DE60202036T2 - Entomopathogenenischer Pilz zur Verwendung als Insektizide - Google Patents

Entomopathogenenischer Pilz zur Verwendung als Insektizide Download PDF

Info

Publication number
DE60202036T2
DE60202036T2 DE60202036T DE60202036T DE60202036T2 DE 60202036 T2 DE60202036 T2 DE 60202036T2 DE 60202036 T DE60202036 T DE 60202036T DE 60202036 T DE60202036 T DE 60202036T DE 60202036 T2 DE60202036 T2 DE 60202036T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
ferm
paecilomyces tenuipes
pest
insect
paecilomyces
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
DE60202036T
Other languages
English (en)
Other versions
DE60202036D1 (de
Inventor
Susumu Koga-shi Shimizu
Shinji Takarazuka-shi Isayama
Eiji Nishinomiya-shi Nitta
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sumitomo Chemical Co Ltd
Original Assignee
Sumitomo Chemical Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sumitomo Chemical Co Ltd filed Critical Sumitomo Chemical Co Ltd
Application granted granted Critical
Publication of DE60202036D1 publication Critical patent/DE60202036D1/de
Publication of DE60202036T2 publication Critical patent/DE60202036T2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/145—Fungi isolates
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01N—PRESERVATION OF BODIES OF HUMANS OR ANIMALS OR PLANTS OR PARTS THEREOF; BIOCIDES, e.g. AS DISINFECTANTS, AS PESTICIDES OR AS HERBICIDES; PEST REPELLANTS OR ATTRACTANTS; PLANT GROWTH REGULATORS
    • A01N63/00—Biocides, pest repellants or attractants, or plant growth regulators containing microorganisms, viruses, microbial fungi, animals or substances produced by, or obtained from, microorganisms, viruses, microbial fungi or animals, e.g. enzymes or fermentates
    • A01N63/30—Microbial fungi; Substances produced thereby or obtained therefrom
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12R—INDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00—Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645—Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/79—Paecilomyces
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215—Microorganisms
    • Y10S435/911—Microorganisms using fungi

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Dentistry (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Pest Control & Pesticides (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Agronomy & Crop Science (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

  • Fachgebiet
  • Die vorliegende Erfindung betrifft einen Pilz, der entomopathogenetisch insektizid auf Schadinsekten wirkt und zur Gattung Paecilomyces gehört.
  • Stand der Technik
  • Auf dem Fachgebiet der insektiziden Mittel wurden insektizide Mittel entwickelt, in denen synthetische insektizide Verbindungen verwendet werden, und insektizide Mittel, deren Ursprung ein Mikroorganismus ist.
  • Vordem wurden mehrere Recherchen nach einem entomopathogenetischen Pilz durchgeführt, wobei enttäuschenderweise ein entomopathogenetischer filamentöser Pilz gefunden wurde, der eine unzureichende insektizide Wirkung aufwies. Typischerweise stellten solche bekannten entomopathogenen Pilze ein enges insektizides Spektrum bereit.
  • Zusammenfassung der Erfindung
  • Die vorliegende Erfindung stellt eine biologisch reine Kultur von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 bereit, sowie insektizide Mittel, Verfahren und Verwendungen. Die insektiziden Mittel umfassen eine insektizid wirksame Menge von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861. Die Verfahren umfassen das Aufbringen von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 auf mindestens eine Stelle ausgewählt aus einem Schadinsekt, einem Lebensraum des Schadinsekts und einer für das Schadinsekt anfälligen Pflanze. Die Verwendungen sind Verwendungen von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 zur Bekämpfung eines Schadinsekts.
  • Fukatsu, T. et al., Journal of Invertebrate Pathology (1997) 70: 203–208, offenbaren die Isolierung eines entomogenen Pilzes Paecilomyces tenuipes, die Beimpfung von Wirtsinsekten mit diesem Pilz und dessen molekulare Phylogenese.
  • Die Patentanmeldung WO 90 10388 A (UNIV FLORIDA), veröffentlicht am 20. September 1990, offenbart die Verwendung von Paecilomyces fumosoroseus als Biopestizid zur Bekämpfung von Weißen Fliegen und anderen Schädlingen.
  • Sung, J.-M. et al., Korean Journal of Mycology (1995) 23: 92–104, offenbart, dass Paecilomyces tenuipes, ein Imperfektstadium der Gattung Cordyceps, ein multiinfektiöser Pilz ist, der alle Stadien aller Gruppen von Insekten befällt.
  • Detaillierte Beschreibung der Erfindung
  • Zunächst sind nachstehend die taxonomischen Eigenschaften von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 beschrieben.
  • (1) Wachstumsrate (25°C, 7 Tage)
    • Koloniedurchmesser: 25–30 mm (Platte mit 2% Maltoseextrakt-Agarmedium), 25–30 mm (Platte mit Hafermehl-Agarmedium)
  • (2) Farbe der Vorderoberfläche der Kolonie
    • weiß (Platte mit 2% Maltoseextrakt-Agarmedium), weiß (Platte mit Hafermehl-Agarmedium)
  • (3) Farbe der Unteroberfläche der Kolonie
    • weiß (Platte mit 2% Maltoseextrakt-Agarmedium), weiß bis leicht gelb (Platte mit Hafermehl-Agarmedium)
  • (4) Struktur der Vorderoberfläche der Kolonie
    • wollartig bis daunenartig
  • (5) Conidiophor
    • Verzweigung mit glatter Oberfläche und unstrukturierter Wirtel
  • (6) Conidium
    • elliptische bis kreisförmige Verkettung mit glatter Oberfläche, etwa 4 μm × etwa 2 μm
  • (7) Chlamydosporium
    • keines (25°C, 9-Tage-Periode)
  • (8) Nucleotidsequenz der DNA, welche die nucleäre 5,8S ribosomale RNA codiert und Nucleotidsequenz der DNA, welche die nucleäre 28S ribosomale RNA codiert
    • die Nucleotidsequenz der DNA, welche die nucleäre 5,8S ribosomale RNA codiert, ist in SEQ ID Nr: 1 gezeigt und die Nucleotidsequenz der DNA, welche die nucleäre 28S ribosomale RNA codiert, ist in SEQ ID Nr: 2 gezeigt.
  • Suchen in der Datenbank für entomopathogenetische Pilze mit einer Homologiesuche mit der Nucleotidsequenz der DNA, welche die nucleäre 5,85 ribosomale RNA codiert, und der Nucleotidsequenz der DNA, welche die nucleäre 28S ribosomale RNA codiert, zeigen, dass Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 der Art Paecilomyces tenuipes zugeordnet wird (verwendete Datenbank: GenBank, verwendetes Progamm: BLAST (Basic Local Alignment Search Tool), National Center for Biotechnology Information).
  • Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 wurde hinterlegt beim National Institute of Advanced Industrial Science and Technology International Patent Organism Depository, und als Zugangsnummer wurde FERM BP-7861 zugeteilt.
  • Als Nächstes werden die erfindungsgemäßen insektiziden Mittel beschrieben.
  • Die erfindungsgemäßen insektiziden Mittel umfassen eine insektizid wirksame Menge von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861. In den erfindungsgemäßen insektiziden Mitteln sind typischerweise lebende Pilzzellen von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 vorhanden. Als lebende Pilzzelle von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 wird zum Beispiel dessen Conidium, dessen Blastosporus und dessen Hyphe bezeichnet. Die erfindungsgemäßen insektiziden Mittel können das Conidium, den Blastosporus oder die Hyphe unabhängig oder in einer Mischung verwenden.
  • Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 kann hergestellt werden, auch in großen Mengen, durch Züchten von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 in einem flüssigen Kulturmedium oder einem festen Kulturmedium.
  • Das zum Züchten von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 verwendete Kulturmedium ist nicht beschränkt sofern das Kulturmedium das Wachstum von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 erlaubt. Zum Beispiel können Kulturmedien verwendet werden, die herkömmlicherweise zum Züchten von Mikroorganismen verwendet werden. Derartige herkömmliche Kulturmedien enthalten geeigneterweise eine Kohlenstoffquelle, eine Stickstoffquelle und ein Salz (wie ein organisches Salz oder ein anorganisches Salz). Typischerweise sind derartige herkömmliche Kulturmedien flüssige Kulturmedien oder feste Kulturmedien.
  • Das flüssige Kulturmedium kann gewöhnlich hergestellt werden durch geeignetes Mischen von Wasser mit der Kohlenstoffquelle, der Stickstoffquelle, dem Salz und so weiter.
  • Als Kohlenstoffquelle im flüssigen Kulturmedium sind zum Beispiel Zucker wie Glucose, Dextrin oder Saccharose; Zuckeralkohole wie Glycerol; organische Säuren wie Fumarsäure, Citronensäure und Brenzhaubensäure; tierische Öle; pflanzliche Öle; Molassen und dergleichen zu nennen. Die Menge der im Kulturmedium enthaltenen Kohlenstoffquelle liegt gewöhnlich bei 0,1 bis 20% (w/v).
  • Als Stickstoffquelle im flüssigen Kulturmedium sind zum Beispiel natürlich vorkommende Stickstoffquellen wie Fleischextrakt, Pepton, Hefeextrakt, Malzextrakt, Sojabohnenpulver, Maisquellwasser, Baumwollsamenpulver, getrocknete Hefe und Casaminosäure; Ammoniumsalze oder Nitrate anorganischer Säuren wie Natriumnitrat, Ammoniumchlorid, Natriumsulfat und Ammoniumphosphat; Ammoniumsalze organischer Säuren wie Ammoniumfumarat und Ammoniumcitrat; Harnstoff; Aminosäuren und dergleichen zu nennen. Die Menge der im Kulturmedium enthaltenen Stickstoffquelle liegt gewöhnlich bei 0,1 bis 30% (w/v).
  • Als organisches oder anorganisches Salz im flüssigen Kulturmedium sind zum Beispiel Chloride, Sulfate, Nitrate, Acetate, Carboxylate oder Phosphate von Kalium, Natrium, Magnesium, Calcium, Eisen, Mangan, Kobalt, Zink, und dergleichen zu nennen. Noch spezifischer sind zum Beispiel Natriumchlorid, Kaliumchlorid, Magnesiumsulfat, Eisen-(I)-Sulfat, Mangansulfat, Kobaltchlorid, Zinksulfat, Kupfersulfat, Natriumacetat, Calciumcarboxylat, Natriumcarboxylat, Kaliumphosphat-Monohydrat, Kaliumphosphat-Dihydrat und dergleichen zu nennen. Die Menge des im Kulturmedium enthaltenen anorganischen oder organischen Salzes liegt gewöhnlich bei 0,0001 bis 5% (w/v).
  • Als spezifischere Beispiele für flüssige Kulturmedien, die verwendet werden, um Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 zu züchten, sind Flüssigmedium mit 2% Maltoseextrakt, Hafermehl-Flüssigmedium, Kartoffel-Dextrose-Flüssigmedium, Sabouraud-Flüssigmedium, L-Broth-Flüssigmedium und dergleichen zu nennen.
  • Als feste Kulturmedien sind zum Beispiel Getreide wie Reis, Weizen, Mais, Hirse, Hühnerhirse, Kaoliang und Buchweizen und deren Mischungen zu nennen sowie Medien die als Hauptbestandteil Sägemehl, Bagasse, Reisschalen, Erbsen, Stroh, Maiskolben oder Baumwollsamen-Bodensatz enthalten, mit, wenn nötig, Reiskleie, Maiskleie, Maisquellwasser, Hefepulver, Weizenkleie, Aminosäuren, Sojamehl, Weizenmehl, Tofu-Ausschuß, Glucose, Maltoseextrakt, Mineralien (Kalium-(I)-phosphat, kohlenstoffhaltige Kohle, Calciumsulfat, Magnesiumsulfat und dergleichen) oder Vitaminen (wie Thiamin) und Medien, die als Träger ein poröses Material wie Tonmineralien oder natürlich vorkommende Makromoleküle wie Agar und Gelatine enthalten, mit der Kohlenstoffquelle, der Stickstoffquelle oder dem Salz, die verwendet werden für die vorstehend genannten flüssigen Kulturmedien und dergleichen.
  • Als speziellere Beispiele des für die Züchtung von Paecilomyces tenuipes verwendeten festen Kulturmediums sei 2% Maltoseextrakt-Agarmedium, Hafermehl-Agarmedium, Kartoffeldextrose-Agarmedium, Sabourand-Agarmedium, L-Broth-Agarmedium und ähnliches erwähnt.
  • Die Züchtung von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 kann durchgeführt werden mit Verfahren, die herkömmlicherweise zum Züchten von Mikroorganismen verwendet werden.
  • Als Flüssigkulturverfahren sind zum Beispiel die Teströhrchen-Schüttelkultur, die Reziprok-Kultur, der Glasfermenter, die Tankkultur und dergleichen zu nennen.
  • Als Kulturverfahren mit festem Medium ist zum Beispiel die stationäre Kultur zu nennen.
  • Die Bedingungen zum Züchten von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 mit dem flüssigen oder festen Kulturmedium sind wie folgt. Die Züchtungstemperatur kann geeigneterweise in einem Bereich schwanken, der es einem Mikroorganismus erlaubt zu wachsen, ist aber typischerweise ein Bereich von etwa 15°C bis 35°C. Der pH-Wert des flüssigen oder festen Kulturmediums ist üblicherweise im Bereich von etwa 5 bis 7. Die Züchtungsdauer kann sich mit den Züchtungsbedingungen ändern, liegt aber gewöhnlich im Bereich von etwa einem Tag bis etwa zwei Monate.
  • Nach der Züchtung mit Flüssigmedium kann Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 erhalten werden mit einem Verfahren, bei dem das flüssige Kulturmedium, in dem Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 gezüchtet wurde, zentrifugiert wird. Nach Züchtung mit festem Kulturmedium kann Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 erhalten werden mit einem Verfahren, bei dem destilliertes Wasser auf das feste Kulturmedium, auf dem Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 gezüchtet wurde, gegeben wird und Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 dann von der Oberfläche abgekratzt wird.
  • Die erfindungsgemäßen insektiziden Mittel können Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 unabhängig verwenden, können aber außerdem einen festen Träger, einen flüssigen Träger oder dergleichen enthalten, um Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 zu formulieren. Wenn nötig, kann den erfindungsgemäßen insektiziden Mitteln ein Formulierungsadjuvans wie ein Surfactant, ein wasserspeicherndes Mittel und dergleichen zugegeben sein.
  • In derartigen Fällen der Formulierung können die erfindungsgemäßen insektiziden Mittel als feste Formulierung, wie ein Granulum, Staub und benetzbares Pulver, oder als flüssige Formulierung wie ein emulgierbares Konzentrat, eine strömungsfähige, ölige Formulierung und dergleichen formuliert sein.
  • In derartigen Formulierungen ist Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 typischerweise in einer Menge von etwa 103 bis 105 CFU („colony forming unit", koloniebildende Einheit) pro Gramm des erfindungsgemäßen insektiziden Mittels vorhanden.
  • Als feste Träger zur Formulierung sind zum Beispiel Tone wie Serit, Porzellanerde, Diatomeenerde, synthetisch hydratisiertes Siliconoxid, Bentonit, Fubasami-Erde, und saure Erde; Talke; Keramiken; andere anorganische Mineralien; organische Materialien wie Torfmoos, Pulpe, Agar und Kleie und dergleichen zu nennen.
  • Als flüssige Träger sind Wasser, aliphatische Kohlenwasserstoffe, wie Hexan, Kerosin und Lampenöl; Gartenbauöle wie Maschinenöl; Pflanzenöle wie Sojaöl und Baumwollsamenöl und dergleichen zu nennen.
  • Als Surfactants sind zum Beispiel Alkylschwefelsäureester; Alkylsulfonsäuresalze; Alkylarylsulfonsäuresalze; Alkylarylether; Polyoxyethylenalkylether von Alkylarylethern; Polyoxyethylenalkylester von Alkylarylethern; Polyoxyethylenalkylphenylether; Polyoxyethylenalkylphenylester; Polyoxyethylenfettsäureester; Polyoxyethylensorbitanfettsäureester; Polyethylenglycolether; mehrwertige Alkoholester; Zuckeralkohole und dergleichen zu nennen.
  • Als wasserspeichernde Mittel sind zum Beispiel adhäsive Zucker wie Carrageen, Xanthangummi, Natriumalginsäure, Carboxymethylcellulose und Natriumhydroxyethylcellulose; adhäsive, synthetische, wasserlösliche Polymere wie Natriumpolyacrylsäure, Polyethylenimin, Polyvinylalkohol, Polyethylenoxid und Polyvinylpyrrolidon; adhäsive tierische Polymere wie Natriumchondroitinschwefelsäure, Casein und Gelatine; mehrwertiger Alkohol wie Glycerin und Ethylenglycol und dergleichen zu nennen.
  • Als Schadinsekten, auf die Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 wirkt, sind die folgenden Schadinsekten zu nennen.
  • Lepidoptera: Pyralidae wie der Reisstengelbohrer (Chilo suppressalis), der Reiswickler (Cnaphalocrocis medinalis); Noctuidae wie die Kohleule (Mamestra brassicae), der Baumwollkapselwurm (Helicoverpa armigera), Autographa nigrisigna; Pierdae wie die Gemeine Kohllarve (Pieris rapae); Yponomeutiden (Yponomeutidae) wie die Kohlmotte (Plutella xylostella); Trägspinner (Lymantriidae) wie Euptoctis taiwana, der Schwammspinner (Lymantria dispar), Euproctis similis; Schneckenspinner (Limacodidae) wie Scopelodes contracus; Lasiocampidae wie Dendrolimus spectabilis und dergleichen.
  • Hemiptera: Blattläuse (Aphididae) wie die Baumwollblattlaus (Aphis gossypii), die grüne Pfirsichblattlaus (Myzus persicae) und Lipaphis pserudobrassicae; Weiße Fliegen (Aleyrodidae) wie die Mottenschildlaus (Trialeurodes vaporariorum), die Weiße Fliege (Bemisia tabaci), Bemisia argentifolli und dergleichen.
  • Diptera: Echte Fliegen (Muscidae) wie die Stubenfliege (Musca domestica); Stechmücken (Culicidae) wie die gemeine Stechmücke (Culex pipiens pallens) und dergleichen.
  • Thripidae: Thrips palmi, Frankliniella occidentalis und dergleichen.
  • Isoptera: Reticulitermes speratus, die Formosa-Termite (Coptotermes formosanus) und dergleichen.
  • Das erfindungsgemäße insektizide Verfahren wird typischerweise durchgeführt durch Aufbringen einer insektizid wirksamen Menge des erfindungsgemäßen Mittels auf eine Stelle ausgewählt aus dem Schadinsekt, einem Lebensraum des Schadinsekts oder einer für das Schadinsekt anfälligen Pflanze. Zum Beispiel können die erfindungsgemäßen insektiziden Mittel auf eine Feldfrucht aufgebracht werden, um diese vor dem Schadinsekt zu schützen.
  • Beim Aufbringen des erfindungsgemäßen insektiziden Mittels liegt die Aufbringungsmenge für 1000 m2 gewöhnlich bei 105 bis 1019 CFU, vorzugsweise bei 107 bis 1017 CFU. Das emulgierbare Konzentrat, das benetzungsfähige Pulver und das fließfähige werden typischerweise verdünnt, so dass die Konzentration des erfindungsgemäßen Pilzkörpers bei 103 bis 1012 CFU/ml liegt, und das Granulat wird gewöhnlich direkt aufgebracht.
  • Die erfindungsgemäßen insektiziden Verbindungen können für Laub verwendet werden, wobei ein erfindungsgemäßes insektizides Mittel auf eine für ein Schadinsekt anfällige Pflanze aufgebracht wird, um die Pflanze vor dem Schadinsekt zu schützen. Außerdem können die erfindungsgemäßen insektiziden Mittel verwendet werden durch Aufbringen der erfindungsgemäßen insektiziden Mittel auf ein Saatbeet vor dem Bepflanzen oder auf den Pflanzenfuß nach dem Pflanzen.
  • Beispiele
  • Die vorliegende Erfindung wird anhand der folgenden Beispiele genauer beschrieben, ist jedoch nicht auf diese Beispiele beschränkt.
  • Herstellungsbeispiel
  • Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861, zuvor gezüchtet in Kartoffel-Dextrose-Agarmedium, wurde auf Kartoffel-Dextrose-Agarmedium (Durchmesser 90 mm × Tiefe 10 mm) geimpft. Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 wurde dann unter stationären Kulturbedingungen für 14 Tage unter Fluoreszenzlichtexposition für 14 Stunden/Tag bei 25°C gezüchtet. Die Pilzzellen, die auf dem Agarmedium gebildet wurden (einschließlich vieler Conidien), wurden geerntet durch Abkratzen mit 10 ml einer Lösung von 0,03% Spreader (Lino, Nihon Nohyaku Co.) gelöst in destilliertem Wasser. Die resultierende Lösung wurde mit 0,03% Spreader weiter verdünnt, um eine Testflüssigkeit von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 herzustellen.
  • Referenzbeispiel
  • Paecilomyces tenuipes ATCC-44818, Isaria japonica IFO 30367 und Isaria japonica IFO-31161 wurden jeweils ähnlich wie im vorstehenden Herstellungsbeispiel als Testflüssigkeiten hergestellt.
  • Isaria japonica wird der Klase Paecilomyces tenuipes zugeordnet (zum Beispiel: Plant Protection, Sonderausgabe Nr. 2, „Manual for the Researches on Insect Pathologes", herausgegeben von der Japan Plant Protection Association).
  • Testbeispiel 1
  • In einen Plastikbehälter mit einem Durchmesser von 6 cm und einer Höhe von 3 cm wurde ein Filterpapier mit einem Durchmesser von 5 cm gelegt. Nachfolgend wurden 0,6 ml der Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861-Testflüssigkeit zugegeben. Danach wurden 0,5 g Saccharose und 10 adulte Stubenfliegen in den Behälter gegeben und dieser wurde verschlossen. Nach 4 Tagen wurde die Anzahl toter und lebendiger Fliegen ermittelt und die Mortalität wurde bestimmt (3 Wiederholungen).
  • Außerdem wurden als Vergleichsbeispiele die Testflüssigkeiten, die mit dem unter „Referenzbeispiel" beschriebenen Verfahren hergestellt worden waren, in ähnlicher Weise verwendet, um jeweils die Anzahl toter und lebendiger Fliegen zu ermitteln und die Mortalität zu bestimmen.
  • Die Ergebnisse sind in Tabelle 1 gezeigt.
  • Tabelle 1
    Figure 00090001
  • Testbeispiel 2
  • Kohlpflanzen wurden in Plastikbehälter gepflanzt und durften drei Wochen wachsen. Die Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861-Testflüssigkeit wurde auf die Kohlpflanzen gesprüht (10 ml/Topf). Nachdem die Kohlpflanzen getrocknet waren, wurden 10 Kohlmottenlarven im dritten Larvenstadium auf jeder Kohlpflanze ausgesetzt. Nach 5 Tagen wurde die Anzahl toter und lebendiger Schadinsekten ermittelt und die Mortalität wurde bestimmt (3 Wiederholungen).
  • Außerdem wurden als Vergleichsbeispiele die Testflüssigkeiten, die mit dem unter „Referenzbeispiel" beschriebenen Verfahren hergestellt worden waren, in ähnlicher Weise verwendet, um jeweils die Anzahl toter und lebendiger Schadinsekten zu ermitteln und die Mortalität zu bestimmen.
  • Die Ergebnisse sind in Tabelle 2 gezeigt.
  • Tabelle 2
    Figure 00090002
  • Testbeispiel 3
  • Baumwollkapselwurm-Larven im dritten Larvenstadium wurden für 10 Sekunden in die Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861-Testflüssigkeit, die gemäß dem unter „Herstellungsbeispiel" beschriebenen Verfahren hergestellt worden war, getaucht. In Plastikbehälter mit einem Durchmesser von 6 cm und einer Höhe von 3 cm wurden Filterpapiere mit einem Durchmesser von 5 cm eingelegt. Nachfolgend wurde jeweils eines der vorstehenden Test-Schadinsekten und ein Kohlblatt zugegeben. Der Behälter wurde dann verschlossen. Nach sieben Tagen wurde die Anzahl toter und lebendiger Schadinsekten ermittelt und die Mortalität bestimmt (10 Wiederholungen).
  • Außerdem wurden als Vergleichsbeispiele die Testflüssigkeiten, die mit dem unter „Referenzbeispiel" beschriebenen Verfahren hergestellt worden waren, in ähnlicher Weise verwendet, um jeweils die Anzahl toter und lebendiger Schadinsekten zu ermitteln und die Mortalität zu bestimmen.
  • Die Ergebnisse sind in Tabelle 3 gezeigt.
  • Tabelle 3
    Figure 00100001
  • Testbeispiel 4
  • Gurken wurden in Plastikbehälter gepflanzt. Nachdem die Gurken für 2 Wochen gewachsen waren, wurden pro Topf fünf weibliche Baumwoll-Blattläuse ausgesetzt. Auf die Gurken wurden pro Topf 10 ml der Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861-Testflüssigkeit gesprüht. Nach acht Tagen wurde die Anzahl toter und lebendiger Schadinsekten ermittelt und der korrigierte Populationsdichteindex wurde anhand der folgenden Gleichung bestimmt.
  • Außerdem wurden als Vergleichsbeispiele die Testflüssigkeiten, die mit dem unter „Referenzbeispiel" beschriebenen Verfahren hergestellt worden waren, in ähnlicher Weise verwendet, um jeweils die Anzahl toter und lebendiger Schadinsekten zu ermitteln und die Mortalität zu bestimmen. Korrigierter Populationsdichteindex = {(A × b)/(B × a)} × 100A: Anzahl lebendiger Schadinsekten in den unbehandelten vor Applikation
    B: Anzahl lebendiger Schadinsekten in den unbehandelten acht Tage nach Applikation
    C: Anzahl lebendiger Schadinsekten in den behandelten vor Applikation
    D: Anzahl lebendiger Schadinsekten in den behandelten acht Tage nach Applikation
  • Die Ergebnisse sind in Tabelle 4 gezeigt.
  • Tabelle 4
    Figure 00110001
  • Testbeispiel 5
  • 10 unterirdisch lebende Formosa-Termiten wurden für 10 Sekunden in 1,5 ml Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861-Testflüssigkeit, die gemäß dem unter „Herstellungsbeispiel" beschriebenen Verfahren hergestellt worden war, getaucht. Die Formosa-Termiten wurden mit der Testflüssigkeit in eine runde Petrischale gegossen (Durchmesser 90 mm, Höhe 15 mm), in die ein Filterpapier mit einem Durchmesser von 82 mm gelegt war. Nach sieben Tagen wurde die Anzahl toter und lebendiger Schadinsekten ermittelt und die Mortalität wurde bestimmt (3 Wiederholungen).
  • Außerdem wurden als Vergleichsbeispiele die Testflüssigkeiten, die mit dem unter „Referenzbeispiel" beschriebenen Verfahren hergestellt worden waren, in ähnlicher Weise verwendet, um jeweils die Anzahl toter und lebendiger Schadinsekten zu ermitteln und die Mortalität zu bestimmen.
  • Die Ergebnisse sind in Tabelle 5 gezeigt.
  • Tabelle 5
    Figure 00120001
  • Die vorstehenden Ergebnisse der Testbeispiele 1 bis 5 beweisen, dass Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 eine hervorragende insektizide Wirkung bereitstellt, und dass Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 ein breites insektizides Spektrum aufweist.
  • SEQUENZAUFLISTUNG
    Figure 00130001

Claims (9)

  1. Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861.
  2. Zusammensetzung, umfassend eine insektizid wirksame Menge von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 und einen Träger.
  3. Verfahren, umfassend das Aufbringen einer insektizid wirksamen Menge von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 auf mindestens eine Stelle ausgewählt aus einem Schadinsekt, einem Lebensraum des Schadinsekts und einer für das Schadinsekt anfälligen Pflanze.
  4. Verfahren gemäß Anspruch 3, wobei das Schadinsekt ein Lepidoptera-Schädling ist.
  5. Verfahren gemäß Anspruch 3, wobei das Schadinsekt ein Hemiptera-Schädling ist.
  6. Verfahren gemäß Anspruch 3, wobei das Schadinsekt ein Diptera-Schädling ist.
  7. Verfahren gemäß Anspruch 3, wobei das Schadinsekt ein Thripidae-Schädling ist.
  8. Verfahren gemäß Anspruch 3, wobei das Schadinsekt ein Isoptera-Schädling ist.
  9. Verwendung von Paecilomyces tenuipes T1 FERM BP-7861 zur Bekämpfung eines Schadinsekts.
DE60202036T 2001-09-26 2002-09-24 Entomopathogenenischer Pilz zur Verwendung als Insektizide Expired - Lifetime DE60202036T2 (de)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2001293406 2001-09-26
JP2001293406A JP4792685B2 (ja) 2001-09-26 2001-09-26 広宿主範囲を持つ昆虫病原性糸状菌

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE60202036D1 DE60202036D1 (de) 2004-12-30
DE60202036T2 true DE60202036T2 (de) 2005-11-10

Family

ID=19115200

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE60202036T Expired - Lifetime DE60202036T2 (de) 2001-09-26 2002-09-24 Entomopathogenenischer Pilz zur Verwendung als Insektizide

Country Status (7)

Country Link
US (1) US7033586B2 (de)
EP (1) EP1297746B1 (de)
JP (1) JP4792685B2 (de)
AT (1) ATE282960T1 (de)
DE (1) DE60202036T2 (de)
ES (1) ES2234987T3 (de)
PT (1) PT1297746E (de)

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP4501426B2 (ja) * 2002-12-26 2010-07-14 住友化学株式会社 殺虫性糸状菌製剤
JP4581410B2 (ja) * 2004-01-21 2010-11-17 住友化学株式会社 殺虫性油剤
JP2006265226A (ja) * 2005-02-28 2006-10-05 Sumitomo Chemical Co Ltd 殺虫性糸状菌を含有する殺虫性油系製剤
JP4692023B2 (ja) * 2005-02-28 2011-06-01 住友化学株式会社 有害生物防除方法
JP2007145718A (ja) * 2005-11-24 2007-06-14 Sumitomo Chemical Co Ltd 有害生物防除能力を有する微生物の施用方法
JP5200425B2 (ja) * 2006-06-23 2013-06-05 住友化学株式会社 農薬活性微生物製剤
WO2008033751A2 (en) * 2006-09-11 2008-03-20 The United States Of America, As Represented By The Secretary Of Agriculture Compositions of keratin hydrolysate and microbes for pest control applications
FR2909838B1 (fr) * 2006-12-13 2009-04-17 Natural Plant Prot Utilisation de champignons entomopathogenes comme moyen de lutte biologique contre paysandisia archon
JP5416911B2 (ja) * 2007-03-20 2014-02-12 住友化学株式会社 微生物含有製剤の施用方法
CN102676396B (zh) * 2011-03-14 2013-10-16 上海泛亚生命科技有限公司 一种细脚拟青霉菌株及其应用
MX364353B (es) 2011-04-29 2017-06-13 Inst De Ecologia A C Star Usos, métodos y composiciones biológicas del género paecilomyces para el control, prevención y erradicación de fitoparásitos en cultivos de solanaceas.
WO2015083719A1 (ja) * 2013-12-02 2015-06-11 住友化学株式会社 植物病害防除用組成物及び植物病害の防除方法

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH0795950B2 (ja) * 1987-03-09 1995-10-18 ぺんてる株式会社 カルボキシペプチダーゼの製造方法
JPH0798726B2 (ja) * 1989-03-06 1995-10-25 ユニバーシティー オブ フロリダ リサーチ ファウンデーション，インコーポレイテッド カビ病原体によるコナジラミその他害虫の生物学的防除
CA2059642C (en) * 1989-08-03 1999-08-31 Keith L. Williams Myconematicide
JP2870856B2 (ja) * 1989-09-25 1999-03-17 ぺんてる株式会社 洗浄用化粧料
EP0494592B1 (de) * 1991-01-10 1996-09-18 W.R. Grace & Co.-Conn. Ein Prozess und Verfahren zur Herstellung und Verwendung von insektenpaththogenen Pilzen als Vorbereitung zur Schädlingsbekämpfung
MX9407876A (es) * 1993-10-12 1997-02-28 Clifford A Bradley Formulaciones de hongos entomopatogenos para uso como insecticidas biologicos.

Also Published As

Publication number Publication date
PT1297746E (pt) 2005-04-29
ES2234987T3 (es) 2005-07-01
EP1297746B1 (de) 2004-11-24
EP1297746A1 (de) 2003-04-02
US20030124098A1 (en) 2003-07-03
US7033586B2 (en) 2006-04-25
JP2003095834A (ja) 2003-04-03
JP4792685B2 (ja) 2011-10-12
DE60202036D1 (de) 2004-12-30
ATE282960T1 (de) 2004-12-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Butt et al. Bioassays of entomogenous fungi.
DE69417750T2 (de) Verwendung von streptomyces wyec 108 zur bekämpfung von pflanzenschädlingen
DE69213772T2 (de) Ein Prozess und Verfahren zur Herstellung und Verwendung von insektenpaththogenen Pilzen als Vorbereitung zur Schädlingsbekämpfung
DE60202036T2 (de) Entomopathogenenischer Pilz zur Verwendung als Insektizide
WO2006121350A1 (en) Entomopathogenic fungi and uses thereof
DE68917541T2 (de) Verfahren zum Auswählen von Bakterien und deren Verwendung in der Feldbekämpfung des Unkrauts Dachtrespe.
DE69533807T2 (de) Verwendung des Pilzes Gliocladium catenulatum zur biologischen Kontrolle von Pflanzenkrankheiten
JP4581410B2 (ja) 殺虫性油剤
CN110235662B (zh) 一种桨角蚜小蜂协同爪哇虫草防治烟粉虱的方法
DE68912912T2 (de) Drechslera spp. oder einen ihrer Metaboliten enthaltende Unkrautbekämpfungsmittel und Verfahren zur Unkrautbekämpfung unter Verwendung von Drechslera spp. oder einen ihrer Metaboliten.
Bashir et al. Observations on the effect of the weevils Neochetina eichhorniae Warner and Neochetina bruchi Hustache on the growth of water hyacinth
JP4501426B2 (ja) 殺虫性糸状菌製剤
Smith Zophiuma lobulata Ghauri (Homoptera: Lophopidae) and its relation to the Finschhafen coconut disorder in Papua New Guinea.
Caudwell et al. Integrated pest management for oil palm in Papua New Guinea
DE3878000T2 (de) Verschmolzenes biologisches bekaempfungsmittel.
DE68914358T2 (de) Verwendung von Ampelomyces quisqualis und eine Reinkultur davon.
LU601702B1 (de) Coccidioides albicans Stamm LQB-025 und seine Anwendung
JPS6322505A (ja) ネオヅユギテス・フロリダナ菌類を用いた植物食害だにの抑制方法
Keno et al. Evaluation of Ethiopian Entomopathogenic Fungi Isolates Against the Two-Spotted Spider Mite, Tetranychus urticae Koch on Tomato, Solanum lycopersicum L
DE68925126T2 (de) Biologische kontrolle von weissen fliegen und anderen schädlingen mit hilfe eines pilzpathogens
EP0534265B1 (de) Schneckenbekämpfungsmittel
Shah Bionomics of whitefly, Bemisia tabaci on soybean cultivars and its management with entomopathogenic fungi
Garda SP. NOV. FOR THE BIOCONTROL OF RASTROCOCCUSINVADENS (PSEUDOCOCCIDAE)
Solon et al. Dispersal of algae and protozoa via the alimentary tracts of selected aquatic insects
CN117121746A (zh) 一种实蝇类害虫的生物防治方法

Legal Events

Date Code Title Description
8327 Change in the person/name/address of the patent owner

Owner name: SUMITOMO CHEMICAL CO. LTD., TOKIO/TOKYO, JP

8364 No opposition during term of opposition