CZ288074B6 - Kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450 - Google Patents

Kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450 Download PDF

Info

Publication number
CZ288074B6
CZ288074B6 CZ19983050A CZ305098A CZ288074B6 CZ 288074 B6 CZ288074 B6 CZ 288074B6 CZ 19983050 A CZ19983050 A CZ 19983050A CZ 305098 A CZ305098 A CZ 305098A CZ 288074 B6 CZ288074 B6 CZ 288074B6
Authority
CZ
Czechia
Prior art keywords
cytochrome
prodrug
capsule
cells
cell
Prior art date
Application number
CZ19983050A
Other languages
English (en)
Other versions
CZ305098A3 (cs
Inventor
Walter Günzburg
Peter Karle
Robert Michael Saller
Original Assignee
Bavarian Nordic Research Institute A/S
Gsf- Forschungaszentrum Für Umwelt Und Gesundheit Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=8092560&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=CZ288074(B6) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Bavarian Nordic Research Institute A/S, Gsf- Forschungaszentrum Für Umwelt Und Gesundheit Gmbh filed Critical Bavarian Nordic Research Institute A/S
Publication of CZ305098A3 publication Critical patent/CZ305098A3/cs
Publication of CZ288074B6 publication Critical patent/CZ288074B6/cs

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/0004Oxidoreductases (1.)
    • C12N9/0071Oxidoreductases (1.) acting on paired donors with incorporation of molecular oxygen (1.14)
    • C12N9/0077Oxidoreductases (1.) acting on paired donors with incorporation of molecular oxygen (1.14) with a reduced iron-sulfur protein as one donor (1.14.15)
    • C12N9/0079Steroid 11 beta monooxygenase (P-450 protein)(1.14.15.4)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K2035/126Immunoprotecting barriers, e.g. jackets, diffusion chambers
    • A61K2035/128Immunoprotecting barriers, e.g. jackets, diffusion chambers capsules, e.g. microcapsules
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/10041Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2740/10043Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/16011Human Immunodeficiency Virus, HIV
    • C12N2740/16041Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2740/16043Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

Kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450, která sestává z porézní membrány, jež je propustná pro průchod molekul prodrogy do kapsule, přičemž molekuly prodrogy jsou přeměňovány na aktivní metabolity cytochromem P450. Materiál kapsule sestává z komplexu tvořeného sulfátem celulózy a polydimethyldiallylammonia. Buňka produkující cytochrom P450 obsahuje savčí expresní vektor pcDNA3 nesoucí gen cytochromu P450 z krysích jater, jenž kóduje cytochrom P450 2B1. Prodroga je cyklofosfamid a/nebo ifosfamid. Kapsule spolu s prodrogou je určena k léčbě rakovinového onemocnění nebo jiného obdobného onemocnění nebo poruchy, zejména rakoviny prsu nebo rakoviny slinivky. Řešení dále poskytuje farmaceutickou soupravu obsahující kapsuli a prodrogu, která je aktivovatelná cytochromem P450.ŕ

Description

Oblast techniky
Vynález se týká kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450 a replikačně-defektních retrovirových vektorů kódujícími gen cytochromu P450, které jsou schopny změnit neškodné rakovinové prology na cytotoxické metabolity. Dále se vynález týká používání takových retrovirových vektorů na přípravu léčiv na léčbu různých druhů rakoviny nebo ablaci nádorů.
Dosavadní stav techniky
Protirakovinová léčiva, která se používají pro léčbu nádorů, se ve většině aplikují systémově a šíří se celým tělem pacienta. Vysoká systematická dávka takového léčiva, která je nutná pro léčbu rakoviny, je spojena s vedlejšími účinky nepříjemnými pro pacienta.
Ve snaze obejít tento problém, používaly se rakovinové prodrogy, které musejí být metabolizovány nebo aktivovány v těle předtím než se stanou cytotoxickými. Žel, lidské nádory, které obsahují příslušné vysoké hladiny aktivujících enzymů, jsou vzácné. Hlavním místem pro aktivací prodrog jsou játra. Aby se zajistilo, který je na vzdáleném místě, dostane dostatečnou dávku aktivovaného léku, množství aktivované prodrogy, která je produkována v játrech, musí být toto množství dosti velké, což zase vede k toxickým vedlejším účinkům pro pacienta.
Jednou ze strategií, kterou by bylo možno tyto problémy vysoké systemické koncentrace aktivovaných léků obejít, by bylo poskytnout prostředky pro aktivaci prodrogy přímo v místě nádoru nebo blízko místa nádoru. Tato strategie by vyžadovala, aby buňky nádoru, nebo buňky v místě nádoru byly geneticky změněné tak, aby produkovaly velká množství enzymů, které jsou třeba pro metabolizaci rakovinových prodrog. Retrovirální vektory se ideálně hodí pro stabilní dodávku genů do buněk, protože retrovirus integrovat DNA formu svého genomu do genomu hostitelské buňky, a tak všechny dceřinné buňky infikované buňky ponesou retrovirový vektor nesoucí terapeutický gen. Další výhodou je, že většina retrovirů infikuje pouze dělicí se buňky, a proto jsou ideálním nosičem dodávky genu pro buňky nádoru.
Bylo již testováno mnoho cytotoxických genů nesených retrovirovými vektory. Tyto geny kódují enzymy, které mohou měnit substance, které jsou farmakodynamicky a toxikologicky inertní i na úrovni vysokých dávek, ale které je možno změnit in vivo na vysoce aktivní metabolity (Connors, T.A.(1995), Gene Therapy 2: 702-709).
V chemoterapii rakoviny se zjistilo, že vhodně navržené prodrogy jsou účinné při léčbě zvířecích nádorů s vysokými hladinami aktivujícího enzymu (Connors, T. a Whisson, M. (1966) Nátuře 210: 866 867 a Cobb, L, a kol. (1969), Biochemical Pharmacology 18: 1519-1527). Klinické výsledky však zklamaly, protože bylo zjištěno, že lidská rakovina, která obsahuje příslušně vysoké hladiny aktivujícího enzymu, je vzácná (Connors, T. (1986), Xenobiotica 16: 975-988). Virově řízená enzymatická terapie prodrogou (VDEPT) a obecnější genově řízená enzymatická terapie prodrogou (GDEPT) spolu souvisejí v tom, že jejich cílem je také zničit buňky nádoru pomocí pro nádor specifickou aktivací prodrogy. V tomto případě je však genetické zakódování enzymu buď specificky zaměřeno na maligní buňky, neboje řízeno specifickým promotorem.
Až dosud se většina úsilí zaměřeného na terapii prodrogou soustředila na používání thymidinkinázy lidského herpes simplex viru (HSV-tk) jako suicidálního genu. I když enzym HSV-tk v kombinaci s prodrogou ganciclovir (GCV) byl doporučován jako dobrý systém pro GDEPT (Culver, k. a kol., (1992), Science 256: 1550-1552, Ram, Z. a kol., (1993), Cancer Research 53: 83-88 a Chen, S., Shine, H. a kol., (1 994), Proč. Nati. Acad. Sci. 91: 3054-3057), existuje mnoho teoretických úvah, které by naznačovaly, že to v žádném případě není ta nej lepší kombi
-1 CZ 288074 B6 nace. Zaprvé, je to specifická látka S-fáze bez účinku na klidové buňky. Je tomu tak proto, že GCV monofosfát je krátkodobý a musí být přítomen, když buňky vstupují do S-fáze, aby měl toxický efekt. HSV-tk fosforuje GCV na monofosfátovou formu (reakce, kterou nemohou uskutečnit savčí enzymy), která je poté fosforylovaná buněčnými enzymy na trifosfátovou formu a začleněna do DNA. Zadruhé, aktivní léčivo je trifosfát a neočekávalo by se, že bude volně difundovat tak, aby způsobil pomocný efekt. Pomocný efekt však byl pozorován jak in vivo, i když se zdá, že je zapojena metabolická spolupráce a ve druhém případě může být některý efekt nepřímý a zahrnovat imunitní komponent (Bi, W., Parysek, L. a kol., (1993), Human Gene Therapy 4: 725-731, Vile, R. a Hart, I. (1993), Cancer Research 53: 3860-3864 a Freeman, S., Abboud, C. a kol., (1993), Cancer Research 53: 5274-5283). Jednou nevýhodou je, že pomocný efekt závisí na kontaktu buňka-buňka. Může to být způsobeno přítomností mezerového spojení tvořeného intimním kontaktem mezi transdukovanou buňkou a okolními buňkami, což umožňuje fosforylovaného gancicloviru.
Nedávno byly uvedeny zajímavé výsledky s buňkami, které byly transfikovány genem se zakódovaným krysím cytochromem P450 formy 2B1, a pak léčeny cyklofosfamidem (Chen,S., Shine, H. a kol., (1994), Proč. Nati. Acad. Sci. 91: 3054- 3057).
Cílem tohoto vynálezu je poskytnout nové replikační-defektivní retrovirové vektory přenášející gen se zakódovaným cytochromem P450 pod transkripční kontrolou specifického regulačního elementu nebo promotoru cílové buňky nebo promotorů indukovatelných rentgenovým zářením, které mohou být transfikovány do obalových buněčných linií s cílem produkovat rekombinantní retrovirové částice užitečné pro genovou terapii různých druhů rakoviny.
Podstata vynálezu
Předmětem předloženého vynálezu je kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450, jejíž podstata spočívá vtom, že sestává z porézní membrány jež je propustná pro průchod molekul prodrogy do kapsule, přičemž molekuly prodrogy jsou přeměňovány na aktivní metabolity cytochromem P450. Materiál kapsule podle vynálezu sestává z komplexu tvořeného sulfátem celulózy a polydimethyldiallylammonia.
Význakem kapsule podle předloženého vynálezu je, že buňka produkující cytochrom P450 obsahuje savčí expresní vektor pcDNA3 nesoucí gen cytochromu P450 z krysích jater jenž kóduje cytochrom P450 2B1.
Kapsule podle vynálezu je vhodná pro použití k léčbě rakovinového onemocnění nebo jiného odborného onemocnění nebo poruchy.
Kapsule podle vynálezu je určená pro současné nebo následné podávání subjektu s prodrogou, která je aktivovaná cytochromem P-450, v terapeuticky účinném množství.
Význakem vynálezu je dále kapsule pro podávání injekčně a/nebo implantací do cílových buněk a/nebo v jejich místě, přičemž prodroga se podává systematicky a/nebo lokálně.
Cílové buňky jsou v souladu s vynálezem zejména buňky nádorů prsu a/nebo nádorů slinivky a prodroga je cyklofosfamid a/nebo ifosfamid.
Předložený vynález dále zahrnuje farmaceutickou kompozici, která obsahuje předmětnou kapsuli.
Součástí předloženého vynálezu je dále farmaceutická souprava, jejíž podstata spočívá v tom, že obsahuje předmětnou kapsuli a prodrogu, která je aktivovatelná cytochromem P450.
-2CZ 288074 B6
Farmaceutická souprava podle vynálezu je dále vyznačená tím, že kapsule a prodroga jsou v různých lékových formách.
Farmaceutická souprava podle vynálezu může obsahovat kapsuli ve formě vhodné pro podávání injekcí a/nebo implantací do cílových orgánů a/nebo poblíž těchto cílových orgánů a prodrogu ve formě pro systematické a/nebo lokální podávání.
Význakem farmaceutické soupravy podle vynálezu je dále to, že obsahuje kapsule ve formě vhodné pro implantaci do a/nebo poblíž tkáně rakoviny prsu nebo tkáně rakoviny slinivky.
Farmaceutická souprava podle vynálezu obsahuje cyklofosfamid a/nebo ifosfamid jako prodrogu.
Význakem předloženého vynálezu je dále použití kapsuli podle vynálezu pro přípravu farmaceutické soupravy a použití pro přípravu farmaceutické kompozice pro ablaci nádorových buněk.
Vynález je založený na tom, že se využívá replikačně-defektní retrovirový vektor nesoucí gen cytochromu P450 pod transkripční kontrolou specifického regulačního elementu nebo promotoru cílové buňky nebo promotoru indukovatelného rentgenovým zářením.
Je to replikačně-defektní retrovirový vektor, jak je uveden výše, kde vektor obsahuje oblast 5‘LTR struktury U3-R-U5; jednu nebo více sekvencí zvolených z kódujících nebo nekódujících sekvencí; a oblast 3‘LTR zahrnující zcela nebo částečně deletovanou oblast U3, kde zmíněná deletovaná oblast U3 je nahrazena polyvazební sekvencí obsahující specifický regulační element nebo promotor cílové buňky nebo promotor indukovatelný rentgenovým zářením, následovaný oblastí R a U5, která je charakterizována tím, že alespoň v jedné z kódujících sekvencí kóduje cytochrom P450.
Replikačně-defektní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém je specifický regulační element nebo promotor cílové buňky zvolen z jednoho nebo více elementů skupiny, kterou tvoří WAP, MMTV, specifické regulační elementy a promotory blaktoglobulinu a kaseinu, specifické regulační elementy a promotory pankreatu včetně regulačních elementů a promotorů karbonátdehydratázy II a b-glukokinázy, specifické regulační elementy a promotory lymfocytů včetně imunoglobulinu a MMTV lymfocytické specifické regulační elementy a promotory a MMTV specifické regulační elementy a promotory propůjčující responsivitu glukokortikoidním hormonům nebo směřující expresi do prsní žlázy.
Replikačně-defektní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém jsou uvedené oblasti LTR zvoleny z alespoň jednoho elementu skupiny, kterou tvoří LTR z MLV, MMTV, MSV, SIV, HIV, HTLV, FIV, FeLV, BLV a MPMV.
Replikačně-defektní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém je uvedený retrovirový vektor založen na vektoru BAG nebo vektoru pLXSN.
Replikačně-defektní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém je uvedený retrovirový vektor pLX2Bl připraven, jak je popsáno v příkladu 1.
Replikačně-defektní retrovirový vektor, jak je veden výše, ve kterém je uvedený retrovirový vektor pc3/2Bl připraven, jak je popsáno v příkladu 2.
Replikačně-defektní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém jsou retrovirové sekvence zapojené do integrace retroviru pozměněny nebo alespoň částečně deletovány.
Replikačně-defektní retrovirový vektor, jak je uveden výše, ve kterém jsou uvedené regulační elementy nebo promotory regulovatelné jednáním molekul.
-3CZ 288074 B6
Linie obalových buněk transfikovaná replikačně-defektním retrovirovým vektorem, jak je uveden výše; uvedená linie obalové buňky obsahuje alespoň jedno retrovirově nebo rekombinantně retrovirově vytvořené kódování proteinů, které je třeba pro obalení uvedeného retrovirového vektoru.
Linie obalové buňky, jak je uvedena výše, kdy tato linie obalové buňky je původem z hlodavce, psa, kočky neboje lidská a je histokompatibilní s lidskou tkání.
Linie obalové buňky, jak je uvedena výše, kdy tato linie obalové buňky je zvolena ze skupiny, kterou tvoří psi-2, psi-Crypt, psi-AM, GP+E-86, PA317 a GP+envAM-12.
Rekombinantní retrovirová částice vyprodukovaná kultivací linie obalové buňky, jak je uvedena výše, ve vhodných podmínkách s nepovinně následující izolací produkované rekombinantní retrovirové částice.
Farmaceutická kompozice obsahující rekombinantní retrovirovou částici, jak je uvedena výše, nebo linii obalové buňky, jak je uvedena výše.
Linie obalové buňky, jak je uvedena výše, zapouzdřená v porézní membráně, která je propustná pro rekombinantní retrovirové částice produkované uvedenou linií obalové buňky.
Linie obalové buňky, jak je uvedena výše, zapouzdřená v komplexu, který tvoří sulfát celulózy a polydimethyldiallylamonium.
Způsob ablace buněk nádoru, který spočívá v podávání subjektu, který to potřebuje, terapeuticky účinného množství rekombinantní retrovirové částice, jak je uvedeno výše, linie obalové buňky, jak je uvedena výše, nebo zapouzdřenou linii obalové buňky, jak je uvedeno výše a buď současně, nebo s časovým odstupem, rakovinovou prodrogu, kterou je možno aktivovat cytochromem P450.
Způsob, jak je uveden výše, kdy buňky nádoru jsou buňkami nádoru prsu nebo pankreatického nádoru.
Způsob, jak je uveden výše, kde rekombinantní retrovirová částice, linie obalové buňky nebo zapouzdřená linie obalové buňky je podávána injekcí nebo implantací do nádoru nebo místa nádoru.
Použití rekombinantní retrovirové částice, jak je uvedeno výše, linie obalové buňky, jak je uvedeno výše, nebo zapouzdřené linie obalové buňky, jak je uvedeno výše, pro přípravu farmaceutické kompozice užitečné pro ablaci buněk nádoru.
Retrovirový provirus integrovaný v lidském genomu, nesoucím gen s cytochromem P450 pod transkripční kontrolu specifického regulačního elementu nebo promotoru cílové buňky nebo promotoru indukovatelného rentgenovým zářením;
a lidská buňka obsahující gen cytochromu P450 pod transkripční kontrolou specifického regulačního elementu nebo promotoru cílové buňky nebo promotoru indukovatelného rentgenovým zářením.
Cytochromy P450 tvoří širokou skupinu monooxygenáz, které katalyzují oxidaci širokého množství substrátů. Produkují je některé bakterie, kvasinky a vyšší organismy tam, kde hrají úlohu při detoxikaci xenobiotok, v bioaktivačních reakcích a metabolismu různých endogenních sloučenin.
-4CZ 288074 B6
Cytochrom P450 katalyzuje hydroxylaci běžně užívaných rakovinových prodrog cyklofosfamidu (CPA) a ifosfamidu na jejich aktivní toxické formy. Normálně je exprese endogenního genu pacienta s cytochromem P450 omezena na játra,a protitumorové účinky systematicky aplikovaných CPA závisejí na následné systemické distribuci toxických metabolitů drog z jater. To vedlo k problémům s toxicitou, protože aktivovaná droga ovlivňuje nejen tumor, ale rovněž ovlivňuje jiné normální tkáně pacienta, jako kostní dřeň a ledviny.
Terapeutický přístup, kde se gen cytochromu P450 selektivně zavádí do buněk nádoru a je v těchto buňkách příliš exprimovaný, by tento problém obešel. Toxické metabolity produkované z transdukovaných buněk nádoru ovlivňují okolní netransdukované buňky nádoru způsobem závisejícím na gradientu koncentrace. Další výhodou systému cytochrom P-450/CPA je nezávislost na replikaci buňky pro cytotoxické účinky na okolní buňky. Je tomu tak proto, že jeden z generovaných aktivních metabolitů působí mezi-řetězcové křížové vazby bez ohledu na fázi buněčného cyklu. Později, během syntézy DNA, je důsledkem těchto mezi-řetězcových křížových vazeb odumření buňky.
Retroviralní vektory jsou nejčastěji používané nosiče transferu genů pro klinické pokusy, které byly dosud provedeny. Většina z těchto pokusů však použila přístup ex vivo, kde byly buňky pacienta izolovány, modifikovány v kultuře, a pak pacientovi znovu zavedeny.
Pro léčbu rakoviny by bylo proveditelné izolovat buňky pacienta (buď tumorové buňky, nebo normální buňky), infikovat je in vitro rekombinantní retrovirovou částicí nesoucí gen kódující cytochrom P450, a pak je vrátit do pacienta v blízkosti tumoru. Tento přístup je však neobyčejně náročný na intenzivní práci, protože každá z pacientových buněk se musí izolovat, kultivovat, transdukovat genovou konstrukcí a úspěšně vrátit bez infekce náhodnými činidly. Náklady a čas, které jsou třeba při takovém přístupu, omezují jeho praktickou užitečnost.
Alternativně by bylo možno použít alogenický přístup, kde jeden druh buněk je infikován rekombinantní retrovirovou částicí nesoucí gen kódující P450 a pak jej použít pro léčbu mnoha různých pacientů. Takový přístup je mnohem proveditelnější, za předpokladu, že bude možno překonat problémy imunitního odmítnutí. Většina nádorů však není vhodná pro genovou terapii ex vivo.
Ideálně by gen kódující cytochrom P450 měl být zaveden in vivo do buněk nádoru nebo do buněk v blízkosti nádoru.
Dodání genů iv vivo přináší množství nových problémů. Zaprvé a především je třeba se zabývat úvahami o bezpečnosti.
Hlavní otázkou při eventuální genové terapii in vivo z hlediska bezpečnosti i z čistě praktického hlediska je zacílení exprese. Je jasné, že terapeutické geny nesené vektory by neměly být exprimovány bez rozlišení do všech tkání a buněk, ale spíše jen do potřebné cílové buňky. Toto je zvláště důležité, když geny, které mají být přeneseny, jsou takové geny aktivující prodrogu, které jsou určeny pro ablaci specifických buněk nádoru. Ať při ablaci či jinak, necílové buňky by byly zřejmě velice nežádoucí.
Základní náhodná integrace provirové formy retrovirového genomu do genomu infikovaných buněk představuje závažný etický problém, protože taková náhodná integrace může vést k aktivaci protoonkogenů, a tak vést k vývoji nové rakoviny. Většina výzkumných pracovníků by souhlasila, že replikačně-defektní retrovirus, jako jsou všechny, které se běžně používají, bude s mizivě malou pravděpodobností integrován do nebo blízko buněčného genu zapojeného v kontrole buněčné proliferace. Obecně se však také předpokládá, že explozivní expanze populace replikace schopných retrovirů zjediného infekčního případu nakonec zajistí dost integračních případů, aby se taková fenotypická integrace stala velice reálnou možností.
-5CZ 288074 B6
Systémy retrovirových vektorů jsou optimalizovány tak, aby minimalizovaly možnost přítomnosti replikace schopného viru. Je však dobře zdokumentováno, že rekombinační případy mezi komponenty systému retrovirových vektorů může vést k tvorbě potenciálně patogenní replikace schopného viru a bylo vytvořeno mnoho generací vektorových systémů, aby se minimalizovalo toto riziko rekombinace (Salmons, B. a Gíinzburg, W.H. (1993), Human Gene Therapy 4(2): 129-41.
Systémy retrovirových vektorů tvoří dva komponenty:
1) Retrovirový vektor samotný je modifikovaný retrovirus (vektor plazmid), ve kterém je gen kódující virové proteiny nahrazen terapeutickými geny. Protože náhrada genů kódujících virové proteiny účinně mrzačí virus, musí být zachráněn druhým komponentem v systému, který zajišťuje chybějící virové proteiny pro modifikovaný retrovirus.
Druhým komponentem je:
2) Linie buňky, která produkuje velká množství virových proteinů, avšak chybí jí schopnost produkovat replikace schopný virus. Tato linie buňky je známá jako linie obalové buňky a tvoří ji linie buňky transfikovaná jedním nebo více plazmidy nesoucími geny, které umožňují zapouzdření modifikovaného retrovirového vektoru.
Pro generování rekombinantní retrovirové částice je retrovirový vektor transfikován do linie obalové buňky. Za těchto podmínek je modifikovaný retrovirový genom včetně vsunutého terapeutického genu transkribován z retrovirového vektoru a zapouzdřen do modifikovaných retrovirových částic. Tyto rekombinantní retrovirové částice se pak použijí na infikování nádorových buněk, během čehož vektorový genom a jakýkoliv cytotoxický gen jsou integrovány do DNA cílové buňky. Buňka infikovaná takovou rekombinantní virovou částicí nemůže vyprodukovat nový vektorový virus, protože v těchto buňkách nejsou přítomny žádné virové proteiny ale DNA vektoru nesoucího terapeutikum je integrována do DNA buňky a nyní může být exprimována v infikované buňce.
Již dříve bylo popsáno mnoho systémů retrovirového vektoru, které by měly umožnit cílení přenášených cytotoxických genů (Salmons, B. a Gíinzburg, W.H. (1993), Human Gene Therapy 4(2): 129-41). Většina z těchto přístupů zahrnuje buď omezení infekčního případu na předem definované typy buněk, nebo použití heterologních promotorů pro nasměrování exprese spojených heterologních terapeutických genů do specifických typů nádorových buněk. Používají se takové heterologní promotory, které by měly řídit expresi spojených genů pouze do těch typů buněk, ve kterých je tento promotor normálně aktivní anebo dodatečně kontrolovatelný. Tyto promotory byly dříve vsunuty spolu s terapeutickým genem do těla retrovirových vektorů, na místo genů gag, pol nebo env.
Retrovirová dlouhá koncová perioda (LTR), která lemuje tyto geny, nese retrovirový promotor, který je obecně nespecifický v tom smyslu, že může pohánět expresi v mnoha různých typech buněk (Majors, J. (1990). v „Retroviruses - Strategies of replication (Swanstrom, R. a Vogt, P.K., Eds): Springer-Verlag, Berlin: 49-92). Byla popsána interference promotorů mezi LTR promotorem a heterologními interními promotory, jako jsou specifické promotory tkáně popsané výše. Kromě toho je známo, že retrovirové LTR obsahují silné posilovače, které mohou nezávisle nebo ve spojení s retrovirovým promotorem ovlivnit expresi buněčných genů blízko místa integrace retroviru. Ukázalo se, že tento mechanismus přispívá k tumorigenicitě u zvířat (van Lohuizen, M. a Bems, A. (1990), Biochim.Biophys.Acta 1 032. 213-235). Tato dvě pozorování podpořila vývoj autoinaktivujících vektorů (SIN), ve kterých jsou retrovirové promotory funkčně inaktivovány v cílové buňce (WO 94/29437). Mezi další modifikace těchto vektorů patří vsunutí kazet s promotorovým genem do oblasti LTR pro vytvoření dvojitých kopií vektorů (WO 89/11539). V obou těchto vektorech však jsou heterologní promotory vsunuté do těla vektoru nebo do oblasti LTR přímo spojeny s terapeutickým genem.
-6CZ 288074 B6
Výše popsaný SIN vektor, který nese deietovaný 3‘LTR (WO 94/29437), využívá kromě toho heterologní promotor jako promotoru Cytomegalovirus (CMV), místo retrovirového promotoru 5‘LTR (U3-volný 5‘LTR) pro pohon exprese konstrukce vektoru v linii obalové buňky. Ve 3‘LTR je také zahrnut heterologní polyadenylační signál (WO 94/29437).
Cílem tohoto vynálezu je stavba bezpečného retrovirového vektoru, který obsahuje gen cytochromu P450 jako terapeutický princip. Tento nový vektor nese heterologní konstitutivní, indukovatelný nebo pro tkáň specifický promotor anebo regulační element ve 3‘LTR, který se po infekci zdvojí a je translokován do 5‘LTR v cílové buňce. V infikované buňce tak zavedený promotor kontroluje expresi genu cytochromu P450, který je vsunut do těla vektoru. Tento vektor neprochází autoinaktivací - ale místo toho je změna promotoru, kdy vzniká název ProCon vektor pro konverzní vektory promotoru. Principy a výhody systému ProCon jsou podrobněji popsány ve WO 9607748.
Protože výsledkem konverze promotoru není autoinaktivace, retrovirový vektor bude transkripčně aktivní v cílové buňce, kromě toho oba LTR se budou z větší části skládat ze sekvencí heterologní promotor/posilovač v cílové buňce. To sníží pravděpodobnost toho, aby integrovaný vektor v cílové buňce byl vystaven stejné inaktivaci po dlouhá období, jak bylo popsáno u konvenčních vektorů (Xu, L., Yee, J.K. a kol., (1989), Virology 171:331-341) a rovněž sníží možnost rekombinace s endogenními retrovirovými sekvencemi a vznik potenciálně patopgenního replikace schopného viru, a tak zvýší bezpečnost systému.
Podle vynálezu není 5‘LTR konstrukce retrovirového vektoru modifikována a exprese virového vektoru v obalových buňkách je poháněna normálním retrovirovým promotorem U3. Normální retrovirová polyadenylace je povolena a ve 3‘LTR nejsou obsaženy žádné heterologní polyadenylační signály. To je důležité pro rozvoj strategií genové terapie in vivo, protože normální fyziologická regulace viru prostřednictvím normálního virového promotoru, a zahrnující eventuálně také normální virovou kontrolu polyadenylace, bude po dlouhá období převažovat in vivo, zatímco obalové buňky budou produkovat rekombinantní virus.
Po dosažení předcházejícího a dalších cílů vynález poskytuje retrovirový vektor, který prochází konverzí promotoru zahrnující region 5‘LTR struktury U3-R-U5; jednu nebo více kódovacích sekvencí zvolených ze skupiny genů známých jako geny cytochromu P450; a oblast 3‘LTR obsahující zcela nebo částečně deletovanou oblast U3, kde uvedená deletovaná oblast U3 je nahrazena heterologním promotorem, následovaným R a U5 oblastí.
Uvedený promotor může být konstitutivní jako Cytomegalovirus (CMV), přímý prvotní promotor/posilovač, indukovatelný jako glukokortikoidní hormony (např. promotor MMTV) nebo specifické pro cílovou buňku.
Specifické regulační elementy a promotory pro cílovou buňku jsou voleny z jednoho nebo více elementů jakéhokoliv genu, ale v této konkrétní formě mohou být z promotorů, které zahrnují regulační elementy a promotory karbonátdehydratázy II a beta-glukokinázy, regulační elementy a promotory specifické pro lymfocyty včetně regulačních elementů a promotorů karbonátdehydratázy II a β-glukokinázy, regulační elementy a promotory specifické pro lymfocyty z acidických proteinů syrovátky (WAP), myší virus nádoru prsu (MMTV), regulační elementy a promotory specifické pro β-laktoglobulin a kaasein, regulační elementy a promotory specifické pro pankreas včetně lymfocytických regulačních elementů a promotorů specifických pro imunoglobulin a MMTV a promotory a regulační elementy specifické pro MMTV a promotory přenášející responsivitu na glukokortikoidní hormony či směřující expresi do prsní žlázy. Mezi jiné promotory patří například CD4, CD34 a promotory IL2. Uvedené regulační elementy a promotory regulují nejlépe expresi uvedeného retrovirového vektoru.
-7CZ 288074 B6
Zdá se, že oblast promotoru WAP, který je nutný pro zprostředkování specifičnosti prsní žlázy, je restrikční fragment 320 bp Xhol/Xbal (-413 až -93) (Kolb, A.F., Gunzburg, W.H., Albang, R., Brém, G., Erfle, V., a Salmons, B. (1995), Biochem. Biophys. Res. Commun. 217,1045-1052). Určité experimenty kromě toho naznačují, že fragment promotoru 0.6 Kb Pstl MMTV (Salmons, B., Groner, B., Calberg Bača, C.M., a Ponta, H. (1985), Virology 144: 101-114) může hrát úlohu při regulaci specifičnosti exprese prsní žlázy vykazovanou MMTV (Kolb, A.F., Gunzburg, W.H., Albang, R., Brém, G., Erfle, V., a Salmons, B. (1995), Biochem. Biophys. Res. Commun. 217, 1045-1052).
Oblasti LTR se volí alespoň z jednoho elementu skupiny, kterou tvoří LTR viru myší leukémie (MLV), myší virus nádoru prsu (MMTV), myší virus sarkomu (MSV), opičí virus imunodeficience (SIV), lidský virus imunodeficience (HIV), lidský virus leukémie T-buňky (HTLV), kočičí virus imunodeficience (FIV), kočičí virus leukémie (FELV), hovězí virus leukémie (BLV) a virus opice Mason-Pfizer (MPMV).
Retrovirový vektor je s výhodou založen na vektoru LXSN (Miller, A.D. a Rosman, G.J. (1989), Biotechniques 7:980-990), pBAG (Price, J., Turner, D. a kol., (1987), Proc.Natl. Acad.Sci. USA 84: 156-160) nebo hybridu obou.
Kódující sekvence terapeutického genu může být jakýkoliv gen cytochromu P450, ale s výhodou je to krysí cytochrom P450 forma 2B1, kterou definovali Fuji-Kuriyama, Y., Mizukami, Y., a kol., (1982) Proč. Nati. Acad. Sci. USA 79: 2793-2797.
V další konkrétní formě vynálezu je zajištěn systém retrovirového vektoru, který tvoří retrovirový vektor, jak byl popsán výše, jako první komponent a linie obalové buňky obsahující alespoň jednu retrovirovou nebo rekombinantně retrovirovou kódující konstrukci pro proteiny, která je nutná pro zapouzdření uvedeného retrovirového vektoru.
Linie obalové buňky je výhodou zvolena z elementu skupiny, kterou tvoří Ψ-2, Ψ-Crypt, ΨAM, GP+E-86, PA317 a GP+envAM-12, nebo kterákoliv z těchto konstrukcí supertransfikovaná rekombinantem, což umožňuje expresi povrchových proteinů z jiných zapouzdřených virů.
Vynález rovněž zahrnuje mRNA vyplývající z retrovirového vektoru podle vynálezu.
V linii obalové buňky je exprese retrovirového vektoru regulována normálním neselektivním retrovirovým promotorem obsaženým v oblasti U3. Jakmile však vektor vstoupí do cílové buňky, dojde ke konverzi promotoru a gen P450 je exprimován z výběrového promotoru specifického pro tkáň nebo indukovatelného, vsunutého do vektoru ProCon. Nejen že jakýkoliv promotor specifický pro tkáň je možno do systému zahrnout, čímž umožňuje selektivní zacílení širokého množství různých typů buněk, ale kromě toho po konverzi již struktura a vlastnosti retrovirového vektoru nepřipomínají strukturu a vlastnosti viru. To má samozřejmě neobyčejně významné důsledky z hlediska bezpečnosti.
Tyto vektorové systémy budou použity pro generování rekombinantního viru, který je možno použít pro infikování nádorových nebo normálních buněk in vivo.
Rekombinantní retroviry, které byly purifikovány nebo koncentrovány, je možno uchovat přidáním nejdříve dostatečného množství formulačního pufru do média obsahujícího rekombinantní retrovirus, aby se vytvořila vodná suspenze. Formulační pufr je vodný roztok, který obsahuje sacharid, strukturální aditivum s vysokou molekulovou hmotností a pufrovací komponentu ve vodě. Vhodný roztok může také obsahovat jednu nebo více aminokyselin.
Rekombinantní retrovirus je také možno uchovat v purifikované formě. Konkrétněji, před přidáním formulačního pufru může být výše popsaný surový rekombinantní retrovirus vyčištěn přes filtr, a poté se zkoncentruje, jako systémem koncentrace s příčným tokem (Filtron Technolo
-8CZ 288074 B6 gy Corp., Nortborough, ΜΑ). V rámci jedné konkrétní formy se přidá DNáza do koncentrátu, aby byla digerována exogenní DNA. Výluh se pak diafiltruje, aby se odstranily nadbytečné komponenty média a vytvořil se rekombinantní retrovirus ve vhodnějším pufrovaném roztoku. Diafiltrát se pak vede přes gelovou kolonu Sephadex S-500 a vymývá se purifikovaný rekombinantní retrovirus. K tomuto eluátu se přidá dostatečné množství formulačního pufru, aby bylo dosaženo požadované finální koncentrace konstituentů a aby se rekombinantní retrovirus minimálně zředil a vodná suspenze se pak skladuje, nejméně při -70 °C nebo okamžitě vysušená. Jak bylo uvedeno výše, formulační pufr je vodný roztok, který obsahuje sacharid, strukturální aditivum s vysokou molekulární hmotností a pufrovací komponentu ve vodě, tento vodný roztok může také obsahovat jednu nebo více aminokyselin.
Surový rekombinantní retrovirus je také možno purifikovat chromatografií v ionexové koloně. Obecně se surový rekombinantní retrovirus čistí přes filtr a filtrát se založí do kolony, která obsahuje vysoce sulfonovanou celulózovou matrici. Rekombinantní retrovirus se vymývá z kolony v purifikované formě při použití vysoce solného pufru. Vysoce solný pufr se pak nahradí vhodnějším pufrem tak, že elauát se vede přes kolonu molekulárního vylučování. Poté se přidá dostatečné množství formulačního pufru, jak je uvedeno výše, do purifikovaného rekombinantního retroviru, a pak se vodná suspenze buď okamžitě vysuší, nebo skladuje, nejlépe při -70 °C.
Vodnou suspenzi v surové nebo purifikované formě je možno vysušit lyofilizací nebo odpařováním při teplotě místnosti. Konkrétně, lyofilizace zahrnuje kroky ochlazení vodné suspenze pod teplotu skelného přechodu nebo pod teplotu eutektického bodu vodné suspenze a odstranění vody z ochlazené suspenze sublimací, takže se vytvoří lyofílizovaný retrovirus. Když je rekombinantní retrovirus lyofilízován, je stabilní a může být skladován při teplotě 20 °C až 25 °C, jak je podrobněji uvedeno dále.
Při metodě odpařování se voda odstraní z vodné suspenze při teplotě místnosti odpařováním. Vodu je také možno odstranit rozprašovacím sušením.
Vodné roztoky, které se používají pro formulaci, jak bylo popsáno výše, se skládají ze sacharidu, strukturálního aditiva s vysokou molekulovou hmotností, pufrovacího komponentu a vody. Roztok může také obsahovat jednu nebo více aminokyselin. Kombinace těchto komponentů funguje tak, aby zachovala aktivitu rekombinantního retroviru při zmrazení a lyofilizací nebo sušení pomocí odpařování.
Strukturální aditivum s vysokou molekulovou hmotností pomáhá zabránit agregaci viru během zmrazování a zajišťuje strukturální podporu v lyofilizovaném nebo sušeném stavu. V kontextu tohoto vynálezu se podkládají strukturální aditiva za strukturální aditiva „s vysokou molekulovou hmotností“, jestliže jsou větší, než 5000 m.h. Nej lepším strukturálním aditivem s vysokou molekulární hmotností je lidský sérový albumin. Aminokyseliny, jestliže jsou přítomny, fungují tak, aby dále zachovaly infektivitu viru při ochlazení a rozmrazování vodné suspenze. Kromě toho fungují aminokyseliny tak, aby se dále zachovala infektivita viru během sublimace ochlazené vodné suspenze a když je v lyofilizovaném stavu.
Pufrovací komponent funguje tak, aby pufroval roztok tím, že zachová relativně konstantní pH. Je možno použít různé pufry v závislosti na požadovaném rozsahu pH, nejlépe mezi 7,0 a 7,8.
Vodné roztoky pro vytvoření rekombinantních retrovirů jsou podrobně popsány ve WO-A296121014.
Kromě toho, je lepší, aby vodný roztok obsahoval neutrální sůl, která se používá na úpravu finálně vytvořeného rekombinantního retroviru na příslušnou izoosmotickou koncentraci soli.
Lyofílizované nebo dehydrované retroviry je možno rekonstituovat za použití různých substancí, ale nejlépe se rekonstituují při použití vody. V určitých případech je možno také použít zředěné
-9CZ 288074 B6 slané roztoky, které dovedou finální formulaci k izotonicitě. kromě toho, může být výhodné použít vodné roztoky obsahující komponenty, o kterých je známo, že podporují aktivity rekonstituovaného retroviru. Mezi takové komponenty patří cytokinázy, jako IL-2, polykationty, jako protaminsulfát nebo jiné komponenty, které podporují transdukční účinnost rekonstituovaného retroviru. Lyofilizovaný nebo dehydrovaný rekombinantní retrovirus může být rekonstituován jakýmkoliv vhodným množstvím vody nebo rekonstitučních činidel, která umožňují podstatnou a raději úplnou solubilizaci lyofilizovaného nebi dehydrovaného vzorku.
Rekombinantní retrovirové částice mohou být podávány do širokého množství míst, včetně například takových míst, jako je orgán nebo místo nádoru. V jiných konkrétních formách může být rekombinantní retrovirus podáván orálně, intravenózně, bukálně/sublingválně, intraperitoneálně nebo podkožně. Denní dávkování závisí na přesném způsobu podávání, formě, v níž se podává, indikaci, proti které je podávání zaměřeno, daném subjektu a tělesné váze daného subjektu, a dále na preferenci a zkušenostech pověřeného lékaře.
Způsoby podávání zde popsané je možno uskutečnit prostě přímým podáním za použití jehly, katétru nebo souvisejícího zařízení. Konkrétně, u určitých konkrétních forem vynálezu, je možno přímo podat jednu nebo více dávek.
V jedné konkrétní formě vynálezu budou obalové buňky uzavřeny v kapsu lích. Pro účinnou léčbu musejí buňky produkující virus přežít dlouhá období v cílovém orgánu po implantaci a virus musí být během těchto období produkován a uvolňován z obalových buněk. Tím by svým účinkem obalové buňky, které produkují virus, představovaly malou továrnu na výrobu viru, umístěnou na místě aplikace. To umožní účinnou dodávku rekombinantního viru in vivo. Jinak infikované normální buňky, lidského původu nebo buňky původem zjiných druhů, budou zapouzdřeny a implantovány, a tak vytvoří malou továrnu na konverzi prodrogy, kterou je možno umístit blízko nebo do hmoty nádoru.
Dlouhodobá účinnost tohoto přístupu závisí na (1) ochraně buněk z hostitelského imunitního systému, který by normálně eliminoval buňky produkující virus nebo infikované buňky, zvláště jestliže tyto buňky jsou z různých druhů, jak tomu obvykle je v případě buněk produkujících retrovirový vektor a na (2) přežití in sítu po dlouhá období, což může vyžadovat vaskularizaci.
Bylo zjištěno, že neustálé produkce vektorového viru z implantovaných obalových buněk je možno dosáhnout příslušným zapouzdřením obalových buněk produkujících virus před implantací, v mikrokapslích s polopropustnými membránami. Kromě toho bylo zjištěno, že takové kapsule se v hostiteli dobře naroubují, dojde u nich k vaskularizaci a nevyvolávají imunitní nebo zánětlivou reakci hostitele. Tato zjištění, spolu s polopropustností membrány kapsulí, umožňuje dlouhodobou dodávku retrovirálního vektoru in vivo.
Byla vyvinuta technologie zapouzdření zajišťující enkapsulaci obalových buněk produkujících virus a buněk infikovaných virem nebo normálních buněk v materiálu na základě celulózy. Při použití této techniky se zapouzdří až 1010, ale spíše 105-107 buněk v komplexu elektrolytu (např. z alginátu a polylyzinu nebo raději sulfátu celulózy a polydimethyl-diallylamonium chloridu) nebo v jiných porézních strukturách (jako polyamidy, polysulfony). Výsledné kapsule mohou mít různý průměr mezi 0,01 a 5 mm, ale s výhodou 0,1 a 1 mm. Je tedy možno vyrobit kapsule, které budou obsahovat různé množství buněk. Kapsule je polopropustná s póry, které jsou dostatečně velké, aby umožňovaly virům nebo molekulám prodrog prostupovat, ale dostatečně malé, aby chránily buňky imunitního systému před přístupem buněk, čímž významně snižuje imunitní reakci na tyto buňky. Kapsule a zapouzdřené buňky se kultivují v normálním kultivačním médiu pro buňky (jeho povaha závisí na linii zapouzdřené buňky) při standardních podmínkách vlhkosti, teploty a koncentrace CO2.
-10CZ 288074 B6
Po vhodné době kultivace (normálně ne méně než 1 hodinu a ne více než 30 dní), mohou být kapsule obsahující buňky chirurgicky implantovány do různých oblastí buď přímo, nebo injekcí za použití injekční stříkačky.
V různé době po implantaci enkapsulovaných buněk může být hostitel léčen cyklofosfamidem nebo ifosfamidem lokálně nebo systemicky. Buňky infikované virem exprimujícím cytochrom P450 změní tyto prodrogy na aktivní metabolity, které působí alkylaci a příčnou vazbu DNA. Rovněž buňky nesoucí a exprimující gen cytochromu P450 (jako zapouzdřené infikované buňky nebo obalové buňky) budou také katalyzátorem této konverze. V jedné konkrétní formě tohoto vynálezu tyto zapouzdřené infikované nebo obalové buňky budou buď pomalu se dělící buňky, nebo buňky, které byly ošetřeny mitomycinem C, nízkými dávkami záření nebo jinými prostředky, které zabrání replikaci buněk, a tak zabrání tomu, aby buňky samy byly ovlivněny cytotoxickými účinky prodrog.
Následující příklady budou tento vynález dále ilustrovat. Tyto příklady však v žádném případě nejsou míněny tak, aby omezovaly rozsah tohoto vynálezu, protože zřejmé modifikace budou patrné pro kohokoliv, kdo je zběhlý v této technice.
Příklad 1
Tento případ popisuje stavbu retrovirového expresního vektoru pro intratumorální infekci, který obsahuje gen pro krysí cytochrom P450 2B1.
Vektor exprese pLX2Bl, znázorněný na obrázku 1, byl konstruován ligací fragmentů získaných z plazmidu pLX125 a pSWl (Kedzie, K.M., Escobar, G.Y., Grimm, S.W., He, Y.A., Pepperl, D.J., Regan, J.W., Stevens, J.C., a Halpert, J.R. (1991), J. Biol. Chem. 266(33).2 215-2). pLX125 byl připraven, jak je popsáno v přihlášce (PCT/EP96/04447 zveřejněné jako WO97/13867).
Plazmid pLX125 byl linearizován a Hpal a výsledné tupé konce defosforylovány při použití telecí střevní fosfatázy. DNA byla purifikována separací na 1 % gelové agarose, excize a příprava používala protokol Qiaquick (Qiagen). Po precipitaci ethanolem byla DNA znovu suspendována ve vodě.
Klonovací vektor pSWl byl štěpen pomocí Smál a HincII, aby vznikly dva fragmenty s tupými konci. Směs výluhu byla separována na 1 % gelové agarose. Nejkratší fragment (l,5kb), který obsahoval krysí cytochrom P450 2B1 cDNA (Fuji-Kuriyama, Y., Mizukami, Y. a kol. (1982), Proč. Nati. Acad. Sci. USA 79: 2793-2797) byl vyříznut a eluován za použití protokolu Qiaquick extrakce DNA, ethalonem precipitován a znovu suspendován ve vodě.
7,6 fMol pLX125 a 24 fMol fragmentu Smal/HindlI z PSWl byly smíchány a ligovány 3 dny při 12 °C za použití T4-ligázy (Boehringer). Ligáza byla inaktivována při 65 °C po dobu 10 min a DNA precipitována 10 násobným objemem butanolu. Precipitovaná DNA byla znovu suspendována ve vodě a elektroporována do bakterie DH10B (Gibco). Byly vybrány kolonie resistentní na ampicilin, připravena DNA a zkušebně štěpena se SspBI/SalI, BamHI/SspBI, Pvul a BamHl. Konečný správný plazmid byl označen pLX2Bl (viz Obr. 1).
Lipofekce
Jeden den před lipofekcí bylo nasazeno 3xl06 retrovirových obalových buněk PA317 (Miller, A.D. a Buttimore, C. (1986), Mol. Cell. Biol. 6: 2895-2902) do 10 cm petriho nebo kultivačních misek. V den infekce byly 4 pg pLX2Bl smíchány se 300 μΐ média bez séra. Souběžně bylo 45 μΐ Lipofectaminu (Gibco BRL) smícháno se 300 μΐ média bez séra. Roztok obsahující plazmid byl přidán ke směsi Lipofectaminu a inkubován po dobu 45 min. Po 35 min byly buňky
-11CZ 288074 B6 jednou promyty 6 ml média bez séra. 2,4 média bez séra bylo přidáno ke směsi lipofekce a výsledný 1 ml byl vložen na připravené buňky. Po 5 hodinách byly přidány 3,5 ml Dulbeccova modifikovaného Eagles média s obsahem 20 % FCS. Příštího dne byly buňky vystaveny trypsinu a rozředěny v poměru 1:20 a nasazeny na 100 mm misku. Po 24 hodinách byla média nahrazena 5 médiem obsahujícím analog neomycinu G418. Populace buněk byly izolovány a analyzovány pro expresi cytochromu P450.
Supematant z těchto populací buněk byl použit pro infikování cílových buněk CK. 1 ml supematantu obsahujícího viros z 5xl06 buněk byl přefiltrován přes filtr 0,45 pm a přidán do lxlO6 10 cílových CK buněk za přítomnosti 8 pg/ml polybrenu. Po 4 hodinách byl přidán ml Dulbecco modifikovaného eagles média s 10 % fetálního telecího séra, příští den byly buňky vystaveny trypsinu, zředěny a o 24 hodin později vloženy do selekčního média obsahujícího dalších 400 pg/ml G418. Po 2 týdnech byly izolovány kolonie resistentní na G418 a testovány na aktivitu cytochromu P450 2B1. 2x104 buněk bylo rozprostřeno na 3 cm misku a vystaveno koncentraci 15 ifosfamidu měnící se mezi 0 a 5 mM. Byla pozorována vyšší senzitivita buněk infikovaných retrovirem s cytochromem P450 2B1 ve srovnání s kontrolními, neinfíkovanými buňkami.
Enkapsulace (Zapouzdření)
Získané obalové buňky produkující retrovirový vektor jsou zapouzdřeny, jak je popsáno v příkladu 2 ve WO 97/01357.
Implantace
Získané kapsule jsou zbaveny chirurgickým zákrokem „klíčovou dírkou“ blízko nebo do transplantovaných nebo spontánních nádorů BAL/c nebo GR myší. Asi šest kapsulí o průměru 1 mm je vloženo na každém místě operace. Místo po chirurgickém zákroku je uzavřeno 1 suturou. Myši jsou pak léčeny cyklofosfamidem nebo ifosfamidem lokálně, přímou intratumorální injekcí 100 μΐ 20 mg/ml nebo systematickými koncentracemi 130 mg CPA/kg tělesné váhy 30 i.p.a 40-60 mg IFO/kg tělesné váhy i.p. po dobu maximálně 10 týdnů. Během této doby se denně monitoruje velikost nádoru a makroskopický vzhled. Myši jsou pak usmrceny, tkáň obsahující vsunutá kapsule a tumor vyjmuta, a připraveny histologické řezy pro světelnou a elektronovou mikroskopii. Tyto řezy jasně ukazují dobré naroubování pouzder, vaskularizaci a žádné důkazy přítomnosti lymfocytů, které by indikovaly buněčnou imunitní reakci. Tyto řezy také nevykazují 35 žádné známky odumření buněk nebo nekrózy v rámci kapsule. Naopak tumor vykazoval nekrózu a makroskopicky bylo za testované období jasné zmenšení velikosti.
Příklad 2
Tento příklad popisuje stavbu stabilní buněčné linie, která exprimuje konstitutivně krysí cytochrom P450 2B1.
Expresní vektor pc3/2Bl byl vytvořen ligací fragmentů získaných z plazmidu pcDNA3 (Invitro45 gen) a pSWl (Kedzie, K.M., Escobar, G.Y., Grimm, S.W., He, Y.A., Pepperl, D.J., Regan, J.W.,
Stevens, J.C., a Halpert, J.R. (1991), J. Biol. Chem. 266(33): 2 215-21).
Plazmid pcDNA3 byl štěpen pomocí Xhol/Xbal a výsledné fragmenty s lepivými konci byly defosfoiylovány za použití telecí střevní fosfázy. DNA páteř vektoru byla purifikována separací 50 na 1 % gelové agarose, excize a příprava používala protokol Qiaquick (Qiagen). Po precipitaci ethanolem byla DNA znovu suspendována ve vodě.
Klonovací vektor pSWl byl štěpen pomocí Xhol a Xbal, aby vznikly dva fragmenty. Směs výluhu byla separována na 1 % gelové agarose. Nejkratší fragment (l,5kb) obsahující cDNA 55 krysího cytochromu P450 2B1 (Fuji-Kuriyama, Y., Mizukami, Y. a kol., (1982), Proč. Nati.
-12CZ 288074 B6
Acad. Sci. USA 79: 2793-2797) byl vyříznut a eluován za použití Qiaquick protokolu extrakce DNA, precipitován ethanolem a znovu suspendován ve vodě.
8,3 fMol páteře pcDNA3 a 24,8 fMol fragmentu Xhol/Xbal a pSWl byly smíchány dohromady a ligovány 1 den při 12 °C při použití T4-ligázy (Boehringer). Ligáza byla inaktivovaná při 65 °C po dobu 10 min a DNA precipitovaná butanolem s 10 násobným objemem butanolu. Precipitovaná DNA byla znovu suspendována ve vodě a elektroporována do bakterie DH10B (Gibco). Byly vybrány kolonie resistentní na ampicilin, připravena DNA a zkušebně štěpena pomocí EcoRI, BamRV a Xhol. Finální správný plazmid byl označen pc3/2Bl.
Lipofekce
Před dnem transfekce bylo 3xl06 buněk z kočičí ledviny nasazeno do 100 mm misek. V den transfekce byly 4 pg pc3/2Bl smíchány se 100 pl média bez séra. Zároveň bylo smícháno 15 pl Lipofectaminu se 100 pl média bez séra. Roztok obsahující plazmid byl přidán ke směsi Lipofectaminu a inkubován po dobu 45 min. Po 35 min byly buňky jednou promyty 2 ml média bez séra. 800 pl média bez séra bylo přidáno ke směsi lipofekce a výsledný 1 ml byl dán na připravené buňky. Po 6 hodinách byl přidán lml DNEM (Glutamax) s 10 % FCS. Příští den se na buňky působilo tiypsinem a byly zředěny faktorem deset a nasazeny na 100 mm misku. Po 24 hodinách bylo médium nahrazeno neomycinovým médiem. Po 14 dnech byly izolovány klony resistentní na neomycin a testovány na přítomnost a aktivitu vektoru.
Buňky kočičí ledviny exprimující cytochrom P450 vykazovaly desetinásobně vyšší citlivost na ifosfamid nebo cyklofosfamid ve srovnání s buňkami standardního typu.
Vedlejší účinek bylo možno demonstrovat na normálním typu buněk kočičí ledviny, ale také na buňkách Rin5 derivovaných na pankreatickém nádoru. To bylo ukázáno společnou kultivací klonů buněk kočičí ledviny P450 2B1 buď s neprodukujícími buňkami kočičí ledviny normálního typu, nebo buňkami Rin5 derivovanými z krysího pankreatického nádoru a přidáním ifosfamidu. Neprodukující CK a Rin buňky jsou zahubeny toxickými metabolity ifosfamidu, které jsou produkovány a uvolňovány buňkami kočičí ledviny s cytochromem P450 2B1. Titrační studie za použití klonů jedné buňky kočičí ledviny s cytochromem P450 2B1 vykazovaly, že pouhých 0,25 mM ifosfamidu má specifické toxické účinky na tyto buňky a výsledkem 1-2 mM je odumření všech buněk. Klony buňky kočičí ledviny s cytochromem P450 2B1 byly vykázány analýzou řetězové reakce polymerázy, která získala genovou konstrukci DNA P450 2B1. Další biochemická analýza klonů za použití enzymatické dealkylace 7-pentoxyresorufinu cytochromem P450 2B1 odhalila, že geneticky modifikované buňky produkují cytochrom P450 2B1.
Kapsule obsahující tyto buňky byly vyrobeny jak je uvedeno v příkladu 1 a implantovány do myší blízko místa nádoru. Po léčbě cyklofosfamidem nebo ifosfamidem byla hodnocena účinnost léčby, jak je popsáno výše.
Retrovirový expresní vektor, který obsahuje gen kódující krysí cytochrom P450-2B1, může být také připraven, jak je dále popsáno v příkladě 4.
Příklad 3
Plazmid pLX125 byl nejdříve částečně štěpen restrikčním enzymem Xhol, aby vznikl vektor, který je linearizovaný na pozici 3547. Tento lineární plazmid byl dále štěpen restrikčním enzymem SspBI, aby se odstranil krátký fragment ve vícevazebném pLX125. V reparativním gelu se ukázalo, že správně odříznutý fragment vektoru je největším pásem. Při použití protokolu Quiaex (Qiagen) byla DNA v tomto pásu eluovaná a purifíkovaná z gelu.
-13CZ 288074 B6
Pro získání genu krysího cytochromu P450 2B1, byly buňky z linie buněk krysího hapatomu HTC podrobeny lýzi s roztokem D (4 M guanidium thiokyanátu, 25 mM citrátu sodného pH 7, 0,5 % N-natrium-laurylsarkosinu, O,1M 2-merkaptoethanolu) a celková RNA byla extrahována přidáním 1/15 objemu 3M octanu sodného, přidány byly při stejném objemu vody saturovaný 5 fenol a 1/5 objemu chloroform/izoamylalkoholu (49:1) a celá směs silně míchána. Po 15 min na ledu byl extrakt odstřeďován 20 min při 4 °C při 10 000 g. RNA ve vodné fázi byla precipitována s jedním objemem izopropanolu po dobu 3 min při -20 °C a odstřeďována při 10 000 g při 4 °C. Peleta byla promyta v 70% ethanolu a ponechána při teplotě místnosti po dobu 15 min odstřeďování při 4°C a 10 000 g byla peleta sušena ve vakuové sušičce a znovu rozpuštěna 10 v 0,5% roztoku SDS.
Extrahovaná RNA byla reverzně transkribována při použití protokolu pro syntézu cDNA (Pharmacia). Výsledná cDNA byla použita jako matrice pro PCR. Primery byly navrženy tak, aby obsahovaly SspBI restrikční místo (podtržené) v levém primeru (5‘15 AAGCCTGTACACTGGAGAGCATGCAC-3 ‘1 a celé místo Xhol (podtržené) v pravém primeru (5‘-CGATTACTCGAGACCTGGCTGCCTCA-3‘). Oba primery mají dodatečné báze na 5‘konci pro vyšší účinnost štěpení odpovídajícím restrikčním enzymem. 1526 bp-produkt byl štěpen pomocí Xhol a SspBI, aby se získaly tři fragmenty.
Tento nejdelší fragment (1545 bp), obsahující gen pro cytochrom P450, byl podvázán do Xhol/SspBI štěpeného plazmidu pLX125.
Stabilní linie buněk, která exprimuje krysí cytochrom P450 formu 2B1 konstitutivně, může být také připravena jak je dále popsáno v příkladu 5.
Příklad 4
Pro získání mRNA z krysího cytochromu P450 forma 2B1 byla usmrcena čtyři týdny stará 30 samice krysy, játra byla vyjmuta a okamžitě zmražena v kapalném dusíku. Zmrazená játra byla vložena do sterilizovaného filtrovaného GTC-pufřu (6M guanidium izothiokyanát, 5 mM citrát sodný, 0,lM 2-merkaptoethanol, 0,5 % N-natrium-laurylsarkosin) a homogenizovaná při teplotě místnosti. Pro separaci RNA byl extrakt z jater dán na polštář chloridu česného (5,7 M chlorid česný, 0,lMEDTA) a odstředěn ve sklopném rotoru při 20 °C a 32 000ot/min přes noc. 35 Po úplném odstranění supematantu byla peletovaná RNA znovu rozpuštěna v ledově studeném lOmM Tris pH 7,5 a precipitována přes noc při -20 °C s 1/15 objemu 3M octanu sodného a 2,5 objemu ethanolu. RNA byla odstřeďována ke dnu 40 min při 8 000 ot/min a 4 °C a vysušená peleta znovu suspendována ve sterilní vodě.
Extrahovaná RNA byla reverzně transkribovaná za použití protokolu pro syntézu cDNA (Pharmacia). Výsledná cDNA byla použita jako matrice pro následující PCR. Primer byl navržen tak, aby obsahoval restrikční místo EcoRI v levém primeru (5‘CGTGCGGAATTCGGCGGATTCAGCAT-3‘) a restrikční místo AcoRVI v pravém primeru (5‘-ATAACGGATATCACCTGGCTGCCTCA-3‘). Oba primery měly dodatečné báze na 45 5‘konci pro vyšší účinnost štěpeného enzymu. 1588 bp-amplifikator byl štěpen s EcoRI a AcoRV, aby se získali tři fragmenty.
Tento nejdelší fragment (1572 bp), obsahující gen pro cytochrom P450 2B1, byl ligován do EcoRI/EcoRV štěpeného plazmidu pcDNA3 (Innvitrogen).
-14CZ 288074 B6
Příklad 5
Stavba ProCon vektoru obsahujícího gen krysího cytochromu P450 pod transkripční kontrolu WAP promotoru.
Extrahovaná RNA připravená podle příkladu 4 byla reverzně transkribovaná za použití protokolu pro syntézu cDNA (Pharmacia). Výsledná cDNA je použita jako matrice (templát) pro PCR. Primery byly navrženy tak, aby obsahovaly restrikční místo BamHI (podtrženo) v levém primem (např. 5‘-AAGCCGGATCCCTGGAGAGCATGCAC-3‘) a BamHI místo (podtrženo) v pravém primerů (např. 5‘-CGATTAGGATCCCTGCCTCA-3‘). Oba primery mají dodatečné báze na 5‘-konci pro vyšší účinnost štěpení odpovídajícím restrikčním enzymem. 1526 bp produkt je štěpen pomocí BamHI a získaný fragment obsahující gen pro cytochrom P450 je ligován do BamHI štěpeného plazmidu pWAP6 (viz přihláška PCT č. PCT/EP96/03922 zveřejněná jako W097/09440).

Claims (16)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
    1. K.apsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450, vyznačující se tím, že sestává z porézní membrány jež je propustná pro průchod molekul prodrogy do kapsule, přičemž molekuly prodrogy jsou přeměňovány na aktivní metabolity cytochromem P450.
  2. 2. Kapsule podle nároku 1,vyznačující se tím, že materiál kapsule sestává z komplexu tvořeného sulfátem celulózy a polydimethyldiallylammonia.
  3. 3. Kapsule podle nároku 1 nebo 2, vyznačující se tím, že buňka produkující cytochrom P450 obsahuje savčí expresní vektor pcDNA3 nesoucí gen cytochromu P450 z krysích jater, jenž kóduje cytochrom P450 2B1.
  4. 4. Kapsule podle kteréhokoliv z nároků 1 až 3 pro použití k léčbě rakovinového onemocnění nebo jiného obdobného onemocnění nebo poruchy.
  5. 5. Kapsule podle nároků 1 a 4 pro současné nebo následné podávání subjektu s prodrogou, která je aktivovaná cytochromem P—450, v terapeuticky účinném množství.
  6. 6. Kapsule podle nároku 5 pro podávání injekčně a/nebo implantací do cílových buněk a/nebo v jejich místě, přičemž prodroga se podává systemicky a/nebo lokálně.
  7. 7. Kapsule podle kteréhokoliv z předchozích nároků 4až6, vyznačující se tím, že cílové buňky jsou buňky nádorů prsu a/nebo nádorů slinivky.
  8. 8. Kapsule podle kteréhokoliv z předchozích nároků 5až7, vyznačující se tím, že prodroga je cyklofosfamid a/nebo ifosfamid.
  9. 9. Farmaceutická kompozice, vyznačující se tím, že obsahuje kapsuli podle kteréhokoliv z předchozích nároků 1 až 8.
  10. 10. Farmaceutická souprava, vyznačující se tím, že obsahuje kapsuli podle kteréhokoliv z předchozích nároků 1 až 8 a prodrogu, která je aktivovatelná cytochromem P450.
    -15CZ 288074 B6
  11. 11. Farmaceutická souprava podle nároku 10, vyznačující se tím, že kapsule aprodroga jsou v různých lékových formách.
  12. 12. Farmaceutická souprava podle nároku 11, vyznačující se tím, že obsahuje kapsule ve formě vhodné pro podávání injekcí a/nebo implantací do cílových orgánů a/nebo poblíž těchto cílových orgánů a prodrogu ve formě pro systemické a/nebo lokální podávání.
  13. 13. Farmaceutická souprava podle nároků 10ažl2, vyznačující se tím, že obsahuje kapsule ve formě vhodné pro implantaci do a/nebo poblíž tkáně rakoviny prsu nebo tkáně rakoviny slinivky.
  14. 14. Farmaceutická souprava podle nároků 10ažl3, vyznačující se tím, že obsahuje cyklofosfamid a/nebo ifosfamid jako prodrogu.
  15. 15. Použití kapsuli podle kteréhokoliv z předchozích nároků 1 až 8 pro přípravu farmaceutické soupravy podle nároku 10.
  16. 16. Použití kapsuli podle kteréhokoliv z předchozích nároků 1 až 8 pro přípravu farmaceutické kompozice pro ablaci nádorových buněk.
CZ19983050A 1996-03-27 1997-03-27 Kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450 CZ288074B6 (cs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DK35296 1996-03-27

Publications (2)

Publication Number Publication Date
CZ305098A3 CZ305098A3 (cs) 1999-01-13
CZ288074B6 true CZ288074B6 (cs) 2001-04-11

Family

ID=8092560

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CZ19983050A CZ288074B6 (cs) 1996-03-27 1997-03-27 Kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450

Country Status (19)

Country Link
US (1) US6893634B1 (cs)
EP (1) EP0892852B1 (cs)
JP (1) JP4229982B2 (cs)
AT (1) ATE309383T1 (cs)
AU (1) AU713382B2 (cs)
CA (1) CA2250173A1 (cs)
CZ (1) CZ288074B6 (cs)
DE (1) DE69730595D1 (cs)
DK (1) DK0892852T3 (cs)
ES (1) ES2253775T3 (cs)
HU (1) HU221349B1 (cs)
IL (1) IL125795A0 (cs)
NO (1) NO325392B1 (cs)
NZ (1) NZ331765A (cs)
PL (1) PL188323B1 (cs)
RU (2) RU2185821C2 (cs)
SI (1) SI0892852T1 (cs)
SK (1) SK282744B6 (cs)
WO (1) WO1997035994A2 (cs)

Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ATE309000T1 (de) 1995-06-27 2005-11-15 Bavarian Nordic As Verkapselte zellen die virenpartikeln produzieren
US6540995B1 (en) 1996-03-27 2003-04-01 Bavarian Nordic Research Institute Gmbh Encapsulated cells producing cytochrome P450
SI0892852T1 (sl) 1996-03-27 2006-04-30 Bavarian Nordic As Inkapsulirane celice, ki eksprimirajo citokrom P450 za aktiviranje predzdravila
AU6328099A (en) * 1998-09-21 2000-04-10 Transgene S.A. Pharmaceutical composition for the pre-treatment of a patient in need of drug or pro-drug
GB0400443D0 (en) 2004-01-09 2004-02-11 Oxford Biomedica Ltd Cascade
US7091040B1 (en) * 1999-01-04 2006-08-15 Innovata Plc P450/acetaminophen genetically directed enzyme prodrug therapy (GDEPT)
GB9900009D0 (en) * 1999-01-04 1999-02-24 Ml Lab Plc Gene therapy
GB0010105D0 (en) * 2000-04-26 2000-06-14 Ml Lab Plc Cell ablation
WO2003025191A2 (en) * 2001-09-21 2003-03-27 Oxford Biomedica (Uk) Limited Pseudotyped retroviral vector system
GB201408233D0 (en) 2014-05-09 2014-06-25 Austrianova Singapore Pte Ltd Use of polyanionic composition
MX377487B (es) 2015-05-29 2025-03-04 Univ Mexico Nac Autonoma Nanoparticulas biocataliticas cyp-p22 con actividad citocromo p450 para la activacion de profarmacos.

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA1215922A (en) * 1984-05-25 1986-12-30 Connaught Laboratories Limited Microencapsulation of living tissue and cells
JPH02504344A (ja) 1988-05-17 1990-12-13 スローン‐ケツテリング・インステイテユート・フオー・キヤンサー・リサーチ レトロウイルスベクター
WO1994029437A1 (en) 1993-06-07 1994-12-22 University Of Medicine & Dentistry Of New Jersey Highly-efficient, self-inactivating, recombination-free, u3-free retroviral vectors
RU2039593C1 (ru) * 1993-06-22 1995-07-20 Ф.А. Чернышкова Катализатор для получения фенола и ацетона
US5688773A (en) * 1994-08-17 1997-11-18 The General Hospital Corporation Method of selectively destroying neoplastic cells
JP4037446B2 (ja) 1994-09-02 2008-01-23 ゲーエスエフ − フォルシュンクスツェントルム・フューア・ウムベルト・ウント・ゲズントハイト・ゲーエムベーハー 非自己不活化性の発現標的化レトロウイルスベクタ
ATE309000T1 (de) 1995-06-27 2005-11-15 Bavarian Nordic As Verkapselte zellen die virenpartikeln produzieren
JPH11511979A (ja) * 1995-09-06 1999-10-19 ババリアン・ノルディック・リサーチ・インスティテュート・アクティーゼルスカブ ヒト乳癌細胞を含むヒト乳腺細胞を標的として、連結された異種性遺伝子を発現させるためのwapまたはmmtv制御配列の使用
SI0892852T1 (sl) 1996-03-27 2006-04-30 Bavarian Nordic As Inkapsulirane celice, ki eksprimirajo citokrom P450 za aktiviranje predzdravila

Also Published As

Publication number Publication date
WO1997035994A3 (en) 1997-11-20
HU221349B1 (en) 2002-09-28
US6893634B1 (en) 2005-05-17
CA2250173A1 (en) 1997-10-02
NO984540D0 (no) 1998-09-28
EP0892852B1 (en) 2005-11-09
NO325392B1 (no) 2008-04-21
JP2000509249A (ja) 2000-07-25
JP4229982B2 (ja) 2009-02-25
SK132398A3 (en) 1999-04-13
DK0892852T3 (da) 2006-03-06
WO1997035994A2 (en) 1997-10-02
HUP9904116A3 (en) 2001-01-29
AU2382797A (en) 1997-10-17
RU2185821C2 (ru) 2002-07-27
PL329071A1 (en) 1999-03-15
NZ331765A (en) 2000-02-28
SI0892852T1 (sl) 2006-04-30
DE69730595D1 (de) 2004-10-14
NO984540L (no) 1998-09-28
RU2223788C2 (ru) 2004-02-20
AU713382B2 (en) 1999-12-02
HUP9904116A2 (hu) 2000-04-28
ES2253775T3 (es) 2006-06-01
SK282744B6 (sk) 2002-12-03
ATE309383T1 (de) 2005-11-15
PL188323B1 (pl) 2005-01-31
IL125795A0 (en) 1999-04-11
EP0892852A2 (en) 1999-01-27
CZ305098A3 (cs) 1999-01-13

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0776161B1 (en) Use of a viral vector encoding a cytochrome p450 gene in combination with a chemotherapeutic agent for selectively destroying neoplastic cells
JP4848348B2 (ja) ウイルス粒子産生カプセル化細胞
US20020051763A1 (en) Host-vector system which can be used in gene therapy
JP2001000195A (ja) 複製性又は半複製性ウイルス構築物、その製造、及び遺伝子送達のためのその用途
CZ288074B6 (cs) Kapsule zapouzdřující buňky produkující cytochrom P450
EP0848757B1 (en) The use of the wap of mmtv regulatory sequences for targeted expression of linked heterologous genes in human mammary cells, including human mammary carcinoma cells
JP3535521B2 (ja) レトロウイルスベクターおよび遺伝子治療におけるその用途
US6540995B1 (en) Encapsulated cells producing cytochrome P450
Searle et al. Sensitisation of human ovarian cancer cells to killing by the prodrug CB1954 following retroviral or adenoviral transfer of the E. coli nitroreductase gene
JPH11503916A (ja) 高力価組換えレトロウイルス調製物による細胞の高効率エクスビボ形質導入
EP0859854B1 (en) Retroviral vectors carrying senescent cell derived inhibitors 1 (sdi-1) or antisense sdi-1 nucleotide sequences
EP1179083A1 (en) Triple hybrid amplicon vector systems to generate retroviral packaging lines
Unger Enriching suicide gene bearing tumor cells in vivo for an increased bystander effect: a novel strategy for cancer gene therapy
Takebe et al. Protection of Hematopoietic Progenitor Cells from Chemotherapy Toxicity by Transfer of Drug Resistance Genes
Miyao et al. Investigations of Retroviral-Mediated Gene Therapy for Malignant Glioma: Transduction with HTK-Bearing Retroviruses Sensitizes Glioma Cells to Ganciclovir

Legal Events

Date Code Title Description
PD00 Pending as of 2000-06-30 in czech republic
MM4A Patent lapsed due to non-payment of fee

Effective date: 20110327