicotiana benthamiana).
  • the pFc2 fusion recombinant protein (BiP: FMDV-VP1: pFc2) in a transient expression manner inoculated on the leaves of the plant, the protein is extracted from plant leaves, centrifuged, and soluble form contained in the solution ( Western blotting was performed in the same manner as in Example 2.1 using the protein in S) and the protein in the pellet (P) portion.
  • pFc2 fusion recombinant protein while not observed in the pellet portion, was confirmed to be contained in the solution. However, in the case of a recombinant protein in which a cellulose binding domain is fused, a large number of recombinant proteins were observed in the pellet portion. Through the above results, it was confirmed that the pFc2 fusion recombinant protein has increased solubility through structural modification due to the binding of the target protein and the pFc2 fragment.
  • the pFc2 fusion recombinant protein is advantageous for separation and purification, and aggregation of the recombinant protein This inhibition was confirmed that it is effective to maintain the physiological or pharmacological activity of the recombinant protein.
  • a polynucleotide encoding the porcine GP5 antigen protein (SEQ ID NO: 11) is contained in the recombinant vector of Example 1
  • a recombinant vector expressing the GP5: pFc2 recombinant antigen was prepared by inserting instead of the VP1 gene of foot-and-mouth disease virus.
  • pFc2 fusion GP5 recombinant antigen (GP5: pFc2) is expressed by a transient expression method inoculating the leaves of tobacco plants (Nicotiana benthamiana) with Agrobacterium tumefaciens transformed with the vector. After extracting the protein from the plant leaves after centrifugation, Western blotting in the same manner as in Example 2.1 using the protein in the soluble form (S) and the pellet (P) part contained in the solution. was conducted.
  • a GP5 recombinant antigen fused with CBM3 (SEQ ID NO: 14) was used instead of the pFc fragment, and in the case of CBM3 fused GP5 recombinant antigen, an experiment was performed using HA antibody for Western blotting. The results are shown in FIG. 6.
  • a pig immunoglobulin Fc fragment in particular, a pFc2 fragment comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4 is fused to a target protein, thereby increasing the expression level of the target protein and increasing solubility, thereby It was confirmed that the protein can be easily separated and stored stably.
  • a foot-and-mouth disease containing a polynucleotide (SEQ ID NO: 15) encoding the porcine circovirus type 2 protein in the recombinant vector of Example 1 A recombinant vector expressing the PCV2: pFc2 recombinant protein was prepared by inserting the virus instead of the VP1 gene.
  • a recombinant vector expressing the recombinant protein was prepared. Then, the recombinant vector is transformed into Arabidopsis thaliana by the Agrobacterium-mediated transformation method, the Arabidopsis thaliana resistant to Kanamycin is selected, and pFc2 is fused through generational progression.
  • a homo seed with stable expression of the recombinant E2 recombinant protein was finally secured to prepare a transformed plant. Then, the protein was isolated from the finally obtained transformed plant 8 g using a protein extraction buffer commonly used for protein extraction, and pFc fusion E2 recombinant protein was prepared using AKTA prime (GE Healthcare) equipped with a protein A-sepharose column. Was separated. And as a control, a BiP: E2: CBD recombinant protein fused with a cellulose binding domain (SEQ ID NO: 19) was used instead of the pFc fragment. The C2 fused E2 recombinant protein was isolated from 5 g of transgenic plants using amorphous cellulose (AMC).
  • AMC amorphous cellulose
  • the isolated recombinant protein was concentrated using a phosphate buffered saline (PBS) after dialysis using a centrifugal filter tube. Then, in order to quantify the amount of the isolated recombinant protein, SDS-PAGE was performed, followed by staining with coomassie blue. At this time, the recombinant protein was quantified using a standard curve using bovine serum albumin (BSA). The results are shown in FIG. 8.
  • PBS phosphate buffered saline
  • pFc2 fusion E2 recombinant antigen has an immunogenicity and a virus neutralizing ability by inducing an antibody in vivo
  • an experiment was conducted using a 6-week-old male C57BL / 6J mouse. More specifically, 1 ⁇ g of pFc2 fusion E2 recombinant antigen was administered to the experimental group mice once (6 weeks old) or twice (6 weeks and 8 weeks old), and a negative control mouse was administered with a phosphate buffer solution. And as a positive control, the E2 recombinant antigen fused with a cellulose binding domain was administered at the same time in the same amount as the experimental group.
  • the pFc2 fusion E2 recombinant antigen showed high reactivity from a week after administration, and it was confirmed that reactivity was maintained for 8 weeks or more.
  • the E2 recombinant antigen in which the cellulose binding domain is fused although it shows a positive value, it was confirmed that its reactivity is low compared to the pFc2 fused E2 recombinant antigen.
  • the antigen in which the cellulose binding domain is fused, the antigen is negatively administered in some mice, and in some mice, it is negative in the case of pFc2 fusion E2 recombinant antigen, or administered once or twice. It was confirmed that all of Sina exhibited high potency of virus neutralization.
  • the pFc2 fragment of the present invention by fusing the pFc2 fragment of the present invention with various peptides or proteins for vaccines, it is possible to not only significantly increase the production of the target antigen, but also increase the solubility and stability to suppress aggregation of the target antigen, thereby inhibiting the physiology of the recombinant antigen. It was confirmed that it is effective in maintaining active or pharmacological activity.
  • the antigen with the pFc2 fragment to produce a recombinant antigen the pFc2 fragment exhibits a self-adjuvanting effect, thus exhibiting a self-adjuvant effect, thereby enhancing the immunogenicity of the target antigen. It was confirmed that not only can be significantly increased, but also productivity and stability could be increased.
  • the present invention relates to an antigen fused with an Fc fragment of pigs, and more particularly, to a vaccine composition having a self-immune enhancing effect by binding an Fc fragment to various antigens and a method for manufacturing the same.
  • Antigens in which the Fc fragment of the present invention is fused have a self-immune enhancing effect, and thus it is possible to significantly increase the prophylactic and / or therapeutic effect of the vaccine composition, and thus is expected to be widely applied to various vaccine compositions.

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Abstract

본 발명은 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원에 관한 것으로, 다양한 항원에 Fc 단편을 결합시킴으로써 자체-면역 증강 효과를 가지는 백신 조성물 및 이의 제조방법에 관한 것이다.

Description

돼지의 FC 단편과 융합된 항원 및 이를 포함하는 백신 조성물
본 발명은 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원, 이를 포함하는 백신 조성물 등에 관한 것이다.
감염증의 예방을 위한 백신은 병원균에 대해 특이적이고 효과적인 면역 반응을 유도하는 것으로서, 다양한 감염증의 예방을 위하여 그 필요성이 점점 증가되고 있는 추세이다. 최근에는 사균 백신, 약독생균 백신, 자가 백신 등 다양한 종류의 백신이 개발되고 있는데, 생균 또는 약독화된 균으로부터 만들어진 백신은 예방 면에서는 매우 효과적이나 회귀의 위험성, 자기 복제 등의 문제점으로 인하여 안정성 문제가 종종 보고되고 있으며, 사균을 이용한 백신의 경우에는 LPS(lipopolysaccharide)와 같은 독성 물질이 포함되어 있거나, 살아있는 균이 존재할 수 있는 위험성을 가지고 있다. 따라서, 이와 같은 한계를 극복하기 위하여 개발된 DNA 백신도 역시 숙주의 게놈(genome) 상으로 삽입되어 돌연변이 발생률을 높이거나(mutagenic), 발암 유전자(oncogenic)로써 작용할 가능성이 대두되고 있다. 따라서, 최근에는 정제된 항원을 사용하는 Subunit 백신의 개발이 활발히 이루어지고 있다. Subunit 백신의 경우 정제된 항원을 사용하기 때문에 다른 백신들 보다 안정적이나, 면역원성이 부족하기 때문에 이러한 면역원성을 증진시켜주기 위하여 강력한 면역항원보강제(adjuvant)가 요구된다. 면역항원보강제의 사용은 사용되는 항원의 양을 현저히 감소시킬 수 있기 때문에, 전염병의 유행 등의 상황에서 신속한 백신 생산에 결정적인 역할을 할 수 있을 뿐만 아니라, 추가 백신 접종 횟수 등을 감소시킬 수 있기 때문에 비용 및 불편함을 현저히 감소시킬 수 있다. 그러나 면역항원보강제 중 백신에 사용 가능하도록 허가된 것은 매우 소수이다. 면역항원보강제인 “alum”은 1932년에 사람 백신에 사용 가능하도록 허가된 첫 면역항원보강제이나, 현재까지도 가장 많이 사용되고 있는 면역항원보강제이다. 그 이후에 MF59, AS03 등이 개발되어 사용 허가를 받았으나, 아직도 사용 가능하도록 허가 받은 면역항원보강제는 매우 소수이다(대한민국등록특허 10-0517114).
따라서, 백신의 면역원성을 현저히 증가시키는 동시에 안정적인 면역항원보강제의 개발은 백신 분야의 발달에 있어 매우 중요한 역할을 할 것으로 기대된다.
본 발명은 상기와 같은 종래 기술상의 문제점을 해결하기 위해 안출된 것으로, 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원, 이를 포함하는 백신 조성물 및 이의 제조 방법 등을 제공하는 것을 그 목적으로 한다.
그러나 본 발명이 이루고자 하는 기술적 과제는 이상에서 언급한 과제에 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 과제들은 아래의 기재로부터 본 발명이 속하는 기술 분야의 통상의 지식을 가진 자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.
본 발명은 서열번호 4로 표시되는 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원을 유효성분으로 포함하는 백신 조성물을 제공한다.
또한, 본 발명은 서열번호 4로 표시되는 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원을 유효성분으로 포함하는 조성물을 개체에 투여하는 단계를 포함하는 감염증의 예방 또는 치료 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 서열번호 4로 표시되는 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원을 유효성분으로 포함하는 조성물의 감염증의 예방 또는 치료 용도를 제공한다.
본 발명의 일 구체예에 있어서, 상기 항원은 Fc 단편과 융합됨으로써 자체 면역 증강 반응(self-adjuvanting) 효과 및 증가된 용해성을 가지는 것을 특징으로 한다. 상기 융합은 Fc 단편의 N 말단 및/또는 C 말단에 항원이 펩타이드 결합으로 연결된 형태일 수 있으나, Fc 단편과 항원이 결합되어 있는 형태라면 이에 제한되지 않는다.
또한, 본 발명은 서열번호 4로 표시되는 돼지의 Fc 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드 및 항원을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 자체-면역 증강 효과를 가지는 재조합 항원의 발현 벡터를 제공한다.
본 발명의 일 구체예에 있어서, 상기 발현 벡터는 프로모터 유전자, Fc 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드, 및 항원을 코딩하는 폴리뉴클레오티드의 순서로, 또는 프로모터 유전자, 목적 단백질을 코딩하는 폴리뉴클레오티드, 및 Fc 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드의 순서로 순차적으로 연결될 수 있다.
본 발명의 다른 구체예에 있어서, 상기 프로모터는 꽃양배추 모자이크 바이러스(cauliflower mosaic virus) 유래 35S 프로모터, 꽃양배추 모자이크 바이러스(cauliflower mosaic virus) 유래 19S RNA 프로모터, 식물의 액틴 단백질 프로모터, 유비퀴틴 단백질 프로모터, CMV(Cytomegalovirus) 프로모터, SV40(Simian virus 40) 프로모터, RSV(Respiratory syncytial virus) 프로모터, EF-1α(Elongation factor-1 alpha) 프로모터, pEMU 프로모터, MAS 프로모터, 히스톤 프로모터, Clp 프로모터 등이나, 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 또 다른 구체예에서, 상기 항원은 항체, 항체의 단편, 구조 단백질, 조절 단백질, 전사인자, 독소 단백질, 호르몬, 호르몬 유사체, 사이토카인, 효소, 효소의 단편, 효소 저해제, 수송 단백질, 수용체(receptor), 수용체의 단편, 생체방어 유도물질, 저장 단백질, 이동 단백질(movement protein), 익스플로이티브 단백질(exploitive protein), 리포터 단백질 등일 수 있으나, 생체에서 항원으로 작용하여 면역 반응을 유도할 수 있는 물질이라면 이에 제한되지 않는다.
본 발명의 또 다른 구체예에서, 상기 발현 벡터는 BiP(Chaperone binding protein)를 코딩하는 폴리뉴클레오티드, HDEL(His-Asp-Glu-Leu) 펩타이드를 코딩하는 유전자, M17의 5' UTR(untranslational region) 부위 유전자 등을 추가로 포함할 수 있다.
본 발명의 또 다른 구체예에서, 상기 발현 벡터는 Fc 단편이 융합된 목적 단백질의 발현량을 증가시키며 용해성을 증가시키는 것을 특징으로 한다.
또한, 본 발명은 상기 발현 벡터로 형질전환된 형질전환체를 제공한다.
본 발명의 일 구체예에 있어서, 상기 형질전환체는 대장균, 바실러스, 살모넬라, 효모 등과 같은 미생물, 곤충 세포, 인간을 포함한 동물 세포, 마우스, 래트, 개, 원숭이, 돼지, 말, 소 등과 같은 동물, 아그로박테리움 튜머패시언스, 식물 등일 수 있으며, 상기 식물은 벼, 밀, 보리, 옥수수, 콩, 감자, 밀, 팥, 귀리, 및 수수를 포함하는 식량작물류; 애기장대, 배추, 무, 고추, 딸기, 토마토, 수박, 오이, 양배추, 참외, 호박, 파, 양파, 및 당근을 포함하는 채소작물류; 인삼, 담배, 목화, 참깨, 사탕수수, 사탕무, 들깨, 땅콩, 및 유채를 포함하는 특용작물류; 및 사과나무, 배나무, 대추나무, 복숭아, 포도, 감귤, 감, 자두, 살구, 및 바나나를 포함하는 과수류; 및 장미, 카네이션, 국화, 백합, 및 튤립을 포함하는 화훼류 등일 수 있으나, 본 발명의 발현 벡터로 형질전환될 수 있는 생명체라면 이에 제한되지 않는다.
또한, 본 발명은 (a) 상기 형질전환체를 배양하는 단계; 및 (b) 상기 형질전환체 또는 배양액으로부터 Fc 단편이 융합된 항원을 분리 및 정제하는 단계를 포함하는 자체-면역 증강 효과를 가지는 재조합 항원의 생산 방법을 제공한다. 상기 형질전환체는 바람직하게는 세포 자체, 또는 세포를 포함하는 배양물일 수 있으며, 상기 배양액은 바람직하게는 세포를 배양한 후, 세포를 제거한 배양액일 수 있으나, 본 발명의 재조합 항원을 포함하고 있다면 이에 제한되지 않는다.
본 발명에 따른 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원은 자체-면역 증강 효과를 가지기 때문에 추가의 면역항원보강제의 사용 없이도 항원 자체의 면역원성을 증가시킬 수 있을 뿐만 아니라, 항원의 용해성 및 안정성을 증가시켜 항원의 분리 및 보관이 용이하다. 또한, 본 발명에 따른 발현 벡터는 다양한 항원을 pFc 단편과 융합시킴으로써, 목적 항원의 생산량을 증가시킬 수 있기 때문에 백신의 고효율 생산을 가능하게 할 것으로 기대된다.
도 1은 본 발명의 일 실시예에 따른 pCAMBIA1300 벡터맵을 나타낸 도면이다.
도 2는 본 발명의 일 실시예에 따른 pFc 융합 VP1 재조합 단백질 발현을 위한 유전자의 배열을 나타낸 도면이다.
도 3은 본 발명의 일 실시예에 따른 pFc 융합 VP1 재조합 단백질의 발현량을 웨스턴 블롯팅으로 확인한 결과를 나타낸 도면이다.
도 4는 본 발명의 일 실시예에 따른 pFc 융합 VP1 재조합 단백질의 안정성을 웨스턴 블롯팅으로 확인한 결과를 나타낸 도면이다.
도 5는 본 발명의 일 실시예에 따른 pFc 융합 VP1 재조합 단백질의 용해성을 웨스턴 블롯팅으로 확인한 결과를 나타낸 도면이다.
도 6은 본 발명의 일 실시예에 따른 pFc 융합 GP5 재조합 항원의 용해성을 웨스턴 블롯팅으로 확인한 결과를 나타낸 도면이다.
도 7은 본 발명의 일 실시예에 따른 pFc 융합 PCV2 재조합 단백질의 용해성및 생산성을 웨스턴 블롯팅으로 확인한 결과를 나타낸 도면이다.
도 8은 본 발명의 일 실시예에 따른 pFc 융합 E2 재조합 항원의 생산량을 확인한 결과를 나타낸 도면이다.
도 9은 본 발명의 일 실시예에 따른 pFc 융합 E2 재조합 항원을 1 회 투여하고 면역원성을 확인한 결과를 나타낸 도면이다.
도 10은 본 발명의 일 실시예에 따른 pFc 융합 E2 재조합 항원을 2 회 투여하고 면역원성을 확인한 결과를 나타낸 도면이다.
본 발명에서는 다양한 항원을 돼지의 면역글로불린 Fc 단편을 결합시키는 경우, 상기 단편에 의하여 항원의 발현량 및 생산성이 증가될 뿐만 아니라, 용해성 및 안정성이 증가된다는 것을 확인하고, 상기 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원, 상기 돼지의 Fc 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드 및 항원을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 발현 벡터 및 상기 발현 벡터를 이용한 재조합 항원의 생산 방법을 제공하는 것을 목적으로 한다.
본 명세서에 있어서, "Fc 단편(Fc fragment)"이란 면역글로불린이 파파인(papain)에 의해 소화되었을 때, 중쇄(heavy chain; H chain) 부분만이 S-S 결합으로 연결되고, 항원 결합부위를 가지지 않는 부분을 Fc 단편이라고 하며, 본 발명의 Fc 단편은 바람직하게는 돼지의 Fc 단편이며, 더욱 바람직하게는 서열번호 4로 표시되는 돼지의 Fc 단편이나, 목적 항원과 융합되었을 때, 목적 항원의 발현량 및 용해성을 증가시키는 Fc 단편이라면 이에 제한되지 않는다. 또한, 본 발명의 Fc 단편은 서열번호 4의 변이체가 본 발명의 범위에 포함된다. 구체적으로, 상기 유전자는 서열번호 4의 염기서열과 90 % 이상, 더욱 바람직하게는 95 % 이상, 가장 바람직하게는 98 % 이상의 서열 상동성을 가지는 염기서열을 포함할 수 있다. 폴리뉴클레오티드에 대한 “서열 상동성의 %”는 최적으로 배열된 서열과 비교 영역을 비교함으로써 확인되며, 비교 영역에서 폴리뉴클레오티드 서열의 일부는 더 서열의 최적 배열에 대한 참고 서열(추가 또는 삭제를 포함하지 않음)에 비해 추가 또는 삭제(즉, 갭)를 포함할 수 있다.
본 명세서에 있어서, “항원(antigen)”이란 체내에서 면역 반응을 일으키는 모든 물질을 총칭하며, 바람직하게는 바이러스, 화합물질, 세균, 꽃가루, 암세포, 새우 등 또는 이들의 일부 펩타이드 또는 단백질이나, 체내에서 면역 반응을 일으킬 수 있는 물질이라면 이에 제한되지 않는다.
본 명세서에 있어서, "백신(vaccine)"이란 생체에 면역 반응을 일으키는 항원을 함유하는 생물학적인 제제로서, 감염증의 예방을 위하여 사람이나 동물에 주사하거나 경구 투여함으로써 생체에 면역이 생기게 하는 면역원을 말한다. 상기 동물은 인간 또는 비인간 동물로서, 상기 비인간 동물은 돼지, 소, 말, 개, 염소, 양 등을 지칭하나, 이에 제한되지 않는다.
본 명세서에 있어서, “목적 단백질(target protein)”이란 본 발명에 따른 유전공학적 방법으로 생산하고자 하는 단백질을 말하는 것으로, 바람직하게는 상업적 용도로 이용되고 있는 대량으로 생산될 필요가 있는 항원들이며, 더욱 바람직하게는 항원, 항체, 항체의 단편, 구조 단백질, 조절 단백질, 전사인자, 독소 단백질, 호르몬, 호르몬 유사체, 사이토카인, 효소, 효소의 단편, 효소 저해제, 수송 단백질, 수용체(receptor), 수용체의 단편, 생체방어 유도물질, 저장 단백질, 이동 단백질(movement protein), 익스플로이티브 단백질(exploitive protein), 리포터 단백질 등이나, 본 발명의 재조합 발현 벡터로 제조될 수 있는 단백질이라면 이에 제한되지 않는다.
본 명세서에 있어서, “발현 벡터(expression vector)”란 벡터 내에 삽입된 이종의 핵산에 의해 코딩되는 펩타이드 또는 단백질을 발현할 수 있는 벡터를 지칭하는 것으로, 바람직하게는 돼지의 Fc 단편이 융합된 목적 항원을 발현할 수 있도록 제조된 벡터를 의미한다. 상기 "벡터"는 시험관 내, 생체 왜 또는 생체 내에서 숙주 세포로 염기의 도입 및/또는 전이를 위한 임의의 매개물을 말하며, 다른 DNA 단편이 결합하여 결합된 단편의 복제를 가져올 수 있는 복제단위(replicon)일 수 있으며, "복제 단위"란 생체 내에서 DNA 복제의 자가 유닛으로서 기능하는, 즉, 스스로의 조절에 의해 복제가능한, 임의의 유전적 단위(예를 들면, 플라스미드, 파지, 코스미드, 염색체, 바이러스 등)를 말한다. 본 발명의 재조합 발현 벡터는 바람직하게는 RNA 중합효소가 결합하는 전사 개시 인자인 프로모터(promoter), 전사를 조절하기 위한 임의의 오퍼레이터 서열, 적합한 mRNA 리보좀 결합 부위를 코딩하는 서열과 전사 및 해독의 종결을 조절하는 서열, 터미네이터 등을 포함할 수 있으며, 더욱 바람직하게는 단백질의 합성량을 증가시키기 위한 M17의 5' UTR 부위 유전자, 목적 단백질을 소포체로 이동시키기 위한 BiP 유전자, 단백질이 소포체 내에서 안정적으로 유지될 수 있도록 단백질의 분해를 최소화하기 위한 HDEL 유전자 등을 추가로 포함할 수 있으며, 더욱 바람직하게는 재조합 단백질을 용이하게 분리하기 위한 태그용 유전자, 형질전환체를 선별하기 위한 항생제 내성 유전자 등의 선별용 마커 유전자 등을 추가로 포함할 수 있다.
상기 태그용 유전자는 본 발명의 태그 단백질인 Fc 단편 이외에 추가로 용이한 분리를 위해 포함되는 것으로서, 대표적으로 Avi 태그, Calmodulin 태그, polyglutamate 태그, E 태그, FLAG 태그, HA 태그, His 태그, Myc 태그, S 태그, SBP 태그, IgG-Fc 태그, CTB 태그, Softag 1 태그, Softag 3 태그, Strep 태그, TC 태그, V5 태그, VSV 태그, Xpress 태그 등이 포함될 수 있으며, 상기 선별용 마커 유전자에는 대표적으로 글리포세이트(glyphosate) 또는 포스피노트리신(phosphinothricin)과 같은 제초제 저항성 유전자, 카나마이신(kanamycin), G418, 블레오마이신(Bleomycin), 하이그로마이신(hygromycin), 클로람페닐콜(chloramphenicol)과 같은 항생제 내성 유전자, aadA 유전자 등이 포함될 수 있으며, 상기 프로모터에는 대표적으로 pEMU 프로모터, MAS 프로모터, 히스톤 프로모터, Clp 프로모터, 꽃양배추 모자이크 바이러스(cauliflower mosaic virus) 유래 35S 프로모터, 꽃양배추 모자이크 바이러스(cauliflower mosaic virus) 유래 19S RNA 프로모터, 식물의 액틴 단백질 프로모터, 유비퀴틴 단백질 프로모터, CMV(Cytomegalovirus) 프로모터, SV40(Simian virus 40) 프로모터, RSV(Respiratory syncytial virus) 프로모터, EF-1α(Elongation factor-1 alpha) 프로모터 등이 포함될 수 있으며, 상기 터미네이터는 대표적으로 노팔린 신타아제(NOS), 벼 아밀 라아제 RAmy1 A 터미네이터, 파세올린 터미네이터, 아그로박테리움 튜머패시어스의 옥토파인(Octopine) 유전자의 터미네이터, 대장균의 rrnB1/B2 터미네이터 등이나, 상기 예는 예시일 뿐 이에 제한되지 않는다.
본 명세서에 있어서, “융합 항원(fusion antigen)”이란 돼지의 Fc 단편과 목적 항원이 융합된 재조합 항원을 의미하는 것으로, 바람직하게는 상기 Fc 단편과 융합됨으로써 용해성이 증가되며, 동시에 면역원성이 증가된 재조합 항원을 의미하나, 본 발명의 돼지의 Fc 단편과 결합된 재조합 항원이라면 이에 제한되지 않는다.
본 명세서에 있어서, “형질전환(transformation)”이란 주입된 DNA에 의하여 생물의 유전적인 성질이 변하는 것을 총칭하며, “형질전환체(transgenic organism)”란 분자유전학적 방법으로 외부의 유전자를 주입하여 제조된 생명체로서, 바람직하게는 본 발명의 재조합 발현 벡터에 의하여 형질전환된 생명체이며, 상기 생명체는 미생물, 진핵세포, 곤충, 동물, 식물 등 생명이 있는 생물이라면 제한이 없으며, 바람직하게는 대장균, 살모넬라, 바실러스, 효모, 동물 세포, 마우스, 래트, 개, 원숭이, 돼지, 말, 소, 아그로박테리움 튜머패시언스, 식물 등이나 이에 제한되지 않는다. 상기 형질전환체는 형질전환(transformation), 형질감염(transfection), 아그로박테리움(Agrobacterium)-매개 형질전환 방법, 입자 총 충격법(particle gun bombardment), 초음파 처리법(sonication), 전기천공법(electroporation) 및 PEG(Polyethylen glycol)-매개 형질전환 방법 등의 방법으로 제조될 수 있으나, 본 발명의 벡터를 주입할 수 있는 방법이라면 제한이 없다.
본 명세서에 있어서, “용해성(solubility)”이란 목적 단백질 또는 펩타이드가 인체에 투여하기 적합한 용매에 용해될 수 있는 정도를 의미한다. 구체적으로는 특정 온도에서 주어진 용매에 대하여 용질이 포화된 정도를 나타내는 것일 수 있다. 용해성은 용질의 포화 농도를 결정함으로써 측정할 수 있으며, 예컨대 용매에 용질을 과량으로 첨가하고 이를 교반하고 여과한 다음, 농도를 UV 분광기 또는 HPLC 등을 사용하여 측정할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니며, 높은 용해성은 재조합 단백질의 분리정제에 유리하며, 재조합 단백질의 응집이 억제되어 재조합 단백질의 생리활성 또는 약리적인 활성을 유지하는데 장점을 가진다.
본 명세서에 있어서, “예방(prevention)”이란 본 발명에 따른 백신 조성물의 투여에 의해 감염증, 암 등의 질환을 억제시키거나 발병을 지연시키는 모든 행위를 의미한다.
본 명세서에 있어서, "치료(treatment)"란 본 발명에 따른 백신 조성물의 투여에 의해 감염증, 암 등의 증세가 호전되거나 이롭게 변경되는 모든 행위를 의미한다.
본 명세서에 있어서, “개체(individual)”란 본 발명의 백신 조성물이 투여될 수 있는 대상을 말하며, 그 대상에는 제한이 없다.
본 발명의 “백신 조성물”은 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀젼, 시럽, 에어로졸 등의 경구형 제형 및 멸균 주사용액의 형태로 제형화하여 사용될 수 있다. 제제화할 경우에는 보통 사용되는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제할 수 있다. 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 상기 레시틴 유사 유화제에 적어도 하나 이상의 부형제 예를 들면, 전분, 칼슘카보네이트(calcium carbonate), 슈크로스(sucrose) 또는 락토오스(lactose), 젤라틴 등을 섞어 조제할 수 있다. 또한 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스티레이트 탈크 같은 윤활제들도 사용할 수 있다. 경구투여를 위한 액상제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등을 사용할 수 있으며, 흔히 사용되는 단순 희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비 경구투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수용성제, 현탁제, 유제, 동결건조제제가 포함된다. 비수용성제제, 현탁제로는 프로필렌글리콜(propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 또한, 추가로 기존에 알려져 있는 “면역항원보강제(adjuvant)”를 추가로 포함할 수 있다. 상기 보강제는 당해 기술분야에 알려진 것이라면 어느 것이나 제한없이 사용할 수 있으나, 예를 들어 프로인트(Freund)의 완전 보조제 또는 불완전 보조제를 더 포함하여 그 면역성을 증가시킬 수 있다.
본 발명의 백신 조성물은 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀전, 시럽, 에어로졸 등의 경구형 제형, 외용제, 좌제 또는 멸균 주사용액의 형태로 제형화하여 사용될 수 있다.
본 발명에 따른 백신 조성물의 투여 경로는 이들로 한정되는 것은 아니지만 구강, 정맥내, 근육내, 동맥내, 골수내, 경막내, 심장내, 경피, 피하, 복강내, 비강내, 장관, 국소, 설하 또는 직장이 포함된다. 경구 또는 비경구 투하가 바람직하다. 본원에 사용된 용어 "비경구"는 피하, 피내, 정맥내, 근육내, 관절내, 활액낭내, 흉골내, 경막내, 병소내 및 두개골내 주사 또는 주입기술을 포함한다. 본 발명의 백신 조성물은 또한 직장 투여를 위한 좌제의 형태로 투여될 수 있다.
본 발명에 따른 백신 조성물의 투여량은 개체의 연령, 체중, 성별, 신체 상태 등을 고려하여 선택된다. 별다른 부작용 없이 개체에 면역보호반응을 유도하기에 필요한 양은 면역원으로서 사용된 재조합 단백질 및 부형제의 임의 존재에 따라 다양할 수 있다. 일반적으로 각각의 용량은 본 발명의 재조합 단백질의 멸균용액 ㎖ 당 0.1 내지 1000 ㎍의 단백질, 바람직하게는 0.1 내지 100 ㎍을 함유한다. 백신 조성물의 경우에는 필요에 따라 초기 용량에 이어 임의로 반복된 항원자극을 수행할 수 있다.
본 명세서에 있어서, “면역항원보강제(adjuvant)”란 일반적으로 항원에 대한 체액 및/또는 세포 면역 반응을 증가시키는 임의의 물질을 지칭하며, “자체 면역 증강 반응(self-adjuvanting)”이란, 기존 항원과 비교하여 재조합 항원 자체가 항원에 대한 체액 및/또는 세포 면역 반응을 증가시키는 반응을 의미하며, 바람직하게는 항원에 돼지의 Fc 단편을 결합시킴으로써 항원의 면역원성이 증가된 것을 의미한다.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 하기 실시예에 의해 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.
[ 실시예 ]
실시예 1: pFc 융합 VP1 재조합 단백질 발현 벡터 제조
목적 단백질의 발현량을 증가시키는 동시에 용해성을 개선하여 분리 정제 효율을 높인 재조합 단백질을 제조하기 위한 발현 벡터를 제조하기 위하여, 돼지의 면역글로불린 Fc 단편(porcine Fc fragment; pFc)의 pFc1(서열번호 1), pFc2(서열번호 3), 또는 pFc3(서열번호 5)을 이용하여 발현 벡터를 제작하였다. 보다 자세하게는, 도 1 및 2에 나타난 바와 같이, pCAMBIA1300 벡터의 CaMV 35S 프로모터 유전자와 NOS 종결자(terminator) 사이에 M17의 5' UTR(untranslational region) 부위 유전자(서열번호 7), BiP(chaperone binding protein) 단백질을 코딩하는 폴리뉴클레오티드(서열번호 8), 구제역 바이러스(Food-and-mouth disease virus; FMDV)의 VP1 유전자(서열번호 9); pFc 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드; 및 HDEL(His-Asp-Glu-Leu) 단백질을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 순서대로 클로닝하여 발현 벡터를 제작하였다. pFc 단편은 각각 pFc1, pFc2, 또는 pFc3을 삽입하여 서로 다른 발현 벡터를 제조하였다.
실시예 2: pFc 융합 VP1 재조합 단백질 발현 실험
2.1. pFc 융합 VP1 재조합 단백질의 발현량 확인 실험
실시예 1과 동일한 방법으로 제조된 pFc 융합 VP1 재조합 단백질 발현 벡터의 단백질 발현량을 확인하기 위하여, 상기 벡터를 애기장대 잎에서 분리한 원형질체(protoplast)에 PEG-매개 형질전환(PEG-mediated transformation) 방법으로 도입하여 형질전환체를 제조한 후에, 배양된 원형질체를 수집 및 용해하여 이로부터 발현되는 재조합 단백질인 BiP:FMDV-VP1:pFc 발현 양상을 pFc를 인식하는 anti-pig secondary antibody(1:5,000, Abcam)를 이용하여 웨스턴 블롯팅으로 확인하였다. 보다 자세하게는, 세포 용해액 30 μL를 SDS 시료 버퍼와 혼합한 후에 가열하였다. 그리고 10 % SDS-PAGE 겔에 전기영동하여 크기별로 단백질을 분리하고, 분리된 단백질을 PVDF 막으로 이동시킨 후에, 5 % 스킴밀크(skim milk)를 이용하여 블록킹 단계를 거친 후에, 항체와 단백질을 결합시키고, ECL 용액을 제조사에서 제공하는 방법대로 처리하여 pFc 융합 재조합 단백질을 확인하였다. 그 결과는 도 3에 나타내었다.
도 3에 나타난 바와 같이, 다양한 pFc 단편들 중 pFc2 단편을 결합시킨 재조합 단백질의 발현량이 가장 높은 것을 확인하였다. 상기 결과를 통하여, 동일한 면역글로불린 단편이라고 하여, 동일한 효과를 나타내지 않는 것을 확인할 수 있었다.
2.2. pFc 융합 VP1 재조합 단백질의 안정성 확인 실험
실시예 1과 동일한 방법으로 제조된 pFc 융합 재조합 단백질 발현 벡터의 단백질 안정성을 확인하기 위하여, 재조합 단백질을 추출한 당시 시료(0)와 4 ℃에서 한시간 동안 보관한 후의 시료(1)를 각각 실시예 2.1과 동일한 방법으로 웨스턴 블롯팅을 실시하여 확인하였다. 그 결과는 도 4에 나타내었다.
도 4에 나타난 바와 같이, pFc2 단편이 결합된 재조합 단백질의 발현량이 가장 높으며, 안정성 또한 높은 것을 확인하였다.
2.3. pFc2 융합 VP1 재조합 단백질의 용해성 확인 실험
실시예 1과 동일한 방법으로 제조된 pFc2 융합 재조합 단백질 발현 벡터의 단백질 용해성(solubility)을 확인하기 위하여, 상기 벡터로 형질전환된 아그로박테리움 튜머패시언스(Agrobacterium tumefaciens)를 담배 식물(Nicotiana benthamiana)의 잎에 접종하는 일과성 발현(transient expression) 방식으로 pFc2 융합 재조합 단백질(BiP:FMDV-VP1:pFc2)을 발현시킨 후에 식물 잎으로부터 단백질을 추출하여 원심 분리한 후에, 용액에 포함되어 있는 soluble 형태(S)의 단백질과 펠릿(pellet; P) 부분에 있는 단백질을 이용하여 실시예 2.1과 동일한 방법으로 웨스턴 블롯팅을 실시하였다. 대조군으로는 기존에 알려져 있는 셀룰로오스 결합 모듈(cellulose binding module; CBM3)을 코딩하는 폴리뉴클레오티드(서열번호 13)를 pFc 단편 대신 융합시킨 재조합 단백질을 이용하였다. 그 결과는 도 5에 나타내었다.
도 5에 나타난 바와 같이, pFc2 융합 재조합 단백질은 펠릿 부분에서는 관찰되지 않는 반면, 용액 내에 포함되어 있는 것을 확인하였다. 그러나 셀룰로오스 결합 도메인을 융합시킨 재조합 단백질의 경우에는 펠릿 부분에서 재조합 단백질이 상당수 관찰되었다. 상기 결과를 통하여, pFc2 융합 재조합 단백질은 목적 단백질과 pFc2 단편의 결합으로 인한 구조적 변형을 통해 용해성이 증가된 것을 확인할 수 있었으며, 이를 통하여, pFc2 융합 재조합 단백질은 분리정제에 유리하며, 재조합 단백질의 응집이 억제되어 재조합 단백질의 생리활성 또는 약리적인 활성을 유지하는데 효과적인 것을 확인할 수 있었다.
실시예 3: pFc2 융합 GP5 재조합 항원 용해성 확인 실험
pFc2 단편을 돼지 생식기호흡증후군(Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome; PRRS)의 GP5 항원 단백질과 융합시키기 위하여, 돼지 GP5 항원 단백질을 코딩하는 폴리뉴클레오티드(서열번호 11)를 실시예 1의 재조합 벡터 내에 포함되어 있는 구제역 바이러스의 VP1 유전자 대신에 삽입하여 GP5:pFc2 재조합 항원을 발현하는 재조합 벡터를 제조하였다. 그리고 상기 벡터로 형질전환된 아그로박테리움 튜머패시언스(Agrobacterium tumefaciens)를 담배 식물(Nicotiana benthamiana)의 잎에 접종하는 일과성 발현(transient expression) 방식으로 pFc2 융합 GP5 재조합 항원(GP5:pFc2)을 발현시킨 후에 식물 잎으로부터 단백질을 추출하여 원심 분리한 후에, 용액에 포함되어 있는 soluble 형태(S)의 단백질과 펠릿(pellet; P) 부분에 있는 단백질을 이용하여 실시예 2.1과 동일한 방법으로 웨스턴 블롯팅을 실시하였다. 대조군으로는 pFc 단편 대신 CBM3(서열번호 14)가 융합된 GP5 재조합 항원을 이용하였고, CBM3 융합 GP5 재조합 항원의 경우에는 웨스턴 블롯팅을 위하여 HA antibody를 이용하여 실험을 진행하였다. 그 결과는 도 6에 나타내었다.
도 6에 나타난 바와 같이, pFc2 융합 GP5 재조합 항원은 펠릿 부분에서는 약간의 단백질이 관찰되는 반면, 대부분 용액 내에 포함되어 있는 것을 확인하였다. 그러나 CBM3를 융합시킨 GP5 재조합 항원의 경우에는 펠릿 부분에서 재조합 단백질이 상당수 관찰되었다. 상기 결과를 통하여, pFc2 융합 재조합 단백질은 단백질의 종류에 관계없이 용해성이 증가되는 것을 확인할 수 있었다.
상기 결과들을 통하여, 돼지의 면역글로불린 Fc 단편, 특별히, 서열번호 4로 표시되는 아미노산 서열을 포함하는 pFc2 단편을 목적 단백질에 융합시킴으로써, 목적 단백질의 발현량을 증가시키는 동시에, 용해성을 증가시켜, 목적 단백질을 안정적으로 용이하게 분리 및 보관할 수 있다는 것을 확인할 수 있었다.
실시예 4: pFc2 융합 PCV2 재조합 단백질의 생산성 및 용해성 확인 실험
pFc2 단편을 돼지 서코바이러스 2형(Porcine circovirus Type 2; PCV2) 단백질과 융합시키기 위하여, 돼지 서코바이러스 2형 단백질을 코딩하는 폴리뉴클레오티드(서열번호 15)를 실시예 1의 재조합 벡터 내에 포함되어 있는 구제역 바이러스의 VP1 유전자 대신에 삽입하여 PCV2:pFc2 재조합 단백질을 발현하는 재조합 벡터를 제조하였다. 그리고 상기 벡터로 형질전환된 아그로박테리움 튜머패시언스(Agrobacterium tumefaciens)를 담배 식물(Nicotiana benthamiana)의 잎에 접종하는 일과성 발현(transient expression) 방식으로 pFc2 융합 PCV2 재조합 단백질을 발현시킨 후에 식물 잎으로부터 단백질을 추출하여 원심 분리한 후에, 용액에 포함되어 있는 soluble 형태(S)의 단백질과 펠릿(pellet; P) 부분에 있는 단백질을 이용하여 실시예 2.1과 동일한 방법으로 웨스턴 블롯팅을 실시하였다. 대조군으로는 pFc 단편 대신 His tag가 융합된 PCV2 재조합 단백질을 이용하였고, His-tag 융합 PCV2 재조합 단백질의 경우에는 웨스턴 블롯팅을 위하여 anti-His antibody를 이용하여 실험을 진행하였다. 그 결과는 도 7에 나타내었다.
도 7에 나타난 바와 같이, pFc2 융합 PCV2 재조합 단백질의 경우에는 대부분 용액 내에 포함되어 있을 뿐만 아니라, His-tag가 융합된 PCV2 재조합 단백질과 비교하여 생산량이 현저히 증가된 것을 확인하였다.
실시예 5: pFc2 융합 E2 재조합 단백질 발현 실험
5.1. pFc2 융합 항원 단백질의 분리
pFc2 단편을 항원 단백질에 융합하여 사용가능한지 확인하기 위하여, 돼지 열병 항원인 E2 단백질을 코딩하는 폴리뉴클레오티드(서열번호 17)를 실시예 1의 재조합 벡터 내에 포함되어 있는 구제역 바이러스의 VP1 유전자 대신에 삽입하여, BiP:E2:pFc2 재조합 단백질을 발현하는 재조합 벡터를 제조하였다. 그리고 제조된 재조합 벡터를 아그로박테리움-매개 형질전환 방법(Agrobacterium-mediated transformation)으로 애기장대에 형질전환 시키고, 카나마이신(Kanamycin)에 대한 내성을 가지는 애기장대를 선별하고, 세대진전을 통해 pFc2가 융합된 E2 재조합 단백질의 발현이 안정된 호모 종자를 최종 확보하여, 형질전환 식물체를 제조하였다. 그리고 단백질 추출에 보편적으로 사용되는 단백질 추출 버퍼를 이용하여 최종 확보된 형질전환 식물체 8 g으로부터 단백질을 분리하고, protein A-sepharose column을 장착한 AKTA prime(GE Healthcare)을 이용하여 pFc 융합 E2 재조합 단백질을 분리하였다. 그리고 대조군으로는 pFc 단편 대신 셀룰로오스 결합 도메인(서열번호 19)을 융합시킨 BiP:E2:CBD 재조합 단백질을 사용하였다. CBD가 융합된 E2 재조합 단백질은 비결정 셀룰로오스(amorphous cellulose; AMC)를 사용하여 형질전환 식물체 5 g으로부터 분리하였다. 그리고 분리된 재조합 단백질은 인산화완충용액(phosphate buffered saline; PBS)를 이용하여 투석 후에 원심 필터 튜브(Centrifugal filter tube)를 사용하여 농축하였다. 그리고 분리된 재조합 단백질의 양을 정량하기 위하여, SDS-PAGE를 실시한 후에 쿠마씨 블루(coomassie blue)로 염색하였다. 이때, BSA(bovine serum albumin)를 이용한 표준곡선(standard curve)을 이용하여 재조합 단백질을 정량하였다. 그 결과는 도 8에 나타내었다.
도 8에 나타난 바와 같이, 셀룰로오스 결합 도메인이 융합된 E2 재조합 항원의 경우에는 식물체 1 g 당 약 30 μg이 생산되는 반면, pFc2 단편이 융합된 E2 재조합 항원의 경우에는 식물체 1 g 당 302 μg이 생산되는 것을 확인하였다. 상기 결과를 통하여, pFc2 단편을 이용하여 목적 항원의 발현량을 10 배 이상 증가시킬 수 있다는 것을 확인하였다.
5.2. pFc2 융합 E2 재조합 항원의 면역원성 및 바이러스 중화능 확인 실험
pFc2 융합 E2 재조합 항원이 생체 내에서 항체를 유도하여 면역원성 및 바이러스 중화능을 가지는지 확인하기 위하여, 6 주령의 수컷 C57BL/6J 마우스를 이용하여 실험을 진행하였다. 보다 자세하게는, 실험군 마우스에 pFc2 융합 E2 재조합 항원 1 μg을 1 회(6 주령), 또는 2 회(6 주령 및 8 주령) 투여하였고, 음성 대조군 마우스에는 인산염완충용액을 투여하였다. 그리고 양성 대조군으로는 셀룰로오스 결합 도메인이 융합된 E2 재조합 항원을 실험군과 동일한 양으로 동일한 시기에 투여하였다. 각각의 항원 투여 시에는 동량의 프로인트 면역항원보강제(Freund's adjuvant)를 혼합하여 투여하였고, 1 회 투여군에는 보조제(complete adjuvant)를 2 회 투여군에는 1 차에는 보조제를, 2 차에는 불완전 보조제(incomplete adjuvant)를 투여하였다. 그리고 실험을 시작하는 시점과 항원을 투여하고 일주일 이후부터 매주 채혈하여 돼지열병 바이러스에 대한 임상진단용 항체키트(CSFV-ab ELISA Kit, 메디안 디노스틱)를 이용하여 투여 항원에 대한 특이항체의 생성 여부 및 항체의 지속성을 확인하였다. 2 회 투여군은 2 차 투여를 모두 완료한 시점부터 일주일 이후에 채혈을 시작하였다. 각각의 군마다 5 마리의 마우스를 이용하여 실험을 진행하였으며, 그 결과는 표 1, 도 9 및 10에 나타내었다. 표 1의 S/P value는 0.14 이상의 값인 경우에는 양성으로, 0.14 미만의 값인 경우에는 음성으로 판정하였다.
S/P value
Ag 1w 2w 3w 4w 5w 6w 7w Fn.
E2:CBD Mouse 1 -0.10 0.33 0.69 1.04 1.58 1.42 1.62 1.26
Mouse 2 -0.01 0.32 0.82 0.87 0.84 0.89 0.63 0.72
Mouse 3 -0.07 0.90 0.89 0.80 0.85 1.21 1.41 1.47
Mouse 4 -0.04 0.21 0.31 0.25 0.30 0.35 0.43 1.15
Mouse 5 -0.07 0.14 0.31 0.46 0.74 0.96 1.08 0.96
E2:pFc2 Mouse 1 0.44 1.30 2.18 2.27 2.19 2.07 1.91 2.09
Mouse 2 1.15 1.75 2.65 3.14 3.23 2.82 2.87 2.80
Mouse 3 0.06 0.57 1.25 1.40 1.17 1.08 1.11 1.06
Mouse 4 0.40 1.72 2.66 2.59 2.58 2.55 2.49 3.10
Mouse 5 0.44 1.54 3.00 2.55 2.66 2.71 2.43 2.95
도 9에 나타난 바와 같이, 항원을 1 회 투여하였을 때 pFc2 융합 E2 재조합 항원의 경우에는 투여 후 1 주일이 지난 시점부터 높은 반응성을 나타내며, 반응성이 8 주 이상 유지되는 것을 확인하였다. 반면, 셀룰로오스 결합 도메인이 융합된 E2 재조합 항원의 경우에는 양성값을 나타내긴 하나, 그 반응성이 pFc2 융합 E2 재조합 항원과 비교해서 낮은 것을 확인하였다.
도 10 및 표 1에 나타난 바와 같이, 항원을 2 회 투여하였을 때는 셀룰로오스 결합 도메인이 융합된 E2 재조합 항원의 경우에도 반응성이 1 회 투여 시와 비교하여 증가되었으나, pFc2 융합 E2 재조합 항원과 비교하였을 때는 여전히 반응성이 낮은 것을 확인하였다.
또한, 동일한 마우스의 혈청 시료는 농림축산검역본부에 의뢰하여 바이러스 중화능을 확인하였다. 그 결과는 표 2에 나타내었다.
실험차수 항원 개체번호 중화항체값
2-1차(2회 주사) E2:CBD 1 64
2 32
3 32
4 32
5 128
E2:pFc2 1 128
2 256
3 32
4 256
5 512
2-2차(1회 주사) E2:CBD 1 4
2 4
3 <4
4 <4
5 <4
E2:pFc2 1 256
2 256
3 64
4 128
5 64
음성 <4
양성 2048
표 2에 나타난 바와 같이, 셀룰로오스 결합 도메인이 융합된 E2 재조합 항원의 경우에는 항원의 1 회 투여 시, 일부 마우스에서는 음성값을 나타내나, pFc2 융합 E2 재조합 항원의 경우에는 1 회 투여 시나 2 회 투여 시나 모두 높은 역가의 바이러스 중화능을 나타내는 것을 확인하였다.
5.3. pFc2 융합 E2 재조합 항원의 바이러스 중화능 확인 실험
pFc2 융합 E2 재조합 항원이 자돈(piglet)에서도 동일하게 높은 역가의 바이러스 중화능을 나타내는지 확인하기 위하여, 돼지 열병 항체 음성돈 4 두를 선별하여 pFc2 융합 E2 재조합 항원을 2 회 투여하고, 2 주 간격으로 획득된 혈청을 농림축산검역본부에 의뢰하여 바이러스 중화능을 확인하였다. 그 결과는 표 3에 나타내었다.
일령 0주(1차접종) 2주(2차접종) 4주 6주 8주 10주 12주
개체별 중화항체 중화항체 중화항체 중화항체 중화항체 중화항체 중화항체
E2:pFc2 #7 1 <1 8 7 7 7 6
#8 <1 1 9 8 7 8 6
#9 <4 4 8 7 6 5 5
#10 2 4 10 9 7 7 6
평균 1.5 2.25 8.75 7.75 6.75 6.75 5.75
표 3에 나타난 바와 같이, 실시예 3.2의 마우스를 이용하여 진행한 실험과 동일하게 모든 자돈에서 양성값을 나타내는 것을 확인하였다.
상기 결과들을 통하여, 본 발명의 pFc2 단편을 다양한 백신용 펩타이드 또는 단백질과 융합시킴으로써, 목적 항원의 생산량을 현저히 증가시킬 수 있을 뿐만 아니라 용해성 및 안정성을 증가시켜 목적 항원의 응집이 억제되어 재조합 항원의 생리활성 또는 약리적인 활성을 유지하는데 효과적인 것을 확인할 수 있었다. 또한, 항원을 pFc2 단편과 융합시켜 재조합 항원을 제조함으로써 pFc2 단편이 자체 면역증강 반응(self-adjuvanting) 효과를 나타내어, 자체-면역항원보강제(self-adjuvant) 효과를 나타내어, 목적 항원의 면역원성을 현저히 증가시킬 수 있을 뿐만 아니라, 생산성 및 안정성을 증가시킬 수 있다는 것을 확인할 수 있었다.
전술한 본 발명의 설명은 예시를 위한 것이며, 본 발명이 속하는 기술분야의 통상의 지식을 가진 자는 본 발명의 기술적 사상이나 필수적인 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 쉽게 변형이 가능하다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 그러므로 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며 한정적이 아닌 것으로 이해해야만 한다.
본 발명은 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원에 관한 것으로, 보다 자세하게는 다양한 항원에 Fc 단편을 결합시킴으로써 자체-면역 증강 효과를 가지는 백신 조성물 및 이의 제조방법에 관한 것이다. 본 발명의 Fc 단편이 융합된 항원은 자체-면역 증강 효과를 가짐으로써, 백신 조성물의 예방 및/또는 치료 효과를 현저히 증가시킬 수 있으므로, 다양한 백신 조성물에 적용되어 폭넓게 사용가능할 것으로 기대된다.

Claims (13)

  1. 서열번호 4로 표시되는 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원을 유효성분으로 포함하는, 백신 조성물.
  2. 제 1 항에 있어서,
    상기 항원은 Fc 단편과 융합됨으로써 자체 면역 증강 반응(self-adjuvanting) 효과 및 증가된 용해성을 가지는 것을 특징으로 하는, 백신 조성물.
  3. 서열번호 4로 표시되는 돼지의 Fc 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드 및 항원을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는, 자체-면역 증강 효과를 가지는 재조합 항원의 발현 벡터.
  4. 제 3 항에 있어서,
    상기 발현 벡터는 프로모터 유전자, Fc 단편을 코딩하는 폴리뉴클레오티드, 및 항원을 코딩하는 폴리뉴클레오티드가 순차적으로 연결되어 있는 것을 특징으로 하는, 발현 벡터.
  5. 제 4 항에 있어서,
    상기 프로모터는 꽃양배추 모자이크 바이러스(cauliflower mosaic virus) 유래 35S 프로모터, 꽃양배추 모자이크 바이러스(cauliflower mosaic virus) 유래 19S RNA 프로모터, 식물의 액틴 단백질 프로모터, 유비퀴틴 단백질 프로모터, CMV(Cytomegalovirus) 프로모터, SV40(Simian virus 40) 프로모터, RSV(Respiratory syncytial virus) 프로모터, pEMU 프로모터, MAS 프로모터, 히스톤 프로모터, Clp 프로모터 및 EF-1α(Elongation factor-1 alpha) 프로모터로 이루어진 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는, 발현 벡터.
  6. 제 3 항에 있어서,
    상기 발현 벡터는 BiP(Chaperone binding protein)를 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 추가로 포함하는 것을 특징으로 하는, 발현 벡터.
  7. 제 3 항에 있어서,
    상기 발현 벡터는 HDEL(His-Asp-Glu-Leu) 펩타이드를 코딩하는 유전자를 추가로 포함하는 것을 특징으로 하는, 발현 벡터.
  8. 제 3 항에 있어서,
    상기 발현 벡터는 M17의 5' UTR(untranslational region) 부위 유전자를 추가로 포함하는 것을 특징으로 하는, 발현 벡터.
  9. 제 3 항에 있어서,
    상기 발현 벡터는 Fc 단편이 융합된 항원의 발현량을 증가시키며 용해성을 증가시키는 것을 특징으로 하는, 발현 벡터.
  10. 제 3 항 내지 제 9 항 중 어느 한 항의 발현 벡터로 형질전환된, 형질전환체.
  11. (a) 제 10 항의 형질전환체를 배양하는 단계; 및
    (b) 상기 형질전환체 또는 배양액으로부터 Fc 단편이 융합된 항원을 분리 및 정제하는 단계를 포함하는, 자체-면역 증강 효과를 가지는 재조합 항원의 생산 방법.
  12. 서열번호 4로 표시되는 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원을 유효성분으로 포함하는 조성물을 개체에 투여하는 단계를 포함하는, 감염증의 예방 또는 치료 방법.
  13. 서열번호 4로 표시되는 돼지의 Fc 단편과 융합된 항원을 유효성분으로 포함하는 조성물의 감염증 예방 또는 치료 용도.
PCT/KR2018/015399 2018-09-19 2018-12-06 돼지의 fc 단편과 융합된 항원 및 이를 포함하는 백신 조성물 Ceased WO2020059961A1 (ko)

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