EP4133098A1 - Recherche de resistance aux antimicrobiens par la methode de fractionnement par couplage flux-force - Google Patents

Recherche de resistance aux antimicrobiens par la methode de fractionnement par couplage flux-force

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EP4133098A1
EP4133098A1 EP21722295.9A EP21722295A EP4133098A1 EP 4133098 A1 EP4133098 A1 EP 4133098A1 EP 21722295 A EP21722295 A EP 21722295A EP 4133098 A1 EP4133098 A1 EP 4133098A1
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EP
European Patent Office
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antimicrobial
microorganism
resistance
determining
vis
Prior art date
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Pending
Application number
EP21722295.9A
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German (de)
English (en)
Inventor
Serge Battu
Gaëlle BÉGAUD
Sylvie DELABASSÉE
Olivier Barraud
Raphaël DUVAL
Philippe Cardot
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Universite de Limoges
Original Assignee
Universite de Limoges
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Publication date
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Pending legal-status Critical Current

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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
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    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/18—Testing for antimicrobial activity of a material
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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    • C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • C12Q1/06—Quantitative determination

Definitions

  • the invention relates to the field of biological diagnostics, in particular biomedical diagnostics in the context of researching resistance to antimicrobial agents.
  • the current problem which is worldwide, mainly concerns Gram-negative bacteria such as Enterobacteriaceae, Pseudomonas aeruginosa or Acinetobacter baumannii , even if problems remain with regard to certain Gram-positive bacteria such as Staphylococcus , Enterococcus , etc.
  • the present inventors propose to use the technique of Fractionation by Flux-Force coupling (Field Flow Fractionation or FFF) developed in the late 1960s by J.C. Giddings.
  • FFF Field Flow Fractionation
  • This method is often presented as one of the most versatile separation methods. Indeed, the great variety of usable fields (hydrodynamics, gravity, electric, magnetic, ...), of instrumental configurations, of elution modes, allow to consider an infinity of experimental conditions to be implemented for sorting, separation. and the characterization of polymers, powders, emulsions, colloids, nanoparticles or bioparticles: macromolecules, viruses, organelles and cells whose size varies between 10 nm and 100 ⁇ m.
  • SdFFF uses a multigravitational field and remains one of the most widely used FFF methods.
  • This method has a high sensitivity in terms of change in size, density, shape or deformability of the analyzed objects, and allows early recording of metabolic changes in the cell population without specific preparation of the analyzed sample. It is thus possible, by simple comparison of elution profiles or fractograms, to demonstrate a metabolic modification between an untreated control analytical sample and an analytical sample subjected to the biological event.
  • a subject of the present invention is thus a method for determining the resistance of a microorganism to at least one antimicrobial, characterized in that the method comprises the steps of:
  • the constituent microorganism of the microbial population can be any one selected from bacteria, fungi, yeasts, protozoa.
  • the invention is not limited to a given resistance mechanism, nor to a given species of microorganism. It does not require a heavy inoculum but an inoculum comparable to that used by the usual methods in bacteriology.
  • the antimicrobial can be any one selected from antibiotics, antifungals, antiparasitic agents.
  • the microorganism is a bacterium.
  • bacterium is understood to mean any type of bacterium, whether of the Gram-negative type or of the Gram-positive type.
  • the antimicrobial is an antibiotic.
  • antibiotic means a natural or synthetic organic substance which exerts its action on bacteria by destroying them (bactericidal effect) or by inhibiting their growth and multiplication (bacteriostatic effect).
  • the microbial population can be derived from a biological sample.
  • the biological sample can also be of human or animal origin; it can also be of environmental origin.
  • the biological sample may be a sample of urine, stool, sputum, pus, cerebrospinal fluid, blood or the like.
  • the biological sample can be a reference strain.
  • reference strain is understood to mean an isolated strain of microorganisms whose characters have been studied and which is kept over a long period in a bank of reference strains.
  • biological samples within the meaning of the present invention.
  • the microbial population as understood in the present invention can thus be a microbial suspension obtained from a mixture of visually identical colonies isolated from a biological sample.
  • This suspension is then incubated in the presence of antimicrobials of various kinds at different concentrations (treated) or incubated for the same duration in the absence of antimicrobial (control). These samples are the “analytical samples” which will be eluted in the flow-force coupling fractionation device.
  • the incubation step with the antimicrobial may have a duration ranging from 30 to 120 minutes, preferably from 30 to 60 minutes.
  • the incubation step with the antimicrobial is performed in a liquid culture medium.
  • the flow-force coupling fractionation device used in the method of the invention can be a flow-force coupling fractionation device of multigravitational or centrifugal, hydrodynamic, dielectrophoretic (DEP), electrical, magnetic, thermal, or other type. any other type of suitable flow-force coupling fractionation device.
  • DEP dielectrophoretic
  • FFF hydrodynamic FFF
  • asymmetrical channel or asymmetric (Asymetrical Flow FFF) and where only the accumulation wall consists of a semi-permeable membrane.
  • Magnetic FFF Magnetic FFF
  • the flow-force coupling fractionation device is a multigravitational type flow-force coupling fractionation device.
  • the non-retained species correspond to molecules originating from the culture medium, to biological or cellular debris, etc., which will absorb the UV signal from the detector, but which are not sensitive to the field used.
  • molecules of size less than ⁇ m do not undergo the effect of the field: they are therefore not retained. They move through the system at the same speed as the mobile phase, that is, the liquid vector in the device.
  • this is the time required for the mobile phase to travel through the flow-force coupling fractionation device from the injection system (valve Rheodyne® type) to the detector (UV-Vis spectrophotometer type) through the tubes and the separation channel inserted in the centrifugation bowl.
  • the “threshold of significance” is the threshold above which the microbial population is considered to be susceptible or resistant to the antimicrobial. Its value is defined for each microorganism / antimicrobial pair, as a function of the usual active doses of this antimicrobial. The values will be referenced in a dedicated database.
  • the micro-organism is considered to be resistant. If the measured value of P ⁇ R> at the significance level, then the micro-organism is considered to be sensitive.
  • the degree of sensitivity of the detection method makes it possible to demonstrate “sensitive” and “resistant” profiles to an antimicrobial.
  • P ⁇ R present for reference strains of E. coli the following values:
  • kits one or more solutions for cleaning and decontaminating the components in order to reduce the ecological impact and allow their reuse. It is envisioned that at least two sets of rolling kits can be used, one in use, the other in cleaning and decontamination. Also, used kits can be recovered by the manufacturer to ensure their recycling and reconditioning, always with a view to reducing the ecological and economic impact.
  • separation channel means the flow channel to which an external field of variable nature is applied depending on the type of FFF used and in which the analyzed microorganisms circulate.
  • the walls of the separation channel vary depending on the type of FFF.
  • the walls are non-permeable and rigid. This type of wall is shared with the MgFFF.
  • the walls are non-permeable plates which are heated to different temperatures.
  • the ElFFF these are electrodes.
  • at least one of the two walls is a wall associated with a semi-permeable membrane and consists of a frit.
  • rotary joints is understood to mean the device which allows the passage of the mobile phase and the samples at the inlet and at the outlet of the separation channel from a fixed reference frame (namely mobile phase pump, sample injector, detector. sample) to a rotating frame (the separation channel). This passage must be done without leakage of liquid and therefore of risk of dispersion of the sample, and the potential contamination of the operator.
  • Rotary joints are strategic parts in a SdFFF device.
  • tubing is meant the pipes bringing the samples from the sample injector to the separation channel as well as those bringing the separated species from the separation channel to the detector.
  • the detector differs depending on the type of FFF technique.
  • the most commonly used is a UV-Vis spectrophotometer type detector allowing the measurement of the variation in absorbance over time.
  • the present invention relates in particular to a kit for determining the resistance of a bacterial population to an antibiotic by a SdFFF fractionation technique comprising:
  • Example 2 represents the analytical scheme for measuring resistance to an antibiotic according to the implementation of Example 2.
  • the strain is very sensitive to the antimicrobial.
  • the strain is resistant to the antimicrobial.
  • the elution profiles of the reference strain E.coli ATCC EC 25922, incubated in the absence (control) or in the presence of increasing doses of ampicillin ( 4 or 8 mg / mL), then it can be seen that, unlike the strain E.coli ATCC EC 35218, E.coli 25922 is sensitive to ampicillin. Indeed, the retention times (tr) for the control conditions (on average 2.66 min) and treated with 4 mg / mL of ampicillin (2.36 min on average) allowing Robs' calculations for the control (0.362 ) and the treated samples (0.408 for 4 mg / ml), which corresponds to a percentage variation of the retention factor P ⁇ R 12.70; 10% can be considered as the significance threshold. At this concentration, the strain is sensitive to the antimicrobial.
  • the flow-force coupling fractionation device is established in accordance with patent EP1679124.
  • the device comprises an injection system where the sample is taken care of, the tubing bringing the sample from the injector to the separation channel, via a first rotating joint, the separation channel contained in a centrifugation bowl of which the rotation is ensured by an electric motor itself controlled manually or via a suitable computer device, thus allowing the control of the intensity of the multigravitational field, the tubing bringing the separated species from the channel to the detector, via the second rotating joint, and finally the detector.
  • Bacterial strains used E.coli 25922 and 35218 (ATCC, Manassas, VA, USA).
  • Antibiotics Ampicillin (Sigma-Aldrich, Saint-Quentin-Fallavier, France, ref. 21442020), Kanamycin (MP Biomedical, Illkirch FRANCE, ref. 150020) Chlortetracycline (Sigma-Aldrich, Saint-Quentin-Fallavier, France, Ref 17776) .
  • MH Mueller-Hinton
  • the culture medium was centrifuged and then taken up in a volume of 0.5 mL of PBS.
  • Table 1 Results of the analysis of the fractograms according to the experiment shown in Figures 5A and 5B: calculation of the P ⁇ R allowing, by comparison with the significance threshold, set at 10% for these strains and this antibiotic, the determination of the resistance of E.coli strains 25922 and 35218 with respect to Ampicilin
  • Example 1 Results of tests of resistance of the strain E.coli ATCC 25922 to various molecules by means of the SdFFF according to the present invention.
  • the SdFFF elution conditions were adapted from those commonly used in cell sorting practices for eukaryotic cells.
  • the direct introduction of the sample in the direction opposite to the gravity field, allowing a rapid relaxation of the species in the effective flow lines for their separation is here optimized by a short additional stop-flow step, due to the small sizes ( ⁇ 2 ⁇ m) of the species to be separated.
  • the detection method of the present invention allows a quantitative, dose-dependent response, which is complementary to its qualitative dimension, namely the measurement of the threshold of significance of resistance vs. antimicrobial sensitivity.
  • the sensitivity of the detection process depends on the ability of the FFF apparatus to record changes in retention depending on the concentration of antimicrobial used.
  • Example 2 A new analysis protocol was established according to the , faithful to the clinical implementation of conventional antibiograms, making it possible to reduce the obtaining of test results to 26 hours after collection / isolation.
  • an antibiogram is carried out using bacterial colonies obtained from a biological sample.
  • the time to obtain these colonies is on average 16-24 hours, but it can sometimes be shorter, in the order of 10-12 hours depending on the bacterial species.
  • These colonies are then resuspended in liquid medium and incubated for 16-24 hours with different antibiotics according to the recommendations of the CA-SFM (Committee of the Antibiogram of the French Society of Microbiology) in force.
  • the difference in behavior of the bacterial strain is demonstrated by measuring R obs , calculating the P ⁇ R and comparing it with thresholds of significance making it possible to indicate the sensitivity or resistance of the bacterial strain to the action. bactericidal or bacteriostatic of the tested antibiotic.
  • Antimicrobial resistance is measured by comparing P ⁇ R to the significance level, P ⁇ R is expressed according to the following formula:
  • the inventive nature of the present invention lies in the simplicity and speed of its implementation.
  • the method has the advantage of allowing the automation of the steps, from the automatic injection of the samples into the device until the result in terms of sensitive / resistant is obtained.
  • the simplicity and speed of the method of the invention is based on the fact that it is completely devoid of pre-treatment of the sample to be eluted, resulting in faster results.
  • the method of the invention further has an aspect of universality and is applicable to any type of microorganism, namely bacteria, fungi, yeasts, protozoa. It is not necessary to first identify a specific antigen that should allow the separation of microbial populations as required with flow cytometry.

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Abstract

La présente invention concerne un procédé de détermination de la résistance d'un microorganisme vis-à-vis d'au moins un antimicrobien à l'aide d'un dispositif de fractionnement par couplage flux-force. Elle comprend également l'utilisation d'un dispositif de fractionnement par couplage flux-force selon ledit procédé, ainsi qu'un kit pour la détermination de la résistance d'un microorganisme vis-à-vis d'au moins un antimicrobien par une technique de fractionnement par couplage flux-force.

Description

    Recherche de résistance aux antimicrobiens par la méthode de Fractionnement par Couplage Flux-Force
  • L'invention concerne le domaine du diagnostic biologique, en particulier le diagnostic biomédical dans le cadre de la recherche de la résistance aux agents antimicrobiens.
  • Diverses méthodes sont actuellement mises en œuvre pour la détermination du niveau de sensibilité ou de résistance de micro-organismes isolés et identifiés à partir de prélèvements de différentes natures (urines, selles, expectorations, pus, liquides céphalo-rachidiens, sang, etc…). La méthode de référence est la dilution en milieu liquide, mais il existe d'autres méthodes plus ou moins automatisées et utilisées dans les laboratoires de biologie médicale, telles que la microdilution en milieu liquide, la diffusion en milieu gélosé (méthode des disques) ou encore la technique des « E-tests ». Pour les deux dernières méthodes citées, les contraintes de temps liées aux vitesses de croissance des bactéries font qu’un antibiogramme réalisé un jour donné ne voit son résultat rendu que le lendemain après 16 à 24 heures d’incubation. Pour l’antibiogramme par microdilution en milieu liquide, il faut tout de même compter une dizaine d’heures en moyenne avant l’obtention du résultat.
  • Ces méthodes de détermination des profils de sensibilité/résistance aux antimicrobiens constituent des outils diagnostics essentiels pour la prise en charge des patients en médecine humaine ou vétérinaire. En effet, la prescription de molécules ciblées permet un traitement efficace de l'infection tout en limitant l'émergence de souches résistantes liée au mésusage des antimicrobiens et notamment des antibiotiques. Les prescriptions abusives et inutiles, les prescriptions de molécules insuffisamment efficaces, les mauvaises observances des patients, les automédications contribuent toutes à l'émergence de souches résistantes.
  • Il devient primordial dans le contexte actuel de l'augmentation de la résistance aux antibiotiques, de l'émergence de nouvelles résistances, couplées à un nombre très réduit de nouveau antimicrobiens mis sur le marché et au manque d'alternatives thérapeutiques (peptides antimicrobiens, anticorps, phages, phytothérapie, quorum quenching, nano-particules...) de proposer une nouvelle méthode sensible, rapide et efficace de détermination de la résistance de micro-organismes aux antimicrobiens.
  • La problématique actuelle, qui est à l’échelle mondiale, concerne principalement les bactéries à Gram négatif telles que les entérobactéries, Pseudomonas aeruginosa ou encore Acinetobacter baumannii, même si des problématiques demeurent pour ce qui concerne certaines bactéries à Gram positif comme Staphylococcus, Enterococcus, etc.
  • Actuellement, les méthodes mises en jeu dans la réalisation des antibiogrammes permettent une réponse fiable en moyenne 36-48 heures post-prélèvement. Ce délai impose au clinicien de choisir de façon transitoire une antibiothérapie dite probabiliste, à l'aide d'un antibiotique généralement à large spectre, selon des protocoles préétablis. Ce délai est un élément crucial dans le cadre de pathologies aiguës à prise en charge hospitalière, et peut engager le pronostic vital du patient. Le développement de nouvelles méthodes de réalisation des antibiogrammes visant à réduire le délai de 12-24 heures existant entre l'isolement/l'identification de la bactérie et le rendu du test de l’antibiogramme devient un enjeu majeur de santé publique.
  • D'un point de vue économique, avec les techniques actuelles, beaucoup de consommables sont utilisés : cartes avec des antibiotiques lyophilisés, disques d’antibiotiques, boîtes de Pétri, et mettent en jeu une grande quantité de plastique et une gestion complexe des réactifs (date de péremption des antibiotiques, boîtes de Pétri, gestion des déchets, réactovigilance…). L’invention proposée ici ne fait appel qu’à peu de consommables livrables sous forme d’un kit.
  • C'est donc dans un contexte d'optimisation de l'efficacité et de la précocité de l'antibiothérapie que la recherche de méthodes réduisant le temps d'analyse de la souche pathogène devient primordiale. Par le développement conjoint de prototypes et de méthodologies de fractionnement par couplage flux-force de sédimentation (SdFFF) adaptés au tri cellulaire bactérien, et par l'établissement d'une preuve de concept robuste, il est désormais possible aux présents inventeurs de proposer un nouveau procédé d'antibiogramme permettant de réduire à 24 heures maximum le rendu de résultat au clinicien après la prise en charge du patient. Cette réduction du temps d'obtention du résultat d'antibiogramme permet d'envisager une meilleure efficacité thérapeutique, une prise en charge optimisée des urgences ainsi qu'une réduction du coût de prise en charge du patient.
  • Le domaine d'application de ce procédé est très vaste et concerne aussi bien le diagnostic médical que vétérinaire, et s'adresse à tous les laboratoires d'analyses biologiques publics et privés. Aussi, la présente invention, au-delà de son utilité dans le cadre du diagnostic biomédical, peut être utilisée en industrie, dans les laboratoires de recherche ou les organismes certificateurs lors des phases de recherche et développement de nouvelles solutions thérapeutiques en mettant en évidence leurs potentiels antibactériens.
  • BREVE DESCRIPTION DE L’INVENTION
  • Les présents inventeurs proposent d'utiliser la technique de Fractionnement par couplage Flux-Force (Field Flow Fractionation ou FFF) développée dans la fin des années 1960 par J.C. Giddings. Cette méthode est souvent présentée comme l'une des méthodes séparatives les plus polyvalentes. En effet, la grande variété des champs utilisables (hydrodynamique, gravité, électrique, magnétique, …), de configurations instrumentales, de modes d'élution, permettent d'envisager une infinité de conditions expérimentales à mettre en œuvre pour le tri, la séparation et la caractérisation de polymères, de poudres, d'émulsions, de colloïdes, de nanoparticules ou de bioparticules : macromolécules, virus, organites et cellules dont la taille varie entre 10 nm et 100 µm.
  • L’une de ces méthodes, la SdFFF utilise un champ multigravitationnel et reste une des méthodes de FFF les plus utilisées. Cette méthode présente une importante sensibilité en termes de changement de taille, de densité, de forme ou de déformabilité des objets analysés, et permet un enregistrement précoce des modifications métaboliques dans la population cellulaire sans préparation spécifique de l'échantillon analysé. Il est ainsi possible, par la simple comparaison des profils d’élution ou fractogrammes, de mettre en évidence une modification métabolique entre un échantillon analytique témoin non traité et un échantillon analytique soumis à l’événement biologique. Cette fonction de suivi ou monitoring s'est révélée intéressante dans le domaine de l'oncologie en démontrant de façon précoce et sensible l'induction de phénomènes majeurs tels que l'apoptose, la différenciation, l'autophagie, l'hypoxie, l'efficacité de transformation par vecteur de modulation d'expression génique…, laissant envisager son potentiel en tant qu'outil de criblage pharmacologique.
  • C'est ainsi que les inventeurs ont réalisé les travaux de recherche qui ont abouti à la première mise en évidence de l'objet de l'invention dans le domaine du diagnostic en microbiologie.
    • DESCRIPTION DETAILLEE DE L’INVENTION
  • La présente invention a ainsi pour objet un procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien, caractérisé par le fait que le procédé comprend les étapes consistant à :
    • se procurer au moins une population microbienne de microorganismes à partir d’un échantillon biologique ;
    • traiter une partie de chaque population microbienne avec l’antimicrobien, l’autre partie n’étant pas traitée avec ledit antimicrobien ;
    • incuber ladite ou lesdites populations microbiennes avec ou sans antimicrobien, obtenant ainsi respectivement le ou les échantillons analytiques traités et le ou les échantillons analytiques témoins ;
    • éluer le ou les échantillons analytiques de l’étape précédente dans un dispositif de fractionnement par couplage flux-force ;
    • obtenir les profils d’élution du ou des échantillons analytiques traités et du ou des échantillons analytiques témoins pour chaque population microbienne ;
    • et quantifier la variation des signaux contenus dans les profils d’élution du ou des échantillons analytiques témoins et du ou des échantillons analytiques traités par l’antimicrobien et la comparer à un seuil de significativité ;
  • dans lequel, lorsque la variation des signaux contenus dans le ou les profils d’élution du ou des échantillons analytiques traités par l’antimicrobien par rapport au profil d’élution du ou des échantillons analytiques témoins est supérieure au seuil de significativité, alors le microorganisme de ladite population microbienne est considéré comme sensible à l’antimicrobien.
  • En outre, le microorganisme constitutif de la population microbienne peut être l’un quelconque choisi parmi les bactéries, les champignons, les levures, les protozoaires.
  • Etant donné son caractère phénotypique, l’invention ne se limite pas à un mécanisme de résistance donné, ni à une espèce de microorganisme donnée. Elle ne nécessite pas un inoculum lourd mais un inoculum comparable à celui utilisé par les méthodes usuelles en bactériologie.
  • Aussi, l’antimicrobien peut être l’un quelconque choisi parmi les antibiotiques, les antifongiques, les agents antiparasitaires.
  • Dans un mode de réalisation particulier, le microorganisme est une bactérie.
  • On entend par « bactérie », tout type de bactérie, que ce soit de type à Gram négatif que de type à Gram positif.
  • Dans ce mode de réalisation, l’antimicrobien est un antibiotique.
  • On entend par « antibiotique », une substance organique naturelle ou synthétique qui exerce son action sur les bactéries en les détruisant (effet bactéricide) ou en inhibant leur croissance et leur multiplication (effet bactériostatique).
  • Selon un aspect de l’invention, la population microbienne peut être issue d’un échantillon biologique.
  • L’échantillon biologique peut en outre être d’origine humaine ou animale ; il peut aussi être d’origine environnementale.
  • En particulier, l’échantillon biologique peut être un échantillon d’urines, de selles, d’expectorations, de pus, de liquides céphalo-rachidiens, de sang ou similaire.
  • Selon un autre aspect de l’invention, l’échantillon biologique peut être une souche de référence.
  • On entend par « souche de référence », une souche de microorganismes isolée dont les caractères ont été étudiés et qui est conservée sur une longue durée dans une banque de souches de référence.
  • Ces deux aspects, à savoir un échantillon biologique et une souche de référence, constituent les « échantillons biologiques » au sens de la présente invention.
  • Ces échantillons biologiques sont mis en culture en milieu gélosé afin d’obtenir une « population microbienne », qu’elle soit une population bactérienne, parasitaire, de champignon, de levure, etc.
  • La population microbienne comme il est entendu dans la présente invention peut ainsi être une suspension microbienne obtenue à partir d’un mélange de colonies visuellement identiques isolées à partir d’un échantillon biologique.
  • Cette suspension considérée visuellement comme homogène est alors incubée en présence d'antimicrobiens de diverses natures à différentes concentrations (traité) ou incubée sur la même durée en absence d’antimicrobien (témoin). Ces échantillons sont les « échantillons analytiques » qui seront élués dans le dispositif de fractionnement par couplage flux-force.
  • Selon un mode de réalisation particulier, l’étape d’incubation avec l’antimicrobien peut avoir une durée allant de 30 à 120 minutes, de préférence de 30 à 60 minutes.
  • De plus, l’étape d’incubation avec l’antimicrobien est effectuée dans un milieu de culture liquide.
  • Aussi, le dispositif de fractionnement par couplage flux-force utilisé dans la méthode de l’invention peut être un dispositif de fractionnement par couplage flux-force de type multigravitationnel ou centrifuge, hydrodynamique, diélectrophorétique (DEP), électrique, magnétique, thermique, ou tout autre type de dispositif de fractionnement par couplage flux-force adapté.
  • On parle de FFF « multigravitationnel », « de sédimentation » ou « centrifuge » (SdFFF ou CFFF) lorsque le champ appliqué est de nature gravitationnelle et de force > 1g. Ce champ est obtenu par la mise en rotation du canal de séparation. La force du champ est proportionnelle à la vitesse de rotation du canal de séparation.
  • On parle de FFF « hydrodynamique » (FlFFF) lorsque le champ est de nature hydrodynamique, dans un canal symétrique, ou asymétrique (Asymetrical Flow FFF) et où seule la paroi d'accumulation est constituée d'une membrane semi-perméable.
  • On parle de FFF « électrique » (ElFFF) lorsque le champ appliqué est de nature électrique, continu, ou cyclique. A cet effet, les parois du canal de séparation sont des électrodes.
  • On parle de FFF « magnétique » (MgFFF) lorsque le champ appliqué est de nature magnétique.
  • On parle de FFF « thermique » (ThFFF) lorsque le champ est de nature thermique, correspondant à un gradient de température entre les deux parois du canal de séparation.
  • On parle de FFF «Diélectrophorétique» (DEP-FFF) lorsque le champ est un champ de diélectrophorèse.
  • Dans un mode de réalisation particulier de la présente invention, le dispositif de fractionnement par couplage flux-force est un dispositif de fractionnement par couplage flux-force de type multigravitationnel.
  • Selon cet aspect, le dispositif de fractionnement par couplage flux-force fait intervenir une étape d’arrêt du flux de phase mobile communément appelée stop-flow.
  • L’étape de « stop-flow » correspond à l'étape de focalisation primaire de l'échantillon dans le canal de séparation. Suite à l'injection de l'échantillon, le flux de phase mobile conduit les espèces à séparer jusque dans le canal. Connaissant le système de séparation (volume de la boucle d'injection, volume des tubulures) et le débit appliqué, il est possible de calculer le temps nécessaire à l'entrée des espèces dans le canal. Lorsque les espèces sont en position dans le canal, on coupe le flux de phase mobile, il ne s'applique alors plus aux espèces que la force multigravitationnelle qui les conduit à la paroi d'accumulation où elles se concentrent, c’est la focalisation primaire. Après un temps suffisant d'absence de flux (= stop-flow), le flux de phase mobile est remis, les forces hydrodynamiques ascensionnelles s'exercent à nouveau, conduisant alors les espèces à leur position d'équilibre pour leur séparation, à savoir focalisation secondaire.
  • Il est entendu par « profil d’élution » ou « fractogramme » le diagramme qui représente la variation instantanée de concentration ou de quantité des espèces à la sortie du canal de séparation en fonction l'avancée de l'analyse = (concentration /quantité des espèces éluées) = f (temps ou volume d'élution). Il se compose dans la plupart des cas de deux pics majeurs, le premier correspondant au volume mort (espèces non retenues, temps d'élution = t 0), le second correspondant au pic de la population microbienne (espèces retenues, temps d'élution = t rn > t 0).
  • Selon la présente invention, les espèces non retenues correspondent aux molécules provenant du milieu de culture, aux débris biologiques ou cellulaires, etc., qui vont absorber le signal UV du détecteur, mais qui ne sont pas sensibles au champ employé. Par exemple, dans le cas de la SdFFF, aux vitesses de rotation qui sont appliquées, et donc aux champs gravitationnels utilisés (10-50g), les molécules de taille inférieure au µm, ne subissent pas l'effet du champ: elles sont donc non retenues. Elles progressent dans le système à la même vitesse que la phase mobile, c’est-à-dire le vecteur liquide dans l'appareil. Si on mesure le temps nécessaire à l'élution de ces espèces = temps mort ou t 0, c'est le temps nécessaire à la phase mobile pour parcourir, le dispositif de fractionnement par couplage flux-force depuis le système d'injection (vanne de type Rhéodyne®) jusqu'au détecteur (de type spectrophotomètre UV-Vis) en passant par les tubulures et le canal de séparation inséré dans le bol de centrifugation.
  • En outre, le ou les signaux contenus dans le ou les profils d’élution du ou des échantillons analytiques qui sont analysés vis-à-vis de leur variabilité sont notamment la position du pic définie par le t r mesuré au sommet du pic, ou définie par la médiane du pic, ou normalisée par le calcul du facteur de rétention, R obs = t rn/t 0, ou toute autre méthode de détermination, ou la largeur du pic du profil d’élution.
  • La variation des signaux contenus dans les profils d’élution sera alors quantifiée. Elle s'exprime en % et correspond à un pourcentage de variation de Robs = P∆R; significatif d'un effet biologique soit le pourcentage de variation du facteur de rétention
  • Le « seuil de significativité » est le seuil à partir duquel la population microbienne est considéré comme sensible ou résistant à l'antimicrobien. Sa valeur est définie pour chaque couple microorganisme/antimicrobien, en fonction des doses usuelles actives de cet antimicrobien. Les valeurs seront référencées dans une banque de données dédiée.
  • Si la valeur mesurée de P∆R < au seuil de significativité, alors le micro-organisme est considéré comme résistant. Si la valeur mesurée de P∆R > au seuil de significativité, alors le micro-organisme est considéré comme sensible. Le degré de sensibilité du procédé de détection permet de mettre en évidence des profils « sensible » et « résistant » à un antimicrobien.
  • A titre d'exemple, P∆R présente pour des souches de référence d'E. coli les valeurs suivantes :
  • Ex. Ampicilline:
  • Souche sensible incubée avec 4mg/ml ≈ 13%
  • Souche résistante incubée avec 4 mg/ml ≈ 5%
  • Souche résistante incubée avec 8 mg/ml ≈ 7 %
  • Pour cette souche, les analyses ont permis de définir le seuil de significativité comme étant > 10%
  • Selon l’invention, le seuil de significativité est défini pour chaque couple microorganisme/anti-microbien.
  • L’invention concerne aussi l’utilisation du dispositif de fractionnement par couplage flux-force selon le procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme de la présente invention.
  • L’invention concerne également un kit pour la détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien par une technique de fractionnement par couplage flux-force comprenant :
    • au moins un antimicrobien choisi parmi les antibiotiques, les antifongiques, les agents antiparasitaires ;
    • facultativement au moins un tube destiné à l’incubation de la population microbienne ;
    • facultativement au moins un composant choisi parmi un canal de séparation, des joints tournants, des tubulures, des membranes semi-perméables ou autres composants du dispositif de fractionnement par couplage flux-force ;
    • facultativement une ou plusieurs solutions de nettoyage et de décontamination desdits canal et/ou joints tournants et/ou tubulures ;
    • facultativement des instructions pour l’utilisation du kit.
  • Selon ce mode de réalisation, les composants du kit que constituent notamment le canal de séparation, les joints tournants, les tubulures, les membranes semi-perméables sont prévus pour être à usage unique.
  • Cependant, il est prévu de fournir dans le kit une ou plusieurs solutions de nettoyage et de décontamination des composants afin de réduire l’impact écologique et permettre leur réutilisation. Il est envisagé que puissent être utilisées au moins deux séries de kits en roulement, l’une en utilisation, l’autre en cours de nettoyage et décontamination. Aussi, les kits usagés pourront être récupérés par le fabriquant pour assurer leur recyclage et reconditionnement, toujours dans une optique de réduire l’impact écologique et économique.
  • On entend par « canal de séparation », le canal d’écoulement sur lequel est appliqué un champ externe de nature variable selon le type de FFF mis en œuvre et dans lequel circule les micro-organismes analysés.
  • Celui-ci peut être constitué d'une feuille de matière plastique, le plus généralement du mylar dans laquelle est découpée la forme du canal. D’une manière générale, le canal est de forme soit trapézoïdale, soit parallélépipédique avec des pointes en V. La longueur (15 à 80 cm classiquement) et la largeur (8 à 20 mm classiquement) de cette forme découpée dans la feuille de matière plastique définie la longueur et la largeur du canal. L'épaisseur de la feuille de mylar définie elle l'épaisseur du canal (125 à 350 µm classiquement). Cette feuille est ensuite placée entre deux parois afin de définir le volume du canal, assurer l'étanchéité et le passage de la phase mobile et des échantillons.
  • Les parois du canal de séparation varient selon le type de FFF. Dans le cas de la SdFFF, les parois sont non perméables et rigides. Ce type de parois est partagé avec la MgFFF. Pour la ThFFF, les parois sont des plaques non perméables qui sont chauffées à des températures différentes. Pour l’ElFFF, il s’agit d’électrodes. Pour la FlFFF, au moins l'une des deux parois est une paroi associée à une membrane semi-perméable et est constituée par un fritté.
  • On entend par « joints-tournants » le dispositif qui permet le passage de la phase mobile et des échantillons en entrée et en sortie du canal de séparation depuis un référentiel fixe (à savoir pompe de phase mobile, injecteur d'échantillon, détecteur d'échantillon) à un référentiel en rotation (le canal de séparation). Ce passage doit se faire sans fuite de liquide et donc de risque de dispersion de l'échantillon, et la potentielle contamination de l'opérateur. Les joints tournants sont des pièces stratégiques dans un appareil de SdFFF.
  • On entend par « tubulures » les tuyaux amenant les échantillons depuis l’injecteur d’échantillon vers le canal de séparation ainsi que ceux amenant les espèces séparées depuis le canal de séparation vers le détecteur.
  • Le détecteur diffère selon le type de technique de FFF. Le plus couramment utilisé est un détecteur de type spectrophotomètre UV-Vis permettant la mesure de la variation d'absorbance au cours du temps.
  • Ainsi, la présente invention concerne notamment un kit pour la détermination de la résistance d’une population bactérienne vis-à-vis d’un antibiotique par une technique de fractionnement par SdFFF comprenant :
    • au moins un antibiotique ;
    • facultativement au moins un tube adapté à l’incubation de la population biologique ;
    • au moins un canal de séparation ;
    • facultativement au moins un composant choisi parmi des joints tournants et des tubulures du dispositif de fractionnement par couplage flux-force de type gravitationnel ;
    • facultativement une ou plusieurs solutions de nettoyage et de décontamination desdits canal et/ou joints tournants et/ou tubulures ;
    • facultativement des instructions pour l’utilisation du kit.
  • Pour mieux illustrer l’objet de la présente invention, on va décrire ci-après, à titre indicatif et non limitatif, un mode de réalisation particulier avec référence aux figures annexées.
  • Sur ces figures :
  • représente le schéma analytique de mesure de la résistance à un antibiotique selon la mise en œuvre de l’Exemple 1.
  • représente le fractogramme obtenu lors du test de la sensibilité de la souche E.coli ATCC 25922 à la kanamycine (0/1,5/3/6/12 μg/mL) selon l’Exemple 1.
  • représente les fractogrammes obtenus lors du test de la sensibilité de la souche E.coli ATCC 25922 à la chlortétracycline selon l’Exemple 1.
  • représente les fractogrammes obtenus lors du test de la sensibilité de la souche E.coli ATCC 25922 aux huiles essentielles de cannelle selon l’Exemple 1.
  • représente les fractogrammes obtenus lors du test de la sensibilité de la souche E.coli ATCC 25922 aux huiles essentielles d’origan selon l’Exemple 1.
  • représente le schéma analytique de mesure de la résistance à un antibiotique selon la mise en œuvre de l’Exemple 2.
  • représente les fractogrammes obtenus lors du test de la sensibilité à l’ampicilline de la souche E.coli ATCC 35218 (A) par rapport à la souche E.coli ATCC 25922 (B) mettant en évidence la résistance de la souche 35218 contrairement à la souche 25922, selon l’Exemple 2.
  • représente le schéma analytique de la méthode de détection de la résistance à un antibiotique selon la présente invention (A) par comparaison aux techniques actuelles (B).
  • Si l’on se réfère à la , on peut y voir résumé le protocole de la méthode de détection selon la mise en œuvre de l’Exemple 1. Les résultats de l’analyse de la résistance à l’antimicrobien sont attendus à compter de 40 heures après la mise en culture de l’échantillon sur gélose.
  • Si l’on se réfère à la , on peut y voir la superposition de 5 profils d'élution obtenus pour la souche de référence E.coli ATCC EC 25922, incubée en absence (témoin) ou en présence de doses croissantes de kanamycine (1,5 à 12 µg/mL) selon le protocole décrit dans la . Les profils d'élution ou fractogrammes ont été produits dans les conditions d'élution également décrits dans la . La valeur de t0 est en moyenne de 0,96 min. A titre d'exemple sont indiqués les temps de rétention (tr) pour les conditions témoins (en moyenne 3,22 min) et traitées par 3 µg/mL de kanamycine (3,62 min en moyenne) permettant les calculs de Robs pour le témoin (0,299) et les échantillons traités (0,265 pour 3 µg/ml), ce qui correspond à un pourcentage de variation du facteur de rétention PΔR = 11,2% ; 10% pouvant être considéré comme étant le seuil de significativité. A cette concentration, qui correspond à la concentration minimale inhibitrice de la kanamycine, la souche est bien sensible à l'antimicrobien.
  • D’une manière similaire, si l’on se réfère à la , on peut y voir la superposition de 5 profils d'élution obtenus pour la souche de référence E.coli ATCC EC 25922, incubée en absence (témoin) ou en présence de doses croissantes de chlortétracycline (0,015 à 0,125 µg/mL) selon le protocole décrit dans la . Les profils d'élution ou fractogrammes ont été produits dans les conditions d'élution également décrits dans la . La valeur de t0 est en moyenne de 0,96 min. A titre d'exemple sont indiqués les temps de rétention (tr) pour les conditions témoins (en moyenne 2,62 min) et traitées par 0,03 µg/mL de kanamycine (3,36 min en moyenne) permettant les calculs de Robs pour le témoin (0,367) et les échantillons traités (0,286 pour 0,03 µg/ml), ce qui correspond à un PΔR = 22% ; 10% pouvant être considéré comme seuil de significativité. A cette concentration, qui correspond à la concentration minimale inhibitrice de la chlortétracycline, la souche est bien sensible à l'antimicrobien.
  • D’une manière similaire, si l’on se réfère aux Figures 3B et 3C, on peut y voir que la souche E.coli 25922 est également significativement sensible à l'action de l'Huile essentielle de Cannelle puisque PΔR = 40%, à l'action de l'Huile essentielle d'Origan puisque PΔR = 13,9%.
  • Si l’on se réfère à la , on peut y voir résumé le protocole de la méthode de détection selon la mise en œuvre de l’Exemple 2. Les résultats de l’analyse de la résistance à l’antimicrobien sont attendus à compter de 18-26 heures après la mise en culture de l’échantillon sur gélose.
  • Sur la Figure 5A, on peut voir 3 profils d’élution obtenus pour la souche de référence E.coli ATCC EC 35218, incubée en absence (témoin) ou en présence de doses croissantes d’ampicilline (4 ou 8 mg/mL) selon le protocole décrit dans la . Les profils d'élution ou fractogrammes ont été produits dans les conditions d'élution également décrits dans la . La valeur de t0 est en moyenne de 0,96 min. A titre d'exemple sont indiqués les temps de rétention (tr) pour les conditions témoins (en moyenne 3,74 min) et traitées par 4 mg/ml d’ampicilline (3,58 min en moyenne) permettant les calculs de Robs pour le témoin (0,257) et les échantillons traités (0,269 pour 4 mg/mL), ce qui correspond à un pourcentage de variation du facteur de rétention PΔR = 4,50 ; 10% pouvant être considéré comme seuil de significativité.
  • A cette concentration, la souche est résistante à l'antimicrobien.
  • D’une manière similaire, si l’on se réfère à la Figure 5B, les profils d’élution de la souche de référence E.coli ATCC EC 25922, incubée en absence (témoin) ou en présence de doses croissantes d’ampicilline (4 ou 8 mg/mL), alors on peut voir que, contrairement à la souche E.coli ATCC EC 35218, E.coli 25922 est sensible à l’ampicilline. En effet, les temps de rétention (tr) pour les conditions témoins (en moyenne 2,66 min) et traitées par 4 mg/mL d’ampicilline (2,36 min en moyenne) permettant les calculs de Robs pour le témoin (0,362) et les échantillons traités (0,408 pour 4 mg/ml), ce qui correspond à un pourcentage de variation du facteur de rétention PΔR = 12,70 ; 10% pouvant être considéré comme seuil de significativité. A cette concentration, la souche est sensible à l'antimicrobien.
  • Pour finir, la permet de mettre en évidence le gain de temps permis par la présente invention par comparaison aux techniques actuelles. Ce gain de temps non négligeable constitue une avancée majeure dans les techniques de détection de la résistance de micro-organismes aux antimicrobiens. Ceci permet d’aiguiller le clinicien ou vétérinaire vers l’approche thérapeutique la plus appropriée de façon précoce.
  • EXEMPLES
  • Matériels & Méthodes
  • Le dispositif de fractionnement par couplage flux-force est établi conformément au brevet EP1679124. Le dispositif comprend un système d'injection où est pris en charge l'échantillon, la tubulure amenant l’échantillon depuis l'injecteur vers le canal de séparation, via un premier joint tournant, le canal de séparation contenu dans un bol de centrifugation dont la mise en rotation est assurée par un moteur électrique lui-même contrôlé manuellement ou via un dispositif informatique adapté, permettant ainsi le contrôle de l'intensité du champ multigravitationnel, la tubulure amenant les espèces séparées depuis le canal vers le détecteur, via le second joint tournant, et enfin le détecteur.
  • Milieu de culture: Difco TM Mueller Hinton Broth (Becton Dickinson, référence 275730)
  • Souches bactériennes utilisées : E.coli 25922 et 35218 (ATCC, Manassas, VA, USA).
  • Antibiotiques: Ampicilline (Sigma-Aldrich, Saint-Quentin-Fallavier, France, réf. 21442020), Kanamycine (MP Biomedical, Illkirch FRANCE,réf. 150020) Chlortétracycline (Sigma-Aldrich, Saint-Quentin-Fallavier, France, Ref 17776).
  • Conditions de culture
  • Les colonies bactériennes ont été incubées dans du milieu de culture Mueller-Hinton (MH) à raison d’un inoculum de 0,5 McFarland en absence ou en présence d’antibiotique pendant une durée de 2 heures à 37°C et sous agitation. Ce milieu liquide MH est le milieu de référence utilisé pour la méthode de référence de détermination des CMI, appelée méthode par dilution en milieu liquide.
  • Après 2h d’incubation, le milieu de culture a été centrifugé puis repris dans un volume de 0,5 mL de PBS.
  • Exemple de calcul du pourcentage de variation de Robs:
  • Selon les manipulations reproduites en , le calcul du pourcentage de variation du facteur de rétention ou PΔR s’effectue comme suit :
  •
  • [Math 2]  ;
  • Tableau 1 : Résultats de l’analyse des fractogrammes selon l’expérience représentée en Figures 5A et 5B : calcul des PΔR permettant, par comparaison au seuil de significativité, fixé à 10% pour ces souches et cet antibiotique, la détermination de la résistance des souches d’ E.coli 25922 et 35218 vis-à-vis de l’Ampiciline
  • Exemple 1 : Résultats de tests de résistance de la souche E.coli ATCC 25922 à diverses molécules au moyen de la SdFFF selon la présente invention.
  • Ces résultats ont permis d’établir un premier protocole de préparation de la population de microorganismes, en l’espèce de la suspension bactérienne ( ).
  • Les conditions d’élution en SdFFF ont été adaptées à partir de celles utilisées communément dans les pratiques de tri cellulaire pour des cellules eucaryotes. L’introduction directe de l’échantillon dans la direction opposée au champ de gravité, permettant une relaxation rapide des espèces dans les lignes de flux efficaces pour leur séparation est ici optimisée par une brève étape supplémentaire de stop-flow, du fait des petites tailles (< 2 µm) des espèces à séparer.
  • Les conditions de base ont été établies de la manière suivante :
    • Débit de phase mobile : 1,2 mL/min ;
    • Champ multigravitationnel : 20g ;
    • Stop-flow : 2 min.
  • Avec ces conditions, il a été possible d’obtenir une réponse après seulement 1 heure d’incubation.
  • Les résultats ( et 3A) sur le modèle de souche de E.coli ATCC 25922 vis-à-vis de la kanamycine (concentration croissante de 0 à 12 µg/mL) et de la Chlorotétracycline (0,015 à 0,125 µg/mL) permettent de démontrer la capacité de l’appareil de SdFFF à enregistrer des modifications de rétention, à savoir des réponses dont l’intensité varie selon la concentration de l’antibiotique utilisé.
  • Ces résultats montrent que le procédé de détection de la présente invention permet une réponse quantitative, dose-dépendante, qui est complémentaire de sa dimension qualitative, à savoir la mesure du seuil de significativité de la résistance vs. sensibilité à l'antimicrobien. Le degré de sensibilité du procédé de détection repose sur la faculté de l’appareil de FFF à enregistrer des variations de rétention en fonction de la concentration d’antimicrobien utilisée.
  • Sur ces figures, on observe en ce qui concerne le pic d’élution des bactéries une diminution du facteur de rétention = R obs = t 0/tr n, caractéristique de l’induction de l’événement biologique lié à l’incubation en présence d'antibactériens.
  • Ces résultats très encourageants ont permis d’envisager de pouvoir réduire de 24 heures environ le temps nécessaire pour rendre le résultat d’un antibiogramme par rapport aux méthodes existantes.
  • Exemple 2 : Un nouveau protocole d’analyse a été établi selon la , fidèle à la mise en œuvre en clinique des antibiogrammes classiques, permettant de réduire à 26 heures post-prélèvement/isolement l’obtention des résultats du test.
  • Classiquement, la réalisation d’un antibiogramme se fait à partir de colonies bactériennes obtenues à partir d’un prélèvement biologique. Le délai d’obtention de ces colonies est en moyenne de 16-24 heures, mais il peut être parfois plus court, de l’ordre de 10-12 heures selon les espèces bactériennes. Ces colonies sont alors remises en suspension en milieu liquide et incubées pendant 16-24 heures avec différents antibiotiques selon les recommandations du CA-SFM (Comité de l’Antibiogramme de la Société Française de Microbiologie) en vigueur.
  • Ainsi, ces essais ont été réalisés directement sur des suspensions bactériennes, obtenues à partir de colonies de la souche E.coli ATCC 25922 et ATCC 35218 cultivées pendant 16-24 heures sur milieu gélosé, et incubées pendant 2 heures en présence ou non d’antibiotique (Ampicilline Figures 5A/B).
  • Il a ainsi été possible de confirmer la variation dose-dépendante du facteur R obs pour un antibiotique, sur différentes souches (sensibles/résistantes) de bactéries E.coli.
  • La différence de comportement de la souche bactérienne est mise en évidence par la mesure de R obs, le calcul du PΔR et sa comparaison par rapport à des seuils de significativité permettant d’indiquer la sensibilité ou la résistance de la souche bactérienne à l’action bactéricide ou bactériostatique de l’antibiotique testé.
  • La résistance à l’antimicrobien est mesuré par comparaison de PΔR au seuil de significativité, PΔR s’exprime selon la formule ci-après :
  • Considérant le PΔR ,
  • si la valeur mesurée PΔR < seuil de significativité; alors le micro-organisme est considéré comme résistant.
  • D’une manière similaire, si la valeur mesurée PΔR > seuil de significativité; alors le micro-organisme est considéré comme sensible.
  • Cette mesure, uniquement basée sur des variations de propriétés biophysiques intrinsèques liée à l’action de l’antibiotique sur la souche bactérienne, ne fait appel à aucune préparation spécifique de l’échantillon, ni à aucun réactif spécifique ou coûteux. Compte-tenu de la sensibilité de la méthode de séparation aux variations de ces paramètres (taille, densité, forme, déformabilité, motilité, etc.), la lecture de l’antibiogramme peut se faire de façon très précoce (24 heures après la récupération du prélèvement pathologique et isolement et identification du germe), permettant de rendre un diagnostic au clinicien avec un gain de près de 24 heures sur les protocoles actuels.
  • La reprend le schéma analytique général du procédé de l’invention et le présente en parallèle aux protocoles actuels dans l’état de la technique.
  • Le caractère inventif de la présente invention réside dans la simplicité et la rapidité de sa mise en œuvre. Le procédé présente l’avantage de permettre l’automatisation des étapes, dès l’injection automatique des échantillons dans le dispositif jusqu’à l’obtention du résultat en termes de sensible/résistant. L’appareillage est prévu pour être spécialement conçu pour faciliter la maintenance, la manipulation stérile et sans risque pour l’opérateur, et le changement rapide du canal de séparation, pièce conçue pour un usage unique, par exemple dans un kit selon l’invention : un canal = un microorganisme = un antibiogramme.
  • La simplicité et la rapidité du procédé de l’invention reposent sur le fait qu’il est complètement dépourvu de traitement préalable de l’échantillon à éluer, aboutissant plus rapidement à l’obtention des résultats.
  • Le procédé de l’invention possède en outre un aspect d’universalité et est applicable à tout type de microorganisme, à savoir des bactéries, des champignons, des levures, des protozoaires. Il n’est pas préalablement nécessaire d’identifier un antigène spécifique qui doit permettre de séparer les populations microbiennes comme cela est requis avec la cytométrie en flux.
  • La technique de séparation par couplage flux-force ne présente pas d’a priori et est applicable quelle que soit la nature du microorganisme.
  • Il est bien entendu que les modes de réalisation ci-dessus de la présente invention ont été donnés à titre indicatif et non limitatif et que des modifications pourront y être apportées sans que l’on s’écarte pour autant du cadre de la présente invention. En particulier, d’autres plages de mesure, précisions, dimensions et caractéristiques des moyens d’acquisition de données et de conditions peuvent être sélectionnées en fonction de l’utilisation visée.
    •

Claims (17)

  1. – Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien, caractérisé par le fait que le procédé comprend les étapes consistant à :
    • se procurer au moins une population microbienne de microorganismes à partir d’un échantillon biologique ;
    • traiter une partie de chaque population microbienne avec l’antimicrobien, l’autre partie n’étant pas traitée avec ledit antimicrobien ;
    • incuber ladite ou lesdites populations microbiennes avec ou sans antimicrobien, obtenant ainsi respectivement le ou les échantillons analytiques traités et le ou les échantillons analytiques témoins ;
    • éluer le ou les échantillons analytiques de l’étape précédente dans un dispositif de fractionnement par couplage flux-force ;
    • obtenir les profils d’élution du ou des échantillons analytiques traités et du ou des échantillons analytiques témoins pour chaque population microbienne ;
    • et quantifier la variation des signaux contenus dans les profils d’élution du ou des échantillons analytiques témoins et du ou des échantillons analytiques traités par l’antimicrobien et la comparer à un seuil de significativité ;
    dans lequel, lorsque la variation des signaux contenus dans le ou les profils d’élution du ou des échantillons analytiques traités par l’antimicrobien par rapport au profil d’élution du ou des échantillons analytiques témoins est supérieure au seuil de significativité, alors le microorganisme de ladite population microbienne est considéré comme sensible à l’antimicrobien.
  2. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon la revendication 1, dans lequel le microorganisme est l’un quelconque choisi parmi les bactéries, les champignons, les levures, les protozoaires.
  3. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon l’une des revendications 1 ou 2, dans lequel l’antimicrobien est l’un quelconque choisi parmi les antibiotiques, les antifongiques, les agents antiparasitaires.
  4. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, dans lequel le microorganisme est une bactérie.
  5. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon la revendication 4, dans lequel l’antimicrobien est un antibiotique.
  6. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon l’une quelconque des revendications 1 à 5, dans lequel la population microbienne est issue d’un échantillon biologique.
  7. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon la revendication 6, dans lequel l’échantillon biologique est d’origine humaine ou animale ou est d’origine environnementale.
  8. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon l’une des revendications 6 ou 7, dans lequel l'échantillon biologique est un échantillon d’urines, de selles, d’expectorations, de lavages broncho-alvéolaires, de pus, de liquide céphalo-rachidien, de sang ou similaire.
  9. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon l’une quelconque des revendications 1 à 5, dans lequel l'échantillon biologique est une souche de référence.
  10. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon l’une quelconque des revendications 1 à 9, dans lequel l’étape d’incubation avec l’antimicrobien a une durée allant de 30 à 120 minutes, de préférence de 30 à 60 minutes.
  11. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon l’une quelconque des revendications 1 à 10, dans lequel le dispositif de fractionnement par couplage flux-force est un dispositif de fractionnement par couplage flux-force de type multigravitationnel ou centrifuge, hydrodynamique, diélectrophorétique (DEP), électrique, magnétique, thermique, ou tout autre type de dispositif de fractionnement par couplage flux-force adapté.
  12. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon l’une quelconque des revendications 1 à 11, dans lequel le dispositif de fractionnement par couplage flux-force est un dispositif de fractionnement par couplage flux-force de type multigravitationnel.
  13. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon l’une quelconque des revendications 1 à 12, dans lequel le ou les signaux contenus dans le ou les profils d’élution du ou des échantillons analytiques qui sont analysés vis-à-vis de leur variabilité sont notamment la position du pic définie par le t r mesuré au sommet du pic, ou définie par la médiane du pic, ou normalisée par le calcul du facteur de rétention, R obs = t rn/t 0 ou toute autre méthode de détermination, ou la largeur du pic du profil d’élution.
  14. - Procédé de détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien selon l’une quelconque des revendications 1 à 13, dans lequel le seuil de significativité est défini pour chaque couple microorganisme/antimicrobien.
  15. - Utilisation d’un dispositif de fractionnement par couplage flux-force dans l’étape d’élution du procédé de détermination selon l’une quelconque des revendications 1 à 14.
  16. - Kit pour la détermination de la résistance d’un microorganisme vis-à-vis d’au moins un antimicrobien par une technique de fractionnement par couplage flux-force comprenant :
    • au moins un antimicrobien choisi parmi les antibiotiques, les antifongiques, les agents antiparasitaires ;
    • facultativement au moins un tube adapté à l’incubation de la population microbienne ;
    • facultativement au moins un composant choisi parmi un canal de séparation, des joints tournants, des tubulures, des membranes semi-perméables ou autres composants du dispositif de fractionnement par couplage flux-force ;
    • facultativement une ou plusieurs solutions de nettoyage et de décontamination desdits canal et/ou joints tournants et/ou tubulures ;
    • facultativement des instructions pour l’utilisation du kit.
  17. - Kit pour la détermination de la résistance d’une population bactérienne vis-à-vis d’un antibiotique par une technique de fractionnement par SdFFF comprenant :
    - au moins un antibiotique ;
    - facultativement au moins un tube adapté à l’incubation de la population biologique ;
    - au moins un canal de séparation ;
    - facultativement au moins un composant choisi parmi des joints tournants et des tubulures du dispositif de fractionnement par couplage flux-force de type gravitationnel ;
    - facultativement une ou plusieurs solutions de nettoyage et de décontamination desdits canal et/ou joints tournants et/ou tubulures ;
    - facultativement des instructions pour l’utilisation du kit.
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