CS244931B2 - Preparation method of vaccine against markov disease - Google Patents

Preparation method of vaccine against markov disease Download PDF

Info

Publication number
CS244931B2
CS244931B2 CS288883A CS288883A CS244931B2 CS 244931 B2 CS244931 B2 CS 244931B2 CS 288883 A CS288883 A CS 288883A CS 288883 A CS288883 A CS 288883A CS 244931 B2 CS244931 B2 CS 244931B2
Authority
CS
Czechoslovakia
Prior art keywords
virus
vaccine
disease
turkey
vaccine against
Prior art date
Application number
CS288883A
Other languages
English (en)
Inventor
Ionel-Victor Patrascu
Original Assignee
Centr De Cercet Si Bioprepar P
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Centr De Cercet Si Bioprepar P filed Critical Centr De Cercet Si Bioprepar P
Publication of CS244931B2 publication Critical patent/CS244931B2/cs

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Způsob přípravy vakcíny proti Markově chorobě jednovrstevnou kultivací zdravých kuřecích embryonálních specificky nepatogenních buněk naočkovaných vakcinálním krocaním herpes virem, po dosáhnutí 80' % cytopatogenního efektu charakteristického pro vakcionální virus, se uvolňuje virus z izolovaných buněk působením ultrazvuku, přičemž se při přípravě použije roztok obsahující ' sacharózu, fosfáty, glutamát draselný a hovězí albuminovou frakci V, spočívající v tom, že se jako vakcinální virus použije krocaní herpes virus kmen FC-126 klon 1 RPCPSA — Voluntari, Bukurešť č. Illb prostý mykoplasmy, přičemž se tkáňová kultivace viru provádí na rollerech nebo v suspenzi dextranových mikronosičů.
Vynález se týká způsobu přípravy vakcíny proti Markově chorobě za použití kmene krocaního herpes viru.
Známá metoda přípravy této vakcíny ze specificky nepatogenních (SPF) embryonálních tkáňových kultur o koncentraci 2 x x ' 106 buněk/ml, nasazených do speciálních skleněných lahví nebo lahví z plastické hmoty, udržovaných ve statickém systému, spočívá v měnění živného média v různých intervalech za účelem vyvolání cytopatogenního efektu nebo v infikování kultur vakcinálním virem. Krocaní herpes virus (HVT) se pak extrahuje z buněčné suspenze do- SPGA ochranného roztoku obsahujícího sacharózu, 'fosfáty, glutamát draselný a hovězí albuminovou frakci V. Virus se pak uvolní působením ultrazvuku při maximálním biologickém limitu po- dobu 1 minuty, 5minutové přestávce a lminutovém chlazení, po kterém se buňky prosté herpes viru rychle zmrazí při teplotě —80 °C a udržují se při této- teplotě až do stanovení koncentrace viru v ml. Podle tohoto postupu se pak provede rychlé rozmražení, redistribuce ultrazvukem po dobu 10 sekund, ředění odpovídajícího množství na hodnotu 1 000 dávek/láhev a lyofilizace produktu. Uvedený postup má však následující nevýhody: statický systém tkáňových kultur vyžaduje přídavné operace, velké objemy uložené v termostatech, velký počet lahví pro tkáňové kultury, několik změn živných médií ve fázi množení, působením ultrazvuku se uvolňuje nedostatečný počet infekčních vakcinálních částic.
Předkládaný vynález eliminuje výše uvedené nedostatky použitím SPF kuřecích embrynoálních primárních buněčných kultur, nasazených na rollery nebo dextranové mikronosiče, které se infikují po vytvoření 80% jednovrstevné tkáňové kultury HVT kmenem FC-126, klon 1, Illb, ze sbírky Center for Research and Bi-oproducts for Poultry and Smáli Animals, Voluntari-Bukurešť, pak -se -shromáždí v SPGA roztoku, který obsahuje sacharózu, fosfáty, glutamát draselný a hovězí albuminovou frakci V, třikrát se zpracuje ultrazvukem po dobu 1 minuty v dvouminutových intervalech a odstředěním se získá určité -množství vakcíny. Vzniklý sediment se pak resuspenduje v roztoku SFGA, opět se podrobí působení ultrazvuku výše uvedeným způsobem, odstředěním -se získá další podíl vakcíny. Spojené podíly se uchovají při teplotě —100 °C až do -stanovení obsahu viru, pak se rychle rozmrazí, ředí roztokem SPGA a provede se lyofilizace.
Následující příklad je příkladem přípravy vakcíny proti Markově chorobě za použití kmene krocaního herpes viru podle vynálezu.
Příklad provedení
Připraví se SPF kuřecí embrynoální primární buněčné kultury na rollerech nebo dextranových mikronosičích. Po 20 až 24 hodinách, kdy se -vytvoří asi 80% jednovrstevné tkáňové kultury, se zamění živné médium čerstvým médiem obsahujícím inokulum, tj. vakcinální virové buňky sdruženého typu.
Tkáňové kultury se udržují ve fermentačním tanku nebo v rolleru za průběžné kontroly, bez změny živného média až cytopatogenní efekt charakterizovaný infekcí krocaního herpes viru vykazuje 80 % jednovrstevné tkáňové monokultury.
Infikované buňky se oddělí obvyklou trypsinizační metodou a odstředí se při +4 CC a 1 200 ot/min.
Odstředivé buňky lze resuspendovat v médiu pro vymražení buněk sdruženého typu a vymrazit na —196 °C (při ochlazování 1 až 2 °Ο za minutu), nebo je lze resuspendovat ve speciálním roztoku obsahujícím sacharózu, fosfáty, glutamát draselný, hovězí albuminovou frakci V (SPGA). Virus se pak uvolní z buněk působením ultrazvuku opakovaným třikrát po dobu jedné minuty s -dvouminutovými intervaly při teplotě +4° Celsia. Suspenze -se pak odstředí při +4 °C a 1 .200 ot/min a supernatant představující první podíl vakcíny se oddělí za sterilních podmínek. Sediment -se opět -suspenduje v SPGA a podrobí stejnému zpracování ultrazvukem. Takto při druhém zpracování ultrazvukem získaná -suspenze představuje druhý podíl vakcíny a přidá se -k první dávce.
Suspenze virů se zmrazí na —100 °C v lahvích stejné velikosti a v nádobách z plastické hmoty. Vzorky oddělené v nádobkách z plastické hmoty -se rozmrazí a provedou se bakteriologická, biologická a mytologická stanovení a rovněž kvantitativní stanovení -vakcinálního viru.
Po- stanovení koncentrace viru v ml se suspenze virů rozmrazí, zředí SPGA a lyofilizuje. Každá láhev musí podle výrobního protokolu obsahovat 250, 500 nebo 1000 vaitoinálních- dávek a každá vakcinální dávka 1 200 jednotek tvorby povlaku, dále jen PFU.
Tato lyofilizovaná vakcína se uchovává až do použití při teplotě +4 °C.
Srovnání vakcíny vyrobené podle původního postupu a postupu podle vynálezu (varianta I a II):
Vakcína Celkem ml PFU/ml Vakcinální dávka po lyofilizaci
1. vakcína varianta I 100 5 x 106 66,000*
2. vakcína varianta II 80,000
působení ultrazvuku
na buněčný sediment
— supernatant 100 5 x 10®
— buněčný sediment 20 4,5 x 10®
*vakcinální dávka obsahuje 1 200 PFU
Médium pro buněčné kultury je médium TC 199 prosté purinu, pyrinrdinu a nukleotidu a s přídavkem fosfátu tryptasy, hydrogenuhličitanu sodného, antibiotik a fetálního séra.
Vakcinální virus je krocaní herpes virus kmen FC-126 klon 1 prostý mykoplasmy, registrovaný pod číslem Illb klon 1 v rejstříku Center for Research and Bioproducts fcr Poultry and Smáli Animals, Voluntari-Bukurešť. Krocaní herpes virus FC-126 je nepatogenní pro kuřata, klon 1 je prostý mykoplasmy a vyvolává v totálních nebo renálních kuřecích embryonálních fibroblastech cha rakteristický cytopatogenní efekt. Kuřata vakcinovaná HVT kmenem FE-126 jsou odolná к následné infekci patogenním virem Markovy choroby a nevznikají tumory.
Předkládaný vynález má následující výhody:
— příprava vakcíny nevyžaduje zvláštní metodiku, výroba je kontinuální, poloautomatizovaná, — suspenze virových částic je po zpracování ultrazvukem homogenní, — lze připravit jak lyofilizované, tak zmrazené formy vakcín.

Claims (1)

  1. PŘEDMĚT VYNÁLEZU
    Způsob přípravy vakcíny proti Markově chorobě jednovrstevnou kultivací zdravých kuřecích embryonálních specificky nepatogenních buněk naočkovaných vakcinálním krocaním herpes virem, po dosáhnutí 80 °/o cytopatogenního efektu charakteristického pro vakcinální virus, se uvolňuje virus z izolovaných buněk působením ultrazvuku, přičemž se při přípravě použije roztok obsa hující sacharózu, fosfáty, glutamát draselný a hovězí albuminovou frakci V, vyznačující se tím, že se jako vakcinální virus použije krocaní herpes virus kmen FC-126 klon 1 RPCPSA — Voluntari, Bukurešť č. 111b prostý mykoplasmy, přičemž se tkáňová kultivace viru provádí na rollerech v suspenzi dextranových mikronosičů.
CS288883A 1982-04-22 1983-04-22 Preparation method of vaccine against markov disease CS244931B2 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RO107322A RO80570B1 (ro) 1982-04-22 1982-04-22 Procedeu de preparare a vaccinului contra bolii lui marek

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CS244931B2 true CS244931B2 (en) 1986-08-14

Family

ID=20111418

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CS288883A CS244931B2 (en) 1982-04-22 1983-04-22 Preparation method of vaccine against markov disease

Country Status (3)

Country Link
CS (1) CS244931B2 (cs)
DD (1) DD209738A5 (cs)
RO (1) RO80570B1 (cs)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RO132299A3 (ro) 2017-06-06 2018-12-28 Fântână Raul Sorin Compoziţie şi metodă de preparare şi evaluare a unui imunogen complex numit i-spga, destinat producerii de proteine imunologic active ()

Also Published As

Publication number Publication date
RO80570A3 (ro) 1984-07-17
RO80570B1 (ro) 1984-09-30
DD209738A5 (de) 1984-05-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR0156732B1 (ko) 연속 셀 라인에서의 ibdv 생성
US20050118698A1 (en) Multiplication of viruses in a cell culture
US3783098A (en) Highly potent,viable and stable cellfree virus preparations from cells infected with cell-associated viruses and method for obtaining the same
McFerran et al. Some properties of an avirulent Newcastle disease virus
EP0048201B1 (en) Herpes simplex type i fraction vaccine and process for its preparation
CA1109393A (en) Vaccine and its preparation
Patrascu et al. Vaccination with lyophilized turkey herpesvirus (HVT): minimum infective and protective doses
CA1122527A (en) Influenza vaccine production in liquid cell culture
US5789231A (en) Marek's disease vaccine
US3429965A (en) Avian pox virus vaccine and process of preparing same
EP0011864A1 (en) Attenuated strain of feline infectious peritonitis virus, method for preparing it and vaccine comprising it
CS244931B2 (en) Preparation method of vaccine against markov disease
US20070111211A1 (en) Integrated viral complexes, methods of production thereof, vaccines containing same and methods of use thereof
GB2053679A (en) Rabies/canine distemper vaccines
EP0013188B1 (en) Parainfluenza virus vaccine and its preparation
Lee Large-scale production of Marek's disease virus
US3098011A (en) Process of producing a vaccine against distemper
US4540669A (en) Herpes simplex type I subunit vaccine
Ohuchi et al. Mode of Subacute Sclerosing Panencephalitis (SSPE) Virus Infection in Tissue Culture Cells: III. Neurovirulence of Cell‐Free SSPE Viruses of Niigata‐1, Kitaken‐1, and Biken Strains
Matumoto et al. Behavior of bovine ephemeral fever virus in laboratory animals and cell cultures
Cho An improved method for extracting cell-free herpesviruses of Marek's disease and turkeys from infected cell cultures
RU2144376C1 (ru) Сухая вирусвакцина против болезни марека и способ ее изготовления
RU2144562C1 (ru) Штамм "вниизж/№ 110" вируса герпеса индеек для изготовления вакцины против болезни марека
EP0000677B1 (en) Parainfluenza virus vaccine and its preparation
RU2774588C2 (ru) Улучшенный разбавитель для вакцины против клеточно-ассоциированного альфагерпесвируса