CZ2013345A3 - Specifické genové sekvence jednotlivých oligo-prób pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray - Google Patents

Specifické genové sekvence jednotlivých oligo-prób pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray Download PDF

Info

Publication number
CZ2013345A3
CZ2013345A3 CZ2013-345A CZ2013345A CZ2013345A3 CZ 2013345 A3 CZ2013345 A3 CZ 2013345A3 CZ 2013345 A CZ2013345 A CZ 2013345A CZ 2013345 A3 CZ2013345 A3 CZ 2013345A3
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
bydv
wdv
baymv
bsmv
wsmv
Prior art date
Application number
CZ2013-345A
Other languages
English (en)
Inventor
Jana Jarošová
Tomáš Dráb
Eva Svobodová
Jiban Kumar
Original Assignee
Výzkumný ústav rostlinné výroby, v. v. i.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Výzkumný ústav rostlinné výroby, v. v. i. filed Critical Výzkumný ústav rostlinné výroby, v. v. i.
Priority to CZ2013-345A priority Critical patent/CZ2013345A3/cs
Publication of CZ2013345A3 publication Critical patent/CZ2013345A3/cs

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Řešení popisuje oligonukleotidové sondy, které mají specifické genové sekvence a lze je použít pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray.

Description

Specifické genové sekvence jednotlivých oligo-prób pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray
Oblast techniky
Řešení popisuje specifické genové sekvence určené pro diagnostiku virů obilnin a trav pomocí techniky Microarray čip, kdy dochází k hybridizaci nukleových kyselin (RNA/DNA) virových patogenů na specifické sondy připevněné na čip. Během jedné reakce je tedy možno zjistit přítomnost více virů najednou, včetně detekce na úrovni jejich kmenů.
Dosavadní stav techniky
Virózy rostlin jsou doposud neléčitelné a zejména u hospodářsky důležitých plodin, jakými obilniny jsou, dokážou způsobit obrovské ztráty na výnosech. Umělé rozšíření druhů Poaceae v ekosystémech, často ve velmi rozsáhlých oblastech, společně s rychlými změnami kultivačních metod, neodvratně přineslo proměny rovnováhy rostlina/patogenní organismus. Poaceae tak hostí mnoho patogenních organismů včetně více jak 100 druhů virů (Lapierre a Signoret, 2004). Téměř 20 % veškerých známých rostlinných virů je schopno napadat Poaceae (Brunt et al., 1996).
Do současnosti bylo vyvinuto a je každodenně využíváno mnoho metod (elektronová mikroskopie, ELISA, PCR, RT-PCR, TaqMan, reverse PAGE, hybridizace nukleových kyselin, metagenomické přístupy, biologické testy, (Boonham et al., 2003). Běžné metody nacházející uplatnění v rutinní diagnostice zahrnují různé variace polymerázové řetězové reakce (PCR), sérologických eseji jako enzyme linked immunosorbent assay ELISA, a dále imufluorescenční testy na protilátky (Melcher et al., 2008; Menzel et al., 2002; Webster et al., 2004). Tyto techniky, ať už založené na nukleových kyselinách nebo na bílkovinách, mají svá omezení, přičemž největším je nutnost presumpce znalosti identity viru ve vzorku, a tudíž neschopnost detekovat viry nové, neznámé, nebo u daného vzorku nepředpokládané (Grover et al., 2010). Rutinně se tedy v ČR i celosvětově obecně testuje pouze na několik nejdůležitějších a nejběžněji se vyskytujících virů, což nebývá zcela přesné.
Podstata vynálezu
Uvedené nedostatky odstraňují specifické genové sekvence jednotlivých oligo-prób pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray, podle vynálezu, jehož podstata spočívá vtom, že diagnostika virů obilnin je prováděna sondami o následujících sekvencích
Sonda Virus Sekvence
BaYMV-1 BaYMV TO ACAACTG ATG AGGCATGGATCGAT GCCCTCA
BaYMV-2 BaYMV ACAAGCATGCTGAGAATCAAGTAATGCAAA
BaYMV- 1rc BaYMV TGAGGGCATCGATCCATGCCTCATCAGTTGTGA
BaYMV- 2rc BaYMV TTTGCATTACTTGATTCTCAGCATGCTTGT
BSMV-3 BSMV GGCATGGATGTTGTGAAGAAATTCGCCGT CAT GT CAGT
BSMV-4 BSMV ATCTTTGGTGAAACGGTTGCTACAGGAACAACCC C
BSMV- 3rc BSMV ACTG ACATG ACGGCGAATTTCTT CACAACAT CCA TGCC
BSMV- 4rc BSMV GGGGTTGTTCCTGTAGCAACCG I I ICACCAAAGA T
BYDVspc-1 BYDV GAGCAGGCGCTTAAGTGGGAACACGGGA
BYDVspc-2 BYDV GTGAATGAATTCAGTAGGCCGTAG
BYDV-1 BYDV AAGTCCTACCACCGTTACAAGATCACAA
BYDVspc-3 BYDV CTGGGAATCATTCGGAGTTGACCCT
BYDV-2 BYDV TCTTACGGTAAGTGCCCAACT CCA
BYDVspc-1rc BYDV TCCCGTGTTCCC ACTTAAGCGCCT GCTC
BYDVspc-2rc BYDV CTACGGCCTACTGAATTCATTCAC
BYDV-1rc BYDV TTGTGATCTTGTAACGGTGGTAGGACTT
BYDVspc-3rc BYDV AGGGTCAACTCCGAATGATTCCCAG
BYDV-2rc BYDV TGGAGTTGGGCACTTACCGTAAGA
CoSV-1 CoSV AAGATAACRTGTGGAGCTTGTCAAGATCAG
CoSV-1rc CoSV CTGATCTTGACAAGCTCCACAYGTTAT CTT
LLV-1 LLV ATCGACCTYTTCTGCCAGTTCCACCCTAGYGTGG A
LLV-1rc LLV TCCACRCTAGGGTGGAACTGGCAGAARAGGTCG AT
MDMV-1 MDMV GGGCTGARTTYGATAGATGGTATGARGCAGTRC AGAA
MDMV-3 MDMV AACTTTCTTACACTGTGGCACGCGACATGAGAAC AACCAATTCA
MDMV- MDMV TTCTGYACTGCYTCATACCATCTATCRAAYTCAG
1rc CCC
MDMV- 3rc MDMV TGAATTGGTTGTTCTCATGTCGCGT GCCACAGT G TAAGAAAGTT
SBWMV- 1 SBWMV AAATGACGGTTTGGGTCGAARTAT GA
SBWMV- 2 SBWMV AGTTGACGGGAYGGCGTCTCGGR
SBWMV- 1rc SBWMV TCATAYTTCGACCCAAACCGT CATTT
SBWMV- 2rc SBWMV YCCGAGACGCCRTCCCGTCAACT
SCSMV-1 SCSMV AGTGGGTTCAGTTCTCGGTTCGTAGCGGGAAAC CCATAATACC
SCSMV- 1rc SCSMV GGTATTATGGG I I ICCCGCTACGAACCGAGAACT GAACCCACT
SpMV-1 SpMV GTCTATGTGACTTCCATCCGTAGTGTGG I I I CCA CGAAG
SpMV-1rc SpMV CTTCGTGGAAACCACACTACGGATGGAAGTCAC ATAGAC
WDV-1 WDV GCATTGGGATTGGTGATGGAAGCACGAAGCTT G T
WDV-2 WDV GCAGATGTGGTGATCCATCTTCGTGG
WDV-1 rc WDV ACAAGCTTCGTGCTTCCATCACCAATCCCAAT GC
WDV-2rc WDV CCACG AAGATGGATCACCACAT CTGC
WDV-3 WDV AGATGTTCAI I I I ICCAGCTTTCAAT GGT CT CAT G
WDV-3rc WDV CATG AGACCATTG AAAGCTGG AAAAAT G AAC AT C T
WSMV-1 WSMV GCGAAGCCATCACTTCGAGCCATT
WSMV-2 WSMV GGAGCTCGAGTGATGATCGAGGAGAGTGTTC
WSMV- 1rc WSMV AATGGCTCGAAGTGATGGCTTCGC
WSMV- 2rc WSMV G AACACTCTCCTCG ATCATCACT CG AGCT CC
Proběhne hybridizace a následně čtečka k tomu určená přečte intenzitu signálu a tím určí přítomnost viru.
Specifické genové sekvence podle vynálezu umožňují simultánní stanovení jedenácti obilných virů, což má obrovský význam při šlechtění a pěstování obilnin. Takto rozsáhlých výsledků nebylo dosud dosahováno, protože nově uváděné sondy je možné použít současně, na jednom čipu a tudíž otestovat vzorek na mnoho virů obilnin najednou, což podstatně zrychluje a zpřesňuje celé stanovení nežádoucích virů.
Následující příklad provedení vynález pouze dokládá, aniž by jej jakkoliv omezoval.
Příklady provedení
Příklad 1
Vyhodnocení zdravotního stavu šlechtitelského materiálu určeného pro experimentální hodnocení rezistence vůči jednomu viru v polních podmínkách.
Pro analýzu zdravotního stavu pokusného pozemku šlechtitelských linií ozimého ječmene šlechtěných na rezistenci vůči závažnému viru žluté zakrslosti ječmene na pozemku přihlašovatele, kterým je Výzkumný ústav rostlinné výroby, v.v.i., Praha, CZ, jsou v listopadu z pokusných pozemků odebrány vzorky listů ječmene z jednotlivých testovaných variant. RNA se izoluje z rostlin pomocí Spectrum Plant Total RNA kitu (Sigma) dle manuálu výrobce. V dalším kroku se RNA přepíše pomocí M-MLV reversní transriptázy do cDNA za použití aminoally-dUTP. V dalším kroku se dosyntetizuje druhé vlákno cDNA pomocí Klenowova fragmentu. Připravená dvouvlákenná cDNA se izoluje pomocí PureLink PCR Purification Kitu (Invitrogen) a následně přečistí a zakoncentruje pomocí etanolové precipitace.
Takto získaná cDNA se smíchá s barvou (např. Alexa Fluoro 647 Carboxylic Acid), obarvená cDNA se rozpustí v 8 μΙ Η2Ο a efektivita navázání barvy se ověří pomocí spektroskopu (např. Nanodrop 2000 (ThermoScience)).
Vzniklá směs je nanesena na sklo obsahující specifické sondy určené k detekci jednotlivých virů. Seznam sond a jejich sekvence jsou uvedeny v následující tabulce:
Sonda Virus Sekvence
BaYMV-1 BaYMV TCACAACTGATGAGGCATGGATCGATGCCCTCA
BaYMV-2 BaYMV ACAAGCATGCTGAGAATCAAGTAATGCAAA
BaYMV- 1rc BaYMV TGAGGGCATCGATCCATGCCTCATCAGTT GT GA
BaYMV- 2rc BaYMV TTTGCATTACTTGATTCTCAGCATGCTT GT
BSMV-3 BSMV GGCATGGATGTTGTGAAGAAATTCGCCGTCATGT CAGT
BSMV-4 BSMV ATCTTTGGTGAAACGGTTGCTACAGGAACAACCC C
BSMV- 3rc BSMV ACTGACATGACGGCGAATTTCTTCACAACATCCA TGCC
BSMV- 4rc BSMV GGGGTTGTTCCTGTAGCAACCGTTTCACCAAAGA T
BYDVspc-1 BYDV GAGCAGGCGCTTAAGTGGGAACACGGGA
BYDVspc-2 BYDV GTGAATGAATTCAGTAGGCCGTAG
BYDV-1 BYDV AAGTCCTACCACCGTTACAAGAT CACAA
BYDVspc-3 BYDV CTGGGAATCATTCGGAGTTGACCCT
BYDV-2 BYDV TCTTACGGTAAGTGCCCAACT CCA
BYDVspc-1rc BYDV TCCCGTGTTCCCACTTAAGCGCCTGCTC
BYDVspc-2rc BYDV CTACGGCCTACTGAATTCATTCAC
BYDV-1rc BYDV TTGTGATCTTGTAACGGTGGTAGGACTT
BYDVspc-3rc BYDV AGGGTCAACTCCGAATGATTCCCAG
BYDV-2rc BYDV TGGAGTTGGGCACTTACCGTAAGA
CoSV-1 CoSV AAGATAACRTGTGGAGCTTGTCAAGATCAG
CoSV-1rc CoSV CTGATCTTGACAAGCTCCACAYGTTATCTT
LLV-1 LLV ATCGACCTYTTCTGCCAGTTCCACCCTAGYGTGG A
LLV-1rc LLV TCCACRCTAGGGTGGAACTGGCAGAARAGGTCG AT
MDMV-1 MDMV GGGCTGARTTYGATAGATGGTATGARGCAGTRC
AGAA
MDMV-3 MDMV AACTTTCTTACACTGTGGCACGCGACATGAGAAC AACCAATTCA
MDMV- 1rc MDMV TTCTG YACTGC YTCATACC ATCT ATCRAAYT C AG CCC
MDMV- 3rc MDMV TGAATTGGTTGTTCTCATGTCGCGTGCCACAGTG TAAGAAAGTT
SBWMV- 1 SBWMV AAATGACGGTTTGGGTCGAARTATGA
SBWMV- 2 SBWMV AGTTGACGGGAYGGCGTCTCGGR
SBWMV- 1rc SBWMV TCATAYTTCGACCCAAACCGTCAI I I
SBWMV- 2rc SBWMV YCCGAGACGCCRTCCCGTCAACT
SCSMV-1 SCSMV AGTGGGTTCAGTTCTCGGTTCGTAGCGGGAAAC CCATAATACC
SCSMV- 1rc SCSMV GGTATTATGGGTTTCCCGCTACGAACCGAGAACT GAACCCACT
SpMV-1 SpMV GTCTATGTGACTTCCATCCGTAGTGTGGTTTCCA CGAAG
SpMV-1rc SpMV CTTCGTGG AAACC ACACTACGG AT GG AAGT CAC ATAGAC
WDV-1 WDV GCATTGGGATTGGTGATGGAAGCACGAAGCTT G T
WDV-2 WDV GCAGATGTGGTGATCCATCTTCGTGG
WDV-1rc WDV ACAAGCTTCGTGCTTCCATC ACCAAT CCCAAT GC
WDV-2rc WDV CCACG AAGATGGATCAČCACAT CTGC
WDV-3 WDV-univ AG ATGTTC ATTTTTCCAGCTTTCAAT GGT CT CAT G
WDV-3rc WDV-univ CATGAGACCATTGAAAGCTGGAAAAAT GAACAT C T
WSMV-1 WSMV GCGAAGCCATCACTTCGAGCCATT
WSMV-2 WSMV GG AGCTCG AGTGATG ATCG AGGAG AGT GTT C
WSMV- 1rc WSMV AATGGCTCGAAGTGATGGCTTCGC
WSMV- 2rc WSMV GAACACTCTCCTCGATCATCACTCGAGCTCC
Výsledky hybridizace jsou analyzovány v čtečce k tomu určené. Z pokusu jsou následně odstraněny veškeré rostliny, v nichž byl detekován virus jiný než testovaný.
Takto lze testovat jak materiál na šlechtitelských stanicích, tak rostliny z polních odběrů nebo laboratorní izoláty. Protože infekci viry nelze nijak léčit, je jedinou ochranou proti virovým chorobám obilnin používat rezistentní odrůdy.
Průmyslová využitelnost
Microarray čipy se specifickými genovými sekvencemi určenými pro diagnostiku virů obilnin je možno dodávat laboratořím zabývajícím se detekcí rostlinných patogenů jako detekční kit k okamžitému použití (ready - to use), kdy uživateli postačí pouze připravit svůj vzorek testované RNA a provést reakci dle přesně stanovených podmínek. Lze tak hned v počátku odhalit nemocné rostliny a zabránit epidemickým výskytům.
Použitá literatura
Boonham N., Walsh K., Smith P., Madagan K., Graham I., Barker I. 2003. Detection of potato viruses using microarray technology: towards a generic method for plant viral disease diagnosis. J. Virol. Methods 108, 181187.
Brunt A.A., Crabtree K., Dallwitz M.J., Gibb A.J., Watson L. a Zurcher E.J. 1996. Plant viruses online: descriptions and lists from the VIDE Database, Version 20.
Clark M.F., Adams A.N. 1977. Characteristic of the microplate method of enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of plant virus. Journal of General Virology, 34: 51-857.
Grover V., Piercea M. L., Hoyta P., Zhanga F., Melcher U. 2010. Oligonucleotide-based microarray for detection of plant viruses employing sequence-independent amplification of targets. J. Virol. Methods, 163: 57-67.
Lapierre H., Signoret P.A. (Ed): Viruses and virus diseases of Poaceae (Gramineae). INRA edition, Paris, France, pp 453- 455.
Melcher U., Muthukumar V., Wiley G.B., Min B.E., Palmer M. W., Verchot-Lubicz J., Nelson R.S., Roe B.A., Ali A., Thapa V., Pierce M.L. 2008. Evidence for novel viruses by analysis of nucleic acids in virus-like particle fractions from Ambrosia psilostachya. J. Virol. Methods 152: 49-55.
Menzel, W„ Jelkmann, W. and Maiss, E„ 2002. Detection of four apple viruses by multiplex RT-PCR assays with coamplification of plant mRNA as internal control. J. Virol. Methods 99, 81-92.
Webster C.G., Wylie S.J. a Jones M.G.K. 2004. Diagnosis of plant viral pathogens. Curr. Sci. 86, 1604-1607.

Claims (1)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. Specifické genové sekvence jednotlivých oligo-prób pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray, vyznačující se tím, že diagnostika virů obilnin je prováděna sondami o následujících sekvencích
    Sonda Virus Sekvence BaYMV-1 BaYMV TCACAACTGATGAGGCATGGATCGATGCCCTCA BaYMV-2 BaYMV ACAAGCATGCTGAGAATCAAGTAATGCAAA BaYMV-1rc BaYMV TGAGGGCATCGATCCATGCCTCAT CAGTT GT GA BaYMV-2rc BaYMV TTTGCATTACTTGATTCTCAGCATGCTT GT BSMV-3 BSMV GGCATGGATGTTGTGAAGAAATTCGCCGTCATG TCAGT BSMV-4 BSMV ATCTTTGGTGAAACGGTTGCTACAGGAACAACC CC BSMV-3rc BSMV ACTGACATGACGGCGAAI I ICÍTCACAACATCC ATGCC BSMV-4rc BSMV GGGGTTGTTCCTGTAGCAACCGTTT CACCAAAG AT BYDV-spc-1 BYDV GAGCAGGCGCTTAAGTGGGAACACGGGA BYDV-spc-2 BYDV GTG AATG AATTCAGTAGGCCGT AG BYDV-1 BYDV AAGTCCTACCACCGTTACAAGATCACAA BYDV-spc-3 BYDV CTGGGAATCATTCGGAGTTGACCCT BYDV-2 BYDV TCTTACGGTAAGTGCCCAACT CCA BYDV-spc1rc BYDV TCCCGTGTTCCCACTTAAGCGCCTGCT C
    BYDV-spc2rc BYDV CTACGGCCTACTGAATTCATTCAC BYDV-1rc BYDV TTGTGATCTTGTAACGGTGGTAGGACTT BYDV-spc3rc BYDV AGGGTCAÁCTCCGAAT GATT cccag BYDV-2rc BYDV TGGAGTTGGGCACTTACCGTAAGA CoSV-1 CoSV AAGATAACRTGTGGAGCTTGTCAAGATCAG CoSV-1rc CoSV CTGATCTTGACAAGCTCCACAYGTTATCTT LLV-1 LLV ATCGACCTYTTCTGCCAGTTCCACCCTAGYGTG GA LLV-1rc LLV TCCACRCTAGGGTGGAACTGGCAGAARAGGTC GAT MDMV-1 MDMV GGGCTGARTTYGATAGATGGTATGARGCAGTRC AGAA MDMV-3 MDMV AACTTTCTTACACTGTGGCACGCGACAT GAGAA CAACCAATTCA MDMV-1rc MDMV TTCTGYACTGCYTCATACCATCTATCRAAYTCAG CCC MDMV-3rc MDMV TGAATTGGTTGTTCTCATGTCGCGTGCCACAGT GTAAGAAAGTT SBWMV-1 SBWM V AAATGACGGTTTGGGTCGAARTAT GA SBWMV-2 SBWM V AGTTGACGGGAYGGCGTCTCGGR SBWMV-1 rc SBWM V TCATAYTTCGACCCAAACCGTCAl I l
    SBWMV-2rc SBWM V YCCGAGACGCCRTCCCGTCAACT SCSMV-1 SCSM V AGTGGGTTCAGTTCTCGGTTCGTAGCGGGAAA CCCATAATACC SCSMV-1rc SCSM V GGTATTATGGGTTTCCCGCTACGAACCGAGAAC TGAACCCACT SpMV-1 SpMV GTCTATGTGACTTCCATCCGTAGTGTGGTTTCC ACGAAG SpMV-1rc SpMV CTTCGTGGAAACCACACT ACGGATGG AAGT CAC ATAGAC WDV-1 WDV GCATTGGGATTGGTGATGGAAGCACGAAGCTT GT WDV-2 WDV GCAGATGTGGTGATCCATCTTCGTGG WDV-1rc WDV ACAAGCTTCGTGCTTCCATCACCAATCCCAATG C WDV-2rc WDV CCACGAAGATGGATCACCACATCTGC WDV-3 WDVuniv AGATGTTCAI I I I TCCAGCTTTCAATGGTCTCAT G WDV-3rc WDVuniv CATGAGACCATTGAAAGCTGGAAAAAT GAACAT CT WSMV-1 WSMV GCGAAGCCATCACTTCGAGCCATT WSMV-2 WSMV GGAGCTCGAGTGATGATCGAGGAGAGTGTTC WSMV-1rc WSMV AATGGCTCGAAGTGATGGCTTCGC WSMV-2rc WSMV GAACACTCTCCTCGATCATCACTCGAGCTCC
CZ2013-345A 2013-05-13 2013-05-13 Specifické genové sekvence jednotlivých oligo-prób pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray CZ2013345A3 (cs)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2013-345A CZ2013345A3 (cs) 2013-05-13 2013-05-13 Specifické genové sekvence jednotlivých oligo-prób pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CZ2013-345A CZ2013345A3 (cs) 2013-05-13 2013-05-13 Specifické genové sekvence jednotlivých oligo-prób pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CZ2013345A3 true CZ2013345A3 (cs) 2014-11-26

Family

ID=51939026

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ2013-345A CZ2013345A3 (cs) 2013-05-13 2013-05-13 Specifické genové sekvence jednotlivých oligo-prób pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray

Country Status (1)

Country Link
CZ (1) CZ2013345A3 (cs)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Wyatt et al. Detection of subgroup III geminivirus isolates in leaf extracts by degenerate primers and polymerase chain reaction
CN102586461A (zh) 一种北方根结线虫lamp快速检测方法及应用
Jiao et al. Rapid detection of Cucumber green mottle mosaic virus in watermelon through a recombinase polymerase amplification assay
Balme-Sinibaldi et al. Improvement of Potato virus Y (PVY) detection and quantitation using PVYN-and PVYO-specific real-time RT-PCR assays
Li et al. An improved reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) assay for the detection of two cherry flexiviruses in Prunus spp.
KR20180115967A (ko) FCoV, CCoV 및 TGEV를 동시에 검출하기 위한 프라이머 및 이를 이용한 검출 방법
Byun et al. Circulation of tick-borne pathogens in wildlife of the Republic of Korea
Orlowska et al. Comparison of real-time PCR and heminested RT-PCR methods in the detection of rabies virus infection in bats and terrestrial animals
CN102605104A (zh) 鸭圆环病毒和鸭肝炎病毒二重pcr检测试剂盒
CZ2013345A3 (cs) Specifické genové sekvence jednotlivých oligo-prób pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray
Almasi et al. Development and evaluation of a reverse transcription loop-mediated isothermal amplification assay for detection of beet necrotic yellow vein virus
Achachi et al. Detection of citrus psorosis virus using an improved one-step RT-PCR
CZ25572U1 (cs) Sonda pro molekulární detekci virových patogenů obilnin a trav pomocí technologie Microarray
Mannan et al. A molecular tool for differenciation of xanthomonas oryzae pathovars isolated from rice
Áy et al. Detection of cereal viruses in wheat (Triticum aestivum L.) by serological and molecular methods
CZ2013370A3 (cs) Specifické genové sekvence jednotlivých oligo-prób pro rodově specifickou detekci virů obilnin a trav pomocí technologie Microarray
JP2018183057A (ja) ウイルス、細菌および寄生虫等の病原体の型または亜型等の遺伝子型別方法
JP2022095271A (ja) ジャガイモシストセンチュウ及びジャガイモシロシストセンチュウの同時検出方法及び当該方法に使用するプライマーセット
RU2499054C1 (ru) Тест-система для обнаружения рнк вируса блютанга 14-го серотипа методом от-пцр в режиме реального времени
CZ26380U1 (cs) Oligonukleotidová sonda pro rodově specifickou detekci virů obilnin a trav pomocí technologie Microarray
KR20160029201A (ko) 특정 프라이머 세트를 포함하는 반코마이신 내성 장구균을 검출하기 위한 등온증폭반응용 프라이머 조성물 및 상기 프라이머 세트를 이용하여 반코마이신 내성 장구균을 검출하는 방법
Frotscher et al. Sensitive, fast and easy detection of Grapevine fleck virus from crude extracts by reverse transcription loop-mediated isothermal amplification (RT-LAMP)
KR100796007B1 (ko) 인플루엔자 바이러스 검출용 프라이머, 이를 이용한검출방법 및 검출키트
CN103361445A (zh) 用于检测狂犬病病毒的lamp引物及其试剂盒
Youssef et al. Single-step multiplex reverse transcription-polymerase chain reaction (m-RT-PCR) for simultaneous detection of five RNA viruses affecting stone fruit trees