DD220334A5 - Verfahren zur isolierung des carboxypeptidase b enzyms aus dem pankreas von saeugetieren - Google Patents

Verfahren zur isolierung des carboxypeptidase b enzyms aus dem pankreas von saeugetieren Download PDF

Info

Publication number
DD220334A5
DD220334A5 DD84261731A DD26173184A DD220334A5 DD 220334 A5 DD220334 A5 DD 220334A5 DD 84261731 A DD84261731 A DD 84261731A DD 26173184 A DD26173184 A DD 26173184A DD 220334 A5 DD220334 A5 DD 220334A5
Authority
DD
German Democratic Republic
Prior art keywords
centrifuged
suspension
allowed
enzyme
stand
Prior art date
Application number
DD84261731A
Other languages
English (en)
Inventor
Laszlo Boross
Erzsebet Dala
Aranka Kiss
Bela Szajani
Arpad Tetzli
Original Assignee
Reanal Finomvegyszergyar
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Reanal Finomvegyszergyar filed Critical Reanal Finomvegyszergyar
Publication of DD220334A5 publication Critical patent/DD220334A5/de

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/04Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier entrapped within the carrier, e.g. gel or hollow fibres
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • Y10S435/816Enzyme separation or purification by solubility

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

ERFINDUNGSGEMAESS WIRD DAS HOMOGENISIERTE PANKREAS AUTOLYSIERT, DAS ERHALTENE AUTOLYSAT MIT EINEM PUFFER MIT EIN PH-WERT VON 5,0-8,5 IN EINEM VERHAELTNIS VON 1:1 VERDUENNT UND BEI 50-75 GRAD CELSIUS 5-30 MINUTEN LANG EINER WAERMEBEHANDLUNG UNTERWORFEN. DAS SO ERHALTENE GEMISCH WIRD ZENTRIFUGIERT, UND DER SUPERNATIERENDEN LOESUNG WERDEN 200-320 G/I AMMONIUMSULFAT ZUGEGEBEN. DIE SUSPENSION WIRD ZENTRIFUGIERT, DER ERHALTENEN FLUESSIGKEIT WERDEN 10-80 G/I AMMONIUMSULFAT ZUGEGEBEN. DAS ERHALTENE AKTIVE CARBOXYPEPTIDASE ENZYM FAELLT AUS, DER NIEDERSCHLAG WIRD ZENTRIFUGIERT, DAS ERHALTENE ENZYM N WASSER ODER EINER PUFFERLOESUNG GELOEST UND GEGEN WASSER ODER EINE PUFFERLOESUNG DIALYSIERT. DAS ERHALTENE PRODUKT WIRD IN GEFRORENEM ZUSTAND GELAGERT.

Description

Verfahren zur Isolierung des Carboxypeptidase B Enzyms aus dem Pankreas von Säugetieren
Anwendungsgebiet der Erfindung: , . . ' ',.
Die Erfindung betrifft ein neues Verfahren zur Isolierung . des Carboxypeptidase B Enzyms aus dem Pankreas vonSäugetieren - insbesondere aus Schweinepankreas.
Charakteristik der bekannten technischen Lösungen:
Das als Handelsprodukt zugängliche Carboxypeptidase B Enzym wird aus der Schweinebauchspeicheldrüse isoliert· Wach der Fachliteratur kann dieses Enzym jedoch auch aus dem Pankreas von anderen Säugetieren (z.B. Rind, Ziege) isoliert werden.
lach dem in J. Biol. Chem. £35, .2272 (1960) publizierten Artikel wird das Schweinepankreas aufgeschnitten und bei . Raumtemperatur autolysiert. Der Fettgehalt des Organs wird
.;: <n Π ;. . Π-
· "7 C "7·ι
_ ο —
mit Aceton, einem Aceton-Äther Gemisch und schließlich Äther entfernt, das entfettete Organ wird getrocknet und pulverisiert« Das acetonische Pulver wird mit Y/asser extrahiert und das Extrakt mit Ammoniumsulfat fraktioniert. Das Produkt wird-· nacheinander einer Entsalzung, einem Ionenaustausch (aufDEAE-Cellulose, durch Säulenchromatographie) und einer Ausfällung mit Ammoniumsulfat unterworfen. Der Niederschlag wird durch Dialyse oder Gelfiltrieren entsalzen. Das Enzym wird in gefrorenem Zustand gelagert, weil, die Liophylisierung die Aktivität um 25-45 % herabsetzt«
Die spezifische Aktivität des Produkts beträgt 184,2 Einheiten/mg (bei 25 C mit einem Hippuryl-L-arginin Substrat gemessen), was im Vergleich zum- aus dem autolysierten Gewebe erhaltenen. Extrakt einer 1f?-T7fachen Reinigung entspricht* . " > ' . .· ·. . .' ·.·:. . - ' V· · ·.. ' .
In der Praxis wird die* obige Methode irPden meisten Fällen angewendet. . ' ;> . , ' . . "
Gemäß Biochemistry A_, 1069 (1962) kann Carboxypeptidase B aus Rinderpankreas in kristalliner Form durch Aktivierung des gereinigten Zimogens - d.h. des Procarböxypeptidase B Enzyms - hergestellt werden. Fach diesem-Verfahren wird als Ausgangsstoff ebenfalls das wäßrige Extrakt des acetonischen Pankreaspulvers verwendet. Das wäßrige Extrakt enthält das Procarböxypeptidase B Enzym, welches einer, chrömatographischen Reinigung zuerst an DEAE-Cellulose und darauffolgend an DEAE-Sephadex unterworfen wird· Das Procarboxypeptidase-B-Enzym wird mit Tripsin in das aktive Garboxypeptidase B Enzym überführt, welches schließlich kristallisiert wird.
In dem in Biοehem. 163, 253 (1977) publizierten Artikel ' wird die Isolierung des Carboxypejptida.se B Enzyms aus humanem Pankreas beschrieben. Die Herstellung des acetonischen Pulvers, die Ausfällung mit Ammoniumsulfat und die
DEAE-Cellulose-Chromatographie werden im wesentlichen wie in J. Biol. Chem. 235, 2272 (1960) offenbart, durchgeführt. Das für die Aufarbeitung von humanem Pankreas beschriebene Verfahren unterscheidet sich von der obigen Methode nur in den bei der DEAE-Cellulose-Chromatographie Verwendeten Pufferkonzentrationen und Eluentengradienten. Das so erhaltene Carboxypeptidase B wird durch an Whatman CM-Gellulose Ionenaustauscher durchgeführte Chromatographie auf zwei Fraktionen - und zwar B- und Bp- aufgetrennt. Die spezifische Aktivität der B-- und Bp-Fraktionen beträgt 1192 Einheiten/mg bzw. 862 Einheiten/mg (bei 37 C0 und an einem Hippuryl-L-Arginin Substrat gemessen),was zum wäßrigen Extrakt verglichen einer 108fachen bzw. 78fachen Reinigung entspricht. Carboxypeptidase B Enzym kann auch aus Ziegenpankreas isoliert werden. /"Indian J. Biochem. Biophys. JJ2, 24 (1975) bzw. 13, 106 (1976)^7. ;
Die wesentlichen Merkmale dieses Verfahrens sind folgende: Das Ziegenpankreas wird bei -2.0 C0 gefroren, in gefrorenem Zustand aufgeschnitten und die bei +4 C0 ausfließende ZeIlflüssigkeit gesammelt. Die gesammelte Flüssigkeit wird einer Autolyse unterworfen. Der pH-Wert der Lösung wird auf 4,6 eingestellt, die Lösung mit destilliertem Wasser auf das zehnfache Volumen verdünnt und die entstandene Suspension bei +4 C0 2-3 Stunden lang stehengelassen. Der überwiegende Teil des aktiven Carboxypeptidase Enzyms fällt aus. Der Niederschlag wird mit 'Bariumhydroxyd bei einem pH-Wert zwischen 10,0 und 10,4 extrahiert. Aus dem Extrakt wird das Enzym bei einem pH-Wert von 6,5 kristallisiert und viermal umkristallisiert· Die weitere Reinigung des so erhaltenen Präparats wird in Indian J. Biochem. Biophys. V3t 106 (1976) beschrieben. Nach dieser Methode wird das bei einem pH-Wert von 6,5 ausgefällte Produkt in einer 0,2molaren Bariumhydroxydlösung gelöst, der pH-Wert mit Essigsäure auf 7,0 eingestellt und die Substanz durch mit Ammoniumsulfat durchgeführte Fraktionierung und wiederholten Ionenaustausch
' ' ' · . ' ' · : .-· =. · . :. / -.4 -
· ' '. ·· : l ' -.; 4 — '"' ' ....'; · -.. ;>. · ' .· ' : ' '; ; · '
(auf DEAE-Cellulose) weitergereinigt„ Die entsalzte Enzym- , lösung wird bei -20 C gelagert. .::.: '"',
Die spezifische Aktivität des Produktes beträgt 102,66 Einheiten/mg (an einem Hippuryl^-L-Arginin-Substrat gemessen),. was einer 44fachen Reinigung entspricht. .
. lach dem in J. Mol. Catal. VO, 253 (1981) publizierten Artikel wird das wäßrige Extrakt des acetoni*schen Pulvers von Ziegenpankreas mit'Ammoniumsulfat fraktioniert und die bei einer 0,3-0jTfachen Sättigung erhaltene Fraktion einer Chromatographie auf CM-Sephadex CV50 und DEAE-Celluloae unterworfen« Die spezifische Aktivität des so hergestellten Produktes beträgt 82,9 Einheiten/mg (an einem Hipptiryl^L-
.. -Arginin-'Substrat gemessen), was einer 18,2f achten Reinigung '.entspricht. .', · ; ' ".', ... ·: . ': . ''.. :. . '"·, :·''ν.''',V '. '" 'V ';\ ..,'.;
Der gemeinsame Nachteil der obigen Methoden besteht darin, daß als Ausgangsstoff die Zellflüssigkeit von Pankreas oder das acetonische Pulver des Organs eingesetzt wird. Die Sammlung der Zellflüssigkeit ist schwierig und im Falle von Schweinepankreas wegen des hohen Fett- und Schleimgehaltes des Organs praktisch undurchführbar. Die Herstellung des - acetoiiisehen Pulvers erfordert die Anwendung von kostspieligen, feuer- und explosionsgefährlichen lösungsmitteln (Äther, Aceton). Die örtlichen Erwärmungen können das Enzym schädigen, die Ausbeute und die spezifische Aktivität herabsetzen» Ein weiterer Nachteil liegt darin, daß ein Produkt mit zufriedenstellender Reinheit nur mit Hilfe eines komplizierten, aus vielen Schritten ,bestehenden ArbeitsVorgänges herstellbar ist. ! ·': ''./'
j · '. ' .. - 5 - _ -; .' · . - . ;,;Ziel der Erfindung: . ; :
Ziel der Erfindung ist die Beseitigung'der obigen Nachteile der bekannten Methoden und die Schaffung eines Verfahrens, nach welchem Carboxypeptidase B Enzym mit einer geeigneten spezifischen Aktivität einfach, unter Beseitigung der Sammlung der Organflüssigkeit und der Herstellung des acetonischen Pulvers hergestellt werden kann. . .
Darlegung des Wesens der Erfindung; .,.': , '
Es wurde gefunden, daß wenn man das homogenisierte Schweinepankreas einer Autolyse und einer darauffolgenden Wärmebehandlung unterwirft, danach zentrifugiert oder filtriert, die supernatierende Flüssigkeit mit einem aus einem einwertigen Kation und einer anorganischen Säure gebildeten Salz in zwei Stufen sättigt, danach aus der bei der zweiten Sättigungsstufe erhaltenen Suspension den Niederschlag abtrennt und die Lösung des Niederschlages gegen Wasser
. .. ·. /v .
dialysiert, eine Enzymlösung erhalten wird, welche bei 25 C0 an einem Hippuryl-L-Arginin Substrat gemessen eine spezifische Aktivität von mindestens 70 Einheiten/mg aufweist und zur Herstellung von immobilisiertem Carboxypeptidase B Enzym ohne weitere Reinigung unmittelbar verwendet werden kann. .
Gegenstand der Erfindung ist ein neues Verfahren zur Herstellung von Carboxypeptidase B Enzym aus ,dem Pankreas von Säugetieren, bei dem man erfindungsgemäß die Bauchspeichel-.drüse in an sich bekannter Weise homogenisiert, das Homogenisat bei 37 C0 eine Stunde lang oder bei 25 C0 16 Stunden lang autolysiert, danach mit einem Puffer.mit einem pH-Wert von 5ι0-8,5 in einem Verhältnis von 1:1 verdünnt und 5-30 Minuten lang bei 50-75 C° einer Wärmebehandlung unterwirft, das so behandelte Gemisch zentrifugiert oder filtriert, der supernatierenden Flüssigkeit 200r32Q g/l
Ammoniumsulfat zugibt, die erhaltene Suspension zentrifugiert, den Niederschlag verwirft, der supernatierenden : Flüssigkeit 10-50 g/l Ammoniumsulfat zugibt, die ausgefällte, das Carboxypeptidase B Enzym enthaltende aktive Fraktion durch Zentrifugieren abtrennt, dieses Enzym im Wasser oder in einer Pufferlösung löst, gegen Wasser oder eine Pufferlösung dialysiert und in gefrorenem Zustand lagert.
Nach dem erfindungsgemäßen Verfahren wird das homogenisierte und autolysierte Pankreas ,mit einem Puffer, dessen pH-Wert 5,0-8,5$ zweckmäßig 6,0 beträgt, in einem Verhältnis von 1:1 verdünnt und danach bei 50-75 C 5-30 Minuten lang, zweckmäßig bei 60 C0 SO Minuten lang, einer Wärmebehandlung unterworfen« Bei dieser Wärmebehandlung, wird der überwiegende Teil der das zu isolierende Enzym begleitenden Proteine denatiriert. Das denaturierte Protein fällt aus der wäßrigen Lösung in Form eines Niederschlages mit großer Oberfläche aus und zieht infolge seiner klärenden Wirkung, einen großen Teil der in der Lösung zurückgebliebenen Verunreinigungen mit. Dadurch wird1 die bisherige schwierige und kost^ spielige Herstellung des acetonischen Pankreäspulvers beseitigt. ' . · ;·. ".; . · ; '
Sin erheblicher Teil der Proteinverunreinigungen wird aus der nach Trennung der denaturierten Proteine erhaltenen Pufferlösung durch Zugabe von 200-320 g/l,vorzugsweise 310-320 g/l, Ammoniumsulfat ausgefällt» Der Niederschlag, weicher die Proteinverunreinigungen enthält, wird entfernt,' und aus der supernatierenden Flüssigkeit wird das enzymhaltige Produkt durch Zugabe von 10-80 g/l, vorzugsweise 30 g/l, Ammoniumsulfat ausgefällt. Der Niederschlag wird in Wasser oder einer Pufferlösung gelöst und die Lösung in an sich bekannter W^ise gegen Wasser dialysiert. -Die bei 25, C° gemessene spezifische Aktivität des so erhaltenen' enzymhaltigen Produktes beträgt mindestens 70 Einheiten/mg,
· · ' ·. Vv' ' ' .' ": ' ' ·'. ';. - . -7 -
' '.· . ' ' - 7 " '- :.' .. '.'· ·'.' ' ' . '.' ' ' '.-
was einer etwa IOfachen Reinigung entspricht. Das. so erhaltene Produkt kann zur Herstellung von immobilisierten Enzympräparaten ohne weitere Reinigung unmittelbar eingesetzt werden. . ; ' ' :
Die immobilisierten Carboxypeptidase B Enzym. Präparate können zur Bestimmung der COOH-terminalen Aminosäuren von Proteinen und Peptiden oder zur Trennung vonDL-Arginin oder DL-Lysin im betrieblichen Maßstab verwendet werden. Der letzteren prktischen Anwendung stehen die komplizierte Herstellung des Enzyms und die hohen Kosten dafür entgegen. Das erfindungsgemäße Isolierungsverfahren des Enzyms beseitigt die obigen Schwierigkeiten und ermöglicht die betriebliche Anwendung des Enzyms. Dies fördert die Immobilisierung des Enzyms in aktiver Form und dadurch die Verbreitung des kontinuierlichen Verfahrens.
Auaführungsbeispiele: " '
Beispiel 1 . ...",. . ·
0,25 kg Schweine pankreas werden in einer Pleiscbinühle gemahlen, woraufhin 250 ml eines 0,05 molarenTris-HCl-Puffers (pH 7»0) zugegeben werden und das Gemisch über Nacht bei +4 C0 stehengelassen wird. Am nächsten Tag wird die Suspension auf 37 C0 erwärmt und eine Stunde lang bei dieser Temperatur stehengelassen. Die Organsuspension wird zentrifugiert, die supernatierende.Flüssigkeit auf 50 C° erwärmt und bei dieser Temperatur weitere 30 Minuten lang inkubiert. Each.'Zugabe von 2 Vol. Teilen eines eiskalten.Puffers wird das Gemisch zentrifugiert. Der supernatierenden Flüssigkeit werden 42,2 g Ammoniumsulfat zugegeben. Das Gemisch wird eine Nacht lang stehengelassen, die Suspension zentrifugiert und der Niederschlag verworfen. Der p'K-Wert, der .supernatierenden. Flüssigkeit wird auf 7,0-7,2 eingestellt. Nach Zugabe , von 36,1 g Ammoniumsulfat wird die Suspension eine Nacht
lang stehengelassen und zentrifugiert. Der Niederschlag wird in einem leicht kaltem (+4C°) Tris-HCl-Puffer (pH 7,0) gelöst und mit destilliertem Wasser salzfrei dialysiert, Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren. :.
Ausbeute: 343 mg Carboxypeptidäse B.. ' .
Spezifische Aktivität; 17,5 /UMol hydrolysiertes Hippuryl- -L-Arginin/Minute/mg protein« ,
Beispiel 2 ' '...'. : '.. '; '., ' ' . :':' ' ' . .. . ·
0,25 ,kg SchweinebauGhspeicheldruae werden in' einer Fleisch- . mühle gemahlen, woraufhin 250 ml eines 0,05 molaren Tris- -HCl-Puffers (pH 7,0) zugegeben werden. Das Gemisch: wird eine Nacht lang bei +4 G stehengelassen· Am nächsten Morgen wird die Suspension auf #37 C erwärmt und eine Stunde lang bei dieser temperatur stehengelassen.; Die Organsuspension wird zentrifugiert, die supernatierende Flüssigkeit auf 60 C0 .•'erwärmt-.und bei dieser Temperatur weitere 10 ,Minuten lang inkubiertο Nach Zugabe von 2 VoI, Teilen eines eiskalten Puffers wird das Gemisch zentrifugierte Der supernatierenden Flüssigkeit werden 92 g Ammoniumsulfat zugegeben» Weil nach dem Stehenlassen über eine Nacht kein Niederschlag ausschied, werden der Lösung nach Einstellung des pH-Wertes auf 7,0-7,2 weitere 78,7 g Ammoniumsulfat zugegeben«.Die Suspension wird eine Nacht stehengelassen und zentrifugiert. Der Niederschlag wird in ein. wenig kaltem (.+4 CG); Tr is -HGl -Puff er CpPI 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser .salzfrei dialysiert. Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und ' ^gefroren. ' \'· ; · " ' ;. ... ·' ' \ ; ' v" r':'v:.' ..·;·.· ;. '.'.··.. ' ' . .·
Ausbeute: 295 mg Cärboxypeptidase. ;":
Spezifische Aktivität; 53,1 /UMol hydrolysiertes Hippuryl- -L-Arginin/Minute/mg: Proteini . . : .· . -. · ?': "·.; ''. .· . V .
' · ' ' - · ; : -. -.. -. ·. ' ' ".· :' '..· 9 -
0,25 kg Schweinebauchspeicheldrüso werden in.einer Fleisch-, mühle gemahlen, woraufhin 250 ml eines 0,05 molaren Tris- ~iiCl-Puffers (pH 7,0) zugegeben werden und das Gemisch eine Nacht lang bei +4 C0 stehengelassen wird·. Am nächsten Morgen wird die Suspension auf -37 C0 erwärmt und eine Stunde lang bei dieser Temperatur stehengelassen, pie Organauspension wird zentrifugiert, die supernatierehde Flüssigkeit auf 60 C erwärmt und bei dieser Temperatur weitere 20 Minuten lang inkubiert. Nach Zugabe von 2 VoJLiTeilen eines eiskalten Puffers wird das Gemisch zentrifugiert. Der supernatierenden | Flüssigkeit v/erden 98,2 g Ammoniumsulfat zugegeben. Weil nach dem Stehenlassen über Nacht kein Niederschlag ausschied, werden der Lösung nach Einstellung des pH-Wertes auf 7,0-7,2 weitere 86,9 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird eine Nacht läng stehengelassen und zentrifugiert. Der Niederschlag wird in etwas kaltem (+4 C°) Tris-HCl-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert. Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren.
Ausbeute: 266 mg Carboxypeptidase.
Spezifische Aktivi-fcät: 63,2 yulfflol hydrolysiertes Hippuryl- -L-Arginin/Minute/mg Protein.
' ' ' ' I ' · '· -V ' \; .: ·:· ,'- ' ' ':' .·'· . /-'·.. '. · ·. " ., : ';'' Beispiel 4 ' . :
0,25 kg Schweinebauchspeicheldrüse werden in einer Fleisch.-mühle gemahlen, woraufhin 250 ml eines 0,05 molaren Tris- -HCl-Puffers (pH 7,0) zugegeben werden und das Gemisch eine Nacht lang bei +4 C0 stehengelassen wird. Am nächsten Morgen wird die Suspension auf +37 C0 erwärmt und eine Stunde lang bei dieser Temperatur stehengelassen. Die Organsuspen-
sion wird zentrifugiert, die supernatierende .Flüssigkeit auf 75 G0 erwärmt und bei dieser Temperatur weitere 5 Minuten lang inkubiert. Nach:Zugabe von 2 Vol.Teilen eines eiskalten Puffers wird das Gemisch, zentrifugierte Der supernatierenden Flüssigkeit werden 66,9 g Ammoniumsulfat zugegeben. Weil nach dem Stehenlassen über Nacht kein Niederschlag ausschied, werden der Lösung nach. Einstellung des pH-Wertes auf 7,0.-7»2 weitere 55»8 S Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird eine lacht lang stehengelassen und zentrifugiert. Der Niederschlag wird in etwas kaltem (+4 0°) Tris-HCl-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert.. Tiach.der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren.
.-· ) ' .- - ' .' ' ·-.-' ' '. Ausbeute: 34 mg Carboxypeptidase.
Spezifische Aktivität:.. 21,6 ,uMol hydrolysiertes Hippuryl- -L-Arginih/Minute/mg Protein. '·"' '·',.'
Tabelle 1
Einfluß der Temperatur und der Zeitdauer der Wärmebehandlung eines S chwe ine pankr eashomogenisats auf die Aktivität νen Carboxypeptidase B
Temperatur Zeit (C0) (Min.)
Gesamtaktivität (Einheit/kg Pankreas)
Gesamtprotein (mg/kg Pankreas)
Spezifische Aktivität (Einheit/mg)
50 30 23968
60 10 . 62660
20 67260
75 . 5 2932
1372
1180
1064
136
'17,5-
53,1 63,2 21,6
= 1 Einheit .entspricht einer Enzymmenge, die die Hydrolyse von 1,0 .
Hippuryl-L-Arginin7per Minute katalysiert (bei 25 C° und pH 7,65 gemessen)
··'' · ' ..' ' - 12 - ' ; ' ' : '' ' · '· Beispiel 5 . ' · . ' ·.. ." : ' ; ; ; · · ·.' .: - : ;. ,-... .
0,25 kg SchweiriebaUchspeicheldrüse werden in einer Fleischmühle gemahlen und über lacht bei Raumtemperatur stehenge- ; lassen. Am nächsten Morgen werden 250 ml eines 0,05 molaren Acetatpuffers (pH 5,0) zügegeben. Die Suspension wird auf 60 C° erwärmt und 20 Minuten lang bei ^dieser !Temperatur stehengelassen. Nach Zugabe von ^2 YoI. /Peilen eiskalten Wassers1 wird das Gemisch zentrifugiert« Der supernatierenden·." Flüssigkeit werden 27Λ»8 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird über Facht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen. Der supernatierenden Flüssigkeit werden nach Einstellung des pH-Wertes auf 7,0-7,2 232,9 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und:zentrifugiert. Der Rückstand wird in etwas kaltem (+4 C°) Tris-HCl-Puffer (pH 79O) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysierte Nach der Dialjrse wird die Lösung filtriert und gefroren.. : ; ' . ' ;..·. _ '· ,·' - ;':/.. . \ ; ' '.; · .. ' . ..:
Ausbeute: 36Ö mg Carboxypeptidase B. ^. v / ν
Spezifische Aktivität: 14,8 ,uMol hydrolysiertes Hippuryl- -Ij-Arginin/Minute/mg Protein. . .. '; -'.· ' .,'.- ''...,
Beispiel 6 . . '. . -:. ·,' ' ; ; ;' ; ...
0,25 kg Schweinebauchspeicheldrüse werden in einer Fleischmühle gemahlen-und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Arn nächsten Morgen werden 250 ml eines 0,05 molaren Acetatpuffers (pH 5,5) zugegeben. Die Suspension, wird auf 60 C0 erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur .stehengelassen» Nach Zugabe von 2 Vol. Teilen eiskälten Wassers wird das Gemisch zentrifugiert* Der supernatierenden Flüssigkeit werden 261 ,2 g Ammoniumsulfat zugegeben«, Die
. . . .-' . · .· ' ': : ':'. :,-.13:-
Suspension \vird eine Nacht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen.. Der supernatierenden Flüssigkeit werden nach Einstellung des pH-Wertes auf 7,0-7,2 228 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und zentrifugiert. Der Rückstand wird in etwas kaltem (+4 C0) Oiris-HCl-Püffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert. Nach der Dialyse wird die Lösung fi3/triert und gefroren.
Ausbeute: 317 mg Carboxypeptidase B.
Spezifische Aktivität: 20,3 /UM.ol hydrplysiertes Hippuryl- -L-Arginin/Minute/mg~Protein*
Beispiel 7 . . ;
0,3 kg Schweinebauchspeicheldrüse werden in einer Fleischmühle gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen werden 300 ml eines 0,05 molaren Phosphat puffers (pH 6,0) zugegeben. Die Suspension wird auf 60 C0 erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur stehengelassen. Nach Zugabe von 2 Vol. Teilen eiskalten Wassers wird das Gemisch zentrifugiert» Der supernatierenden Flüssigkeit werden 301 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird eine Nacht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen. Der supernatierenden Flüssigkeit v/erden nach Einstellung des pH-Wertes auf 7,0-7,2 252,6g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und zentrifugiert. Der Rückstand wird in etwas kaltem (+4 0°) Tris-HGl-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert* , Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren.
Ausbeute: 517 mg Carboxypeptidase B. . \,
Spezifische Aktivität: 57./uMol hydrolysiertes Hippuryl- -L-Arßinin/Minute/mg Protein.
.. " . ' . .: " : . ':::" '':· ' ' - 14--
0,3 kg Schweinebauchspeicheldrüse werden in einer. Fleischmühle gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen werden 300 ml eines 0,05 molaren Phosphatpuffers (pH 6,5) zugegeben. Die Suspension wird auf 60:G erwärmt und 20 Minuten lang auf dieser .Temperatur gehalten. Nach Zugabe von .2 Vol. Teilen eiskalten Wassers wird das Gemisch zentrifugiert. Der supernatierenden Flüssigkeit '.werden 326 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird eine Macht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der liederschlag wird verworfen. Der supernatierenden Flüssigkeit werden nach Einstellung des pH-Wertes auf 7,0-7,2 275,5 g * .Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird über Ilächt stehengelassen und Zentrifugiert. Der Rückstand wird in etwas kaltem (+4 C°) Tris-HCl-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert. Fach der Dialyse wird die Losung filtriert und gefroren* .
Ausbeute: 36I mg Carboxypeptidase B.
Spezifische Aktivität: 43»S ,uMol' hydrolysiertes Hippuryl- -L-^Arginin/Miniite/mg Protein. , ; r
Beispiel 9 ..: , ' . . .'' ;..'. · ;./ '' ; · :, ':.' '..' .. .' .. .' · ;'
0,3 kg SchweinebaUGhspeicheldrüse werden in einer Fleischmühle gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen werden 300 ml eines 0,05 molaren Phosphatpuffers (pH 7,0) zugegeben. DieSuspension wird auf, 60 C0 erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur stehengelassen. Nach Zugabe von 2 Volt Teilen eiskalten Wassers wird das Gemisch zentrifugiert. Der supernatierenden Flüssigkeit werden 326 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen. Der supernatieren-
:-" ..· · . ' ' . '.. ' ' . . -: " . ' . ' - 15 -
;.· -.. : · '. . - 15 - . :..;; . :.;:/'. /. .:: ·:' :.:: .
den Flüssigkeit werden nach Einstelllang des pH-Wertes auf 7,0-7,2 272 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und zentrifugiert. Der Rückstand wird in etwas kaltem (+4 C°) Tris-HCl-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Y/asser salzfrei dialysiert, Nach · ;. der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren.
Ausbeute: 488 mg Carboxypeptidase B. '. '.·
Spezifische Aktivität: 39,9 /UMol hydrolysiertes Hippüryl- -L-Arginin/Minute/mg Protein, · -·: -i. ' : ;
- ^ . ': . .'·. · · ' ' Beispiel 10 \ ' . " " ' :": ' .' "" '. :. -y}'-: ; . " ",.-.''[
0,25 kg Schv/einebauchspeicheldrüse werden in einer Pl ei sch-'.' mühle gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen werden 250 ml eines 0t 05 molaren Tris-HCl-Puffers (pH 7,5) zugegeben. Die Suspension wird auf 60 C° erwärmt und 20 Minuten lang bei.dieser/Temperatur stehengelassen. Wach. Zugabe von 2 VoIt. Teilen eiskalten Wassers wird das Gemisch zentrifugiert. Der supernatierenden Flüssigkeit werfen 247 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen. Der supernatierenden Flüssigkeit v/erden nach Einstellung des pH-Wertes auf. 7,0-7,2 202 g ;_Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension v/ird über Nacht stehengelassen und zentrifugiert. Der Rückstand wird in etwas kaltem (+4 C°) Tris-HÖl-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert. Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren.
Ausbeute: 695 mg Carboxypeptidase B.
Spezifische Aktivität': 17,4 /UMol hydrolysiertes Hippurylr· -L-Arginin/Minute/mg Protein.: . ; .'' '.'
- 16 -
. . .· . . . . .-.--.16 -· ... ν .'; -^-; '·;- -.'
Beispiel 11 V -V ; ; . VW'- - ·'' 'V"'VVV ,u -'W.
0,25 kg Schweinebauchspeicheidrüge· v/erden in einer Fleischmühle gemahlen und über nacht bei Raumtemperatur stehengelassen-. Am nächsten Morgen werden 250 ml eines :0,05 molaren Tris-HCl-Puffers (pH 8,0) zugegeben.. Die Suspension wird auf βΟ C° erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur stehengelassen. Nach Zugabe von 2 iTol. Teilen eiskalten Wassers wird das Gemisch zentrifugiert.Der'supernatierenden Flüssigkeit werden 255 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und dann zentrifugiert· Der Niederschlag wird verworfen» Der supernatierenden Flüssigkeit werden nach Einstellung des pH-Wertes auf 7,0-7,2 198 g Ammoniumsulfat zugegeben., Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und zentrifugiert. Der Rückstand wird in etwas kaltem (+4 C°) Tris-HCl-Puffer (pH 7»0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert. Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren.
Ausbeute: 552 mg-Earboxypept.idase B. / ',', ,-' ", ν ^ /.,.
Spezifische Aktivität: 14,3 yUMol hydrolysiertes Hippuryl-
-L-Arginin/Minute/mg Protein. '' "' ' ; ' y ^ : -,. . - ;
Beispiel 12 .'· .: V . ' '". , ;. \. ' }, -.: r '.. ^/ '·. . ;,' ' '^' .' ' ' : , /.
0,25 kg Schweinebauchspeicheldrüse werdLen in feiner Fleisch'-mühle -gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen werden 250 ml eines 0,05 molaren Tris-HCl-Puffers (pH 8,5) zugegeben. Die Suspension wird auf 60 C° erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur stehengelassen. Nach Zugabe von 2 yol* Teilen; eiskalten Wassers wird das Gemisch zentrifugiert. Der supernatierenden Flüssigkeit werden 247 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen. Der· supernatierenden:Flus-..
. ; · - -' ν '.. ".. : ' ' - . -'1VVv^1V-: : -17 -
'· ' · .-' ΛΊ- "'. '.' \r. ' ; ' ' - , ' ! >
sigkeit werden nach(, Einstellung des pH-Wertes auf 7,0-7,2 197 g Ammoniumsulfat zugegeben. Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und zentrifugiert. Der Rückstand wird in etwas kaltem (+4 C°) Tris-Hd-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert. Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren. . :
Ausbeute: 1209 mg Carboxypeptidase B. ;
Spezifische Aktivität: 6,4 /Uliol hydrolysiertes Hippuryl- -L-Arginin/Minute/ing Protein. . : *\."
: ' -.. ' · -. ''Tabelle 2 : ' ':' ,. :'
Wirkung des pH-Wertes des bei der Wärmebehandlung (60. C0;, 20 Minuten) von homogenisiertem Schweinepankreas^verwendeten Puffers auf die Aktivität von Carboxypeptidase B
Spezifische Aktivität (Einheit/mg) ; .
14,8.
20,3'
-Wert Gesamtaktivität (Einheit/kg Pankreas) Gas amtpro te in (mg/kg Pankreas)
5,0 21348 . 1440 .,- ;
5,5 .25808 1268
6,0 98333 ;;'.' '..-;. 1724 : :
6,5 V : : · 52767..- · 1204
7,0 64882 Λ ' . -'.' ; 1625 :
7,5 \ 48400' 2780
8,0 . ' ·- 31&32 . :. : .. ;--· " : 2210. : ::
8,5 ' 30753 , 4836 -
co.
57,0- γ
:".17,:4· .. : .' ,. \ ' ' '
Beispiel 13 '. · ' v '/: ',. ; . .''V "''' '
0,25 kg SchweinepaÜteeas werden in einer Fleischmühie gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen werden 250 ml eines 0,05 molaren Ph'lsphatpuffers (pH .6',O)'-zugegeben.,Die. Suspension wird auf 60 C0 erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur stehengelassen. Nach -Zugabe von 2 Vol. Teilen eiskalten Wassers wird die Suspension zentrifugierti Die supernätierende Flüssigkeit wird mit Ammoniumsulfät bis zu einer Konzentration von 340 g/l gesättigt (408 g). Die Suspension wird eine Nacht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen und die supernätierende Flüssigkeit mit Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 370 g/l gesättigt (41»1 g)· Die Suspension wird eine Nacht lang stehengelassen und zentrifugiert. Der Niederschlag wird in-,'.;, etwas kaltem (+4 G0) Tris-HGl-Puffer (pH 7,0) gelöst und Λ gegen destilliertes Wasser,salzfrei dialysiert·; Nach der Dialyse wird die lösung filtriert und gefroren* /
Ausbeute: 95 mg Garboxypeptidase B. -
Spezifische Aktivität: 56,2 ,uMol hydrolysiertes Hippuryl-/-L-Arginin/mlnute/mg Protein. ; . \,. ' .. ' " ' ' ·.;
Beispiel 14 V .' '.-'· ;> :. ".-. / : .' ,· .· V
0,2 kg Schweinepankreas werden in einer Fleisohmühle gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen werden 200 ml eines 0,05 molaren Phosphatpuffers (pH 6,0) zugegeben. Die Suspension wird auf 60G° erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur stehengelassen. Nach Zugabe von 2 Vol. Teilen eiskalten Wassers wird die Suspension zentrifugiert. Die supernatierende Flüs-. sigkeit wird mit Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 330 g/l gesättigt (330 g). Die Suspension wird eine ;
ι ν.. . . . ... . * . ' ' '',; ;...' "
Nacht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen und die supernatierende Flüssigkeit mit Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 370 g/l gesättigt (44,8 g). Die Suspension wird eine !lacht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Uiedersohlag wird in etwas kaltem (+4 C0) Tria-HOl-Puffer (pH 7,0)gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert. Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren..
Ausbeute: 62 mg Carboxypeptidase B. '' · : :
Spezifische Aktivität: 89,0 ,uMol hydrolysiertes: Hippuryl- -I-Arginin/Minute/mg Protein. . .. ^;: ^1
Beispiel 15 .·· .' ".' ,': -' V ' .:; :.'/ '. .. V ; ' " ' -
0,25 kg Schweinepankreäs werden in einer Pleischmühle ge- : mahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen werden 250 ml eines 0,Q5 molaren Phosphatpuffers (pH 6,0) zugegeben» Die Suspension wird auf 60 C0 erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur stehengelassen. Nach Zugabe von 2 Vol. Teilen eiskalten
'.. . . · ι . ' . :
Wassers wird die Suspension zentrifugiert. Die supernatierende Flüssigkeit wird mit' Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 320 g/l gesättigt (386 g). Die Suspension wird eine Nacht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen und die supernatierende Flüs-
' . , '' . . . ' "' . ·· · ·"- . / gigkeit mit Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 370 g/l gesättigt (65 g). Die Suspension wird eine Nacht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird in etv/as kaltem (+4 C°) Tris-HGl-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert. Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren.
Ausbeute: 106,5 mg Carboxypeptidase B.
' ' ; ' ' . ; ' . ' ' . -. :' .. ·. ' " \ ·.-': . Spezifische Aktivität: 95,5 /UMol hydrolysiertes Hippuyyl-
\ , ' / . . ' ' : . '.·
-L^Arginin/Minute/mg Protein. Beispiel 16
0,2 kg Schweinepankreäs werden in einer Fleischmühle gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen werden 200 ml eines 0,05 molaren Phosphatpuffers (pH 6,0) zugegeben. Die Suspension wird auf 60 C0 erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur stehengelassen. Nach Zugabe von 2 Vol. Teilen eiskalten Wassers wird
• die Suspension zentrifugiert. Die supernatierende Flüssigkeit wird,mit Ammojiiumsulfat bis zu einer Konzentration von
.310 g/l gesättigt (319 g). Die Suspension wird eine Nacht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen. Die supernatierende Flüssigkeit mit Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 370 g/l gesättigt (67,2 g). Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird in etwas kaltem . (+4 C°) Tris-HCl-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert. Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren.
Ausbeute: 135 mg Carbpxypeptidase B.
., Spezifische Aktivität: 44,3 /UMol hydrolysiertes Hippuryl- -Ij-Arginin/Minute/mg Protein. ..
Beispiel 17 / '' ;
0,25 kg Schweinepankreäs werden in einer Fielschmühle gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen werden 250 ml eines 0,05 molaren Phosphatpuffers (ppi 6,0) zügegeben. Die Sespension wird auf 60 c° erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur stehen- ' ' gelassen. Nach Zugabe von 2 Vol. Teilen eiskalten'Wassers
- · ' : "" . ' ':.· - 22 -
'; ·. . ; - 22 - ;. -. ". , . /. ::
wird die-Suspension zentrifugiert. Die suspensierende Flüssigkeit v/ird rait Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 320 g/l gesättigt,(386,4). Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird' verworfen und die superna tier ende -.Flüssigkeit: mit Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 36O g/1 gesättigt (52 g). Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird in etwas kaltem (+4 C°) Tris-HGl-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert". Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren.
Ausbeute: 76 mg Carboxypeptidase B.
.. Spezifische Aktivität: 123,8yuMol hydrolysiert©s Hippuryl- -L-Arginin/Minute/mg Protein. :,
Beispiel 18 \ /,
0,25 kg Schweinepankreas werden in einer Pleiscbmühle gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen v/erden 250 ml eines 0,05 molaren Phosphatpuffers (pH 6,0)- zugegeben. Die Suspension wird auf 60 G° erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur stehengelassen. Nach Zugabe von 2 Vol. Teilen eiskalten Wassers wird die Suspension zentrifugiert. Die supernatierende Flüssigkeit wird mit Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 320 g/l gesättigt (386,4 g). Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen und die supernatierende Flüssigkeit wird mit Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 350 g/l gesättigt (39 g). Die Suspension wird eine .Nacht.· lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird in etwas kaltem (+4 C°) Tris-HCl-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser salzfrei dialysiert. Mach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren.
. . .'" '. .. . .· :'. . : '. ,· · ' '. .' " .· - 23 -
'. . · . - 23 - ; ·. -.·; .;. ·.. ;.; ·;. ' · -
Ausbeute: 45 mg Carboxypeptidase B. :
Spezifische Aktivität: 286,7 ,uMol hydrolyaiertes Hippuryl- -L-Arginin/Minute/mg Protein. .
Beispiel· 19 . ... . ;
0,25 kg Schweinepankreas werden in einer'Pleischinuhie gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen werden 250 ml eines 0,05 molaren Phosphatpuffers (pH 6,0) zugegeben. Die Suspension wird auf 60 C0 erwärmt und 20 Minuten lang"bei dieser Temperatur stehengelassen. Nach Zugabe von 2 Vol..Teilen eiskalten Wassers, wird die Suspension zentrifugiert. Die supernatierende Fiüssigkeit wird mit Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 320 g/l gesättigt (386,4 g). Die Suspension wird über Nacht stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird verworfen und die supernatierende Flüs- aigkeit mit Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 340 g/l gesättigt (26 g). Die Suspension wird eine Nacht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird in etwas kaltem (+4 C0) Tris-HCl-Puffer (pH 7,0) gelöst und gegen destilliertes Wasser -.salzfrei dialysiert. Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert und gefroren.
Ausbeute: 25,5 mS Carboxypeptidase B.
Spezifische Aktivität: 195,8 yUM.ol hydrolysiertes Hippuryl- -I-Arginin/Minute/mg Protein. .
- 24 -
Fraktionierung mit 370. Tabell e 3 , von Garboxypeptidase B
Wirkung der Ammoniumsulfatkonzentration (g/l) .1. Sättigung 2. Sättigung 370 Amraoniumsulfat auf die Aktivität Spezifische Aktivität (Einheit/mg)
340 370 Gesamtaktivität (Einheit/kg Pankreas) Gesamtprotein (mg/kg Pankreas) .56,2 ' ; '
330 ... -370 .;· ; 21373 - 330 89,σ
320 360 : 27670 310 • 95,5
310 . · 35° ' '. " -:;; 40697 ; 426 .44,3
320 340 ^ .· 29914 ; • 675 123,8
320 37629 .304 286,7; ; ;.
320 5161O ;."..' : ISO: . 195,8 .· · ' '
''19977.. 102
Beispiel 20 .' , :,
1 kg Rinderpankreas wird in einer Fleischmühle gemahlen und über Nacht bei Raumtemperatur stehengelassen. Am nächsten Morgen wird 1 Liter eines 0,05 molaren Phosphatpuffers (pH 6,0) zugegeben, worauhin die Suspension auf 60 C° erwärmt und 20 Minuten lang bei dieser Temperatur stehengelassen, wird. Mach Zugabe von 2 Vol. Teilen (3»8 1) eiskalten Wassers wird'die Suspension zentrifugiert. Die supernatierende Flüssigkeit wird mit Ammoniumsulfat bis zu einer,Konzentration von 320 g/l gesättigt (1,6 kg). Die
. < ." .' ' .. ~ Suspension wird eine Nacht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag-wird· verworfen. Die supernatierende Flüssigkeit wird mit Ammoniumsulfat bis zu einer Konzentration von 350 g/l (165 g) gesättigt. Die Suspension wird eine Nacht lang stehengelassen und dann zentrifugiert. Der Niederschlag wird in etwas kaltem (+4 0°) Tris-HCl-Puffer (pH 7,0) gelöst und mit destilliertem Wasser salzfrei dialysiert. Nach der Dialyse wird die Lösung filtriert. Es werden 406 mg Natriumchlorid zugegeben, woraufhin die Lösung gefroren wird.
Ausbeute: 238,7 mg Carboxypeptidase B.
Spezifische Aktivität: 15,4 /UMol hydrolysiertes Hippur^l- -L-Arginin/Minute/mg Protein. \

Claims (1)

  1. · '.- ,' · - 26 - · ;.· ; ." ;. ': .;. ; : , ' " / : .' :
    Erfindungsanspruch: ; :
    Verfahren zur Isolierung des Carboxypeptidase B Enzyms aus der Bauchspeicheldrüse von Säugetieren, gekennzeichnet dadurch» daß man ein Pankreashomogenisat herstellt und dieses autolysiert, das Autolysat mit einem Puffer mit, einem"pH- ' Wert zwischen 5,0 und 8,5,' vorzugsweise,zwischen 6,0 und 7,0, in einem Verhältnis von 1:1 verdünnt und bei einer Temperatur von 50-75 G°» vorzugsweise 50-65 C°» 5-30 Minuten lang, vorzugsweise 1 5-^25 Minuten lang, einer Wärmebehandlung unterwirft, danach das so erhaltene Gemisch, zentrifugiert oder filtriert, der supernatierenden Flüssigkeit· 200-320 g/l, vorzugsweise 300-320 g/l, Ammoniumsulfat zugibt, die erhaltene Suspension gegebenenfalls zentrifugiert, die Fraktion, welche das aktive Carboxypeptidase B Enzym enthält, aus der erhaltenen 'Flüssigkeit·, durch Zugabe von 10-80 g/l, vorzugsweise 25-35 g/lj Arnmoniumsulfat ausfällt, den Niederschlag zentrifugiert und das so erhaltene Enzym in YiFasseiv oder in einer Pufferlösung löst und gegen Wasser oder eine Pufferlösung dialysiert tmd das erhaltene Produkt in gefrorenem Zustand lagert« ^ ;
DD84261731A 1983-07-11 1984-04-06 Verfahren zur isolierung des carboxypeptidase b enzyms aus dem pankreas von saeugetieren DD220334A5 (de)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
HU832469A HU190129B (en) 1983-07-11 1983-07-11 Process for the isolation of carboxypeptidase b enzyme from mammal pancreas

Publications (1)

Publication Number Publication Date
DD220334A5 true DD220334A5 (de) 1985-03-27

Family

ID=10959530

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DD84261731A DD220334A5 (de) 1983-07-11 1984-04-06 Verfahren zur isolierung des carboxypeptidase b enzyms aus dem pankreas von saeugetieren
DD84270845A DD222632A5 (de) 1983-07-11 1984-04-06 Verfahren zur immobilisierung von carboxypeptidase-b-enzym

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DD84270845A DD222632A5 (de) 1983-07-11 1984-04-06 Verfahren zur immobilisierung von carboxypeptidase-b-enzym

Country Status (9)

Country Link
US (1) US4650762A (de)
CS (1) CS252472B2 (de)
CU (1) CU21674A3 (de)
DD (2) DD220334A5 (de)
DE (1) DE3412669A1 (de)
HU (1) HU190129B (de)
RO (1) RO88619A (de)
RU (1) RU1769763C (de)
SU (1) SU1487817A3 (de)

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5278284A (en) * 1992-05-14 1994-01-11 Miller Brewing Company Protein purification method
IL116696A (en) * 1995-01-25 1999-08-17 Bio Technology General Corp Production of enzymatically active recombinant carboxypeptidase b
EP0844885A2 (de) * 1995-08-16 1998-06-03 Zeneca Limited Chemische verbindungen
RU2177997C1 (ru) * 2000-05-12 2002-01-10 Институт биоорганической химии имени М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН Способ выделения карбоксипептидазы в
RU2354696C1 (ru) * 2007-08-07 2009-05-10 Федеральное государственное учреждение науки Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии (ФГУН ГНЦ ПМБ) Способ получения карбоксипептидазы b из поджелудочной железы свиньи

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3260654A (en) * 1963-03-22 1966-07-12 Ormonoterapia Richter Spa Method for the preparation of a pancreas extract having a high proteolytic activity
FR3071M (fr) * 1963-10-18 1965-01-18 Centre Nat Rech Scient Nouvelles protéases pancréatiques, utilisables notamment en gastro-entérologie.
BE724843A (de) * 1967-12-04 1969-06-03
JPS57150384A (en) * 1981-03-12 1982-09-17 Eisai Co Ltd Carboxypeptidase ar and its preparation
US4532214A (en) * 1982-06-03 1985-07-30 Reanal Finomvegyszergyar Method for isolation of aminoacylase

Also Published As

Publication number Publication date
US4650762A (en) 1987-03-17
DE3412669A1 (de) 1985-01-24
CS236184A2 (en) 1987-01-15
CS252472B2 (en) 1987-09-17
CU21674A3 (en) 1987-10-12
HUT34234A (en) 1985-02-28
HU190129B (en) 1986-08-28
DD222632A5 (de) 1985-05-22
SU1487817A3 (ru) 1989-06-15
RU1769763C (ru) 1992-10-15
RO88619A (ro) 1986-02-28

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69413389T2 (de) Trennung von proteinen
DE2440529C3 (de) Hyaluronidase-Präparat aus menschlicher Plazenta
DE2003595A1 (de) Verfahren zur Produktion von saurer Protease durch Hefe
DE69834742T2 (de) Verfahren für extraktion und verwendung der schlüpf-flüssigkeit des atlantiklachses
DE68915226T2 (de) Thrombin bindende Substanz und Verfahren zu ihrer Herstellung.
EP0101063B1 (de) Neues Polypeptid mit Wirkung auf das Immunsystem, Verfahren zu seiner Isolierung und Reinigung, seine Verwendung und dieses enthaltende Mittel
DD220334A5 (de) Verfahren zur isolierung des carboxypeptidase b enzyms aus dem pankreas von saeugetieren
DE3750571T2 (de) Herstellung von rekombinantem, menschlichem PSTI.
EP0883684B1 (de) Verfahren zur reinigung von thrombinähnlichen proteasen aus schlangengiften
DE69428395T2 (de) Neue Aminopeptidase aus Streptomyces
DE2447050C2 (de) Verfahren zur Gewinnung von Proteasenhemmstoff
EP0456138B1 (de) Peptidamidase und deren Verwendung
DE69101305T2 (de) Verfahren zur behandlung von colostrum durch adsorptionschromatographie über hydroxyapatit und im zellularen milieu colostrum enthaltende aktive fraktion.
EP0180859B1 (de) Verfahren zur Reinigung sowie Pasteurisierung von Urokinase
DE69009668T2 (de) Verfahren zur herstellung von aktiviertem protein c.
DE3850407T2 (de) Protein mit inhibierender wirkung auf die entzündungserregende phospholipase a2.
DE69424184T2 (de) Methode zur Herstellung von Peptidprodukten
EP0133308B1 (de) Appetitregulierender Wirkstoff und Verfahren zur Herstellung desselben
DE3644805C2 (de)
DE2462373C2 (de) Asparaginyl-glycyl-seryl-glutaminyl-methionin
DE3213963A1 (de) Neurotropher faktor
EP0017785A2 (de) Seminalplasmin, Verfahren zu seiner Herstellung und seine Verwendung
DE2151265C3 (de) Biotechnisches Verfahren zur Herstellung von a-Amylase
DE69009667T2 (de) Verfahren zur Herstellung von Protease-Inhibitoren.
EP0230956B1 (de) Verfahren zur Gewinnung und Herstellung eines pasteurisierten Präparates von alpha2-Antiplasmin

Legal Events

Date Code Title Description
ENJ Ceased due to non-payment of renewal fee