CZ200475A3 - Univerzální buněčný systém pro testování vstupu látek do jader - Google Patents

Univerzální buněčný systém pro testování vstupu látek do jader Download PDF

Info

Publication number
CZ200475A3
CZ200475A3 CZ200475A CZ200475A CZ200475A3 CZ 200475 A3 CZ200475 A3 CZ 200475A3 CZ 200475 A CZ200475 A CZ 200475A CZ 200475 A CZ200475 A CZ 200475A CZ 200475 A3 CZ200475 A3 CZ 200475A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
nls
egfp
sequence
testing
cell
Prior art date
Application number
CZ200475A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ295047B6 (cs
Inventor
Martin Bunček
Radovan Haluza
Šárka Mikolajská
Original Assignee
Generi Biotech S. R. O.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Generi Biotech S. R. O. filed Critical Generi Biotech S. R. O.
Priority to CZ200475A priority Critical patent/CZ200475A3/cs
Publication of CZ295047B6 publication Critical patent/CZ295047B6/cs
Publication of CZ200475A3 publication Critical patent/CZ200475A3/cs

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Univerzální buněčný systém pro testování vstupu látek do jader
Oblast techniky:
Toto řešení náleží do oblasti molekulární genetiky a genové terapie, klonování rekombinantních DNA molekul, vytvoření geneticky modifikovaných, stabilně transformovaných buněčných linií. Vynález je úzce spojen s použitím DNA expresního vektoru nesoucí reportérový fúzní protein, který umožňuje monitorovat transport látek přes jadernou membránu.
Dosavadní stav techniky:
GFP (Green fluorescent protein) je v molekulární biologii často užívaným markérem pro sledování pochodů v buňce, ke studiu genové exprese a lokalizace proteinů. Poprvé byl izolován z mořského živočicha, medúzy Aequorea victoria. Celý gen je tvořen 238 aminokyselinami. Je schopen tvořit fúzní proteiny jak na C-, tak i N- konci při současném zachování fluorescence.
GFP fluoreskuje díky chromoforu, který vzniká autokatalyticky cyklizací tří aminokyselin za přítomnosti molekulárního kyslíku. Nevyžaduje pro svou fluorescenci žádné další substráty nebo koíaktory (1). Proces intramolekulámí biosyntézy GFP chromoforu vyžaduje oxidaci O2 a vedlejším produktem této reakce je uvolnění molekul H2O2 ve stechiometrickém poměru 1:1 vztažené k počtu vzniklých molekul GFP s aktivním chromoforem (2) , viz Obr. 1. Generované kyslíkové radikály se stávají pro buňku toxickými s následnou indukcí apoptózy (3).
V současné době je známo několik typů mutant GFP, které se dělí do skupin podle typu jejich chromoforu, který je zodpovědný za fluorescenci. EGFP (enhanced GFP) je mutantní variantou divokého typu (wild-type) GFP, ve které došlo k substituci dvou aminokyselin, a to k záměně Phe za Leu v poloze 64 a Ser za Thr v poloze 65. EGFP má na rozdíl od divokého typu jiné spektrální vlastnosti, jasnější fluorescenci a výrazně se liší ve schopnosti fluorescence při 37°C. Zatímco divoký typ fluoreskuje při pokojové a teplotách
*-4—* nižších, EGFP má schopnost fluoreskovat při 37^C. Jinak jsou si mutanty strukturálně velice podobné (4).
Použití GFP nebo EGFP je předmětem mnoha řešení patentů. Příkladem může být patent US2002009712. Příkladem využití GFP fúzního proteinu, např. s Gas proteinem je patent
Z5Í^zVo03008435.
Nukleární lokalizační signál (NLS) je jedním z řady lokalizačních signálů, který řídí jaderný transport látek. Kromě mitózy, kdy je jaderná membrána rozpadlá, je transport látek řízen komplexem jaderných pórů NPC (nuclear póre complex), které jsou tvořeny asi sto různými proteiny, tzv. nukleoporiny. Ty jsou uspořádány do kruhu tak, že tvoří podobu basketbalového koše, kterým se NLS protein spolu s přenášeným substrátem přenese z cytoplazmy do jádra.
Proteiny do velikosti přibližně 40 kDa mohou do jádra procházet prostou difúzí. Proteiny o velikosti větší než 40 kDa vstupují do jádra^ zprostředkovaně, vyžadují energii a NLS.
Navzdory tomu oligonukleotidy o velikosti 10^25 bps (což odpovídá průměrně 6 kDa) mají limitující schopnost penetrace. Oligonukleotidy mají hydrofilní charakter a nepříliš snadno prostupují buněčnými membránami.
Mechanismus přenosu přes jadernou membránu je následující: NLS obsahuje vazebné místo pro ímportin a. V první fázi transportu se NLS váže k heterodimeru α,β importinu prostřednictvím zmiňovaného vazebného místa. ímportin β je zodpovědný za dopravu NLS spolu s importovaným substrátem k cytoplazmatickým fílamentům NPC. Ihned proběhne translokace systému na jadernou stranu NPC. Translokace je energeticky náročný proces, vyžaduje hydrolýzu GTP. Transnukleární proces je ukončen uvolněním importovaného substrátu v jádře a uvolněním heterodimeru importinu, který se v disociovaném stavu vrací zpět do cytoplazmy (5).
NLS se v molekulární biologii využívá ke studiu zprostředkovaného transportu nebo pasivní difúze látek, proteinů přes jaderný obal v eukaryotických buňkách. Využívá se fúzních proteinů NLS s např. GFP nebo EGFP, čímž se také zabývá patent WO9849325.
Ubiquitin je součástí proteolytického degradačního systému, který má význam v mnoha regulačních procesech buňky, jako jsou např. regulace buněčného cyklu, diferenciace, apoptóza. Nezanedbatelný význam má také. v regulaci transkripce a v onkogenezi.
« 3
Ubiquitinylace je jedním z hlavních nelysozomálních procesů odbourávání proteinů s kťátkým i dlouhým poločasem rozpadu v savčích buňkách. Specificky rozpoznává chybné, abnormální, nadbytečné nebo buňce cizí proteiny. Nejprve se substrát váže kovalentně k řetězci polyubiquitinu, následně 26S proteazom pomocí specifického signálu rozpoznává takto navázaný substrát a degraduje jej (6).
Ubiquitin je v praxi také využíván ke studiu aktivity proteazomu. K vyhodnocení aktivity na základě akumulace reportérového proteinu v živých buňkách slouží vektor kódující fúzní protein ubiquitin-GFP, čímž se zabývá patent/WÓ018lT277
Kromě ubiquitinu je známá PĚST sekvence (sekvence bohatá na prolin (P), glutámovou kyselinu (E), serin (S) a threonin (T)), která se podílí také na degradaci proteinů. Tato sekvence byla použita při zkonstruování vektoru obsahující fúzní protein s EGFP proto, aby ( se zvýšil obrat EGFP, jehož zvýšená exprese se stává pro buňku toxickou. Příkladem je patent kde je výše zmíněné předmětem řešení.
Podstata vynálezu:
Tento buněčný systém pro testování vstupu látek do jader je založen na konstrukci expresního vektoru kódující sekvenci pro fúzní protein ubiquitinu, EGFP a amplifikováného jaderného lokalizačního signálu (Ubi_EGFP_NLS). Dále, námi předkládané řešení je založeno na využití výše zmíněného expresního vektoru pro vytvoření stabilně transfekované buněčné linie produkující fúzní protein Ubi_EGFP_NLS.
EGFP je zde pro svou schopnost fluorescence využíván jako reportéra vý gen. EGFP si zachovává svou funkčnost i po spojení s cílovým proteinem jak na C-, tak i na N-konci. Tohoto faktu bylo využito při konstrukci fúzního proteinu s amplifiko vanou NLS sekvencí na C-konci EGFP. V tomto případě jaderný lokalizační signál (odvozen od SV40 T-large antigenu izolovaného z opičího viru) zabezpečí transport EGFP do jádra a zajistí tak zelenou jadernou fluorescenci za daných podmínek.
Jak bylo zmíněno v části Dosavadní stav techniky, jsou patentované vektory kódující fúzní protein GFP, příp. EGFP sNLS. Námi předkládaný návrh se odlišuje od výše citovaného patentu zejména tím, že ve vektorovém konstruktu je také začleněna sekvence ubiquitinu, jehož funkcí je zajistit zvýšenou degradaci EGFP a tím zabránit možnému toxickému působení na živé buňky a také uspořádáním amplifikované NLS sekvence.
Exprese EGFP je řízena silným eukaryontním CMV promotorem, který je zakódován ve vektoru pUF2. Při vysoké expresi EGFP se tento protein může stát pro buňku toxickým a ta na to reaguje spuštěním apoptické kaskády. Zvýšené množství EGFP proteinu je možné regulovat specifickým proteinem ubiquitinem, který se účastní proteolytických pochodů v buňce.
Fúzní protein ubiquitinu s EGFP zajistí degradaci fúzního proteinu a tedy i jeho rychlejší obrat, čímž se snižuje toxický vliv kyslíkových radikálů vznikajících při tvorbě EGFP aktivního chromoforu. V námi navrhovaném řešení je ubiquitin připojen k EGFP na jeho N-konci. Jedinečností tohoto návrhu je to, že oproti jiným patentům námi předkládaná sekvence kóduje „in frame“ nejen ubiquitin a EGFP, ale je také spojen s amplifíkovanou NLS sekvencí.
Fúzní protein ubiquitinu, EGFP a amplifované NLS sekvence zajistí na jedné straně lokalizaci EGFP v jádře a následně jeho zelenou fluorescenci, na druhé straně se zvýší celkový obrat EGFP a tím se sníží jeho možné toxické působení na buněčnou kulturu.
Jak již bylo zmíňeno, vektor kódující Ubi_EGFP_NLS je použit pro přípravu stabilní linie exprimující EGFP do jádra při současném zvýšeném obratu EGFP. Takto připravený buněčný testovací systém je vhodný pro testování a monitorování vstupu, transportu fluorescenčně značených látek různé chemické povahy do jader eukaryotických buněk.
Tento systém je vhodný pro testování vstupu nemodifikovaných i modifikovaných fluorescenčně značených oligonukleotidů do buněčných jader jako potenciálních genových terapeutik.
Vektorové konstrukty kódující EJbi_EGFP_NLS nejsou zatím předmětem žádného řešení patentů.
Příklad provedení vynálezu:
Základní kostru vektoru pUF2_Ubi_EGFP_NLS tvoří plazmid pUF2. Je tvořen 6252 bps, nese geny pro neomycinovou a ampicilinoyou rezistenci, CMV promotor. Do tohoto plazmidu je restriktázami Xbal a Notl vklonován „in frame“ gen kódující fúzní protein pro Ubi _EGFP_NLS.
Sekvence ubiquitinu byla namnožena pomocí PCR. Templátovou DNA byla lidská cDNA. Za použití DNA/RNA syntetizéru (ABI 394; Applied Biosystems, Foster City, USA) byly nasyntetizovány primery:
Ubi_sense: 5‘-CGG GAT CCC CGC GCC ATC ATG GAG ATC TTC GTG AAG ACC-3‘ Ubi_antisense: 5‘- GGA ATT CGG TAC CGC GCA GAC GCA GCA CCA GGT GCA AGG-3‘
Primer Ubi_sense je navržen tak, že kóduje restrikční místo pro BamHI a Bglll, primer obsahuje také ATG kodon s Kozákovou sekvencí. Primer Ubi_antisense kóduje restrikční místo pro KpnI a EcoRI.
Namnožená DNA byla štěpena enzymy KpnI a BamHI a vligována T4 DNA ligázou do vektoru pUC131 štěpeného týmiž restrikčními enzymy, viz Obr. 2. Takto připravený rekombinantní plazmid pUC131_Ubi byl namnožen v bakteriální kultuře E. coli, poté byla izolována plazmidová DNA (QIAGEN kit). Insert byl ověřen restrikcí a sekvenací.
Sekvence ubiquitinu o velikosti 242 bps byla dále překlonována restriktázami BamHI a Ncol do vektoru pEGFP (Clontech) štěpeného stejnými enzymy, viz Obr. 3.
Velikost plazmidu pEGFP je 3355 bps. Úsek od 289 do 1008 bps kóduje gen pro EGFP. EGFP z vektoru pEGFP je modifikovanou variantou wild-typu GFP a vyznačuje se jasnější fluorescencí s excitačním maximem 488 nm a emisním maximem 507 nm.
Do vzniklého rekombinantního vektoru pUbi_EGFP byla vklonována amplifíkovaná NLS sekvence, viz Obr. 4. Tato sekvence o velikosti 84 bps je složena ze 4 dílčích oligonukleotidů označených NLS 1-4, přičemž oligonukleotidy NLS1 a NLS2 tvoří řetězec ve směru 5'-3', oligonukleotidy NLS3 a NLS4 tvoří k tomu řetězec komplementární ve směru 3'-5'.
Za použití DNA/RNA syntetizéru (ABI 394) byly nasyntetizovány na 5’konci fosforylované oligonukleotidy NLS 1-4 o následující sekvenci:
NLS 1: 5‘-GTA CAT AGA TCC AAA AAA GAA GAG AAA GGT AGA TCC AAA AAA GAA GAG AAA GGT AGA-3 ‘
NLS 2: 5‘-TCC AAA AAA GAA GAG AAA GGT ATA AGC-3‘
NLS 3: 5‘-TTT TGG ATC TAC CTT TCT CTT CTT TTT TGG ATC TAT-3‘
NLS 4: 5‘-GGC CGC TTA TAC CTT TCT CTT CTT TTT TGG ATC TAC CTT TCT CTT CTT -3‘
Tyto sekvence jsou navrženy tak, že po příslušné hybridizaci vzájemně komplementárních úseků (NLS 1 a 3; NLS 2 a 4) vytvářejí na obou koncích konce kohezivní pro restrikční enzymy BsrGI (5 ‘ -konec) a Nati (3 ’ -konec).
- 6 ~
NLS 1 a 2 po spojení enzymem T4 DNA ligázou tvoří řetězec 5‘-3‘, kdežto oligonukleotidy NLS 3 a 4 tvoří k tomu řetězec komplementární ve směru 3‘-5‘.
Tato navržená amplifikovaná NLS sekvence kóduje tři po sobě jdoucí opakování motivu GAT CCA AAA AAG AAG AGA AAG GTA. Sekvence kóduje také stop kodon TAG.
Protokol skládání umělého genu:
1. Ve zkumavce A smíchat 200 pmolů oligonukleotidů NLS1 a NLS3.
2. Ve zkumavce B smíchat 200 pmolů oligonukleotidů NLS2 a NLS4.
3. Inkubovat 2 min při 80 °C.
4. Poté inkubovat 30 min při pokojové teplotě.
5. Smíchat obsah zkumavky A s obsahem zkumavky B a inkubovat 5 min při 40 °C.
6. Poté inkubovat 20 min při pokojové teplotě.
7. Ligace hybridizovaných oligonukleotidů T4 DNA ligázou (New England Biolabs) 1 hod. při 16°C.
Produkt byl izolován pomocí gelové elektroforézy.
Vlastní klonování pak zahrnuje štěpení pUbi_EGFP restriktázami BsrGI a Notl a do takto připraveného plazmidu byla vklonována sekvence NLS s navrženými lepivými konci pro oba zmiňované enzymy. Vzniklý plazmid pUbi_EGFP_NLS o velikosti 3645 bps byl transformován do E. coli, namnožen pod selekčním tlakem ampicilinového antibiotika. Jednotlivé klony byly izolovány a plazmidy s inserty ověřeny restrikcí.
Z pUbi_EGFP_NLS byla vyštěpena enzymy Xbal a Notl kazeta kódující fúzní protein Ubi_EGFP_NLS o délce 1043 bps a vložena do cílového vektoru pUF2 naštěpeného týmiž enzymy, viz Obr. 5. Insert byl po namnožení v E. coli opět izolován a ověřen restrikcí.
Tato kazeta Ubi_EGFP_NLS může být vklonováná do jakéhokoli vektoru vhodnými restrikčními enzymy. Příkladem může být klonování kazety vyštěpené z vektoru pUbi_EGFP_NLS enzymy Sáli, Notl do plazmidu pLNCX2 štěpeného Xhol, Notl, přičemž SaU a Xhol mají navzájem kompatibilní kohezivní konce.
Vektor pUF2_Ubi_EGFP_NLS byl testován v eukaryotické buněčné linii Hep2 (human larynx carcinoma cells). Buňky byly kultivovány v DMEM lx high glucose ( L-glutamin 584 mg/1, pyruvát sodný 110 mg/1) médiu (PAA Laboratories) obsahující 10% FCS (PAA Laboratories), 50 pg/ml gentamycinu (PAA Laboratories). Buňky byly kultivovány v inkubátoru při 37 °C, 5% CO2.
6^
Den před transfekcí byly buňky rozesety v hustotě 4x104 na 24 jamkovou destičku. 0,4 pg plazmidu pUF2_Ubi_EGFP_NLS bylo transfekováno pomocí Effectene Transfection Reagent (QIAGEN). 24 hodin po transfekci byly pozitivně transfekované buňky detekovány fluorescenční mikroskopií (Nikon Eclipse TE300) s použitím B-2A filtr bloku (Nikon, ex 450-490 nm, DM 505 nm, BA 520 nm). 24 hodin po transfekci byla buněčná linie podrobena selekčnímu tlaku antibiotika G418 (PAA Laboratories) o koncentraci 400 pg/ml média po dobu 20 dnů. Klony exprimující EGFP byly dále izolovány pomocí klonovacích disků (Sigma).
Přehled obrazové dokumentace:
Obr. 1: Reakční mechanismus vzniku aktivního chromoforu GFP/EGFP, převzato z: Tsien R.Y.: The green fluorescent protein, Annu. Rev. Biochem., 67, 509-44, 1998
Obr. 2: Klonovací schéma pUC131_Ubi
Obr. 3: Klonovací schéma pUbi_EGFP
Obr. 4: Klonovací schéma pUbi_EGFP_NLS
Obr. 5: Klonovací schéma pUF2_ Ubi_EGFP_NLS
Použité zkratky v textu a obrázcích:
ampR ampicilinová rezistence
BGHpA bovine growth hormone polyadenilační signál
bps base pairs, páry baží
cut označení štěpeného plazmidu restrikčním enzymem
EGFP enhancovaný zeleně fluoreskující protein
GFP zeleně fluoreskující protein
GTP guanozintrifosfát
LacZ gen pro β-galaktosidázu
1ITR left inverted terminál repeat
neoR neomycinová rezistence
NLS jaderný lokalizační signál
pCMV promotor odvozený od cytomegaloviru
pLac laktózový promotor
POenh polyoma enhancer
pTK thimidin kinázový promotor
pUC ori pUC plazmid replikační počátek
rITR right inverted terminál repeat
SD/SA intron splice donor/splice akceptor místo
SV40pA polyadenilační signál
Ubi ubiquitin
”8 ~~
Průmyslová využitelnost:
Tento buněčný testovací systém lze využít pro testování a monitorování vstupu, transportu fluorescenčně značených látek různé chemické povahy do jader eukaryotických buněk.
Tento systém je vhodný pro testování vstupu nemodifikovaných i modifikovaných fluorescenčně značených oligonukleotidů do buněčných jader jako potenciálních genových terapeutik.
Reference:
(1) Dopf J., Horiagon T.M.: Deletion mapping of the Aequorea victoria green fluorescent protein, Gene, 173, 39-44, 1996 (2) Tsien R.Y.: The green fluorescent protein, Annu. Rev. Biochem., 67, 509-44,1998 (3) Hsiao-Sheng L., Ming-Shiou J. et al.: Is green fluorescent protein toxic to the living cells?, Biochem. and Biophys. Res. Communications, 260, 712-717, 1999 (4) Zimmer M.: Green fluorescent protein (GFP): Applications, structure, and related photophysical behavior, Chem. Rev., 102, 759-781, 2002 (5) Escriou V., Carriere M. et al.: NLS bioconjugates for targeting therapeutic genes to the nucleus, Advanced Drug Delivery Reviews, 55, 295-306, 2003 (6) Attaix D., Combaret L. et al.: Reguiation of proteolysis, Current Op. In clin.nutrition and metabolic care, 4, 45-49, 2001

Claims (7)

  1. Patentové nároky:
    1. Fúzní protein Ubi_EGFP_NLS o sekvenci aminokyselin /
    NH2-MEIFVKTLTGKTITLEVEPSDTIENVKAKIQDKEGIPPDQQRLIFAGKQLED GRTLSDYN1QKESTLHLVLRLRGT$$$MVSKGEELFTGVVPILVELDGDVNGH KFSVSGEGEGDATYGKLTLKFICTTGKLPVPWPTLVTTLTYGVQCFSRYPDHM KQHDFFKSAMPEGYVQERTJFFKDDGNYKTRAEVKFEGDTLVNRIELKGIDFK EDGNILGHKLEYNYNSHNVYIMADKQKNGIKVNFKIRHNIEDGSVQLADHYQ QNTPIGDGPVLLPDNHYLSTQSALSKDPNEKRDHMVLLEFVTAAG1TLGMDEL YI$$$DPKKKRKVDPKKKRKVDPKKKRKV -COOH, kdy $ je jakákoliv aminokyselina.
  2. 2. Oligonukleotidy NLS1 až NLS4 o sekvenci NLS 1: 5‘-GTACATAGATC CAAAAAAGAAGAGAAAGGTAGATCCAAAAAAG AAGAGAAAGGTAGA-3 4;
    NLS 2: 5‘-TCCAAAAAAGAAGAGAAAGGTATAAGC-3‘; NLS 3: 5‘-TTTT GGATCTACCTTTCTCTTCTTTTTTGGATCTAT-34; NLS 4: 5‘-GGCCGCTTA TACCTTTCTCTTCTTTTTTGGATCTACCTTTCTCTTCTT-34 použité pro fúzi amplifikované sekvence NLS na C-konec EGFP
  3. 3. Plasmid nebo virový DNA či RNA vektor obsahující sekvenci kódující polypeptid podle nároku 1.
  4. 4. Prokaryontní hostitelská buňka transformovaná vektorem podle nároku 3.
  5. 5. Eukaryotní hostitelská buňka, do které byl vnesený transfekci či jiným způsobem)^ vektor podle nároku 3.
  6. 6. Použití plasmidu nebo virového DNA či RNA vektoru podle nároku 3 a/nebo buněk podle nároku 5 pro testování a monitorování vstupu a/nebo transportu fluorescenčně značených syntetických molekul různé chemické povahy do jader eukaryotických buněk.
  7. 7. Použití plasmidu nebo virového DNA či RNA vektoru podle nároku 3 a/nebo buněk podle nároku 5 pro testování a monitorování vstupu a/nebo transportu fluorescenčně značených syntetických molekul různé chemické povahy do jader eukaryotických buněk, kdy syntetickou molekulou je oligonukleotid nebo jiná molekula schopná vazby na strukturu DNA.
CZ200475A 2004-01-15 2004-01-15 Univerzální buněčný systém pro testování vstupu látek do jader CZ200475A3 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ200475A CZ200475A3 (cs) 2004-01-15 2004-01-15 Univerzální buněčný systém pro testování vstupu látek do jader

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ200475A CZ200475A3 (cs) 2004-01-15 2004-01-15 Univerzální buněčný systém pro testování vstupu látek do jader

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ295047B6 CZ295047B6 (cs) 2005-05-18
CZ200475A3 true CZ200475A3 (cs) 2005-05-18

Family

ID=34529463

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ200475A CZ200475A3 (cs) 2004-01-15 2004-01-15 Univerzální buněčný systém pro testování vstupu látek do jader

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ200475A3 (cs)

Also Published As

Publication number Publication date
CZ295047B6 (cs) 2005-05-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7820434B2 (ja) アルブミン遺伝子座からの導入遺伝子発現のための組成物及び方法
US20250115905A1 (en) Methods of Rescuing Stop Codons via Genetic Reassignment with ACE-tRNA
US9388425B2 (en) Tunable genetic switch for regulating gene expression
US12534711B2 (en) Destabilising domains for conditionally stabilising a protein
BR112020005323A2 (pt) polinucleotídeos, composições e métodos para edição de genoma
JP2025028917A (ja) 核酸構築物及び使用方法
KR20200093635A (ko) 변형된 폐쇄된 말단 dna (cedna)를 사용한 유전자 편집
KR20160122125A (ko) 바이러스 벡터 생산 시스템
JP2009232862A (ja) 治療および診断に使用する新規な特性をもたらしおよび/または該特性を現す組成物
JP2008200041A (ja) モジュラートランスフェクション系
US20240200104A1 (en) Ltr transposon compositions and methods
KR102915369B1 (ko) X-연관 연소 망막층간분리 치료법을 위한 crispr 및 aav 전략
KR20210151785A (ko) 비바이러스성 dna 벡터 및 fviii 치료제 발현을 위한 이의 용도
KR20230003478A (ko) 비-바이러스성 dna 벡터 및 고셰 치료제 발현을 위한 이의 용도
EP1470224B1 (en) Molecular libraries
Cohen et al. Functional expression of rat GLUT 1 glucose transporter in Dictyostelium discoideum
CN118632622A (zh) 突变型肌纤蛋白疾病模型及其用途
CZ200475A3 (cs) Univerzální buněčný systém pro testování vstupu látek do jader
CN114729021B (zh) 能破坏细胞的氨基酸序列及相关核苷酸序列和相关的应用
CN105968211B (zh) 一种重组抗病毒蛋白及其制备方法和应用
RU2833486C1 (ru) Стратегии crispr и aav для терапии х-сцепленного ювенильного ретиношизиса
RU2811724C2 (ru) РЕДАКТИРОВАНИЕ ГЕНОВ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ МОДИФИЦИРОВАННОЙ ДНК С ЗАМКНУТЫМИ КОНЦАМИ (зкДНК)
JP2023150865A (ja) 新規ポリペプチド及びその利用
AU2024338976A1 (en) Transgenic mitochondrial delivery system
WO2020020471A1 (en) Ascl2-responsive reporters for labeling of intestinal stem cell activity

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20130115