DE2938646C2 - Methode zur Bestimmung eines Liganden - Google Patents
Methode zur Bestimmung eines LigandenInfo
- Publication number
- DE2938646C2 DE2938646C2 DE2938646A DE2938646A DE2938646C2 DE 2938646 C2 DE2938646 C2 DE 2938646C2 DE 2938646 A DE2938646 A DE 2938646A DE 2938646 A DE2938646 A DE 2938646A DE 2938646 C2 DE2938646 C2 DE 2938646C2
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- ligand
- binder
- area
- fluorescence
- bleaching
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired
Links
- 239000003446 ligand Substances 0.000 title claims description 231
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 37
- 239000011230 binding agent Substances 0.000 claims description 129
- 239000000126 substance Substances 0.000 claims description 84
- 238000004061 bleaching Methods 0.000 claims description 61
- 239000012530 fluid Substances 0.000 claims description 60
- 230000033001 locomotion Effects 0.000 claims description 44
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 25
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims description 13
- 230000008859 change Effects 0.000 claims description 11
- 230000009471 action Effects 0.000 claims description 7
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 4
- 239000000696 magnetic material Substances 0.000 claims description 3
- 238000005259 measurement Methods 0.000 claims description 3
- 230000002123 temporal effect Effects 0.000 claims description 2
- 239000000376 reactant Substances 0.000 claims 1
- 239000012925 reference material Substances 0.000 claims 1
- 238000009792 diffusion process Methods 0.000 description 21
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 18
- NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N insulin Chemical compound N1C(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(NC(=O)CN)C(C)CC)CSSCC(C(NC(CO)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CCC(N)=O)C(=O)NC(CC(C)C)C(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(=O)NC(CC=2C=CC(O)=CC=2)C(=O)NC(CSSCC(NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2C=CC(O)=CC=2)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(C)NC(=O)C(CCC(O)=O)NC(=O)C(C(C)C)NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(CC=2NC=NC=2)NC(=O)C(CO)NC(=O)CNC2=O)C(=O)NCC(=O)NC(CCC(O)=O)C(=O)NC(CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC=CC=3)C(=O)NC(CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)NC(C(C)O)C(=O)N3C(CCC3)C(=O)NC(CCCCN)C(=O)NC(C)C(O)=O)C(=O)NC(CC(N)=O)C(O)=O)=O)NC(=O)C(C(C)CC)NC(=O)C(CO)NC(=O)C(C(C)O)NC(=O)C1CSSCC2NC(=O)C(CC(C)C)NC(=O)C(NC(=O)C(CCC(N)=O)NC(=O)C(CC(N)=O)NC(=O)C(NC(=O)C(N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)CC1=CN=CN1 NOESYZHRGYRDHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 16
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 16
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 14
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 14
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 14
- 238000011084 recovery Methods 0.000 description 14
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 13
- 239000000047 product Substances 0.000 description 12
- 239000011324 bead Substances 0.000 description 10
- GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N fluorescein Chemical compound O1C(=O)C2=CC=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 GNBHRKFJIUUOQI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 10
- 102000004877 Insulin Human genes 0.000 description 8
- 108090001061 Insulin Proteins 0.000 description 8
- 229940125396 insulin Drugs 0.000 description 8
- 230000006870 function Effects 0.000 description 6
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 6
- 239000011049 pearl Substances 0.000 description 6
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 6
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 6
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 5
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 4
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 4
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 4
- MHMNJMPURVTYEJ-UHFFFAOYSA-N fluorescein-5-isothiocyanate Chemical compound O1C(=O)C2=CC(N=C=S)=CC=C2C21C1=CC=C(O)C=C1OC1=CC(O)=CC=C21 MHMNJMPURVTYEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 4
- 230000027455 binding Effects 0.000 description 3
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 3
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 3
- 229940088597 hormone Drugs 0.000 description 3
- 239000005556 hormone Substances 0.000 description 3
- 230000000984 immunochemical effect Effects 0.000 description 3
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 3
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 3
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 3
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 3
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 3
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 3
- 238000003127 radioimmunoassay Methods 0.000 description 3
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 3
- 230000001960 triggered effect Effects 0.000 description 3
- 230000000007 visual effect Effects 0.000 description 3
- 239000011782 vitamin Substances 0.000 description 3
- 235000013343 vitamin Nutrition 0.000 description 3
- 229930003231 vitamin Natural products 0.000 description 3
- 229940088594 vitamin Drugs 0.000 description 3
- CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N Ascorbic acid Chemical compound OC[C@H](O)[C@H]1OC(=O)C(O)=C1O CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N 0.000 description 2
- -1 B. ACTH Chemical class 0.000 description 2
- OMFXVFTZEKFJBZ-UHFFFAOYSA-N Corticosterone Natural products O=C1CCC2(C)C3C(O)CC(C)(C(CC4)C(=O)CO)C4C3CCC2=C1 OMFXVFTZEKFJBZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- DNXHEGUUPJUMQT-CBZIJGRNSA-N Estrone Chemical compound OC1=CC=C2[C@H]3CC[C@](C)(C(CC4)=O)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 DNXHEGUUPJUMQT-CBZIJGRNSA-N 0.000 description 2
- RJKFOVLPORLFTN-LEKSSAKUSA-N Progesterone Chemical compound C1CC2=CC(=O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H](C(=O)C)[C@@]1(C)CC2 RJKFOVLPORLFTN-LEKSSAKUSA-N 0.000 description 2
- MUMGGOZAMZWBJJ-DYKIIFRCSA-N Testostosterone Chemical compound O=C1CC[C@]2(C)[C@H]3CC[C@](C)([C@H](CC4)O)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 MUMGGOZAMZWBJJ-DYKIIFRCSA-N 0.000 description 2
- 241000251539 Vertebrata <Metazoa> Species 0.000 description 2
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 2
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 2
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 description 2
- 238000000576 coating method Methods 0.000 description 2
- ZPUCINDJVBIVPJ-LJISPDSOSA-N cocaine Chemical compound O([C@H]1C[C@@H]2CC[C@@H](N2C)[C@H]1C(=O)OC)C(=O)C1=CC=CC=C1 ZPUCINDJVBIVPJ-LJISPDSOSA-N 0.000 description 2
- 230000009137 competitive binding Effects 0.000 description 2
- OMFXVFTZEKFJBZ-HJTSIMOOSA-N corticosterone Chemical compound O=C1CC[C@]2(C)[C@H]3[C@@H](O)C[C@](C)([C@H](CC4)C(=O)CO)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 OMFXVFTZEKFJBZ-HJTSIMOOSA-N 0.000 description 2
- 239000007822 coupling agent Substances 0.000 description 2
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 230000005684 electric field Effects 0.000 description 2
- 239000002622 gonadotropin Substances 0.000 description 2
- JYGXADMDTFJGBT-VWUMJDOOSA-N hydrocortisone Chemical compound O=C1CC[C@]2(C)[C@H]3[C@@H](O)C[C@](C)([C@@](CC4)(O)C(=O)CO)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 JYGXADMDTFJGBT-VWUMJDOOSA-N 0.000 description 2
- 230000002452 interceptive effect Effects 0.000 description 2
- 239000006249 magnetic particle Substances 0.000 description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 2
- 230000037230 mobility Effects 0.000 description 2
- BQJCRHHNABKAKU-KBQPJGBKSA-N morphine Chemical compound O([C@H]1[C@H](C=C[C@H]23)O)C4=C5[C@@]12CCN(C)[C@@H]3CC5=CC=C4O BQJCRHHNABKAKU-KBQPJGBKSA-N 0.000 description 2
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 2
- 230000008569 process Effects 0.000 description 2
- 230000002285 radioactive effect Effects 0.000 description 2
- 239000011343 solid material Substances 0.000 description 2
- 239000011550 stock solution Substances 0.000 description 2
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 2
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 2
- 238000010998 test method Methods 0.000 description 2
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 2
- DNXHEGUUPJUMQT-UHFFFAOYSA-N (+)-estrone Natural products OC1=CC=C2C3CCC(C)(C(CC4)=O)C4C3CCC2=C1 DNXHEGUUPJUMQT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- PROQIPRRNZUXQM-UHFFFAOYSA-N (16alpha,17betaOH)-Estra-1,3,5(10)-triene-3,16,17-triol Natural products OC1=CC=C2C3CCC(C)(C(C(O)C4)O)C4C3CCC2=C1 PROQIPRRNZUXQM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- NWUYHJFMYQTDRP-UHFFFAOYSA-N 1,2-bis(ethenyl)benzene;1-ethenyl-2-ethylbenzene;styrene Chemical compound C=CC1=CC=CC=C1.CCC1=CC=CC=C1C=C.C=CC1=CC=CC=C1C=C NWUYHJFMYQTDRP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- FUFLCEKSBBHCMO-UHFFFAOYSA-N 11-dehydrocorticosterone Natural products O=C1CCC2(C)C3C(=O)CC(C)(C(CC4)C(=O)CO)C4C3CCC2=C1 FUFLCEKSBBHCMO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ZOOGRGPOEVQQDX-UUOKFMHZSA-N 3',5'-cyclic GMP Chemical compound C([C@H]1O2)OP(O)(=O)O[C@H]1[C@@H](O)[C@@H]2N1C(N=C(NC2=O)N)=C2N=C1 ZOOGRGPOEVQQDX-UUOKFMHZSA-N 0.000 description 1
- BBEQQKBWUHCIOU-UHFFFAOYSA-N 5-(dimethylamino)-1-naphthalenesulfonic acid(dansyl acid) Chemical compound C1=CC=C2C(N(C)C)=CC=CC2=C1S(O)(=O)=O BBEQQKBWUHCIOU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QGXBDMJGAMFCBF-HLUDHZFRSA-N 5α-Androsterone Chemical compound C1[C@H](O)CC[C@]2(C)[C@H]3CC[C@](C)(C(CC4)=O)[C@@H]4[C@@H]3CC[C@H]21 QGXBDMJGAMFCBF-HLUDHZFRSA-N 0.000 description 1
- USSIQXCVUWKGNF-UHFFFAOYSA-N 6-(dimethylamino)-4,4-diphenylheptan-3-one Chemical compound C=1C=CC=CC=1C(CC(C)N(C)C)(C(=O)CC)C1=CC=CC=C1 USSIQXCVUWKGNF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- PQSUYGKTWSAVDQ-ZVIOFETBSA-N Aldosterone Chemical compound C([C@@]1([C@@H](C(=O)CO)CC[C@H]1[C@@H]1CC2)C=O)[C@H](O)[C@@H]1[C@]1(C)C2=CC(=O)CC1 PQSUYGKTWSAVDQ-ZVIOFETBSA-N 0.000 description 1
- PQSUYGKTWSAVDQ-UHFFFAOYSA-N Aldosterone Natural products C1CC2C3CCC(C(=O)CO)C3(C=O)CC(O)C2C2(C)C1=CC(=O)CC2 PQSUYGKTWSAVDQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000334478 Bacidia rubella Species 0.000 description 1
- 102000004506 Blood Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010017384 Blood Proteins Proteins 0.000 description 1
- 101001011741 Bos taurus Insulin Proteins 0.000 description 1
- 244000025254 Cannabis sativa Species 0.000 description 1
- 235000012766 Cannabis sativa ssp. sativa var. sativa Nutrition 0.000 description 1
- 235000012765 Cannabis sativa ssp. sativa var. spontanea Nutrition 0.000 description 1
- 241000700199 Cavia porcellus Species 0.000 description 1
- 101710098119 Chaperonin GroEL 2 Proteins 0.000 description 1
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M Chloride anion Chemical compound [Cl-] VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 239000000055 Corticotropin-Releasing Hormone Substances 0.000 description 1
- MFYSYFVPBJMHGN-ZPOLXVRWSA-N Cortisone Chemical compound O=C1CC[C@]2(C)[C@H]3C(=O)C[C@](C)([C@@](CC4)(O)C(=O)CO)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 MFYSYFVPBJMHGN-ZPOLXVRWSA-N 0.000 description 1
- MFYSYFVPBJMHGN-UHFFFAOYSA-N Cortisone Natural products O=C1CCC2(C)C3C(=O)CC(C)(C(CC4)(O)C(=O)CO)C4C3CCC2=C1 MFYSYFVPBJMHGN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- IVOMOUWHDPKRLL-KQYNXXCUSA-N Cyclic adenosine monophosphate Chemical compound C([C@H]1O2)OP(O)(=O)O[C@H]1[C@@H](O)[C@@H]2N1C(N=CN=C2N)=C2N=C1 IVOMOUWHDPKRLL-KQYNXXCUSA-N 0.000 description 1
- ZZZCUOFIHGPKAK-UHFFFAOYSA-N D-erythro-ascorbic acid Natural products OCC1OC(=O)C(O)=C1O ZZZCUOFIHGPKAK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- PIICEJLVQHRZGT-UHFFFAOYSA-N Ethylenediamine Chemical compound NCCN PIICEJLVQHRZGT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QGXBDMJGAMFCBF-UHFFFAOYSA-N Etiocholanolone Natural products C1C(O)CCC2(C)C3CCC(C)(C(CC4)=O)C4C3CCC21 QGXBDMJGAMFCBF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 108010007979 Glycocholic Acid Proteins 0.000 description 1
- 102000006771 Gonadotropins Human genes 0.000 description 1
- 108010086677 Gonadotropins Proteins 0.000 description 1
- 206010018612 Gonorrhoea Diseases 0.000 description 1
- 108010051696 Growth Hormone Proteins 0.000 description 1
- 102000018997 Growth Hormone Human genes 0.000 description 1
- 206010019799 Hepatitis viral Diseases 0.000 description 1
- GVGLGOZIDCSQPN-PVHGPHFFSA-N Heroin Chemical compound O([C@H]1[C@H](C=C[C@H]23)OC(C)=O)C4=C5[C@@]12CCN(C)[C@@H]3CC5=CC=C4OC(C)=O GVGLGOZIDCSQPN-PVHGPHFFSA-N 0.000 description 1
- 208000009889 Herpes Simplex Diseases 0.000 description 1
- 206010062767 Hypophysitis Diseases 0.000 description 1
- WSMYVTOQOOLQHP-UHFFFAOYSA-N Malondialdehyde Chemical compound O=CCC=O WSMYVTOQOOLQHP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- NPPQSCRMBWNHMW-UHFFFAOYSA-N Meprobamate Chemical compound NC(=O)OCC(C)(CCC)COC(N)=O NPPQSCRMBWNHMW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101100400378 Mus musculus Marveld2 gene Proteins 0.000 description 1
- RFDAIACWWDREDC-UHFFFAOYSA-N Na salt-Glycocholic acid Natural products OC1CC2CC(O)CCC2(C)C2C1C1CCC(C(CCC(=O)NCC(O)=O)C)C1(C)C(O)C2 RFDAIACWWDREDC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 241000282320 Panthera leo Species 0.000 description 1
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 1
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 1
- ORNBQBCIOKFOEO-YQUGOWONSA-N Pregnenolone Natural products O=C(C)[C@@H]1[C@@]2(C)[C@H]([C@H]3[C@@H]([C@]4(C)C(=CC3)C[C@@H](O)CC4)CC2)CC1 ORNBQBCIOKFOEO-YQUGOWONSA-N 0.000 description 1
- 102100028255 Renin Human genes 0.000 description 1
- 108090000783 Renin Proteins 0.000 description 1
- 239000002262 Schiff base Substances 0.000 description 1
- 150000004753 Schiff bases Chemical class 0.000 description 1
- BUGBHKTXTAQXES-UHFFFAOYSA-N Selenium Chemical compound [Se] BUGBHKTXTAQXES-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000191967 Staphylococcus aureus Species 0.000 description 1
- PCSMJKASWLYICJ-UHFFFAOYSA-N Succinic aldehyde Chemical compound O=CCCC=O PCSMJKASWLYICJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004098 Tetracycline Substances 0.000 description 1
- 241000473945 Theria <moth genus> Species 0.000 description 1
- 102000002248 Thyroxine-Binding Globulin Human genes 0.000 description 1
- 108010000259 Thyroxine-Binding Globulin Proteins 0.000 description 1
- IVOMOUWHDPKRLL-UHFFFAOYSA-N UNPD107823 Natural products O1C2COP(O)(=O)OC2C(O)C1N1C(N=CN=C2N)=C2N=C1 IVOMOUWHDPKRLL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000042295 Vigna mungo Species 0.000 description 1
- 235000010716 Vigna mungo Nutrition 0.000 description 1
- 229930003268 Vitamin C Natural products 0.000 description 1
- DPKHZNPWBDQZCN-UHFFFAOYSA-N acridine orange free base Chemical compound C1=CC(N(C)C)=CC2=NC3=CC(N(C)C)=CC=C3C=C21 DPKHZNPWBDQZCN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 229960002478 aldosterone Drugs 0.000 description 1
- 229930013930 alkaloid Natural products 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000003098 androgen Substances 0.000 description 1
- 229940030486 androgens Drugs 0.000 description 1
- 229940061641 androsterone Drugs 0.000 description 1
- 210000001557 animal structure Anatomy 0.000 description 1
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 1
- XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N argon Substances [Ar] XKRFYHLGVUSROY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052786 argon Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 229940125717 barbiturate Drugs 0.000 description 1
- 238000005452 bending Methods 0.000 description 1
- DZBUGLKDJFMEHC-UHFFFAOYSA-N benzoquinolinylidene Natural products C1=CC=CC2=CC3=CC=CC=C3N=C21 DZBUGLKDJFMEHC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000003613 bile acid Substances 0.000 description 1
- IXIBAKNTJSCKJM-BUBXBXGNSA-N bovine insulin Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H]1CSSC[C@H]2C(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@@H](CO)C(=O)N[C@H](C(=O)N[C@H](C(N[C@@H](CO)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)N[C@@H](CCC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)N[C@@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)C(=O)N[C@@H](CSSC[C@H](NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CC=3C=CC(O)=CC=3)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](C)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@H](CC(C)C)NC(=O)[C@H](CC=3NC=NC=3)NC(=O)[C@H](CO)NC(=O)CNC1=O)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)O)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H](C)C(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(O)=O)=O)CSSC[C@@H](C(N2)=O)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CCC(O)=O)NC(=O)[C@H](C(C)C)NC(=O)[C@@H](NC(=O)CN)[C@@H](C)CC)C(C)C)NC(=O)[C@H](CCC(N)=O)NC(=O)[C@H](CC(N)=O)NC(=O)[C@@H](NC(=O)[C@@H](N)CC=1C=CC=CC=1)C(C)C)C1=CN=CN1 IXIBAKNTJSCKJM-BUBXBXGNSA-N 0.000 description 1
- 150000001718 carbodiimides Chemical class 0.000 description 1
- 150000003943 catecholamines Chemical class 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 229960003920 cocaine Drugs 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- IDLFZVILOHSSID-OVLDLUHVSA-N corticotropin Chemical compound C([C@@H](C(=O)N[C@@H](CO)C(=O)N[C@@H](CCSC)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC=1NC=NC=1)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)N[C@@H](CC=1C2=CC=CC=C2NC=1)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](C(C)C)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)N[C@@H](CCCNC(N)=N)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](C(C)C)C(=O)N[C@@H](CCCCN)C(=O)N[C@@H](C(C)C)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC(O)=CC=1)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)NCC(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CO)C(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](C)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(=O)N1[C@@H](CCC1)C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC=1C=CC=CC=1)C(O)=O)NC(=O)[C@@H](N)CO)C1=CC=C(O)C=C1 IDLFZVILOHSSID-OVLDLUHVSA-N 0.000 description 1
- 229960000258 corticotropin Drugs 0.000 description 1
- 229960004544 cortisone Drugs 0.000 description 1
- MGNCLNQXLYJVJD-UHFFFAOYSA-N cyanuric chloride Chemical compound ClC1=NC(Cl)=NC(Cl)=N1 MGNCLNQXLYJVJD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ZOOGRGPOEVQQDX-UHFFFAOYSA-N cyclic GMP Natural products O1C2COP(O)(=O)OC2C(O)C1N1C=NC2=C1NC(N)=NC2=O ZOOGRGPOEVQQDX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229940095074 cyclic amp Drugs 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 229960002069 diamorphine Drugs 0.000 description 1
- 125000005442 diisocyanate group Chemical group 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- NJDNXYGOVLYJHP-UHFFFAOYSA-L disodium;2-(3-oxido-6-oxoxanthen-9-yl)benzoate Chemical compound [Na+].[Na+].[O-]C(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=CC(=O)C=C2OC2=CC([O-])=CC=C21 NJDNXYGOVLYJHP-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 238000010494 dissociation reaction Methods 0.000 description 1
- 230000005593 dissociations Effects 0.000 description 1
- 239000003480 eluent Substances 0.000 description 1
- 229960001348 estriol Drugs 0.000 description 1
- PROQIPRRNZUXQM-ZXXIGWHRSA-N estriol Chemical compound OC1=CC=C2[C@H]3CC[C@](C)([C@H]([C@H](O)C4)O)[C@@H]4[C@@H]3CCC2=C1 PROQIPRRNZUXQM-ZXXIGWHRSA-N 0.000 description 1
- 229940011871 estrogen Drugs 0.000 description 1
- 239000000262 estrogen Substances 0.000 description 1
- 229960003399 estrone Drugs 0.000 description 1
- ZMMJGEGLRURXTF-UHFFFAOYSA-N ethidium bromide Chemical compound [Br-].C12=CC(N)=CC=C2C2=CC=C(N)C=C2[N+](CC)=C1C1=CC=CC=C1 ZMMJGEGLRURXTF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960005542 ethidium bromide Drugs 0.000 description 1
- 238000002875 fluorescence polarization Methods 0.000 description 1
- 238000002376 fluorescence recovery after photobleaching Methods 0.000 description 1
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 1
- RFDAIACWWDREDC-FRVQLJSFSA-N glycocholic acid Chemical compound C([C@H]1C[C@H]2O)[C@H](O)CC[C@]1(C)[C@@H]1[C@@H]2[C@@H]2CC[C@H]([C@@H](CCC(=O)NCC(O)=O)C)[C@@]2(C)[C@@H](O)C1 RFDAIACWWDREDC-FRVQLJSFSA-N 0.000 description 1
- 229930182470 glycoside Natural products 0.000 description 1
- 150000002338 glycosides Chemical class 0.000 description 1
- 208000001786 gonorrhea Diseases 0.000 description 1
- 239000000122 growth hormone Substances 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 229960000890 hydrocortisone Drugs 0.000 description 1
- 229930005303 indole alkaloid Natural products 0.000 description 1
- 150000002475 indoles Chemical class 0.000 description 1
- 239000003456 ion exchange resin Substances 0.000 description 1
- 229920003303 ion-exchange polymer Polymers 0.000 description 1
- 230000002427 irreversible effect Effects 0.000 description 1
- 150000002540 isothiocyanates Chemical class 0.000 description 1
- 239000000990 laser dye Substances 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 229960004815 meprobamate Drugs 0.000 description 1
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 1
- 229960001797 methadone Drugs 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 238000012544 monitoring process Methods 0.000 description 1
- 229960005181 morphine Drugs 0.000 description 1
- 102000039446 nucleic acids Human genes 0.000 description 1
- 108020004707 nucleic acids Proteins 0.000 description 1
- 150000007523 nucleic acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000002777 nucleoside Substances 0.000 description 1
- 125000003835 nucleoside group Chemical group 0.000 description 1
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 description 1
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 description 1
- 239000003921 oil Substances 0.000 description 1
- 238000002559 palpation Methods 0.000 description 1
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 1
- KHIWWQKSHDUIBK-UHFFFAOYSA-N periodic acid Chemical compound OI(=O)(=O)=O KHIWWQKSHDUIBK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000002990 phenothiazines Chemical class 0.000 description 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 1
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 1
- 238000006303 photolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 210000003635 pituitary gland Anatomy 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 1
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 1
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 1
- 229960000249 pregnenolone Drugs 0.000 description 1
- ORNBQBCIOKFOEO-QGVNFLHTSA-N pregnenolone Chemical compound C1C=C2C[C@@H](O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H](C(=O)C)[C@@]1(C)CC2 ORNBQBCIOKFOEO-QGVNFLHTSA-N 0.000 description 1
- 150000003141 primary amines Chemical class 0.000 description 1
- 125000002924 primary amino group Chemical group [H]N([H])* 0.000 description 1
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 239000000186 progesterone Substances 0.000 description 1
- 229960003387 progesterone Drugs 0.000 description 1
- 239000000583 progesterone congener Substances 0.000 description 1
- 239000010453 quartz Substances 0.000 description 1
- 239000000941 radioactive substance Substances 0.000 description 1
- 230000009257 reactivity Effects 0.000 description 1
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 1
- 230000004044 response Effects 0.000 description 1
- PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N rhodamine B Chemical compound [Cl-].C=12C=CC(=[N+](CC)CC)C=C2OC2=CC(N(CC)CC)=CC=C2C=1C1=CC=CC=C1C(O)=O PYWVYCXTNDRMGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229930182490 saponin Natural products 0.000 description 1
- 150000007949 saponins Chemical class 0.000 description 1
- 235000017709 saponins Nutrition 0.000 description 1
- 229910052711 selenium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011669 selenium Substances 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N silicon dioxide Inorganic materials O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 description 1
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 230000002459 sustained effect Effects 0.000 description 1
- 229960003604 testosterone Drugs 0.000 description 1
- 229960002180 tetracycline Drugs 0.000 description 1
- 229930101283 tetracycline Natural products 0.000 description 1
- 235000019364 tetracycline Nutrition 0.000 description 1
- 150000003522 tetracyclines Chemical class 0.000 description 1
- XUIIKFGFIJCVMT-UHFFFAOYSA-N thyroxine-binding globulin Natural products IC1=CC(CC([NH3+])C([O-])=O)=CC(I)=C1OC1=CC(I)=C(O)C(I)=C1 XUIIKFGFIJCVMT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000003204 tranquilizing agent Substances 0.000 description 1
- 230000002936 tranquilizing effect Effects 0.000 description 1
- 201000001862 viral hepatitis Diseases 0.000 description 1
- 235000019154 vitamin C Nutrition 0.000 description 1
- 239000011718 vitamin C Substances 0.000 description 1
- 235000019165 vitamin E Nutrition 0.000 description 1
- 239000011709 vitamin E Substances 0.000 description 1
- 235000019168 vitamin K Nutrition 0.000 description 1
- 239000011712 vitamin K Substances 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10S436/80—Fluorescent dyes, e.g. rhodamine
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10S436/805—Optical property
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S436/00—Chemistry: analytical and immunological testing
- Y10S436/807—Apparatus included in process claim, e.g. physical support structures
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Hematology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Investigating Or Analysing Materials By The Use Of Chemical Reactions (AREA)
Description
Die Erfindung betrifft eine Methode zur Bestimmung eines Liganden, bei dem man einen Liganden in einem
Fluid mit
a) einem mit einer fluoreszierenden Substanz markierten Binder oder
b) einem Binder und einem mit einer fluoreszierenden
Substanz markierten Bezugsiiganden in Berührung bringt.
Liganderi werden im allgemeinen nach einer Radiotestmethode
bestimmt, bei der die Konkurrenz zwischen dem Liganden und einer radioaktiv markierten Form des
Liganden für eine begrenzte Zahl von Binderstellen ausgenutzt wird. Wenn beispielsweise eine bekannte Menge
einer markierten Form des Liganden, eine bekannte Menge eines Binders für den Liganden und eine den
Liganden enthaltende Probe zusammengegeben und bebrütet werden, ändert sich der Prozentsatz der radioaktiv
markierten Form des an den Binder gebundenen Liganden umgekehrt mit der Menge des Liganden in der
Probe. Nach Abtrennung dps Liganden und des radioaktiv
markierten Liganden, die an den Binder gebunden sind, vom Liganden und radioaktiv markierten Liganden,
die nicht an den Binder gebunden sind, kann die Menge des radioaktiv markierten Liganden entweder in den
gebundenen oder freien Fraktionen oder beiden mit einer Standardkurve verglichen werden, um die Menge des
Liganden, der in der Probe vorhander war, zu bestimmen.
Diese Bestimmungen erfordern die Verwendung von
radioaktiven Stoffen. Dies ist mit offensichtlichen Nachtellen,
beispielsweise Beseitigung von Abfall, Lagerung der Stoffe und Verwendung eines kostspieligen Zählers
und dgl., verbunden. Darüber hinaus erfordern Bestimmungen dieser Art die Trennung der gebundenen und
freien Teile und sind ferner im allgemeinen zeitraubend.
Es ist auch bereits eine Methode zur Bestimmung von Liganden durch Messung der Fluoreszenz·Polarisation
beschrieben, '.vorder: (CHs. Chem vo' iq Nr S [19731
S. 838 bis 844). Die dort beschriebene Bestimmungsmethode
erfordert eine Anzahl voneinander abhängiger Faktoren wie z. B. die Brown'sche rotierende Bewegung der
fluoreszierenden Moleküle, d'e Empfindlichkeit bezüglich der Veränderung der Molekü/größf; usw. (s. S. 838,
rechne Spalte und S. 839, linke Spalte).
Aufgabe der Erfindung Ist somit, el"^ Methode für
verbesserte und vereinfachte Bestimmungen von Liganden zu schaffen.
Die Lösung der Aufgabe 1st dem Anspruch 1 zu entnehmen.
Sie Ist dadurch gekennzeichnet, daß man wenigstens einen Bereich des Fluids bleicht und die zeitliche
Änderung der Fluoreszenz In wenigstens einem
Bereich des Fluids mißt. Der Bestimmung liegt das Prinzip zugrunde, daß die Bewegung von Komponenten im
Fluid (Binder und/oder Ligand und/oder Bezugsligand) sich dadurch ändert, daß Ligand und/oder Bezugsligand
an de« Binder gebunden werden, d. h. (1) das gebundene Produkt von Ligand und Binder bewegt sich im Fluid
mit einer Geschwindigkeit, die von derjenigen des ungebundenen
Binders meßbar verschieden ist, oder (2) der ungebundene Bezugsligand bewegt sich im Fluid mit
einer Geschwindigkeit, die von derjenigen des gebundenen Produkts von Bezugsligand und Binder mfcBbar verschieden
ist, oder (3) das gebunden* Produkt von
Bezugsligand und Binder bewegt sich Im Fiu: mit einer
Geschwindigkeit, die von derjenigen rfes ^-inndenen
Produktes von Ligand und Binder iP.eQL.,r ·■-.schieden
ist.
Vorteilhafte Ausgestaltungen dt rilridungsgemäßen
Methode sind den AnsprücheΛ 2 ms «6 zu entnehmen.
Das Fluid, In dem die Besusc-t -ng durchgeführt wird,
ist vorzugsweise eine Flüssigkeit, jedoch könnte das Fluid natürlich auch ein Ge! sein. Der hier gebrauchte
Ausdruck »Fluid« bezeichnet somit ein Material in dem der Ligand sowie der Binder und der gegebenenfalls verwendete
Bezugsligand zur Bewegung fähig sind.
Die Bewegung des Liganden, des Binders und des Bezugsliganden im Fluid ist die Folge einer Diffusion in
Gegenwart und/oder Abwesenheit einer zur Einwirkung kommenden Kraft. In Abwesenheit einer zur Einwirkung
kommenden Kraft ist somit die Bewegung von Ligand, Binder und Bezugsligand die Folge einer thermischen
Diffusion. Diese Bewegung durch thermische Diffusior. kann durch Einwirkung einer Kraft, beispielsweise einer
elektrischen Kraft und/oder einer magnetischen Kraft und/oder einer Gravitationskraft, ergänzt werden. Die
Anwendung dieser Hilfsmittel wird nachstehend ausführlicher beschrieben.
In dem Fall, in dem der ungebundene Binder sich in
einem Fluid mit einer Geschwindigkeit bewegt, die von der Geschwindigkeit des an den Liganden gebundenen
Binders meßbar verschieden ist, wird eine Probe, die den Liganden enthält oder in der der Ligand vermutet wird,
einem Fluid zugesetzt, das einen mit einer nachweisbaren Substanz markierten Binder dafür enthält. Ein
Ligand, der etwa in der Probe vorhanden ist, birdct sich an den Binder, wodurch die Bewegungsgeschwindigkeit
des gesamten markierten Binders im Huid als Folge des Unterschiedes in der Bcwegungsgeschwindigkelt zwischen
dem ungebundenen Binder und dem an den Liganden gebundenen Binder verändert wird. Nach Bleichung
eines Bereichs des Fluids kann die Anwesenheit des ίο
Liganden in der Probe entweder qualitativ oder quantitativ durch Bestimmung der zeitlichen Änderung des markierten
Materials, d. h. des markierten Binders (gebunden oder ungebunden) in diesem Bereich des Fluids
bestimmt werden.
in dem Fall, In dem ein ungebundener Bezugsligand
sich In einem Medium mit einer Geschwindigkeit bewegt, die von derjenigen des an einen Binder gebundenen
Bezugsliganden meßbar verschieden ist, wird eine Probe, die den Liganden enthält oder In der der Ligand
vermutet wird. In einem Fluid mit einem Binder und
einem Bezugsliganden, der mit einer nachweisbaren Substanz
markiert Ist, zusammengeführt. Die Anwesenheit des Liganden in der Probe beeinflußt die relative Menge
von gebundenem und ungebundenem Bezugsliganden, wodurch wiederum die Bewegungsgeschwindigkeit des
gesamten markierten Bezugsliganden (gebunden und ungebunden) als Folge des Unterschiedes In der Bewegung
zwischen ungebundenem markierten Bezugsliganden und markiertem BezugsIIganden, der an den Binder
gebunden ist, beeinflußt wird. Die Anwesenheit eines Liganden in der Probe kann qualitativ oder quantitativ
nach Blelchung eines Bereichs des Fluids durch Bestimmung der zeitlichen Änderung von markiertem Material,
d. h. markiertem Bezugsliganden (gebunden und ungebunden) im gebleichten Bereich des Fluids bestimmt
werden.
In dem FaIi. in dem ein an einen Binder gebundener
Bezugsligand sich in einem Fluid mit einer Geschwindigkeit bewegt, die von derjenigen des an den Binder gebundenen
Ligander, meßbar verschieden ist, wird eine Probe, die den Liganden enthält oder in der der Ligand vermutet
wird, in einem Fluid mit einem Binder, der mit einer nachweisbaren Substanz markiert 1st, und einem Bezugsliganden
zusammengeführt, der in einer Form des Liganden vorliegt, die so modifiziert worden ist, daß das
gebundene Produkt von Binder und Bezugsligand sich im Fluid mit einer Geschwindigkeit bewegt, die von derjenigen
des gebundenen Produkts von Γ uder urid Ligand verschieden ist. Diese Modifikation des B'zugsllganden
kann beispielsweise durch Aufbringen des BezuRSÜganden
am einen festen Träger erreicht werden. Die Anwesenheit des Liganden In der Probe beeinflußt die relative
Menge von gebundenem und ungebundenem BezugsIIganden im Fluid, wodurch wiederum die Beweguogsgeschwindigkelt
des gesamten markierten Binders (an den Bezugsliganden und an den Liganden gebunden) im
Fluid als Folge des meßbaren Unterschiedes in der Bewegung zwischen dem an den Liganden gebundenen markierten
Binder und dem an den Bezugsliganden gebundenen markierten Binder beeinflußt wird. Die Anwesenheit
eines Liganden in der Probe kann qualitativ oder quantitativ bestimmt werden, indem die zeitliche Änderung
von markiertem Material, d. h. markiertem Binder (an den Liganden und an den Bezugsliganden gebunden) im
gebleichten Bereich des Fluids bestimmt wird.
Die Erfindung ist auf Bestimmungen für die veuchiedcnsten
Liganden anwendbar, für die ein geeignetes Bindemittel gefunden werden kann. Beispiele solcher Liganden
sind (1) Antigene, die, wenn sie in den Blutstrom eines Wirbeltiers eingeführt werden, die Plldung von
Antikörpern verursachen., '2) Haptene. die. wenn sie an einen antlgenen Träger gebunden und in den Blutstrom
eines Wirbeltiers eingeführt werden. Antikörper bilden, die für das Hapten spezifisch sind, oder (3) Liganden, die
natürlich vorkommende Binder enthalten, die in einer für den Liganden spezifischen Form isoliert werden können,
beispielsweise Serumproteine, aus verschiedenen tierischen Organen extrahierte Binder, Sera, Mllchbindemitte!
und Binder bakteriellen Ursprungs, z. B. Staphylococcus aureus. der ein Binder für IgG Ist. Es ist ferner zu
bemerken, daß der Ligand ein Antikörper oder ein natür-— !ich vorkommender Binder sein kan" In riiesetn Fall
wäre der Binder für den Liganden ein Antigen oder ein
Antikörper für diesen Antikörper oder natürlich vorkommenden Binder.
Als repräsentative Beispiele von Liganden, die gemäß
der Erfindung bestimmt werden können, selen genannt:
1) Drogen und Arzneimittel einschließlich dta Alkaloide,
z. B. Morphin und Heroin, Methadon und seine Analog«, Indolalkaloide, Catechol am ine. Barbiturate,
GlutethiiTild, Kokain und seine Metabollten
und Analoga, Diphenyihydantoin, Marihuana, Tranquilizer, z. B. Meprobamat, Benzodlazocycloheptane
und Phenothiazine.
2) Aminosäuren, Polypeptide, Nucleotide, Nucleoside und Proteine, z. B. ACTH, Oxytocln, lutenlslerendes
Hormon, Insulin, Bence-Jones-Proleln, Chorion-Gonadotropln,
Gonadotropin der Hypophyse, Wachstumshormon, Renin, Thyroxin bindendes
Globulin. Bradyklnln, Anglotensin, den Folllkelsprung
stimulierendes Hormon, cycllsches AMP, Cholylglycin, cycllsches GMP usw,
3} Steroide einschließlich der Östrogene, Gestagene,
Androgene, AdrenocorUcohormcme. Gallensäuren,
kardiolonische Glykoslde. Aglykone sowie Saponine. Ais spezieile Beispiele sind Testosteron.
Androsteron. tquilenln. Östron. Östriol. Progesteron.
Pregnenolon. H-Hydroxydioxy-cortlcosteron
(Verbindung S). Desox!corticosteron. Cortison. Corticosteron.
Cortisol. Aldosteron. üigoxln und Oigitoxin zu nennen.
4) Vitamine, z. B. V Hämin A. Vitamine der Gruppe B.
Vitamin C. die D-Vitamlne und die Vitamine E und K sowie verschiedene biologische Substanzen, beispielsweise
Antikörper, z. B. Penicillin, Tetracyclin, Antigene für virale Hepatitis A und B. Rubella, Herpes
Simplex. Alphafetcprotein. T>. T4. TSH, CEA,
Anikörper für N-Gonorrhoe. Dane-Kerne. Viren,
von Viren abgeleitete Proteine und Nucleinsäuren und Lipide.
Der hier gebrauchte Ausdruck »Ligand« umfaßt Antigene.
Haptene. Substanzen, die natürlich vorkommende Binder aufweisen, sowie Antikörper und die natürlich
vorkommenden Binder.
Der Ausdruck »Binder« bezeichnet eine Substanz, die den Liganden bindet, und umfaßt Antigene. Antikörper,
natürlich vorkommende Binder und als Reaktion auf Antikörper gebildete Antikörper, z. B. igG-antl-igG.
Dar Ausdruck »Bezugsligand« bezeichnet eine Substanz,
die durch den Binder für den Liganden gebunden ist. Der Bezugsligand kann der Ligand oder ein geeignetes
Analogem des Liganden sein, das nicht markiert oder mit einer nachweisbaren Substanz markiert oder so modifiziert
ist. daß es sich mit einer anderen Geschwindigkeit als der Ligand bewegt Der Bezugsligand kann somit ein
Antikörper. Antigen. Hapten oder ein Material mit einem natürlich vorkommenden Binder sein.
Zur Durchführung der Bestimmung ist entweder der Binder oder der Be/ugsltgand mit einer fluoreszierenden
Substanz markiert, die durch Licht, vorzugsweise bei
Einwirkung geringer Energie bleichfähig ist. Die als Markierung verwendete Substanz darf die immunochemische
Reaktion nicht stören, d h sie darf nur minimale Reaktionsfähigkeit
mit anderen Stoffen aufweisen. Die Wahl eines geeigneten Materials für die Markierung ist dem
Fachmann aufgrund der hier gegebenen Lehren möglich. Als repräsentative Beispiele geeigneter fluoreszierender
Stoffe sird Fluoreszein. Aminofluoreszein. Rhodamin.
D.A.N.S (l-Dimethylaminonaphthalin-5-suIfonsäure).
Ethidiumbromid. N.BD.-Chlorid. Rosamin. Acridinorange
und Laserfarbstoffe zu nennen.
Der fluoreszierende Stoff wird als Markierung verwendet,
indem man diesen Stoff veranlaßt, sich an den Binder
und/oder den Bezugsliganden zu binden, in vielen
Fällen bindet sich, wie bekannt ist, das fluoreszierende Material direkt an den Binder oder Bezugsliganden. In
anderen Fällen kann der fluoreszierende Stoff in bekannter Weise unter Verwendung eines geeigneten Kuppiungsmittels
an den Bezugsliganden oder Binder gebunden werden. Als repräsentative Beispiele geeigneter
Kupplungsmittel sind Dialdeh/de. z. B- Glutaraldehyd.
Succinaldehyd und Malonaldehyd. Carbodiimide, Diisocyanate,
Dlmethyladlpat, Isothlocyanal und Cyanurchlorid zu nennen. Es Ist zu bemerken, daß der Binder
und/oder der Bezugsligand mit mehr als einem fluoreszierenden Molekül markiert werden kann, Indem mehrere
Stellen beispielsweise durch Anfügen einer Polymerkette, an die eine Vielzahl von fluoreszierenden Molekülen
gekuppelt ist, ausgebildet werden. Methoden dieser Art werden z. B. In der US-PS 40 18 530 beschrieben. Als
weitere Aiiernative kann eine Vielzahl von fluoreszlerenden
Molekülen gebildet werden, Indem solche fluoreszierenden
Verbindungen in oder auf einem festen Material. Z. B. Perlen, fixiert werden und der Binder an diese Perlen
gebunden wird. Diese Methode kommt besonders dann in Frage, wenn der Binder für die Verwendung bei
der Bestimmung auf einen festen Träger aufgebracht ist. Hierauf wird nachstehend ausführlicher eingegangen.
Ein fluoreszierender Stoff kann an einen Binder, beispielsweise
einen Antikörper, gebunden werden, indem er an einen Antikörper für den als Binder verwendeten
Antikörper gebunden wird, indem man beispielsweise mit dem fluoreszierenden Stoff markiertes IgG-anli-IgG
an IgG bindet.
Nach einer zweckmäßigen Methode erfolgt eine fluoreszierende Markierung für einen Binder und/oder
Bezugsliganden über eine primäre Amlnogruppe des Binders und/oder Bezugsliganden, der dann mit Fluoreszein,
das mit Isothiocyanat derivleri ist, umgesetzt wird. Eine Substanz mi. einer endständigen Zuckergruppe, ζ. Β
Dlgoxin, kann durch Öffnen der endständigen Zuckergruppe mit Perjodat und anschließende Umsetzung mit
Äthylendiamin mit einem fluorezierenden Stoff markiert werden. Die hierbei erhaltene Schiffsche Base wird mit
Borhydrid reduziert, und das hierbei gebildete primäre Amin kann dann mit dem von Isohtiocyanai abgeleiteten
Fluoreszein umgesetzt werden.
Nach dem Bleichen eines Bereichs des Fluids unter Einwirkung einer photobleichenden Strahlung wird
anschließend die Änderung der Fluoreszenz mit der Zeit gemessen, die von der Bewegung von zusätzlichem fluoreszierendem
Stoff in diesen Bereich oder einen Teil des Bereichs abhängig ist. Als Alternative kann man auch
die Abnahme der Fluoreszenz mit der Zeit während des Bleichens messen, die von der Bewegung von zusätzlichem
fluoreszierendem Stoff in den Bereich abhängig ist. d. h. die Fluoreszenz in dem Bereich nimmt mit einer
Geschwindigkeit ab. die niedriger ist als die Zunahme der Bewegungsgeschwindigkeit des fluoreszierenden
Stoffs von außerhalb des gebleichten Bereichs in den gebleichten Bereich, oder man mißt die Abnahme der
Fluoreszenz in einem benachbarten Bereich, die vor der Bewegung von gebleichtem Material in den benachbarten
Bereich abhängt. Wie bereits erwähnt, ist diese Bewegung von fluoreszierendem Stoff die Folge einer Diffusion
in Gegenwart oder Abwesenheit einer zur Einwirkung gebrachten Kraft.
Es wurde festgestellt, daß die erneute Zunahme der Fluoreszenz mit der Zeit in dem Bereich der Bleichung
mit zunehmender Menge des Liganden im Fluid schwächer wird, da das gebundene Produkt des Liganden und
des mit fluoreszierendem Stoff markierten Binders sich mit einer Geschwindigkeit bewegt, die geringer ist als die
Bewegungsgeschwindigkeit von ungebundenem Binder, der mit dem fluoreszierenden Stoff markiert ist. Da der
Wiederanstieg der Fluoreszenz in dem Bereich mit der Zeit zur Menge des Liganden in einer Probe in Beziehung
steht, kann die Anwesenheit des Liganden in der Probe quantitativ bestimmt werden. So kann man einen Standard
herstellen, indem verschiedene bekannte Mengen
eines Liganden und eine feststehende Menge des mit
einem fluoreszierenden Stoff markierten Binders zusammengegeben werden (die feststehende Menge ist höher
als die zur Bfndung des gesamten Liganden erforderliche Menge) uiid anschließend eine Photoblelchung vorgenornmen
und der Wlederanstleg der Fluoreszenz mit der
Zelt für jc'e der verschiedenen bekannten Mengen des
Liganden gemessen wird« Eine unbekannte Menge des
Liganden in der Probe kann; dann! bestimmt werden,
Indem man Im Fluid die Probe! die den Lifciinden enthält
oder in der er vermutet wird, und die feststehende Menge des mit d<:m fluoreszierenden Stoff markierten
Binders zusammetigibt. anschließend die Photoblelchung vornimmt und die Fluoreszenzanstieg-Zelt-Bezlehung,
d. h die Zeit bis zur Erzielung eines ganz bestimmten Wiederanstiegs der Fluoreszenz oder den erneuten
Anstieg der Fluoreszenz nach einer bestimmten Zelt mißt. Die in der Probe vorhandene Menge des Liganden
kann dann durch Vergleich mit den vorher bestimmten Werten, d h. dem Standard, bestimmt werden. Als
Alternative kann man. wie bereits beschrieben, den Standard
erhalten, indem man die Photoblelchung vornimmt und die Abnahme der Fluoreszenz in dem Bereich oder
benachbarten Bereich mit der Zelt mißt. Eine unbekannte Menge des Liganden In der Probe kann dann
bestimmt werden, indem man die Fluoreszenzabnahme-Zelt-Beziehung,
d. h. die Abnahme der Fluoreszenz nach einer bestimmten Zeit oder die Zeit, die bis zu einer
bestimmten Abnahme der Fluoreszenz erforderlich lsi.
mißt uiiri einen Vergleich mit den vorher bestimmten
Werten, d. h. dem Standard, vornimmt.
Gemäß einer Ausführungsform der Erfindung, bei der die Bewegungsgeschwindigkeit eines Bezugsliganden in
einem Fluid durch Bindung des Bezugsliganden an einen Binder meßbar verändert wird, kann ein Ligand wie folgt
bestimmt werden: In einem Fluid werden eine Probe, die den Liganden enthält oder in der der Ligand vermui'l
wird, ein Binder und ein Bezugsligand. der mit einem
fluoreszierenden Stoff markiert Ist. zusammengeführt. Ein Bereich des Fluids wird der Photobleichung unterworfen,
worauf die Beziehung zwischen dem Wiederanstieg der Fluoreszenz in dem Bereich und der Zeit
bestimmt wird. Die Geschwindigkeit des Wiederanstiegs der Fluoreszenz nimmt dabei mit steigender Menge des
Liganden in der Probe zu, da mit steigender Menge des Liganden in der Probe die Menge des an den Binder
gebundenen, mit einem fluoreszierenden Stoff markierten
Liganden abnimmt. Angesichts der Tatsache, daß der an den Binder gebundene Bezugsligand sich mit niedrigerer
Geschwindigkeit als der ungebundene Bezugsiigand bewegt, findet eine Zunahme der Geschwindigkeit des
Wiederanstiegs der Fluoreszenz in dem Bereich mit steigender Menge des Liganden statt.
Bevorzugt wird ein Standard hergestellt, indem verschiedene bekannte Mengen eines Liganden mit feststehenden
Mengen eines Binders und feststehenden Mengen eines mit einem fluoreszierenden Stoff markierten
Bezugsliganden zusammengeführt werden (wobei die feststehende Menge des mit einem fluoreszierenden Stoff
markierten Bezugsliganden höher ist als die Menge, die an den Binder gebunden werden kann), worauf eine Photobleichung
vorgenommen und die Beziehung des Wiederanstiegs der Fluoreszenz im Bereich zur Zeit für jede
der bekannten Mengen des Liganden bestimmt wird. Eine unbekannte Menge des Liganden in der Probe kann 6ä
dann bestimmt werden, indem in einem Fluid die Probe, dies den Liganden enthält oder in der der Ligand vermutet
wird, die feststehende Menge des Binders und die feststehende Menge des mit dem fluoreszierenden Stoff
markierten Bezugsllganden zusammengeführt werden, worauf eine Pholoblelchung vorgenommen und die
Beziehung des Wiederanstiegs der Fluoreszenz Im Bereich zur Zelt bestimmt wird. Die In der Probe vorhandene
Menge des Liganden kann bestimmt werden, indem der Wiederanstieg der Fluoreszenz nach einer bestimmten
Zeil oder die zur Erreichung eines bestimmten Wiederanstiegs
der Fluoreszenz erforderliche Zelt mit den vorher bestimmten Werten für die vorstehend genannten
bekannten Mengen des Liganden verglichen wird.
Als Alternative kann, wie vorstehend beschrieben, der
Standard durch Photoblelchung und Messen der Fluoreszenzabnahme-Zelt-Beziehung während der Photoblefchung
für verschiedene bekannte Mengen des Liganden erhalten werden. Eine unbekannte Menge des Liganden
In einer Probe kann dann durch Messen der Fluoreszenzabnahme-Zelt-Bezlehung
für diese Probe und Vergleich mit den vorher erhaltenen Werten, d. h. der Fluoreszenzabnahme
nach einer bestimmten Zelt oder der bis zur Erreichung einer bestimmten Fluoreszenzabnahme erforderlichen
Zelt, bestimmt werden
Bei der Ausführungsform der Erfindung, bei der ein an
einen Bezugsllganden gebundener Binder sich In einem Fluid mit einer Geschwindigkeit bewegt, die von der
Bewegungsgeschwindigkeit des an einen Liganden gebundenen Binders meßbar verschieden Ist, kann eine
Bestimmung eines Liganden vorgenommen werden. Indem man in einem Fluid den Liganden, einen mit
einem fluoreszierenden Stoff markierten Binder und einen Bezugsliganden, der so modifiziert worden Ist, daß
er sich Im Fluid mit einer Geschwindigkeit bewegt, die von der Bewegungsgeschwindigkeit des Liganden meßbar
verschieden ist, zusammenführt, wodurch das gebundene Produkt von Binder und Bezugsligand sich im
Fluid mit einer Geschwindigkeit bewegt, die von der Bewegungsgeschwindigkeit des gebundenen Produkts
von Binder und Ligand verschieden Ist. Der Bezugsligand kann nach zahlreichen verschiedenen Methoden so
modifiziert werden, daß er diese verschiedene Bewegungsgeschwindigkeit aufweist, beispielsweise durch
Aufbringen des Bezugsliganden auf einen geeigneten Feststoff, beispielsweise eine Perle. Als Alternative kann
der Bezugsligand in dem Fall, in dem die Bewegung
durch Einwirkung einer Kraft, beispielsweise einer elek- . trischen Kraft, erfolgen soll, modifiziert werden, indem .
auf den Bezugsliganden eine Ladung aufgebracht wird, ■ wodurch der Bezugsligand sich mit einer anderen
Geschwindigkeit als der Ligand bewegt. In dem Fall, in dem die Bewegung durch Einwirkung einer magnetischen
Kraft erfolgen soll, kann der Bezugsligand an ein geeignetes magnetisches Material gebunden werden,
wobei er im Magnetfeld eine Bewegungsgeschwindigkeit erhält, die von derjenigen des Liganden verschieden ist.
Ein Bereich des Fluids wird der Photobleichung unterworfen und die Beziehung des Wiederanstiegs der Fluoreszenz
in dem Bereich zur Zeit bestimmt. Der zeitliche Verlauf des Wiederanstiegs der Fluoreszenz in dem Fall,
In dem der Bezugs'.igand so modifiziert worden ist, daß er sich mit einer niedrigeren Geschwindigkeit bewegt sis
der Ligand, nimmt mit steigender Menge des Liganden.
»n der Probe zu, da die Menge des an den Liganden gebundenen Binders Im Vergleich zu der Menge des' an;.·
den Bezugsliganden gebundenen Binders mit zunehmen- *■
der Menge des in der Probe vorhandenen # Liganden ' zunimmt. Angesichts der Tatsache, daß der mit einem
fluoreszierenden Stoff markierte Binder dann, wenn er an den Liganden gebunden ist, sich mit einer höheren
Geschwindigkeit bewegt als der an den Bezugsliganden gebundene, mit dem fluoreszierenden Stoff markierte
Binder, hat eine Zunahme der Menge des Liganden in der Probe eine Zunahme des Wiederanstiegs der Fluoreszenz
In dem Bereich mit der Zelt zur Folge. Wiederum kann ein Standard hergestellt werden, Indem man verschiedene
bekam te Mengen eines Liganden mit feststehenden Mengen eines mit einem fluoreszierenden Stoff
markierten Binders und feststehenden Mengen eines In
der vorstehend beschriebenen Weise modifizierten Bezugsliganden zusammenführt, anschließend einen
Bereich des Fluids der Photoblelchung unterwirft und die
Beziehung zwischen Anstieg der Fluoreszenz in dem Bereich und der Zeit für jede der bekannten Mengen des
Liganden bestimmt. Eine unbekannte Menge des Llganden in einer Probe kann dann bestimmt werden. Indem
man in einem Fluid die Probe, die den Liganden enthält oder in der der Ligand vermutet wird, die feststehende
Menge des mit einem fluoreszierenden Stoff markierten Binders und die feststehende Menge des modifizierten
Bezugsliganden zusammengibt, anschließend die Photobleichung vornimmt und den Wiederanstieg der Fluoreszenz
in den Bereich mit der Zeit bestimmt. Der Wiederanstieg der Fluoreszenz nach einer bestimmten Zeit oder
die Zeit, die erforderlich ist, um einen bestimmten Wiederanstieg der Fluoreszenz zu erreichen, wird dann mit
den Werten verglichen, die für die vorstehend genannten bekannten Mengen des Liganden erhalten worden sind,
wodurch die in der Probe vorhandene Menge des Liganden bestimmt wird. Wie bereits beschrieben, können als
Alternative die Standardproben hergestellt werden, indem ein Bereich des Fluids der Photobleichung unterworfen
und die Beziehung zwischen Abnahme der Fluoreszer?
in dem Bereich mit der Zeit bestimmt wird, wobei diese Abnahme mit steigender Menge des Liganden
in der Probe mit niedriger werdender Geschwindigkeit vonstatten geht, da die Geschwindigkeit der Bewegung
des fluoreszierenden Stoffs in den Bereich mit steigender Menge des Liganden zunimmt, weil das gebundene
Produkt von Binder, der mit dem fluoreszierenden Stoff markiert ist, und Ligand sich mit höherer
Geschwindigkeit bewegt als Jas gebundene Produkt von Binder, der mit dem fluoreszierenden Stoff markiert ist,
und Bezugsligand.
Wie bereits erwähnt, kann die Bewegung im Fluid « durch Anlegen eines geeigneten Kraftfeldes, beispielsweise
eines elektrischen Feldes und/oder eines Gravitationsfeldes, z. B. Absitzenlassen und Zentrifugieren,
und/oder eines Magnetfeldes ausgelöst werden. Beispielsweise kann durch Einwirkung eines elektrischen
Feldes auf das Fluid durch Anlegen einer Wechselspannung oder Gleichspannung die Bewegung des Liganden,
Binders oder Bezugsliganden in Abhängigkeit von der Ladung, der Ionenstärke des Fluids usw. erhöht werden.
Ein solcher elektrophoretischer Effekt stellt ein zusätzli- ä5
ches Unierscheidungsmittel zur Durchführung der Bestimmung dar. Die elektrophoretische Spannung kann
somit verwendet werden, um die Bestimmungsgenauigkeit zu erhöhen. Beispielsweise wird in Abwesenheit
eines jeden Spannungsimpulses eine einzelne, mit einem fluoreszierenden Stoff markierte Substanz im wesentlichen
durch zwei Größen charakterisiert, die Empfindlichkeit
gegen Bleichung und die Bewegungsgeschwindigkeit, insbesondere die Diffusionskonstante. In Gegenwart
eines Spannungsimpulses kann eine mit einem fluoreszierenden
Stoff markierte Substanz eine Abhängigkeit von einer angelegten Spannung zeigen. So kann die
Bewegung der Substanz im Fluid durch Änderung der Ladung der Substanz verändert werden. Beispielsweise
kann In einem Fall, in dem ein Ligand und ein Binder
gleiche Dlffusionskoaitanten aufweisen, ein Unterschied
in der Bewegungsgeschwindigkeit zwischen dem Liganden und dem Binder erhalten werden, indem die Ladung
am Binder verändert wird, wodurch nach Anlegen einer geeigneten Spannung der Binder und der Ligand ohne
Rücksicht auf gleiche Diffusionskonstanten Verschiedene
Bewegungsgeschwindigkeiten Im Fluid haben. Ebenso kann die Empfindlichkeit einer Bestimmung gesteigert
werden, indem der Unterschied in der Bewegungsgeschwindigkeit zwischen einem markierten Bezugsllganden
und einem Binder durch Anlegen elektrophoreti scher Spannungen gesteigert wird. Beispielswelse kann
sowohl die Bleichung als auch der Wiederanstieg der Fluoreszenz gemessen werden, während elektrophoretische
Spannungen angelegt werden, wodurch sich eine geeignete Differenz in der Bewegungsgeschwindigkeit von
Binder und markiertem Bezugsliganden ergibt.
Als Alternative könnten elektrophoretische Spannungen
nur während des Bleichens angelegt werden, um beispielsweise den Unterschied zwischen Binder und markiertem
Bezugsliganden zu steigern. Wenn man beispielsweise auf den Binder eine reine Ladung und auf
den markierten Bezugsliganden keine reine Ladung aufdrückt und während des Bleichens ein Wechselstrom feld
anlegt, wird der gebundene markierte Bezugsligand in
den Bleichbereich und aus dem Bleichbereith getrieben,
während dies beim ungebundenen markierten Bezugsliganden nicht der Fall ist. Als Folge der gesteigerten Bleichung
des gebundenen markierten Bezugsliganden wird die Geschwindigkeit des Wiederanstiegs seiner Fluoreszenz
während des Wiederansliegsleils der Bestimmung (der ohne Wechselstrom feld erfolgt) erniedrigt und die
Unterscheidung zwischen gebundenem und ungebunde
nem markierten Bezugsliganden gesteigert. Als Alternative könnte das Wechselstrom feld nur während des WIederanstiegstells
der Fluoreszenz der Bestimmung angelegt werden, um die Geschwindigkeit des Wiederanstfegs
des gebundenen markierten Bezugsliganden *u erhöhen, wodurch gleichzeitig die Unterscheidung zwischen
gebundenem und ungebundenem markiertem Bezugsliganden verstärkt wird.
Elektrophoretische Spannungen können auch angewendet werden, um die Probleme störender Substanzen,
die im Fluid vorhanden sein können, zu vermeiden. Dies kann durch Einstellung elektrophoretischer Beweglichkeiten,
beispielsweise durch Veränderung des pH-Wertes und der Spannungsimpulse in einer solchen Weise, daß
eine Unterscheidung von den störenden Substanzen erzielt wird, erreicht werden. Elektrophoretische Wechselspannungen
können ebenfalls angewendet v/erden, um eine Unterscheidung gegen Faktoren wie beispielsweise
fluoreszierenden Hintergrund oder »Geräusch« zu erzielen, wenn die elektrophoretische Beweglichkeit der nachzuweisenden
Hintergrundsubstanz in geeigneter Weise eingestellt wird.
Gemäß einer weiteren Ausgestaltung der Erfindung kann ein magnetisches Kraftfeld angelegt werden, um
die Bewegung der verschiedenen Substanzen, die bei der Bestimmung verwendet werden, zu beeinflussen. Bei
Anwendung eines solchen magnetischen Kraftfeldes werden eine oder mehrere der bei der Bestimmung zu vervendenden
Substanzen an ein geeignetes magnetisches Material beispielsweise in Form von magnetischen Teilchen
oder Perlen gebunden. Beispielsweise könnte eine Bestimmung mit dem auf magnetische Perlen aufgebrachten,
mit einem fluoreszierenden Stoff markierten
Binder durchgeführt werden. Dit Anwesenheit des Liganden in der Probe bewirkt Vernetzung der Perlen.
% idurch die Bewegungsgeschwindigkeit des fluoreszierenden
Stoffs im Magnetfeld verändert wird. Eine
Zunahme der Menge des Liganden in der Probe bewirkt
einen Anstieg der Vernetzung der magnetischen Perlen, die mit dem mit dem fluoreszierenden Stoff markierten
Binder überzogen sind, wodurch sich eine entsprechende Änderung der Beziehung der Fluoreszenzänderung und
In dem Fall, in dem ein Binder und ein mit dem fluoreszierenden
Stoff markierter Bezugsllgatid ähnliche oder gleiche Diffusionskonstanten haben, der Binder auf einen
festen Träger, ζ. Β. Perlen, aufgebracht werden, wodurch
seine Diffusionskonstante verändert wird und hierdurch das gebundene Produkt von Binder und markiertem
Bezugsligandeiii mit einer Geschwindigkeit, die von derjenigen des ungebundenen Bezugsliganden, der mit der
fluoreszierenden Substanz markiert ISt1 verschieden ist,
Stoff an den Perlen selbst anstatt an der auf diese Perlen aufgebrachten Substanz vorgenommen werden kann.
Diese Substanz wird also auf dem Umweg über die Perlen mit dem fluoreszierenden Stoff markiert Ein magnetisches
Kraftfeld kann verwendet werden um die Empfindlichkeit der Bestimmung durch Erhöhen des Unterschiedes
in der Bewegungsgeschwindigkeit zwischen einem markierten Bezugsliganden und Binder in einer
Feste Stoffe, ζ. B I' -rleii. können auch verwendet werden,
um die Menge des fluoreszierenden Stoffs, der verwendet
wird, um eine bei der Bestimmung verwendete
der Zelt In dem gebleichten Bereich ergibt. Es Ist zu io bewegt wird Feste Träger können auch verwendet werbemerken.
daß die Markierung mit dem fluoreszierenden den. um die Bestlmmungsempfindüchkeit durch Vergrößerung
des I nterschiedes In den entsprechenden Dlffuslonskonsidinen
zu steigern. Beispielswelse kann ein BInde·- auf einen festen Träger aufgebracht werden, um den
15 Unierschled /wischen der Diffusionskonstante eines B'nders
und Bezugsliganden welter zu vergröbern. Als Alternative
kann, wie vorstehend beschrieben, der Bezugsllgand
auf einen festen Träger aufgebracht werden, um seine Dlffusionskonstante gegenüber dem Liganden zu
Weise ähnlich der Anwendung von elektrophoretischen 20 verändern, wobei die Bestimmung mit dem markierten
Spannungen zu steigern. Beispielsweise kann ein Binder Binder durchgeführt ■■ ird
auf magnetische Teilchen aufgebracht und ein Magnetfeld während des Bleichens angelegt werden, um die
Photobleichung des an den Binder gebundenen markierten Bezugsliganden zu verstärke», wobei das Magnetfeld 25 Substan. zu markieren, zu erhöhen. Beispielsweise kann nicht während des Wiederanstiegteils der Bestimmung in einem Fall, in dem ein Binder mit einem fluoreszleangelegt wird, um hierdurch die Wiederanstiegsge- renden Stoff markiert werden soll, eine Vielzahl von schwlndigkelt der Fluoreszenz dv-s gebundenen markier- fluoreszierenden Molekülen auf oder in eine Perle eingeten Bezugsliganden und die Unterscheidung zwischen führt und der BinJer aul diese Perle aufgebracht werden, ungebundenem und gebundenem Bez-igsliganden zu ver- 30 wodurch der Binder mit einer Vielzahl von Molekülen, stärken. Ais Alternative ist es möglich, das Magnetfeld die mit dem fluoreszierenden Stoff markiert sind, versenur während des Wiederanstiegsteils der Bestimmung hen wird Die Verwendung einer solchen Vielzahl von anzulegen, wie vorstehend im Zusammenhang mit der mit dem fluoreszierenden Stoff markierten Molekülen Einwirkung eines elektrischen Kraftfeldes beschrieben. kann die Empfindlichkeit der Bestimmung durch Sen-Durch Anwendung eines solchen Magnetfeldes ergibt 35 kung der Menge des bei der Bestimmung zu verwendensich eine weitere Dimension für die Unterscheidung der den Binders steigern
Photobleichung des an den Binder gebundenen markierten Bezugsliganden zu verstärke», wobei das Magnetfeld 25 Substan. zu markieren, zu erhöhen. Beispielsweise kann nicht während des Wiederanstiegteils der Bestimmung in einem Fall, in dem ein Binder mit einem fluoreszleangelegt wird, um hierdurch die Wiederanstiegsge- renden Stoff markiert werden soll, eine Vielzahl von schwlndigkelt der Fluoreszenz dv-s gebundenen markier- fluoreszierenden Molekülen auf oder in eine Perle eingeten Bezugsliganden und die Unterscheidung zwischen führt und der BinJer aul diese Perle aufgebracht werden, ungebundenem und gebundenem Bez-igsliganden zu ver- 30 wodurch der Binder mit einer Vielzahl von Molekülen, stärken. Ais Alternative ist es möglich, das Magnetfeld die mit dem fluoreszierenden Stoff markiert sind, versenur während des Wiederanstiegsteils der Bestimmung hen wird Die Verwendung einer solchen Vielzahl von anzulegen, wie vorstehend im Zusammenhang mit der mit dem fluoreszierenden Stoff markierten Molekülen Einwirkung eines elektrischen Kraftfeldes beschrieben. kann die Empfindlichkeit der Bestimmung durch Sen-Durch Anwendung eines solchen Magnetfeldes ergibt 35 kung der Menge des bei der Bestimmung zu verwendensich eine weitere Dimension für die Unterscheidung der den Binders steigern
Bewegung der bei der Bestimmung zu verwendenden Die Bleichung eines Bereichs des Fluids wird vorzugsverschiedenen
Substanzen. weise durch Lichteinwirkuvg bewirkt, jedoch ist es auch
Die Bewegung kann auch durch ein Graviationskraft- mögli'-h. die Bleichung in anderer Weise als durch Einfeld,
beispielsweise Absitzenlassen, oder durch Anwen- 40 wirkung eines bleichenden Lichtimpulses vorzunehmen,
dung einer Zentrifugalkraft beeinflußt werden. Beispiels- Beispielsweise könnte die Bleichung in diesem Bereich
weise kann eine der bei der Bestimmung zu verwendenden Substanzen auf einen festen Träger, z. B. Perlen, aufgebracht
und die aufgebrachte Substanz im Fluid einer
Gravitationskraft ausgesetzt werden. In einem solchen 45
Fall kann der mit dem fluoreszierenden Stoff markierte
Binder auf geeignete Perlen aufgebracht werden, und die
Anwesenheit des Liganden in einer Probe hat eine Vernetzung der Perlen zur Folge, wodurch ihre Absetige-
Gravitationskraft ausgesetzt werden. In einem solchen 45
Fall kann der mit dem fluoreszierenden Stoff markierte
Binder auf geeignete Perlen aufgebracht werden, und die
Anwesenheit des Liganden in einer Probe hat eine Vernetzung der Perlen zur Folge, wodurch ihre Absetige-
schwindigkeit erhöht wird. Die Photobleichung wird bei so Abhängigkeit vom Logarithms der Insulinkonzentraeiner
Bestimmungsmethode der vorstehend beschriebe- lion.
nen Art in einem senkrecht angeordneten Probengefäß Fig. 4 ist eine graphische Darstellung des Wiederan-
durchgeführt, wobei der photogebleichte Bereich sich in stiegs der Fluoreszenz in einer bestimmten Zeit für
einem unteren Teil des Gefäßes befindet. Mit steigender Gemische von Fluoreszein und mit Fluoreszein markier-Menge
des Liganden in der Probe steigt der Vernetzungs- 55 tem Antikörper.
grad der Perlen, die mit dem mit dem fluoreszierenden Fig. 5 ist eine graphische Darstellungder Zeit bis zur
Stoff markierten Binder umhüllt sind, wodurch ihre Sinkgeschwindigkeit erhöht und dadurch der Wiederanstieg
der Fluoreszenz im photogebleichten Bereich mit der Zeit beschleunigt wird. Die Anwendung eines Gravitationskraftfeldes
ergibt somit eine weitere Dimension zur Veränderung der Bewegung der bei der Bestimmung
verwendeten Substanzen im Fluid.
Es ist ferner zu bemerken, daß die Bestimmung mit
einer der auf einen festen Träger aufgebrachten Substan- 65 rnenhang mit einer Methode beschrieben, bei der die zen durchgeführt werden kann, ohne ein Kraftfeld zur Bewegung durch thermische Diffusion verursacht und Einwirkung zu bringen, wodurch die Bewegung durch die Bestimmung unter Verwendung eines Binders una thermische Diffusion ausgelöst wird. Beispielsweise kann eines mit einem fluoreszierenden Stoff markierten
einer der auf einen festen Träger aufgebrachten Substan- 65 rnenhang mit einer Methode beschrieben, bei der die zen durchgeführt werden kann, ohne ein Kraftfeld zur Bewegung durch thermische Diffusion verursacht und Einwirkung zu bringen, wodurch die Bewegung durch die Bestimmung unter Verwendung eines Binders una thermische Diffusion ausgelöst wird. Beispielsweise kann eines mit einem fluoreszierenden Stoff markierten
elektrisch erfolgen.
Die Erfindung wird nachstehend unter Bezugnahme auf die Abbildungen näher erläutert.
Fig. 1 zeigt ein vereinfachtes Schema eines Nachweissystems
für die Durchführung einer Bestimmung gemäß der Erfindung.
Fig. 2 und Fig 3 sind graphische Darstellungen des
Wiederanstiegs der Fluoreszenz in bestimmten Zelten in
Erreichung eines Wiederanstiegs der Fluoreszenz um 5(K für Gemische von Fluoreszein und mit Fluoreszein
markiertem Antikörper.
Fig. 6 Ist eine theoretische Standardkurve für eine Bestimmung des Wiederanstiegs der Fluoreszenz nach
Photobleichung für T4 im Vergleich zu einer T4-Radiolmmuntest-Standardkurve.
Das Bestimmungssystem wird nachstehend im Zusani-
Bezugsliganden durchgeführt wird. Bei einer solchen Bestimmung werden, kurz gesagt, der Probenligand, der
mit einem fluoreszierenden Stoff mark:erte Bezugsligand
und ein Binder in Lösung gemischt, worauf während einer genügenden Zeit und mit Licht von genügender
Intensität bestrahlt w*rd. um Bleichung (irreversible Photozersetzung)
des fluoreszierenden Markierungsstoffs im bestrahlten Bereich /u verursachen. Dieser Bereich wird
dann auf Fluoreszenz mit einem Lichtstrahl so überwacht,
daß keine weitere oder nur eine zu vemachlässi-
t'sade Bleichung stattfindet Die Überwachung oder
Abtastung in einer solchen Weise, daß keine weitere oder nur eine unwesentliche Bleichung erfolgt (nachstehend
als Nichtbleichung bezeichnet), kann mit Licht von
geiingerer Intensität und/oder Licht von ähnlicher oder gleicher Intensität während einer kürzeren Zeit so erfolgen,
daß keine Bleichung verursacht wird. Die Fluoreszenz steigt wieder mit der Zeit als Folge einer thermischen
Diffusion des fluoreszierenden Markierungssioffs in Form des mit dem fluoreszierenden Stoff markierten
Bezugsliganden, der an den Binder gebunden ist. und des mit dem fluoreszierenden Stoff markierten Bezugsliganden,
der ungebunden ist. in den Lichtstrahl. Die Geschwindigkeit des Anstiegs der Fluoreszenz ist abhängig
vom Verhältnis von ungebundenem Bezugsliganden zu gebundenem Bezugsliganden, weil der größere Komplex
des gebundenen Bezugsliganden langsamer als der ungebundene Bezugsligand diffundiert. Daher kann die
Slar'lardkurve des Wiederanstiegs der Fluoreszenz nach
einer bestimmten Zeil oder die Zeil bis zu einem bestimmten Wiederanstieg der Fluoreszenz in Abhängigkeit
von der Konzentration des Probenliganden konstruiert werden, und aus dieser Kurve kann die Konzentration
unbekannter Ligandenproben bestimmt werden.
Jn Fig. 1 ist eine Strahlungsquelle. z.B. eine Lichtquelle
zur Erregung der Wellenlänge des bei der Bestimmung verwendeten fluoreszierenden Materials in einer
solchen Weise, daß das Material fluoresziert, dargestellt.
Die Lichtquelle ist insbesondere als Laser, z. B. als Argonionenlaser dargestellt, der einen Lichtstrahl
erzeugt. Dieser Laser ist mit der Bezugsziffer 10 bezeichnet. Im Gang des Lichtstrahls aus der Lichtquelle IO ist
eine optische Baugruppe II angeordnet, die eine oder mehrere Linsen zum Bündeln des Lichts aus der Lichtquelle
10 enthalten kann, das durch den Verschluß 12
auf einen Probenhalter, z. B. eine Küvette fällt, die allgemein
mit 13 bezeichnet ist. Die Vorrichtung ist so ausgebildet,
daß die Lichtquelle nur einen begrenzten Bereich einer Probe im Probenhalter 13 bestrahlt.
Ein Photodelektor. beispielsweise eine Photovervielfacherröhre
14. wandelt die Amplitude des vom erregten fluoreszierenden Material im Probenhalter 13 emiltierten
Lichts in ein proportionales elektrisches Signal, z. B. Ströme, um. Der Ausgang der Photovervielfacherröhre
14 ist über ein Photometer 21 und einen Signalaufbereiter
fclonal rntrdltInnprl 71
^inprn Ληα1ησ-ΓΜσ11α1-ΙΙπιε/>1-Im
Betrieb werden beispielsweise sin Ligand, ein mit
einem fluoreszierenden Stoff markierter Bezugsligand und ein Binder in einem Fluid in den Probenhalter 13
gegeben. Der Mikroprozessor öffnet den Verschluß 12, um einen Lichümpuls zu emittieren, der ein nicht bleichender
Lichtimpuls (Abtastimpuls) ist, um die Menge des fluoreszierenden Stoffs im bestrahlten Bereich vor
dem Bleichen zu messen. Der Umsetzer 15 wandelt den von der Photovervielfacherröhre 14 erhaltenen Strom in
eine Zahl für den Computer um. Ein zweiter Lichtimpuls, dessen Dauer genügt, um Lichtbleichung von fluoreszierendem
Material im Testbereich zu bewirken, wird dann ausgelöst, um die Lichtemission in diesem Prüfbereich
zu verringern. Es ist nicht notwendig, die Lichtbleichung während eines Zeitraums vorzunehmen, um die
gesamte Lichtemission zu löschen. Der Lichtslr 'hl wird
auf eine geringe Größe und hohe Intensität fokussiert, um die Lichtbleichung im Testbereich zu bewirken. Vorzugsweise
wird die Bleichung mit möglichst kurzer
Bleichzeit vorgenommen, um im wesentlichen keine Diffusion während des Bleichens zu erhalten. Anschließend
wird der Verschluß in vorbestimmten Zeitabständen während einer vorbestimmten Dauer geöffnet, und die
Photovervielfacherröhre 14 mißt die aus diesem Bereich und zu diesem Zeitpunkt emittierte Lichtmenge, die in
ein proportionales elektrisches Signal umgewandelt wird. Der Umsetzer 15 wandelt diese elektrischen Impulse in
Zahlen um, die in den Computer 16 eingegeben werden. Der Computer ermSglicht eine optische Anzeige des
Wiederanstiegs der Fluoreszenz zu einer beliebigen Zeit t wie folgt:
R. = P>
- P»
P. - P»
Hierin bedeuten
R, der Wiederanstieg der Fluoreszenz zur Zeit /,
P, ein Signal, das die Lichtmenge im Testbereich zur Zeit / darstellt,
P, ein Signal, das die Lichtmenge im Testbereich unmittelbar vor der Lichtbleichung darstellt, und
P5 ein Signa!, das die Lichtmenge im Testbereich unmittelbar
nach der Lichtbleichung darstellt.
A!s Fo!°e eier thermischen Diffusion
zer verbunden, der schematisch allgemein bei 15 dargestellt
ist und die Ströme in Zahlen umwandelt, die in einen Computer eingegeben werden, der allgemein bei 16
dargestellt ist und für die Ausiesung dieser Zahlen nach Bedarf eingerichtet ist. Die PhoiovervieJfaefterröhre 14
kann als Alternative auch mit einem System für die optische
Anzeige des Ausgangs, z. B. einem Kathodenstrahloszilloskop
17 vom Speichertyp verbunden sein, um eine optische Auslesung zu erhalten. Sowohl der Analog-Dlgltal-Umsetzer
15 als auch der Verschluß 12 werden durch einen Mikroprozessor, der schematisch allgemein bei iS
angedeutet 1st, betätigt.
zunehmende Mengen des fluoreszierenden Stoffs in den Testbereich, wodurch jeder anschließende Abtastimpuls
während der Länge des Tests zur Folge hat, daß eine zunehmende Lichtmenge zur Photovervielfacherröhre 14
emittiert wird. In dieser Weise mißt die Photovervielfacherröhre 14 die Beziehung zwischen dem Wiederanstieg
der Fluoreszenz im Testbereich und der Zeit, wobei diese Beziehung von der Geschwindigkeit der thermischen
Diffusion des gesamten mit dem fluoreszierenden Stoff markierten Bezugsliganden im Fluid, d. h. sowohl des
fuihunyLiriert öle <nn*h Hac traten I_lö-i«/lart dar mil Ajam
fluoreszierenden Stoff markiert ist, abhängt Als Folge der Konkurrenz zwischen dem mit dem fluoreszierenden
Stoff markierten Liganden und dem Liganden für die begrenzten Binderstellen hat eine Steigerung der Menge
des Ltganden Im Fluid eine Abnahme der Menge des an
den Binder gebundenen, mit dem fluoreszierenden Stoff markierten Bezugsliganden zur Folge, wodurch die DIffusionsgeschwlndlgkelt
des gesamten, mit dem fluoreszierenden Stoff markierten Gezugsllganden In der Probe
erhöht wird. Dies wird als Zunahme der Geschwindigkeit des Wfederanstlegs der Fluoreszenz im Testberelch
erfaßt.
Somit kann eine Bestimmung eines Liganden ausgeführt werden, indem man ein Fluid, das eine feststehende
Bindermenge, eine feststehende Menge des mit fluoreszierendem Stoff markierten Bezugsliganden und
eine bekannte Menge des Liganden enthält, in den Probenhalter
gibt. Der Testbereich wird zunächst einem Bleichimpuls während, einer feststehenden Zeit ausgesetzt.
Hierauf folgen Abtastimpulse während einer feststehenden Zeitdauer in bestimmten Zeitabständen, wobei
die Fluoreszenz im Testbereich zu diesen Abtastzeitpunkten
durch die Photovervielfacherröhre 14 erfaßt wird. Der Computer 16 gibt dann eine optische Anzeige
der Beziehung des WiederansJiegs der Fluoreszenz im
Testbereich und der Zeit. Der Verfahrensgang wird mit verschiedenen bekannten Mengen des Liganden wiederholt,
wodurch Informationen über die Beziehung zwischen dem Wiederanstieg der Fluoreszenz und der Zeit
für jede dieser bekannten Mengen des Liganden gewonnen werden. Diese Information kann dann als ein häufig
als Standardkurve bezeichnetes Diagramm graphisch dargestellt werden, wobei diese Beziehung zweckmäßig als
Wiederanstieg der Fluoreszenz, der zu einem bestimmten Zeitpunkt erreicht ist, in Abhängigkeit von der Konzentration
des Probenliganden oder als Zeil, die erforderlich ist, um einen bestimmten Wiederanstieg der Fluoreszenz
zu erreichen, in Abhängigkeit von der Konzentration des Probenliganden aufgetragen wird.
Beispielsweise kann die in einer Serumprobe vorhandene
Menge des Liganden dann bestimmt werden, indem die Serumprobe, die in geeigneter Weise verdünnt worden
ist. um etwaige Viskositätseffekte auf die thermische Diffusion stark zu verringern, mit der feststehenden
Menge des mit dem fluoreszierenden Stoff markierten BezugsIigLiiden und der feststehenden Menge des Binders
zusammengeführt wird, worauf die Bleichung während der feststehenden Zeit und Abtastimpulse in den
feststehenden Zeiiabstänüen mit einer bestimmten Impulsdauer folgen. Der Wiederanstieg der Fluoreszenz
nach einer bestimmten Zeil oder die Zeit, die erforderlich ist. um einen bestimmten Wiederanslieg der Fluoreszenz
zu erreichen, wird dann bestimmt und mit der Stundardkurve verglichen, um die in der Serumprohe vorhandene
Menge des Liganden zu ermitteln.
Die Methode wurde vorstehend in Verbindung mit einer Ausführungstorm beschrieben, bei der ein mit
einem fluoreszierenden Stoff markierter ßezugsligand und ein nicht markierter Binder verwendet werden,
jedoch ist zu bemerken, daß diese Methode auch auf die vorstehend beschriebenen anderen Ausführungsformeti
anwendbar ist. bei denen beispielsweise eine Bestimmung so
unter Verwendung nur eines mit dem fluoreszierenden Stoff markierten Binders durchgeführt wird, oder bei
denen eine Bestimmung mil einem mit einem fluoreszierenden Stoff markierten Binder und einem Bez".gsliganden.
der so modifiziert worden ist, diß er sich im Fluid
mit einer anderen Geschwindigkeit als der Ligand bewegt, durchgeführt wird.
Die Methode wurde vorstehend in Verbindung mit der Verwendung von Abtastimpulsen anschließend an die
Lichtbleichung in vorbestimmten Zeliabsiänden
beschrieben, jedoch kann sie auch mit einem auf die Lichtblelchung folgenden einzelnen, nichlblelchenden
Impuls durchgeführt werden, der während eines vorbestimmten Zeltraums aufrecht erhalten wird, d. h. die aus
dem Teilbereich emittierte Lichtmenge würde ständig wahrend der Impulspertode überwacht, wodurch eine
Anzeige des Wiederanstiegs der Fluoreszenz während dieses Zeltraums erhallen würde. Es ist jedoch zu bemerken,
daß die Anwendung mehrerer Abtastimpulse in vorbestimmten Zeitabständen bevorzugt wird, da die
Genauigkeit der Bestimmung hierdurch gesteigert wird.
Es ist auch möglich, die Abnahme der Fluoreszenz im Testbereich während der Lichtbleichung anzuzeigen. Die
Lichibleichung kann dabei durch einen einzelnen Lichtbleichimpuls
oder durch Verwendung mehrerer Lichtbleichimpulse in vorbestimmten Zeilabständen bewirkt
werden.
Die Testmethode wurde vorstehend im Zusammenhang mit der Verwendung eines einzelnen Lichtstrahls
beschrieben, jedoch können auch mehrere sicher Lichtstrahlen
zur Anwendung kommen. Ferner wurde die Methode im Zusammenhang mit einem einzelnen Testbereich
im Fluid beschrieben, jedoch kann die Methode auch mil mehreren Testbereichen in diesem Fluid durchgeführt
werden. Beispielsweise kann eine P^.'je mit
einem Gitter bedeckt und die gesamte Probe der Gleichung und den Tastimpulsen in der vorstehend beschriebenen
Weise ausgesetzt werden, wobei das Gitter verhindert,
daß das Licht Teile der Probe erreicht, wodurch eine Vielzahl von Testbereichen in der Probe ausgebildet
wird. Beispielsweise können etwa 50".. der Probe der Strahlung ausgesetzt und etwa 50nc der Probe gegen die
Strahlung geschützt werden.
Als weitere Modifikation können die Bieichung und
die Überwachung der Fluoreszenz in verschiedenen Bereichen vorgenommen werden. Beispielsweise können
parallele benachbarte Lichtstrahlen verwendet werden, um das Bleichen und das Abtasten zu bewirken. In diesem
Fall würden die abtastenden Lichtimpulse eine Abnahme der Fluoreszenz im Abtastbereich messen, die
die Folge einer Bewegung von gebleichtem Material aus dem der Bleichung ausgesetzten Material in den Abtastbereich
ist.
Als weitere Modifikation kann der Bereich der Probe,
der der bleichenden Strahlung ausgesetzt wird, eine andere Größe haben als der Bereich der Probe, der der
Taslstrahlung unterworfen wird. Beispielsweise kann der Laserstrahl zum Bleichen durch Verwendung geeigneter
Optiken einen Durchmesser (D) haben, der größer ist als der Durchmesser (d) des Tastlaserstrahls, wodurch die
Wiederanstiegszeit länger würde, da das markierte Material eine größere Strecke (D-d) zurücklegen muß, um
dem Tasllirhilmpuls ausgesetzt zu werden. Je größer der
Abstand (ü-d), um so besser ist die Unterscheidung zwischen langsamer und schneller Bewegung, wobei einem
solchen Wen praktische Grenzen gesetzt sind (Energie des Lasers. Heizeffekte usw.).
Zwar wird oei der vorstehend beschriebenen Ausführungsfc-m
die Flüssigkeilsprobe in einem Probenhalter, z. B. einer Küvette, verwendet, jedoch kann die Bestimmung
auch in einem resten Medium, z. B. einem Gel. durchgeführt werden. Beispielsweise kann ein Gel. ι. B.
ein Polyacrylamidgel oder Agar, mit einem engen Probenloch
von beispielsweise 100 μηι Durchmesser versehen
und eine geeignete Probe darin so angeordnet werden, daß ein Teil der Probe sich in das Gel bewegt.
Bleich- und Tastimpulse können in der vorstehend beschriebenen Weise durch Verwendung eines Laserstrahls,
der so gebündelt Ist, daß er durch den Probenbehälter fällt, angewendet werden, wobei Material sich vom
Gel in das Probenloch bewegt. Als Alternative kann der Laserstrahl auf einen Bereich des Gels anstatt auf das
Probenloch gebündelt werden, wobei die Bestimmung nach den vorstehend beschriebenen Methoden durchgeführt
wird mit dem Unterschied, daß die verschiedenen Materlallen sich In einem Gel und nicht in einer Flüssig-
Jceit bewegen. Eis leuchtet ein, daß bei diesen Ausrührungsformen
als Testfluid Feststoffe oder Gele verwendet
werden müssen, in denen die Materialien sich bewegen können, und wenn das Abtasten und Bleichen in einem
Bereich des Gels vorgenommen wird, muß das Gel lichtdurchlässig
sein, damit das Bleichen und Abtasten vorgenommen werden können.
Ferner kann die Ausführungsform natürlich auch
durch Anlegen eines geeigneten Kraftfeldes in der vorstehend beschriebenen Weise oder durch Aufbringen
einer oder mehrerer Substanzen auf einen festen Träger modifiziert werden.
Die Bestimmung kann sehr schnell durchgeführt werden,
da die Änderung der Bewegung über sehr kurze Strecken beispielsweise in der Größenordnung von 1 bis
500 pirn erfaßt werden kann. Dies wird durch Bündeln des Lichtstrahls auf einen oder mehrere enge Bereiche
erreicht.
Die F.rfindung wird durch die folgenden Beispiele weiter
erläutert.
Herstellung von mit fluoreszierendem Stoff -
markiertem Insulin
(mit fluoreszierendem Stoff markierter Bezugsligand)
(mit fluoreszierendem Stoff markierter Bezugsligand)
1 mg riuoreszeinisothiocyanat (FITC) (Sigma Chemical
Co.) wurde unter Rühren zu einer Suspension von 100 mg Rinderinsulin in 30 ml phosphatgepufferter
Kochsalzlösung (pBS, pH 7,4) gegeben. Die Suspension wurde auf 4° C gekühlt und die Reaktion 1.6 Stunden
fortgesetzt. Nach Zentrifugierung wurde der Überstand am Ionenaustauscherharz »Sepriadex G-25« Chromatographien
und mit phosphatgepuffcrLr Kochsalzlösung (PBS) eluiert. Nicht umgesetztes FITC blieb an der Säule,
und das fluoreszierende Elutionsmittei wurde aufgefangen. Während der Abkühlung bildete sich eine Fällung,
aber der Überstand zeigte eine Fluoreszenz-Intensität, die mit 10~* Mol Fluoreszein vergleichbar war. Diese Vorratslösung
wurde dann für die immunochemische Reaktion verwendet.
Bestimmung der kompetitiven Bindung
0,2 ml der im Verhältnis von 1 : 250 verdünnten FITC-Insulinvorratslösung
(markierter Bezugsligand) und 0,2 ml der entsprechenden unmarkierten Insulinverdünnungen
(Ligand) wurden gemischt. Ein aliquoter Teil von Meerschweinchen-anii-RiriderinsuIin (Binder) (Cappe!
Laboratories) wurde jeder Probe zugesetzt Die Lösungen wurden verwirbell und dann 2 bis 4 Stunden
bei 6° C inkubiert. 10 Minuten vor der Messung überließ man jede Probe der Erwärmung auf Raumtemperatur.
Die Fluoreszenz wurde in einer 1 cm2-QuarzkQvette
Wiederanstieg der Fluoreszenz nach bestimmten
Zeiten in %
| (Insulin) | 0,50 Sek. | 1,00 Sek. | 2,00 Sek. |
| Mol/l | |||
| 2.7 X 10-6 | 0.231 | 0.313 | 0.482 |
| 2.0 X 10-6 | 0.183 | 0.281 | 0.414 |
| 1.0 X ΙΟ"6 | 0.172 | 0.277 | 0.39Γ |
| 8 X ΙΟ"7 | 0.170 | 0.263 | 0.388 |
| 6 X ΙΟ-7 | 0.179 | 0.244 | 0.367 |
| 4 X ΙΟ-7 | 0.160 | 0.212 | 0.322 |
| 2 X ΙΟ-7 | 0.148 | 0.230 | 0.360 |
| 1 X ΙΟ-7 | 0.134 | 0.195 | 0.351 |
| 5 X ΙΟ-8 | 0.148 | 0.198 | 0.301 |
| 5 XI0-9 | 0.137 | 0.187 | 0.3Gl |
| Beispiel | 2 |
Die Bestimmung gemäß der Erfindung wird durch den Fall veranschaulicht, in dem ein Antigen A (Ligand), das
mit Fluoreszein markierte Antigen FA (Bezugsligand) und der Antikörper Ab (Binder) gemischt werden, wobei
die immunochemische Reaktion wie folgt dargestellt werden kann:
(I) Ab+FA
(2) Ab + A
(2) Ab + A
AbFA AbA
In diesem Fall wird angenommen, daß die Thermodiffusionskonstante des Anlikörpermoleküls, da es größer
ist, um eine oder zwei Größenordnungen niedriger ist als die des Antigens und daß die Rückkehr von fluoreszierenden
Molekülen in den lichtgebleichten Bereich durch Thermodiffusionsbewegung erfolgt. Beim Gleichgewicht
enthält die erhaltene Lösung eine Gleichgewichtskonzentration von AbA, AbFA. A und FA. Tie Fraktion der
FA-Moleküle, die »frei« sind, und die Fraktion der FA-Moleküle,
die an Antikörper (AbFA) gebunden sind, hängt gemäß der Theorie des elementaren chemischen
Gleichgewichts (elementary chemical equilibrium theory) eindeutig von den relativen Mengen von Ab, A und FA
ab. Die Menge von A in der unbekannten Lösung steht somit quantitativ in Beziehung zu den Konzentrationen
von FA und Ab im ursprünglichen Gemisch, und unter vorgeschriebenen Bedingungen genügt eine Bestimmung
des Verhältnisses dieser Konzentrationen für die Bestimmung von A In der unbekannten Lösung. Als Alternative
kann die Messung einer beliebigen Eigenschaft des Systems, die quantitativ und monoton zum Verhältnis
dieser Konzentrationen in Beziehung steht, als Grundlage für eine Bestimmung von A in der unbekannten
gemessen. Ein Bandfilter ließ nur Emissionswellenlängen
von mehr als 525 nm durch. Der prozentuale Wiederanstieg der Fluoreszenz nach der Lichtbleichung (0,13 Sek.-Impuls)
wurde nach Verzögerungszeiten von 0.50, 1,00 und 2,00 Sek. gemessen.
Die Ergebnisse sind in der folgenden Tabelle zusammengestellt. Standardkurven des Wiederanstiegs der
Fluoreszenz nach bestimmten Zeiten in Abhängigkeit vom Logarithmus der Insulinkonzentration (Ligand) sind
in. FIg. 2 und Fig. 3 dargestellt. Alle diese Kurven können verwendet werden, um unbekannte Insulinkonzentretionen
In einer Probe zu messen.
fM(t) sei die normalisierte Wiederanstiegsfunktion
nach der Lichtbleichung für FA, und ^4(O sei die normalisierte
Funktion des Wiederanstiegs nach der Lichtbleichung für AbFA, beispielsv. eise
f(t) =
L-U
(3)
^mIn
Hierin Ist L die Fluoreszenz zum Zeitpunkt /, £„,„,· die
Fluoreszenz unmittelbar vor der LSchtbleichung und /.,„,„
die Fluoreszenz unmittelbar nach der Lichtbleichung.
Wenn nun die durchschnittliche Lebensdauer der »gebundenen« und »freien« Moleküle im Vergleich zu
den Zeiten der Lichtbleichung und des Wiederanstiegs der Fluoreszenz lang ist, lautet die Wiederanstlegskurve
im Bestimmungssemisch
fit) = X ff,, (t) + U-X)W* it) <4>
worin X die Fraktion der auf diü freien Moleküle zurückzuführenden
Fluc-eszenz vor der Bieichung ist.
Gemäß Gleichung (4) ist es möglich, den Wert von X durch Messen des prozentualen Wiederanstiegs der Fluoreszenz
nach einer bestimmten Zeit, z. B. < (1 Sek.) und aus vorher gemessenen Werten von ΐΓΛ Π Sek.), d. h.
dem Wiederanstieg der Fluoreszenz eine? ProDt. <s- nur
»freies« markiertes Antigen enthält, a;:d i»hfA ' Sek.),
d. h. dem Wiederanstieg der Fluoreszenz ejrr~· r >be, die
nur »gebundenes« markiertes Anifg-?. -lühält, zu
bestimmen.
Die Gültigkeit des linearen '„bereinanderlegens von
Wiederanstiegskurven (Gleichung'; wurde experimenteil
nachgewiesen, indem zwei Lösungen in verschiedenen Mengenverhältnissen gemischt wurden, wobei eine
Lösung 10~8 Mol Natriumfluoreszein in Phosphati^iffer
enthielt und FA darstellte, und die andere mit Fluoreszein markierte Antikörper (FITC-IgG>
in Phosphatpuffer gelöst enthielt und AbFA darstellte (die zweite Lösung haue die doppelte Intensität der Fluoreszenz wie die erste
Lösung). Neun verschiedene Gemische dieser Lösungen wurden hergestellt und die Wiederanstiegskurven nach
der Lichtbieichung bestimmt (488 nm-Laserquelle, 60 mm-Fokussierungsiinse, Bleichimpuls 140 Millisekunden,
Abtastinipuls 1,4 Millisekunden. Der prozentuale Wiederanstieg bei t=l Sek. wurde gemessen). Die
Ergebnisse sind in Fig. 4 dargestellt. Bei einem gegebenen prozentualen Wiederanstieg f (1 Sek.) kann X
bestimmt und quantitativ mit der Zusammensetzung der Lösung in Beziehung gebracht weiden. Ebenso bildet
eine in Fig. 5 gezeigte graphische Darstellung der für einen 501WgCn Wiederanstieg erforderlichen Zeit die
Grundlage einer quantitativen Bestimmung. Eine Bestimmung der kompetitiven Bindung wird
dann wie folgt durchgefütvt: Eine Lösung, die A in unbekannter Konzentration enthält, wird mit Lösungen
gemischt, die gegen A (und FA) gerichtete geeignete Konzentrationen von FA und Ab enthalten. Die Gleichung
(4) gilt noch, und X kann aus einer Kurve, wie sie in Fig. 4 oder 5 dargestellt ist, bestimmt werden. Im aligemeinen
muß eine empirische Bestimmungskurve, die X und die Konzentration von A in Beziehung bringt,
ermittelt werden, so daß die Konzentration von A in der unbekannten Lösung zum beobachteten Wert von X in
Beziehung gebracht werden kann. Im einfachen Fall, in dem X dem Bruchteil der FA-Moleküle, die frei sind,
gleich ist und 1 -X die Fraktion der FA-Moleküle ist, die als AbFA gebunden sind, ist die Konzentralion A des
Antigens in der Lösung
worin F4 die GesamtkonzentraUon von Antikörperrezeptorstellen
ist, gemessen durch die maximale Konzentration von markiertem Antigen FA, das gsh'.'nden werden
kann, und K die Dissoziationskonstante for FA (das markierte Antigen) und c„ die Gesamtkonzentration von
markiertem Antigen FA ist.
Fig. 6 veranschaulicht die Ergebnisse einer theoretischen Stand?rdkurve für die Bestimmung des Wiederanstiegs
der Fluoreszenz nach der Lichtbleichung für T4 im
Vergleich zu einer typischen Standardkurve für RIA. (Bezüglich der RIA-Kurve wird auf das Nachschlagebuch
»T4 Solid Phase Radioimmunoassay Kit (I125)«, Becton,
Dickinson and Company, März 1978, verwiesen.) Der theoretischen Kurve lagen die folgenden Annahmen
zu Grunde: (a) K=IO-10 lZMol; c =5 χ 10"8 MoIZl;
F6 = 2,5 χ 10"8 MoIZi; Thermodiffusionskonstante für
gebundenes T< = 4 χ 10~7 cmVSek. und für freies
T4 = 4x I0"6 cmVSek.; gleiche Fluoreszenzeigenschaften
von FT4 und AbFT4; Laserstrahlradius 40 μτη; Bleichparameter
entsprechend 7096 Bleichung.
Hierzu 5 Blatt Zeichnungen
Claims (16)
1. Methode zur Bestimmung eines Liganden, bei dem man einen Liganden in einem Fluid mit
a) einem mit einer fluoreszierenden Substanz markierten Binder oder
b) e'nem Binder und einem mit einer fluoreszierenden
Substanz markierten Bezugsüganden in Berührung bringt,
dadurch gekennzeichnet, daß man wenigstens einen Bereich des Fluids bleicht und die zeitliche
Änderung der Fluoreszenz in wenigstens einem Bereich des Fluids mißt.
2. Methode nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man als Fluid eine Flüssigkeit verwendet.
3. Methode nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, laß man die Messung In einem
Bereich innerhalb des gebleichten Bereichs vornimmt.
4. Methode nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß man das Bleichen und Messen in
benachbarten Bereichen vornimmt.
5. Methode nach Anspruch 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, daß man eine Bewegung der Reaktanten
im genannten Bereich durch Einwirkung eines Kraftfeldes bewirkt
6. Methode nach Anspruch 1 bis 5, dadurch gekennzeichnet daß der Binder oder der Bezugsligand
so modifiziert sind, daß sie sich im Fluid mit einer anderen Geschwindigkeit als der Lieand bewegen.
7. Methode nach Ansprach 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß man den Li^axden mit einem auf
einen festen Träger aufgebrachten markierten Binder in Berührung bringt.
8. Methode nach Anspruch 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß man den Liganden mit einem auf
einen festen Träger aufgebrachten Binder und einem markierten Bezugsliganden in Berührung bringt.
9. Methode nach Anspruch 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß man den Liganden mit einem
markierten Binder und einem auf einen festen Träger aufgebrachten Bezugsiiganden in Berührung bring!.
10. Methode nach Anspruch 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß man die Bestimmung durchführt,
während ein elektrisches Kraftfeld während des Bleichens und/oder Messens angelegt ist.
11. Methode nach Anspruch 1 bis 6 und 10,
dadurch gekennzeichnet, daß man den Liganden mit einem markierten und auf ein magnetisches Material
aufgebrachten Binder in Berührung bringt.
12. Methode nach Anspruch 1 bis ό und 10,
dadurch gekennzeichnet, daß man den Liganden mit einem auf ein magneiisuhcs Iviaitiiai aufgebrachter· —
Binder und einem markierten Bezugsliganden in Berührung bringt.
13. Methode nach Anspruch 1 bis 6 und 10, dadurch gekennzeichnet, daß man den Liganden mit
einem markierten Binder und einem auf ein magnetlsches
Material aufgebrachten Bezugsiiganden in Berührung bringt.
14. Methode nach Anspruch 1 bis 13, dadurch
gekennzeichnet, daß man das Bleichen mit einem gebündelten Lichtstrahl In einem schmalen Bereich
vornimmt.
15. Methode nach Anspruch 1 bis 13, dadurch gekennzeichnet, daß man als bleichenden Lichtimpuls
und Abtastlichtimpuls einen fokussierten Laserstrahl anwendet.
16. Methode nach Anspruch 1 bis 15, dadurch gekennzeichnet, daß man nach dem Bleichen wenigstens
einen Bereich Innerhalb des gebleichten Bereichs in zeitlichen Abständen abgegebenen nichtblelchenden
Abtastllchtimpuisen aussetzt und die Emission
von Fluoreszenzlicht während des Abgebens der AbtastlichHmpulse erfaßt und auf diese Weise die
zeltliche Änderung der Fluorezenz innerhalb des genannten Bereichs mißt.
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US05/946,065 US4222744A (en) | 1978-09-27 | 1978-09-27 | Assay for ligands |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE2938646A1 DE2938646A1 (de) | 1980-04-03 |
| DE2938646C2 true DE2938646C2 (de) | 1984-02-23 |
Family
ID=25483905
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| DE2938646A Expired DE2938646C2 (de) | 1978-09-27 | 1979-09-25 | Methode zur Bestimmung eines Liganden |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US4222744A (de) |
| JP (1) | JPS5546189A (de) |
| DE (1) | DE2938646C2 (de) |
| GB (1) | GB2034886B (de) |
Families Citing this family (34)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4328045A (en) * | 1978-12-26 | 1982-05-04 | United Technologies Corporation | Heat treated single crystal articles and process |
| NL8000173A (nl) * | 1980-01-11 | 1981-08-03 | Akzo Nv | Toepassing van in water dispergeerbare, hydrofobe kleurstoffen als label in immunochemische testen. |
| DE3048884A1 (de) * | 1980-12-23 | 1982-07-15 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Verfahren zur enzymimmunobestimmung in heterogener phase |
| AU555213B2 (en) * | 1981-02-17 | 1986-09-18 | Abbott Laboratories | N-substituted-amido-fluoresein derivatives |
| DE3380125D1 (en) * | 1982-03-22 | 1989-08-03 | Amersham Int Plc | Assay for the free portion of substances in biological fluids |
| USRE34405E (en) * | 1983-08-01 | 1993-10-12 | Abbott Laboratories | Determination of analytes in particle-containing medium |
| US5215883A (en) * | 1990-07-09 | 1993-06-01 | The Research Foundation | Electrophoretic mobility of fluorophore labeled particles in gels by fluorophore movement after photobleaching |
| US5241179A (en) * | 1991-09-09 | 1993-08-31 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy | Thermoluminescence sensor for the remote detection of chemical agents and their simulants |
| US5807758A (en) * | 1995-07-21 | 1998-09-15 | Lee; Gil U. | Chemical and biological sensor using an ultra-sensitive force transducer |
| WO1997017610A1 (en) * | 1995-11-08 | 1997-05-15 | Pharmaceutical Discovery Corporation | Method for fluorescent labeling of antibody |
| EP2311934B1 (de) | 2001-09-06 | 2013-06-05 | Rapid Micro Biosystems, Inc. | Schnellnachweis replizierender Zellen |
| AU2003278832A1 (en) * | 2002-09-13 | 2004-04-30 | Carnegie Mellon University | Optical biosensors and methods of use thereof |
| US20040228765A1 (en) * | 2003-05-14 | 2004-11-18 | Witty Thomas R. | Point of care diagnostic platform |
| US20040228766A1 (en) * | 2003-05-14 | 2004-11-18 | Witty Thomas R. | Point of care diagnostic platform |
| MX2007004800A (es) * | 2004-10-22 | 2007-12-11 | Core Lab L P | Metodo para determinar la concentracion de trazador en fluidos de produccion de petroleo y gas. |
| CN101528912B (zh) * | 2005-09-26 | 2014-08-27 | 快速微型生物系统公司 | 包含生长培养基的盒 |
| US8664364B2 (en) * | 2007-01-24 | 2014-03-04 | Carnegie Mellon University | Optical biosensors |
| US8426153B2 (en) | 2007-12-03 | 2013-04-23 | Carnegie Mellon University | Linked peptides fluorogenic biosensors |
| CN102224260B (zh) | 2008-09-24 | 2015-11-25 | 施特劳斯控股公司 | 用于检测分析物的试剂盒和装置 |
| US20110143378A1 (en) * | 2009-11-12 | 2011-06-16 | CyVek LLC. | Microfluidic method and apparatus for high performance biological assays |
| US9759718B2 (en) | 2009-11-23 | 2017-09-12 | Cyvek, Inc. | PDMS membrane-confined nucleic acid and antibody/antigen-functionalized microlength tube capture elements, and systems employing them, and methods of their use |
| JP5701894B2 (ja) | 2009-11-23 | 2015-04-15 | サイヴェク・インコーポレイテッド | アッセイを行う方法及び装置 |
| US9500645B2 (en) | 2009-11-23 | 2016-11-22 | Cyvek, Inc. | Micro-tube particles for microfluidic assays and methods of manufacture |
| US9700889B2 (en) | 2009-11-23 | 2017-07-11 | Cyvek, Inc. | Methods and systems for manufacture of microarray assay systems, conducting microfluidic assays, and monitoring and scanning to obtain microfluidic assay results |
| US10065403B2 (en) | 2009-11-23 | 2018-09-04 | Cyvek, Inc. | Microfluidic assay assemblies and methods of manufacture |
| US10022696B2 (en) | 2009-11-23 | 2018-07-17 | Cyvek, Inc. | Microfluidic assay systems employing micro-particles and methods of manufacture |
| US9855735B2 (en) | 2009-11-23 | 2018-01-02 | Cyvek, Inc. | Portable microfluidic assay devices and methods of manufacture and use |
| CN106552682B (zh) | 2011-03-22 | 2020-06-19 | 西维克公司 | 微流体装置以及制造方法和用途 |
| MX368123B (es) | 2011-11-07 | 2019-09-19 | Rapid Micro Biosystems Inc | Cassette para pruebas de esterilidad. |
| KR102114734B1 (ko) | 2012-03-08 | 2020-05-25 | 싸이벡, 아이엔씨 | 미세유체 분석 장치용 마이크로튜브 입자 및 제조방법 |
| IN2014DN08564A (de) | 2012-04-16 | 2015-05-22 | Rapid Micro Biosystems Inc | |
| US10228367B2 (en) | 2015-12-01 | 2019-03-12 | ProteinSimple | Segmented multi-use automated assay cartridge |
| CA3097748A1 (en) | 2018-04-19 | 2019-10-24 | First Light Biosciences, Inc. | Detection of targets |
| WO2020073015A1 (en) | 2018-10-04 | 2020-04-09 | First Light Diagnostics, Inc. | Analysis instrument |
Family Cites Families (13)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US3966897A (en) * | 1973-04-02 | 1976-06-29 | Marine Colloids, Inc. | Medium for use in bioassay and method of using same |
| DE2409273A1 (de) * | 1974-02-27 | 1975-09-04 | Behringwerke Ag | Verfahren und vorrichtung zum messen von antigen-antikoerper-reaktionen |
| US4108972A (en) * | 1974-03-15 | 1978-08-22 | Dreyer William J | Immunological reagent employing radioactive and other tracers |
| US3939350A (en) * | 1974-04-29 | 1976-02-17 | Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Fluorescent immunoassay employing total reflection for activation |
| IT1055851B (it) * | 1974-08-30 | 1982-01-11 | Behringwerke Ag | Particelle indicatirci per diagnosi in vitro |
| US4058732A (en) * | 1975-06-30 | 1977-11-15 | Analytical Radiation Corporation | Method and apparatus for improved analytical fluorescent spectroscopy |
| US4036946A (en) * | 1975-10-20 | 1977-07-19 | Marcos Kleinerman | Immunofluorometric method for measuring minute quantities of antigens, antibodies and other substances |
| US3984533A (en) * | 1975-11-13 | 1976-10-05 | General Electric Company | Electrophoretic method of detecting antigen-antibody reaction |
| US4018530A (en) * | 1975-11-18 | 1977-04-19 | Block Engineering, Inc. | Fluorescence spectrometry employing excitation of bleaching intensity |
| US4011044A (en) * | 1976-07-06 | 1977-03-08 | General Electric Company | Use of laser speckle patterns for measurement of electrophoretic mobilities |
| JPS5399319A (en) * | 1977-02-09 | 1978-08-30 | Hidematsu Hirai | Novel qualitative and quantitative detecting method and detecting body for antgenic substance |
| US4100416A (en) * | 1977-03-02 | 1978-07-11 | Block Engineering, Inc. | Serum fluorescence suppression |
| US4102990A (en) * | 1977-12-05 | 1978-07-25 | General Electric Company | Electrophoretic assay for antigen-antibody reaction based on particle-particle coupling |
-
1978
- 1978-09-27 US US05/946,065 patent/US4222744A/en not_active Expired - Lifetime
-
1979
- 1979-07-04 JP JP8486679A patent/JPS5546189A/ja active Granted
- 1979-09-12 GB GB7931609A patent/GB2034886B/en not_active Expired
- 1979-09-25 DE DE2938646A patent/DE2938646C2/de not_active Expired
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| GB2034886A (en) | 1980-06-11 |
| JPS5546189A (en) | 1980-03-31 |
| JPS6146783B2 (de) | 1986-10-16 |
| DE2938646A1 (de) | 1980-04-03 |
| US4222744A (en) | 1980-09-16 |
| GB2034886B (en) | 1983-04-13 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| DE2938646C2 (de) | Methode zur Bestimmung eines Liganden | |
| DE2858792C2 (de) | ||
| DE3872621T2 (de) | Nachweis von umgebenden konzentrationen mehrerer analyten. | |
| DE2952498C2 (de) | Spezifisches Bindungsuntersuchungsverfahren und Reagenzmittel zur Durchführung des Verfahrens | |
| DE3852117T2 (de) | Immunoassay mit Verwendung von nichtmetallischen, kolloidalen Teilchen. | |
| DE69323459T2 (de) | Immunoassay mittels Ramanspektroskopie unter verstärkender Oberflächenmitwirkung (SERS) | |
| DE2628158A1 (de) | Verfahren, vorrichtung und zusammensetzungen zur analytischen fluoreszenzspektroskopie und immunofluorometrischen untersuchung | |
| DE69125992T2 (de) | Verfahren und Kit für Immunoassay | |
| DE3486027T2 (de) | Testvorrichtung und verfahren. | |
| DE3587793T2 (de) | Lumineszierende metallchelatmarker und mittel zu deren nachweis. | |
| DE2736805C2 (de) | Verfahren zur Bestimmung von Antigenen und Antikörpern | |
| DE3650483T2 (de) | Fluoreszenz durch Laseranregung zur Bestimmung einer elektrokinetischen Trennung | |
| DE3586983T2 (de) | Verfahren und vorrichtung fuer immunotest. | |
| DE2523209A1 (de) | Elektrooptische, substanzschonende erfassung von nicht zellgebundenen immunostoffen | |
| DE69024955T3 (de) | Ermittlung und quantifizierung mehrerer analyten unter verwendung von markierungstechniken | |
| DE2905435C2 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Bestimmung von Antigenen und Antikörpern | |
| DE2912089A1 (de) | System zur durchfuehrung radioimmunologischer untersuchungen | |
| DE2618386A1 (de) | Verfahren zum nachweis biologischer teilchen | |
| DE2503627A1 (de) | Verfahren zum nachweis von antigenen oder antikoerpern | |
| EP0046563A1 (de) | Verfahren zur Durchführung analytischer Bestimmungen mittels der Chemilumineszenzmethode und Anwendung des Verfahrens für Immunoassays | |
| DE2557419C2 (de) | Mit einer Strahlung aussendenden Markierungssubstanz markiertes Reagens für analytische Zwecke | |
| DE4216696C2 (de) | Verfahren und Vorrichtung zur Empfindlichkeits- und Selektivitätssteigerung bei Immuno-Assays, Molekül-Rezeptor-, DNA-komplementär-DNA- und Gast-Wirtsmolekül-Wechselwirkungs-Assays | |
| DE2741862C2 (de) | ||
| DE3009154A1 (de) | Verbesserung der auf spezifischer bindung basierenden bestimmungsmethoden | |
| DE69310667T2 (de) | Immunoassayverfahren unter Anwendung photothermischer Strahlablenkungsspektroskopie |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| OAP | Request for examination filed | ||
| OD | Request for examination | ||
| 8125 | Change of the main classification |
Ipc: G01N 33/54 |
|
| D2 | Grant after examination | ||
| 8364 | No opposition during term of opposition | ||
| 8339 | Ceased/non-payment of the annual fee |