CH632277A5 - Process for the separation of precipitated proteins from an albumin-containing suspension - Google Patents
Process for the separation of precipitated proteins from an albumin-containing suspension Download PDFInfo
- Publication number
- CH632277A5 CH632277A5 CH1593176A CH1593176A CH632277A5 CH 632277 A5 CH632277 A5 CH 632277A5 CH 1593176 A CH1593176 A CH 1593176A CH 1593176 A CH1593176 A CH 1593176A CH 632277 A5 CH632277 A5 CH 632277A5
- Authority
- CH
- Switzerland
- Prior art keywords
- filter
- albumin
- filtration
- suspension
- clear
- Prior art date
Links
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 title claims description 32
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 title claims description 32
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 29
- 239000000725 suspension Substances 0.000 title claims description 19
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 title claims description 13
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 title claims description 13
- 238000000926 separation method Methods 0.000 title claims description 7
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims description 31
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 claims description 12
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 10
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 claims description 8
- 239000005909 Kieselgur Substances 0.000 claims description 7
- 210000002381 plasma Anatomy 0.000 claims description 7
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 claims description 4
- 239000002184 metal Substances 0.000 claims description 4
- 108010017384 Blood Proteins Proteins 0.000 claims description 3
- 102000004506 Blood Proteins Human genes 0.000 claims description 3
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 claims description 3
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 claims description 3
- 238000005352 clarification Methods 0.000 claims description 3
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 claims description 3
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 claims description 3
- 239000004744 fabric Substances 0.000 claims description 2
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 2
- 239000013049 sediment Substances 0.000 claims description 2
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 claims description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 16
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 14
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 8
- 102000006395 Globulins Human genes 0.000 description 7
- 108010044091 Globulins Proteins 0.000 description 7
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 7
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 4
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 4
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 4
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N Diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 238000011001 backwashing Methods 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 3
- 239000002002 slurry Substances 0.000 description 3
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N Chloroform Chemical compound ClC(Cl)Cl HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000001554 Hemoglobins Human genes 0.000 description 2
- 108010054147 Hemoglobins Proteins 0.000 description 2
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 2
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 2
- 238000011026 diafiltration Methods 0.000 description 2
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 2
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 2
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 2
- 230000001376 precipitating effect Effects 0.000 description 2
- 229960005480 sodium caprylate Drugs 0.000 description 2
- BYKRNSHANADUFY-UHFFFAOYSA-M sodium octanoate Chemical compound [Na+].CCCCCCCC([O-])=O BYKRNSHANADUFY-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 2
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- 108010039209 Blood Coagulation Factors Proteins 0.000 description 1
- 102000015081 Blood Coagulation Factors Human genes 0.000 description 1
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010054218 Factor VIII Proteins 0.000 description 1
- 102000001690 Factor VIII Human genes 0.000 description 1
- 108010049003 Fibrinogen Proteins 0.000 description 1
- 102000008946 Fibrinogen Human genes 0.000 description 1
- 108010094028 Prothrombin Proteins 0.000 description 1
- 102100027378 Prothrombin Human genes 0.000 description 1
- 102000003929 Transaminases Human genes 0.000 description 1
- 108090000340 Transaminases Proteins 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 239000010425 asbestos Substances 0.000 description 1
- 239000010836 blood and blood product Substances 0.000 description 1
- 210000000601 blood cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000003114 blood coagulation factor Substances 0.000 description 1
- 210000001772 blood platelet Anatomy 0.000 description 1
- 229940125691 blood product Drugs 0.000 description 1
- 210000001124 body fluid Anatomy 0.000 description 1
- 239000010839 body fluid Substances 0.000 description 1
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000011083 clear filtration Methods 0.000 description 1
- 229940105778 coagulation factor viii Drugs 0.000 description 1
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- SHFGJEQAOUMGJM-UHFFFAOYSA-N dialuminum dipotassium disodium dioxosilane iron(3+) oxocalcium oxomagnesium oxygen(2-) Chemical compound [O--].[O--].[O--].[O--].[O--].[O--].[O--].[O--].[Na+].[Na+].[Al+3].[Al+3].[K+].[K+].[Fe+3].[Fe+3].O=[Mg].O=[Ca].O=[Si]=O SHFGJEQAOUMGJM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000007599 discharging Methods 0.000 description 1
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 238000012869 ethanol precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 229940012952 fibrinogen Drugs 0.000 description 1
- 238000005194 fractionation Methods 0.000 description 1
- 239000003365 glass fiber Substances 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 239000010451 perlite Substances 0.000 description 1
- 235000019362 perlite Nutrition 0.000 description 1
- 210000002826 placenta Anatomy 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 239000012460 protein solution Substances 0.000 description 1
- 229940039716 prothrombin Drugs 0.000 description 1
- 229910052895 riebeckite Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- YNJBWRMUSHSURL-UHFFFAOYSA-N trichloroacetic acid Chemical compound OC(=O)C(Cl)(Cl)Cl YNJBWRMUSHSURL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
- C07K14/76—Albumins
- C07K14/765—Serum albumin, e.g. HSA
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Zoology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Separation Using Semi-Permeable Membranes (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- External Artificial Organs (AREA)
Description
Die vorliegende Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Abtrennung ausgefällter Eiweissstoffe aus einer albuminhaltigen, bei der Gewinnung von Albumin für nicht-therapeutische Verwendungszwecke aus Blutplasma gewonnenen Suspension.
In der DE-OS 2415 079 ist ein Verfahren zur Isolierung von Albumin aus Blut, Blutprodukten, anderen Körperflüssigkeiten oder Gewebeextrakten, durch Abtrennen des Plasmas von den festen Bestandteilen des Blutes, Ausfällen und Abtrennen der Globuline und Anreichern des Albumins beschrieben, bei welchem die abgetrennte Flüssigkeit zum Ausfällen der Globuline in Anwesenheit mindestens eines Alkohols der Formel CH3-n(CH2)-OH, wobei n für Null, 1 oder 2 steht, und mindestens einer albuminstabilisierenden Substanz auf 60-75°C erhitzt wird, worauf die Globuline ausgefällt und abgetrennt werden und das in der erhaltenen Flüssigkeit befindliche Albumin angereichert wird.
Die Abtrennung der ausgefällten Globuline und eventueller anderer ausgefallener Eiweissstoffe aufgrund einer Hitzefällung geschieht gemäss dem in der genannten Veröffentlichung beschriebenen Verfahren vorzugsweise bei einem pH-Wert von 4,4 durch Zentrifugieren im kontinuierlichen Fluss. Die abgeschiedenen Eiweisstoffe sammeln sich in den Rotoren, und das Albumin verbleibt in der überstehenden Flüssigkeit.
Bei der bekannten Abtrennmethode wird als unvollkommen empfunden, dass relativ viel Albumin in dem abgeschiedenen Konzentrat verbleibt, so dass noch mehrere Wasch- und Zentrifugier-Arbeitsgänge zur Gewinnung des wertvollen Restalbumins erforderlich sind. Ausserdem ist das Zentrifugieren sehr zeit- und arbeitsaufwendig und erzeugt grossen Lärm. Trotz dieser Nachteile wurde keine andere Arbeitsweise in Erwägung gezogen, weil es bei der seit vielen Jahren praktizierten Cohn-Methode (siehe entsprechenden Hinweis der genannten Veröffentlichung) üblich und notwendig ist, die Suspension, bestehend aus gefällten Globulinen und gelöstem Albumin, duch Zentrifugieren zu trennen. Versuche haben ergeben, dass die Suspensionen gemäss der Cohn-Methode praktisch bei normalen Anforderungen nicht zu filtrieren sind.
Es sind verschiedene Filtermethoden getestet worden, um die bei der kalten Äthanol-Fraktionierung gewonnenen gefällten Proteine zu entfernen. Nach der gewonnenen Erfahrung können diese Niederschläge durch Filtration nicht kostengünstig gewonnen werden. Dies ist offenbar auf die besondere Konsistenz der Stoffe zurückzuführen. Trotz dieser Erfahrung wurden verschiedene Filtriermethoden verwendet, da festgestellt worden war, dass Globuline, die bei der Hitze-Äthanol-Fällung gewonnen wurden, sich beträchtlich von denen unterschieden, die bei der Kalt-Fäl-lung gewonnen wurden.
Entgegen Erfahrung und Erwartung lässt sich überraschenderweise die Aufgabe lösen, mit wesentlich geringerem Aufwand die hitze-gefällten Eiweisstoffe aus der Suspension abzutrennen, indem gemäss der Erfindung die Abtrennung durch eine Schwemmfiltrierung der Suspension an einem Gewebefilterlement erfolgt, auf dem die nicht-albuminhal-tigen Bestandteile gesammelt werden und eine klare Albumin-Lösung als Filtrat gewonnen wird. Das Schwemmfiltrieren ist an sich bekannt. Die Schwemmfiltrierung erfolgt üblicherweise in Zentrifugal-Reinigungsfiltern, die im wesentlichen aus einem geschlossenen Druckkessel bestehen, in dem auf einer zentrisch laufenden Hohlwelle runde Filter-lemente angeordnet sind, die entweder horizontal oder vertikal parallel zueinander liegen. Die Filterelemente sind üblicherweise mit einem Metalltressengewebe ausgerüstet.
Die zu filtrierende Substanz wird mit Filterhilfsmitteln versetzt, üblicherweise Kieselgur, die je nach Trübungsart und Charakter der Rückstände dosiert zugemischt werden.
Das auf den Filterelementen sich ansammelnde Filtrat kann durch Rotation der Filterelemene und Gegenspülung abgeschwemmt und die Rückstände können als sogenannter Slurry ausgetragen werden.
Das Schwemmfiltrieren bietet im vorliegenden Falle überraschende Vorteile, da andere Filterarten und Filtriermethoden derartig lange Filterzeiten benötigt, dass sie keinerlei Vorteile gegenüber der zeitraubenden Zentrifugiermethode ergeben. Dabei wurden folgende Filtermethoden getestet: Klärfiltration mit Kohle- und Asbestscheibenfilter; Filterschichten auf Zellulosebasis; Glasfaserfilter; gesintertes Glas. Die verwendeten Filtriermethoden führten entweder zu übermässig langen Filtrierzeiten, Verstopfungen der Filtereinsätze oder zu trüben gefilterten Flüssigkeiten. Nur die Verwendung eines Schwemmfilters ermöglicht es, klare Filtrate zu erhalten, die keine zusätzlichen Klärfiltrationen notwendig machen und die damit ein optimales Arbeiten bei der Albumin-Gewinnung ermöglichen.
Insbesondere wird vorgeschlagen, die Filtrierung in einem Zentrifugal-Reinigungsfilter mit geschlossenem Druckkessel und einer Maschenweite der Filterelemente zwischen 20 und 200 jj, durchzuführen.
Insbesondere wird für die vorliegenden Flüssigkeiten mit einer Maschen weite von 70-90 ji gearbeitet. Bei dieser Maschenweite ergibt sich ein Optimum zwischen erreichs
10
IS
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
3
632277
barem Durchsatz und vollständiger Ausfiltrierung, wobei jeweils nur ein Filtergang durchgeführt werden muss.
Um die Filterfläche ausreichend für die nachfolgende Filtrierung vorzubereiten, ist in manchen Fällen günstig, zunächst eine Primäranschwemmung mit einer Neutralflüssigkeit vorzunehmen, bei der das Filterelement mit einer Schichtdicke von etwa 0,5 cm des Filterhilfsmittels belegt wird. Als Filterhilfsmittel eignen sich üblicherweise im Handel angebotene Kieselgur-Sorten mit den Markenbezeichnungen «Hyflo-Super-Cel», «Celite 545» oder «Per-lite». Daneben eignen sich auch Zellulose-Filterhilfsmittel bekannter Art, jedoch mit weniger guten Filterleistungen. Mit ihnen lässt sich ebenfalls ein für viele Fälle ausreichendes Produkt gewinnen. Es empfiehlt sich, das Filterhilfsmittel vorzuquellen.
Günstige Filtereffekte ergeben sich mit einem horizontal angeordneten, mit 80 |i Maschenweite versehenen Metalltressengewebe-Filterelement.
Als günstige Rezeptur erweist sich eine Suspension mit einem Gehalt von 4-6 Gew.% Plasmaeiweiss, und ein Versetzen dieser Suspension mit 20-70 g Kieselgur-Filterhilfs-mittel pro Liter. Diese Suspension kann anschliessend filtriert werden. Niedrigere Eiweiss-Konzentrationen bedingen u.U. auch niedrigere Filterhilfsmittelmengen.
Um auch das sich im Trubvolumen (Slurry) befindliche Albumin noch zu gewinnen, wird vorgeschlagen, dass durch eine Restvolumenfiltereinrichtung mit einem kleinen Teil der Gesamtfilterfläche auch dieses ausgebracht wird, nachdem eine Abreinigung durch Rotation und Gegenspülung oder eine im Kreislaufverfahren erfolgte Klärung des Filterapparatevolumens stattgefunden hat. Um die Ausbeute zu ver-grössern, kann ohne Einbusse der Filterfähigkeit mit einem Druck von 4,0 ± 2,5 bar gearbeitet werden.
Die Erfindung wird an den nachfolgenden Beispielen erläutert. Die beiden Beispiele gehen aus von zwei verschiedenen Suspensionen. Bei Beispiel 1 wird ausgegangen von einer Suspension, die mit Hilfe des Verfahrens gemäss DE-OS 2415 079 gewonnen worden ist. Die prozentualen Konzentrationsangaben sind gewichtsmässig.
Beispiel 1
Aus Humanblut werden die festen Bestandteile, d.h. Blutzellen und Blutplättchen, abgetrennt und die Gerinnungsfak-toren entzogen. Die Ausgangslösung enthält etwa 5-6% Plasmaeiweiss. Gemäss dem in der DE-OS 2415 079 dargestellten Verfahren werden der Gerinnungsfaktor VIII und das Fibrinogen durch Kryo-Äthanol-Sedimentation entfernt. Der Pro-thrombin-Komplex wird durch Absorption entfernt. Das ursprüngliche Plasma ist HBAg-negativ, hat normale Transaminase-Werte und enthält kein sichtbares Hämoglobin. Dem Ursprungsplasma wird Natriumcaprylat zugefügt, bis eine Konzentration von 0,004 Mol erhalten wird. Die Mischung, welche etwa 9% Äthanol enthält, wird bei einem pH-Wert von 6,5 erhitzt. Der pH-Wert wird durch 0,5 n HCl erreicht. Die Temperatur wird innert etwa 3 Stunden bei gleichmässiger Wärmezufuhr bis auf 68°C gebracht. Anschliessend wird die Flüssigkeit abgekühlt auf 10°C. In einem mittels Aussenmantel kühlbaren Zentrifugal-Reini-gungsfilter wird die Suspension bei 10 °C weiterverarbeitet. Die zur Weiterverarbeitung gelangende Lösung enthält 2-2,5% Albumin.
In der Zeichnung ist in einer Prinzipskizze dargestellt, wie die Ausgangslösung verarbeitet wird. Zentrale Vorrichtung der gesamten Einrichtung ist ein Filterkessel 20 mit Doppelmantel, der sowohl erhitzt als auch gekühlt werden kann. Der Kessel hat eine Kapazität von etwa 220 Liter und eine Filteroberfläche von ungefähr 3 Quadratmetern. Die runden Filterelemente (Filterscheiben) 22 sind mit einer zentralen, rotationsfähigen Hohlwelle 21 so verbunden, dass das Filtrat, nachdem es durch die Filteroberfläche und das Filtermedium hindurchgetreten ist, welches jedes Filterelement bedeckt, in die Mittelsäule fliesst und anschliessend dort abgesaugt und über eine Leitung 23 und ein Klarlaufventil 8 zum Klartank ausgebracht wird. Die Filterelemente sind mit einem Metalltressengewebe bespannt. Die Filterelemente stellen im Prinzip eine hohle Lade dar, die mit der Hohlwelle 21 in Verbindung steht. Das Filterhilfsmittel und die gefällten Globuline werden zwischen den Filtrationszyklen durch zentrifugales Abschleudern von den Filterelementen entfernt und mit 1% NaCl-Lösung nachgewaschen, so dass der Filter dann wieder vorbereitet ist für den nächsten Zyklus.
Die ungefilterte Ausgangslösung wird in einem Trübtank 24 unter ständigem Rühren mittels Rührwerk 3 in Suspension gehalten. Mittels einer Pumpe 2 wird die Ausgangssubstanz über das Trübzulauf-Ventil 10 über zwei Einlaufventile 11,12 in den Filterkessel 20 eingebracht. Der Kessel kann über ein Druckluft-Ventil 5 mit Druckluft beaufschlagt werden.
Zunächst werden die Filterelemente mit in aqua dest. aufgeschwemmten Filterhilfsmittel in einer Aufschwemmung von 1 kp «Celite» 545 (Warenzeichen für ein Kieselgur-Filterhilfsmittel) in 500 Liter Wasser mit einer Primäranschwemmung von etwa 0,2 cm Dicke bei Atmosphären-Druck belegt. Anschliessend werden 500 Liter albuminhal-tige Suspension mit 25 kp «Celite» 545 versetzt und verrührt. Die Mischung wird vom Trübtank in den Filterkessel gegeben und bei einem Überdruck von 2 bar durch die Filterflächen der Elemente 22 gedrückt. Vor dem eigentlichen Abfüllen der gefilterten Flüssigkeit zum Klartank wird im sogenannten Kreislaufverfahren über Kreislaufventil 6 und Pumpe 2 immer wieder die Substanz durch die Filterlemente hindurchgeschickt, bis am Schauglas 25 das Filtrat hinreichend klar erscheint. Anschliessend wird das Filtrat über das Ventil 8 zum Klartank abgefüllt.
Sobald die gereinigte, albuminhaltige Lösung das Filter verlässt, wird eine l%ige wässrige Kochsalz-Lösung gleichzeitig durch den Filter gepumpt. Die Menge dieser Lösung ist etwa gleich dem Volumen der halben Einsatzmenge.
Die Durchflussmenge beträgt etwa 150 Liter pro Stunde. Die Proteinkonzentration des Filtrats am Anfang des Prozesses beträgt etwa 2,5%, während die Endkonzentration ungefähr 0,05% beträgt. Die sich ergebende Lösung ist klar mit einer Proteinkonzentration von ungefähr 1,5% Albumin und einer Osmolalität von etwa 1000 mosm.
Das klare Filtrat wird anschliessend diagefiltert unter Verwendung eines «Millipore Pellicon» Kassetten-Systems (Filteroberfläche etwa 0,9 m2, Hersteller: Millipore GmbH Neu-Isenburg, Deutschland) bis eine 25%-Protein-Lösung mit einer Osmolalität zwischen 100-200 mosm erreicht ist. Die Durchflussrate bei Beginn des Verfahrens beträgt 5-6 Liter Filtrat pro Minute. Diafiltration ist eine Filtration durch eine Dialyse-Membran.
Die Filterreinigung erfolgt durch Rotation der Filterelemente mit Hilfe des Antriebsmotors 1 und Austragen des Slury über das Austragsventil 9. Über das Ventil 4 kann die ausgetragene Substanz nochmals aufgeschwemmt und filtriert werden.
Die Flüssigkeit weist schon nach Durchgang durch den ersten Filter keinen Tyndall-Effekt mehr auf und ist wasserklar. Die Flüssigkeit ist praktisch frei von Begleitsubstanzen, wie Lipiden oder Fremdeiweissen. Sie kann auch unmittelbar der Albuminanreicherung und dem beschriebenen nachfolgenden Filtrationsprozess zugeführt werden. Die Album-inanreicherung ist an sich bekannt und in der DE-OS 2 415 079 beschrieben.
Im Prinzip werden folgende Schritte insgesamt durchgeführt:
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
55
60
65
632277
Plasma, 600 kg enthält: 33,6 kg Protein, davon 18,48 kg Albumin (= 55%)
1. +9% Äthanol
+ 0,004 M Natrium-Caprylat + HCl (auf pH-Wert 6,5)
2. Hitzefällung: 30 Minuten, 68 Grad Celsius
3. + HCl pH-Wert 4,4
4. Schwemmfiltrierung
Filtrat
5. Diafiltration (Konzentration und Dialyse)
6. + NaOH pH-Wert 7,0
7. Klarfiltration
Albumin-Lösung mit 17,2 kg Albumin (Wirkungsgrad 93%).
Beispiel 2
Aus einem Placenta-Extrakt wird zunächst mit Lösungsmitteln, wie z.B. Trichlor-Essigsäure, Chloroform, Diäthylä-ther, das vorhandene Hämoglobin entfernt. Anschliessend wird der eiweisshaltige Überstand bei pH-Wert 6,5 auf 68°C erhitzt. Nach Abkühlung und Einstellen des pH-Wertes von 4,4 durch Zufügen von 0,5 n-HCl werden 100 Liter der erhaltenen Flüssigkeit mit 3 kg Filterhilfsmittel versetzt und verrührt (Filterhilfsmittel: «Hyflo-Super-Cel»; Warenzeichen für ein Kieselgur-Filterhilfsmittel).
Bei einer Temperatur von 18°C und einem Druck von 4 bar wird die Flüssigkeit durch ein bereits beschriebenes Anschwemm-Filter mit 70 n Maschenweite gedrückt. Es wird demnach ohne Primäranschwemmung gearbeitet. Die Flüssigkeit wird im Kreislauf solange geführt, bis sie am Schauglas wasserklar und frei vom Tyndall-Effekt erscheint. Anschliessend wird durch bekannte Verfahren das in der Flüssigkeit befindliche Albumin in die gewünschte Konzentration gebracht.
Nach Durchsatz der Gesamtflüssigkeit wird das sich im Anschwemm-Filter befindliche Trubvolumen mit aqua dest. oder 0,9%iger NaCl-Lösung nachgewaschen. Auch die hierbei gewonnene Flüssigkeit ist wasserklar und enthält noch etwa 0,5-20% Albumin. Sie kann ebenfalls unmittelbar der Albumin-Konzentration zugeführt werden, wie sie z.B. in der DE-OS 2415 079 erläutert ist.
Es sei daraufhingewiesen, dass die Schwemmfiltrierung sowohl mit als auch ohne Primäranschwemmung durchgeführt werden kann. Die Abreinigung der Filterelemente erfolgt durch Rotation und Gegenspülung, wobei die Filterelemente in Drehung gebracht und die Rückstände als Slurry ausgetragen werden.
Bei Anwendung genügender Waschflüssigkeit (aqua dest. oder NaCl-Lösung) kann eine Ausbeuteerhöhung bis auf etwa 96% der eingesetzten Albuminmenge erreicht werden. Die bei anderen Separationsverfahren, wie z.B. der Zentrifu-giertechnik, insbesondere bei der Elution der erstmals abgeschiedenen Eiweissstoffe erhaltenen Trubstoffmengen - verursacht durch Änderung des Dichteverhältnisses Lösungsmittel: Feststoff und feinste mechanische Verteilung - werden durch eine Restvolumenfilterung vermieden, nachdem entweder eine Abreinigung durch Rotation und Gegenspülung oder eine im Kreislaufverfahren erfolgte Klärung des Filterapparatevolumens stattgefunden hat. Eine Filtration vor der Weiterverarbeitung der verdünnten Albuminlösung kann wegen der grossen Reinheit unterbleiben.
Die Abtrennung der Feststoffe ist tempeaturunabhängig. Die Filtrationsgeschwindigkeit ändert sich mit zu- oder abnehmender Temperatur nur geringfügig und kann vernachlässigt werden. Üblicherweise wird das auf pH-Wert 4,4 angesäuerte, hitzebehandelte Plasma bei Zimmertemperatur in einem mittels Aussenmantel kühlbaren Zentrifugal-Reini-gungsfilter zur Abtrennung gebracht. Das Filtrierverfahren kann auch bei anderen Temperaturen stattfinden. Die Erfahrungen haben ergeben, dass ein Temperaturbereich von 4 bis 40°C als Arbeitsbereich möglich ist. Der Filtrationsdruck lässt sich nach der fast drucklos erfolgenden Primäranschwemmung auf 4,0 ± 2,5 bar erhöhen. Die daraus resultierende Filtrationsleistung beträgt ca. 150 Liter Filtrat/m2/h. Als Filterhilfsmittel erweist sich besonders Kieselgur, wie eingangs genannt, geeignet.
Die in den Beispielen genannten Mengen sind variabel je nach Filterfassungsmenge. Es wurden sowohl Versuche in kleinen Volumina von ca. 101 als auch in grossen Behältern von ca. 5001 erfolgreich durchgeführt.
4
5
10
15
20
25
30
35
40
B
1 Blatt Zeichnungen
Claims (8)
1. Verfahren zur Abtrennung ausgefällter Eiweissstoffe aus einer albuminhaltigen, bei der Gewinnung von Albumin für nicht therapeutische Verwendungszwecke aus Blutplasma gewonnenen Suspension, gekennzeichnet durch Schwemmfiltrierung der Suspension an einem Gewebefilterelement, auf dem die nicht-albuminhaltigen Bestandteile gesammelt werden und eine klare Albumin-Lösung als Filtrat gewonnen wird.
2. Verfahren gemäss Patentanspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass die Filtrierung in einem Zentrifugal-Reini-gungsfilter mit geschlossenem Druckkessel und einer Maschen weite der Filterelemente von 20-200 ji, vorzugsweise 70-90 ji, erfolgt.
2
PATENTANSPRÜCHE
3. Verfahren gemäss Patentanspruch 2, dadurch gekennzeichnet, dass die Filtrierung über horizontal angeordnete Filterelemente erfolgt, die Metalltressengewebe mit 80 ^ Maschenweite aufweisen.
4-6 Gew.% Plasmaeiweiss mit 30-70 g Kieselgur-Filterhilfsmittel pro Liter versetzt wird.
4. Verfahren gemäss Patentanspruch, dadurch gekennzeichnet, dass eine Suspension mit einem Gehalt von
5. Verfahren gemäss Patentanspruch, dadurch gekennzeichnet, dass ein Zellulose-Filterhilfsmittel in vorgequollenem Zustand verwendet wird.
6. Verfahren gemäss den Patentansprüchen 1,2 und 5, dadurch gekennzeichnet, dass das in der Anschwemmungsmasse befindliche Trubvolumen durch eine Restvolumenfiltereinrichtung ausgebracht wird, nachdem entweder eine Abreinigung durch Rotation und Gegenspülung oder eine im Kreislaufverfahren erfolgte Klärung des Filterapparatevolumens stattgefunden hat.
7. Verfahren gemäss den Patentansprüchen 2 und 5, dadurch gekennzeichnet, dass bei einem Filtrationsüberdruck von 4,0 ± 2,5 bar gearbeitet wird.
8. Verfahren gemäss Patentanspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass die klare albuminhaltige Lösung durch eine Dialyse-Membran diagefiltert wird.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE2556733A DE2556733C3 (de) | 1975-12-17 | 1975-12-17 | Verfahren zum Isolieren von Albumin aus Blutplasma |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CH632277A5 true CH632277A5 (en) | 1982-09-30 |
Family
ID=5964580
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CH1593176A CH632277A5 (en) | 1975-12-17 | 1976-12-17 | Process for the separation of precipitated proteins from an albumin-containing suspension |
Country Status (22)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS6033089B2 (de) |
| AT (1) | AT346491B (de) |
| AU (1) | AU508955B2 (de) |
| BE (1) | BE849464R (de) |
| CA (1) | CA1079269A (de) |
| CH (1) | CH632277A5 (de) |
| DD (1) | DD128726A6 (de) |
| DE (1) | DE2556733C3 (de) |
| DK (1) | DK149135C (de) |
| EG (1) | EG12610A (de) |
| ES (1) | ES454379A2 (de) |
| FI (1) | FI56844C (de) |
| FR (1) | FR2335521A2 (de) |
| GB (1) | GB1569168A (de) |
| HU (1) | HU181926B (de) |
| IE (1) | IE44048B1 (de) |
| IL (1) | IL51110A (de) |
| MX (1) | MX3915E (de) |
| NL (1) | NL7613906A (de) |
| PL (1) | PL106430B3 (de) |
| SE (1) | SE445517B (de) |
| ZA (1) | ZA767503B (de) |
Families Citing this family (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4483807A (en) * | 1981-01-27 | 1984-11-20 | Japan Atomic Energy Research Institute | Process for producing a slow release composite |
| DE3307871C2 (de) * | 1983-03-05 | 1986-10-30 | R & Z Biologicals S.A. (Pty.) Ltd., Cape Town | Verfahren zur Gewinnung von hochreinem Albumin |
Family Cites Families (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US2705230A (en) * | 1949-09-23 | 1955-03-29 | Allen F Reid | Method of purifying albumin |
| US2765299A (en) * | 1952-06-27 | 1956-10-02 | Armour & Co | Recovery of serum albumin |
| FR2247471A1 (en) * | 1973-10-15 | 1975-05-09 | Ts Institu | Pure serum albumin isolated from biological liquids - by treatment with alcohol and aliphatic carboxylic acid salt |
| DE2415079C3 (de) * | 1974-03-28 | 1980-02-14 | Plasmesco Ag, Zug (Schweiz) | Verfahren zum Isolieren von Albumin aus Blutplasma |
-
1975
- 1975-12-17 DE DE2556733A patent/DE2556733C3/de not_active Expired
-
1976
- 1976-12-10 IE IE2712/76A patent/IE44048B1/en unknown
- 1976-12-13 SE SE7613968A patent/SE445517B/xx unknown
- 1976-12-14 DK DK559876A patent/DK149135C/da not_active IP Right Cessation
- 1976-12-15 EG EG769/76A patent/EG12610A/xx active
- 1976-12-15 IL IL51110A patent/IL51110A/xx unknown
- 1976-12-15 FI FI763610A patent/FI56844C/fi not_active IP Right Cessation
- 1976-12-15 DD DD7600196377A patent/DD128726A6/de unknown
- 1976-12-15 GB GB52438/76A patent/GB1569168A/en not_active Expired
- 1976-12-15 NL NL7613906A patent/NL7613906A/xx not_active Application Discontinuation
- 1976-12-16 BE BE173309A patent/BE849464R/xx not_active IP Right Cessation
- 1976-12-16 CA CA268,010A patent/CA1079269A/en not_active Expired
- 1976-12-16 AT AT932976A patent/AT346491B/de not_active IP Right Cessation
- 1976-12-16 AU AU20599/76A patent/AU508955B2/en not_active Expired
- 1976-12-16 HU HU76PA1271A patent/HU181926B/hu unknown
- 1976-12-16 PL PL1976194451A patent/PL106430B3/pl unknown
- 1976-12-16 FR FR7637897A patent/FR2335521A2/fr active Granted
- 1976-12-17 MX MX76100452U patent/MX3915E/es unknown
- 1976-12-17 JP JP51150986A patent/JPS6033089B2/ja not_active Expired
- 1976-12-17 ZA ZA767503A patent/ZA767503B/xx unknown
- 1976-12-17 CH CH1593176A patent/CH632277A5/de not_active IP Right Cessation
- 1976-12-17 ES ES454379A patent/ES454379A2/es not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| AU2059976A (en) | 1978-06-22 |
| DK559876A (da) | 1977-06-18 |
| SE445517B (sv) | 1986-06-30 |
| NL7613906A (nl) | 1977-06-21 |
| DD128726A6 (de) | 1977-12-07 |
| FR2335521A2 (fr) | 1977-07-15 |
| HU181926B (en) | 1983-11-28 |
| JPS6033089B2 (ja) | 1985-08-01 |
| SE7613968L (sv) | 1977-06-18 |
| IL51110A0 (en) | 1977-02-28 |
| IL51110A (en) | 1979-11-30 |
| ATA932976A (de) | 1978-03-15 |
| DK149135B (da) | 1986-02-10 |
| BE849464R (fr) | 1977-04-15 |
| JPS5283926A (en) | 1977-07-13 |
| DE2556733A1 (de) | 1977-11-17 |
| IE44048B1 (en) | 1981-07-29 |
| CA1079269A (en) | 1980-06-10 |
| EG12610A (en) | 1979-06-30 |
| PL106430B3 (pl) | 1979-12-31 |
| ES454379A2 (es) | 1978-07-16 |
| DK149135C (da) | 1986-07-14 |
| DE2556733B2 (de) | 1981-05-14 |
| FR2335521B2 (de) | 1982-10-29 |
| GB1569168A (en) | 1980-06-11 |
| ZA767503B (en) | 1977-11-30 |
| IE44048L (en) | 1977-06-17 |
| AU508955B2 (en) | 1980-04-17 |
| FI56844B (fi) | 1979-12-31 |
| FI763610A7 (de) | 1977-06-18 |
| DE2556733C3 (de) | 1986-10-02 |
| AT346491B (de) | 1978-11-10 |
| FI56844C (fi) | 1980-04-10 |
| MX3915E (es) | 1981-09-18 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DE69727162T2 (de) | Herstellung von inulinhaltigen Produkten | |
| DE3586832T2 (de) | Vorrichtung zum abtrennen von blutplasma-eiweiss. | |
| EP0120445B1 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur selektiven extrakorporalen Abtrennung pathologischer und/oder toxischer Blutbestandteile | |
| DE69530682T2 (de) | Methode zur Isolierung und Reinigung eines Biomakromoleküls | |
| DE3423594C2 (de) | ||
| DE10197269T5 (de) | Ein System zum Extrahieren von Tetrodotoxin | |
| DE4344682A1 (de) | Verfahren zur Herstellung von steriler Milch mitttels dynamischer Mikrofiltration | |
| DE3112538A1 (de) | Verfahren zur auftrennung von waessrigen proteingemischen | |
| DE2630643A1 (de) | Verfahren und vorrichtung zum filtern von suspensionen oder kolloidaler loesungen | |
| DE2801123A1 (de) | Verfahren zur herstellung eines intravenoes applizierbaren serumeiweiss- praeparates | |
| DE102016114947B4 (de) | Verfahren zur Hochkonzentrierung von wässrigen Lösungen und Anlage zur Durchführung des Verfahrens | |
| DE69502157T2 (de) | Stabilisation von getränke | |
| DE69313843T2 (de) | Verfahren zur herstellung eines hochqualitativen molkeneiweissproduktes | |
| DE2300127C3 (de) | Verfahren und Vorrichtung zum Gewinnen von unverdünntem oder wenig verdünntem Fruchtwasser und von Stärke aus Hackfrüchten | |
| DE2519909A1 (de) | Verfahren zum fraktionieren fluessiger loesungen von proteingemischen | |
| EP0113447B1 (de) | Verfahren zur fraktionierten Auftrennung von Proteingemischen mittels Membranen | |
| CH632277A5 (en) | Process for the separation of precipitated proteins from an albumin-containing suspension | |
| DE860594C (de) | Verfahren und Anordnung zur Gewinnung von Pektin aus Zuckerruebenpuelpe | |
| DE69414020T2 (de) | Verfahren zur Gewinnung von Cyclodextrin | |
| DE1949059A1 (de) | Verfahren und Vorrichtung zum Filtrieren von Fluessigkeiten und Gasen | |
| DE69925463T2 (de) | Verfahren zur reinigung und wiederverwendung von abfallgelantine | |
| DE69320038T2 (de) | Verfahren zur verarbeitung von kartoffeln und raps | |
| DE69724449T2 (de) | Maischeverfahren | |
| EP3468388B1 (de) | Verfahren und anlage zur reinigung von flüssigzucker, hergestellt aus kristallzucker minderer reinheit | |
| DE893180C (de) | Verfahren zum Reinigen von Fluessigkeiten, insbesondere von waessrigen Loesungen organischer Stoffe, wie Zuckerloesungen od. dgl. |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PL | Patent ceased |