DK165075B - Fremgangsmaade til bestemmelse af en analyt som er et antibiotikum af vancomycinklassen og som binder sig til en molekylaer receptor repraesenteret af et d-alanyl-d-alanin-dipeptid eller et d-alanyl-d-alanin-karboxyterminalt oligopeptid, samt analysesaet til anvendelse ved fremgangsmaaden - Google Patents

Fremgangsmaade til bestemmelse af en analyt som er et antibiotikum af vancomycinklassen og som binder sig til en molekylaer receptor repraesenteret af et d-alanyl-d-alanin-dipeptid eller et d-alanyl-d-alanin-karboxyterminalt oligopeptid, samt analysesaet til anvendelse ved fremgangsmaaden Download PDF

Info

Publication number
DK165075B
DK165075B DK429386A DK429386A DK165075B DK 165075 B DK165075 B DK 165075B DK 429386 A DK429386 A DK 429386A DK 429386 A DK429386 A DK 429386A DK 165075 B DK165075 B DK 165075B
Authority
DK
Denmark
Prior art keywords
alanyl
antibiotic
antibody
alanine
analyte
Prior art date
Application number
DK429386A
Other languages
English (en)
Other versions
DK165075C (da
DK429386A (da
DK429386D0 (da
Inventor
Angelo Corti
Angelo Borghi
Carlo Rurali
Giovanni Cassani
Francesco Parenti
Original Assignee
Lepetit Spa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Lepetit Spa filed Critical Lepetit Spa
Publication of DK429386D0 publication Critical patent/DK429386D0/da
Publication of DK429386A publication Critical patent/DK429386A/da
Publication of DK165075B publication Critical patent/DK165075B/da
Application granted granted Critical
Publication of DK165075C publication Critical patent/DK165075C/da

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/15Medicinal preparations ; Physical properties thereof, e.g. dissolubility
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/94Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving narcotics or drugs or pharmaceuticals, neurotransmitters or associated receptors
    • G01N33/9446Antibacterials
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/544Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals the carrier being organic
    • G01N33/545Synthetic resin
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Nitrogen And Oxygen Or Sulfur-Condensed Heterocyclic Ring Systems (AREA)
  • Investigating Or Analyzing Materials Using Thermal Means (AREA)
  • Analysing Materials By The Use Of Radiation (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Description

DK 165075B
ι
Den foreliggende opfindelse angår en ny "sandwich"-prøve til bestemmelse af en analyt som er et antibiotikum af vancomycinklassen og som har evne til at binde sig til en molekylær receptor repræsenteret af et D-alanyl-D-5 alanin-dipeptid eller et D-alanyl-D-alanin-karboxytermi-nalt oligopeptid. Fremgangsmåden er ejendommelig ved det i krav 1's kendetegnende del angivne og har ikke blot anvendelse til bestemmelse af glykopeptidiske antibiotika af vancomycinklassen men også derivater og aglyko-10 ner deraf. Prøven forbinder den høje selektivitet af et passende D-alanyl-D-alanin-derivat til antibiotika af vancomycinklassen og specifiteten af antistof som er rettet mod det antibiotikum tilhørende klassen, der er genstand for bestemmelsen. Opfindelsen angår også et analysesæt 15 til brug ved fremgangsmåden.
Ifølge opfindelsen kan analytten være udvalgt blandt især vancomycin, teicoplanin, actaplanin, ristocetin, avoparcin, actinoidin, antibiotikum LL-AM-374, antibiotikum A 477, antibiotikum OA 7653, antibiotikum A 20 35512 B, antibiotikum A 515668, antibiotikum AAD 216, antibiotikum A 41030, antibiotikum A 47934 såvel som de enkelte faktorer, derivater og aglykoner deraf, fortrinsvis teicoplanin eller en enkelt faktor, et derivat eller en aglykon deraf.
25 Det er kendt at vancomycin og ristocetin A griber ind i syntesen af peptidoglykan, der er den vigtigste strukturkomponent i bakteriecellevæggen. Det formodes at denne indgriben, der fører til inhibering af cellevæksten og til sidst til ødelæggelse af cellen ved lysis, skyldes 30 en specifik binding mellem disse antibiotika og pentapep-tid-prekusoren med en D-Ala-D-Ala-rest ved karboxylenden (UDP-N-Acetylmuramylpentapeptid) (H.R. Perkins, Biochem.J. 111, 195, 1969).
Det blev opdaget for nyligt at også teicoplanin 35 virker gennem den samme mekanisme ved at binde sig til det voksende peptidoglykan i følsomme bakterier. Nærmere betegnet viste det sig at teicoplanin ligesom vancomycin og 2
DK 165075 B
ristocetin A og lignende antibiotika binder sig til pep-tidoglykaner indeholdende et D-Ala-D-Ala-dipeptid i kar-boxyenden. Ved at gøre det inhiberer de sandsynligvis den bakterielle transpeptidase og forhindrer tværbindingen af 5 cellevækst-peptidoglykan. Disse antibiotika binder også et D-alanyl-D-alanin-dipeptid eller et D-alanyl-D-alanin-kar-boxyterminalt oligopeptid. Også de andre antibiotika af van-comycinklassen har vist sig eller formodes at virke ved den samme virkningsmekanisme, og de er derfor i stand til 10 at binde sig til et D-alanyl-D-alanin-dipeptid eller D-alanyl-D-alanin-karboxyterminalt oligopeptid, og de kan fremkalde dannelse af'antistoffer mod dem i en egnet vært.
Hidtil kendte fremgangsmåder til bestemmelse af antibiotiske stoffer, navnlig teicoplanin og de andre anti-15 biotika af vancomycinklassen, er hovedsagelig baseret på TLC, HPLC og biobestemmelser på følsomme mikroorganismer.
I betragtning af den for tiden foregående terapeutiske anvendelse eller avancerede kliniske undersøgelser af nogle af disse antibiotika, består der behov for bestemmelses-20 metoder til bestemmelse af dem i væsker, navnlig biologiske væsker, som er specifikke, hurtige, lette, pålidelige og egnet til automatisering.
Navnlig er detekteringen af disse stoffer i legems-ekssudater, bronkie-ekspektorater, pus, hudprøver fra brand-25 sårspatienter og lignende biologiske kilder særlig vanskelig med kendte teknikker eftersom der ofte fås falsk-positive resultater. Fremgangsmåden ifølge den foreliggende opfindelse er i modsætning hertil nøjagtig og pålidelig også på sådanne prøver.
30
Det D-alanyl-D-alanin-karboxyterminale oligopeptid kan være et tri-, tetra-, penta-, hexa- eller heptapeptid hvor det karboxyterminale dipeptid er repræsenteret af D-alanyl-D-alanin. Det foretrukne D-alanyl-D-alanin-karboxy-35 terminale oligopeptid ifølge opfindelsen er tripeptidet 33£-aminokaproyl-D-alanyl-D-alanin (i det følgende betegnet ε-Aca-D-Ala-D-Ala).
3
DK 165075 B
Det D-alanyl-D-alanin-karboxyterminale oligopeptid er konjugeret med en passende bærer for at gøre det adsor-berbart på en fast fase-overflade. En hensigtsmæssig bærer kan i dette tilfælde være et hvilket som helst protein el-5 ler andet højmolekylært stof med evne til at blive kovalent koblet til D-alanyl-D-alanin-karboxyterminalt oligopeptid til dannelse af et konjugat som har evne til at ad-sorbere (dvs. i stand til at indgå i fysiske bindinger) med den valgte fast fase-overflade. Et foretrukket eksempel på en 10 sådan bærer er albumin, navnlig oksealbumin. Imidlertid er også æg-, humant eller svinealbumin brugbare.
Den fast fase-overflade til hvilken den D-alanyl-D-alanin-karboxyterminalt oligopeptid-bærende bærer er ad-sorberet, er fortrinsvis overfladen af en analytisk bærer.
15 I nærværende beskrivelse sigter udtrykket "analytisk bærer" til et hvilket som helst analysemiddel som kan indeholde eller i det mindste eksponeres til flydende reagenser og som derfor kan bruges som overflade der bærer et D-alanyl-D-alanin-karboxyterminalt oligopeptid konjugeret 20 med en passende makromolekylær bærer. Foretrukne eksempler herpå er mikrotiterplader af glas eller plast eller reagensglas eller plastark. Den mest foretrukne "analytisk bærer" er repræsenteret af rummene i en polyætylen- eller polystyren-mikrotiterplade.
25 Følgelig er den mest foretrukne "overtrukne analy tiske bærer" (dvs. overflade med oligopeptidet båret derpå) ifølge opfindelsen plastrum eller -rør overtrukket med fra 0,025 pg til 1 pm, fortrinsvis 0,1-0,2 pg (mikrogram) BSA-e-Aca-D-Ala-D-Ala.
30 Som allerede nævnt er den analyt der formodes at være til stede i "testopløsningen" et antibiotikum af van-comycinklassen eller, mere generelt, et passende emne til at binde sig til D-alanyl-D-alanin-dipeptidet eller D-ala-nyl-D-alanin-karboxyterminalt oligopeptid.
4
DK 165075B
"Antistoffer specifikt rettet mod det til bestemmelse værende stof" er antistoffer der frembringes i et dyr ved injektion af et passende konjugat af det til prøvning værende stof. Disse antistoffer kan være konventio-5 nelle antisera, der vindes ved immunisering af et dyr såsom en kanin, en rotte eller et andet pattedyr som ikke er et menneske, eller det kan være monokloneale antistoffer mod disse stoffer, fremstillet i det væsentlige ved at følge den af C. Milstein og G. Koheler (Nature 256, 10 495-497 (1975)) angivne cellefusionsteknik.
Eftersom analytterne er haptener (dvs. at de ikke er i stand til som sådanne af bevirke dannelse af antistoffer mod sig når de injiceres i et fra mennesket forskelligt pattedyr, men har immunogene egenskaber der kan ud-15 trykkes (expressed) når de kobles til en passende molekylærbærer af høj molekylvægt såsan et protein) konjugeres til en passende bærer, der i almindelighed er et protein såsom okseserumal-bumin forud for immuniseringen af det valgte værtsdyr.
Et hensigtsmæssigt værtsdyr til fremstilling af et 20 konventionelt antiserum, der derefter kan renses eller fraktioneres til isolering af vedkommende IgG, er kaninen. I modsætning hertil fremstilles monokloneale antistoffer konventionelt ved hjælp af hybridomer vundet ved fusion af rottemiltceller og homologe myelomceller i nærværelse af 25 et fusionsfremmende middel ved at man i det væsentlige følger ovennævnte fremgangsmåde ifølge Milstein og Koheler.
Til hensigtsmæssig anvendelse ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen må hverken en signifikant andel af de polyklo-neale anstistoffer i det konventionelle antisera eller de 30 monokloneale antistoffer, som kan repræsentere de "antistoffer som er specifikt rettet mod det til bestemmelse værende stof", indgribe i bindingen af analytten (dvs. det til bestemmelse værende antibiotikum) med dens "molekylære receptor" (dvs. D-Ala-D-Ala-oligopeptidet adsorberet 35 på vedkommende overflade), og må selvsagt ikke krydsreagere med andre antibiotika tilhørende klassen, der måtte i
DK 165075 B
være til stede i prøven og samtidig binde sig til den molekylære receptor.
De "anti-anstistof-antisera", der bruges ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen, er konventionelle antistof-5 præparater mod immonuglobuliner G (IgG'er) fra en given dyreart, som er den dyreart til hvilken det "første" antistof (dvs. det der er rettet mod analytten) hører. Præparater af disse antistoffer såsom gede-antiserum til kanin og gede-anti-rotte-antistoffer vindes ved konventionel-10 le teknikker og er også tilgængelige i handelen.
Den detekterbare markør som kobles med dette anti- antistof-antiserum er en af de sædvanlige "markører" som bruges i immunobestemmelser såsom et enzym, en radioisotop eller et fluorescerende farvestof. Et foretrukket en-15 zym er en peroxidase såsom peberrods-peroxidase, der afsløres og bestemmes kvantitativt kolorimetrisk ved hjælp af et af dets kromogene substrater såsom ortofenylendiamin i nærværelse af hydrogenperoxid. Også de anti-antistof-antisera, som er koblet til den detekterbare markør, er 20 tilgængelige i handelen eller kan fremstilles ved konventionelle fremgangsmåder.
Som det forstås af de sagkyndige kan koblingsn af det D-alanyl-D-alanin-karboxyterminale oligopeptid med den ønskede bærer opnås ved hjælp af i og for sig kendte tek-25 nikker. Hensigtsmæssigt bruges der et koblingsmiddel; et foretrukket koblingsmiddel er glutaraldehyd. Eksempler på andre kendte koblingsmidler er karbodiimider, diisocyana-ter, anhydrider, diazoniumforbindelser, azider og cyano-genbromid. Tilsvarende kan der bruges kendte koblingsme-30 toder og -reagenser til kobling af anti-antistof-antiserum-met til den detekterbare markør. Disse fremgangsmåder afhænger i hovedsagen af den valgte detekterbare markørs egenskaber. Når den detekterbare markør er et enzym kan der bruges koblingsprocedurer som de ovenfor omtalte. Også i 35 dette tilfælde er glutaraldehyd det foretrukne koblingsmiddel. Ved disse koblingsreaktioner kan mængdeforholdene mellem reaktanterne varieres signifikant, selv om der i * mange tilfælde foretrækkes et forhold på ca. 1:1 mellem 6
DK 165075B
reagenserne. Desuden gælder det i tilfælde af koblingsreaktionen mellem et D-alanyl-D-alanin-karboxyterminalt oli-gopeptid, som er ε-Aca-D-Ala-D-Ala, og en makromolekylær bærer som er okseserumalbumin (BSA) at molforholdet mel-5 lem disse to reagenser kan variere fra 1:1 til 10:1.
Beskrevet mere udførligt er en foretrukken udførelsesform af fremgangsmåden ifølge opfindelsen som følger: (a) Fremstilling af en stardardkurve med kendte mæng- 10 der af analytten i en passende fortyndingspuffer, (b) fremstilling af prøverne*og derefter fortynding af dem i samme fortyndingspuffer som ovenfor, (c) særskilt tilsætning af standard fortyndingen og prøverne til den foran definerede overtrukne ana- 15 lytiske bærer, (d) efter inkubering ved stuetemperatur i en fugtig, dækket kasse, vask af den overtrukne analytiske bærer og tilsætning af et præparat af det "første" antistof (anti-analyt-antistof), hensigtmæssigt 20 fortyndet i ovennævnte fortyndingspuffer, (e) efter fornyet vask af den overtrukne analytiske bærer og tørring, tilsætning af det "andet" antistofpræparat (anti-antistof-præparat) hvori det arts-specifikke antistof er koblet til en detek- 25 terbar markør og til slut (f) ved bestemmelse af den "detekterbare markør” bundet til det overtrukne analytiske system, evaluering af koncentrationen af analytten i prøven under sammenligning med værdierne i standardkurven.
30
Den ovennævnte fortyndingspuffer er en vandig puffer og fortrinsvis fosfatpufret saltopløsning ved en pH-værdi mellem 7,0 og 7,5. Når prøven er serum, bronkial ekspektorater, pus eller hud, indeholder fortyndingspuf-35 feren fortrinsvis 10-30 rumfangs% og navnlig ca. 20 rumfangsi serum eller et serumproteinpræparat.
7
DK 165075 B
En fordel ved fremgangsmåden ifølge opfindelsen består i, at det nu er muligt let og hurtigt at bestemme et antibiotikum af vancomycinklassen i nærværelse af en anden forbindelse hørende til samme klasse. Mens faktisk al-5 le antibiotika af vancomycinklassen kobles selektivt, omend i forskelligt omfang, til et D-Ala-D-Ala-karboxytermi-nalt peptid, vil kun det til prøvning værende antibiotikum reagere med det specifikke antistof. Ved bestemmelse af en biologisk væske, der fx indeholder to antibiotika af 10 vancomycinklassen (fx vancomycin og teicoplanin) ved hjælp af fremgangsmåden ifølge opfindelsen, vil begge antibiotika blive selektivt bundet til den analytiske bærer hvortil der er adsorberet til overfladen et D-alanyl-D-alanin-karboxyterminalt oligopeptid som er konjugeret med vedkom-15 mende makromolekylære bærer, mens alle de andre stoffer som er til stede i prøven og sædvanligvis vil forstyrre, vil blive vasket bort. Derefter vil det specifikke antistof (fx et antistof rettet mod teicoplanin) kun binde sig til det relevante antibiotikum (fx teicoplanin) bun-20 det til det adsorberede D-alanyl-D-alanin-peptid, men ikke tildet andet tilsvarende bundne antibiotikum (fx vancomycin) .
Det species-specifikke anti-antistof-antiserum koblet med den detekterbare markør, vil, når det først er til-25 sæt, derfor binde sig specifikt til anti-analytten (i dette tilfælde anti-teicoplanin)-antistof der for sit vedkommende er bundet til den "stationære fase" i kraft af bindingen af det specifikke antigen (i dette tilfælde teicoplanin). Den påfølgende evaluering af det "bundne" species 30 specifikke anti-antistof-antiserum ved hjælp af detekteringen af den koblede "markør" er derfor kun korreleret til det specifikke antibiotikum af klassen, som er den valgte genstand for bestemmelsen (i dette tilfælde teicoplanin), selv i nærværelse af andre antibiotika af samme 35 klasse (i dette tilfælde vancomycin).
DK 165075 B
'8
En foretrukken udførelsesform for fremgangsmåden i-følge opfindelsen er en fremgangsmåde som beskrevet ovenfor, hvor den analytiske bærer på overfladen bære et D-alanyl-D-alanin-karboxyterminalt oligopeptid konjugeret 5 med en passende makromolekylær bærer med evne til at ad-sorbere til nævnte overflade, er rummene (wells) i en plast-mikroplade overtrukket med BSA-e-Aca-D-Ala-D-Ala, hvorhos de antistoffer som er rettet mod det til detektering værende stof er kanin-antisera mod et antibiotikum 10 af vancomycinklassen, og det med en detekterbar markør koblet anti-antistof-antiserum er gede-antiserum for kanin-IgG koblet med en peroxidase.
Kanin-antisera mod et forud bestemt antibiotikum af vancomycinklassen ("forud bestemt antibiotikum") vin-15 des ved at man gentagne gange (fx hver tredje uge i tre måneder) i kaniner injicerer et effektivt anti-"forudbestemt antibiotikum"-antistof som bevirker dannelse af et "forudbestemt antibiotikum"-albuminkonjugat frembragt ved kobling af det "forudbestemte antibiotikum" og okse-20 serumalbumin ved hjælp af i og for sig kendte metoder, fx ved at anvende omkring 1-10 vægtdele af det "forudbestemte antibiotikum" per vægtdel okseserumalbumin.
Der udtages blod ugentligt fra dyrene og anti-"forudbestemt antibiotikum"-antistof“titere bestemmes ved en 25 analysemetode, fx en ELISA-metode under anvendelse af en analytisk bærer overtrukket med samme "forudbestemte antibiotikum" og en passende detekterbar sonde (probe), fx gede-antiserum til kanin-IgG koblet med peroxidase. Når der er opnået en analytisk effektiv antistofproduktion ud-30 tages der blod fra dyrene og antiserummet udvindes, hvorefter det eventuelt underkastes yderligere rensning i hovedsagen til fjernelse af anti-okse-serumalbumin immuno-globuliner. Denne rensning kan indebære absorptionskroma-tografering ved en modificeret matrix, fx en matrix frem-35 stillet ved kobling af okseserumalbumin med en agarosegel (fx "Sepharose"^) aktiveret på i og for sig kendt måde.
Med betegnelsen "analytisk bærer" anvendt her menes det samme som foran. Særlig er PVC-mikroplader, reagensglas 9
DK 165075 B
eller plastark med evne til på overfladen at få absorberet analytisk detekterbare mængder af det "forudbestemte antibiotikum" egnede midler til anvendelse ved analysemetoden .
5 Foruden at være nyttig til specifikt, hurtigt og let at detektere og bestemme analytten i opløsninger såsom opløsninger fra gæringssupper eller ekstrakter, er den foreliggende fremgangsmåde også anvendelig til detektering og bestemmelse af biologiske væsker såsom blod og TO fraktioner deraf, urin, legemsekssudater, pus, bronkie ekspektorater og hud.
For at anvende den foreliggende fremgangsmåde på en biologisk væske er det i almindelighed ikke nødvendigt at foretage en særlig forbehandling af prøven, men som regel 15 vil fortyndingen med puffer (og, sjældent, koncentrering af prøven), så den kommer ind i det særlige anvendelsesområde for fremgangsmåden under de valgte betingelser, være tilstrækkelig.
Fortrinsvis opnås kalibreringskurven med et standard-20 præparat af analytten opløst i samme biologiske væske som den til bestemmelse værende prøve.
I tilfælde af bronkieekspektorater, ekssudater, pus og hud er det i almindelighed nødvendigt at homogenisere prøven før analysen på sædvanlig måde. Prøven fortyn-25 det som regel med en puffer, normalt før homogenisering.
Fortrinsvis sættes der til pufferen, der er en vandig puffer med en pH fra 7 til 7,5, serum eller serumproteiner, omkring 10-30% af det samlede rumfang og fortrinsvis ca. 20% af det samlede rumfang af fortyndingspufferen.
30 En foretrukken udførelsesform for fremgangsmåden i- følge opfindelsen består i anvendelse af anti-teicoplanin-antiserum som ikke krydsreagerer med vancomycin, avoparcin, ristocetin, antibiotikum A 35512 B, actaplanin, antibiotikum A 41030, antibiotikum A 47934 og de andre antibiotika 35 af vancomycinklassen.
Det foretrukne anvendelsesområde for den foreliggende fremgangsmåde er 10-1000 ng/ml analyt og det mest .10
DK 165075B
foretrukne område er 10-100 ng/ml. Præcisionen (inter as-say precision; CV) er i almindelighed mellem 10 og 15%.
Nøjagtigheden og præcisionen af fremgangsmåden kan forbedres yderligere ved en god forsøgsudformning som sig-5 ter til at bringe fejlene til et minimum/ ved hjælp af kendte statistiske fordelingsmetoder.
Den "analytiske bærer" å<e egnet til anvendelse i såvel manuelle som automatiserede prøveprocedurer. Denne fleksibilitet er af særlig betydning for 10 at tilfredsstillé den endelige brugers behov. Faktisk kan en automatiseret fremgangsmåde være yderst nyttig i klinisk overvågning af mange patienter under behandling, fx til at føre kontrol med den terapeutiske dosis og for at studere lægemidlets fordeling i de biologiske væsker, mens 15 en manuel fremgangsmåde kan være tilstrækkelig til analyse i laboratoriemålestok.
Den foreliggende opfindelse angår også et analyse-!sæt til anvendelse ved udøvelse af fremgangsmåden ifølge opfindelsen til let, hurtig, pålidelig og nøjagtig bestemmelse af en 20 analyt af vancomycinklassen som har den egenskab at kunne binde sig til en "molekylær receptor" repræsenteret af et D-alanyl-D-alanin-dipeptid eller et D-alanyl-D-alanin-karboxyterminalt oligopeptid. Dette analysesæt er ifølge opfindelsen ejendommeligt ved det i krav 6 *s kendetegnende 25 del angivne og kan desuden med fordel være udformet som angivet i krav 7's kendetegnende del.
Som allerede nævnt repræsenteres en foretrukken "analytisk bærer med en overflade som understøttet et D-alanyl-D-alanin-karboxyterminalt oligopeptid konjugeret 30 med en passende makromolekylær bærer med evne til at ad-sorbere til nævnte overflade" (den overtrukne analytiske bærer) af'plastrum (plastic wells) i plader til mikroti-treringer, reagensglas eller plastark overtrukket med fra 0,025 mikrogram til 1 mikrogram og fortrinsvis 0,1-0,2 mi-35 krogram BSA-e-Aca-D-Ala-D-Ala.
11
DK 165075 B
Den mængde antistof, der er specifikt fra analyt-ten i det første antistofpræparat, må overstige mængden af den analyt der skal detekteres. Det repræsenteres af et monoklonealt antistof eller af et polyklonealt antistof, 5 fortrinsvis vundet ved immunisering af kaniner med en hø- -4 jere antistoftiter end 10 på tidspunktet for blødningen.
Det er klart koncentrationen af det "andet” antistofpræparat, dvs. det species-specifikke antistofpræparat, står i relation til koncentrationen af det "første" anti-10 stof som skal bindes til analytten på den bærende faste overflade og bør være i ækvimolært forhold eller i passende overskud.
Det vil forstås for de sagkyndige at ikke blot kan der om ønsket være andre komponenter til stede i reagens-15 sættet såsom pufferopløsningerne, detekteringsmidler etc., men eventuelt kan nogle af sættets komponenter foreligge i særskilt form, men til samme anvendelse.
De følgende eksempler tjener til nærmere belysning af opfindelsen.
Eksempel 1 12
DK 165075B
Fremstilling af BSA-e-ACA-D-Ala-D-Ala a) Konjugering af ε-aminokaproyl-D-alanyl-D-alanin (ε-Aca-D-Ala-D-Ala) til okseserumalbumin (BSA) 5 ε-Aca-D-Ala-D-Ala konjugeres til BSA ved en "to trinsmetode" under anvendelse af glutaraldehyd som det bifunktionelle koblingsreagens: 250 mg BSA opløses i 4,5 ml 0,1 M Na-karbonat/bikarbonat-puffer ved pH 9,5. Der tilsættes 0,5 ml 25%s vandig opløsning af glutaraldehyd og man 10 lader blandingen reagere i 1 time ved stuetemperatur. Reaktionsmassen dialyseres derefter natten over mod 0,9%s NaCl.
125 mg ε-Aca-D-Ala-D-Ala opløses i 0,5 ml 0,5 M Na-karbonatpuffer ved pH 9,5, sættes til den dialyserede 15 reaktionsmasse og omrøres i 6 timer ved stuetemperatur.
Derpå tilsættes der 0,5 ml 1M lysin og blandingen holdes på stuetemperatur i 2 timer for at blokere de ikke-reage-rede aktive grupper. Konjugatet dialyseres derefter mod 0,05 M K-fosfat indeholdende 0,15 M NaCl, pH 7,3.
20 b) Gelfiltrering af konjugatet
For at rense konjugatet fra overskydende ikke-rea-geret materiale eller lavmolekylære biprodukter, føres den 25 på den ovenfor beskrevne måde dialyserede blanding gennem en køleskabskølet "Sephacryl"®S-200 kolonne (kovalent tværbundet'alkyldextran og N,Ν'-metylen-bis-akrylamid med kontrolleret porestørrelse; Pharmacia Fine Chemicals) med en størrelse på 0,8 cm x 100 cm hvorved det bringes i kon-30 takt og elueres med PBS pH 10,4 (strømningshastighed 10 ml/time). Elueringen overvåges spektrofotometrisk ved registrering af transmissionen ved 280 nm. Fraktioner svarende til den top der elueres med kolonnens mellemi^Lims-rumfang forenes (samlet rumfang 15 ml), neutraliseres med 35 1 M HC1 og fortyndes fire gange med PBS pH 7,3. Prøver på 0,5 ml af denne blanding fordeles i ampuller, frysetørres og opbevares ved -80°C.
Eksempel 2 13
DK 165075B
Overtrækning af mikroplader med BSA-s-ACA-D-ALA-D-ALA
En stamopløsning til ugentlig fremstilling af mikroplader fremstilles ved opløsning af en ampuls indhold 5 af frysetørret BSA-s-Aca-D-Ala-D-Ala (blev fremstillet som beskrevet i det foregående eksempel) i PBS pH 7,3 (0,5 ml); denne opløsning kan opbevares i uger uden tab af aktivitet og egner sig derfor til anvendelse som stamopløsning til ugentlige anvendelser.
10 Rummene (wells) af mikroplader ("Falcon"^ Micro- test III, Flexible Assay Plate; Becton Dickinson and Co., Oxnard, California 93030) fyldes med 100 mikroliter pr. rum af en 1/200 fortynding af denne stamopløsning, bortset fra at en lodret række rum (hensigtsmæssigt den sidste), 15 der holdes som en prøve. Disse blindprøverum fyldes med 100 mikroliter PBS pH 7,3. Mikropladerne inkuberes i 3 timer ved stuetemperatur i en tildækket kasse og vaskes derefter fem gange ved tømning og genfyldning med destilleret vand. Der tilsattes 200 mikroliter/rum 3%s BSA i PBS pH 20 7,3 og det henstod til adsorbering i 2 timer ved stuetem peratur for at blokere uovertrukket plastoverflade. Pladerne vaskedes på ny med destilleret vand, rystedes tørre og opbevaredes ved 4°C indtil anvendelsen.
25 Eksempel 3
Fremstilling af anti-teicoplanin-antiserum
Der bruges et teicoplanin-albumin-konjugat (T-BSA) til immunisering af kaniner for at bevirke dannelse af an-2Q ti-teicoplanin-antistoffer.
T-BSA fremstilles ved kobling af 200 mg teicopla-nin til 50 mg BSA under anvendelse af 300 mg l-ætyl-3-(3-metylaminopropyD-karbodiimid-hydroklorid som koblingsmiddel i 5 ml vand ved pH 5,5 ifølge Goodfriend et al. (T.L.
25 Goodfriend, C. Levine og G.D. Fasman, 1964, Science 144, 1344). Det vundne T-BSA dialyseres natten over, frysetørres og suspenderes derefter i en koncentration på 1 mg/ml 14
DK 165075 B
i en fysiologisk opløsning indeholdende 50 rumfangs% af Freunds adjuvant. Fem sunde hvide hun-kaniner af stammen New Zealand får hver subkutant injiceret 1,2 ml af ovennævnte opløsning. Der foretages forstærkningsinjektioner 5 i hver kanin med 0,5 ml af samme antigen-opløsning hver 3. uge i tre måneder. I løbet af denne periode udtages der ugentlig blod fra dyrene og anti-teicoplanin-titere bestemmes ved hjælp af en ELISA-metode med teicoplanin-overtrukne mikroplader under anvendelse af peberrodsper-10 oxidase-mærket gede-antiserum til kanin IgG som den afslørende sonde.
Den ovennævnte ELISA-metode udføres på følgende måde: PVC-mikroplader ("Falcon"® Microtest III Flexible 15 Assay Plate) fyldes med 0,1 ml/rum af en opløsning indeholdende 0,4 g/1 teicoplanin og 58 g/1 NaCl. Mikroplader-ne inkuberes i 3 timer ved 37°C i en tildækket kasse og vaskes derefter tre gange ved tømning og genfyldning med fosfatpufret saltvand pH 7,3 (0,15 M NaCl, 0,05 M natrium-20 fosfat).
En opløsning af BSA (30 g/1) i fosfatpufret saltvand pH 7,3 (0,15 M NaCl, 0,05 M natriumfosfat) indføres i rummene (0,2 ml/rum) og får lov til at adsorbere i 2 timer ved stuetemperatur for at blokere den uovertrukne plast-25 plade. Pladerne vaskes på ny tre gange med fosfatpufret saltvand pH 7,3 (0,15 M NaCl, 0,05 M natriumfosfat) hvorefter dertilsættes kånin-antiserum til testopløsning (0,1 ml/ rum) ved forskellige fortyndinger i logaritmisk skala g (fra 1:10 til 1:10 ) og får lov til at reagere med de sen-30 sitiverede rum i 2 timer ved 37°C. Efter grundig vask med fosfatpufret saltvand pH 7,3 (0,15 M NaCl, 0,05 M natriumfosfat) sættes der et gede-antiserum til kanin-IgG, mærket med peberrodsperoxidase, til rummene (0,1 ml/rum) og får lov til at reagere i 1 time ved 37°C. Efter grundig 35 vask med fosfatpufret saltvand pH 7,3 (0,05 M natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid) indeholdende 0,01 rumfangs% "Tween'® 20, rystes mikropladerne tørre og til hver mikro-titer-rum sættes der 0,2 ml af den peroxidasesubstrat-kro- 15
DK 165075 B
mogene opløsning (1 mg/ml o-fenylendiamin, 5 mM hydrogen-peroxid i 0,1 M natriumcitratpuffer pH 5) til hvert mikro-titerrum.
Man lader farven blive fremkaldt i 30 minutter ved 5 stuetemperatur og farveudviklingen standses ved tilsætning af 4,5 M svolvsyre i en mængde på 0,05 ml pr. rum.
Efter 15 minutter måles absorptionen ved 492 nm. Antistoftiteren udtrykkes som den fortyndingsfaktor der giver 0,2 optiske tæthedsenheder.
10 Når antistoftiteren er mindst 1:10^ er der opnået analytisk effektiv antistofproduktion, og dyrene tømmes helt for blod og det ønskede antiserum udvindes og opbevares ved -20°C indtil brugen.
15 Eksempel 4
Rensning af antiteicoplanin kanin-antiserum på BSA-agarose
Der fremstilles en modificeret matrix ved kobling af 80 mg okseserumalbumin (BSA) med CNBr-aktiveret "Sepha-2o rose"® (10 ml kvældet harpiks) under anvendelse af 0,1 M natriumkarbonatpuffer pH 8,3 som koblingspuffer. Denne BSA-agarosematrix bruges derefter til at fjerne anti-BSA-immunoglobuliner fra det antiserum,der er vundet i henhold til det foregående eksempel 3 ved portionsvis adsorptions-25 kromatografering ved at 2 ml af nævnte kanin-antiserum bringes i kontakt med den sedimenterede BSA-agarosematrix. Denne blanding får lov til at stå i kontakt i 1 time ved stuetemperatur og udhældes derefter på et glasfilter under vask tre gange med 6 ml fosfatpufret saltopløsning pH 7,3 (0,05 2Q M natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid) indeholdende 3% v/r (vægt/rumfang, dvs. forhold mellem fast stof og væske som mellem gram og ml) BSA og 0,05 rumfangs% "Tween"® 20. Det udvundne filtrat svarer til en tiganges opløsning af det oprindelige antiserum, hvorfra anti-BSA-antistofferne er 25 blevet fjernet.
16
DK 165075 B
Eksempel 5
Bestemmelse af teicoplaninholdige opløsninger
Der fremstilles en standardkurve ved scalære fortyndinger af teicoplanin til koncentrationer på fra 0,001 5 til 1 mikrogram/ml i fosfatpufret saltvand pH 7,3 (0,05 M natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid) indeholdende 3% v/r BSA og 0,05 rumfangs% "Tween"® 20 (0,1 ml). Af disse opløsninger såvel som af de prøver der er blevet fortyndet ti gange i serumpufferen sættes der særskilt in triplo til 10 rummene i BSA-s-Aca-D-Ala-D-Ala-overtrukne fleksible plader tilberedt i overensstemmelse med den i foran stående eksempel 2 beskrevne fremgangsmåde. Opløsningen med den højeste koncentration sættes også til "blindrummene" (dvs. de rum som ikke er overtrukket med den specifikke D-Ala-15 D-Ala-binder) for at bedømme den uspecifikke binding. Hver af mikropladerne inkuberes derefter i 2 timer ved stuetemperatur i en fugtig, dækket kasse og vaskes otte gange ved tømning og genfyldning med fosfatpufret saltopløsning pH 7,3 (0,05 M natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid inde-20 holdende 0,05 rumfangs% "Tween'® 20) og rystes tør.
Renset kanin-antiserum mod teicoplanin, tilberedt i overensstemmelse med foran stående eksempler 3 og 4, fortyndes derefter 50 gange med fosfatpufret saltopløsning (0,05 M natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid, pH 7,3, inde-25 holdende 3% v/r BSA og 0,05% rumfangs% "Tween1® 20); 100 mikroliter af denne opløsning sættes til hver rum og får lov til at reagere i 1 time ved stuetemperatur. Efter vask otte gange med fosfatpufret saltopløsning pH 7,3 (0,05 M natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid indeholdende 0,05 rum-30 fangs% "Tween20) og rystning til tørhed som beskrevet ovenfor, sættes der til hvert rum 100 mikroliter af en 1 til 500 ganges fortynding i fosfatpufret saltopløsning af peberrodsperoxidase-konjugeret gede-antiserum til kanin-IgG (Bionetics Inc.), og det hele henstår i 1 time ved 35 stuetemperatur. Derefter vaskes hvert rum på ny med fosfatpufret saltopløsning pH 7,3 (0,05 M natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid indeholdnde 0,05 rumfangs% "Tween® 20),
DK 165075B
17 og der rystes til tørhed som beskrevet ovenfor hvorpå der til hvert rum sættes 200 mikroliter/rum af en opløsning af peroxidase-kromogent substrat (1 mg/ml o-fenylen-diamin, 5 mM hydrogenperoxid i 0,1 M natriumcitratpuffer, 5 pH 5), og man lader farven blive fremkaldt i 30 minutter ved stuetemperatur. Farveudviklingsreaktionen standses derefter ved tilsætning af 4,5 M svovlsyre i en mængde på 50 mikroliter/rum og efter 15 minutter måles absorptionen ved-492 nm i et "Titertek'® Multiscan-fotometer (Flow Lab. Inc.). 10 Der opnås bindingskurver ved at man stiller værdierne for absorptionen op som en funktion af koncentrationen af tei-coplanin på et semi-log papir. Der opnås en dosis-respons-kurve med teicoplanin i området fra 0,01 mikrogram/ml til 1 mikrogram/ml, og koncentrationen i prøven bestemmes ved 15 interpolation på standardkurven.
Den gentagne bestemmelse af opløsninger indeholdende kendte mængder teicoplanin på den ovenfor beskrevne måde viser at denne metode tilfredsstiller de analytiske fordringer med hensyn til følsomhed, præcision og nøjagtighed.
20 Der blev ikke iagttaget nogen binding ved gentagel se af den foran beskrevne metode under anvendelse af opløsninger af avoparcin, ristocetin, actaplanin, antibiotikum A 35512 B, antibiotikum A 41030, antibiotikum A 47934 og vancomycin.
25
Eksempel 6
Bestemmelse af teicoplanin indeholdende serumprøver
Der fremstilles en standardkurve med scalære for-30 tyndinger af teicoplanin i koncentrationer på fra 0,001 til 1 mikrogram/ml i fosfatpufret saltopløsning pH 7,3 (0,05 M natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid) indeholdende 3% v/r BSA, 0,05 rumfangs% "Tween,,w 20 og 20% menneskeserum.
35 Prøverne fortyndes 5 gange i serumpufferen og 0,1 ml af disse opløsninger sættes in triplo til rummene i BSA-ε-ACA-D-Ala-D-Ala-overtrukne fleksible plader fremstillet i overensstemmelse med den i foranstående eksempel 2 be- 18
DK 165075 B
skrevne fremgangsmåde. Opløsningen med den højeste koncentration sættes også til "blindrummene" (dvs. de rum som ikke er overtrukket med den specifikke binder D-Ala-D-Ala) for at bedømme den uspecifikke binding. Hver af mikropla-5 derne indkuberes derefter i 2 timer ved stuetemperatur i en fugtig dækket kasse og vaskes otte gange ved tømning og genfyldning med fosfatpufret saltopløsning pH 7,3 (0,05 M
natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid indeholdende 0,05 rum- <S) fangs% "Tween 20) og rystes tør.
10 Renset kanin-antiserum mod teicoplanin, fremstil let i overensstemmelse med foranstående eksempler 3 og 4, fortyndes derefter 50 gange med fosfatpufret saltopløsning (0,05 M natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid, pH 7,3, indeholdende 3% v/r BSA, 0,05 rumfangs% "Tween20 og 20% 15 menneskeserum).
100 Mikroliter af denne opløsning sættes til hvert rum og får lov til at reagere i 1 time ved stuetemperatur.
Efter vask otte gange med fosfatpufret saltopløsning pH 7,3 (0,05 M natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid indeholdende Æ) 20 0,05 rurafangs% "Tween20) og rystning til tørhed som be skrevet foran, sættes der til hvert rum 100 mikroliter af en 1 til 500 ganges fortynding, i fosfatpufret saltopløsning indeholdende 20% menneskeserum, af peberrodsperoxida-se-konjugeret gede-antiserum mod kanin-IgG (Bionetics Inc.), 25 og det hele henstår i 1 time ved stuetemperatur. Derpå vaskes hvert af rummene på ny med fosfatpufret saltopløsning pH 7,3 (0,05 M natriumfosfat, 0,15 M natriumklorid in-deholdende 0,05 rumfangs% "Tween,My 20) og rystes tør som beskrevet ovenfor, og til hvert rum sættes der 200 mikro-30 liter/rum af en opløsning af peroxidase-kromogent substrat (1 mg/ml o-fenylendiamin, 5 mM hydrogenperoxid i 0,1 M na-triumcitratpuffer, pH 5), og man lader farven fremkalde i 30 minutter ved stuetemperatur. Farveudviklingsreaktionen standses derefter ved tilsætning af 4,5 M svovlsyre i en 35 mængde på 50 mikroliter/rum og efter 15 minutter måles absorptionen ved 492 nm i et "Titertek"® Multiscan-fotome-ter. Der opnås bindingskurver ved at man opstiller værdierne for absorptionen som en funktion af koncentrationen 19
DK 165075 B
af teicoplanin på et semi-log papir. Der opnås en dosis-respons-kurve med teicoplanin i området 0,01 mikrogram/ ml til 1 mikrogram/ml, og koncentrationen i prøven bestemmes ved interpolation på standardkuven.
5 Den gentagne bestemmelse af opløsninger indeholden de kendte mængder teicoplanin på den ovenfor beskrevne måde viser at denne metode tilfredsstiller de analytiske fordringer med hensyn til følsomhed, præcision og nøjagtighed.
10 I det ovenfor eksemplificerede tilfælde opnås der følgende resultater, der også gælder alment for enhver anvendelse af fremgangsmåden ifølge opfindelsen:
Anvendelsesområde (på basis af gentagne forsøg): 15 fra 10 ng/ml foretrukket anvendelsesområde fra 10 ng/ml til 1 mg/1 teicoplanin.
Præcision: 20 - inden for den enkelte bestemmelse: CV% lig med 10,5 - mellem prøverne: CV% lig med 13,2.
Der . iagttoges ingen binding ved gentagelse af den ovenfor beskrevne metode og anvendelse af opløsninger af 25 avoparcin, ristocetin, actaplanin, antibiotikum A 35512 B, antibiotikum A 41030, antibiotikum A 47934 og vancomycin.
Under anvendelse af i det væsentlige samme fremgangsmåde som beskrevet i eksempel 6 på pus, bronkial ekspekto-30 rater og forbrændte hudprøver fra patienter behandlet med teicoplanin, er koncentrationen af dette antibiotiske stof bestemt efter homogenisering af prøven i den 20%s serumpuf ret opløsning som er beskrevet i ovenstående eksempel. Metoden opretholdte også på disse prøver samme niveau med 35 hensyn til følsomhed, nøjagtighed og præcision som er rapporteret ovenfor.

Claims (8)

1. Fremgangsmåde til bestemmelse af en analyt som 10 er et antibiotikum af vancomycinklassen og binder sig til en molekylær receptor repræsenteret af et D-alanyl-D-alanin-dipeptid eller et D-alanyl-D-alanin-karboxy-terminalt oligopeptid, kendetegnet ved at man 15 bringer en testopløsning i kontakt med en overflade som understøtter et D-alanyl-D-alanin-karboxtermi-nalt oligopeptid, fortrinsvis ε-aminokaproyl-D-ala-nyl-D-alanin, konjugeret med en passende makromole-kylær bærer, fortrinsvis et protein, især et albu-20 min, med evne til at adsorbere til nævnte overflade, efter skylning tilsætter, antistoffer som er specifikt rettet mod det stof som skal detekteres, og afslører disse antistoffer bundet til antigenet på den stationære fase ved hjælp af et antispeci-25 fikt anti-igG-antistof rettet mod disse bundne antistoffer (anti-antistof-antiserum) koblet til en detekterbar markør.
2. Fremgangsmåde ifølge krav 1, kendetegnet ved at analytten er udvalgt blandt vancomycin, teicoplanin, 30 actaplanin, ristocetin, avoparcin, actinoidin, antibiotikum LIr-AM-374, antibiotikum A 477, antibiotikum OA 7653, antibiotikum A 35512 B, antibiotikum A 515668, antibiotikum AAD 216, antibiotikum A 41030, antibiotikum A 47934 eller en individuel faktor, et derivat eller en aglycon deraf, for-35 trinsvis teicoplanin eller en individuel faktor, et derivat eller en aglycon deraf. DK 165075 B
3. Fremgangsmåde ifølge krav 1, kendetegnet ved at bæresubstratet er rum i mikrotiterplader eller reagensglas eller plastark, fortrinsvis rum i polyætylen- eller polystyren-mikrotiterplader. 5
4 .Fremgangsmåde ifølge krav 1, kendetegnet ved at det specifikke antistof er et kanin-antistof og at det arts-specifikke-anti-antistof-antiserum er et gede-antiserum mod kanin-IgG.
5. Fremgangsmåde ifølge krav 1, kendetegnet 10 ved at det specifikke antistof er et monoklonealt antistof som ikke svækker bindingen af analytten til den adsorbere-de molekylære receptor.
6. Analysesæt til anvendelse ved den i krav 1 angivne fremgangsmåde, kendetegnet ved at det indehol- 15 der a) en analytisk bærer hvor en overflade understøtter et D-alanyl-D-alanin-karboxyterminalt oligopeptid, fortrinsvis ε-aminokaproyl-D-alanyl-D-alanin, kon- 20 -jugeret med en makromolekylær bærer, fortrinsvis et protein og navnlig albumin, med evne til at adsor-bere på nævnte overflade, og b) et antistofpræparat indeholdende antistoffer specifikt rettet mod den analyt som er det stof der skal 25 detekteres, og eventuelt
7. Analysesæt ifølge krav 6, kendetegnet ved at det tillige indeholder c) et arts-specifikt anti-antistof-præparat indeholdende antistoffer specifikt rettet mod immunoglobu- 30 liner hos den dyreart hvorfra de "første" antistof fer rettet mod analyttens stammer og som er koblet med en detekterbar markør.
8. Analysesæt ifølge krav 6, kendetegnet ved at den analytiske bærer er rummene i mikrotiterplader, 35 reagensglas, eller plastark, fortrinsvis rummene i polyætylen- eller polystyren-mikrotiterplader.
DK429386A 1985-09-10 1986-09-09 Fremgangsmaade til bestemmelse af en analyt som er et antibiotikum af vancomycinklassen og som binder sig til en molekylaer receptor repraesenteret af et d-alanyl-d-alanin-dipeptid eller et d-alanyl-d-alanin-karboxyterminalt oligopeptid, samt analysesaet til anvendelse ved fremgangsmaaden DK165075C (da)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB8522388 1985-09-10
GB858522388A GB8522388D0 (en) 1985-09-10 1985-09-10 Receptor-antibody sandwich assay

Publications (4)

Publication Number Publication Date
DK429386D0 DK429386D0 (da) 1986-09-09
DK429386A DK429386A (da) 1987-03-11
DK165075B true DK165075B (da) 1992-10-05
DK165075C DK165075C (da) 1993-02-22

Family

ID=10584952

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DK429386A DK165075C (da) 1985-09-10 1986-09-09 Fremgangsmaade til bestemmelse af en analyt som er et antibiotikum af vancomycinklassen og som binder sig til en molekylaer receptor repraesenteret af et d-alanyl-d-alanin-dipeptid eller et d-alanyl-d-alanin-karboxyterminalt oligopeptid, samt analysesaet til anvendelse ved fremgangsmaaden

Country Status (20)

Country Link
EP (1) EP0221282B1 (da)
JP (1) JPS6271860A (da)
KR (1) KR870003386A (da)
CN (1) CN86105930A (da)
AT (1) ATE64997T1 (da)
AU (1) AU600446B2 (da)
CA (1) CA1276880C (da)
DE (1) DE3680072D1 (da)
DK (1) DK165075C (da)
ES (1) ES2001636A6 (da)
FI (1) FI82987C (da)
GB (1) GB8522388D0 (da)
GR (1) GR862271B (da)
HU (1) HU201608B (da)
IL (1) IL79924A0 (da)
NO (1) NO167421C (da)
NZ (1) NZ217502A (da)
PH (1) PH26235A (da)
PT (1) PT83299B (da)
ZA (1) ZA866643B (da)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5198340A (en) * 1991-01-17 1993-03-30 Genentech, Inc. Assay for free igf-i, igf-ii, and gh levels in body fluids
JP3879866B2 (ja) * 1995-04-04 2007-02-14 アボット・ラボラトリーズ 生物体液中のバンコマイシンの検出および定量化用試薬および方法
US6797479B2 (en) 1995-04-04 2004-09-28 Abbott Laboratories Reagents and methods for the detection and quantification of vancomycin in biological fluids
KR100505783B1 (ko) * 2001-12-27 2005-08-03 근화제약주식회사 항생제 테이코플라닌의 면역분석 방법
EP1806150A1 (en) * 2006-01-05 2007-07-11 NEED PHARMA S.r.l. Teicoplanin composition
US10627393B2 (en) 2012-07-31 2020-04-21 Sekisui Medical Co., Ltd. Latex agglutination inhibition immunoassay
WO2020171158A1 (ja) * 2019-02-20 2020-08-27 株式会社パートナーファーム 固相反応チップ及びこれを用いた測定方法
CN116396401B (zh) * 2023-03-07 2025-09-26 浙江准策生物技术有限公司 替考拉宁完全抗原和抗体及其制备方法和应用

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4034074A (en) * 1974-09-19 1977-07-05 The Board Of Trustees Of Leland Stanford Junior University Universal reagent 2-site immunoradiometric assay using labelled anti (IgG)
US4410634A (en) * 1979-10-26 1983-10-18 Dynasciences Corporation Method of passively adsorbing immuno-reactive haptens to solid phases
US4606855A (en) * 1982-07-26 1986-08-19 Mex Research Associates C/O Leon Reimer Monoclonal antibody to digoxin
US4558009A (en) * 1982-12-20 1985-12-10 Eli Lilly And Company Process for producing antibiotic A-51568 by fermentation and microorganism
GB8311136D0 (en) * 1983-04-25 1983-06-02 Lepetit Spa Immobilised oligopeptides
GB8427436D0 (en) * 1984-10-30 1984-12-05 Lepetit Spa Receptor assay

Also Published As

Publication number Publication date
FI82987B (fi) 1991-01-31
NO167421B (no) 1991-07-22
EP0221282A3 (en) 1987-08-05
ATE64997T1 (de) 1991-07-15
HUT41904A (en) 1987-05-28
CA1276880C (en) 1990-11-27
ES2001636A6 (es) 1988-06-01
IL79924A0 (en) 1986-12-31
NO863493D0 (no) 1986-09-01
NO167421C (no) 1991-10-30
DK165075C (da) 1993-02-22
CN86105930A (zh) 1987-03-11
NZ217502A (en) 1989-08-29
DK429386A (da) 1987-03-11
HU201608B (en) 1990-11-28
PT83299B (pt) 1988-07-29
EP0221282A2 (en) 1987-05-13
PH26235A (en) 1992-04-01
AU600446B2 (en) 1990-08-16
GB8522388D0 (en) 1985-10-16
FI863637A0 (fi) 1986-09-10
DE3680072D1 (de) 1991-08-08
DK429386D0 (da) 1986-09-09
ZA866643B (en) 1987-04-29
AU6232186A (en) 1987-03-12
GR862271B (en) 1986-12-31
PT83299A (pt) 1986-10-01
FI863637L (fi) 1987-03-11
KR870003386A (ko) 1987-04-17
JPS6271860A (ja) 1987-04-02
NO863493L (no) 1987-03-11
EP0221282B1 (en) 1991-07-03
FI82987C (fi) 1991-05-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4410660A (en) Binding assay for the detection of mycobacteria
US4239743A (en) Carrier-bound immunoglobulin fission product and its use in immunologic analyses
US4575484A (en) Binding assay for the detection of mycobacteria
US20070184504A1 (en) Assay for anti-INGAP antibodies
US4489158A (en) Binding assay for the detection of mycobacteria
EP0221282B1 (en) Receptor-antibody sandwich assay
WO1996030494A1 (en) Method of purification of clostridium difficile toxin a and production of mono-specific antibodies
EP0514509B1 (en) Composition and its preparation process using antigen conjugated to enzymatic activity for immunological diagnosis and chagas&#39; disease immunological diagnosis kits, for individual and epidemiological application, based on that composition
US5525476A (en) Immunoassay, monoclonal antibody, and hybridoma
US7179611B2 (en) Mono-specific polyclonal antibodies and methods for detecting Clostridium difficile Toxin A
US5958785A (en) Detection of a carbohydrate biomarker directly associated with chronic alcoholism
JPWO1993003365A1 (ja) 下痢性貝毒に特異的なモノクローナル抗体、ハイブリドーマ及び下痢性貝毒の検出方法
WO1991019982A1 (en) Determination of polypeptides and proteins in solutions and biological fluids
EP0184615B1 (en) Solid phase receptor assay for antibiotics of the vancomycin class
FI104219B (fi) Diagnostinen menetelmä ja testaustarvikesarja multippeliskleroosin määrittämiseksi
AU2007244153B2 (en) Prostasin partial peptide and anti-prostasin antibody
JPH0688824A (ja) 黄色ブドウ球菌感染の検査方法
LAURITZEN et al. Dot immunobinding (DIB), enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), and radioimmunoassay (RIA) for detecting peptide antigens and specific antibodies
CN119246855A (zh) 一种检测尿液中梅毒螺旋体抗体的试剂盒及其制备方法
MILIUKIENĖ et al. Dot-immunoperoxidase assay for the demonstration of soluble Fcg receptors
JPH032564A (ja) 生物学的活性タンパク質の新規定量方法
JPH05296999A (ja) グルココルチコイドの効果判定マーカーとしてのヒトリポコルチンi及びその定量法

Legal Events

Date Code Title Description
PBP Patent lapsed