CS219575B1 - Sposob přípravy chromogénneho substrátu na testovanie Ci zložky celulázovej aktivity - Google Patents

Sposob přípravy chromogénneho substrátu na testovanie Ci zložky celulázovej aktivity Download PDF

Info

Publication number
CS219575B1
CS219575B1 CS366280A CS366280A CS219575B1 CS 219575 B1 CS219575 B1 CS 219575B1 CS 366280 A CS366280 A CS 366280A CS 366280 A CS366280 A CS 366280A CS 219575 B1 CS219575 B1 CS 219575B1
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
cellulose
dye
activity
sodium
chromogenic substrate
Prior art date
Application number
CS366280A
Other languages
Czech (cs)
English (en)
Inventor
Ludovit Kuniak
Juraj Zemek
Original Assignee
Ludovit Kuniak
Juraj Zemek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ludovit Kuniak, Juraj Zemek filed Critical Ludovit Kuniak
Priority to CS366280A priority Critical patent/CS219575B1/sk
Publication of CS219575B1 publication Critical patent/CS219575B1/sk

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Vynález rieši přípravu chromogénneho celulózového substrátu vhodného na testovanie celulázovej Ci aktivity. Podstata vynálezu spočívá v tom, že mikrokryštalická celulóza sa v alkalickom prostředí vyfarbí vhodným farbivom, po vyfarbení sa chemicky naviazané farbivo vymyje a vyfarbený substrát sa vysuší. Uvádzajú sa optimálně reakčné parametre viazania farbiva ako i účinný sposob vymývania nezreagovaného farbiva. Vynález má využitie vo -výskume pri stanovení celulázovej Ci aktivity a pri výrobě celulázových enzýmov.

Description

Vynález sa týká sposobu přípravy chromogénneho substrátu na testovanie Ci zložky celulázovej enzýmovej aktivity.
Stanovenie Ci zložky celulázovej aktivity sa doposiaT robí podlá zdlhavej gravimetrické j metody (Halliwell G.: Biochem. J. 79, 1985/1961), ktorá spočívá v tom, že reakčné médium obsahujúce Cx zložku celulázovej aktivity sa nechá za štandardných podmienok inkubovať s filtračným papierom dostatočne dlhý čas a potom sa filtračný papier vyperie od hydrolyzo,váných rozpustných produkte v, enzýmovej hydrolýzy, papier sa vysuší a zváží a z úbytku na váhe sa vypočítá enzýmová aktivita Ci celulázy přítomná v testovacom médiu alebo sa rozpuštěná celulóza stanoví vo filtráte oxidačně s dvojchromanom (Selby K., Maitland C.
C.: Biochem. J. 104, 716/1967).
Táto metoda je hlavně z časového hradiska velmi zdlhavá a pre sériové analýzy hlavně pri nízkých aktivitách sledovaného enzýmu nevhodná.
V posledných rokoch sa na polysacharidhydrolázové enzymové aktivity používá s úspechom chromogénny polysacharidový substrát, ktorý po enzýmovej hydrolýze produkuje farebný filtrát, intenzita ktorého je úměrná prítomnej enzýmovej aktivitě.
Na tomto principe sú známe zahraničně i čs. chromogenné substráty Phadebas Amylase Test, (Clinical and technical Information, Almquist, Wiksells Boktryckeri (1979),
A. O. č. 192 202, A. O. č. 192 210), ktoré sa úspěšně používajú najma v klinickej praxi pri stanovení aktivity alfa-amylázy v biologických tekutinách pre diagnostické účely.
DoposiaT známa příprava chromogenného substrátu pre celulázovú aktivitu připravovala sa zdíhavým a energeticky náročným postupem, tak že sa prášková hydrocelulóza připravená pomocou kyseliny fosforečnej vyfarbovala pri 50 °C s farbivom Remazol briliant blue za použitia 200 % síranu sodného na hmo-tnoisť hydrocelulózy pri pH 11 za použitia fosforečnanu sodného (A. O. Stamm: Helv. Chim. Acta 46, 3008 1963).
Takto připravený substrát je však vhodný hlavně pre Cx zložku celulázovej aktivity a nie prezložku Ci celulázovej aktivity.
Obdobný sposoh přípravy založený na farbení filtračného papiera Whatman 1 (Polncelot R. P., Day P. R.: Appl. Microbiol. 23, 5, 875/1972] je rovnako energeticky náročný, lebo pracuje až pri 100 °C.
Pri selekcii mikroorganizmov produkujúcich Cx zložku celulázovej aktivity je potřebné mať velmi presnú a rýchlu metodu na stanovenie Cj zložky celulázovej aktivity, aby bolo možné priedežne sledovat optimálně kultivačně podmienky resp. hodnotit spofahlivo vysokoprodukčné mutanty. V pre2 vádzke je to důležité pri riadení priemyslovej kultivácie pre maximálnu produkciu Ci celulázovej aktivity.
Preto sme vypracovali podmienky pre přípravu chromogénneho substrátu s požadovanými vlastnosťami vysokéj - citlivosti na Gj celulázovú aktivitu, čo je predmetom novej přihlášky vynálezu.
Podstata vynálezu spočívá v tom, že mikrokryštalická celulóza z drevnej celulózy s výhodou z bavlny sa nechá v prvom stupni reagovat 30 minut pri teplote 15 až 30 °C v 5 až 7-násobnom hmotnostnom množstve vodného roztoku zloženia 0,7 až 1,5 % hmot. hydroxidu sodného a 5 až 10 % hmot. octanu sodného alebo síranu sodného za stálého miešania, načo v druhom stupni sa přidá 5 až 10 °/o hmot. farbiva s výhodou dvojsodnej soli kyseliny 8-amino-5-(-3/sulfoetylsulfonyl/anilino)-6-antrachinonsulfonovej a nechá sa pri teplote-15 až 30 °G reagovat 1 až 3 hodiny, a v treťom stupni sa chromogénna mikrokryštalická celulóza dokonale vymyje od -nezreagované-ho farbiva najprv vodou, potom postupné zriedeným etanolom až koncentrovaným etanolom alebo acetónom a vysuší volné na vzduchu alebo vákuovo pri 60 až 70 °C.
Najvhodnejším substrátom pre Ci celulázovú aktivitu je celulóza s maximálnym krystalickým podielom a preto je na tento účel najvhodnejšia mikrokryštalická celulóza připravená parciálnou kyslou heterogennou hydrolýzou bavlny. Představuje nájčistejšiu celulózu s minimálnymi podielmi extraktívnycli látok, popola a podielom amorfnej celulózy maximálně 10 až 15 %.
Můžu sa však použiť i mikrokryštalické celulózy připravené zo zušfachtených dřevných-buničím najlepšie s- minímálnyrú obsahom ligninu (nie vyšším ako 0,1%). Optimálny polymeračný stupeň použitých mikrokryštalických celulóz je 150 až 250. Polymeračný stupeň pod 100 nie je vhodný pre horšiu filtrácíu pri enzýmovej analýze i vlastnej přípravě farebného substrátu.
Optimálně množstvo farbiva aplikované do reakcie je okolo 10 % na hmotnost suchej mikrokryštalickej celulózy. Pri nižších množstvách je substrát nedostatečné citlivý při enzýmovej reakcii a pri vyšších množstvách sa substrát zle filtruje a premýva a tiež klesá kryštalický podiel celulózy, takže je dobrým substrátom i pre zložky Cs celulázu.
Očinnosť reakcie viazania farbiva na mikrokryštalickú celulózu je 50 až 70 % a reakcia prebieha dostatočne rýchlo pri laboratórnej teplote, pri ktorej nedochádza ku degraůácii celulózovej substancie v alkalickém prostředí.
Ako elektrolyt zvyšujúci účinnost viazania
219 575 farbiva na celulózu je výhodné používat octan sodný, ktorý sa lepšie vymývá z produktu ako síran sodný, najma ked sa premýva koncentračným gradientom etanolu resp. acetonu.
Výhodou postupu podl'a vynálezu je, že: umožňuje prvýkrát připravit chromogénny substrát vhodný pre sériové meranie enzýmovej aktivity zložky Ci celulázy spek. trofotometrickou metodou, spósob přípravy chromogenného substrátu je technologicky a energeticky nenáročný, chromogénny substrát je stabilný a móže sa skladovat neobmedzený čas v suchom stave, na jedno stanovenie aktivity zložky Ci celulázy postačuje 50 až 100 mg chromogénneho substrátu, mikrokryštalickým chromogénnym substrátom možno stanovit i nízké zložky Ci celulázovej aktivity v pťiebehu do 2 hodin.
Příklad 1
100 g miikriQkryštalickej celulózy z bavlny sa nechá reagovat 30 minut při izbovej teplete v 500 ml vody, v ktorej sa predom rozpustilo 5 g hydroxidu sodného a 50 g octanu sodného. Potom sa po častiach do reakčnej zmesi přidává 10 g farbiva dvojsodnej soli kyseliny 8-amino-5-(-3/sulfoetylsulfonyl/anilin]-6-antrachinonsulfonovej tak, aby sa pridávanie ukončilo do 30 minut. Reakčná zmes sa mieša pri laboratórnej teplete po dobu 2 hodin, potom sa přidá 7 ml konc. kyseliny octovej a reakčná zmes sa odfiltruje a na filtri premýva najprv destilovanou vodou, potom postupné zmesou vody a etanolu so stúpajúcim koncentračným gradientom etanolu alebo acetonu tak dlho, až je filtrát bezfarebný. Premytý chromogénny substrát sa vysuší vol'ne na vzduchu alebo za vákua při teplete 60 až 70 °C. Výsledný produkt obsahuje 5 až 7 % viazaného farbiva a je dobrým substráton pre zložku celulázovej aktivity.
Příklad 2
Postup podlá příkladu 1 s tým rozdielom že sa do reakcie aplikuje 5 g farbiva.
Výsledný produkt obsahuje 3 až 3,5 % via zaného farbiva, t. j. takmer o polovici menej citlivý na rovnakú aktivitu Ci zložkj celulázy.
Příklad 3
Postup podlá příkladu 1 s tým rozdielom že ako pomocný elektrolyt sa použije 50 £ síranu sodného.
Výsledný produkt má podobný obsah via zaného farbiva ako v příklade 1.
Příklad 4
Postup podlá příkladu 1 s tým rozdielom že ako póvodná celulóza sa použije mikrokryštalická celulóza z bukovej sulfátové] celulózy zušlachtenej celulózy používané] pre viskózové vlákna.
Výsledný produkt obsahuje 5,5 % viazaného farbiva.
Příklad 5
Postup podlá příkladu 1 s tým rozdielom, že ako celulóza sa použije mikrokryštalická celulóza zo smrekovej zušlachtenej sulfitovej celulózy s pólymeračným stupňom 220, ktorá velmi dobré filtruje pri spracovaní.
Obah farbiva v hotovom substráte je 6 °/o.
Vynález má použitie pri sériových analýzách přesného a rýchleho stanovenia zložky celulázovej aktivity pri šlechtění mikroorganizmov produkujúcich Ci zložky celulázy a v priemyslovej kultivácii mikroorganizmov produkujúcich uvádzané enzýmy.

Claims (1)

  1. Spósob přípravy chromogénneho substrátu na testoivanie C2 zložky celulázovej aktivity význačný tým, že mikrokryštalická celulóza z drevnej celulózy s výhodou z bavlny sa v prvom stupni nechá reagovat 30 minut pri tep lote 15 až 30 °C v 5 až 7násobnom hmotnostnom množstve vodného roztoku zloženia 0,7 až 1,5 % hmot. hydroxidu sodného’ a 5 až 10 % hmot. octanu sodného alebo síranu sodného za stálého miešaníia, načo sa v druhom stupni přidá 5 až 10 % hmot. farbiva s výhodou dvojsodnej soli kyseliny 8-amino-5-(-3/sulfoetylsulíonyl/anilino) -6-ántrachinonsulfonovej na hmotnost mikrokryštaliekej celulózy a nechá sa pri teplota 15 až 30 °C reagovat po dobu 1 až 3 hodiny a v treťom stupni sa chromogénna mikrokryštalická celulóza dokonale vymyje od nezreagovaného farbiva najprv vodou, potom postupné zriedeným etanolom až koncentrovaným etanolom alebo acetónom a nakoniec sa premytý produkt volné vysuší na vzduchu alebo vakuové pri teplote 60 až 70 °C.
CS366280A 1980-05-26 1980-05-26 Sposob přípravy chromogénneho substrátu na testovanie Ci zložky celulázovej aktivity CS219575B1 (sk)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS366280A CS219575B1 (sk) 1980-05-26 1980-05-26 Sposob přípravy chromogénneho substrátu na testovanie Ci zložky celulázovej aktivity

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CS366280A CS219575B1 (sk) 1980-05-26 1980-05-26 Sposob přípravy chromogénneho substrátu na testovanie Ci zložky celulázovej aktivity

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS219575B1 true CS219575B1 (sk) 1983-03-25

Family

ID=5377312

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS366280A CS219575B1 (sk) 1980-05-26 1980-05-26 Sposob přípravy chromogénneho substrátu na testovanie Ci zložky celulázovej aktivity

Country Status (1)

Country Link
CS (1) CS219575B1 (sk)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Herr Secretion of cellulase and β‐glucosidase by Trichoderma viride ITCC‐1433 in submerged culture on different substrates
Schramm et al. Synthesis of cellulose by Acetobacter xylinum. 1. Micromethod for the determination of celluloses
DE3720736A1 (de) Verfahren, reagenzien und ausruestung zur einfachen bestimmung von nicht-enzymatisch glykosylierten proteinen in koerperfluessigkeiten
Leisola et al. Determination of the solubilizing activity of a cellulase complex with dyed substrates
US3867258A (en) Lactate dehydrogenase test material
CN109293439A (zh) 一种利用玉米秸秆制备的液体肥料及其制备方法
EP0248312B1 (de) 4,6-Dinitrobenzthiazolon-hydrazone (2)
DE2219063B2 (de) Verfahren zur Herstellung einer enzymatisch aktiven Membran, nach diesem Verfahren hergestellte Membran und deren Verwendung für enzym-katalysierte Substratumwandlungen
Biely et al. Xylan-degrading activity in yeasts: growth on xylose, xylan and hemicelluloses
Wessels Control of cell-wall glucan degradation during development in Schizophyllum commune
EP0084655B1 (de) Verfahren und Reagenz zur Bestimmung von Creatinin
US4321364A (en) Preparation of soluble chromogenic substrates
DE3408062A1 (de) Verfahren zur bestimmung von ss-hydroxibuttersaeure und eine zusammensetzung zur bestimmung von ss-hydroxibuttersaeure
Pyke The chemical measurement of vitamin B1 in foodstuffs and biological material by means of the thiochrome reaction
US4563421A (en) Method for determining the presence of endohydrolase in a liquid and composition therefor
DE2619451A1 (de) Verfahren zur bindung von hoch- und niedermolekularen liganden an polymere traeger
DE2819298A1 (de) Alpha -amylasesubstrat und verfahren zu seiner herstellung
DE2062246A1 (de) Enzympraparate und Verfahren zu lh rer Herstellung
DE2637671A1 (de) Creatinin-desimidase, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung zur quantitativen bestimmung von creatinin
Buurman Hemicellulose in the Viscose Rayon Process: A Chromatographic Investigation
CS237101B1 (sk) Sposob přípravy vodorozpustných chromolytických polysacharidových enzýmových substrátov
SU696377A1 (ru) Способ определени целлюлолитической активности ферментов
CS203676B1 (sk) Spósob přípravy chromogónneho škrobového substrátu na stanovenie aktivity glukoamylázy
Yamafuji et al. Studies On Foodstuffs In Emergencies. XXII. On The Starch Of Lycoris Radiata
Verma et al. Decomposition of cellulose by the fungus Curvularia Lunata Wakkar III: properties of cellulolytic enzyme