CS273467B1 - Method of precallicreine's and hageman's factor's from blood plasma standard concentrates preparation - Google Patents
Method of precallicreine's and hageman's factor's from blood plasma standard concentrates preparation Download PDFInfo
- Publication number
- CS273467B1 CS273467B1 CS623388A CS623388A CS273467B1 CS 273467 B1 CS273467 B1 CS 273467B1 CS 623388 A CS623388 A CS 623388A CS 623388 A CS623388 A CS 623388A CS 273467 B1 CS273467 B1 CS 273467B1
- Authority
- CS
- Czechoslovakia
- Prior art keywords
- concentrate
- hageman factor
- precallikrein
- blood plasma
- factor fragment
- Prior art date
Links
- 210000002381 plasma Anatomy 0.000 title claims abstract description 28
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 title claims abstract description 23
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 17
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 title claims abstract description 16
- 102000000429 Factor XII Human genes 0.000 claims abstract description 21
- 108010080865 Factor XII Proteins 0.000 claims abstract description 21
- 239000012634 fragment Substances 0.000 claims abstract description 21
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims abstract description 9
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims abstract description 9
- 239000002594 sorbent Substances 0.000 claims abstract description 8
- 229920002307 Dextran Polymers 0.000 claims abstract description 7
- -1 hydroxyalkyl methacrylate Chemical class 0.000 claims abstract description 7
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 claims abstract description 6
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 claims abstract description 6
- 229920002818 (Hydroxyethyl)methacrylate Chemical class 0.000 claims abstract description 5
- WOBHKFSMXKNTIM-UHFFFAOYSA-N Hydroxyethyl methacrylate Chemical class CC(=C)C(=O)OCCO WOBHKFSMXKNTIM-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 5
- MZVQCMJNVPIDEA-UHFFFAOYSA-N [CH2]CN(CC)CC Chemical class [CH2]CN(CC)CC MZVQCMJNVPIDEA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 5
- 150000001768 cations Chemical class 0.000 claims abstract description 5
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 claims abstract description 4
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 claims abstract description 4
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 claims abstract description 4
- 230000008569 process Effects 0.000 claims abstract description 4
- 230000017854 proteolysis Effects 0.000 claims abstract description 4
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 claims abstract description 4
- 125000002057 carboxymethyl group Chemical group [H]OC(=O)C([H])([H])[*] 0.000 claims abstract 2
- 238000011033 desalting Methods 0.000 claims abstract 2
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 13
- 102000001399 Kallikrein Human genes 0.000 claims description 6
- 108060005987 Kallikrein Proteins 0.000 claims description 6
- 239000003957 anion exchange resin Substances 0.000 claims description 6
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 claims description 6
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 6
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 claims description 5
- 239000006167 equilibration buffer Substances 0.000 claims description 5
- 239000002243 precursor Substances 0.000 claims description 5
- CPELXLSAUQHCOX-UHFFFAOYSA-M Bromide Chemical compound [Br-] CPELXLSAUQHCOX-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 4
- 239000000872 buffer Substances 0.000 claims description 4
- 238000004440 column chromatography Methods 0.000 claims description 4
- KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-K Citrate Chemical compound [O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-K 0.000 claims description 3
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims description 3
- 238000010828 elution Methods 0.000 claims description 3
- 239000006174 pH buffer Substances 0.000 claims description 3
- 239000007858 starting material Substances 0.000 claims description 3
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 claims description 2
- 230000003472 neutralizing effect Effects 0.000 claims description 2
- 238000010612 desalination reaction Methods 0.000 claims 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims 1
- 239000000463 material Substances 0.000 claims 1
- 239000003914 blood derivative Substances 0.000 abstract description 2
- 238000003795 desorption Methods 0.000 abstract 1
- 239000012190 activator Substances 0.000 description 8
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 description 6
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 5
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 3
- 238000011026 diafiltration Methods 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 2
- 238000005341 cation exchange Methods 0.000 description 2
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 2
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 2
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 2
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 2
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- HBOMLICNUCNMMY-KJFJCRTCSA-N 1-[(4s,5s)-4-azido-5-(hydroxymethyl)oxolan-2-yl]-5-methylpyrimidine-2,4-dione Chemical compound O=C1NC(=O)C(C)=CN1C1O[C@H](CO)[C@@H](N=[N+]=[N-])C1 HBOMLICNUCNMMY-KJFJCRTCSA-N 0.000 description 1
- TYMLOMAKGOJONV-UHFFFAOYSA-N 4-nitroaniline Chemical class NC1=CC=C([N+]([O-])=O)C=C1 TYMLOMAKGOJONV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000011399 Anion exchange proteins Human genes 0.000 description 1
- 108050001632 Anion exchange proteins Proteins 0.000 description 1
- 206010009192 Circulatory collapse Diseases 0.000 description 1
- 102000003886 Glycoproteins Human genes 0.000 description 1
- 108090000288 Glycoproteins Proteins 0.000 description 1
- 108060003951 Immunoglobulin Proteins 0.000 description 1
- 102000010631 Kininogens Human genes 0.000 description 1
- 108010077861 Kininogens Proteins 0.000 description 1
- 102000002397 Kinins Human genes 0.000 description 1
- 108010093008 Kinins Proteins 0.000 description 1
- 102000004856 Lectins Human genes 0.000 description 1
- 108090001090 Lectins Proteins 0.000 description 1
- 102000015636 Oligopeptides Human genes 0.000 description 1
- 108010038807 Oligopeptides Proteins 0.000 description 1
- 229920005654 Sephadex Polymers 0.000 description 1
- 239000012507 Sephadex™ Substances 0.000 description 1
- 239000008351 acetate buffer Substances 0.000 description 1
- 238000005349 anion exchange Methods 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 238000010923 batch production Methods 0.000 description 1
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 1
- 230000036772 blood pressure Effects 0.000 description 1
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 description 1
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 239000013020 final formulation Substances 0.000 description 1
- 108010074605 gamma-Globulins Proteins 0.000 description 1
- 229920000669 heparin Polymers 0.000 description 1
- 239000002607 heparin antagonist Substances 0.000 description 1
- 230000001077 hypotensive effect Effects 0.000 description 1
- 102000018358 immunoglobulin Human genes 0.000 description 1
- 229940027941 immunoglobulin g Drugs 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 1
- 239000003999 initiator Substances 0.000 description 1
- 238000001990 intravenous administration Methods 0.000 description 1
- 239000002523 lectin Substances 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 description 1
- 230000002797 proteolythic effect Effects 0.000 description 1
- 230000006337 proteolytic cleavage Effects 0.000 description 1
- 230000009257 reactivity Effects 0.000 description 1
- 206010040560 shock Diseases 0.000 description 1
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 1
Landscapes
- External Artificial Organs (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Vynález se týká způsobů přípravy standardních koncentrátů prekallikreinu a fragmentu Hagemanova faktoru z krevní plasmy, zejména z intaktní citrátové krevní plasmy, a to k diagnostickým účelům.The invention relates to methods for preparing standard concentrates of precallikrein and a fragment of Hageman factor from blood plasma, in particular from intact citrate blood plasma, for diagnostic purposes.
Plasmatický prekallíkrein slouží jako jediné specifické agnes k laboratornímu průkazu přítomnosti fragmentu Hagemanova faktoru (aktivátoru prekallikreinu, také HFf) v preparátech připravovaných z krevní plasmy. HFf je iniciátorem pochodů, které v krevním oběhu vedou k uvolnění kininů z plasmatických kininogenů známým mechanismem. Kontaminace fragmentem Hagemanova faktoru u intravenosně podávaných krevních derivátů znamená tedy pro příjemce ohrožení, spočívající v prudkém poklesu krevního tlaku, vedoucím až k cirkulačnímu kolapsu. Dosavadní výrobní postupy pro přípravu stabilního plasmatíckého roztoku, albuminu nebo intravenosního gama-globulinu nezabranují tomu, aby HFf, přítomný ve výchozím materiálu buď jako takový, nebo v podobě prekurzoru, nepřecházel jako kontaminující složka do konečného preparátu. Stanovení hladiny HFf, jehož hypotenzívní účinky jsou známy, může být ukazatelem případné reaktivity derivátů krevní plasmy při klinických aplikacích.Plasma precallikrein serves as the only specific agent for laboratory demonstration of the presence of a fragment of Hageman factor (a precallikrein activator, also HFf) in preparations prepared from blood plasma. HFf is the initiator of processes that lead to the release of kinins from plasma kininogens in a bloodstream by a known mechanism. Thus, contamination with a Hageman factor fragment in intravenously administered blood derivatives represents a threat to the recipient of a sharp drop in blood pressure, leading to circulatory collapse. The prior art manufacturing processes for the preparation of a stable plasma solution, albumin or intravenous gamma-globulin do not prevent the HFf present in the starting material as such or in the form of a precursor from passing into the final formulation as a contaminant. Determination of the level of HFf, whose hypotensive effects are known, may be an indicator of the possible reactivity of blood plasma derivatives in clinical applications.
Průkaz fragmentu Hagemanova faktoru v klinicky používaných preparátech je založen na tom, že preparát, který tento faktor obsahuje, je schopen aktivovat prekallíkrein na enzym kallikrein, jehož uvolněné množství je úměrné přítomnému aktivátoru prekallikreinu a sta>noví se pomocí specifického substrátu. Někteří autoři používají substrátů na bázi esterů bázických aminokyselin (cit. lit. 1, 2), v pozdější době jsou však vesměs užívány specifičtější chromogenní oligopeptidické deriváty p-nitroanilinu (cit. lit. 3). Aby hylo možno standardizovat metodu stanovení HFf v preparátech připravených z krevní plasmy, je nutno mít k dispozici standardní prekallíkrein a k jeho přípravě standardní aktivátor prekallikreinu.Demonstration of the Hageman factor fragment in clinically used preparations is based on the fact that the preparation containing this factor is able to activate precallikrein to the enzyme kallikrein, the released amount of which is proportional to the precallikrein activator present and is determined by a specific substrate. Some authors use substrates based on basic amino acid esters (cf. lit. 1, 2), but later more specific chromogenic oligopeptide derivatives of p-nitroaniline are used (cf. lit. 3). In order to standardize the HFf assay in preparations prepared from blood plasma, a standard precallikrein and a standard precallikrein activator must be available.
Jsou známy způsoby oddělování prekallikreinu z krevní plasmy sloupcovou chromatografií na sorbentech typu dietylaminoetylderivátů dextranu, které jsou všeobecné známé a komerčně dostupné (cit. lit. 4). Protože povrchový elektrický náboj prekallikreinu je blízký povrchovému elektrickému náboji imunoglobulinu G, lze pro tyto účely použít i postupy popsané pro izolaci této frakce z krevní plasmy (cit. lit. 5). Nevýhodou těchto postupů, založených na sloupcové chromatografii, je především několikahodinové trvání separačního procesu, při kterém ve zpracovávané plazmě může docházet k aktivaci prekallikreinu v enzym kallikrein vlivem kofaktorů aktivace přítomných v krevní plasmě a vlivem negativního elektrického náboje povrchu skleněného separačního zařízení. Je znám způsob, jak zabránit nežádoucí aktivaci prekallikreinu: Pro jeho separaci z plasmy je nutno.používat chromatografických trubic s intaktním povrchem, tj. prostých elektrického náboje, nebo skleněných trubic potažených uvnitř vrstvou silikonu.Methods are known for separating precallikrein from blood plasma by column chromatography on sorbents of the dextran diethylaminoethyl derivative type, which are generally known and commercially available (cf. lit. 4). Since the surface electrical charge of precallikrein is close to the surface electrical charge of immunoglobulin G, the procedures described for the isolation of this fraction from blood plasma can also be used for this purpose (cf. lit. 5). The disadvantage of these column chromatography methods is, in particular, the several-hour separation process, during which the plasma being treated may be activated by precallikrein into the enzyme kallikrein due to activation cofactors present in blood plasma and due to the negative electrical charge of the glass separator surface. There is a known way to prevent undesirable activation of precallikrein: To separate it from plasma, it is necessary to use chromatographic tubes with an intact surface, ie free of electric charge, or glass tubes coated inside with a layer of silicone.
Způsobem podle vynálezu se podařilo odstranit popsané nevýhody dosavadních postupů, především tedy dlouhotrvající separaci a značné nároky na speciální úpravu aparatury a současně využít zbytků krevní plasmy po isolaci prekallikreinu k přípravě koncentrátu fragmentu Hagemanova faktoru. Jeho podstata spočívá v tom, že se výchozí surovina s přísadou látky neutralizující negativní elektrické náboje, například hexadimethrinbromidu, předem ekvilibrovaná pufrem s hodnotou pH 6,3 až 8,0 a molarity 0,0175 až 0,1, uvádí v zařízení prostém povrchového elektrického náboje, za stálého pohybu ve styk s anexem, zejména na bázi dietylaminoetylderivátů polysacharidů, například dextranu nebo celulosy, nebo na bází hydroxyalkylmetakrylátového nebo glykolmetakrylátového gelu, předem promytým ekvilibračním pufrem, po ukončené sorpci se roztok nesorbovaných bílkovin, obsahujici koncentrát prekallikreinu, oddělí, například filtrací, a to opět v zařízení prostém povrchového elektrického náboje, potom se podíl bílkovin, sorbovaný na anexu a obsahující prekursor fragmentu Hagemanova faktoru, uvolní elucí pufrem s hodnotou pH ekvílibračního pufru a s obsahem chloridu sodného nejméně 1,0 mol/1, získaný eluát se odsolí, například dialýzou, a podrobí proteolýze, například kallikreinem, a uvolněný HFf se izoluje na katexu, například na bázi karboxymetylderivátu dextranu nebo celulosy, po ekvilibraci eluátu i katexu pufrem s hodnotou pH 5,5 až 6,0 elucí solným gradientem, například v koncentraCS 273 467 Bl ·<£( !The method according to the invention has succeeded in eliminating the disadvantages of the prior art described above, in particular the long-term separation and considerable demands on the special treatment of the apparatus, and at the same time utilizes the blood plasma residues after precallikrein isolation to prepare the Hageman factor fragment concentrate. It is based on the fact that the starting material with the addition of a neutral electric charge neutralizing agent, such as hexadimethrin bromide, previously equilibrated with a pH buffer of 6.3 to 8.0 and a molarity of 0.0175 to 0.1, is introduced in a surface-free apparatus. charge, in constant contact with an anion exchange resin, in particular based on diethylaminoethyl derivatives of polysaccharides, for example dextran or cellulose, or on the basis of a hydroxyalkyl methacrylate or glycol methacrylate gel, prewashed with equilibration buffer, after adsorption, again in an apparatus free of surface electric charge, then the anion exchange sorbent protein portion containing the Hageman factor fragment precursor is released by elution with a buffer solution having a pH of equilibration buffer and a sodium chloride content of at least 1.0 mol / l, the salt, for example by dialysis, and subjected to proteolysis, for example by kallikrein, and the released HFf is isolated on a cation exchanger, for example based on dextran or cellulose carboxymethylderivative, after equilibrating both the eluate and cation exchanger concentrraCS 273 467 Bl · <£ (!
&&
'i ci od 0 do 1,0 mol/1 chloridu sodného.or from 0 to 1.0 mol / L sodium chloride.
Při provedení způsobu podle vynálezu spočívá základní opatření v uvedení krevní plasmy do styku s anexem v nádobě s intaktním povrchem, tzn. prostým elektrického náboje, za přesně definovaných podmínek pH a iontové síly, za kterých se prekallikrein spolu s imunoglobulinovou frakcí nesorbuje na anex. Nesorbovaný podíl slouží jako koncentrát prekallikreinu. Podíl bílkovin, vázaný na anex, obsahující prekurzor fragmentu Hagemanova faktoru, se uvolní elucí roztokem se zvýšenou iontovou silou a slouží k přípravě koncentrátu HFf, Získaná frakce se po odstranění solí podrobí proteolytickému štěpení, čímž se obohatí o fragment Hagemanova faktoru, který se potom dále za definovaných podmínek separuje sloup covou chromatografií na katexu. Koncentrát HFf se zpracuje známým způsobem, uvedeným pro ilustraci v příkladu 2, na standard aktivátoru prekallikreinu.In carrying out the method of the invention, the basic precaution is to bring the blood plasma into contact with the anion exchange resin in a container having an intact surface, i. free of electrical charge, under precisely defined pH and ionic strength conditions, under which precallikrein, along with the immunoglobulin fraction, does not adsorb to the anion exchange resin. The non-adsorbed portion serves as a precallikrein concentrate. The anion exchange protein fraction containing the precursor of the Hageman factor fragment is released by elution with an increased ionic strength solution and is used to prepare the HFf concentrate. After removal of the salts, the fraction obtained is subjected to proteolytic cleavage to enrich for the Hageman factor fragment. under defined conditions, it is separated by cation exchange column chromatography. The HFf concentrate is processed to a precallikrein activator standard in a manner known per se as illustrated in Example 2.
Způsob podle vynálezu aplikací vsádkového postupu v nádobě (respektive v zařízení) prosté povrchového elektrického náboje umožnil zkrácení přípravy koncentrátu prekallikreinu na dobu nejvýše 30 min. a tím i podstatně snížil nebezpečí vzniku autoaktivačních nebo proteolytických pochodů v plasmě. Nevyžaduje žádné speciální chromatografické aparatury a současně využívá sorbované frakce bílkovin k přípravě koncentrátu HFf. Při dodržení doporučených podmínek podle vynálezu jsou oba koncentráty stálé kvality.The method of the invention by applying a batch process in a vessel (or apparatus) free of surface electric charge allowed the preparation of the precallikrein concentrate to be shortened to a maximum of 30 min. thus substantially reducing the risk of autoactivating or proteolytic processes in the plasma. It does not require any special chromatographic apparatus and at the same time utilizes sorbed protein fractions to prepare HFf concentrate. Under the recommended conditions according to the invention, both concentrates are of constant quality.
Výhodou způsobu podle vynálezu je, že umožňuje velmi jednoduchou, rychlou a hospodárnou přípravu složek plasmy nutných pro kontrolu přítomnosti fragmentu Hagemanova faktoru v preparátech získávaných z lidské krevní plasmy.An advantage of the method according to the invention is that it allows a very simple, fast and economical preparation of the plasma components necessary to control the presence of the Hageman factor fragment in preparations obtained from human blood plasma.
Bližší podrobnosti způsobu podle vynálezu vyplývají z následujících příkladů provedení, které předmět vynálezu pouze ilustrují, ale nijak neomezují.The following examples illustrate the invention but do not limit it in any way.
Příklad 1Example 1
a) Příprava koncentrátu prekallikreinua) Preparation of precallikrein concentrate
Ke 100 ml intaktní lidské citrátové plasmy se přidá 5 mg hexadimethrinbromidu (syntetický antagonista heparinu, Polybren) a potom se plasma ekvilibruje dialýzou při 4 °C proti pufru Tris-HCl (0,1 mol/1, pH 8,0) s přísadou hexadimethrinbromidu v koncentraci 50 mg/1. K ekvilibrované plasmě se přidá 8 g dietylaminoetylderivátu dextranu s velikostí částic 40 až 120 /im nebe 10 g dietylaminoetylderivátu celulosy nebo 8 g dietylaminoetylderívátu hydroxyetylmetakrylátu, předem promytých ekvilibračním pufrem a směs se míchá za mírného otáčení 20 minut v polyetylenové nádobě. Po skončené sorpci se sorbent odsaje na odsávačce opatřené rychle tekoucím filtračním papírem a filtrát se jímá do polyetylenového sáčku nebo nádoby. Získaný filtrát je koncentrát prekallikreinu. Popsaným postupem se získá veškerý prekallikrein přítomný ve výchozí plasmě, spolu s IgG tvoří 95 až 98 % bílkoviny koncentrátu. Počet mezinárodních jednotek prekallikreinu se stanoví aktivací standardním aktivátorem prekallikreinu.To 100 ml of intact human citrate plasma is added 5 mg of hexadimethrin bromide (synthetic heparin antagonist, Polybren) and then the plasma is equilibrated by dialysis at 4 ° C against Tris-HCl buffer (0.1 mol / l, pH 8.0) with hexadimethrin bromide added. at a concentration of 50 mg / l. To the equilibrated plasma, 8 g of dextran diethylaminoethyl derivative having a particle size of 40 to 120 µm or 10 g of cellulose diethylaminoethyl derivative or 8 g of hydroxyethyl methacrylate, previously washed with equilibration buffer, was added and the mixture stirred gently in a polyethylene vessel for 20 minutes. After the sorption is complete, the sorbent is aspirated on a suction cup equipped with fast flowing filter paper and the filtrate is collected in a polyethylene bag or container. The filtrate obtained is precallikrein concentrate. As described above, all precallikrein present in the starting plasma is obtained, together with IgG, constituting 95 to 98% of the protein of the concentrate. The number of international precallikrein units is determined by activation with a standard precallikrein activator.
b) Příprava koncentrátu fragmentu Hagemanova faktorub) Preparation of the Hageman Factor Fragment Concentrate
Anex, oddělený v předchozí operaci od kapalného podílu, na kterém je zachycena bílkovinná frakce obsahující prekursúr fragmentu Hagemanova faktoru, se eluuje dvakrát po 150 ml pufru o vysoké iontové síle, například pufrem Tris-HCl (0,1 mol/1, pH 8,0) s přísadou 2,0 mol/1 chloridu sodného. Eluát o objemu zhruba 300 ml se zbaví solí dialýzou proti destilované vodě (nebo diafiltrací) a diafiltrací se zahustí na objem 50 ml. Přídavkem 10 ml roztoku aktivního enzymu kallikreinu (aktivita 80 až 100 U/ml) a minimálně 8 hodinovou inkubací při 25 °C se tento podíl obohatí o HFf. Směs se frakcionuje na sloupci katexu (CM Sephadex, velikost částic 40 až 120 /un, velikost sloupce 1,6 x 40 cm) solným gradientem od 0 do 1,0 mol/1 chloridu sodného v acetátovém pufru (0,1 mol/1, pH 5,9). Podíly obsahující HFf se spojí a po odstranění solí dialýzou proti destilované vodě (nebo diafiltrací) se zahustí na takový objem, aby získaný koncentrát fragmentu Hagemanova faktoru vykazoval aktivitu nejméně 90 U/ml. Spolu s albuminem tvoří HFf více než 98 % bílkoviny.The anion exchange resin separated from the liquid fraction containing the protein fraction containing the precursor of the Hageman factor fragment is eluted twice with 150 ml of a high ionic strength buffer, for example Tris-HCl (0.1 mol / l, pH 8), 0) with 2.0 mol / l sodium chloride. The eluate of about 300 ml is dehydrated by dialysis against distilled water (or diafiltration) and concentrated to 50 ml by diafiltration. Addition of 10 ml of active kallikrein enzyme solution (activity of 80-100 U / ml) and incubation for at least 8 hours at 25 ° C enriched in HFf. The mixture was fractionated on a cation exchange column (CM Sephadex, particle size 40-120 / un, column size 1.6 x 40 cm) with a salt gradient of 0 to 1.0 mol / l sodium chloride in acetate buffer (0.1 mol / l pH 5.9). The HFf-containing fractions were combined and, after removal of salts by dialysis against distilled water (or diafiltration), concentrated to a volume such that the obtained Hageman factor fragment concentrate had an activity of at least 90 U / ml. Together with albumin, HFf accounts for more than 98% of the protein.
CS 273 467 BlCS 273 467 Bl
Příklad 2Example 2
Příprava standardu aktivátoru prekallikreinu v albuminuPreparation of precallikrein activator standard in albumin
Pro přípravu standardu aktivátoru prekallikreinu se použije komerční albumin, ze kterého se odstraní popřípadě přítomné inhibitory kallikrelnového systému vazbou na sorbent s afinitou ke glykoproteinům (například na sítované agarese s navázaným lektinem Concanavalinem A) a volný kallikrein postupem popsaným v přikladu 1, odst. a) pro separaci prekallikreinu. Sorbovaný albumin se eluuje pufrem o vysoké iontové síle postupem popsaným v příkladu 1, odst. b), stejným postupem se odstraní soli a roztok se zahustí ultrafiltrací. Koncentrát fragmentu Hagemanova faktoru se smísí s koncentrátem albuminu tak, aby výsledná koncentrace bílkoviny byla přibližně 5 % a aktivita fragmentu Hagemanova faktoru srovnatelná s mezinárodním standardem aktivátoru prekallikreinu (National Institute for Biological Standards and Control, London). Osmolalita roztoku se upraví na 300 mOs/kg přídavkem chloridu sodného.For the preparation of the precallikrein activator standard, commercial albumin is used to remove any kallikrillin system inhibitors present by binding to a glycoprotein affinity sorbent (e.g., Concanavalin lectin-linked sieve agaresis) and free kallikrein as described in Example 1 (a). for separating precallikrein. The sorbed albumin is eluted with the high ionic strength buffer as described in Example 1 (b), the salts are removed in the same manner and the solution is concentrated by ultrafiltration. The Hageman factor fragment concentrate is mixed with the albumin concentrate so that the final protein concentration is approximately 5% and the Hageman factor fragment activity is comparable to the International Precallikrein Activator Standard (National Institute for Biological Standards and Control, London). The osmolality of the solution is adjusted to 300 mOs / kg by addition of sodium chloride.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS623388A CS273467B1 (en) | 1988-09-20 | 1988-09-20 | Method of precallicreine's and hageman's factor's from blood plasma standard concentrates preparation |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CS623388A CS273467B1 (en) | 1988-09-20 | 1988-09-20 | Method of precallicreine's and hageman's factor's from blood plasma standard concentrates preparation |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CS623388A1 CS623388A1 (en) | 1990-07-12 |
| CS273467B1 true CS273467B1 (en) | 1991-03-12 |
Family
ID=5408893
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CS623388A CS273467B1 (en) | 1988-09-20 | 1988-09-20 | Method of precallicreine's and hageman's factor's from blood plasma standard concentrates preparation |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CS (1) | CS273467B1 (en) |
-
1988
- 1988-09-20 CS CS623388A patent/CS273467B1/en unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CS623388A1 (en) | 1990-07-12 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CA2220501C (en) | Novel factor ix purification methods | |
| JP3094167B2 (en) | Purification method of immune serum globulin | |
| CA2024667C (en) | Process for preparing a concentrate of blood coagulation factor viii-von willebrand factor complex from total plasma | |
| US6670455B1 (en) | Process for the preparation in pure form of the protease activating blood clotting VII, its proenzyme or a mixture of both proteins by means of affinity chromatography | |
| US5112949A (en) | Method of and apparatus for separating proteins | |
| US4138287A (en) | Purifying and isolating method for hepatitis virus to use in preparing vaccine | |
| SU1523046A3 (en) | Method of purifying human beta-interferon | |
| US5614500A (en) | Compositions containing highly purified factor IX proteins prepared by immunoaffinity chromatography | |
| US6746607B1 (en) | Use of an adsorbent gel for eliminating and purifying biomolecules | |
| US5055557A (en) | Ultrapurification of factor IX and other vitamin K-dependent proteins | |
| JP2573467B2 (en) | Pharmaceutical compositions suitable for therapeutic use containing factor IX protein | |
| US4065445A (en) | Pregnancy-specific β1 -glycoprotein and process for isolating it | |
| CS273467B1 (en) | Method of precallicreine's and hageman's factor's from blood plasma standard concentrates preparation | |
| SU513595A3 (en) | The method of selection orgoteina | |
| FI78303C (en) | Process for the separation of lipoproteins using derivatized polyhydroxymethylene | |
| JP2001323000A (en) | Separation and purification of fhs(follicule stimulating hormone) and lh (interstitial cell-stimulating hormone) | |
| CA1151542A (en) | Process for preparing the third component of the complement from human blood plasma | |
| RU2042358C1 (en) | Method of preparing factor ix concentrate | |
| JPS59167519A (en) | Removal of fibrinogen from mixed serum proteins with deactivated thrombin gel | |
| JPH01196295A (en) | Elimination of pyrogen from prourokinase | |
| AU781741B2 (en) | Process for the preparation in pure form of the protease activating blood clotting factor VII, its proenzyme or mixture of both proteins by means of ion-exchange chromatography | |
| AU759379B2 (en) | Novel factor IX purification methods | |
| JPS5810522A (en) | Purification of antithrombin 3 by deactivated thrombin gel | |
| Wickerhauser | A Simple Method For Preparation Of Nonthrombogenic Prothrombin Complex | |
| CS263615B1 (en) | A method of processing blood plasma at its fraction |