CH343349A - Procédé de préparation d'une enzyme protéolytique - Google Patents
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Description
Procédé de préparation d'une enzyme protéolytique La présente invention concerne l'obtention d'une nouvelle enzyme protéolytique.
Les enzymes protéolytiques, encore désignées sous le nom de protéases, provoquent la dégradation des protéines en protéoses, peptones et acides aminés. Un certain nombre de ces enzymes sont connues et très utilisées dans l'industrie. On peut indiquer comme exemples la trypsine, qui se trouve dans le suc pancréatique, la pepsine qui se forme dans la muqueuse gastrique, la rennine qui est sécrétée dans la caillette des jeunes veaux, et la papaïne que l'on peut obtenir à partir de la sécrétion du papaïe exotique.
Les enzymes protéolytiques que l'on vient de citer et celles de nature et d'origine semblables présentent différents inconvénients évidents. La trypsine a une courte demi-vie (une demi-heure), elle est instable, coûteuse à purifier et exige un pH neutre ou légè rement alcalin pour montrer une activité protéoly tique optima. La pepsine n'est active qu'à des pH très acides de 1,5 à 4,5. La rennine n'a que des applications industrielles très limitées, n'offrant comme seul intérêt que de cailler rapidement le lait en transformant la caséine en para-caséine. Le papaïe, dont on obtient la papaïne à partir de son latex, est une plante des climats tropicaux.
On doit donc importer la papaïne brute de pays lointains comme Ceylan et l'Afrique. Bien qu'on puisse le cultiver dans certaines parties méridionales des Etats-Unis, les frais de main-d'oeuvre pour l'extraction et le trai tement du latex sont prohibitifs.
Un autre inconvénient important de la papaïne comme enzyme industrielle est son extrême sensibilité du point de vue chimique. La molécule de papaïne renfermant un groupe sulfhydryle, les oxydants agis sent facilement sur cette enzyme. Ainsi en exposant le latex à l'air, même pendant une courte durée, il se forme des groupes dithioniques qui diminuent l'acti vité du latex. L'addition d'un agent réducteur comme la cystéine est donc nécessaire pour obtenir l'acti vité protéolytique maxima.
Les enzymes protéolytiques dont on dispose actuellement étant de structure chimique inconnue et ne pouvant donc être obtenues par synthèse, leurs sources principales sont des sources naturelles comme les estomacs d'animaux, les glandes pancréatiques et les sécrétions des plantes.
Des efforts considérables ont été tentés ces der nières années du côté des moisissures et mycètes comme source bon marché et d'accès aisé d'enzymes protéolytiques. Des recherches limitées ont été entre prises sur des méthodes de fermentation, des formules de milieux, et sur les conditions appropriées à une production et une obtention les meilleures d'enzymes protéolytiques. Ainsi Maxwell (Australian Journal Scientific Research, série B, 5, 42 - 55, 1952) a montré que lorsqu'on cultivait une moisissure d'As <I>pergillus</I> oryzae sur un milieu de Raulin modifié, il s'élaborait une enzyme protéolytique.
On trouve dans la littérature d'autres publications détaillées d'essais effectués sur cette moisissure ainsi que sur d'autres.
La plupart des recherches antérieures sur la culture des mycètes dans des conditions convenant pour une production industrielle d'enzymes protéoly tiques n'ont eu qu'un succès modéré. Les méthodes découvertes précédemment sont d'un intérêt très limité en raison du coût prohibitif des milieux pres crits pour la culture, du temps prolongé nécessaire à la fermentation, ou de l'absence de méthodes conve nables pour séparer et purifier l'enzyme. En outre, les enzymes qui se forment dans les conditions indi quées par ces chercheurs possèdent une activité pro téolytique très limitée,
à la fois en ce qui concerne le champ de cette activité et son degré. D'autre part, l'intervalle de pH dans lequel elles sont stables est extrêmement étroit, comme pour la trypsine et pour la pepsine.
Selon la présente invention, on obtient une nou velle enzyme protéolytique en faisant fermenter un ou plusieurs mycètes de l'un ou l'autre des genres de l'ordre des Entomophthorales dans un milieu nutritif aqueux, en aérobie.
Cette nouvelle enzyme protéolytique se prête à une grande variété d'applications : dans l'industrie du cuir par exemple, pour préparer les cuirs à partir de peaux brutes ; pour attendrir la viande en en modifiant partiellement les protéines.
Cette enzyme peut encore être employée dans d'autres domaines, par exemple dans l'industrie du nettoyage à sec, en particulier pour enlever les taches de blanc d'aeuf, etc., dans l'industrie textile pour le désapprétage des tissus, dans l'industrie de la boulangerie pour obtenir un pain de meilleure texture, et dans l'industrie des matières alimentaires pour jeunes enfants en vue de faciliter la digestion des protéines.
Cette nouvelle enzyme est une substance pro- téinique de structure chimique inconnue. Un volume de 1 cc du mélange de fermentation brut offre une activité protéolytique non inférieure à 15 000 unités Azocoll, déterminée par la méthode de Bidwell et Oakley décrite plus loin.
Des échantillons de la subs tance solide amorphe, tels que ceux obtenus comme indiqué plus loin et d'un titre moyen non inférieur à 1000 unités Azocoll par gamma d'azote, montrent une notable activité protéolytique vis-à-vis de la caséine dans un domaine de pH compris entre 4,0 et 11,0 environ, le pH optimum étant de 9,0. L'en zyme a un point isoélectrique d'environ 10,2.
Une solution à 1 % de la substance dans un tampon d'acétate à pH 6,3 extrapolée à la concentration zéro et corrigée à 200 C, dans l'eau, possède une constante de sédimentation égale à 2,5 X 10-r3. Une solution à 0,4 % de l'enzyme corrigée à 20,
1 C dans l'eau possède une constante de diffusion de 8,2 X 10-7. Une solution aqueuse de degré ionique 0,13 à pH 8,5 dans un tampon au véronal présente une mobilité électrophorétique de 0,43 X 10-5. Une solution de même degré ionique à pH 10,5 dans un tampon de glycine présente une mobilité électrophorétique de 0,08 X 10-5. En supposant un volume spécifique partiel égal à 0,75,
les constantes de sédimentation et de diffusion correspondent à un poids moléculaire d'environ 30 000. Des volumes de 5 cc d'une solution aqueuse de l'enzyme à une concentration d'environ 0,5 0/0, injectés par voie intraveineuse à un lapin à des intervalles de 4 jours, produisent après 4 ou 5 injections environ un antisérum d'une teneur satis faisante en anticorps.
L'antisérum spécifique ainsi obtenu donne une réaction positive à la précipitine avec 1/20 cc d'une solution aqueuse à 0,5 % de l'enzyme, à une dilution non inférieure à 1 : 1000. L'enzyme est stable dans le domaine de pH compris entre 4,0 et 11,0 environ.
Les champignons phycomycètes de l'ordre des Entomophthorales utilisables dans le procédé selon l'invention sont décrits par Bessy (Morphology and Taxonomy of Fungi, pages 172 - 177, Blakiston Company, Philadelphie, l950).
L'ordre comprend une seule famille, la famille des Entomophthoraceae qui comprend six genres : Entomophthora, Bnsidio- bolus, Cohidiobolus, Completoria, Massaspora et Ancylistes.
Parmi les divers genres de cette famille, les genres Entomophthora, Basidiobolus et Conidiobolus ont été reconnus les plus intéressants. Les espèces des genres se montrant actives comprennent par exemple les espèces Entomophthora apiculata, coronata, sphaerosperma, et les espèces Basidiobolus ranarum et Conidiobolus brefeldianus.
Bien que les espèces de la famille désignée sous le nom d'Entomophthoraceae soient très actives comme productrices de l'enzyme protéolytique, on préfère pour des raisons de productivité les espèces des genres Entomophthora et Conidiobolus.
Il est préférable pour la mise en oeuvre de l'in vention que le milieu nutritif contienne des sources assimilables de carbone et d'azote, et des traces de sels inorganiques. On peut faire varier entre de larges limites les conditions de fermentation telles que le temps, la température et la concentration en ions hydrogène. A la fin de la période de fermentation on peut extraire l'enzyme du mélange de fermentation par différentes méthodes, par exemple par adsorption sur -des terres d'infusoires, ou du silicate de magné sium, puis élution par des milieux aqueux à pH sen siblement alcalin.
On peut employer une grande variété de subs tances comme sources de carbone du milieu nutritif. Ces substances peuvent être solubles ou insolubles dans l'eau et il est seulement souhaitable que les composés utilisés soient aisément assimilables par le champignon.
On peut citer comme exemples les pentoses comme l'arabinose, le ribose et le xylose ; les monosaccharides comme le mannose, le lévulose et le galactose ; les disaccharides comme le tréhalose, le maltose, le lactose, le cellobiose et le sucrose ; les polysaccharides comme l'amidon ;les alcools comme la glycérine, la mannite, la sorbite et l'inosite ; et des sources diverses comme l'alcool éthylique et le carbo nate de calcium.
Le milieu préféré est un milieu contenant 5 % en poids environ de source de carbone. La présence de sucre est essentielle au développement de la moi sissure si l'on désire avoir une production élevée de mycélium. Bien qu'il soit possible de cultiver le champignon avec succès dans un milieu nutritif auquel on n'a pas ajouté d'hydrates de carbone, la production d'enzyme est faible dans ces conditions et de peu d'intérêt industriel.
L'azote assimilable peut être apporté par des protéines animales ou végétales, la farine de soja, la caséine, les peptones, polypeptides ou acides aminés. On peut indiquer comme exemples spécifiques la liqueur obtenue par cuisson à la vapeur sous pression de résidus de graisses et issues d'abattoirs et de bou cherie (ou liqueur animale de collage), le nitrate de sodium, l'asparagine, l'urée, l'histidine et la guanine. Une proportion de 11% d'hydrolysat de caséine, seul ou avec un sucre comme le dextrose, fournit des quan tités appréciables d'enzyme.
On peut si l'on veut ajouter différentes proportions de sels inorganiques, soit à une combinaison d'hydrolyse de caséine et de sucre, soit au sucre seul. On a constaté avec la liqueur animale de collage comme source d'azote, que l'on obtenait les meilleurs résultats en présence également d'un sucre dans le milieu, bien que l'on ait égale ment de bons rendements sans ajouter d'hydrates de carbone.
Les conditions de pH pour le développement de l'enzyme protéolytique peuvent être de pH 5,0 à 9,0 environ, mais on a trouvé que le domaine compris entre 6,0 et 8,0 environ donnait de meilleurs résultats. On peut ajuster le pH par toute base convenable comme la soude, un tampon au phosphate, le citrate de sodium, l'acétate de sodium, ou tout autre com posé approprié portant le pH à la valeur désirée.
On peut maintenir la température du milieu nutritif au cours de la fermentation du mycète entre 20,, C et 30 C environ, les températures comprises entre 25 et 30 C environ étant préférables.
On peut faire varier dans de larges limites le temps nécessaire à l'obtention d'une quantité maxima d'enzyme protéolytique, selon la nature des consti tuants particuliers du milieu nutritif. Toutefois, une durée de 24 à 90 heures environ est généralement considérée comme bonne pour la production de quantités optima d'enzyme.
Dans le mode de réalisation préféré de la présente invention, on ajoute un germe de 24 heures du mycète à 50 cc de milieu en quantité suffisante pour avoir une concentration de 0,5 % à 1,0 0/0, puis on place le flacon sur une machine à secousse et on fait incuber entre 26,) C et 29() C pendant 48 à 96 heures environ.
On fait passer de l'air stérilisé dans le milieu pendant la fermentation, cet air servant en même temps de moyen d'agitation. On évalue alors le degré d'activité de l'enzyme protéolytique élaborée par un essai de titre Azocoll modifié, de la façon décrite en détails plus loin. On observe en général une pro duction maxima en 48 à 72 heures.
On peut cultiver la moisissure utilisée comme germe sur un milieu convenable tel que l'agar-agar. Pour obtenir un germe de 24 heures on peut prendre une certaine quantité de mycélium végétatif à partir de l'agar-agar, le déposer dans 50 ce environ de milieu nutritif, puis faire incuber pendant 24 heures entre 201, C et 30 C environ.
On peut ajouter aseptiquement des agents anti- mousse au milieu de fermentation. On a trouvé que 1 ID/o d'octadécanol dans de l'huile de saindoux était préférable dans ce but, bien que l'on puisse égale ment employer une grande variété d'autres produits. On peut indiquer comme exemples de ces produits l'huile de soja, l'huile de ricin, l'oléine, les huiles sulfonées, l'huile de saindoux, l'huile de ricin bromée. On peut en ajouter de 0,1 à 1 ;O/o.
On obtient le meilleur résultat avec un milieu liquide contenant des sels inorganiques. On opère donc de préférence avec un milieu liquide renfermant des traces de constituants minéraux, ajoutés ou natu rellement présents. On peut utiliser des nitrates, phos phates, sulfates, chlorures de métaux lourds, de métaux-alcalino-terreux ou de métaux alcalins, par exemple de calcium, cobalt, sodium, potassium, magnésium ou manganèse. On entend par traces des proportions variant entre 0,001 et 0,0001 %.
A la fin de l'opération de fermentation, et après avoir déterminé par le titre en unités Azocoll que l'on a obtenu le rendement maximum en protéase, on sépare et on purifie l'enzyme. Du fait de la nature instable de celle-ci la méthode de purification utilisée doit être nécessairement sélective et assurer le mini mum de destruction et la meilleure séparation du reste des constituants du bouillon de fermentation.
De préférence, la substance active est adsorbée sur une matière adsorbante appropriée à un pH de la bouillie compris entre 6,5 et 8,5 environ. L'ad sorption peut avoir lieu soit avant, soit après sépa ration des cellules de la bouillie. On sépare la matière adsorbante contenant l'enzyme du mélange de fermen tation par tout moyen approprié, par exemple par filtration ou centrifugation, et l'on écarte le filtrat ou le liquide surnageant. On récupère la substance active protéolytique en formant une bouillie avec l'adsor bant et un alcali en solution aqueuse comme l'am moniaque, la soude ou la potasse à un pH compris entre 9,0 et 11,5 environ, et de préférence de 10,5 environ. On filtre la bouillie et on lave le gâteau avec l'alcali aqueux pour récupérer le maximum de subs tance.
On réunit le liquide de lavage et l'éluat, et si on le désire on les soumet à d'autres séparations et purifications.
Les matières adsorbantes préférées sont des terres d'infusoires purifiées, par exemple les produits marque Attasorb ou Superfiltrol . On peut également se servir de silicate de magnésium, par exemple des produits marque Magnésol ou Florisil . D'au tres adsorbants appropriés sont la terre à foulon, le charbon actif, le noir de fumée, l'oxyde de titane, les catalyseurs de cracking synthétiques, etc. On peut également employer avec un bon résultat les zéolites artificielles, par exemple le produit marque Per- mutite .
Avec un adsorbant du type silicate de magnésium on obtient les meilleurs résultats en lavant au préa- lable cet adsorbant avec une solution aqueuse diluée d'acide minéral comme l'acide chlorhydrique ou sulfu rique, puis en éliminant l'acide par lavage à l'eau et en séchant avant emploi.
Pour obtenir la meilleure élution on met l'adsor bant en suspension dans l'eau, on ajuste à un pH élevé, on agite, puis on filtre ou on centrifuge. On élue généralement à pH 10,5 environ, mais ce pH peut varier de 9,0 à 11,5 environ. Dans le cas d'un adsorbant faible, comme par exemple un catalyseur de cracking synthétique, le pH d'élution peut des cendre à la valeur 7,4.
La présence d'une petite quantité de chlorure de sodium est généralement favorable à l'élution maxima. Ainsi, avec un éluant de pH 10,5 il est préférable d'avoir une concentration d'environ 2 a/o en chlorure de sodium.
Immédiatement après la filtration on abaisse le pH de l'éluat (renfermant l'enzyme protéolytique) entre 6,0 et 8,0 environ, l'enzyme étant le plus stable à cette concentration en ions hydrogène. On peut commodément y parvenir en ajoutant de la neige carbonique ou en faisant passer du gaz carbonique dans la solution jusqu'à ce que l'on obtienne le pH désiré.
L'enzyme brute obtenue par cette méthode est à peu près exempte d'impuretés et peut être employée telle quelle dans nombre d'opérations industrielles comme le nettoyage à sec., le chipage des peaux ou le désapprêtage des tissus. Toutefois, dans d'autres domaines comme l'industrie pharmaceutique, la fabri cation du pain ou des matières alimentaires pour bébés, il peut être souhaitable d'avoir un produit le plus pur possible. A cet effet, on précipite l'enzyme de sa solution aqueuse par addition d'acétone, de préférence 2,5 à 3 volumes. On rassemble le préci pité obtenu par centrifugation, ou par filtration sur une matière filtrante appropriée comme une terre d'infusoires.
Il est nécessaire dans ce dernier cas de séparer l'enzyme de la matière filtrante par lavage à l'aide d'un solvant aqueux convenable, par exemple d'une solution à 1 a/o de chlorure de sodium.
On peut aisément mettre sous une forme stable commerciale l'enzyme précipitée à l'acétone par un certain nombre de procédés simples, parmi lesquels sont la dissolution dans une solution aqueuse à 1 % de chlorure de sodium suivie d'une stérilisation, la lyophilisation en un produit solide stable, ou le séchage par mise en suspension dans de l'acétone anhydre et filtration.
Il a été reconnu bon d'employer un agent protec teur pour le séchage de la substance protéolytique active. Un tel produit auxiliaire est souhaitable si l'on opère par lyophilisation ou par séchage à l'aide d'un solvant comme l'acétone ou des solvants analo gues. Des adjuvants protecteurs s'étant montrés satis faisants sont la sorbite, le sirop de grain, le lactose, le dextrose, la gélatine et la gomme arabique. On peut ajouter le protecteur à la solution d'enzyme juste avant la lyophilisation ou le traitement à l'acétone.
Si l'on effectue le séchage à l'aide d'acétone, l'adjuvant seul tend à donner un précipité gommeux que l'on ne peut obtenir à l'état sec. Il est avanta geux dans ces cas-là d'employer avec l'adjuvant un agent de gonflement avant d'ajouter l'acétone, ce qui permet la formation d'un précipité solide que l'on peut facilement sécher. Comme produits qui se sont montrés particulièrement satisfaisants dans ce but, on peut citer l'amidon, la pulpe de bois, le silicate de magnésium, la terre d'infusoires, et les composés de semblable nature. On ajoute l'adjuvant protecteur et les agents de gonflement à une solution aqueuse de l'enzyme protéolytique, puis on agite le mélange. On additionne ensuite de 2 à 5 volumes d'acétone, puis on rassemble le précipité actif sur un filtre et on le lave à -l'acétone froid.
On met le précipité en suspension dans de l'acétone anhydre, on filtre, on sèche à l'air et on pulvérise. On peut employer le produit obtenu tel quel dans un domaine de pH étendu allant de 4,0 à 11,0 environ, le domaine optimum et préféré étant compris entre 8,0 et 9,0 environ.
On peut si on le désire sécher l'enzyme avec des solvants autres que l'acétone, miscibles à l'eau, et dans lesquels l'enzyme est insoluble. Des exemples de solvants sont le dioxane, et les alcools aliphatiques inférieurs comme les alcools méthylique, éthylique, propylique, isopropylique, butylique et isobutylique.
Si l'enzyme protéolytique est destinée à un usage non médicinal, comme par exemple le tannage de cuir, il n'est pas nécessaire de soumettre le bouillon de fermentation à des séparations coûteuses et ennuyeuses. Ainsi on peut précipiter la substance protéolytique active du bouillon par l'acide tannique ou d'autres composés précipitant les protéines, comme l'acide phosphotungstique, le chlorure de zinc, le chlorure ferrique, etc. Cette méthode permet la préparation très simple d'un produit utilisable à partir des mélanges de fermentation.
On ajoute simplement le composé précipitant la protéine directement au bouillon exempt de cellules, puis on sépare le préci pité de la liqueur mère, on le mélange avec un agent de gonflement comme la sciure de bois et on le sèche. On peut opérer avec ou sans adjuvants protecteurs, tels que le sirop de grain, etc.
Quand on effectue la purification par précipitation par un acide, comme par exemple l'acide tannique, le complexe obtenu peut être utilisable tel quel, mais il peut être avantageux de séparer la nouvelle enzyme de l'acide tannique afin d'obtenir un produit plus pur. Il est donc préférable de former une bouillie avec avec une petite quantité d'eau et le précipité obtenu par l'acide tannique, puis d'ajouter 2 volumes d'un solvant organique comme l'acétone ou un alcool, par exemple l'alcool méthylique, éthylique, propylique ou butylique. Le complexe d'acide tannique et de protéine se décompose et l'acide tannique passe en solution dans le solvant, l'enzyme restant insoluble. On peut aisément séparer les deux fractions par centrifugation ou par filtration, puis reprendre par une solution saline la substance active du produit solide.
Ainsi qu'il a été indiqué plus haut, on peut déter miner la présence et le degré d'activité protéolytique de l'enzyme par l'essai Azocoll, la méthode employée dans la présente invention étant une variante de celle décrite par Bidwell (Biochemical Journal, 46, pages 589 - 598 (1950)), et par Oakley et ses collaborateurs (Journal of Pathology and Bacteriology, 58, pages 229 - 235 (Avril 1946)). Cet essai est basé sur le pouvoir que présente l'enzyme protéolytique d'hydro lyser de la poudre de peau teinte par un colorant azoïque. Au contact de l'enzyme, la molécule de protéine est détruite et le colorant libéré passe dans le milieu liquide.
Plus le pouvoir hydrolysant de l'enzyme est élevé, plus grande est l'intensité de la teinte produite par la libération du colorant, que l'on compare avec celle donnée par un essai à blanc. L'enzyme obtenue conformément à la présente inven tion montre un titre caractéristique d'au moins 15 000 unités Azocoll par cm3 de bouillon de fermentation. Dans des conditions convenables de durée, de tempé rature, de pH, d'aération, de sources d'azote et de carbone, on est arrivé jusqu'à 75 000 unités par cm3.
Pour effectuer l'essai Azocoll modifié, on prépare une poudre de peau teinte par un colorant azoïque de la façon indiquée par Oakley et collaborateurs (voir ci-dessus). On prépare un tampon de pH 7,4 à 7,5 comprenant 85 parties de Na.HP04 ' 12H,0, 8 parties de KH2P04 et 40 parties àe NaCl, com plétées à 9000 parties avec de l'eau distillée.
On porte à 37 C une pipette de 10 cm3, la poudre Azocoll et le tampon, et on dilue l'échantillon d'en zyme à l'aide du tampon de façon qu'après digestion de l'Azocoll on fasse une lecture égale ou inférieure à 700 au photocolorimètre de Klett-Summerson, en employant un filtre vert No 54. On place 0,1 cc d'échantillon d'enzyme dilué et 9,9 cc de tampon dans un flacon Azocoll contenant 50 mg de poudre Azocoll, puis on fait incuber pendant 15 minutes à 37 C sur une machine à secousse.
On filtre le mélange et on effectue la lecture sur le filtrat, à l'appareil de Klett préalablement mis au zéro à l'aide du tampon. On effectue un essai à blanc de la même façon en employant 10 cc de tampon au lieu de 0,1 cc de solution diluée d'enzyme et 9,9 cc de tampon. On soustrait la lecture faite dans cet essai- témoin de celle correspondant à l'échantillon d'en zyme et on multiplie la différence obtenue par 10 fois le facteur de dilution ; on a ainsi une valeur donnant le nombre d'unités Azocoll par cm3 d'échan tillon primitif.
On va supposer, à titre d'exemple, qu'avec un échantillon d'enzyme dilué de 1 à 8 on fasse une lecture de 500, et que la lecture soit 115 pour l'essai Azocoll à blanc. On multiplie la diffé rence, soit 385, par 10 X 8, ce qui donne 30 800 unités Azocoll par cm-;. Les exemples suivants servent à illustrer le pro cédé selon la présente invention ; sauf spécification contraire, toutes les parties représentent des parties en poids.
<I>Exemple 1</I> On complète à 12 litres avec de l'eau ordinaire un milieu comprenant 1 % d'hydrolysat de caséine, 1 % de glucose, 0,3 % de NaNO3, 0,1 % de K,HP04, 0,
05% de KCI, 0,05 '0 /0 de M9S04. 7H.,0 et 0,001 % de FeS04. 7H,0,
puis on stérilise. On ajoute au bouillon de culture un germe d'Entomo- phthora apiculata d'une culture en flacon de 30 heu res, et on fait incuber à 27 - 280 C en agitant. Au bout de 96 heures le bouillon titre 50 000 unités Azocoll d'activité protéolytique par cm@3. <I>Exemple 2</I> On complète à 12 litres le milieu de l'exemple 1, puis on stérilise pendant 30 à 40 minutes à 115 120 C, dans un récipient approprié.
On ajoute un germe de Conidiobolus brefeldinnus au bouillon de culture, puis on fait incuber entre 27 et 280#C. On fait passer de l'air stérilisé dans le mélange de fer mentation et on agite par un moyen mécanique 39 heures. Après le début de l'incubation le milieu titre 57 000 unités Azocoll d'activité protéolytique par cm3. <I>Exemple 3</I> On complète à 100 parties avec de l'eau ordi naire un milieu comprenant 2 parties de liqueur animale de collage et 3 parties de glucose, puis on stérilise.
On place dans des récipients convenables des lots de 50 parties de ce milieu et on les ense mence à l'aide d'une culture de 24 heures de Coni- diobolus brefeldianus. On fait incuber à 280 C pen dant 3 jours sur une machine à secousse.
A la fin de cette période le milieu titre 78 000 unités Azocoll d'activité protéolytique par cm3. <I>Exemple 4</I> On ajoute un germe de Conidiobolus villosus au même milieu _ que celui de l'exemple 1, complété à 100 '% avec de l'eau ordinaire, puis fait incuber le mélange entre 26 et 28() C.
On fait passer de l'air stérilisé et on agite par un moyen mécanique. On obtient au bout de trois jours environ de bons rende ments en enzyme protéolytique. <I>Exemple 5</I> On ajoute un germe de Basidiobolus ranarum au milieu de l'exemple 1, complété à 100 % avec de l'eau ordinaire et fait incuber le mélange entre 26 et 28(l C.
On fait passer de l'air stérilisé dans le mélange et agite par un moyen mécanique. On obtient au bout de 48 heures environ un bon rendement en enzyme protéolytique. <I>Exemple 6</I> On ajoute un germe d'Entomophthora coronata au même milieu que celui employé à l'exemple 1 et complété à 100 % avec de l'eau ordinaire, puis fait incuber le mélange entre 26 et 28 C. On fait passer de l'air stérilisé et on agite par un moyen mécanique.
On obtient au bout de 36 heures environ un bon rendement en enzyme protéolytique. <I>Exemple 7</I> Au milieu utilisé à l'exemple 3 et complété à 100 parties avec de l'eau ordinaire, on ajoute des germes de Conidiobolus villosus ou de Basidiobolus rauarum, ou d'Entomophthora sphaerosperma, ou d'Entomophthora coronata. On obtient de bons ren dements en enzyme protéolytique après une incu bation de 3 jours à 28o C sur une secoueuse mécanique.
<I>Exemple 8</I> On ajoute 15 parties en poids de silicate de magnésium lavé à l'acide sulfurique à 1000 parties en volume d'un bouillon exempt de cellules et pré paré selon l'exemple 2, puis on agite le mélange. On filtre la suspension et on lave le gâteau filtré avec 100 parties en volume d'eau distillée. On forme une bouillie avec le gâteau et une solution froide de 100 parties en volume d'ammoniaque aqueux con centré et 100 parties en volume d'eau, puis on filtre le mélange. On lave le gâteau avec une petite quan tité de solution ammoniacale froide, puis on réunit le filtrat et le liquide de lavage.
Le bouillon exempt de cellules titre, avant adsorption et élution, environ 25 millions d'unités Azocoll d'activité protéolytique pour 1000 parties en volume de liquide. Après adsorption et élution l'éluat titre 18 millions d'unités Azocoll d'activité protéolytique par 1000 parties en volume de liquide. <I>Exemple 9</I> On filtre sur 2000 parties en poids de terre d'infusoires un volume du bouillon fermenté obtenu selon l'exemple 2, ce qui donne 140 000 parties en volume de bouillon exempt de cellules.
On ajoute à ce bouillon 1 % de silicate de magnésium lavé à l'acide et on agite le mélange. Lorsque le solide s'est déposé, on siphonne le liquide surnageant, puis on lave à l'eau le gâteau filtré. On forme une bouillie avec ce gâteau et 5000 à 6000 parties en volume d'eau froide, puis on ajoute une solution aqueuse de soude à la bouillie agitée jusqu'à ce que l'on atteigne et maintienne un pH d'environ 10,5.
On agite la bouillie alcaline, puis on filtre le mélange. On ajuste le pH de l'éluat à 8,0 environ à l'aide de gaz carbo nique. 140 000 parties en volume de bouillon exempt de cellules titrent avant purification environ 1,9 mil liard d'unités Azocoll d'activité protéolytique. Les 6000 parties en volume d'éluat titrent 1,7 milliard d'unités Azocoll d'activité protéolytique. On ajoute environ 18 000 parties en volume d'acétone froide à l'éluat ci-dessus et on laisse reposer le mélange pendant plusieurs heures à 4-, C environ.
On rassemble le précipité par centrifugation et on le dissout dans 2500 parties en volume environ de solution aqueuse à 1 % de chlorure de sodium. 6000 parties en volume de l'éluat titrent 1,7 milliard d'unités Azocoll d'activité protéolytique et 2500 parties en volume de solution saline titrent au mini mum 1,7 milliard d'unités d'activité protéolytique.
On dissout environ 70 parties en poids de sorbite cristalline sèche dans 1400 parties en volume de cette solution saline. On congèle des parties aliquotes et on les lyophilise.
On ajoute environ 182 parties en volume de solution aqueuse à 70 % de sorbite et 520 parties en poids d'amidon de pomme de terre à l'autre partie de la solution saline, puis on agite le mélange tout en ajoutant 7800 parties en volume d'acétone froide (à - 30 C environ), et on poursuit l'agita tion. On laisse déposer les solides et on décante le liquide surnageant. On filtre les produits solides, on les sèche à l'acétone froide, puis avec de l'acétone à la température ordinaire et à l'air.
<I>Exemple 10</I> On ajoute environ 1000 parties en poids de sili cate de magnésium humide lavé à l'acide à 180 000 parties en volume de bouillon exempt de cellules préparé selon l'exemple 2, puis on agite le mélange. On ajoute encore 200 parties en poids de silicate de magnésium humide lavé à l'acide et on poursuit l'agitation pendant encore 1 heure. On sépare les produits solides à l'aide d'une supercentrifugeuse, on les met en bouillie dans 200 parties en volume d'eau distillée et on filtre. On forme une bouillie avec le gâteau filtré lavé et 840 parties en volume de solution aqueuse à 70 /o de sorbite, puis on congèle la bouillie et on la lyophilise.
On peut utiliser le produit sec sous cette forme et l'ajouter simplement au sup port, on ne peut toutefois pas titrer ce produit par l'essai Azocoll ; on effectue le calcul par compa raison avec du caséinate de sodium.<B>10000</B> parties en volume de bouillon exempt de cellules titrent 3,1 milliards d'unités d'activité protéolytique. Le produit sec titre 2,7 milliards d'unités d'activité protéolytique.
<I>Exemple 11</I> On ajoute 5000 parties en volume d'une solution aqueuse à 10 % d'acide tannique et à 5 % de bisulfite de sodium à 465000 parties en volume environ de bouillon exempt de cellules obtenu selon l'exemple 2. On agite le mélange, puis on laisse déposer.
On décante le liquide surnageant et on sépare les produits solides dans une supercentrifu- geuse. On agite le gâteau avec 5000 parties en volume d'eau auxquelles on a ajouté environ 1000 parties en poids de sirop de grain. On agite le mélange, on ajoute 6000 parties en poids de sciure de bois, on brasse à fond et on sèche.
Le bouillon exempt de cellules (465 000 parties en volume) titre 11,4 milliards d'unités Azocoll d'activité protéoly tique, et le produit sec, 7200 parties en poids de poudre moulue, titre 6,2 milliards d'unités Azocoll d'activité protéolytique.
<I>Exemple 12</I> On ajoute environ 10 parties en volume d'une solution aqueuse à 10 % d'acide tannique et à 5 % de bisulfite de sodium à 1000 parties en volume de bouillon exempt de cellules obtenu selon l'exem ple 2. On agite le mélange, puis on sépare la subs tance solide par centrifugation. On agite ensuite cette substance avec 30 parties en volume d'eau distillée et on ajoute 6 parties en volume d'acétone froide. On agite la bouillie et on la centrifuge.
On remet les produits solides en bouillie avec 30 parties en volume d'eau et 60 parties en volume d'acétone, puis on centrifuge à nouveau. On réunit les deux parties liquides, la solution obtenue donne une réac tion importante au chlorure ferrique. On brasse à fond le produit solide dans 100 parties en volume d'une solution aqueuse à 2 % de chlorure de sodium et on centrifuge.
Le bouillon exempt de cellules titre 18 millions d'unités Azocoll d'activité protéolytique, et la solution aqueuse saline surnageante 15 millions d'unités d'activité protéolytique.
Claims (1)
- REVENDICATION Procédé d'obtention d'une enzyme protéolytique, caractérisé en ce qu'on fait fermenter un ou plusieurs mycètes de l'un ou l'autre des genres de l'ordre des Entomophthorales dans un milieu nutritif aqueux, en aérobie. SOUS-REVENDICATIONS 1. Procédé suivant la revendication, caractérisé en ce qu'on utilise des espèces des genres Entomo- phthora et Conidiobolus. 2. Procédé suivant la revendication, caractérisé en ce que le milieu nutritif contient des sources assi milables de carbone et d'azote. 3.Procédé suivant la revendication et la sous- revendication 2, caractérisé en ce que le milieu nutritif contient également des traces de sels inorga niques. 4. Procédé suivant la revendication, caractérisé en ce qu'on effectue la fermentation à un pH com pris entre 5,0 et 9,0. 5. Procédé suivant la revendication, caractérisé en ce qu'on effectue la fermentation entre 20 C et 30 C. 6. Procédé suivant la revendication, caractérisé en ce que la durée de fermentation est comprise entre 24 et 90 heures. 7.Procédé suivant la revendication, caractérisé en ce qu'on sépare l'enzyme protéolytique en ajoutant une matière adsorbante à la liqueur de fermentation, puis en séparant cette matière adsorbante et en éluant l'enzyme de l'adsorbant à l'aide d'une solution aqueuse d'alcali. 8. Procédé suivant la revendication,' caractérisé en ce qu'on sépare l'enzyme protéolytique en ajou tant à la liqueur de fermentation une substance qui précipite les protéines, comme l'acide tannique, puis en séparant le complexe qui précipite et en décom posant ce complexe pour libérer l'enzyme.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US343349XA | 1954-10-25 | 1954-10-25 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
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ID=21875775
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CH343349D CH343349A (fr) | 1954-10-25 | 1955-10-24 | Procédé de préparation d'une enzyme protéolytique |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CH (1) | CH343349A (fr) |
-
1955
- 1955-10-24 CH CH343349D patent/CH343349A/fr unknown
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