CS236096B1 - A method of preparing a low low molecular weight low level serum albumin solution - Google Patents
A method of preparing a low low molecular weight low level serum albumin solution Download PDFInfo
- Publication number
- CS236096B1 CS236096B1 CS388583A CS388583A CS236096B1 CS 236096 B1 CS236096 B1 CS 236096B1 CS 388583 A CS388583 A CS 388583A CS 388583 A CS388583 A CS 388583A CS 236096 B1 CS236096 B1 CS 236096B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- low
- albumin
- solution
- molecular weight
- preparing
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Vynález řeší způsob přípravy roztoku sérového albuminu s nízkým obsahem nízkotóolekulárních sloučenin. Uvedené sloučeniny, doprovázející izolovanou albuminovou frakci, se vyznačují vlastnostmi, které v některých případech kontraindikují možnost aplikace a nemají terapeutické účinlyt Podstatou vynálezu je odstranění shora uvedených sloučenin, přítomných v neomezené koncentraci, diafiltrací na definovaných membránách tubulárního nebo plošného typu, určených pro zahušťování roztoků biomakromolekul. Izolovaná albuminová frakce ve vodném roztoku je diafiltrována při výchozí koncentraci 2 až 20%hmot. bílkovin proti vodě pro injekci, přidávané plynule za konstantního objemu nebo v určených objemech. Způsob se vyznačuje nízkou spotřebou vody a tím i nízkou energetickou spotřebou a vysokou účinností a rychlostí, která snižuje riziko kontaminace.The invention provides a method for preparing a serum albumin solution with a low content of low molecular weight compounds. The compounds accompanying the isolated albumin fraction are characterized by properties that in some cases contraindicate the possibility of application and do not have therapeutic effects. The essence of the invention is the removal of the above-mentioned compounds, present in unlimited concentration, by diafiltration on defined membranes of tubular or sheet type, intended for thickening biomacromolecule solutions. The isolated albumin fraction in an aqueous solution is diafiltered at an initial concentration of 2 to 20%wt. proteins against water for injection, added continuously at a constant volume or in specified volumes. The method is characterized by low water consumption and thus low energy consumption and high efficiency and speed, which reduces the risk of contamination.
Description
Vynález řeší způsob přípravy roztoku sérového albuminu s nízkým obsahem nízkomolekulárních sloučenin..The present invention provides a process for preparing a serum albumin solution having a low content of low molecular weight compounds.
V současné době používané způsoby izolace sérového albuminu pro terapeutické nebo jiné účely, jako je výroba kosmetických a dietetických přípravků, získávají preparát, který je doprovázen nízkomolekulárními sloučeninami. V případě, že má být preparát použit pro terapeutické účely, je jeho účinnost přítomností uvedených látek snižována, v některých případech je aplikace dokonce kontraindikována. Z tohoto důvodu někteří výrobci zařazují za izolační postup purifikační kroky, kterými obsah nízkomolekulárních podílů před konečným koncentrováním albuminové frakce a farmaceutickým zpracováním snižují.The currently used methods of isolating serum albumin for therapeutic or other purposes, such as the manufacture of cosmetic and dietetic preparations, obtain a formulation that is accompanied by low molecular weight compounds. If the preparation is to be used for therapeutic purposes, its efficacy is reduced by the presence of the compounds, and in some cases the application is even contraindicated. For this reason, some manufacturers have included purification steps as an isolation process to reduce the low molecular weight content before final albumin fraction concentration and pharmaceutical processing.
Potřeba odstranění nízkomolekulárních podílů vzniká u všech dosud známých způsobů izolace albuminové frakce, ať už se jedná o ní zkomol ekulámí sloučeniny, pocházející z výchozího materiálu plasmatických bílkovin - plasmy dárců, séra, sušené plasmy nebo t.zv. náhradních surovin, t.j. retroplacentárního séra, nesterilních zbytků plasmy, erytrocytárních mas a K-plasmy, nebo o nízkomolekulární sloučeniny, použité při některém z dále uvedených způsobů izolace:The need for the removal of low molecular weight moieties arises in all known methods for isolating the albumin fraction, whether it is a tremendous eculoid compound derived from a plasma protein source material - donor plasma, serum, dried plasma, or so-called. substitute raw materials, i.e. retroplacental serum, non-sterile plasma residues, erythrocyte masses and K-plasma, or low molecular weight compounds used in any of the following isolation methods:
Izolační techniky lze rozdělit do několika skupin:Insulation techniques can be divided into several groups:
238 09β238 09β
- 2 postupy založené na selektivní precipitaci, ionexové chromatografii, gelové chromátografii, afinitní chromátografii a na selektivní tepelné denaturaci, nebo na kombinaci těchto postupů. Nejčastěji používané metodiky izolace albuminu srážením etanolem za nízkých teplot vychází z původní práce Cohn E.J., Strong L.E., Hughes W.L., Mulford D.J., Ashworth J.N·, Melin M· and Taylor H.L.: J.Amer.Chem.Soc. 68,459-475»- 2 procedures based on selective precipitation, ion exchange chromatography, gel chromatography, affinity chromatography and selective thermal denaturation, or a combination of these. The most commonly used low temperature ethanol recovery methods for albumin are based on the original work of Cohn E.J., Strong L.E., Hughes W.L., Mulford D.J., Ashworth J.N., Melin M., and Taylor H.L .: J.Amer.Chem.Soc. 68,459-475 »
1946» z které vychází i isolační metoda použitá pro dále uvedené příklady provedení podle Α·0· 194957 - Pokorný M., Foukal Z., Pardon J.: Způsob isolace lidského sérového albuminu. Potřeba odstranění nízkomolekulárních sloučenin je aktuální i u dalších metod, kdy je jako srážecího činidla použito síranu amonhého (Schultze H., Schonenberger M., Matheka H.D.: Behringweřkw Mitt. 26,21,1952), rivanolu (Hořejší J«, Smetana R.: Acta Med.Scand. 155,65-68, 1956), kyseliny kaprylové (Chanutin A., Curnish R.R.: Arch.Biochem.Biophys. 89, 218-220, 1960), polyethylenglykolu (Polson A., Potgieter G.M., Largier J.F.,1946 »on which the isolation method used for the following examples according to Α · 0 · 194957 is based - Pokorný M., Foukal Z., Pardon J .: A method of isolation of human serum albumin. The need for removal of low molecular weight compounds is also present in other methods where ammonium sulphate (Schultze H., Schonenberger M., Matheka HD: Behringwerkw Mitt. 26, 21, 1952), rivanol (Horni J, Smetana R.) is used as precipitant. Acta Med.Scand. 155,65-68, 1956), caprylic acid (Chanutin A., Curnish RR: Arch.Biochem.Biophys. 89, 218-220, 1960), polyethylene glycol (Polson A., Potgieter GM, Largier JF ,
Mears G.E.F., Joubert F.J.: Biochim. Biophys. Acta 82, 463475, 1964). Srážení polyethylenglykolem kombinuje s ionexovou chromatografií Curling (Curling J.M., Berglof J., Lindqůist L.O., Erikssdn S.: Vox Sang 33, 97-107, 1977), použití afinitní chromatografie pro přípravu čistého albuminu popisuje Harvey (Curling J.M. (ed.): Methods of plasma protein fractionation,Mears G.E.F., Joubert F.J .: Biochim. Biophys. Acta 82, 463475 (1964). Polyethylene glycol precipitation is combined with Curling ion exchange chromatography (Curling JM, Berglof J., Lindqist LO, Erikssdn S .: Vox Sang 33, 97-107, 1977), using affinity chromatography for the preparation of pure albumin is described by Harvey (Curling JM (ed.): Methods of plasma protein fractionation
Academie Press, 1980)^/>*«*'*Λ pfifv&utfenew pí*6>*<**<?Academie Press, 1980) ^ /> * «* '* Λ pfifv & utfenew pi * 6> * <** <?
-frakci popiitAje. z>£O ' Společným znakem uvedených postupů je sice selektivní oddělení albuminu od ostatních bílkovin krevní plasmy, ale zároveň zvýšení nízkomolekulární složky o další anorganické nebo-Fraction is drunk. A common feature of these procedures is the selective separation of albumin from other blood plasma proteins, but at the same time increasing the low molecular weight component by other inorganic or
-3.236 098 organické sloučeniny, zejména chlorid sodný, octan sodný a nízkomolekulární peptidy, vzniklé štěpením bílkovin během frakcionace, nebo obsažené ve výchozí surovině a doprovázející albumin až do finálního stadia farmaceutického zpracování. Tyto sloučeniny tvoří až 4% nečistot konečného preparátu a jsou ·. řítomny ve volné formě nebo vázané na molekulu albuminu. Jejich přítomnost snižuje osmotickou i transportní kapacitu preparátu. K odstranění nízkomolekulárních podílů z roztoků albuminu se používá metod založených na principu gelové chromátografie na zesilovaných dextranových gelech (Friedli H., Fournier E., Volk T., Kistler P,: Vox Sang. 33,93-96,1977)· Štěpánek I. a Uhrík J. používají pro odstranění nízkomolekutárních podílů protiproude dialýzy.. Preparaát bývá označován salt poor albumin nebo albumin s nízkým obsahem nízkomolekulárních látek.-3.236 098 organic compounds, in particular sodium chloride, sodium acetate and low molecular weight peptides, formed by protein cleavage during fractionation, or contained in the starting material and accompanying albumin up to the final stage of pharmaceutical processing. These compounds make up up to 4% of the impurities of the final preparation and are:. present in free form or bound to an albumin molecule. Their presence reduces the osmotic and transport capacity of the preparation. To remove low molecular weight fractions from albumin solutions, methods based on the principle of gel chromatography on cross-linked dextran gels are used (Friedli H., Fournier E., Volk T., Kistler P, Vox Sang. 33,93-96,1977) · Štěpánek I and Uhrík J. use dialysis countercurrent to remove low-molecular moieties. Preparaate is termed salt poor albumin or low-molecular-weight albumin.
Uvedené nedostatky odstraňuje navrhovaný způsob odstranění etanolu a solí, využívající membránové systémy s definovanou hranicí dělení molekul ve formě plochých membrán nebo dutých vláken, používané ke koncentrování biopolymerů. Podstata odstraňování nízkomolekulárních podílů, pocházejících z výchozích materiálů, a frakcionačních technik, použitých k isolaci albuminu, spočívá podle předloženého vynálezu v tom, že roztok purifikovaného albuminu v redestilované vodě se po filtraci ředí vodou pro injekci ve skocích nebo plynule za konstantního objemu a diafiltruje na ultrafiltrační jednotce, osazené membránou ve formě ploché membrány (Fiat membranes) nebo soustavou du tých vláken (Hollow fibres) a definovanou hranicí dělení mole236 096These drawbacks are overcome by the proposed method of removing ethanol and salts using membrane systems with a defined molecular separation threshold in the form of flat membranes or hollow fibers used to concentrate biopolymers. According to the present invention, the removal of low molecular weight fractions derived from starting materials and fractionation techniques used to isolate albumin consists in diluting the solution of purified albumin in redistilled water with a stepping or continuous flow of water for injection at constant volume and diafiltering. an ultrafiltration unit fitted with a membrane in the form of a flat membrane (Fiat membranes) or a set of dual fibers (Hollow fibers) with a defined cut-off limit of mole236 096
- 4 kul menších než 10^D. Proces probíhá za aseptických podmínek při teplotách v rozmezích 0 - 45°C, čímž lze ovlivňovat jeho rychlost vzhledem ke změnám Theologických vlastností roztoku albuminu, v rozmezí koncentrací 2 - 20% hmot., s výhodou v rozmezí 8-2% hmot. Při použití výchozího roztoku, který obsahuje 5 - 10% hmot. albuminu a 5 - 10% obj.etanolu, poklesne koncentrace etanolu pod hranici 0,5% obj.etanolu a obsah sodíku pod 174 mmol/1 při spotřebě vody pro injekci odpovídající pětinásobku výchozího objemu.- 4 balls smaller than 10 µD. The process is carried out under aseptic conditions at temperatures in the range of 0-45 ° C, whereby its rate can be influenced due to changes in theological properties of the albumin solution, in a concentration range of 2-20% by weight, preferably in the range of 8-2% by weight. When using a starting solution which contains 5 - 10 wt. albumin and 5-10% v / v ethanol, the ethanol concentration drops below 0.5% v / v and the sodium content is below 174 mmol / l, using water for injection equivalent to five times the initial volume.
Z uvedeného vyplývá Časová i nákladová efektivnost proti shora uvedeným způsobům, které vyžadují nákladné materiály pro gelovou chromatografií, resp. 200 násobné množství redestilované vody k dialýze. Získaný diafiltrát lze zahustit na koncentraci obvyklými postupy, t.j. lyofilizací nebo odpařením nebo lze s výhodou použít téhož zařízení pro ultrafiltraci, na kterém se obsah albuminu zvýší na koncentraci vyšší než 20%, a po sterilní filtraci a doplnění stabilizátorů je obvyklým způsobem převeden do aplikační formy, t.j. do roztoku obsahujícího 5 nebo 20% hmot. albuminu.This implies time and cost efficiency over the above methods, which require costly materials for gel chromatography, respectively. 200 times the amount of redistilled water for dialysis. The diafiltrate obtained can be concentrated to a concentration by conventional means, i.e. by lyophilization or evaporation, or preferably by the same ultrafiltration device, in which the albumin content is increased to a concentration of more than 20%, and after sterile filtration and stabilizer addition is converted i.e. to a solution containing 5 or 20 wt. albumin.
PŘÍKLADY PROVEDENÍEXAMPLES
Příklad č.1.Example 1.
Sediment frakce V výrobní šarže o celkové hmotnosti 23 kg byl suspendován v redestilované vodě o teplotě +4°C v poměru 2 1 vody na 1 kg sedimentu. Rozotk po přidání aktivního uhlí v množství 50 g na 1 kg sedimentu frakce V a promíchání byl zfiltrován přes asbestocelulózové filtrační vrstvy Seitz K5 aSediment fraction In a production batch of 23 kg total weight, it was suspended in redistilled water at + 4 ° C in a ratio of 2 L of water per kg of sediment. The solution after the addition of activated carbon in an amount of 50 g per kg of sediment of fraction V and mixing was filtered through asitz-cellulose filter layers of Seitz K5 and
- 5 nou typu dutých vláken HP 26.5-43-PM1O firmy ploše 2,5 m2, dělící molekuly do 10^D, objem po dávkách 8 1 apyrogenní vody pro injekci,- 5 hollow fiber type HP 26.5-43-PM1O company area of 2.5 m 2 , separating molecules up to 10 µD, volume in increments of 8 1 pyrogen-free water for injection,
236 09S236 09S
EKS2. 68 1 filtrátu o pH 6,40 obsahovalo 8,3% obj.etanolu a 8% hmot.bílkovin, z toho 93% albuminu. Roztok byl diafiltrovgn na aparatuře Alfa Laval UPP osazené ultrafiltrační patroRomicon o Celkové byl doplňován vždy celková spotřeba 138 1 vody. Po diafiltraci byl roztok zahuštěn ultrafiltrací na objem 24,5 1 o koncentraci 17,5% albuminu. Přidáním 500 g lyofilizovaného albuminu byla koncentrace upravena na 20% a roztok byl po přidání stabilizátoru (0,02M kaprylan sodný a 0,02M N-acetyld,l-tryptofan) běžným způsobem pasteurizován, sterilně zfiltrován, rozplhěn a podroben předepsaným chemickým, biologickým a klinickým zkouškám, na základě kterých byl propuštěn a expedován.EKS2. 68 L of filtrate at pH 6.40 contained 8.3% by volume of ethanol and 8% by weight of protein, of which 93% was albumin. The solution was diafiltered on an Alfa Laval UPP apparatus fitted with a Romicon ultrafiltration tray. The total consumption was always 138 l of water. After diafiltration, the solution was concentrated by ultrafiltration to a volume of 24.5 L at a concentration of 17.5% albumin. The concentration was adjusted to 20% by the addition of 500 g of lyophilized albumin, and after stabilization (0.02 M sodium caprylate and 0.02 M N-acetyld, 1-tryptophan) added, the solution was pasteurized in a conventional manner, sterile filtered, expelled and subjected to prescribed chemical, biological and clinical trials on the basis of which he was released and dispatched.
98,7 % hmot.98.7 wt.
19.1 % hmot.19.1% wt.
7,037.03
11, 13, 19 nef.jednotek 11, 14, 21 nef.jednotek 0,045 mg/1g albuminu11, 13, 19 Units 11, 14, 21 Units 0.045 mg / 1g albumin
52.2 mmol/152.2 mmol / l
0,6 0,8 1,0°C bez reakcí při klinické zkoušce čistota elfo bílkoviny pH vzhled tep.stabilita obsah hernu obsah Na sterilní neškodný apyrogenní0,6 0,8 1,0 ° C no reaction in clinical trial purity of elfo protein pH appearance heat stability hernia content content Na sterile harmless pyrogen-free
- 6 Příklad č.2. 23β ose- 6 Example 2. 23β axis
Roztok albuminu, připravený analogickým způsobem jako v příkladě č.1, obsahoval 7,6% hmot .bílkovin, z toho 91,8% hmot «albuminu, a 8,1% obj · Atanolu v 70 1. K diafiltraci bylo použito zařízení Pellicon fy Millipore osazené 10 kasetami oThe albumin solution prepared analogously to Example 1 contained 7.6 wt.% Protein, of which 91.8 wt.% Albumin, and 8.1 wt.% Atanol in 70 L. Pellicon was used for diafiltration. Millipore equipped with 10 cassettes o
plochých membrán typu PTGC o celkové ploše 46 m , dělící molekuly do 10^D, objem byl doplňován vodou pro injekci v pěti dávkách po 35 1· Po diafiltraci byl roztok zahuštěn na 22,15 1 o koncentraci 23,4% hmot·albuminu na stejném zařízení. Po úpravě koncentrace na 20% hmot. a přidání stabilizátoru byl roztok běžným způsobem pasteurizován, sterilně zfiltrován, rozplněn a podroben předepsaným chemickým, biologickým a klinickým zkouškám, na základě kterých byl propuštěn a expedován, čistota elfo bílkoviny PH vzhled tep. stabilita obsah hernu obsah balení obsah Na sterilní neškodný apyrogenníPTGC flat membranes with a total area of 46 m, separating molecules up to 10 µD, volume was replenished with water for injection in 35 doses of 35 L · After diafiltration, the solution was concentrated to 22.15 L with a concentration of 23.4% albumin to the same device. After adjusting the concentration to 20 wt. and the addition of the stabilizer, the solution was pasteurized in a conventional manner, sterile filtered, filled and subjected to prescribed chemical, biological and clinical tests on the basis of which it was released and shipped, the purity of the elfo protein PH appearance beat. stability content of the contents of the package contents of the contents For sterile harmless pyrogen-free
97»9% hmot.97 »9 wt.
19,7% hmot.19.7 wt.
6,686.68
12, 14, 17 nef.jednotek 11, 12, 13 nef. jednotek 0,047 mg/1g albuminu 100 ml12, 14, 17 inf. Units 11, 12, 13 inf. units of 0.047 mg / 1g albumin 100 ml
56,55 mmal/156.55 mmal / l
0,4 0,2 0,6°C bez reakcí při klinické zkoušce0.4 0.2 0.6 ° C without clinical reaction
-7 Příklad č.3. 23β08β -7 Example # 3. 23β08β
Roztok albuminu připravený analogickým způsobem jako v příkladě č.1 obsahoval 7,8% obj.etanolu a 8,3% hmot. bílkovin, z toho 92,3% albuminu, v 87 1. K diafiltraci bylo použito zařízení Pellicon fy Millipore osazené 10 kasetami plochých membrám typu PTGC o celkové ploše 46 m , dělící molekuly do 10D, objem byl doplňován vodou pro injekci v pěti dávkách po 43 1. Po diafiltraci byl roztok lyofilizován. 6640 g lyofilizáta bylo rozpuštěno na 33 1 20%ního roztoku a po přidání stabilizátoru byl roztok běžným způsobem pasteurizován, sterilně zfiltrován, rozplněn a podroben předepsaným chemickým, biologickým a klinickým- zkouškám, na základě kterých byl propuštěn a expedován.The albumin solution prepared analogously to Example 1 contained 7.8% by volume ethanol and 8.3% by weight. Proteins, 92.3% albumin, in 87 l. Diaellic filtration was performed by Pellicon of Millipore equipped with 10 cassettes of flat membranes type PTGC with a total area of 46 m, separating molecules up to 10D, volume was filled with water for injection in five doses after 1. After diafiltration, the solution was lyophilized. 6640 g of the lyophilisate was dissolved in 33 l of a 20% solution, and after the addition of the stabilizer, the solution was pasteurized in a conventional manner, sterile filtered, filled and subjected to the prescribed chemical, biological and clinical tests for release and shipping.
97,7% hmot.97.7 wt.
9,7% hmot.9.7 wt.
6,716.71
10, 12, 15 nef. jednotek 18, 22, 24 nef. jednotek 0,055 mmol/110, 12, 15 units 18, 22, 24 inf. units 0.055 mmol / l
102 ml102 ml
56,55 mmol/156.55 mmol / l
0,4 0,3 0,1°C bez reakcí při klinické zkoušce čistota elfo bílkoviny pH vzhled tep.stabilita obsah hernu obsah balení obsah Na sterilní neškodný apyrogenní0,4 0,3 0,1 ° C no reaction in clinical trial purity elfo protein pH appearance heat stability hernia content package contents content sterile harmless pyrogen-free
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS388583A CS236096B1 (en) | 1983-05-31 | 1983-05-31 | A method of preparing a low low molecular weight low level serum albumin solution |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS388583A CS236096B1 (en) | 1983-05-31 | 1983-05-31 | A method of preparing a low low molecular weight low level serum albumin solution |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS236096B1 true CS236096B1 (en) | 1985-05-15 |
Family
ID=5380234
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS388583A CS236096B1 (en) | 1983-05-31 | 1983-05-31 | A method of preparing a low low molecular weight low level serum albumin solution |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS236096B1 (en) |
-
1983
- 1983-05-31 CS CS388583A patent/CS236096B1/en unknown
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP0654039B1 (en) | Process for hemoglobin extraction and purification | |
| AU2001273907B2 (en) | A method of producing IgG | |
| JP5478519B2 (en) | Process for the production of intravenous immunoglobulins and other immunoglobulin products | |
| RU1837880C (en) | Method for separation of blood proteins | |
| US4216205A (en) | Process of preparing a serum protein composition for intravenous application | |
| CN106459140B (en) | Method for purifying immunoglobulins | |
| CN106414476B (en) | Methods for purifying immunoglobulins | |
| CN103476786B (en) | A method for producing blood-derived protein injection preparations, and protein materials obtained using the method | |
| AU2001273907A1 (en) | A method of producing IgG | |
| IT9020610A1 (en) | PROCESS FOR THE PURIFICATION OF FACTOR VIII AND FACTOR VIII OBTAINED WITH SUCH PROCESS | |
| SK287633B6 (en) | Method for the production of human gammaglobulin G and virus-inactivated human gammaglobulin G | |
| NO169875B (en) | PROCEDURE FOR PREPARING A CONCENTRATE OF THE ANTI-HEMOFILE FACTOR VIII | |
| CA1293941C (en) | Method for preparing antihemophilic factor (ahf) by cold precipitation and for improving solubility of recovered ahf product | |
| EP0011739B1 (en) | Process for obtaining blood coagulation factor xiii derived from human placenta | |
| CN107849086A (en) | The preparation method of hepatitis b human immunoglobulin from blood plasma | |
| EP0555135A1 (en) | Process for preparing highly purified fibrinogen | |
| KR20230125282A (en) | Systems and Methods for Process Scale Isolation of Immunoglobulin G | |
| CS236096B1 (en) | A method of preparing a low low molecular weight low level serum albumin solution | |
| CA1168152A (en) | Process for preparing human plasma fractions containing immune globulin (igg) | |
| CN107880116B (en) | Method for producing immunoglobulins | |
| AU2016231646B2 (en) | Method for the preparation of immunoglobulins | |
| CA2943328C (en) | Method for the preparation of immunoglobulins | |
| DK159164B (en) | METHOD FOR PREPARING HUMAN LEUKOCYTY INTERFERON IN CRYSTALLINE FORM | |
| RU2708394C2 (en) | Method of producing immunoglobulins | |
| TWI712612B (en) | Method for the preparation of immunoglobulins solution |