CS236096B1 - Způsob přípravy roztoku sérového albuminu s nízkým obsahem nízkomolekulárních sloučenin - Google Patents
Způsob přípravy roztoku sérového albuminu s nízkým obsahem nízkomolekulárních sloučenin Download PDFInfo
- Publication number
- CS236096B1 CS236096B1 CS388583A CS388583A CS236096B1 CS 236096 B1 CS236096 B1 CS 236096B1 CS 388583 A CS388583 A CS 388583A CS 388583 A CS388583 A CS 388583A CS 236096 B1 CS236096 B1 CS 236096B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- low
- albumin
- solution
- molecular weight
- preparing
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Vynález řeší způsob přípravy roztoku sérového albuminu s nízkým obsahem nízkotóolekulárních sloučenin. Uvedené sloučeniny, doprovázející izolovanou albuminovou frakci, se vyznačují vlastnostmi, které v některých případech kontraindikují možnost aplikace a nemají terapeutické účinlyt Podstatou vynálezu je odstranění shora uvedených sloučenin, přítomných v neomezené koncentraci, diafiltrací na definovaných membránách tubulárního nebo plošného typu, určených pro zahušťování roztoků biomakromolekul. Izolovaná albuminová frakce ve vodném roztoku je diafiltrována při výchozí koncentraci 2 až 20%hmot. bílkovin proti vodě pro injekci, přidávané plynule za konstantního objemu nebo v určených objemech. Způsob se vyznačuje nízkou spotřebou vody a tím i nízkou energetickou spotřebou a vysokou účinností a rychlostí, která snižuje riziko kontaminace.
Description
Vynález řeší způsob přípravy roztoku sérového albuminu s nízkým obsahem nízkomolekulárních sloučenin..
V současné době používané způsoby izolace sérového albuminu pro terapeutické nebo jiné účely, jako je výroba kosmetických a dietetických přípravků, získávají preparát, který je doprovázen nízkomolekulárními sloučeninami. V případě, že má být preparát použit pro terapeutické účely, je jeho účinnost přítomností uvedených látek snižována, v některých případech je aplikace dokonce kontraindikována. Z tohoto důvodu někteří výrobci zařazují za izolační postup purifikační kroky, kterými obsah nízkomolekulárních podílů před konečným koncentrováním albuminové frakce a farmaceutickým zpracováním snižují.
Potřeba odstranění nízkomolekulárních podílů vzniká u všech dosud známých způsobů izolace albuminové frakce, ať už se jedná o ní zkomol ekulámí sloučeniny, pocházející z výchozího materiálu plasmatických bílkovin - plasmy dárců, séra, sušené plasmy nebo t.zv. náhradních surovin, t.j. retroplacentárního séra, nesterilních zbytků plasmy, erytrocytárních mas a K-plasmy, nebo o nízkomolekulární sloučeniny, použité při některém z dále uvedených způsobů izolace:
Izolační techniky lze rozdělit do několika skupin:
238 09β
- 2 postupy založené na selektivní precipitaci, ionexové chromatografii, gelové chromátografii, afinitní chromátografii a na selektivní tepelné denaturaci, nebo na kombinaci těchto postupů. Nejčastěji používané metodiky izolace albuminu srážením etanolem za nízkých teplot vychází z původní práce Cohn E.J., Strong L.E., Hughes W.L., Mulford D.J., Ashworth J.N·, Melin M· and Taylor H.L.: J.Amer.Chem.Soc. 68,459-475»
1946» z které vychází i isolační metoda použitá pro dále uvedené příklady provedení podle Α·0· 194957 - Pokorný M., Foukal Z., Pardon J.: Způsob isolace lidského sérového albuminu. Potřeba odstranění nízkomolekulárních sloučenin je aktuální i u dalších metod, kdy je jako srážecího činidla použito síranu amonhého (Schultze H., Schonenberger M., Matheka H.D.: Behringweřkw Mitt. 26,21,1952), rivanolu (Hořejší J«, Smetana R.: Acta Med.Scand. 155,65-68, 1956), kyseliny kaprylové (Chanutin A., Curnish R.R.: Arch.Biochem.Biophys. 89, 218-220, 1960), polyethylenglykolu (Polson A., Potgieter G.M., Largier J.F.,
Mears G.E.F., Joubert F.J.: Biochim. Biophys. Acta 82, 463475, 1964). Srážení polyethylenglykolem kombinuje s ionexovou chromatografií Curling (Curling J.M., Berglof J., Lindqůist L.O., Erikssdn S.: Vox Sang 33, 97-107, 1977), použití afinitní chromatografie pro přípravu čistého albuminu popisuje Harvey (Curling J.M. (ed.): Methods of plasma protein fractionation,
Academie Press, 1980)^/>*«*'*Λ pfifv&utfenew pí*6>*<**<?
-frakci popiitAje. z>£O ' Společným znakem uvedených postupů je sice selektivní oddělení albuminu od ostatních bílkovin krevní plasmy, ale zároveň zvýšení nízkomolekulární složky o další anorganické nebo
-3.236 098 organické sloučeniny, zejména chlorid sodný, octan sodný a nízkomolekulární peptidy, vzniklé štěpením bílkovin během frakcionace, nebo obsažené ve výchozí surovině a doprovázející albumin až do finálního stadia farmaceutického zpracování. Tyto sloučeniny tvoří až 4% nečistot konečného preparátu a jsou ·. řítomny ve volné formě nebo vázané na molekulu albuminu. Jejich přítomnost snižuje osmotickou i transportní kapacitu preparátu. K odstranění nízkomolekulárních podílů z roztoků albuminu se používá metod založených na principu gelové chromátografie na zesilovaných dextranových gelech (Friedli H., Fournier E., Volk T., Kistler P,: Vox Sang. 33,93-96,1977)· Štěpánek I. a Uhrík J. používají pro odstranění nízkomolekutárních podílů protiproude dialýzy.. Preparaát bývá označován salt poor albumin nebo albumin s nízkým obsahem nízkomolekulárních látek.
Uvedené nedostatky odstraňuje navrhovaný způsob odstranění etanolu a solí, využívající membránové systémy s definovanou hranicí dělení molekul ve formě plochých membrán nebo dutých vláken, používané ke koncentrování biopolymerů. Podstata odstraňování nízkomolekulárních podílů, pocházejících z výchozích materiálů, a frakcionačních technik, použitých k isolaci albuminu, spočívá podle předloženého vynálezu v tom, že roztok purifikovaného albuminu v redestilované vodě se po filtraci ředí vodou pro injekci ve skocích nebo plynule za konstantního objemu a diafiltruje na ultrafiltrační jednotce, osazené membránou ve formě ploché membrány (Fiat membranes) nebo soustavou du tých vláken (Hollow fibres) a definovanou hranicí dělení mole236 096
- 4 kul menších než 10^D. Proces probíhá za aseptických podmínek při teplotách v rozmezích 0 - 45°C, čímž lze ovlivňovat jeho rychlost vzhledem ke změnám Theologických vlastností roztoku albuminu, v rozmezí koncentrací 2 - 20% hmot., s výhodou v rozmezí 8-2% hmot. Při použití výchozího roztoku, který obsahuje 5 - 10% hmot. albuminu a 5 - 10% obj.etanolu, poklesne koncentrace etanolu pod hranici 0,5% obj.etanolu a obsah sodíku pod 174 mmol/1 při spotřebě vody pro injekci odpovídající pětinásobku výchozího objemu.
Z uvedeného vyplývá Časová i nákladová efektivnost proti shora uvedeným způsobům, které vyžadují nákladné materiály pro gelovou chromatografií, resp. 200 násobné množství redestilované vody k dialýze. Získaný diafiltrát lze zahustit na koncentraci obvyklými postupy, t.j. lyofilizací nebo odpařením nebo lze s výhodou použít téhož zařízení pro ultrafiltraci, na kterém se obsah albuminu zvýší na koncentraci vyšší než 20%, a po sterilní filtraci a doplnění stabilizátorů je obvyklým způsobem převeden do aplikační formy, t.j. do roztoku obsahujícího 5 nebo 20% hmot. albuminu.
PŘÍKLADY PROVEDENÍ
Příklad č.1.
Sediment frakce V výrobní šarže o celkové hmotnosti 23 kg byl suspendován v redestilované vodě o teplotě +4°C v poměru 2 1 vody na 1 kg sedimentu. Rozotk po přidání aktivního uhlí v množství 50 g na 1 kg sedimentu frakce V a promíchání byl zfiltrován přes asbestocelulózové filtrační vrstvy Seitz K5 a
- 5 nou typu dutých vláken HP 26.5-43-PM1O firmy ploše 2,5 m2, dělící molekuly do 10^D, objem po dávkách 8 1 apyrogenní vody pro injekci,
236 09S
EKS2. 68 1 filtrátu o pH 6,40 obsahovalo 8,3% obj.etanolu a 8% hmot.bílkovin, z toho 93% albuminu. Roztok byl diafiltrovgn na aparatuře Alfa Laval UPP osazené ultrafiltrační patroRomicon o Celkové byl doplňován vždy celková spotřeba 138 1 vody. Po diafiltraci byl roztok zahuštěn ultrafiltrací na objem 24,5 1 o koncentraci 17,5% albuminu. Přidáním 500 g lyofilizovaného albuminu byla koncentrace upravena na 20% a roztok byl po přidání stabilizátoru (0,02M kaprylan sodný a 0,02M N-acetyld,l-tryptofan) běžným způsobem pasteurizován, sterilně zfiltrován, rozplhěn a podroben předepsaným chemickým, biologickým a klinickým zkouškám, na základě kterých byl propuštěn a expedován.
98,7 % hmot.
19.1 % hmot.
7,03
11, 13, 19 nef.jednotek 11, 14, 21 nef.jednotek 0,045 mg/1g albuminu
52.2 mmol/1
0,6 0,8 1,0°C bez reakcí při klinické zkoušce čistota elfo bílkoviny pH vzhled tep.stabilita obsah hernu obsah Na sterilní neškodný apyrogenní
- 6 Příklad č.2. 23β ose
Roztok albuminu, připravený analogickým způsobem jako v příkladě č.1, obsahoval 7,6% hmot .bílkovin, z toho 91,8% hmot «albuminu, a 8,1% obj · Atanolu v 70 1. K diafiltraci bylo použito zařízení Pellicon fy Millipore osazené 10 kasetami o
plochých membrán typu PTGC o celkové ploše 46 m , dělící molekuly do 10^D, objem byl doplňován vodou pro injekci v pěti dávkách po 35 1· Po diafiltraci byl roztok zahuštěn na 22,15 1 o koncentraci 23,4% hmot·albuminu na stejném zařízení. Po úpravě koncentrace na 20% hmot. a přidání stabilizátoru byl roztok běžným způsobem pasteurizován, sterilně zfiltrován, rozplněn a podroben předepsaným chemickým, biologickým a klinickým zkouškám, na základě kterých byl propuštěn a expedován, čistota elfo bílkoviny PH vzhled tep. stabilita obsah hernu obsah balení obsah Na sterilní neškodný apyrogenní
97»9% hmot.
19,7% hmot.
6,68
12, 14, 17 nef.jednotek 11, 12, 13 nef. jednotek 0,047 mg/1g albuminu 100 ml
56,55 mmal/1
0,4 0,2 0,6°C bez reakcí při klinické zkoušce
-7 Příklad č.3. 23β08β
Roztok albuminu připravený analogickým způsobem jako v příkladě č.1 obsahoval 7,8% obj.etanolu a 8,3% hmot. bílkovin, z toho 92,3% albuminu, v 87 1. K diafiltraci bylo použito zařízení Pellicon fy Millipore osazené 10 kasetami plochých membrám typu PTGC o celkové ploše 46 m , dělící molekuly do 10D, objem byl doplňován vodou pro injekci v pěti dávkách po 43 1. Po diafiltraci byl roztok lyofilizován. 6640 g lyofilizáta bylo rozpuštěno na 33 1 20%ního roztoku a po přidání stabilizátoru byl roztok běžným způsobem pasteurizován, sterilně zfiltrován, rozplněn a podroben předepsaným chemickým, biologickým a klinickým- zkouškám, na základě kterých byl propuštěn a expedován.
97,7% hmot.
9,7% hmot.
6,71
10, 12, 15 nef. jednotek 18, 22, 24 nef. jednotek 0,055 mmol/1
102 ml
56,55 mmol/1
0,4 0,3 0,1°C bez reakcí při klinické zkoušce čistota elfo bílkoviny pH vzhled tep.stabilita obsah hernu obsah balení obsah Na sterilní neškodný apyrogenní
Claims (1)
- Způsob přípravy roztoku sérového albuminu s nízkým obsahem nízkomolekulámích sloučenin vyjádřeným obsahem sodíku, který je menší než 174 mmol/1 pro 20% hmot. roztok albuminu, vyznačující se tím, že vodný roztok purifikováného albuminu se po filtraci zředí roztokem s obsahem sodíku nižším než 174 mmol/1 a podrobí se diafiltraci na plochých membránách nebo ultrafiltračních patronách s hranicí dělení 10^ me 10^D proti danému roztoku nejméně čtyřnásobným vyředěním a takto získaný roztok se zahustí na požadovanou koncentraci 5 «t 20% hmot. albuminu.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS388583A CS236096B1 (cs) | 1983-05-31 | 1983-05-31 | Způsob přípravy roztoku sérového albuminu s nízkým obsahem nízkomolekulárních sloučenin |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS388583A CS236096B1 (cs) | 1983-05-31 | 1983-05-31 | Způsob přípravy roztoku sérového albuminu s nízkým obsahem nízkomolekulárních sloučenin |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS236096B1 true CS236096B1 (cs) | 1985-05-15 |
Family
ID=5380234
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS388583A CS236096B1 (cs) | 1983-05-31 | 1983-05-31 | Způsob přípravy roztoku sérového albuminu s nízkým obsahem nízkomolekulárních sloučenin |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS236096B1 (cs) |
-
1983
- 1983-05-31 CS CS388583A patent/CS236096B1/cs unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP0654039B1 (en) | Process for hemoglobin extraction and purification | |
| AU2001273907B2 (en) | A method of producing IgG | |
| JP5478519B2 (ja) | 静脈投与用免疫グロブリン及び他の免疫グロブリン生成物の製造法 | |
| RU1837880C (ru) | Способ разделени белков крови | |
| US4216205A (en) | Process of preparing a serum protein composition for intravenous application | |
| CN106459140B (zh) | 用于纯化免疫球蛋白的方法 | |
| CN106414476B (zh) | 用于纯化免疫球蛋白的方法 | |
| CN103476786B (zh) | 一种生产血液来源蛋白质注射制剂的方法,以及使用上述方法获得的蛋白质物料 | |
| AU2001273907A1 (en) | A method of producing IgG | |
| IT9020610A1 (it) | Processo per la purificazione del fattore viii e fattore viii ottenuto con tale processo | |
| SK287633B6 (sk) | Spôsob výroby humánneho gamaglobulínu G a humánny gamaglobulín G s inaktivovanými vírusmi | |
| NO169875B (no) | Fremgangsmaate for fremstilling av et konsentrat av den anti-hemofile faktor viii | |
| CA1293941C (en) | Method for preparing antihemophilic factor (ahf) by cold precipitation and for improving solubility of recovered ahf product | |
| EP0011739B1 (en) | Process for obtaining blood coagulation factor xiii derived from human placenta | |
| CN107849086A (zh) | 源自血浆的乙型肝炎人免疫球蛋白的制备方法 | |
| EP0555135A1 (fr) | Procédé de fabrication de fibrinogène de très haute pureté | |
| KR20230125282A (ko) | 면역글로불린 G의 공정 규모 단리를 위한 시스템 및방법 (Systems and Methods for Process Scale Isolation of Immunoglobulin G) | |
| CS236096B1 (cs) | Způsob přípravy roztoku sérového albuminu s nízkým obsahem nízkomolekulárních sloučenin | |
| CA1168152A (en) | Process for preparing human plasma fractions containing immune globulin (igg) | |
| CN107880116B (zh) | 用于制备免疫球蛋白的方法 | |
| AU2016231646B2 (en) | Method for the preparation of immunoglobulins | |
| CA2943328C (en) | Method for the preparation of immunoglobulins | |
| DK159164B (da) | Fremgangsmaade til fremstilling af humant leukocytinterferon i krystallinsk form | |
| RU2708394C2 (ru) | Способ получения иммуноглобулинов | |
| TWI712612B (zh) | 製備免疫球蛋白溶液的方法 |