DE2503627B2 - Verfahren zur analyse von antigenen oder antikoerpern - Google Patents
Verfahren zur analyse von antigenen oder antikoerpernInfo
- Publication number
- DE2503627B2 DE2503627B2 DE19752503627 DE2503627A DE2503627B2 DE 2503627 B2 DE2503627 B2 DE 2503627B2 DE 19752503627 DE19752503627 DE 19752503627 DE 2503627 A DE2503627 A DE 2503627A DE 2503627 B2 DE2503627 B2 DE 2503627B2
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- gel
- antigen
- solution
- precipitate
- concentration
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Withdrawn
Links
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 title claims description 31
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 title claims description 31
- 239000000427 antigen Substances 0.000 title claims description 30
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 title description 2
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 49
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims description 22
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 claims description 21
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 claims description 13
- 238000004451 qualitative analysis Methods 0.000 claims description 6
- 230000001154 acute effect Effects 0.000 claims description 3
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 79
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 34
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 24
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 23
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 16
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 13
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 13
- 241000283707 Capra Species 0.000 description 7
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 7
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 7
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 7
- 238000009792 diffusion process Methods 0.000 description 6
- 229960001348 estriol Drugs 0.000 description 5
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 5
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 5
- PROQIPRRNZUXQM-UHFFFAOYSA-N (16alpha,17betaOH)-Estra-1,3,5(10)-triene-3,16,17-triol Natural products OC1=CC=C2C3CCC(C)(C(C(O)C4)O)C4C3CCC2=C1 PROQIPRRNZUXQM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 4
- 102000011022 Chorionic Gonadotropin Human genes 0.000 description 4
- 108010062540 Chorionic Gonadotropin Proteins 0.000 description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 4
- 229940098773 bovine serum albumin Drugs 0.000 description 4
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 4
- PROQIPRRNZUXQM-ZXXIGWHRSA-N estriol Chemical compound OC1=CC=C2[C@H]3CC[C@](C)([C@H]([C@H](O)C4)O)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 PROQIPRRNZUXQM-ZXXIGWHRSA-N 0.000 description 4
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 4
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 3
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 description 3
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 3
- 238000000149 argon plasma sintering Methods 0.000 description 3
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 3
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 description 3
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 description 3
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 description 3
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 description 3
- 229940084986 human chorionic gonadotropin Drugs 0.000 description 3
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 3
- 238000004445 quantitative analysis Methods 0.000 description 3
- 239000000376 reactant Substances 0.000 description 3
- 238000011160 research Methods 0.000 description 3
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 description 3
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 3
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 3
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 3
- 108060003951 Immunoglobulin Proteins 0.000 description 2
- 102000016943 Muramidase Human genes 0.000 description 2
- 108010014251 Muramidase Proteins 0.000 description 2
- 108010062010 N-Acetylmuramoyl-L-alanine Amidase Proteins 0.000 description 2
- PXIPVTKHYLBLMZ-UHFFFAOYSA-N Sodium azide Chemical compound [Na+].[N-]=[N+]=[N-] PXIPVTKHYLBLMZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 2
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 2
- 239000007975 buffered saline Substances 0.000 description 2
- -1 dinitrophenyl Chemical group 0.000 description 2
- 108010067755 dinitrophenyl-bovine serum albumin Proteins 0.000 description 2
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 2
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 description 2
- 238000000760 immunoelectrophoresis Methods 0.000 description 2
- 102000018358 immunoglobulin Human genes 0.000 description 2
- 239000004325 lysozyme Substances 0.000 description 2
- 229960000274 lysozyme Drugs 0.000 description 2
- 235000010335 lysozyme Nutrition 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 2
- 229920003023 plastic Polymers 0.000 description 2
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 2
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 2
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 2
- 239000001632 sodium acetate Substances 0.000 description 2
- 235000017281 sodium acetate Nutrition 0.000 description 2
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 2
- 229960002175 thyroglobulin Drugs 0.000 description 2
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 1
- 239000004472 Lysine Substances 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- OFKKPUNNTZKBSR-VIFPVBQESA-N N(6)-(2,4-dinitrophenyl)-L-lysine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCCCNC1=CC=C([N+]([O-])=O)C=C1[N+]([O-])=O OFKKPUNNTZKBSR-VIFPVBQESA-N 0.000 description 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M Sodium acetate Chemical compound [Na+].CC([O-])=O VMHLLURERBWHNL-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 1
- 102000009843 Thyroglobulin Human genes 0.000 description 1
- 108010034949 Thyroglobulin Proteins 0.000 description 1
- 229960000796 barbital sodium Drugs 0.000 description 1
- FTOAOBMCPZCFFF-UHFFFAOYSA-N barbitone sodium Natural products CCC1(CC)C(=O)NC(=O)NC1=O FTOAOBMCPZCFFF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 238000012742 biochemical analysis Methods 0.000 description 1
- 238000009835 boiling Methods 0.000 description 1
- 239000012267 brine Substances 0.000 description 1
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 description 1
- 229920002301 cellulose acetate Polymers 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 230000008021 deposition Effects 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000005684 electric field Effects 0.000 description 1
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 1
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 1
- 238000001879 gelation Methods 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 229940088597 hormone Drugs 0.000 description 1
- 239000005556 hormone Substances 0.000 description 1
- 230000000951 immunodiffusion Effects 0.000 description 1
- 229940072221 immunoglobulins Drugs 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 238000011005 laboratory method Methods 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- JRKICGRDRMAZLK-UHFFFAOYSA-L peroxydisulfate Chemical compound [O-]S(=O)(=O)OOS([O-])(=O)=O JRKICGRDRMAZLK-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 1
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 230000001376 precipitating effect Effects 0.000 description 1
- 230000035935 pregnancy Effects 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 230000035484 reaction time Effects 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 description 1
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 1
- RGHFKWPGWBFQLN-UHFFFAOYSA-M sodium;5,5-diethylpyrimidin-3-ide-2,4,6-trione Chemical compound [Na+].CCC1(CC)C([O-])=NC(=O)NC1=O RGHFKWPGWBFQLN-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- HPALAKNZSZLMCH-UHFFFAOYSA-M sodium;chloride;hydrate Chemical compound O.[Na+].[Cl-] HPALAKNZSZLMCH-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 239000008107 starch Substances 0.000 description 1
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N tris Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/558—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor using diffusion or migration of antigen or antibody
- G01N33/559—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor using diffusion or migration of antigen or antibody through a gel, e.g. Ouchterlony technique
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
- G01N21/75—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated
- G01N21/77—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated by observing the effect on a chemical indicator
- G01N21/82—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated by observing the effect on a chemical indicator producing a precipitate or turbidity
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/808—Optical sensing apparatus
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10S436/805—Optical property
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Plasma & Fusion (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Investigating Or Analysing Materials By Optical Means (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Description
.15
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur schnellen qualitativen Analyse und/oder quantitativen Bestimmung
von Antigenen oder Antikörpern mit Hilfe einer Antigen-Antikörper-Reaktion, bei der ein Niederschlag
gebildet und die Menge dieses Niederschlages durch Messung der Streuung eines im spitzen Winkel
hindurchgehenden Lichtstrahls bestimmt wird.
In den letzten Jahren wurde die Bildung eines Niederschlags durch Reaktion eines Antigens mit einem
Antikörper in einem geeigneten Gel ein wesentliches Mittel für die biochemische Analyse. Obwohl solche
Reaktionen allgemein bereits Ende des 19. Jahrhunderts beobachtet und kurz darauf bei klinischen Untersuchungen
angewandt wurden, sind durch Verfeinerung des Verfahrens in letzter Zeit drei unterschiedliche Gruppen
entwickelt worden, nämlich Einzeldifl'usion, Doppeldiffusion und Immunoelektrophorese. Jede Gruppe
wird hier nur kurz diskutiert, da diese Verfahren dem Fachmann bekannt sind. Vollständige Beschreibungen
findet man z. B. in Veröffentlichungen wie W ο r k, T. S. und W ο r k, E., Laboratory Techniques in Biochemistry
and Molecular Biology, Bd. 1, 1972, North Holland Publishing Co., Amsterdam.
Für die Einzeldiffusion wird eine Schicht aus einem to
Gel hergestellt, enthaltend entweder ein Antigen oder einen spezifischen Antikörper dafür. Da üblicherweise
ein Antikörper in dem Gel enthalten ist, wird diese Ausführungsform beschrieben. In dem Gel wird eine
öffnung erzeugt und eine Menge des Antigens hineingegeben. Um die öffnung herum bildet sich ein
Ring eines Niederschlags, der radial nach außen wandert. Nach einer bestimmten festgelegten Zeit wird
der Bereich oder Durchmesser des Rings gemessen. Diese Messung ergibt Daten zur Bestimmung der
Antigenkonzentration, und wenn das Antigen unbekannt ist, seine Identität
Die Doppeldiffusion kann in einem Glasrehrchen
durchgeführt werden, in das ein Antigen und ein Antikörper in Teile auf gegenüberliegenden Seiten
eines üblichen Gelbereichs eingebracht werden. Indem das Antigen und der Antikörper durch das Gel
hindurchdiffundieren, bildet sich an der Gleichgewichtsstelle ein Niederschlag und liefert dadurch Daten zur
Bestimmung der unbekannten Konzentration und/oder Substanz. Bei anderen Doppeldiffusionsverfahren wird
eine Schicht aus einem üblichen Gel angewandt, die so hergestellt worden ist, daß sie öffnungen oder
Vertiefungen besitzt, in die das Antigen oder der Antikörper einzeln gegeben werden. Es entsteht eine
Linie oder ein Bogen in dem Gel an den Gleichgewichtspunkten der Antigen-Antikörper-Reaktion (den Punkten,
an denen das Antigen und der Antikörper zusammentreffen), wodurch man Daten zur Bestimmung
aer unbekannten Konzentration oder Identifizierung der unbekannten Substanz erhält.
Es ist auch bekannt, daß man bei derartigen Prä7ipitationsverfahren das Ausmaß der Präzipitation
durch Messung der Streuung eines durch den Niederschlag hindurchgehenden Lichtstrahls bestimm!. Nach
N. Henning, Klinische Laboratoriumsdiagnoslik, 3.
Auflage. 1966. Seite 295, muß der Niederschlag in einer stark verdünnten Lösung gebildet werden, um eine
Sedimentation zu vermeiden. Das Präzipitat ist in der gesamten Flüssigkeit gleichmäßig dispergiert und die
Trübung der Lösung wird mit Hilfe eines Photometers gemessen. Nach der GB-PS 8 69 483 wird die zu
untersuchende (antikörperhaltige) Lösung mit einer antigenhaltigen Lösung überschichtet und die in dem
Grenzbereich durch die Präzipitatbildung auftretende Lichtstreuung gemessen, wobei der Lichtstrahl entweder
senkrecht oder in einem spitzen Winkel zur Oberfläche der Probe hindurchgeschickt wird.
Das dritte Verfahren, die Immunoclektrophorese, umfaßt die Bewegung von Molekülen in einem
elektrischen Feld. Bei diesem Verfahren wird ein elektrisches Potential quer zu der Gelschicht angelegt,
um eine Bewegung einer unbekannten Substanz, die sich in einer Öffnung in dem Gel befindet, herbeizuführen.
Eine Substanz, die imstande ist, mit der unbekannten Substanz einen Niederschlag zu bilden, wird dann in
eine andere Öffnung in das Gel eingebracht. Das entstehende Muster des Niederschlags ergibt Daten zur
Bestimmung der unbekannten Konzentration oder Substanz.
Obwohl diese Verfahren genaue Ergebnisse liefern, erfordern sie im allgemeinen verhältnismäßig lange
Zeiten, um diese Ergebnisse zu erhalten. Bei der Einzeloder Doppeldiffusion sind mindestens 6 Stunden und
üblicherweise Tage erforderlich, um einen Endpunkt zu erreichen. Bei der Immunoelektrophorese sind üblicherweise
mindestens 18 Stunden erforderlich, bevor die Bestimmung durchgeführt weiden kann. Es ist offensichtlich,
daß diese Zeiten nicht in Übereinstimmung stehen mit der modernen diagnostischen Praxis, bei der
möglichst sofortige Ergebnisse erwünscht sind.
Es ist ferner bekannt, daß es bei den bekannten Verfahren, die in einem Gel arbeiten, kritisch ist, daß die
Größe und Form der Öffnungen in der Gelschicht genau sind und daß die Reagenzien sorgfältig in diese
öffnungen eingebracht werden.
Es ist Aufgabe der vorliegenden Erfindung, ein Verfahren zur Bestimmung von Antigenen bzw.
Antikörpern zu entwickeln, das einfach durchgeführt werden kann, innerhalb einer kurzen Zeil zuverlässige
Ergebnisse liefert und nur geringe Mengen der zu untersuchenden Probe erfordert.
Diese Aufgabe wird, ausgehend von dem eingangs genannten, aus der GB-PS 8 69 483 bekannten Verfahren,
dadurch gelöst, daß man die zu untersuchende Lösung, entnaltend einen Teilnehmer der Antigen-Antikörper-Reaktion,
auf die Oberfläche eines Gels aufbringt, in dem der andere Teilnehmer der Reaktion in
einer Konzentration enthalten ist, die größer ist, als sie dem Äquivalenzpunkt des zu bestimmenden Teilnehmers
entspricht, und anschließend den Lichtstrahl durch den Oberflächenbereich des Gels hindurchleitet, in dem
der Niederschlag fixiert ist.
Dadurch, daß der in dem Gel vorhandei.e Teilnehmer der Antigen-Antikörper-Reaktion in einem Überschuß
gegenüber dem zugesetzter. Reaktionsteilnehmer vorhanden ist, bildet sich beim Aufbringen des zweiten
Reaktionsteilnehmers sofort an der Stelle des Auftreffens ein Niederschlag, der in dem Bereich des Gels
festgehalten wird, in dem er entsteht und der sich nicht
weiter über das Gel ausbreitet. Dadurch erhält man in einem verhältnismäßig kleinen Bereich des Gels den
Niederschlag in einer verhältnismäßig hohen Konzentration, so daß geringe Mengen der Probe ausreichen,
um gut reproduzierbare Ergebnisse zu erhalten.
Bei dem erfindungsgemäßen Verfahren ist eine immunologische Bestimmung in wesentlich kürzerer
Zeit abgeschlossen, als es mit Hilfe der bekannten Verfahren möglich ist. Ferner wird die Herstellung des
Gels, in dem die Reaktion eintritt, vereinfacht verglichen mit der Herstellung bekannter Gele für
immunologische Untersuchungen.
Vorteilhafte Weilerbildungen des erfindungsgemäßen Verfahrens sind in den Patentansprüchen 2 bis 4
beschrieben.
Im folgenden wird die Erfindung anhand der Zeichnung näher erläutert. In der Zeichnung zeigt
Fig. 1 eine halbschematische Ansicht einer zur Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens geeigneten
Vorrichtung,
F i g. 2 einen Querschnitt durch die Gelsc'.iicht und das
Substrat bei der Vorrichiung nach Fig. 1 entlang der
Linie 2-2,
Fig. 3 einen Teil einer halbschematischen Ansicht einer anderen Vorrichtung zur Durchführung des
erfindungsgemäßen Verfahrens und
F i g. 4 ein Diagramm, wie es angewandt wird hei der
Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens zur Bestimmung unbekannter Konzentrationen von IgM
(lmmunglobulin-M). Das Diagramm besteht aus einer
Gruppe von Kurven für unterschiedliche Konzentrationen von Ziegen-Antihuman-lgM in einem Gel, wobei
die Abszisse in Konzentrationseinheiten für Human-IgM und die Ordinate in Mikroampere geeicht ist.
In de^ Fig. 1 und 2 ist ein Substrat 12 gezeigt,
umfassend eine glatte Oberfläche 13 und eine reflektierende glatte Unterseite 15. Eine Gelschicht 17
befindet sich in unmittelbarem Kontakt mit der Oberseite 13 des Substrats 12. Die Gelschicht 17 besitzt
eine freie Oberseite 21. Das Substrat 12 und die Gelschicht 17 bilden eine Einheit 18.
Bei der Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens wird die Einheit 18 auf eine geeignete Unterlage
inicht gezeigt) in eine geeignete Stellung zu einer Lichtquelle 25 und einer Lichtmeßvorrichtung 31
gebracht Aus der Lichtquelle 25 trifft ein Lichtstrahl 26 schräg auf die reflektierende Oberfläche 15 auf und wird
von dieser durch einen Schnittpunkt 27 mit der
5 Oberseite 21 als reflektierter Lichtstrahl 28 und als gestreute Strahlung 29 reflektiert. Die Lichtmeßvorrichtung 31 besteht aus einer Lichtsammeiröhre 32, einer
optisch darauf ausgerichteten Photoröhre 33 und einer Strommeßvorrichtung 34. Die Lichtmeßvorrichtung 31
ίο ist so angebracht, daß die Lichtsammeiröhre 32 sich in
einem Abstand von der Oberfläche 21 befindet und optisch auf den Schnittpunkt 27 ausgerichtet ist, wobei
der Lichtstrahl 28 nicht stören soll. Das Strommeßgerät 34 besitzt eine geeichte Skala 35.
In Fig. 3 ist eine andere Vorrichtung dargestellt,
umfassend ein transparentes Substrat 51 mit einer glatten Oberseite 53. Auf dieser Oberfläche 53 und in
unmittelbarem Kontakt mit ihr befindet sich eine Gelschicht 55. Die Gelschicht 55 besitzt eine freie
Oberseite 56. Das Substrat 51 und das Gel 55 bilden eine im wesentlichen transparente Einheit 57, die im
wesentlichen der Einheit 18 entspricht.
Bei der Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens mit Hilfe dieser Vorrichtung wird die Einheit 57
auf einen geeigneten transparenten Träger (nicht gezeigt) so aufgelegt, daß sie sich in geeigneter
wirksamer Stellung zu einer Lichtquelle 61 befindet. Von der Lichtquelle 61 wird ein Lichtstrahl 62 durch das
Substrat 51 und das Gel 55 über einen Schnittpunkt 65 mit der Oberfläche 56 ausgestrahlt, der als verminderter
Lichtstrahl 66 und als gestreute Lichtstrahlung 67 austritt. Eine Lichtsammeiröhre 68, die ein Teil einer
Lichtmeßvorrichtung (nicht gezeigt) entsprechend der Lichtmeßvorrichtung 31 ist, befindet sich in einem
Abstand von der Oberfläche 56 und ist optisch auf den Schnittpunkt 65 gerichtet, wobei der Lichtstrahl 66 nicht
stören soll.
Bei Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens wird ein erstes Reagenz, das entweder ein Antigen
oder ein Antikörper ist, vorzugsweise gleichmäßig in ein geeignetes verflüssigtes Gel eingebracht bzw. darin
dispergiert. Für die weitere Beschreibung wird angenommen, daß das erste Reagenz ein Antikörper ist. Es
kann jedoch ebensogut ein Antigen sein. Die Art, in der das Reagenz in dem Gel verteilt wird, ist nicht kritisch.
Folglich können Laborverfahren, wie sie üblicherweise angewandt werden, um derartige Suspensionen zu
erhalten, auch hier angewandt werden, wie Rühren eines Gemisches des verflüssigten Gels und Antikörpers mit
der Hand oder mit einem geeigneten Mischer.
Das verflüssigte Gel, in dem der Antikörper dispergiert ist, wird auf einem geeigneten Substrat
abgeschieden oder aufgegossen nach bekannten Verfahren und bis zur Bildung eines festen Gels
stehengelassen. Auf diese Weise wird die in den Fi g. 1 und 2 gezeigte Einheit hergestellt.
1 Tropfen einer reagierenden Substanz, die ein zweites Reagenz enthalten kann, das mit dem ersten
Reagenz unter Bildung eines Niederschlags reagieren !'inn, in diesem Falle ein Antigen, wird dann auf die freie
Oberfläche 21 des Gels aufgebracht. Wenn die reagierende Substanz das mit dem Antikörper reagierende
Antigen enthält, bildet sich ein teilweise opaker Bereich (der Niederschlag) innerhalb von ungefähr 10
bis 15 Minuten in einem Oberflächenbereich des Gels 17 unter dem Bereich, in dem das reagierende Material das
Gel berührt. Die Vorrichtung wird dann in die in F i g. 1 dargestellte Lage gebracht, so daß das Lichtsammeirohr
32 optisch auf den opaken Bereich gerichtet ist. Wenn in dem Berührungsbereich ein Niederschlag gebildet
worden ist, wird der reflektierte Lichtstrahl 28 durch diesen Niederschlag gestreut und ein Ausschnitt dieses
gestreuten Lichtes wird über die Lichtsammeiröhre 32 in die Photoröhre 33 geleitet, die einen elektrischen
Strom erzeugt, der zu dem Licht proportional ist. Dieser elektrische Strom wird mit dem Strommeßgerät 34
gemessen und in Form von Mikroampere (μΑ) auf der Skala 35 angezeigt. Wenn in dem Berührungsbereich
kein Niederschlag vorhanden ist, um den reflektierten Lichtstrahl 28 zu streuen, trifft weniger Licht auf die
Sammelröhre 32 auf, und folglich zeigt die Skala geringere Werte an.
Offensichtlich werden im wesentlichen die gleichen Verfahrensstufen bei der Fig. 3 angewandt. Die
Anwendung dieser Vorrichtung wird daher nicht im einzelnen beschrieben.
Das Diagramm der F i g. 4 zeigt typische Zusammenhänge zwischen den Konzentrationen an Ziegen-Antihuman-IgM
(WHO Nomenklatur) in dem Gel für 0,995 mg/ml, 0,68 mg/ml und 0,405 mg/ml und die
beobachtete Opazität, ausgedrückt in Mikroampere, für verschiedene bekannte Konzentrationen von Human-IgM
in der reagierenden Substanz, wie sie durch das erfindungsgemäße Verfahren bestimmt wurden. Es
wurde ein Arbeitsbereich mit einer großen konstanten Steigung für Human-IgM-Konzentrationen bis zu
ungefähr 0,40 mg/ml beobachtet. In diesem Arbeitsbereich können unbekannte Antigen-Konzentrationen
leicht aus den bekannten Opazitätswerten bestimmt werden. Aus F i g. 4 geht auch hervor, daß bei
entsprechend gewählten oder eingestellten Antigen-Konzentrationen der Arbeitsbereich im wesentlichen
unabhängig ist von der Antikörper-Konzentration in dem Gel. Es hat sich jedoch gezeigt, daß die
Antikörper-Konzentration vermindert werden kann, so daß der Arbeitsbereich auch vermindert wird. Arbeitsbereiche
mit großer konstanter Steigung, ähnlich wie sie in F i g. 4 dargestellt sind, wurden auch bei anderen
Antigen-Antikörper-Reaktionen beobachtet.
Bei Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens zur qualitativen Analyse und quantitativen
Bestimmung von Haptenen wird als erstes Reagenz ein Antiserum zu einem Hapten-Konjugat, wie Antiserum
zu Östriol-Konjugat mit Rinderserumalbumin in dem Gel dispergiert bzw. verteilt. Die Oberfläche des Gels
wird dann mit dem Hapten zusammengebracht. Nach einer Reaktionszeit vorzugsweise mindestens ungefähr
5 Minuten wird die Oberfläche mit dem zweiten so Reagenz in Berührung gebracht, das mit dem Antiserum
unter Bildung eines Niederschlags reagieren kann. Wenn das Hapten vorhanden ist, sind die damit in
Berührung gekommenen Bereiche im wesentlichen frei von Niederschlag und die Menge des gestreuten Lichts
wird folglich vermindert Folglich kann die Menge des Haptens ebenfalls durch Messung der Lichtstreuung
bestimmt werden.
Das Hapten und das zweite Reagenz können, wenn das gewünscht wird, gleichzeitig mit der Oberfläche des
Gels in Berührung gebracht werden. Der entstehende Niederschlag und das gestreute Licht werden proportional
der Menge des vorhandenen Haptens vermindert, und die vorhandene Menge kann dadurch durch diese
Verminderung bestimmt werden.
Antigene, die mit Hilfe des erfindungsgemäßen Verfahrens identifiziert werden können, sind antigenische
Proteine, Substanzen mit Antigen-Eigenschaften und Bakterien. Antikörper, die mit dem erfindungsgemäßen
Verfahren identifiziert werden können, umfassen Proteine, die gebildet werden, wenn Tiere mit
Antigen-Proteinen immunisiert werden, Substanzen mit Antigen-Eigenschaften oder Bakterien. Solche Antigene
und Antikörper umfassen insbesondere z. B. Immunoglobuline wie IgG, IgA und IgM, Haptene, Hormone wie
HCG (Humanchoriongonadotropin), Hapten-Konjugate wie Dinitrophenyl-Konjugat mit Rinderserumalbumin,
Östriol-Konjugate mit Rinderserumalbumin oder Östriol-Konjugate mit Thyroglobulin, Antigene von E.
CoIi und Antikörper oder Antisera dazu.
Das Gel kann hergestellt werden aus einem der vielen gelbildenden Materialien, die für lmmunodiffusionsverfahren
geeignet sind. Solche gelbildenden Substanzen umfassen z. B. Agar, Celluloseacetat, Stärkegel, Gelatine,
Polyacrylamidgel oder Kombinationen davon. Diese Liste isl nicht erschöpfend im Hinblick auf die große
Anzahl von gelbildenden Substanzen, die dem Fachmann bekannt und für das erfindungsgemäße Verfahren
geeignet sind.
Mit Agar wird ein verflüssigtes Gel hergestellt mit einer Konzentration von ungefähr 0,5 bis 1 Gew.-%
Agar. Geringere Konzentrationen können angewandt werden, aber sie besitzen nicht die gewünschte
Festigkeit. Höhere Konzentrationen können ebenfalls angewandt werden, aber sie bilden Gelschichten mit
einer höheren Untergrundstreuung des Lichtes. Die Konzentration des ersten in dem verflüssigten Gel
dispergierten Reagenzes wird bestimmt mit Hilfe eines Diagramms für das spezielle Reagenz entsprechend der
Fig.4. Günstigerweise wird die Konzentration des ersten Reagenzes so gewählt, daß ein sinnvoller Bereich
von Konzentrationen für das zweite Reagenz in den Bereich der konstanten Steigung der Kurve fällt.
Beispielsweise ist, wenn das zweite Reagenz Human-IgM ist, eine Konzentration von ungefähr 0,4 bis
0.8 mg/ml Ziegen- Antihuman-IgM bevorzugt. Obwohl
höhere Konzentrationen angewandt werden können, ist das nicht bevorzugt im Hinblick auf die geringe
Zunahme des Teils der konstanten Steigung bei der Kurve verglichen mit der größeren Menge an Reagenz,
die erforderlich ist. Man gießt das verflüssigte Gel dann auf das Substrat und läßt es fest werden, wobei die oben
beschriebene Einheit entsteht. Bei dieser Kombination kann die Agar-Dicke ungefähr 0,01 bis 2 cm oder
darüber betragen und liegt vorzugsweise bei ungefähr 0.01 bis 0,15 cm.
Die auf diese Weise hergestellten Einheiten, die für das erfindungsgemäße Verfahren angewandt werden
können, sind nach einem Jahr Lagerung in einer Umgebung mit hoher Feuchtigkeit bei 4 bis 100C noch
stabil. Folglich können größere Mengen der Anlyseeinheiten auf einmal hergestellt werden, wobei erhebliche
Einsparungen an Personal möglich sind und eine größere Gleichmäßigkeit von Einheit zu Einheit
erreicht wird.
Bei dem erfindungsgemäßen Verfahren muß das Substrat imstande sein, in physikalisch und chemisch
stabiler Weise das Gel zu tragen. Vorzugsweise ist das Substrat teilweise transparent, so daß das Licht
zumindest teilweise durchgehen kann. Zum Beispiel kann das Substrat eine Glasscheibe, ein Glasspiegel,
eine Plastikscheibe oder ähnliches sein. Ein Substrat das an der Oberfläche, auf die das Gel aufgegossen wird,
reflektiert kann - obwohl es nicht transparent ist ebenfalls verwendet werden.
Die Lichtquelle kann irgendeine leicht erhältliche
803
sein, von der bekannt ist, daß sie einen Lichtstrahl geregelter Dimension und im wesentlichen konstanter
Intensität ausstrahlt. Der von einer solchen Lichtquelle ausgestrahtle Strahl kann im sichtbaren oder nicht
sichtbaren Bereich liegen, je nach den Erfordernissen der Lichtmeßvorrichtung, die bei der Durchführung des
erfindungsgemäßen Verfahrens angewandt wird.
Bevorzugt wird der Lichtstrahl auf eine reflektierende Oberfläche projeziert. Ein Einfallswinkel von
ungefähr 40 bis 60° ist dabei vorteilhaft. Bei einem transparenten Substrat befindet sich die Lichtquelle auf
der Seite des Substrats, die der Gelschicht gegenüberliegt und der Lichtstrahl geht durch das Substrat und das
Gel hindurch. Beim Durchstrahlen durch das Gel kann ein Einfallwinkel von ungefähr 40 bis 60° für den
Lichtstrahl angewandt werden. Natürlich können auch andere Winkel angewandt werden, solange der
reflektierte Lichtstrahl und der hindurchgehende Lichtstrahl beim Nachweis des gestreuten Lichtstrahls
mit Hilfe der Lichtmeßvorrichtung nicht stören.
Das gestreute Licht kann in bekannter Weise gemessen oder visuell beobachtet werden.
Bei der Durchführung des erfindungsgemäßen Verfahrens ist das Volumen des Reaktionsteilnehmers, das
mit der Oberfläche des Gels in Berührung kommt, nicht kritisch. Dieses Verfahren ist besonders günstig, da nur
ein Tropfen der reagierenden Substanz, die das zweite Reagenz enthält, erforderlich ist, obwohl auch größere
Mengen angewandt werden können. Die geringe Mengen an reagierender Substanz, die erforderlich ist,
um derartige Ergebnisse zu erhalten, ist insofern vorteilhaft, da viele Bestimmungen mit einem einzigen
Gelsubstrat durchgeführt werden können.
Sollte die Konzentration des zweiten Reagenzes in der reagierenden Substanz die für das erfindungsgemäße
Verfahren höchstmögliche Grenze überschreiten, kann die reagierende Substanz verdünnt werden, um
eine geeignete Konzentration zu erhalten. In einer üblichen physiologischen (klinischen) Umgebung ist
anzunehmen, daß die normalen Immunoglobulin-Bereiche
in der als Proben gewonnenen reagierenden Substanz über den geeigneten Bereich für das
erfindungsgemäße Verfahren hinausgehen. Folglich ist es günstig, jede Probe mit einer vorher bestimmten
festen Menge zu verdünnen, so daß man annehmen kann, daß die Konzentration in den geeigneten Bereich
kommt. In der folgenden Tabelle sind geeignete Bereiche zusammen mit den vermuteten normalen
klinischen Bereichen und den vorher bestimmten Verdünr ungen angegeben, um Konzentrationen innerhalb
der günstigen Bereiche zu erzielen für Human-IgG, Human-Iglv: und Human-IgA.
IgG
IgM
IgA
2-35
2-30
Arbeitsbereich, 2—30
mg/100 ml
Normaler physio- 600-1500 50-200 50-250 logischer Bereich,
mg/100 ml
Verdünnungs- 1/60 1/6 1/10
verhältnis
Verdünnung 10-25 8-33 5-25
normaler Bereich,
mg/100 ml
Das erfindungsgemäße Verfahren unterscheidet sich deutlich von bekannten Verfahren, indem die zweite
reagierende Substanz nahezu vollständig bei der Bildung des Niederschlages verbraucht wird, der sich
unerwarteter Weise bildet und in der Oberfläche des Gels verbleibt.
Bei dem erfindungsgemaßen Verfahren wird das erste
Reagenz in das Gel in einer Konzentration eingebaut, die größer ist als sie dem Äquivalenzpunkt in dem
ίο Arbeitsbereich des zweiten Reagenzes entspricht.
Umgekehrt wird die reagierende Substanz so verdünnt, daß die Konzentration des zweiten Reagenzes geringer
ist, als es dem Äquivalenzpunkt im Arbeitsbereich des ersten Reagenzes entspricht.
Der Niederschlag ist innerhalb von ungefähr 10 bis 15 min nach dem Aufbringen des zweiten Reagenzes auf
das Gel sichtbar. Reproduzierbare Messungen sind nach nur etwa 30 min möglich, und die Messungen bleiben im
wesentlichen konstant innerhalb eines Zeitraumes von mindestens 60 min oder darüber. Diese Zeiten können
natürlich verringert oder erhöht werden, indem man die Temperatur des Gels und der Umgebung erniedrigt
oder erhöht. Folglich können mit Hilfe des erfindungsgemaßen Verfahrens Meßwerte in kürzeren Zeiten
erhalten werden und mit geringeren Probemengen einschließlich des zweiten Reagenzes, als es bisher
möglich war.
Die Stärke der Lichtstreuung, die von der Testeinheit herrührt bzw. die Hintergrundstreuung kann leicht
bestimmt werden, indem man einen Teil der Einheit, der keine reagierende Substanz enthält, vorzugsweise einen
Bereich neben dem Tesibereich, auf dem die reagierende Substanz aufgebracht worden ist, auf die Sammelröhre
ausrichtet. Die erhaltenen Messungen können von den Messungen des Testbereichs abgezogen werden
um einen korrigierenden Wert zu erhalten. Auf ähnliche Weise kann eine Einheit mit Hilfe von Lösungen
bekannter Konzentrationen standardisiert werden.
Das erfindungsgemäße Verfahren wird anhand der folgenden speziellen Beispiele noch näher erläutert.
Beispiel 1 Bestimmung von Human-IgA:
Eine 1%ige flüssige Agarlösung wurde hergestellt durch Lösen von 1 g Agar (Noble-Agar der Difcc
Laboratories) und 0,1 g Natriumazid in 99 ml gepuffer ter Salzlösung (Michaelis' Barbital-Natriumacetat Puf
fer pH 7) und Erhitzen des Gemisches unter Rühren bis unmittelbar unter den Siedepunkt.
Lösungen, enthaltend Ziegen-Anti-Human-IgA wurden hergestellt durch Zugabe von IgA-Antiserum (dei
Miles Research Products Division) mit einem festge stellten Wert von 2,0 mg/ml Anti-IgA zu der l°/oiger
verflüssigten Agarlösung bei 50°C. Dann wurde Pufferlösung zu dem Gemisch gegeben, wobei man eins
Endkonzentration von 0,44 mg/ml Anti-IgA (15°/( Antiserum) und 0,7% Agar erhielt Volumina von 1,5 m
dieser Lösung wurden dann auf einzelne Glasspiege gegossen, die 0,19 cm dick waren und eine Seitenlang«
von 5,1 cm besaßen. Die Geldicke lag zwischen 0,06 unc 0,08 cm. Die Spiegel wurden in einer mit Wassei
gesättigten Umgebung aufbewahrt um die Verdamp fung zu verzögern, und auf Raumtemperatur abgekühlt
t)«s Es wurden Antigenlösungen hergestellt durch Ver
dünnung von IgA-Standardsera (der Hyland Division ο
Travenol Laboratories). Die Sera wurden mit Michaelis Puffer auf die gewünschte Konzentration verdünnt
709 507/42
803
Die Lichtquelle für dieses Beispiel war eine NORMAIODE-H3-Lampe (12 V, 55 W). Das gestreute
Licht wurde mit einer RCA-931-A-Photoröhre nachgewiesen
und der Strom mit Hilfe eines Kiethley-61OC-Elektrometers.
Für jede qualitative Analyse und quantitative Bestimmung wurde das folgende Verfahren angewandt.
Sechs Tropfen Antigenlösung mit einem Volumen von jeweils 5 μΙ wurden auf die Geloberfläche in
Intervallen von 5 min aufgebracht. Die Opazität wurde innerhalb von 15 min für die Lösung mit IgA beobachtet
und nach 30 min Messungen durchgeführt. Die beobachteten Meßwerte sind in Tabelle II angegeben.
Beispiel 3 Bestimmung von Human-lgM
Es wurden Gelsubstrate entsprechend Beispiel hergestellt mit der Ausnahme, daß Zicgen-Anti-Hi
man-lgM (Antiserum von der Research Division de Miles Laboratories Inc.) in einer Konzentration vo
0,54 mg/ml (20% Antiserum) verwendet wurde anstell von Ziegen-Anti-Human-lgA und IgM anstelle von IgA
Man erhielt die in Tabelle IV angegebenen Ergebnisse.
Anti-lgM
mg/ml
mg/ml
IgM
mg/100 ml
Opazität μΑ
Anti-IgA-
Konzentration
mg/ml
IgA-Konzentration mg/100 ml
0,44
0,44
0,44
0,44
0,44
0,44
0,44
0,44
0,44
0,44
0,44
6,1
10,2
20,4
20,1
39,4
52,5
10,2
20,4
20,1
39,4
52,5
Opazität μΑ
22
38
80 125 170 188
0,54
0,54
0,54
0,54
0,54
0,54
0,54
0,54
0,54
0,54
0,54
4,0
5,6
10,0
17,0
25,2
32,0
5,6
10,0
17,0
25,2
32,0
15 20 45 60 95 100
Die beobachteten Meßwerte zeigen, daß mit zunehmender Antigenkonzentration die Opazität zunimmt,
d. h. mehr Niederschlag gebildet wurde und mehr Licht gestreut wurde, was zu einer proportionalen Zunahme
der gemessenen μΑ führte. Daraus folgt, daß die Menge an gestreutem Licht abhängig ist von der Antigenkonzentration
und das Verfahren daher die Grundlage für die quantitative Analyse von IgA darstellen kann.
Beispiel 2 Bestimmung von IgG:
Es wurden Gelsubstrate entsprechend Beispiel 1 hergestellt mit der Ausnahme, daß Ziegen-Anti-Human-IgG
(Antiserum erhalten von der Research Division der Miles Laboratories Inc.) in einer Konzentration
von 1,61 mg/ml (15% Antiserum) anstelle von IgA-Antiserum und IgG anstelle von IgA verwendet
wurde. Man erhielt die in Tabelle III angegebenen Ergebnisse.
Die beobachteten Meßwerte zeigen, daß die Opazität abhängt von der Antigenkonzentration und das
Verfahren daher als Grundlage zur quantitativen
Analyse von IgM dienen kann.
Bestimmung von IgA unter Verwendung eines durch Gelbildung hergestellten Gels
Es wurde eine Gellösung hergestellt, enthaltend 10%
Gelatine (D.fco Laboratories) in einer auf einen PM-wert von 7 gepufferten Lösung (Natriumbarbitai,
Natnumacetat und HCl in 0,85%iger Salzlösung). Zu je
UmI dieser Lösung wurden 0,3 ml Anti-IgA-Serum
Hyland) zugegeben. Einzelne Anteile der so hergestellten 20%,gen Antiserumlösung (0,46 mg/ml Antiserum)
in einer 8%,gen Gelatinelösung wurden auf Glasspiegel
gegossen, mit einer Seitenlange von 5,08 cm und die tinhe.ten mindestens 60 min zur Gelbildung in eine
Kammer mit einer Temperatur von 4°C gegeben. Das Gel besaß eine Dicke von 0,06 bis 0 08 cm
Auf getrennte Stellen auf die Gele wurden 5 μ! Tropfen von IgA-Lösungen mit Konzentrationen von
ngl? ml;15'8 mg/10° ml und 7-2 mg/100 ml gegei-Die
Abstufung der Opazität wurde beobachtet, und
| Tabelle III | IgG | Opazität |
| Anti-IgG | mg/100 ml | uA |
| mg/ml | 52 | 70 |
| 1,61 | 10,6 | 120 |
| 1,61 | 153 | 205 |
| 1,61 | 20,6 | 250 |
| 1,61 | 20,6 | 235 |
| 1,61 | 23,1 | 290 |
| 1,61 | ||
el wurde ein Gel ™t Hilfe von
d™ ^ \ergestel't- Zunächst wurden die folgenden 3 Losungen hergestellt
60 Lösung A
1 n-HCI
Tris-(hydroxymethyl)aminomethan
Ν,Ν,Ν',Ν'-Tetramethyläthylendiamin
Wasser auf
Die Meßwerte für die beobachtete Opazität zeieen 6s
daß die Opazität, d h. das gestreute LichSänglgTon
der Antigenkonzentration und daher als Basis Tür d°e
quantitative Analyse von IgG dienen kann.
Menge
48 ml 36,6 g 0,23 ml 100 ml
28,0 g
0,735 g 100 ml
803
Lösung C
Aminonium-persulfat
Wasser auf
Wasser auf
Es wurde eine Gellösung hergestellt durch Vermischen der folgenden Substanzen:
Menge
Lösung A 0,2 ml
Lösung B 0,4 ml
Anti-IgA-Serum, 2,3 mg/ml 0,2 ml
Lösung C 0,8 ml
Das entstehende Gemisch wurde auf eine transparente Kunststoffplatte aufgegossen. Die Einheit wurde
30 min bei 400C gehalten. Nach dieser Zeit war das Gel fest. Das Gel besaß eine Dicke von ungefähr 0,07 cm.
Bei diesem Beispiel wurde die Lichtquelle unterhalb der Einheit angebracht, so daß der Lichtstrahl nur
einmal durch das Substrat und das Gel hindurchging.
Die auf diese Weise hergestellten Einheiten ergaben Abstufungen der Opazität, die im wesentlichen den im
Beispiel 4 beobachteten entsprachen, wenn sie mit IgA zusammengebracht wurden.
Menge Die beobachteten Ergebnisse zeigen die Möglichkeit
der Messung der Konzentration kleiner Haptenmolekü-0,14 g Ie (nicht ausfallende Antigenmoleküle) durch ihre
ml Fähigkeit, die normale Entwicklung eines Oberflächen
niederschlags zu verhindern.
Qualitative Analyse eines Haptens
durch Hemmwirkung
durch Hemmwirkung
Das Verfahren des Beispiels 6 wurde angewandt mit ίο der Ausnahme, daß Kaninchen-Anti-Östriol anstelle von
DNP-Antisera verwendet wurde, östriol wurde als Hapten anstelle von e-DNP-Lysin verwendet und
östriol-thyroglobulin als Konjugat anstelle von DNP-BSA.
Die entstehenden Bereiche, in denen die Ausfällung gehemmt war, waren im wesentlichen die gleichen, die
in Beispiel 6 beobachtet wurden.
Es wurden Einheiten hergestellt, indem man 2 ml 0,7% Agar (Noble), enthaltend 20% Ziegen-DNP-Antisera
(der Miles-Yeda) auf Spiegelscheiben mit einer Kantenlänge von 5,08 χ 5,08 cm auftrug (DNP = Dinitrophenyl).
Man ließ jede Einheit in einer mit Wasser gesättigten Umgebung 30 min auf Raumtemperatur (ungefähr
23°C) abkühlen. Die Dicke des entstehenden Gels betrug 0,06 bis 0,08 cm. 5 μ! Tropfen ε-DNP-Lysin, ein
Hapten (der Nutritional Biochemicals Corporation) in Konzentrationen von 0,005 bis 0,02 mg/ml wurden auf
die Gele aufgebracht und 5 min stehengelassen. Die gesamte Oberfläche jedes Gels wurde dann mit 0,5 ml
einer Lösung von 0,3 mg/ml DNP-BSA-Konjugat (BSA = Rinderserumalbumin) gespült und 5 min reagieren
gelassen. Die Einheit wurde vorsichtig mit normaler Salzlösung (0,85%) gespült und in eine Kammer mit
konstanter Feuchtigkeit gegeben. Nach 45 min langer Inkubation hatte sich ein allgemeiner Niederschlagsbereich
gebildet mit klarem oder halbklarem Bereich, die den Stellen entsprachen, auf die das Hapten aufgebracht
war.
Der Unterschied in der Opazität zwischen dem allgemeinen Niederschlagshintergrund und den Stellen
mit dem Hapten wurde dann gemessen. μΑ-Unterschiede im Bereich von 28 ± 4 bis 96 ± 3 wurden erhalten.
Die Ergebnisse sind in Tabelle V angegeben.
Qualitative Analyse von HCG
(Human-Coriongonadotrapin)
(Human-Coriongonadotrapin)
Lyophilisiertes Antiserum zu HCG (der Nutritional Biochemicals Corporation, Cleveland, Ohio) wurde nach
Anweisung der Hersteller verdünnt. Es wurde eine Lösung hergestellt, bestehend aus dem Antiserum,
verflüssigtem, 2%igem Agar und mit phosphatgepufferter physiologischer Salzlösung, so daß Endkonzentrationen
von 50% Aiitiserum und 0,7% Agar erhalten wurden. Die Lösung wurde auf einen Spiegel abgeschieden
und zur Gelbildung gebracht.
1 h nach der Abscheidung wurden auf das Gel 5 μΐ
einer Lösung, enthaltend 1 Einheit HCG/ml in gepufferter Salzlösung, aufgebracht. Es wurde ein
Niederschlagsfleck in dem Berührungsbereich beobachtet, der einen schnellen und leicht sichtbaren Hinweis für
eine Schwangerscnaft gibt.
Hapten
mg/ml
Δ Opazität
μΑ
μΑ
| 0,005 | 23± 4 |
| 0,007 | 46±11 |
| 0,01 | 66±12 |
| 0,02 | 96±13 |
Bestimmung einer speziellen Bakterienart
in einer reagierenden Substanz
in einer reagierenden Substanz
Es wurden Einheiten hergestellt durch Abscheiden einer 0,7%igen Agar-Lösung enthaltend 20% E. CoIi
Poly A Antiserum auf Spiegel.
E. CoIi Olli : B4 wurde 18 h in 10 ml einer
BHI-Nährbrühe inkubiert und die Zellen abzentrifugiert.
Die Zellen wurden zweimal mit Salzlösung gewaschen, abzentrifugiert und die überstehende
Flüssigkeit verworfen. Die gewonnenen Zellen, von denen angenommen wurde, daß es etwa 1010 waren,
wurden mit 50 μΐ einer gesättigten wäßrigen Lösung von Äthylendiamintetraessigsäure mit einem pH-Wert
von 7,0 vermischt und 30 min bis 55° C inkubiert Dann wurden 50 μΐ Lysozymlösung (16 mg/ml in Wasser) zu
dem Zellgemisch gegeben und weitere 30 min unter gelegentlichem Rühren inkubiert Nach dem Abkühlen
wurden die Zelltrümmer abzentrifugiert Die klare überstehende Flüssigkeit wurde 30 min auf 1000C
gehalten, um das Lysozym auszufällen, das abzentrifugiert wurde.
Die klare überstehende Flüssigkeit wurde 1:10, 1 :100 bzw. 1 :1000 verdünnt mit einer wäßrigen
Lösung, die mit Phosphatpuffer auf einen pH-Wert von
803
gepuffert war. Anteile von 5 μΐ jeder Verdünnung
wurden auf getrennte Bereiche der Geloberfläche aufgebracht und 1 h bei ungefähr 23° C in einer Kammer
mit hoher Feuchtigkeit inkubiert. Es wurden Niederschlagsflecke mit abnehmender Opazität in den
Berührungsbereichen für die Verdünnungen 1 : JO bzw.
1 :100 beobachtet. Für den Bereich, der mit der 1 :1000-Verdünnung in Berührung gekommen war,
konnten visuell keine Niederschlagsflecken beobachtet werden.
Hierzu 1 Blatt Zeichnungen
Claims (4)
1. Verfahren zur schnellen qualitativen Analyse und/oder quantitativen Bestimmung von Antigenen
oder Antikörpern mit Hilfe einer Antigen-Antikörper-Reaktion, bei der ein Niederschlag gebildet und
die Menge dieses Niederschlages durch Messung der Streuung eines im spitzen Winkel hindurchgehenden
Lichtstrahls bestimmt wird, dadurch gekennzeichnet,
daß man die zu untersuchende Lösung, enthaltend einen Teilnehmer der Antigen-Antikörper-Reaktion
auf die Oberfläche eines Gels aufbringt, in dem der andere Teilnehmer der Reaktion
in einer Konzentration enthalten ist, die größer ist, als sie dem Äquivalenzpunkt des zu bestimmenden
Teilnehmers entspricht, und anschließend den Lichtstrahl durch den Oberflächenbereich des Gels
hindurchleitet, in dem der Niederschlag fixiert ist.
2. Verfahren nach Anspruch I, dadurch gekennzeichnet, daß sich das Gel auf und in innigem
Kontakt mit einem Substrat befindet.
3. Verfahren nach Anspruch 2, dadurch gekennzeichnet, daß das Substrat ein Spiegel ist, der auf das
Gel zu reflektiert.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3. dadurch gekennzeichnet, daß man zur Bestimmung
der Hintergrundstreuung den Lichtstrahl durch einen zweiten Oberflächenbereich des Gels hindurchschickt,
in dem der zu bestimmende Teilnehmer der Antigen-Antikörper-Reaktion nicht enthalten
ist.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US437732A US3905767A (en) | 1974-01-30 | 1974-01-30 | Process for qualitative analysis or quantitation of antigens or antibodies |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE2503627A1 DE2503627A1 (de) | 1975-10-09 |
| DE2503627B2 true DE2503627B2 (de) | 1977-02-17 |
Family
ID=23737652
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE19752503627 Withdrawn DE2503627B2 (de) | 1974-01-30 | 1975-01-29 | Verfahren zur analyse von antigenen oder antikoerpern |
Country Status (7)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US3905767A (de) |
| JP (1) | JPS5318577B2 (de) |
| CA (1) | CA1034042A (de) |
| DE (1) | DE2503627B2 (de) |
| FR (1) | FR2259363B1 (de) |
| GB (1) | GB1490264A (de) |
| SE (1) | SE421567B (de) |
Families Citing this family (46)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3960489A (en) * | 1974-04-01 | 1976-06-01 | General Electric Company | Method and apparatus for determination of concentration of immunologically reactive biological particles |
| DE2508637C3 (de) * | 1975-02-28 | 1979-11-22 | Max-Planck-Gesellschaft Zur Foerderung Der Wissenschaften E.V., 3400 Goettingen | Anordnung zur optischen Messung von Blutgasen |
| USRE32696E (en) * | 1975-09-04 | 1988-06-14 | Akzona Incorporated | Enzymatic immunological method for determination of antigens and antibodies |
| US4016043A (en) * | 1975-09-04 | 1977-04-05 | Akzona Incorporated | Enzymatic immunological method for the determination of antigens and antibodies |
| US4642285A (en) * | 1975-09-29 | 1987-02-10 | Diamedix Corporation | Sandwich EIA for antigen |
| US4021200A (en) * | 1975-09-29 | 1977-05-03 | Walter Farris | Electronic digital radial and electro immunodiffusion calibrating viewer |
| US4474878A (en) * | 1975-09-29 | 1984-10-02 | Cordis Laboratories, Inc. | Sandwich EIA for antigen associated with hepatitis |
| US4080264A (en) * | 1976-03-01 | 1978-03-21 | Massachusetts Institute Of Technology | Immunoassay by light scattering spectroscopy |
| US4157871A (en) * | 1976-06-02 | 1979-06-12 | Beckman Instruments, Inc. | System for rate immunonephelometric analysis |
| US4101276A (en) * | 1976-06-02 | 1978-07-18 | Beckman Instruments, Inc. | Method and apparatus for signalling the introduction of chemical reaction components into a chemical analyzing system |
| US4329213A (en) * | 1977-07-14 | 1982-05-11 | Elwing Hans B | Gel diffusion immunoassay including α-feto protein determination |
| US4268171A (en) * | 1977-07-18 | 1981-05-19 | Beckman Instruments, Inc. | Method determining concentration in rate nephelometric immunochemical analysis |
| US4197088A (en) * | 1977-09-23 | 1980-04-08 | Akro-Medic Engineering, Inc. | Method for qualitative and quantitative determination of immunological reactions |
| US4411518A (en) * | 1977-09-23 | 1983-10-25 | Gamma Biologicals, Inc. | Apparatus for use in qualitative determination of immunological reactions |
| US4174952A (en) * | 1978-01-23 | 1979-11-20 | Massachusetts Institute Of Technology | Immunoassay by light scattering intensity anisotropy measurements |
| US4204837A (en) * | 1978-03-14 | 1980-05-27 | Beckman Instruments, Inc. | Method of rate immunonephelometric analysis |
| US4205954A (en) * | 1978-05-26 | 1980-06-03 | Warner-Lambert Company | Kinetic latex agglutinometry |
| US4213764A (en) * | 1978-08-09 | 1980-07-22 | Akzona Incorporated | Method for determining immunochemical substances |
| FR2440555A1 (fr) * | 1978-10-31 | 1980-05-30 | Maes Roland | Perfectionnements aux procedes de determination de substances montrant entre elles des affinites de liaison specifiques, par des tests faisant intervenir une phase solide |
| US4284412A (en) * | 1979-07-13 | 1981-08-18 | Ortho Diagnostics, Inc. | Method and apparatus for automated identification and enumeration of specified blood cell subclasses |
| US4282002A (en) * | 1979-09-06 | 1981-08-04 | Akzona Incorporated | Sensitized sheep stroma immunoassay for rheumatoid factor |
| US4321057A (en) * | 1979-09-20 | 1982-03-23 | Buckles Richard G | Method for quantitative analysis using optical fibers |
| US4399099A (en) * | 1979-09-20 | 1983-08-16 | Buckles Richard G | Optical fiber apparatus for quantitative analysis |
| US4394391A (en) * | 1980-02-19 | 1983-07-19 | Thorell Jan Ivan | Radioimmunoassay reagents |
| US4447529A (en) * | 1981-07-06 | 1984-05-08 | Miles Laboratories, Inc. | Preparing homogeneous specific binding assay element to avoid premature reaction |
| DE3135196A1 (de) * | 1981-09-05 | 1983-03-17 | Merck Patent Gmbh, 6100 Darmstadt | Verfahren, mittel und vorrichtung zur bestimmung biologischer komponenten |
| US4461829A (en) * | 1981-09-14 | 1984-07-24 | Miles Laboratories, Inc. | Homogeneous specific binding assay element and lyophilization production method |
| US4621063A (en) * | 1982-10-12 | 1986-11-04 | The Center For Immunological Studies | Methods for the detection and quantitation of immunological substances |
| GB2136953B (en) * | 1983-08-03 | 1985-03-20 | Wang Wei Kung | Method and apparatus detecting biological particles by induced signal |
| US4597944A (en) * | 1983-10-18 | 1986-07-01 | Cottingham Hugh V | Agglutination reagent detection system |
| EP0275275B1 (de) * | 1986-07-17 | 1992-05-20 | PROSUMUS AG Elektronisch-mechanische Geräte | Chemosensor |
| US5100805A (en) * | 1989-01-26 | 1992-03-31 | Seradyn, Inc. | Quantitative immunoassay system and method for agglutination assays |
| GB8909478D0 (en) * | 1989-04-26 | 1989-06-14 | Bradwell Arthur R | Radial immunodiffusion and like techniques |
| JPH03261309A (ja) * | 1990-03-09 | 1991-11-21 | Mitsubishi Electric Corp | 高圧コンビネーションスタータの引外し装置 |
| US5124130A (en) * | 1990-05-22 | 1992-06-23 | Optex Biomedical, Inc. | Optical probe |
| US5350697A (en) * | 1990-08-28 | 1994-09-27 | Akzo N.V. | Scattered light detection apparatus |
| GB9123862D0 (en) * | 1991-11-09 | 1992-01-02 | Bds Biolog Limited | Detecting antibodies to extractable nuclear antigens and oher substances |
| US6394952B1 (en) | 1998-02-03 | 2002-05-28 | Adeza Biomedical Corporation | Point of care diagnostic systems |
| US6267722B1 (en) | 1998-02-03 | 2001-07-31 | Adeza Biomedical Corporation | Point of care diagnostic systems |
| USD432244S (en) * | 1998-04-20 | 2000-10-17 | Adeza Biomedical Corporation | Device for encasing an assay test strip |
| USD434153S (en) * | 1998-04-20 | 2000-11-21 | Adeza Biomedical Corporation | Point of care analyte detector system |
| CA2254223A1 (en) | 1998-11-16 | 2000-05-16 | Biophys, Inc. | Device and method for analyzing a biologic sample |
| CA2442282A1 (en) * | 2001-03-29 | 2002-10-10 | Cellect Technologies Corp. | Methods devices and systems for sorting and separating particles |
| US8692873B2 (en) | 2009-01-15 | 2014-04-08 | Alverix, Inc. | Video-frame data receiver with low frame capture rate |
| US8422740B2 (en) | 2009-01-15 | 2013-04-16 | Scott Dylewski | Methods for determining a liquid front position on a test strip |
| US10295472B2 (en) | 2010-05-05 | 2019-05-21 | Alverix, Inc. | Assay reader operable to scan a test strip |
Family Cites Families (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US2666355A (en) * | 1951-10-12 | 1954-01-19 | Hans J Trurnit | Method of studying chemical reactions by measuring interfacial film thicknesses |
| US3614231A (en) * | 1968-02-12 | 1971-10-19 | Coulter Electronics | Optical aerosol counter |
| US3730842A (en) * | 1970-05-04 | 1973-05-01 | Science Spectrum | Process for determining bacterial drug sensitivity |
| US3754867A (en) * | 1970-12-11 | 1973-08-28 | Bjorksten Res Lab Inc | Carbon dioxide sensing system |
| US3770380A (en) * | 1971-04-19 | 1973-11-06 | Us Army | Article and method for multiple immune adherence assay |
| US3776817A (en) * | 1971-10-04 | 1973-12-04 | Der Pfordten H Von | Method and apparatus for determining bacterial growth |
| BE790280A (fr) * | 1971-11-19 | 1973-04-19 | Technicon Instr | Analyse photometrique d'une goutellette d'un echantillon liquide |
-
1974
- 1974-01-30 US US437732A patent/US3905767A/en not_active Expired - Lifetime
- 1974-12-10 CA CA215,592A patent/CA1034042A/en not_active Expired
-
1975
- 1975-01-10 SE SE7500275A patent/SE421567B/xx unknown
- 1975-01-27 JP JP1055175A patent/JPS5318577B2/ja not_active Expired
- 1975-01-29 GB GB3918/75A patent/GB1490264A/en not_active Expired
- 1975-01-29 DE DE19752503627 patent/DE2503627B2/de not_active Withdrawn
- 1975-01-29 FR FR7502773A patent/FR2259363B1/fr not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE2503627A1 (de) | 1975-10-09 |
| SE421567B (sv) | 1982-01-04 |
| CA1034042A (en) | 1978-07-04 |
| FR2259363B1 (de) | 1977-11-18 |
| GB1490264A (en) | 1977-10-26 |
| FR2259363A1 (de) | 1975-08-22 |
| AU7630074A (en) | 1976-06-17 |
| JPS5318577B2 (de) | 1978-06-15 |
| US3905767A (en) | 1975-09-16 |
| SE7500275L (de) | 1975-07-31 |
| JPS50107123A (de) | 1975-08-23 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DE2503627B2 (de) | Verfahren zur analyse von antigenen oder antikoerpern | |
| DE3887491T2 (de) | Chromatographische Bindungstesteinrichtungen und Verfahren. | |
| DE3852117T2 (de) | Immunoassay mit Verwendung von nichtmetallischen, kolloidalen Teilchen. | |
| DE69412137T2 (de) | Sensoreinrichtung zum sandwichtest | |
| DE69022254T2 (de) | Liganden-Rezeptor-Assays unter Verwendung eines Schwellenwertes. | |
| DE3781672T2 (de) | Indirekte kolorimetrische detektion eines analyten in einer probe unter zuhilfenahme des verhaeltnisses von lichtsignalen. | |
| DE68923907T2 (de) | Verfahren zur immunochromatographischen Analyse. | |
| DE69121021T2 (de) | Bindungsnachweisverfahren mit Konjugatrückgewinnung | |
| DE3687276T2 (de) | Festphaseanalytische vorrichtung und verfahren zu ihrer verwendung. | |
| DE3781335T2 (de) | Immunoassay mit verwendung von kolloidalem gold. | |
| DE68922844T2 (de) | Agglutinationsverfahren zur Bestimmung von mehreren Liganden. | |
| DE3618101C2 (de) | ||
| DE68920176T2 (de) | Festphasenanalytische Vorrichtung und Verfahren zum Gebrauch derselben. | |
| DE68908432T2 (de) | Schwellwertimmunoassay. | |
| DE69635607T2 (de) | Liposom-verstärkter immunoaggregations-test und testvorrichtung | |
| DE2853836C2 (de) | ||
| DE60218695T2 (de) | Biosensoren und messverfahren | |
| DE3851744T2 (de) | Membran-Untersuchung mit fokussierendem Probeauflegen. | |
| DE60316471T2 (de) | Sich selbst kalibrierende durchflusstestvorrichtungen | |
| DE4229591C1 (de) | Immunologisches Verfahren zur Bestimmung eines Analyten | |
| EP0407904B1 (de) | Verfahren zur Bestimmung eines Analyten | |
| EP0098590A2 (de) | Immunchemisches Messverfahren | |
| DE2811228A1 (de) | Assay zur quantitativen bestimmung von immonogenen und antikoerpern | |
| DE3834766A1 (de) | Verfahren zur bestimmung einer spezifisch bindefaehigen substanz | |
| DE2512730A1 (de) | Verfahren zum nachweis einer immunologischen reaktion und zur bestimmung der konzentration immunologisch reaktiver biologischer teilchen sowie vorrichtung zur durchfuehrung des verfahrens |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| BHN | Withdrawal |