ES2148172T5 - Anticuerpos monoclonales humanizados de alta afinidad. - Google Patents
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Abstract
Anticuerpo monoclonal quimérico que comprende la región constante de una inmunoglobulina humana y la región variable de un anticuerpo monoclonal ovino o un anticuerpo monoclonal de una vaca que presenta una afinidad de por lo menos 1011 l/mol.
Description
Anticuerpos monoclonales humanizados de alta
afinidad.
La presente invención se refiere a anticuerpos
monoclonales que tienen una elevada afinidad, y a su utilización
terapéutica.
Los anticuerpos monoclonales de múridos y de
rata son ampliamente asequibles, pero generalmente resultan
inadecuados para su utilización terapéutica en seres humanos debido
a la respuesta de anticuerpos humana frente a proteínas extrañas.
Con el fin de obviar este problema, se ha propuesto "humanizar"
los monoclonales de roedores combinando la región variable del
monoclonal con la región constante derivada de una inmunoglobulina
humana. A fin de producirlos en gran escala, se puede transfectar
el gen para un anticuerpo quimérico, o para otro anticuerpo, de
este tipo, y expresar por medio de células del mieloma o por medio
de cualquier otra línea de células del huésped.
Otra desventaja asociada a los anticuerpos de
roedores es su baja especificidad y su baja afinidad. La constante
de afinidad (K_{a}) de un, digamos, monoclonal de múrido puede ser
de hasta 10^{10}. A menudo, la humanización reducirá el valor de
K_{a}, pero se puede mantener substancialmente el valor original
por elección cuidadosa de los materiales y las condiciones
experimentales. Éste ha sido el enfoque a monoclonales de alta
afinidad destinados a la utilización terapéutica en seres
humanos.
Flynn et al., Immunology, 69
(1990) 1-7, describe la producción de un anticuerpo
monoclonal ovino procedente de un "compañero" o "socio"
(más comúnmente denominado partner) de fusión de un
heterohibridoma de oveja/ratón frente a péptidos sintéticos del
virus pie-y-boca. No se presenta
dato alguno ni en lo que se refiere a la estabilidad de la línea ni
en lo que se refiere a los niveles de anticuerpo secretado, aunque
se advierte que las líneas producidas no tenían propiedades de
neutralización/protección, o, en todo caso, muy escasas. Posibles
motivos para ello se pueden reconocer como: (i) en la
neutralización/protección no se ven implicados epítopos únicos,
(ii) los niveles de anticuerpos en los sobrenadantes son demasiado
bajos y (iii) no se ensayaron suficientes monoclonales frente a
estos determinantes.
Groves et al., J. Endocrinol., 126
(1990) 217-222, describen un monoclonal ovino de
elevada afinidad, estable, contra la progesterona tras la fusión
con el mieloma NS1 de múridos, aunque se realizó una fusión paralela
con su partner de fusión, que dio lugar a eficacias de
fusión más elevadas que las células NS1. Esta línea particular ha
sido estable por espacio de 28 meses y secreta 5-10
\mug/10^{6} células/24 horas. Ello está de acuerdo con el
trabajo anteriormente reportado por Groves et al., Res. Vet.
Sci., 43 (1987) 253-256, donde una fusión
NS1 x oveja, similar, dio como resultado dos líneas de células: una
cesó de secretar al cabo de dos meses, pero la otra produjo 2,5
ng/ml a la confluencia, 4 meses después de la fusión, después de
cuatro etapas de subclonación.
El documento WO 91/09966 está en el estado de la
técnica anterior de acuerdo con el Artículo 54(3) de la EPC.
Dicho documento da a conocer una cadena pesada de anticuerpo
injertada con CDR que tiene un dominio de región variable que
comprende regiones enlazantes de marcos aceptores y antígenos
donantes, en posiciones específicas. Los anticuerpos injertados con
CDR son, preferentemente, anticuerpos humanizados que tienen marcos
aceptores no humanos. Los anticuerpos se derivan generalmente de
roedores.
Un anticuerpo monoclonal quimérico de acuerdo
con la presente invención, comprende un anticuerpo monoclonal según
la reivindicación 1. Además, con el propósito de producir tal
anticuerpo, el nuevo ADN heterólogo comprende un gen quimérico que
incluye el ADN de la región variable, que codifica las cadenas
pesada y ligera del anticuerpo monoclonal ovino o de vaca y la
región constante del ADN humano. La invención proporciona asimismo
un fragmento de anticuerpo según la reivindicación 5.
Un anticuerpo de la invención se puede producir
por técnicas análogas a las que se conocen para la producción y la
quimerización de monoclonales de múridos. Sin embargo, el producto
puede tener una afinidad mucho más elevada.
Para producir anticuerpos de acuerdo con la
presente invención se pueden aplicar diversas técnicas. El producto
es predominantemente de origen humano, de manera que se puede
utilizar satisfactoriamente en un método de terapia practicado en
un ser humano.
Un anticuerpo entero comprende cadenas pesadas y
ligeras, y regiones constantes y variables. Las regiones variables
comprenden un marco variable y regiones hipervariables dentro de las
que están situados los sitios de unión a los antígenos. La
invención incluye dentro de su alcance los fragmentos de anticuerpo,
que son los fragmentos F(ab')_{2} o Fab, con la condición
de que por lo menos parte de los mismos se derive de una
inmunoglobulina humana.
Más específicamente, un anticuerpo entero
"quimérico" de la invención comprende la región variable de un
anticuerpo de elevada afinidad y la región constante de una
inmunoglobulina humana. En todos los casos, el producto es una
combinación de las secuencias del anticuerpo de elevada afinidad y
del anticuerpo humano.
Un producto de la invención se puede preparar
por un proceso que implica esencialmente tres etapas. En primer
lugar, un animal adecuado se inmuniza utilizando un antígeno y se
obtienen células B que secretan un anticuerpo a este antígeno. En
segundo lugar se obtienen los anticuerpos monoclonales de elevada
afinidad y los genes que los codifican. En tercer lugar, estos
anticuerpos se quimerizan.
El animal que se somete a la inmunización no es
un roedor, sino que se escoge un mamífero que dé anticuerpos de
afinidad más elevada. Son animales adecuados las vacas y, para los
propósitos de una ilustración adicional, las ovejas. La
inmunización de ovejas da una buena respuesta inmunogénica a una
variedad de antígenos. El tamaño y la longevidad de estos animales
significan que se les puede administrar antígeno por varias vías de
administración y a lo largo de un período de tiempo más largo que a
los roedores.
Tal como se ilustra más adelante, en el Ejemplo
1, el anticuerpo monoclonal de elevada afinidad se puede obtener
por medio de la tecnología clásica del hibridoma, que comprende la
fusión de las células B que secretan anticuerpos ovinos o de vaca,
de elevada afinidad, con células del mieloma, y por selección de los
hibridomas resultantes. Alternativamente, las células B procedentes
de las especies relevantes se pueden sembrar aparte, seleccionar y
amplificar, por ejemplo utilizando la reacción de la cadena de
polimerasa, y también se puede utilizar la recuperación de fagos
para obtener el ARNm procedente de linfocitos seleccionados, y así
los genes del anticuerpo.
Seguidamente, se procede a la quimerización. El
anticuerpo monoclonal que se utiliza en la presente invención para
este propósito de quimerización preferentemente tiene una constante
de afinidad de por lo menos 10^{12}, más preferentemente de por
lo menos 5 x 10^{12} y, lo más preferentemente, de por lo menos
10^{13}, por ejemplo de hasta 10^{14}, 10^{15} l/mol, o más
elevada.
Se pueden utilizar varias técnicas de
quimerización, todas las cuales implican el ensamblaje de secuencias
procedentes de un anticuerpo de elevada afinidad y secuencias
procedentes de anticuerpos humanos. Un anticuerpo entero quimérico
de la invención comprende la región variable del primero y la región
constante del último. Las técnicas para producir anticuerpos
enteros quiméricos son conocidas.
La tecnología recombinante, para los propósitos
de producir un anticuerpo de acuerdo con la invención, puede
comprender una primera etapa en la que un gran número de moléculas
de anticuerpos de vaca u ovinos enteros, se secuencian desde la
región "bisagra" hacia arriba, por ejemplo a lo largo de un
intervalo de IgG1's de oveja. Ello se puede hacer bien sea por
aislamiento del ARNm de varios clones de células B, quizás
utilizando la PCR y así secuenciando el ADN, o secuenciando
anticuerpos policlonales de tipo IgG1, purificados por afinidad, o
bien un gran número de monoclonales, si se puede disponer de ellos.
Seguidamente, las secuencias se pueden utilizar para definir los
límites entre las regiones constante, variable e hipervariable,
tanto para la cadena pesada como para la cadena ligera.
Seguidamente, se puede utilizar el modelado estructural, con
propósitos de comparación con regiones constantes humanas y de
ratón, a fin de determinar cuánto de la secuencia monoclonal de
elevada afinidad, esto es, la región variable, es preciso añadir al
gen constante humano para dar el producto entero.
Un anticuerpo de la invención se puede utilizar
en terapia. Es probable que sea de un valor particular en el
tratamiento del cáncer, la inflamación, por ejemplo, la artritis
reumatoide, y en el ataque séptico, tras un trasplante de órganos,
en la inmunomodulación, para la inmunoterapia pasiva en el
tratamiento de virus, y para proporcionar anticuerpos frente a
bacterias. Para este propósito, el anticuerpo se puede formular en
forma de una composición adecuada con un excipiente, diluyente o
vehículo, fisiológicamente aceptable.
Las ventajas particulares de los anticuerpos de
elevada afinidad para la terapia son:
- (i)
- La afinidad está ligada a una respuesta biológica. Cuanto más alta sea la afinidad tanto mejor es probable que sea la respuesta.
- (ii)
- Los anticuerpos con una afinidad más elevada darán como resultado una unión más rápida de los anticuerpos a las células diana, o una inmunoneutralización más rápida. Ello quiere decir que habrá una mayor proporción de anticuerpo concentrada en los sitios diana, lo que conduce directamente a una mejor localización del anticuerpo o el conjugado del anticuerpo, reduciendo la unión no-específica a otros sitios. Esto es una consideración importante en el tratamiento del cáncer, donde la unión al tumor se desea a expensas de la unión a otros tejidos tales como el riñón, la médula ósea y el hígado.
- (iii)
- Una afinidad más elevada significa que se pueden utilizar menos anticuerpos por dosis, lo que conduce a terapias más económicamente viables. Ello constituye una consideración relevante cuando están implicadas reacciones de competencia, por ejemplo, la unión con un virus o una linfoquina en lugar de que el virus o la linfoquina se unan a una superficie de la célula o a un receptor.
El Ejemplo 1 que se aporta a continuación
ilustra la preparación de un anticuerpo monoclonal ovino que tiene
una elevada afinidad ("Guildhay" se refiere a Antisueros
Guildhay, Guildford, Reino Unido).
El SFP1 es un "partner" de fusión
del heteromieloma de oveja derivado originariamente de la línea de
células NSI. La línea no secreta inmunoglobulinas ni de múrido ni
ovinas. Las células SFP1 se han tratado con
8-azoguanina o 6-tioguanina, se han
clonado por dilución limitante y se han probado para determinar la
sensibilidad HAT. La línea de células no se ha invertido a la
resistencia a la HAT durante un período de 3 años.
El nivel de secreción de anticuerpos era
desconocido, posiblemente cantidades del orden de
sub-nanogramos inicialmente. El RIA para llevar a
cabo una selección ("screening") del sobrenadante del
cultivo necesitaba ser sensible, y se adaptó a partir de un ensayo
T3 utilizado rutinariamente. Resumiendo, los sobrendanates de los
cultivos se incubaron con T3 yodadas y se ligaron, separadas por un
espaciador, utilizando un procedimiento del PEG para segundos
anticuerpos.
Todas las diluciones se hicieron en tampón de
barbitona 0,05 M (pH 8,6) que contenía BSA de grado RIA al 0,1%
(Sigma). 100 \mul de T3 yodadas 7,4 x 10^{5} s^{-1}/ml (20
\muCi/ml) [>4,44 x 10^{7} s^{-1}/\mug (>1,2
mCi/\mug) de T3, Amersham International] se añadieron a 100 \mul
de ácido
8-anilino-1-naftalenosulfónico
(4 mg/ml), 200 \mul de sobrenadante del cultivo, 100 \mul de
inmunoglobulina anti-oveja, de mono, (Guildhay) y
75 \mul de medio de cultivo de tejidos. Una parte alícuota de
anticuerpo policlonal de oveja frente a las T3 (Guildhay) que daba
un 30% de unión de los recuentos totales se incluyó en el ensayo de
selección ("screening") como control positivo. Los
tubos se agitaron en un agitador vorticial y se incubaron durante 2
horas a 37ºC, o durante la noche a 4ºC, antes de la separación por
adición de 500 \mul de PEG 6000 al 6% (p/v) (BDH), la agitación
vorticial y la centrifugación durante 30 minutos a 3.000 rpm. Los
gránulos sedimentados se contaron durante 60 segundos.
200 \mul de una disolución, a 7,5 \mug/ml,
de inmunoglobulina anti-oveja, de mono, purificada
por afinidad, (Guildhay), pretratada para eliminar anticuerpos que
reaccionaban cruzadamente con las inmunoglobulinas presentes en el
suero fetal de ternera (FCS), en tampón bicarbonato (pH 9,6), se
adsorbieron en placas para microvaloraciones, de 96 pocillos, (Nunc
Maxisorp) durante 2 horas a 37ºC, o durante la noche a 4ºC. Las
placas se lavaron con PBS que contenía un 0,1% de gelatina y un
0,05% de Tween® 20, pH 7,4 (PBSGT). 200 \mul del sobrenadante del
cultivo de tejidos o de estándares de
gamma-globulina de oveja (Sigma), diluidos a
1-1000 ng/ml en medio para cultivo de tejidos, se
añadieron a los pocillos y se incubaron durante 1 hora a 37ºC. Las
placas se lavaron con PBSGT y a los pocillos se añadieron 200
\mul de inmunoglobulina anti-oveja, de mono,
marcada con peroxidasa de rábano picante (Guildhay). Las placas se
incubaron durante 30 minutos a 37ºC y se lavaron con PBSGT.
Se añadieron 200 \mul de substrato,
3,3',5,5'-tetrametilbencidina (TMB)
(Boehringer-Mannheim), en tampón
citrato-fosfato de pH 5,5 + H_{2}O_{2} al 0,04%,
y se dejó desarrollar el color durante 30 minutos a 37ºC. La
reacción se detuvo por adición de 50 \mul de H_{2}SO_{4} 2,5
M, y se leyó la absorbancia a 450 nm en un "Titerek Multiskan
Plus®" (Flow Labs).
Los linfocitos para la fusión se obtuvieron del
bazo de una oveja que había sido inmunizada repetidamente con
conjugados T3-BSA durante un periodo de 15 años, a
fin de obtener antisuero policlonal frente a las T3. El refuerzo
final tuvo lugar 1 semana antes de la fusión. Se separó aparte una
pequeña zona de bazo para producir una suspensión de células (los
grupos grandes de células no disociadas se desecharon). La
suspensión de células se lavó y se centrifugó dos veces en RPMI
(sin FCS ni suplementos). Antes de la fusión no se llevó a cabo
ningún otro procedimiento, esto es, ni mitógenos, ni
enriquecimientos, ni precultivo alguno.
Se llevaron a cabo fusiones paralelas utilizando
el partner de fusión SFP1 del heteromieloma, y el mieloma
NS2 de origen múrido. Las fusiones se realizaron en una proporción
de 8 células de bazo por 1 célula de mieloma, con un número total
de células de 9 x 10^{8} en cada uno de los casos, utilizando 1 ml
dePEG 500 al 50% (BDH) en RPMI a lo largo de 2 minutos, seguido por
dilución lenta con 20 ml de RPMI a lo largo de 8 minutos más. Las
fusiones se sembraron de la manera siguiente:
- i.
- FCS al 20%, RPMI, piruvato (1 mm), glutamina (2 mm), HAT (Gibco) más alimentadores del bazo de ratón.
- ii.
- FCS al 20%, RPMI, piruvato, glutamina, HAT + ningún alimentador.
- iii.
- FCS al 10%, suero de oveja al 10%, piruvato, glutamina, HAT más alimentadores.
- iv.
- FCS al 10%, suero de oveja al 10%, piruvato, glutamina, HAT, ningún alimentador.
\newpage
Cada una de las fusiones se realizó en 3 x
placas de 96 pocillos de cada uno de los 4 parámetros (24 x 96
pocillos en total). Durante la primera semana, se añadieron
penicilina y estreptomicina a los cultivos cuando el bazo se
extrajo y se transportó en condiciones no estériles, (tiempo de
tránsito aproximadamente 2 horas). Catorce días después de la
fusión, el HAT se reemplazó por HT.
El número de clones derivados de los diversos
tratamientos se puede ver en la Tabla 1. Es del todo evidente que
resultaron más líneas de células del cruce con el SFP1 (634 en
total) que con el NS2 (634 en total). Aunque no es significativo,
las células alimentadoras de ratón parecen ser beneficiosas en este
sistema desde el punto de vista del número de hibridomas
producidos. El suero de oveja no aumentó el número de hibridomas
producidos, a pesar de las indicaciones de lo contrario de la
literatura.
Dos meses después de la fusión, 57 líneas eran
todavía débilmente positivas; se eligió una línea para un ulterior
estudio puesto que era considerablemente más fuerte que las demás.
Ello tenía su origen en el cruce SFP1 x bazo hecho crecer en FCS al
20% sin células alimentadoras. La línea de células resultante 17C6
era visible al microscopio 11 días después de la fusión (las líneas
más precoces 4 días después de la fusión) pero no se consideró lo
suficientemente grande para la selección ("screening")
hasta 22 días después de la fusión. Aunque fuertemente positiva
para los anticuerpos T3 en este estadio, por RIA no era lo
suficientemente confluente, durante 2 semanas más, para transferir
a los pocillos de 2 ml, cuando el HAT en el medio fue substituido
por HT. La línea se subclonó 33 días después de la fusión (los
niveles de secreción de anticuerpos no habían disminuido) y se
volvió a subclonar de nuevo 3 meses después de la fusión. A pesar
del ritmo de crecimiento inicialmente muy lento, el ritmo aumentó
de manera que la línea actualmente se divide a velocidades
comparables a las de las líneas de múridos y humanas,
convencionales; esto es, aproximadamente 26 horas.
La Tabla 2 muestra el efecto de las
concentraciones de FCS y de suero de cordero sobre la producción de
anticuerpos. Otros experimentos que investigaban los efectos del
suero de cordero y mezclas de suero de cordero y FCS, o FCS solo,
sobre una gama del 5-20% sobre cultivos de
crecimiento exponencial mostró que, después de 1 semana en cultivo,
los niveles de actividad enlazante de las T3 eran iguales para el
FCS en la gama ensayada, con aproximadamente un 85% de unión T3
disponible (los cultivos confluentes se unirían un 100%). En la
misma gama, en el suero de cordero, aproximadamente el 45% de las
T3 estaba ligado, mientras que la mezcla de FCS y suero de cordero
mostró una unión intermedia del 55% después de 1 semana. Después de
48 horas de crecimiento, se puso de manifiesto que el suero de
cordero era mejor para la línea de células.
Se halló que la constante de asociación K_{a}
para el anticuerpo monoclonal de oveja 17C6 era de 2,6 x 10^{13}
l/mol, lo que es perfectamente comparable con el valor 1,39 x
10^{13} l/mol para el suero de un exudado precoz, y 2,13 x
10^{13} l/mol para el mejor exudado policlonal (4 meses antes de
la fusión). Las reactividades cruzadas de estos tres anticuerpos se
muestran en la Tabla 3. Las curvas estándar para el mejor antisuero
clonal y el monoclonal 17C6 eran
similares.
similares.
El 17C6 se subclasificó utilizando IgG1, IgG2,
IgA, IgM y cadenas ligeras, ovinas monoclonales, sobre un sistema
de transferencia por puntos basado en nitrocelulosa, y se halló que
era una IgG1.
La línea de células 17C6 es estable en cultivo
continuo. Desde el segundo subclón, no ha habido evidencia de
hipercrecimiento por células no secretoras ni disminución de la
producción de anticuerpos. La línea se ha vuelto a subclonar dos
veces y todos los subclones resultantes en ambas ocasiones
secretaban cantidades idénticas de anticuerpo. La línea de células
se ha congelado y descongelado con éxito y ha continuado produciendo
cantidades normales de anticuerpo. Los intentos para desestabilizar
la línea por "estrés" han fallado, secretando la línea niveles
similares de anticuerpo en FCS al 2,5 - 20%. Utilizando el lote de
FCS en el que se realizó la fusión, no se detectó ninguna variación
en los niveles de secreción de anticuerpo. Sin embargo, a lo largo
de un período de tiempo comparable, en medio exento de suero
Ultroser, las velocidades de secreción disminuyeron, pero se
volvieron a recuperar al volver a los medios que contenían suero. El
efecto está, pues, en el entorno de las células más bien que en un
cambio en el interior de la célula. Otras líneas de hibridomas, de
origen múrido y humano, han mostrado secretar cantidades
comparables de inmunoglobulina en medios tanto con suero como
exentos del mismo. Ello sugiere que los medios químicamente
definidos que soportan el crecimiento tanto del hibridoma de origen
múrido como el hibridoma de origen humano y las velocidades de
secreción comparables con suero se pueden modificar para
posibilitar que las líneas de origen ovino crezcan bajo tales
condiciones. El factor adicional requerido para esta línea de
células no se halla en las células alimentadoras de ratón.
Otros intentos de desestabilizar la línea de
células implicaban la subclonación en ausencia de factores de
crecimiento o de células alimentadoras. La línea de células se
subclonaba bien bajo estas condiciones, soportando el tipo de
estrés que muchas líneas de origen múrido robustas no pueden
tolerar. La línea de células no ha mostrado ningún requerimiento
para pasar por una fase de adaptación para resistir las fuerzas de
corte cuando se transfieren desde cultivos estáticos a cultivos
giratorios en FCS al 2,5%, a diferencia de algunas líneas de origen
múrido que necesitan una aclimatación.
El Ejemplo 2 que se aporta a continuación
ilustra la humanización del anticuerpo monoclonal de elevada
afinidad del Ejemplo 1.
El anticuerpo del Ejemplo 1 se somete a una
quimerización por cualquiera de las técnicas conocidas,
anteriormente descritas. El producto es un anticuerpo que
constituye una realización de la presente invención, adecuado para
a administración a los seres humanos.
Claims (10)
1. Anticuerpo monoclonal quimérico que
comprende la región constante de una inmunoglobulina humana y la
región variable de un anticuerpo monoclonal ovino o un anticuerpo
monoclonal de una vaca que presenta una afinidad de por lo menos
10^{11} l/mol.
2. Anticuerpo según la reivindicación 1, en
el que dicha afinidad es de por lo menos 10^{12} l/mol.
3. Anticuerpo según la reivindicación 1, en
el que dicha afinidad es de por lo menos 5 x 10^{12} l/mol.
4. Anticuerpo según la reivindicación 1, en
el que dicha afinidad es de por lo menos 10^{13} l/mol.
5. Fragmento de anticuerpo que es un
fragmento F(ab')2 o Fab de un anticuerpo según la
reivindicación 1, en el que por lo menos una parte deriva de una
inmunoglobulina humana.
6. Fragmento de anticuerpo según la
reivindicación 5, en el que dicha afinidad es de por lo menos
10^{12} l/mol.
7. Fragmento de anticuerpo según la
reivindicación 5, en el que dicha afinidad es de por lo menos 5 x
10^{12} l/mol.
8. Fragmento de anticuerpo según la
reivindicación 5, en el que dicha afinidad es de por lo menos
10^{13} l/mol.
9. Utilización de un anticuerpo según
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, para la preparación de un
medicamento destinado a su utilización en el tratamiento de un
sujeto humano que hospeda un antígeno al que se une un
anticuerpo.
10. Utilización de un fragmento de anticuerpo
según cualquiera de las reivindicaciones 5 a 8, para la preparación
de un medicamento destinado a su utilización en el tratamiento de un
sujeto humano que hospeda un antígeno al que se une el fragmento de
anticuerpo.
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