ES2202491T3 - Material de filtracion para la eliminacion de leucocitos. - Google Patents
Material de filtracion para la eliminacion de leucocitos.Info
- Publication number
- ES2202491T3 ES2202491T3 ES96942654T ES96942654T ES2202491T3 ES 2202491 T3 ES2202491 T3 ES 2202491T3 ES 96942654 T ES96942654 T ES 96942654T ES 96942654 T ES96942654 T ES 96942654T ES 2202491 T3 ES2202491 T3 ES 2202491T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- less
- leukocytes
- mentioned
- porous element
- eliminates
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 239000000463 material Substances 0.000 title claims abstract description 314
- 238000001914 filtration Methods 0.000 title claims description 155
- 230000008030 elimination Effects 0.000 title description 16
- 238000003379 elimination reaction Methods 0.000 title description 16
- 239000000835 fiber Substances 0.000 claims abstract description 348
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 claims abstract description 272
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 91
- 239000011148 porous material Substances 0.000 claims abstract description 87
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims description 88
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 78
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 claims description 72
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 claims description 55
- 239000008280 blood Substances 0.000 claims description 55
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 50
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 47
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims description 40
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims description 38
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 36
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 claims description 35
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 29
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 26
- 229920003043 Cellulose fiber Polymers 0.000 claims description 26
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 claims description 21
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 claims description 20
- 238000011084 recovery Methods 0.000 claims description 19
- 210000001772 blood platelet Anatomy 0.000 claims description 18
- 229920001577 copolymer Polymers 0.000 claims description 17
- 238000009630 liquid culture Methods 0.000 claims description 15
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 claims description 13
- 239000000178 monomer Substances 0.000 claims description 12
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 claims description 11
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 11
- 239000007924 injection Substances 0.000 claims description 8
- 238000002347 injection Methods 0.000 claims description 8
- 125000000524 functional group Chemical group 0.000 claims description 6
- 239000004627 regenerated cellulose Substances 0.000 claims description 5
- 210000001124 body fluid Anatomy 0.000 claims description 4
- 239000010839 body fluid Substances 0.000 claims description 4
- 239000002612 dispersion medium Substances 0.000 claims description 4
- 239000002609 medium Substances 0.000 claims description 4
- 238000007380 fibre production Methods 0.000 claims description 2
- 239000007789 gas Substances 0.000 claims description 2
- 238000012258 culturing Methods 0.000 claims 1
- 238000013467 fragmentation Methods 0.000 claims 1
- 238000006062 fragmentation reaction Methods 0.000 claims 1
- 230000008569 process Effects 0.000 abstract description 5
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 44
- 229920000728 polyester Polymers 0.000 description 33
- 238000012856 packing Methods 0.000 description 26
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 21
- 235000010980 cellulose Nutrition 0.000 description 20
- 238000005534 hematocrit Methods 0.000 description 20
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 19
- 239000002585 base Substances 0.000 description 17
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 description 17
- 238000000576 coating method Methods 0.000 description 17
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 15
- 239000000306 component Substances 0.000 description 15
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 13
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 11
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 11
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 10
- HMLSBRLVTDLLOI-UHFFFAOYSA-N 1-(dimethylamino)ethyl 2-methylprop-2-enoate Chemical compound CN(C)C(C)OC(=O)C(C)=C HMLSBRLVTDLLOI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- 239000012503 blood component Substances 0.000 description 9
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 9
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 8
- JKNCOURZONDCGV-UHFFFAOYSA-N 2-(dimethylamino)ethyl 2-methylprop-2-enoate Chemical compound CN(C)CCOC(=O)C(C)=C JKNCOURZONDCGV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- QSHDDOUJBYECFT-UHFFFAOYSA-N mercury Chemical compound [Hg] QSHDDOUJBYECFT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 229910052753 mercury Inorganic materials 0.000 description 7
- WOBHKFSMXKNTIM-UHFFFAOYSA-N Hydroxyethyl methacrylate Chemical compound CC(=C)C(=O)OCCO WOBHKFSMXKNTIM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N Sulfuric acid Chemical compound OS(O)(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 6
- KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N citric acid Chemical compound OC(=O)CC(O)(C(O)=O)CC(O)=O KRKNYBCHXYNGOX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 4
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 4
- 239000003634 thrombocyte concentrate Substances 0.000 description 4
- 241000589220 Acetobacter Species 0.000 description 3
- 229920000297 Rayon Polymers 0.000 description 3
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 3
- 239000011230 binding agent Substances 0.000 description 3
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 3
- 230000002950 deficient Effects 0.000 description 3
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 3
- 239000002657 fibrous material Substances 0.000 description 3
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 3
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 3
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 3
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 description 3
- 239000002964 rayon Substances 0.000 description 3
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 3
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 3
- SJIXRGNQPBQWMK-UHFFFAOYSA-N 2-(diethylamino)ethyl 2-methylprop-2-enoate Chemical compound CCN(CC)CCOC(=O)C(C)=C SJIXRGNQPBQWMK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- OMIGHNLMNHATMP-UHFFFAOYSA-N 2-hydroxyethyl prop-2-enoate Chemical compound OCCOC(=O)C=C OMIGHNLMNHATMP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 2
- VVJKKWFAADXIJK-UHFFFAOYSA-N Allylamine Chemical compound NCC=C VVJKKWFAADXIJK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 208000023275 Autoimmune disease Diseases 0.000 description 2
- 108010059892 Cellulase Proteins 0.000 description 2
- YASYEJJMZJALEJ-UHFFFAOYSA-N Citric acid monohydrate Chemical compound O.OC(=O)CC(O)(C(O)=O)CC(O)=O YASYEJJMZJALEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 2
- 206010028813 Nausea Diseases 0.000 description 2
- 239000004952 Polyamide Substances 0.000 description 2
- 206010070834 Sensitisation Diseases 0.000 description 2
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 208000036142 Viral infection Diseases 0.000 description 2
- DZBUGLKDJFMEHC-UHFFFAOYSA-N acridine Chemical compound C1=CC=CC2=CC3=CC=CC=C3N=C21 DZBUGLKDJFMEHC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241001148470 aerobic bacillus Species 0.000 description 2
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 2
- 150000008064 anhydrides Chemical class 0.000 description 2
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 229940106157 cellulase Drugs 0.000 description 2
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 2
- 229960004106 citric acid Drugs 0.000 description 2
- 229960002303 citric acid monohydrate Drugs 0.000 description 2
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 2
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 2
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 2
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 2
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 2
- 238000010559 graft polymerization reaction Methods 0.000 description 2
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 2
- JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N lactic acid Chemical compound CC(O)C(O)=O JVTAAEKCZFNVCJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 230000008693 nausea Effects 0.000 description 2
- 210000002381 plasma Anatomy 0.000 description 2
- 229920002239 polyacrylonitrile Polymers 0.000 description 2
- 229920002647 polyamide Polymers 0.000 description 2
- 229920000098 polyolefin Polymers 0.000 description 2
- 229920002635 polyurethane Polymers 0.000 description 2
- 239000004814 polyurethane Substances 0.000 description 2
- 238000012805 post-processing Methods 0.000 description 2
- 238000011045 prefiltration Methods 0.000 description 2
- 230000008313 sensitization Effects 0.000 description 2
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 2
- 239000001509 sodium citrate Substances 0.000 description 2
- NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K sodium citrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 2
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 2
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 2
- -1 vinyl compound Chemical class 0.000 description 2
- 229920002554 vinyl polymer Polymers 0.000 description 2
- 230000009385 viral infection Effects 0.000 description 2
- 125000000954 2-hydroxyethyl group Chemical group [H]C([*])([H])C([H])([H])O[H] 0.000 description 1
- WWJCRUKUIQRCGP-UHFFFAOYSA-N 3-(dimethylamino)propyl 2-methylprop-2-enoate Chemical compound CN(C)CCCOC(=O)C(C)=C WWJCRUKUIQRCGP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KFDVPJUYSDEJTH-UHFFFAOYSA-N 4-ethenylpyridine Chemical compound C=CC1=CC=NC=C1 KFDVPJUYSDEJTH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- MHQZDNQHLGFBRN-UHFFFAOYSA-N 5-ethenyl-1h-imidazole Chemical compound C=CC1=CNC=N1 MHQZDNQHLGFBRN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 244000235858 Acetobacter xylinum Species 0.000 description 1
- 235000002837 Acetobacter xylinum Nutrition 0.000 description 1
- 229930024421 Adenine Natural products 0.000 description 1
- GFFGJBXGBJISGV-UHFFFAOYSA-N Adenine Chemical compound NC1=NC=NC2=C1N=CN2 GFFGJBXGBJISGV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000589158 Agrobacterium Species 0.000 description 1
- FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N D-Mannitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N 0.000 description 1
- 206010018910 Haemolysis Diseases 0.000 description 1
- 206010019233 Headaches Diseases 0.000 description 1
- 229930195725 Mannitol Natural products 0.000 description 1
- CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-M Methacrylate Chemical compound CC(=C)C([O-])=O CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-N Methacrylic acid Chemical class CC(=C)C(O)=O CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- WHNWPMSKXPGLAX-UHFFFAOYSA-N N-Vinyl-2-pyrrolidone Chemical compound C=CN1CCCC1=O WHNWPMSKXPGLAX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 1
- 208000002193 Pain Diseases 0.000 description 1
- 229920003171 Poly (ethylene oxide) Chemical group 0.000 description 1
- 239000004698 Polyethylene Substances 0.000 description 1
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 1
- 241000589516 Pseudomonas Species 0.000 description 1
- 206010037660 Pyrexia Diseases 0.000 description 1
- 241000589180 Rhizobium Species 0.000 description 1
- 241000192023 Sarcina Species 0.000 description 1
- 208000003441 Transfusion reaction Diseases 0.000 description 1
- XTXRWKRVRITETP-UHFFFAOYSA-N Vinyl acetate Chemical compound CC(=O)OC=C XTXRWKRVRITETP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OBHBXMOWIKWQNI-UHFFFAOYSA-N [3-(dimethylamino)-2-hydroxypropyl] 2-methylprop-2-enoate Chemical compound CN(C)CC(O)COC(=O)C(C)=C OBHBXMOWIKWQNI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000010306 acid treatment Methods 0.000 description 1
- 229920006397 acrylic thermoplastic Polymers 0.000 description 1
- 229960000643 adenine Drugs 0.000 description 1
- 230000001464 adherent effect Effects 0.000 description 1
- 239000003513 alkali Substances 0.000 description 1
- 150000001350 alkyl halides Chemical class 0.000 description 1
- 125000003368 amide group Chemical group 0.000 description 1
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O ammonium group Chemical group [NH4+] QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- 239000003146 anticoagulant agent Substances 0.000 description 1
- 229940127219 anticoagulant drug Drugs 0.000 description 1
- 125000003118 aryl group Chemical group 0.000 description 1
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000000903 blocking effect Effects 0.000 description 1
- 230000036770 blood supply Effects 0.000 description 1
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 229920002301 cellulose acetate Polymers 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 239000002131 composite material Substances 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 125000004122 cyclic group Chemical group 0.000 description 1
- 230000006735 deficit Effects 0.000 description 1
- 150000004683 dihydrates Chemical class 0.000 description 1
- 230000003467 diminishing effect Effects 0.000 description 1
- 238000007599 discharging Methods 0.000 description 1
- 230000002500 effect on skin Effects 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 1
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 1
- 230000006870 function Effects 0.000 description 1
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 1
- 208000024908 graft versus host disease Diseases 0.000 description 1
- 238000000227 grinding Methods 0.000 description 1
- 231100000869 headache Toxicity 0.000 description 1
- 230000008588 hemolysis Effects 0.000 description 1
- 230000002949 hemolytic effect Effects 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 description 1
- 125000002883 imidazolyl group Chemical group 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 description 1
- 238000011835 investigation Methods 0.000 description 1
- 239000004310 lactic acid Substances 0.000 description 1
- 235000014655 lactic acid Nutrition 0.000 description 1
- 210000004698 lymphocyte Anatomy 0.000 description 1
- 239000000594 mannitol Substances 0.000 description 1
- 235000010355 mannitol Nutrition 0.000 description 1
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 1
- FQPSGWSUVKBHSU-UHFFFAOYSA-N methacrylamide Chemical compound CC(=C)C(N)=O FQPSGWSUVKBHSU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 description 1
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000004806 packaging method and process Methods 0.000 description 1
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 1
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 1
- 210000004623 platelet-rich plasma Anatomy 0.000 description 1
- 229920003229 poly(methyl methacrylate) Polymers 0.000 description 1
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 1
- 229920000573 polyethylene Polymers 0.000 description 1
- 229920000136 polysorbate Polymers 0.000 description 1
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 1
- 125000002924 primary amino group Chemical group [H]N([H])* 0.000 description 1
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 1
- 125000004076 pyridyl group Chemical group 0.000 description 1
- 150000003242 quaternary ammonium salts Chemical class 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 125000000467 secondary amino group Chemical group [H]N([*:1])[*:2] 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 1
- ISXSCDLOGDJUNJ-UHFFFAOYSA-N tert-butyl prop-2-enoate Chemical compound CC(C)(C)OC(=O)C=C ISXSCDLOGDJUNJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 125000001302 tertiary amino group Chemical group 0.000 description 1
- RYFMWSXOAZQYPI-UHFFFAOYSA-K trisodium phosphate Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[O-]P([O-])([O-])=O RYFMWSXOAZQYPI-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- CRKADHVTAQCXRA-UHFFFAOYSA-K trisodium;phosphate;dihydrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]P([O-])([O-])=O CRKADHVTAQCXRA-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 238000001291 vacuum drying Methods 0.000 description 1
- 125000000391 vinyl group Chemical group [H]C([*])=C([H])[H] 0.000 description 1
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D39/00—Filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D39/14—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material
- B01D39/16—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material of organic material, e.g. synthetic fibres
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D39/00—Filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D39/08—Filter cloth, i.e. woven, knitted or interlaced material
- B01D39/083—Filter cloth, i.e. woven, knitted or interlaced material of organic material
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D39/00—Filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D39/14—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material
- B01D39/16—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material of organic material, e.g. synthetic fibres
- B01D39/1607—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material of organic material, e.g. synthetic fibres the material being fibrous
- B01D39/1623—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material of organic material, e.g. synthetic fibres the material being fibrous of synthetic origin
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D39/00—Filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D39/14—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material
- B01D39/16—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material of organic material, e.g. synthetic fibres
- B01D39/18—Other self-supporting filtering material ; Other filtering material of organic material, e.g. synthetic fibres the material being cellulose or derivatives thereof
-
- D—TEXTILES; PAPER
- D04—BRAIDING; LACE-MAKING; KNITTING; TRIMMINGS; NON-WOVEN FABRICS
- D04H—MAKING TEXTILE FABRICS, e.g. FROM FIBRES OR FILAMENTARY MATERIAL; FABRICS MADE BY SUCH PROCESSES OR APPARATUS, e.g. FELTS, NON-WOVEN FABRICS; COTTON-WOOL; WADDING ; NON-WOVEN FABRICS FROM STAPLE FIBRES, FILAMENTS OR YARNS, BONDED WITH AT LEAST ONE WEB-LIKE MATERIAL DURING THEIR CONSOLIDATION
- D04H1/00—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres
- D04H1/40—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres from fleeces or layers composed of fibres without existing or potential cohesive properties
- D04H1/42—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres from fleeces or layers composed of fibres without existing or potential cohesive properties characterised by the use of certain kinds of fibres insofar as this use has no preponderant influence on the consolidation of the fleece
- D04H1/425—Cellulose series
- D04H1/4258—Regenerated cellulose series
-
- D—TEXTILES; PAPER
- D04—BRAIDING; LACE-MAKING; KNITTING; TRIMMINGS; NON-WOVEN FABRICS
- D04H—MAKING TEXTILE FABRICS, e.g. FROM FIBRES OR FILAMENTARY MATERIAL; FABRICS MADE BY SUCH PROCESSES OR APPARATUS, e.g. FELTS, NON-WOVEN FABRICS; COTTON-WOOL; WADDING ; NON-WOVEN FABRICS FROM STAPLE FIBRES, FILAMENTS OR YARNS, BONDED WITH AT LEAST ONE WEB-LIKE MATERIAL DURING THEIR CONSOLIDATION
- D04H1/00—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres
- D04H1/40—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres from fleeces or layers composed of fibres without existing or potential cohesive properties
- D04H1/42—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres from fleeces or layers composed of fibres without existing or potential cohesive properties characterised by the use of certain kinds of fibres insofar as this use has no preponderant influence on the consolidation of the fleece
- D04H1/4382—Stretched reticular film fibres; Composite fibres; Mixed fibres; Ultrafine fibres; Fibres for artificial leather
- D04H1/43835—Mixed fibres, e.g. at least two chemically different fibres or fibre blends
-
- D—TEXTILES; PAPER
- D04—BRAIDING; LACE-MAKING; KNITTING; TRIMMINGS; NON-WOVEN FABRICS
- D04H—MAKING TEXTILE FABRICS, e.g. FROM FIBRES OR FILAMENTARY MATERIAL; FABRICS MADE BY SUCH PROCESSES OR APPARATUS, e.g. FELTS, NON-WOVEN FABRICS; COTTON-WOOL; WADDING ; NON-WOVEN FABRICS FROM STAPLE FIBRES, FILAMENTS OR YARNS, BONDED WITH AT LEAST ONE WEB-LIKE MATERIAL DURING THEIR CONSOLIDATION
- D04H1/00—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres
- D04H1/40—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres from fleeces or layers composed of fibres without existing or potential cohesive properties
- D04H1/42—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres from fleeces or layers composed of fibres without existing or potential cohesive properties characterised by the use of certain kinds of fibres insofar as this use has no preponderant influence on the consolidation of the fleece
- D04H1/4382—Stretched reticular film fibres; Composite fibres; Mixed fibres; Ultrafine fibres; Fibres for artificial leather
- D04H1/43838—Ultrafine fibres, e.g. microfibres
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
- A61M2202/00—Special media to be introduced, removed or treated
- A61M2202/04—Liquids
- A61M2202/0413—Blood
- A61M2202/0439—White blood cells; Leucocytes
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2239/00—Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D2239/02—Types of fibres, filaments or particles, self-supporting or supported materials
- B01D2239/0208—Single-component fibres
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2239/00—Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D2239/04—Additives and treatments of the filtering material
- B01D2239/0414—Surface modifiers, e.g. comprising ion exchange groups
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2239/00—Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D2239/04—Additives and treatments of the filtering material
- B01D2239/0414—Surface modifiers, e.g. comprising ion exchange groups
- B01D2239/0421—Rendering the filter material hydrophilic
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2239/00—Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D2239/04—Additives and treatments of the filtering material
- B01D2239/0471—Surface coating material
- B01D2239/0478—Surface coating material on a layer of the filter
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2239/00—Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D2239/06—Filter cloth, e.g. knitted, woven non-woven; self-supported material
- B01D2239/0604—Arrangement of the fibres in the filtering material
- B01D2239/0622—Melt-blown
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2239/00—Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D2239/06—Filter cloth, e.g. knitted, woven non-woven; self-supported material
- B01D2239/0604—Arrangement of the fibres in the filtering material
- B01D2239/064—The fibres being mixed
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2239/00—Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D2239/06—Filter cloth, e.g. knitted, woven non-woven; self-supported material
- B01D2239/065—More than one layer present in the filtering material
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2239/00—Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D2239/12—Special parameters characterising the filtering material
- B01D2239/1208—Porosity
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2239/00—Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D2239/12—Special parameters characterising the filtering material
- B01D2239/1216—Pore size
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2239/00—Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
- B01D2239/12—Special parameters characterising the filtering material
- B01D2239/1291—Other parameters
-
- D—TEXTILES; PAPER
- D04—BRAIDING; LACE-MAKING; KNITTING; TRIMMINGS; NON-WOVEN FABRICS
- D04H—MAKING TEXTILE FABRICS, e.g. FROM FIBRES OR FILAMENTARY MATERIAL; FABRICS MADE BY SUCH PROCESSES OR APPARATUS, e.g. FELTS, NON-WOVEN FABRICS; COTTON-WOOL; WADDING ; NON-WOVEN FABRICS FROM STAPLE FIBRES, FILAMENTS OR YARNS, BONDED WITH AT LEAST ONE WEB-LIKE MATERIAL DURING THEIR CONSOLIDATION
- D04H1/00—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres
- D04H1/40—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres from fleeces or layers composed of fibres without existing or potential cohesive properties
- D04H1/42—Non-woven fabrics formed wholly or mainly of staple fibres or like relatively short fibres from fleeces or layers composed of fibres without existing or potential cohesive properties characterised by the use of certain kinds of fibres insofar as this use has no preponderant influence on the consolidation of the fleece
- D04H1/4382—Stretched reticular film fibres; Composite fibres; Mixed fibres; Ultrafine fibres; Fibres for artificial leather
- D04H1/43825—Composite fibres
- D04H1/4383—Composite fibres sea-island
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S264/00—Plastic and nonmetallic article shaping or treating: processes
- Y10S264/48—Processes of making filters
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/8215—Microorganisms
- Y10S435/822—Microorganisms using bacteria or actinomycetales
- Y10S435/823—Acetobacter
Landscapes
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Textile Engineering (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Filtering Materials (AREA)
- External Artificial Organs (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
UN MATERIAL FILTRANTE PARA LA SEPARACION DE LEUCOCITOS QUE CONSISTE EN UN ELEMENTO POROSO QUE TIENE POROS FINOS DE UN DIAMETRO DE PORO MEDIO DE NO MENOS DE 1,0 {MI}M PERO MENOR DE 100 {MI}M Y UNA ESTRUCTURA DE FIBRA COMPUESTA DE UNA PLURALIDAD DE FIBRAS QUE TIENEN UN DIAMETRO DE FIBRA MEDIO DE NO MENOS DE 0,01 {MI}M PERO MENOS DE 1,0 {MI}M MANTENIDA SOBRE EL MATERIAL POROSO ANTERIOR, EN EL QUE LA POROSIDAD DEL MATERIAL FILTRANTE ANTERIOR NO ES MENOS DEL 50 %, PERO MENOR DEL 95 %, SIENDO LA PROPORCION ENTRE LA ESTRUCTURA DE FIBRA ANTERIOR Y EL MATERIAL FILTRANTE ANTERIOR DE NO MENOS DEL 0,01 % EN PESO, PERO MENOS DEL 30 % EN PESO, SIENDO LA PROPORCION ENTRE EL DIAMETRO DE PORO MEDIO DEL ELEMENTO POROSO ANTERIOR Y EL DIAMETRO MEDIO DE LA FIBRA DE LA ESTRUCTURA DE FIBRA ANTERIOR DE NO MENOS DE 2, PERO MENOR DE 2.000, FORMANDO LA ESTRUCTURA DE LA FIBRA ANTERIOR UNA ESTRUCTURA RETICULAR; UN PROCEDIMIENTO PARA LA PRODUCCION DEL MISMO Y UN APARATO PARA SEPARAR LEUCOCITOS UTILIZANDO EL MATERIAL FILTRANTE ANTERIOR.
Description
Material de filtración para la eliminación de
leucocitos.
La presente invención se refiere a un material de
filtro que elimina leucocitos a partir de una solución que los
contiene, a un procedimiento para fabricarlo, a un aparato que
elimina los leucocitos utilizando aquél y a un procedimiento para
eliminar los leucocitos.
En el ámbito de la transfusión sanguínea, además
de la transfusión de sangre denominada "completa", en la que se
transfunde una preparación sanguínea completa preparada añadiendo un
anticoagulante a sangre recogida de donantes, se ha llevado a cabo
generalmente hasta la fecha una transfusión denominada de
"componente sanguíneo", por la que el componente de la sangre
que necesita el receptor, separado de la preparación sanguínea
completa, se transfunde a éste. La transfusión de "componente
sanguíneo" incluye la transfusión de los hematíes, la transfusión
de las plaquetas, la transfusión del plasma y similares, dependiendo
del tipo de componente sanguíneo que necesite un receptor, y las
preparaciones del componente de la sangre que se utilizan en estas
transfusiones incluyen la preparación eritrocítica, la preparación
plaquetaria, la preparación plasmática y similares. Recientemente,
se ha extendido una transfusión de sangre denominada de eliminación
de leucocitos, por la que una preparación de sangre se transfunde
después de que los leucocitos mezclados en la preparación del
componente sanguíneo se han eliminado. Esto se debe a que se ha
aclarado que a la transfusión sanguínea, acompañan efectos
secundarios relativamente poco importantes, tal como dolor de
cabeza, náuseas, escalofríos, reacciones transfusionales febriles no
hemolíticas y similares; mientras que graves efectos secundarios
tales como sensibilización aloantigénica, infección vírica, GVHD
post-transfusional y similares, que afectan
gravemente al receptor, están causados principalmente por los
leucocitos mezclados en una preparación sanguínea utilizada en la
transfusión.
Con objeto de evitar los efectos secundarios
relativamente poco importantes que incluyen dolor de cabeza,
náuseas, escalofríos, fiebre y similares, se considera que es
suficiente que la eliminación de los leucocitos en una preparación
sanguínea alcance una proporción de leucocitos residuales de
10^{-1} a 10^{-2} o menos. Asimismo, con objeto de evitar la
sensibilización aloantigénica y la infección vírica que son efectos
secundarios graves, se considera que es suficiente que la
eliminación de los leucocitos alcance una proporción de leucocitos
residuales de 10^{-4} a 10^{-6} o menos.
El procedimiento para eliminar los leucocitos de
una preparación sanguínea se clasifica a grandes rasgos en dos
métodos, uno de los cuales consiste en un método de centrifugación
por el que los leucocitos se separan y eliminan, utilizando la
diferencia específica de gravedad de los componentes sanguíneos, un
separador centrífugo y un método de filtración, por el que los
leucocitos se eliminan utilizando un material de filtro que está
formado por un elemento poroso tal como un material fibroso, un
material poroso que tiene células interconectadas o similares. El
método de filtración tiene ventajas tales como el de llevar a cabo
la eliminación de los leucocitos de forma excelente, un modo
operativo sencillo, un coste bajo, etc., de forma que el método de
filtración se ha extendido. Además, como método de filtración, un
método que comprende la eliminación de los leucocitos mediante
adherencia o adsorción utilizando una estructura sin tejer como
material de filtro, es ahora el que más se extiende, a causa de este
método es particularmente excelente al llevar a cabo la eliminación
de los leucocitos.
El mecanismo de la eliminación de los leucocitos
mediante un aparato de filtración utilizando el material fibroso
anteriormente mencionado o el material poroso, se atribuye
principalmente al hecho de que el leucocito que ha contactado con
las superficies del material de filtro se pega o se adhiere a las
superficies del material de filtro. Por ejemplo, la patente
EP-A-0155003 da a conocer una
técnica por la que una estructura sin tejer se emplea como material
de filtro. Además, la patente WO93/01880 da a conocer un material de
filtro que elimina los leucocitos, que se produjo dispersando en un
medio de dispersión una masa de muchos trozos pequeños de fibra con
diámetros no superiores a 0,01 \mum y con una longitud de 1 a 50
\mum aproximadamente, junto con fibras cortas capaces de giro y de
estar tejidas, de una finura de aproximadamente 0,05 a 0,75 d y una
longitud media de 3 a 15 mm, y eliminando el medio de dispersión a
partir de la dispersión resultante.
La patente EP 0 612 550 da a conocer un filtro de
sangre en el que diversas fibras fibriladas están en espacios vacíos
de una estructura formada por fibras. Un filtro con dicha estructura
al azar de tipo red no es satisfactoria cuando se utiliza para la
filtración sanguínea en términos de la tasa promedio de tratamiento
y de la proporción del contenido leucocítico residual.
El filtro existente que elimina leucocitos
ejecuta esta eliminación de forma que disminuye el número de los
leucocitos residuales a no más de 1 x 10^{5}. Ante tales
circunstancias, han aparecido en el mercado dos peticiones para el
filtro de eliminación de leucocitos.
La primera petición es aumentar la recuperación
del componente útil y mejorar el manejo, haciendo innecesaria la
operación de recuperación del componente útil que permanece en el
filtro y en el circuito, mediante la presencia de una solución
salina fisiológica y aire. En particular, la sangre que constituye
el material inicial para la preparación sanguínea es en muchos casos
un material precioso, proporcionado por una donación bien
intencionada de sangre, y la sangre que ha permanecido en el filtro
y se ha vuelto imposible recuperarla, se raspa tal cual está, junto
con el filtro, y se desecha. Por tanto, es muy significativo
aumentar la recuperación del componente útil comparándolo con el
filtro existente de eliminación leucocitaria. Sin embargo, en el
caso del filtro eliminador de leucocitos que utiliza la técnica
convencional, es difícil aumentar mucho la recuperación del
componente útil.
La segunda petición es alcanzar una tasa más alta
de eliminación de los leucocitos que el filtro existente de
eliminación, y evitar completamente un efecto secundario grave que
pudiera estar causado por los leucocitos transfundidos a un
paciente. Sin embargo, con el filtro que elimina los leucocitos que
utiliza la técnica convencional, es difícil alcanzar una tasa tan
alta de eliminación leucocitaria, de modo que pueda evitarse
completamente dicho efecto secundario.
El primer objetivo de la presente invención es
proporcionar un material de filtro que elimine los leucocitos y que
ejecute de forma mucho más intensa esta eliminación leucocitaria por
unidad de volumen que el material de filtro convencional, y en el
cual el flujo de una solución que contenga los leucocitos sea
aceptable. Este material de filtro es un material que elimina
leucocitos, que comprende un elemento poroso con poros finos de un
diámetro promedio de poro no inferior a 1,0 \mum, pero menor que
100 \mum y una estructura fibrosa compuesta por diversas fibras
que muestran un diámetro promedio de fibra no inferior a 0,01
\mum, pero menor que 1,0 \mum, que se mantienen en el elemento
poroso mencionado y en el cual la porosidad del material de filtro
anterior no es menor que el 50% pero menor que el 95%; la proporción
de la estructura fibrosa anterior respecto a dicho material de
filtro (la palabra "proporción" se denominará "proporción de
mantenimiento" de ahora en adelante en la presente memoria) no es
menor que el 0,01% en peso pero menor que el 30% en peso; la
proporción entre el diámetro promedio de poro de los poros del
elemento poroso mencionado (al que se hará referencia en algunos
casos de ahora en adelante como el diámetro promedio de poro del
elemento poroso) y el diámetro promedio de fibra de las fibras que
constituyen la estructura fibrosa antes mencionada (al que se hará
referencia en algunos casos en lo sucesivo como el diámetro promedio
de fibra de la estructura fibrosa) no es menor que 2 pero menor que
2.000; y la estructura fibrosa mencionada forma una estructura
reticulada. Estos inventores han encontrado que cuando dicho
material de filtro eliminador de leucocitos se utiliza, puede
alcanzarse el primer objetivo antes mencionado.
El segundo objetivo de la presente invención es
proporcionar un procedimiento para la producción del material de
filtro de la presente invención que elimine los leucocitos. Este
procedimiento es uno que produzca un material de filtro en el cual
fibras con un diámetro promedio de fibra no inferior a 0,01 \mum,
pero inferior a 1,0 \mum, obtenidas fragmentando fibras capaces de
ser fragmentadas, se dispersan en un disolvente y se depositan y
mantienen sobre un elemento poroso con finos poros que poseen un
diámetro promedio no inferior a 1,0 \mum pero inferior a 100
\mum (al que se hace referencia en algunos casos a continuación en
la presente memoria como el elemento poroso con un diámetro promedio
de poro no inferior a 1,0 \mum pero inferior a 100 \mum); un
procedimiento para la producción de un material de filtro, que
incluye permitir la coexistencia en un medio de cultivo líquido de
un microorganismo que posee una capacidad para producir fibras de
celulosa, y de un elemento poroso con un diámetro promedio de poro
no inferior a 1,0 \mum pero inferior a 100 \mum, y para el
cultivo del microorganismo; o similar. Los presentes inventores han
encontrado que según tal procedimiento, puede producirse de manera
muy efectiva el material de filtro que elimine los leucocitos.
El tercer objetivo de la presente invención es
proporcionar un aparato de filtración para eliminar los leucocitos,
que puede eliminar los leucocitos a partir de una solución que los
contiene tal como una preparación sanguínea completa o entera, una
preparación eritrocítica, una preparación plaquetaria o similar,
mientras inhiba la pérdida del componente útil de la sangre y
alcance una alta tasa de eliminación de los leucocitos; y un
procedimiento para eliminar a éstos. Estos inventores han encontrado
que cuando una solución que contiene leucocitos se filtra mediante
un aparato con un filtro para eliminar aquéllos, en el cual un
material de filtro que elimina los leucocitos está apropiadamente
dispuesto, que consiste en un elemento poroso con un diámetro
promedio de poro no inferior a 1,0 \mum pero inferior a 100 \mum
y una estructura fibrosa compuesta por varias fibras con un diámetro
promedio de fibra no inferior a 0,01 \mum pero inferior a 1,0
\mum que se mantiene sobre el elemento poroso mencionado (a dicha
estructura fibrosa se hace referencia a continuación en la presente
memoria como la estructura fibrosa con una diámetro promedio de
fibra no inferior a 0,01 \mum pero inferior a 1,0 \mum) y en el
cual la porosidad del material de filtro no es inferior al 50% pero
es inferior al 95%; la proporción de mantenimiento de la estructura
fibrosa mencionada no es inferior al 0,01% en peso pero es inferior
que el 30% en peso; la proporción entre el diámetro promedio de poro
del elemento poroso mencionado y del diámetro promedio de la fibra
de la estructura fibrosa mencionada no es inferior a 2 pero es menor
que 2.000; y la estructura fibrosa anterior forma una estructura
reticulada, la pérdida del componente sanguíneo útil puede
disminuirse y puede alcanzarse una alta tasa de eliminación de los
leucocitos.
Estos inventores han realizado una amplia
investigación con objeto de alcanzar los objetivos anteriores, y han
finalizado consecuentemente la presente invención que se refiere a
un material de filtro eliminador de leucocitos que consiste en un
elemento poroso con un diámetro promedio de poro no inferior a 1,0
\mum pero inferior a 100 \mum, y una estructura fibrosa con un
diámetro promedio de fibra de 0,01 \mum pero inferior a 1,0
\mum, que se mantiene sobre el elemento poroso mencionado y en el
cual la porosidad del material de filtro mencionado no es inferior
al 50% pero es menor que el 95 %; la proporción de mantenimiento de
la estructura fibrosa mencionada con respecto al material de filtro
mencionado no es inferior al 0,01 % en peso pero es inferior que el
30% en peso; la proporción entre el diámetro promedio de poro del
elemento poroso mencionado y del diámetro promedio de la fibra de la
estructura fibrosa mencionada no es inferior a 2 pero es menor que
2.000; y la estructura fibrosa anterior forma una estructura
reticulada.
La figura 1 es una microfotografía electrónica de
un material de filtro con una estructura reticulada curva.
La figura 2 es una microfotografía electrónica de
un material de filtro con una estructura reticulada poligonal.
La figura 3 es una microfotografía electrónica de
un material de filtro con una estructura sin tejer de la técnica
anterior, cuyas fibras con distintos diámetros de fibra están
mezcladas y entrelazadas.
El diámetro promedio de fibras al que se ha hecho
referencia en la presente invención es un valor obtenido a partir de
la realización de un rastreo o escaneado electromicrográfico de las
fibras que constituyen la estructura fibrosa, de la medición de
diámetros de por lo menos 100 fibras seleccionadas al azar y del
cálculo del valor promedio de los mismos. La medición del diámetro
promedio de las fibras puede llevarse a cabo antes de mantener las
fibras sobre el elemento poroso, que es un material de base, o
después de mantener las fibras sobre el elemento poroso, que es un
material de base. En particular, cuando el elemento poroso está
compuesto por la reunión de fibras, es preferible medir el diámetro
promedio de las fibras antes de establecer el mantenimiento de éstas
sobre el elemento poroso, debido a que la medición puede ser llevada
a cabo de un modo más exacto.
Las fibras con un diámetro promedio de fibra
inferior a 0,01 \mum poseen una resistencia baja, y cuando una
solución que contiene leucocitos es tratada, las fibras tienden a
fragmentarse al colisionar con el leucocito, otros componentes
sanguíneos o similares, de forma que las fibras mencionadas no son
apropiadas para los objetivos de la presente invención. Además, las
fibras con un diámetro promedio de fibra no inferior a 1,0 \mum
hacen que la porosidad del material de filtro sea más pequeña, por
lo que el flujo de una solución que contenga leucocitos se vuelve
peor, de forma que las fibras mencionadas no son apropiadas para los
objetivos de la presente invención. Con objeto de contactar
eficientemente a los linfocitos y similares, que tienen un diámetro
relativamente pequeño entre los leucocitos y son poco adherentes, en
muchos lugares del material de filtro y capturarlos, el diámetro
promedio de las fibras no debe ser inferior, preferentemente, a 0,01
\mum, pero menor a 0,8 \mum.
Además, en la estructura fibrosa de esta
invención, las fibras que poseen un diámetro promedio de fibra muy
pequeño, forman una estructura reticulada. Tal estructura fibrosa
reticulada se mantiene sobre el elemento poroso. En esta invención,
que la estructura fibrosa se mantenga sobre el elemento poroso
significa que dicha estructura se encuentra de forma que las partes
del elemento poroso que constituyen un material de base, están
cubiertas por ella, fijándose sobre el material de base, tal como se
muestra en la figura 1 o figura 2. La figura 1 y la figura 2 son
microfotografías electrónicas de los materiales del filtro de esta
invención, que muestran típicas estructuras reticuladas. Basándose
en estas figuras 1 y 2 a continuación se describen las
características de la estructura física del material de filtro de
esta invención.
En el material de filtro de la presente
invención, muchas fibras con un diámetro promedio de fibra no
inferior a 0,01 \mum, pero inferior a 1,0 \mum, forman una
estructura reticulada y constituyen la estructura fibrosa, la cual
es mantenida sobre un elemento poroso que posee finos poros con un
diámetro promedio no inferior a 1,0 \mum pero menor que 100
\mum. Sin embargo, las fibras que constituyen la estructura
fibrosa no forman un haz, sino que tienen la forma de una denominada
fibra única, en la que las fibras están divididas, estando muchas de
dichas fibras físicamente entrelazadas para formar una estructura
reticulada. La estructura reticulada a la que se hace referencia en
la presente invención consiste en una formación en la que las redes
que la conforman están curvadas, porque las fibras que constituyen
esta estructura poseen una estructura curvada, tal como se
representa en la figura 1 y, debido a que estas fibras que
constituyen la estructura fibrosa poseen una estructura lineal tal
como se representa en la figura 2, las redes de dicha estructura son
poligonales.
Cuando esta estructura fibrosa reticular es
mantenida uniformemente sobre el elemento poroso en un corte
transversal perpendicular al flujo de la solución que contiene los
leucocitos, éstos pueden ser capturados con una gran eficiencia de
forma preferente. Que la estructura fibrosa se mantiene
uniformemente sobre el elemento poroso en un corte transversal
perpendicular al flujo de la solución que contiene los leucocitos,
significa que cuando partes del material del filtro en el corte
transversal perpendicular al flujo de la solución que contiene los
leucocitos se muestrean al azar, la cantidad (densidad) de la
estructura fibrosa contenida en cada una de las partes que se han
muestreado del material del filtro, es sustancialmente igual, y esta
cantidad introducida puede determinarse actualmente midiendo la
dispersión de la cantidad de la estructura fibrosa que se encuentra
en una cantidad dada del material del filtro en cada parte del
material del filtro que se ha muestreado.
Además, es particularmente preferible que además
de la cantidad sustancialmente igual de la estructura fibrosa
introducida en cada parte del material del filtro muestreado al azar
en el corte transversal perpendicular al flujo de la solución que
contiene los leucocitos, la distribución de los tamaños de red en
cada parte sea sustancialmente igual y se forme una estructura
reticulada, la misma sustancialmente. En la presente descripción,
dicho estado es expresado como "se forma una estructura reticulada
uniforme". Explicándolo más específicamente, que se forme una
estructura reticulada uniforme se refiere a tal estado en el que la
estructura reticulada en cada parte del material del filtro
muestreado al azar posee, cuando se observa a través de un
microscopio electrónico, una distribución de tamaños de red
aproximados y una forma de red similar, y se considera que sea
sustancialmente la misma. El estado en el que no se forma una
estructura reticulada uniforme, se refiere a un estado en el que
cuando se observa la estructura reticulada en cada parte del
material del filtro muestreado al azar, puede juzgarse que la
distribución de los tamaños de red en cada parte es muy distinta y
su forma es claramente diferente.
En el material del filtro de la presente
invención, es preferible que la estructura fibrosa con un diámetro
promedio de fibra no menor que 0,01 \mum pero menor que 1,0
\mum, forme una estructura reticulada y que se mantenga sobre el
elemento poroso que posee un diámetro promedio de poro no menor de
1,0 \mum pero menor que 100 \mum; la porosidad del material de
filtro mencionado no es inferior al 50% pero es menor que el 95%; y
la proporción entre el diámetro promedio de poro del elemento poroso
mencionado y del diámetro promedio de la fibra de la estructura
fibrosa mencionada no es inferior a 2 pero es menor que 2.000.
En la presente memoria, el diámetro promedio del
poro constituye un valor obtenido realizando una medición según un
método de presurización del mercurio. Es decir, cuando la cantidad
de mercurio presurizado con una presión de presurización de 6,89 x
10^{3} Pa (1 psia) es 0%, y la cantidad de mercurio presurizado
con una presión de presurización de 1,83 x 10^{7} Pa (2,650 psia)
es 100%, un diámetro del poro fino que corresponda a una cantidad de
mercurio presurizado del 50%, se toma como el diámetro promedio de
poro. Cuando el diámetro promedio del poro es inferior a 1,0 \mum,
la solución que contiene leucocitos no fluye y por tanto esto no es
apropiado para cumplir el objetivo de la presente invención. Cuando
el diámetro promedio del poro no es inferior a 100 \mum, resulta
difícil a menudo mantener la estructura fibrosa y por tanto, no es
apropiado para cumplir el objetivo de la presente invención.
Con objeto de mantener el flujo de la solución
que contiene leucocitos en un buen estado, la proporción entre el
diámetro promedio del poro del elemento poroso y el diámetro
promedio de la fibra de la estructura fibrosa es preferentemente no
inferior a 2 pero menor que 2.000. Cuando la proporción entre el
diámetro promedio del poro del elemento poroso y el diámetro
promedio de la fibra de la estructura fibrosa es inferior a 2, no
existe sustancialmente diferencia entre el diámetro del poro fino
del elemento poroso y los diámetros de las fibras que constituyen la
estructura fibrosa, bloqueándose los finos poros del elemento poroso
con las fibras y consecuentemente, el flujo de la solución que
contiene los leucocitos se transforma en deficitario. Por tanto, no
es apropiado para cumplir con el objetivo de la presente invención.
Cuando la proporción del diámetro promedio del poro del elemento
poroso y el diámetro promedio de la fibra de la estructura fibrosa
no es inferior a 2.000, los diámetros de los poros finos del
elemento poroso son grandes y resulta difícil mantener la estructura
fibrosa, de forma que los poros finos del elemento poroso estén
cubiertos con la estructura fibrosa, ocasionándose una disminución
extrema en la ejecución de la eliminación de los leucocitos. Además,
el entrelazado de la estructura fibrosa con el elemento poroso se
convierte en insuficiente y existe el temor de que la estructura
fibrosa desaparezca, de modo que no es apropiado. Es más preferible
que la proporción entre el diámetro promedio del poro del elemento
poroso y el diámetro promedio de la fibra de la estructura fibrosa
no sea inferior a 10 pero menor que 1.800.
El elemento poroso al que se hace referencia en
la presente invención incluye una congregación de fibras, una
película porosa, un material esponjoso poroso interconectado, y
similares, que poseen un diámetro promedio de poro no inferior a 1
\mum pero menor que 100 \mum. Como elemento poroso, es
preferible la congregación de fibras mencionada, particularmente
preferida es una congregación fibrosa formada por fibras largas. La
forma de la congregación fibrosa es preferentemente una estructura
sin tejer, una estructura que forma tejido, una estructura tejida o
similar; sin embargo, es particularmente preferible una estructura
que no forme tejido. Cuando el elemento poroso es un congregación
fibrosa, es particularmente preferible que la proporción del
diámetro promedio de la fibra de la congregación de fibras respecto
al diámetro promedio de la estructura fibrosa, no sea inferior a 10,
pero sea inferior a 1.000, con objeto de mantener el flujo de la
solución que contiene los leucocitos en buen estado. Como material
del elemento poroso puede utilizarse cualquier material que pueda
formar una estructura que no forme tejido, una estructura que forme
tejido, una estructura tejida, una película porosa, un material
esponjoso, poroso, interconectado o similar, tal como poliuretano,
poliéster, poliolefina, poliamida, poliestireno, poliacrilonitrilo,
celulosa, acetato de celulosa o similares.
Además, en el material del filtro que elimina los
leucocitos de la presente invención, es preferible que la proporción
de mantenimiento de la estructura fibrosa respecto al material del
filtro no sea inferior al 0,01% en peso, pero inferior al 30% en
peso. Cuando la proporción de mantenimiento es inferior al 0,01% en
peso, no se obtiene una cantidad suficiente de fibras para capturar
a los leucocitos en una solución que contiene a éstos, por lo que no
es apropiado para el objetivo de la presente invención. Cuando la
proporción de mantenimiento no es inferior al 30% en peso, la
cantidad de fibras introducidas en el elemento poroso se vuelve
demasiado abundante, y las partes de poro fino del elemento poroso
se bloquean, por lo que la solución que contiene los leucocitos no
fluye, de forma que no es apropiado para el objetivo de la presente
invención. La proporción de mantenimiento de la estructura fibrosa
respecto al material del filtro es más preferentemente no inferior
al 0,03% en peso, pero menor que el 10% en peso.
La medición de la proporción de mantenimiento
puede determinarse a partir del cambio ponderal entre antes y
después del mantenimiento de la estructura fibrosa sobre el elemento
poroso. Asimismo, cuando la proporción de mantenimiento de la
estructura fibrosa es tan pequeña como inferior aproximadamente a un
3% en peso por unidad de peso del material del filtro, puede
utilizarse un método para determinar - de modo más preciso que la
medición ponderal mencionada que se ha llevado a cabo - esa
proporción de mantenimiento de la estructura fibrosa, mediante el
cual sólo es disuelta y se extrae la estructura fibrosa,
determinándose la cantidad del componente extraído. Con referencia
al caso en el que la estructura fibrosa está compuesta de celulosa
como ejemplo, a continuación se explica específicamente un método
para determinar la mencionada cantidad. El material de filtro que
elimina los leucocitos de la presente invención se sumerge y agita
en una solución de celulasa para descomponer la celulosa de la
estructura fibrosa en glucosa, extrayéndose ésta. La glucosa
extraída se somete a determinación cuantitativa utilizando un
reactivo de determinación cuantitativa disponible comercialmente, y
a partir de la cantidad de glucosa obtenida, se calcula la cantidad
de estructura fibrosa que se mantiene sobre el elemento poroso.
Con objeto de conseguir una eliminación intensa
de los leucocitos, es preferible que la estructura fibrosa se
mantenga sobre la totalidad del elemento poroso. Sin embargo, cuando
es difícil que la estructura fibrosa se mantenga en una situación
interior profunda del elemento poroso, debido a una limitación
provocada por el proceso de producción, aquélla puede mantenerse
sobre la superficie de uno de los lados del elemento poroso, y en
tal caso, como un medio para potenciar simplemente la eliminación de
los leucocitos por parte del material de filtro aumentando la
proporción de mantenimiento de la estructura fibrosa, ésta puede
mantenerse sobre las superficies de ambos lados del elemento poroso.
En cualquier caso, es preferible mantener sustancialmente de modo
uniforme la estructura fibrosa sobre el elemento poroso, con objeto
de conseguir llevar a cabo de un modo intenso la eliminación de los
leucocitos.
En el material de filtro para la eliminación de
los leucocitos de la presente invención, es preferible que la
porosidad no sea inferior al 50% pero sea menor que el 95%. Cuando
la porosidad del material del filtro es inferior al 50%, el flujo de
la solución que contiene los leucocitos es deficitario y no es
apropiado para cumplir con el objetivo de la presente invención.
Cuando la porosidad del material del filtro no es inferior al 95%,
la resistencia mecánica del material del filtro es baja y cuando la
solución que contiene los leucocitos es tratada, el material del
filtro se rompe y ya no ejerce su función como material de filtro,
de forma que no es apropiado para la presente invención.
La porosidad se determina midiendo el peso seco
(W_{1}) del material del filtro fragmentado para el área dada;
midiendo además el grosor; calculando el volumen (V), sumergiendo
este material del filtro en agua, sometiéndolo a desaireación;
midiendo a continuación el peso (W_{2}) del material del filtro
que contiene agua; y calculando la porosidad a partir de la
siguiente ecuación de cálculo en la que \rho es la densidad del
agua pura:
Porosidad (%) = 100 x
[(W_{2}-W_{1})/\rho]/V
El grosor del material del filtro que elimina los
leucocitos de la presente invención es preferentemente no inferior a
0,1 mm pero menor que 30 mm en la dirección del flujo de la solución
que contiene los leucocitos. Cuando el grosor es menor que 0,1 mm,
la frecuencia de colisión entre el material del filtro y los
leucocitos en la solución que contiene a éstos, se reduce, y por
tanto, es difícil lograr una ejecución intensa de la eliminación
leucocitaria, de forma que no es deseable. Cuando el grosor no es
inferior a 30 mm, la resistencia del material de filtro al paso a
través de éste de la solución que contiene los leucocitos se vuelve
alta, y por tanto, el tiempo de tratamiento se alarga y la membrana
eritrocítica se rompe para provocar hemólisis, y por estas razones y
similares, no es deseable. Es más preferible que el grosor del
material del filtro en la dirección del flujo no sea inferior a 0,1
mm pero sea inferior a 15 mm.
Cuando se adopta como método para obtener el
material del filtro de la presente invención, un procedimiento de
producción caracterizado por la dispersión de las fibras que poseen
un diámetro promedio de fibra no inferior a 0,01 \mum pero
inferior a 1,0 \mum en un solvente, y se mantienen las mismas al
fabricar el filtro, sobre un elemento poroso que tiene un diámetro
promedio de poros no inferior a 1,0 \mum pero inferior a 100
\mum, es más preferible que en el material de filtro obtenido que
elimina leucocitos, la proporción del diámetro promedio de poro del
elemento poroso al diámetro promedio de fibra de la estructura
fibrosa, no sea inferior a 16 pero sea inferior a 300. Además, la
proporción de mantenimiento de la estructura fibrosa respecto al
material del filtro, es preferentemente no inferior al 0,3 % en peso
pero inferior al 5,0% en peso. Además, es más preferible que el
diámetro promedio de la fibra de la estructura fibrosa no sea
inferior al 0,05 \mum pero sea inferior al 0,5 \mum.
Además, cuando se adopta como método para obtener
el material del filtro de la presente invención, un procedimiento de
producción caracterizado por permitir la coexistencia en un medio de
cultivo líquido de un microorganismo que posee una capacidad para
producir fibras de celulosa y un elemento poroso con un diámetro
promedio de poro no inferior a 1,0 \mum pero menor a 100 \mum,
el cultivo del microorganismo en el medio de cultivo líquido y la
recuperación del elemento poroso, es preferible que en el material
de filtro para eliminación de leucocitos obtenido, la proporción del
diámetro promedio de poro del elemento poroso respecto al diámetro
promedio de la fibra de la estructura fibrosa no sea inferior a 160
pero inferior a 1.500. Además, es más preferible que la proporción
de mantenimiento de la estructura fibrosa respecto al material de
filtro no sea inferior al 0,03% en peso pero inferior al 1,0% en
peso, y es más preferible que el diámetro promedio de la fibra de la
estructura fibrosa no sea inferior a 0,01 \mum, pero sea menor que
0,05 \mum.
Ya que cuando el material del filtro que elimina
los leucocitos se trata, como en un
post-procesamiento, con un agente de unión tal como
una solución polimérica muy insoluble en agua o similar, existe
generalmente una posibilidad de que la estructura reticulada se
rompa, incluyendo el caso en el que las fibras que constituyen la
estructura fibrosa se dispongan desordenadamente junto con otras en
forma de un haz, o el caso en el que un material de tipo laminar se
forme entre varias fibras, y similares, de forma que es preferible
que el material del filtro no sea tratado con tal agente de unión.
Por otra parte, cuando las fibras son relativamente gruesas y cortas
y su entrelazado físico con el elemento poroso es insuficiente, es
posible fijar de modo efectivo las fibras sobre el elemento poroso
mediante un tratamiento con un agente de unión tal como una solución
polimérica muy insoluble en agua, relativamente diluida o similar,
como un post-procesamiento del material del filtro
que elimina leucocitos de la presente invención, por el que puede
evitarse que las fibras disminuyan.
También es posible modificar la superficie del
material del filtro de eliminación de los leucocitos a una
superficie a la cual es difícil que los hematíes o las plaquetas se
adhieran, aumentando por eso la recuperación de las plaquetas o de
los hematíes y eliminando sólo los leucocitos. Como método para
modificar la superficie del material del filtro, se mencionan una
polimerización-injerto de la superficie, un
revestimiento con un material altamente polimérico, un tratamiento
de descarga eléctrica y similares.
Como material altamente polimérico utilizado
cuando se modifica la superficie del material del filtro mediante
una polimerización-injerto de la superficie o un
revestimiento con un material altamente polimérico, se prefiere un
material altamente polimérico con un grupo hidrofílico no iónico.
Como el grupo de hidrofílicos no iónicos, se mencionan el grupo
hidroxilo, grupo amido, la cadena de óxido polietilénico y
similares. Los monómeros que pueden utilizarse en la síntesis del
material altamente polimérico que tiene un grupo hidrofílico no
iónico incluyen, por ejemplo, 2-hidroxietil
metacrilato, 2-hidroxietil acrilato, alcohol
vinílico (que se prepara hidrolizando un polímero obtenido mediante
polimerización del acetato de vinilo), metacrilamida,
N-vinilpirrolidona y similares. Entre los monómeros
anteriores, son preferentes el 2-hidroxietil
metacrilato y el 2-hidroxietil acrilato en vista de
su fácil disponibilidad, fácil manejo en la polimeración,
realización del tratamiento de la solución que contiene los
leucocitos, y similares.
El material altamente polimérico utilizado en la
polimerización-injerto de la superficie anterior o
en el revestimiento con un material altamente polimérico, es
preferentemente un copolímero que contiene, como una unidad
monomérica, un monómero polimerizable que tiene un grupo hidrofílico
no iónico y/o un grupo funcional que contiene nitrógeno básico en
una cuantía de 0,1 a 20 moles %. Como el grupo funcional que
contiene nitrógeno básico, se mencionan un grupo amino primario, un
grupo amino secundario, un grupo amino terciario, un grupo amonio
cuaternario y similares; y también un grupo cíclico aromático que
contiene nitrógeno, tal como el grupo piridilo, el grupo imidazol y
similares; etc. Como el monómero polimerizable que tiene un grupo
funcional que contiene nitrógeno básico, pueden mencionarse
derivados del ácido metacrílico tales como el dimetilaminoetil
metacrilato, dietilaminoetil metacrilato, dimetilaminopropil
metacrilato,
3-dimetilamino-2-hidroxipropil
metacrilato y similares; derivados vinílicos de compuestos
aromáticos que contienen nitrógeno, tales como alilamina,
p-vinilpiridina, 4-vinilimidazol y
similares; y sales amónicas cuaternarias obtenidas haciendo
reaccionar el compuesto vinílico mencionado con un haluro alquílico
o similar. Entre los monómeros polimerizables mencionados, se
prefieren el dimetilaminoetil metacrilato y el dietilaminoetil
metacrilato, desde el punto de vista de la fácil disponibilidad,
fácil manejo en la polimerización, realización del tratamiento de la
solución que contiene los leucocitos, y similares.
Cuando el contenido de la unidad monomérica del
monómero polimerizable que posee un grupo funcional que contiene
nitrógeno básico en el copolímero obtenido es inferior a 0,1%, el
efecto de la inhibición de la adherencia de las plaquetas a la
superficie del material del filtro, no se encuentra tanto, y por
tanto, no es deseable. Además, cuando el contenido de la unidad
monomérica del monómero polimerizable que posee un grupo funcional
que contiene nitrógeno básico en el copolímero, no es inferior al
20%, no sólo los leucocitos sino también componentes útiles tales
como plaquetas y hematíes se vuelven propensos a adherirse a la
superficie del material de filtro, y por tanto, no es deseable. Es
más preferible que el contenido del monómero polimerizable que posee
un grupo funcional que contiene nitrógeno básico en el copolímero,
sea del 0,2 al 5% como la unidad monomérica.
Los inventores han investigado ampliamente para
conseguir un procedimiento que produzca un material de filtro que
elimine leucocitos, lo que constituye el segundo objetivo de la
presente invención, y han encontrado, consecuentemente, que cuando
las fibras que tienen un diámetro promedio de fibra no inferior a
0,01 \mum pero menor que 1,0 \mum, se dispersan en un medio de
dispersión y se mantienen mediante la constitución del filtro sobre
un elemento poroso que tiene un diámetro promedio de poros no
inferior a 1,0 \mum pero inferior a 100 \mum, pueden haber
producido un material de filtro que elimina leucocitos que está
formado por el elemento poroso mencionado y una estructura fibrosa
compuesta por muchas fibras y en la cual la porosidad del material
de filtro mencionado no es inferior al 50% pero es inferior al 95%,
la proporción de mantenimiento de la estructura fibrosa mencionada
respecto al material de filtro mencionado no es inferior al 0,01% en
peso pero es inferior al 30% en peso; la proporción entre el
diámetro promedio de poro del elemento poroso mencionado y del
diámetro promedio de la fibra de la estructura fibrosa mencionada no
es inferior a 2 pero es menor que 2.000; y la estructura fibrosa
anterior forma una estructura reticulada, y han finalizado el
proceso de producción de la presente invención.
Con objeto de que la estructura fibrosa forme una
estructura reticulada en el material del filtro de la presente
invención, es necesario que las fibras que tienen un diámetro de
fibra promedio no inferior a 0,01 \mum pero inferior a 1,0 \mum,
tengan una forma curva y tales propiedades como que las fibras per
se sean blandas, fáciles de curvarse, relativamente cortas y
similares. Además, incluso si las fibras no tienen originariamente
una forma curvada, pueden aplicarse a la presente invención aún en
el caso en el que se les haya proporcionado una forma curva mediante
un tratamiento con calor, un tratamiento mecánico o con diversas
sustancias químicas.
Las fibras mencionadas con un diámetro promedio
de fibra no inferior a 0,01 \mum pero inferior a 1,0 \mum,
pueden obtenerse sometiendo las fibras divisibles, representativas
de las cuales son las fibras regeneradas de celulosa, las fibras
acrílicas fragmentables finamente porosas y similares, así como las
fibras compuestas fragmentables obtenidas mediante los
procedimientos conocidos dados a conocer en las patentes
JP-B-47-37648,
JP-A-50-5650,
JP-A-53-38709 y
similares, a la agitación física utilizando un mezclador físico o
similares, a la eyección de una corriente de líquido a alta presión,
al tratamiento en un homogenizador a alta presión, o similares.
Como material fibroso que pueda curvarse
fácilmente, son adecuados las celulosas, el poliacrilonitrilo,
poliéster, poliolefina, poliamida y similares; sin embargo, puede
utilizarse cualquier material que pueda proporcionar fibras que
tengan un diámetro promedio de fibra no inferior a 0,01 \mum pero
inferior a 1,0 \mum, y que pueda curvarse mediante un tratamiento
con calor o un tratamiento mecánico.
Un procedimiento para obtener fibras con el
diámetro promedio de fibra especificado anteriormente es someter, si
es necesario, a las fibras regeneradas de celulosa, entre las fibras
divisibles antes mencionadas, a tratamiento ácido o con álcalis y
después, a la agitación física en un líquido utilizando un mezclador
o similar para conseguir una estructura fibrosa, a causa de que los
diámetros de fibra de las fibras resultantes se vuelven muy
pequeños, y las fibras que tienen una forma curvada pueden obtenerse
fácilmente, como resultado de lo cual se vuelve fácil para las
fibras formar una estructura reticulada. Este procedimiento para la
obtención de fibras con un diámetro promedio de fibra no inferior a
0,01 \mum pero inferior a 1,0 \mum consiguiendo una estructura
fibrosa con fibras de celulosa regenerada, se explica a continuación
específica y detalladamente. En primer lugar, fibras de celulosa
regenerada comercialmente disponibles con diámetros de fibra de
aproximadamente 10 \mum se cortan con una longitud dada, y después
se sumergen en una solución de ácido sulfúrico acuosa al 3% en peso,
y se someten a tratamiento ácido a 70ºC durante 30 minutos con
agitación lenta. Las fibras de celulosa regenerada tratadas con
ácido de este modo se lavan con agua y después se agitan
vigorosamente en agua utilizando un mezclador a 10.000 rpm durante
un período de 30 minutos a 90 minutos, después de lo cual se
consigue una estructura fibrosa con estas fibras de celulosa
regenerada, haciéndolas más finas, por lo que pueden obtenerse
finalmente las fibras objetivo.
Asimismo, las fibras con un diámetro promedio de
fibra no inferior a 0,01 \mum pero inferior a 1,0 \mum,
obtenidas utilizando fibras de tipo mar e isla como material
inicial, y sometiéndolas, si es necesario, a un tratamiento previo
de calentamiento o mecánico para procesarlas haciendo que tomen una
forma curvada y disolviendo el componente marino utilizando varios
disolventes para eliminarlos, tienen también una forma curvada y son
apropiadas para la producción del material de filtro que elimina los
leucocitos, anteriormente mencionado, de la presente invención.
A continuación, se describen otros procedimientos
para la obtención de fibras apropiadas para la producción del
material de filtro de la presente invención que elimina los
leucocitos.
Microorganismos que tienen capacidad para
producir celulosa, se cultivan intermitente o continuamente,
proporcionándoles una vibración en un medio de cultivo líquido.
Cuando se proporciona una vibración, los microorganismos que tienen
la capacidad de producir celulosa, pueden cortar y separar las
fibras de celulosa producidas a partir de las células bacterianas.
En general, con la bacteria del ácido acético, que constituye un
tipo de microorganismo que posee la capacidad para producir
celulosa, se dice que los diámetros de fibra de las células de
celulosa producidas tienen un tamaño de entre 0,01 \mum y 0,1
\mum aproximadamente, siendo la tasa de producción de las fibras
de celulosa de 2 \mum/min aproximadamente. De acuerdo con esto,
fijando apropiadamente el tiempo en el que se proporciona una
vibración al medio de cultivo líquido y su intervalo, pueden
obtenerse fibras que tengan la longitud deseada. Recuperando estas
fibras a partir del medio de cultivo, también pueden obtenerse
fibras apropiadas para la producción del material de filtro, de la
presente invención, que elimina leucocitos. Además, con objeto de
aumentar la dispersibilidad de las fibras obtenidas proporcionando
intermitente o continuamente una vibración a microorganismos con una
capacidad para producir celulosa, mientras se cultivan los
microorganismos en un medio de cultivo líquido, es preferible
fragmentar las fibras mediante un medio tal como agitar
violentamente el medio de cultivo líquido o similar. También, cuando
los microorganismos que poseen la capacidad para producir celulosa
continúan cultivándose en un medio de cultivo líquido durante un
largo período de tiempo, se obtiene una masa fibrosa de tipo gel en
la que se obtiene un conjunto de varias fibras de celulosa.
Triturando finamente y fragmentando esta masa fibrosa de tipo gel en
un homogenizador o similar, pueden obtenerse también las fibras
apropiadas para la producción del material de filtro que elimina los
leucocitos de la presente invención.
Las fibras así obtenidas con un diámetro promedio
de fibra no inferior a 0,01 \mum pero inferior a 1,0 \mum se
dispersan en un medio de dispersión, de forma que la concentración
alcance el valor de entre 0,01 g/L y 1 g/L aproximadamente, para
obtener una dispersión de las fibras. Como medio de dispersión,
puede utilizarse no sólo agua pura, sino también una solución acuosa
que contenga aproximadamente de 0,1% al 5% de un tensoactivo; una
solución acuosa cuya viscosidad se haya aumentado añadiendo
aproximadamente de 0,1% a 5% de una poliacrilamida para mejorar más
la dispersibilidad de las fibras; y similares.
Posteriormente, un elemento poroso con un
diámetro promedio de poro no inferior a 1,0 \mum pero inferior a
100 \mum se dispone en la base de un recipiente de tipo embudo y
la dispersión fibrosa anterior se vierte y guarda en éste durante un
rato y entonces se descarga a la vez, secándose después el elemento
poroso, por el cual puede obtenerse el material de filtro de la
presente invención. En la presente invención, a tal procedimiento de
producción se hace referencia como "fabricación de papel". En
este caso, si las fibras son cortas, pueden mantenerse incluso a
cierta profundidad interior del elemento poroso, lo que es
preferible.
Es preferible aplicar posteriormente un
tratamiento mediante una corriente líquida a alta presión de
aproximadamente 3 kg/cm^{2} a 200 kg/cm^{2} al material de
filtro producido mediante el procedimiento de producción
anteriormente mencionado, porque las fibras pueden mantenerse de
manera más uniforme a una distancia más profunda en el interior del
elemento poroso en la dirección de su grosor.
Como procedimiento preferente distinto de la
presente invención para la producción del material de filtro que
elimina leucocitos, se menciona uno caracterizado por permitir la
coexistencia en un medio de cultivo líquido de un microorganismo que
posee una capacidad para producir fibras de celulosa y de un
elemento poroso con un diámetro promedio de poro no inferior a 1,0
\mum pero inferior a 100 \mum, el cultivo del microorganismo en
el medio de cultivo líquido y la recuperación del elemento poroso.
Incluso mediante este procedimiento, puede producirse un material de
filtro que elimine los leucocitos, en el cual una estructura fibrosa
con un diámetro promedio de fibra no inferior a 0,01 \mum pero
menor que 1,0 \mum se mantiene sobre el elemento poroso, la
porosidad del material de filtro mencionado no es inferior al 50%
pero es menor que el 95%, la proporción de mantenimiento de la
estructura fibrosa respecto al material de filtro mencionado no es
inferior al 0,01% en peso pero es inferior al 30% en peso, la
proporción entre el diámetro promedio de poro del elemento poroso y
el diámetro promedio de la fibra de la estructura fibrosa no es
inferior a 2 pero es menor que 2.000, y la estructura fibrosa forma
una estructura reticulada. Un ejemplo de este procedimiento de
producción se explica específicamente a continuación.
En primer lugar, se dispone un elemento poroso
como un material de base en un medio de cultivo. La composición de
un medio de cultivo representativo es 2% de azúcar de uva, 0,5% de
polipeptona, 0,5% de extracto de levadura, 0,27% de anhídrido
fosfato ácido sódico y 0,115% de ácido cítrico monohidrato. Es
suficiente que el elemento poroso conecte parcialmente con, por lo
menos, el medio de cultivo, y es preferible que el elemento poroso
se disponga en paralelo a la superficie del medio de cultivo. Un
microorganismo que posee la capacidad para producir fibras de
celulosa se dispersa en el medio de cultivo, de forma que su
concentración se convierta en no inferior a 1 célula/mL, pero sea
inferior a 1,0 x 10^{7} células/mL. En este estado, el
microorganismo se cultiva durante un tiempo entre 0,5 y 48 horas
para mantener una estructura fibrosa reticulada compuesta por fibras
de celulosa sobre el elemento poroso, constituyéndose de este modo
el material de filtro eliminador de leucocitos de la presente
invención. Se deduce que el microorganismo que posee la capacidad de
producir las fibras de celulosa lo haga mientras circule por el
interior del elemento poroso y, por tanto, una estructura reticulada
de fibras largas de celulosa se mantiene en el interior del elemento
poroso en un estado tal que las fibras están física y estrechamente
entrelazadas. De acuerdo con esto, incluso cuando el material de
filtro se lava o se deja que la solución que contiene los leucocitos
fluya al material de filtro, la estructura reticulada de las fibras
de celulosa no se rompe y no disminuye. Además, controlando la
concentración de los microorganismos que poseen la capacidad de
producir fibras de celulosa en el medio de cultivo, el tiempo de
cultivo y similares, puede controlarse la cantidad de fibras de
celulosa que se mantienen sobre el elemento poroso. Por ejemplo,
cuando la concentración del microorganismo en el medio de cultivo al
comenzar el cultivo es la misma, la proporción de mantenimiento
aumenta prolongando el tiempo de cultivo. Cuando el medio de cultivo
es el mismo, la proporción de mantenimiento aumenta elevando la
concentración del microorganismo en el medio de cultivo al empezar
el cultivo.
Como microorganismos que tienen la capacidad de
producir fibras de celulosa, pueden utilizarse bacterias del ácido
láctico del género Acetobacter, bacterias del género Sarcina,
bacterias del género Bacterium, bacterias del género
Agrobacterium, bacterias del género Rhizobium,
bacterias del género Pseudomonas, y similares. Entre ellas, las
bacterias del ácido acético del género Acetobacter son
particularmente preferidas. Se dice que los microorganismos del
género Acetobacter producen fibras con un diámetro de fibra de 0,01
\mum a 0,1 \mum; sin embargo, la utilización de otros
microorganismos mencionados antes permite la producción de fibras
con diversos diámetros de fibra. Cuando, entre los componentes del
medio de cultivo, las cantidades de la polipeptona que constituye la
fuente de nitrógeno y el extracto de levadura, se aumentan o se
disminuyen, la división y proliferación potencial de los
microorganismos puede inhibirse, por lo que puede controlarse el
tamaño de la red de la estructura fibrosa.
Tal como se mencionó anteriormente en la presente
memoria, cuando se proporciona una vibración, durante el cultivo, al
microorganismo que posee la capacidad para producir fibras de
celulosa, corta las fibras de celulosa producidas a partir de las
células bacterianas en algunos casos, y por tanto, con objeto de
mantener la estructura fibrosa reticulada sobre el elemento poroso
con una buena eficiencia en el estado en el que las fibras están
física y estrechamente entrelazadas, es preferible que el cultivo se
convierta en estacionario. Además, cuando el cultivo se lleva a cabo
mientras el nivel del líquido del medio de cultivo líquido se cambia
intermitente o continuamente para permitir que el medio de cultivo
líquido atraviese el exterior e interior del elemento poroso, la
estructura fibrosa reticulada puede mantenerse en el interior del
elemento poroso con una buena eficiencia. En general, los
microorganismos que poseen la capacidad para producir fibras de
celulosa son bacterias aeróbicas y cuando son cultivadas mientras se
introduce un gas en su medio de cultivo líquido y/o en el interior
del elemento poroso, la capacidad para producir fibras de celulosa
aumenta y el material de filtro puede producirse con una mejor
eficiencia. Cuando los microorganismos que tienen la capacidad de
producir fibras de celulosa son bacterias aeróbicas, la densidad
existente del microorganismo tiende a ser alta en la parte en la que
la concentración de oxígeno disuelto es relativamente alta en las
proximidades de la superficie del medio de cultivo. Por tanto, en el
caso del material de filtro de la presente invención, producido
llevando a cabo el cultivo estacionario en un estado tal en el que
el elemento poroso se disponga en paralelo a la superficie del medio
de cultivo y se sumerja bajo la superficie del medio de cultivo, la
proporción de mantenimiento del la estructura fibrosa reticulada
tiende a ser más alta sobre la superficie superior del elemento
poroso. Con objeto de aumentar la capacidad de eliminación de los
leucocitos del material de filtro, es preferible aumentar la
proporción de mantenimiento de la estructura fibrosa reticulada y,
por ejemplo, es posible aumentar la proporción de mantenimiento de
la superficie inferior del elemento poroso, dando la vuelta al
elemento poroso durante el cultivo.
Con objeto de controlar la cantidad de fibras de
celulosa que pueden mantenerse sobre el elemento poroso controlando
la concentración del microorganismo que posee la capacidad de
producir fibras de celulosa en el medio de cultivo y el tiempo de
cultivo, es preferible que la concentración del microorganismos no
sea inferior a 1 célula/mL pero inferior a 1,0 x 10^{7}
células/mL, y el tiempo de cultivo no sea inferior a 0,5 horas pero
inferior a 48 horas. Cuando la concentración de microorganismos es
inferior a 1 célula/mL, la proporción de mantenimiento de las fibras
se vuelve pequeña en muchos casos, y el "rendimiento" de la
eliminación de leucocitos del material de filtro se torna pequeño,
de forma que no es deseable. Cuando la concentración del
microorganismo no es inferior a 1,0 x 10^{7} células/mL, la
proporción de mantenimiento de las fibras se vuelve mayor en muchos
casos y el flujo de la solución que contiene los leucocitos en el
material del filtro se vuelve malo, por lo que no es deseable. Como
un método para determinar el número de microorganismos celulares que
poseen la capacidad de producir fibras de celulosa en el medio de
cultivo, puede utilizarse un método de contaje de colonias. Cuando
el tiempo de cultivo es inferior a 0,5 horas, la proporción de
mantenimiento de la estructura fibrosa reticulada es pequeña en
muchos casos, y es imposible alcanzar un rendimiento alto de la
eliminación de los leucocitos, de forma que no es deseable. Cuando
el tiempo de cultivo no es inferior a 48 horas, una parte en la que
la proporción de mantenimiento de la estructura fibrosa reticulada
es muy grande, particularmente una estructura tipo capa dérmica, se
forma en muchos casos en la superficie del elemento poroso y el
flujo de la solución que contiene leucocitos se vuelve deficitario,
de forma que no es deseable.
Como otro procedimiento distinto para producir el
material de filtro eliminador de los leucocitos de la presente
invención, puede mencionarse un procedimiento para producir un
material de filtro que elimine los leucocitos, en el que la
estructura fibrosa reticulada se mantenga sobre el elemento poroso,
la porosidad del material del filtro no sea inferior al 50% pero sea
inferior al 95%, la proporción de mantenimiento de la estructura
fibrosa respecto al material del filtro no sea menor que el 0,01% en
peso, pero sea inferior al 30% en peso, y la proporción entre el
diámetro promedio de poro del elemento poroso y el diámetro de fibra
de la estructura fibrosa no sea inferior a 2, pero sea inferior a
2.000, el cual comprende la rotación de un elemento poroso con un
diámetro promedio de poro no inferior a 1,0 \mum pero inferior a
100 \mum, mediante el procedimiento de soplado en fusión y de
mezclado de fibras con un diámetro promedio de fibra no inferior a
0,01 \mum pero inferior a 1,0 \mum en la corriente del haz de
fibras que está siendo sometida a rotación. Es preferible que el
material de filtro que elimina los leucocitos producido mediante el
procedimiento mencionado, sea sometido a un tratamiento mediante una
corriente líquida a alta presión aproximadamente de 3 kg/cm^{2} a
200 kg/cm^{2}, porque así se hace posible mantener las fibras de
manera más uniforme a una distancia más profunda en el interior del
elemento poroso.
El tercer objetivo de la presente invención es
proporcionar un aparato para eliminar los leucocitos, que hace
posible su eliminación a partir de la solución que los contiene,
mientras se inhibe de forma muy escasa la pérdida de los componentes
útiles de la sangre y se alcanza una alta tasa de eliminación de
aquéllos, proporcionándose un procedimiento para eliminar a dichos
leucocitos utilizando dicho aparato, así como proporcionando éste
para eliminar los leucocitos, el cual puede alcanzar una tasa mucho
más alta de eliminación de éstos que los aparatos convencionales, y
un procedimiento para eliminar los leucocitos utilizando dicho
aparato. Los presentes inventores han realizado una investigación
amplia y han encontrado consiguientemente que el objetivo anterior
puede alcanzarse filtrando una solución que contiene leucocitos
utilizando un aparato de filtración en el que el material de filtro
de la presente invención está dispuesto apropiadamente en un
recipiente que posee por lo menos una abertura de suministro y una
abertura para descarga.
El aparato del filtro de la presente invención
para eliminar leucocitos es uno en el que un filtro, que comprende
un material de filtro de la presente invención, es empaquetado
apropiadamente en un recipiente que tiene por lo menos una abertura
de suministro y una abertura de descarga. Una o varias capas del
material del filtro laminadas en la dirección del flujo de la
solución que contiene los leucocitos, pueden empaquetarse en el
recipiente. Por otra parte, en el caso en el que una solución que
contenga un material altamente polimérico se vierta en un material
de filtro con el fin de modificar la superficie de éste para
someterla a un tratamiento de revestimiento o en caso parecido, el
material del filtro en la capa más baja en el aparato de la presente
invención, se fija sobre la pared interna de éste para provocar un
arrastre, en algunos casos, de la solución que contiene los
leucocitos. En tal caso, insertando un material de filtro de red
relativamente grande en la capa más baja, puede evitarse que el
material del filtro se adhiera a la pared interna del recipiente
para provocar un arrastre de la solución que contiene los
leucocitos.
El aparato del filtro, para eliminar los
leucocitos de la presente invención, puede contener además otros
materiales de filtro sobre el lado superior de la corriente y/o el
lado inferior del material del filtro de la presente invención.
En general, la solución que contiene los
leucocitos contiene en muchos casos finos agregados. Con objeto de
eliminar los leucocitos de la solución que los contiene, que incluye
una gran cantidad de dichos finos agregados, puede utilizarse un
prefiltro. Como prefiltro, se utilizan un conjunto de fibras con un
diámetro promedio de la fibra de 8 \mum a 50 \mum; un material
poroso interconectado con un diámetro promedio de poro de 20 \mum
a 200 \mum; y similares.
Es preferible que el área de sección del material
de filtro en la dirección lineal normal a la del flujo de la
solución que contiene los leucocitos en el aparato del filtro para
la eliminación de éstos, de la presente invención, no sea inferior a
3 cm^{2} pero sea inferior a 100 cm^{2}. Cuando el área
seccional es inferior a 3 cm^{2}, el flujo de la solución que
contiene los leucocitos se vuelve extremadamente deficitario, de
forma que no es deseable. Cuando el área seccional no es inferior a
100 m^{2}, el grosor del filtro tiene que hacerse pequeño y no
puede alcanzarse una alta eliminación de los leucocitos. Además de
esto, es necesario que el tamaño del aparato del filtro se haga
grande, de forma que no es deseable.
El procedimiento para eliminar leucocitos de la
presente invención comprende el tratamiento de una solución que
contiene leucocitos en el aparato del filtro, para eliminar los
leucocitos de la presente invención y recuperar la solución
filtrada. Más detalladamente, es un procedimiento para eliminar los
leucocitos de una solución que los contiene que incluye la
utilización de un aparato que presenta 1) una abertura de
suministro, 2) un filtro que comprende el material del filtro de la
presente invención y 3) una abertura de descarga, que vierte una
solución que contiene leucocitos procedente de la abertura de
suministro y que recupera la solución filtrada a través del material
del filtro procedente de la abertura de descarga. Como solución
que contiene leucocitos que va a filtrarse en el aparato de
filtración para eliminarlos, de la presente invención, se mencionan
una preparación de sangre entera, una preparación concentrada de
hematíes, una preparación concentrada de plaquetas y, además, un
líquido corporal y similares.
Cuando la solución que contiene leucocitos
consiste en una preparación de sangre entera o en una preparación
concentrada de hematíes, es preferible tratar la solución que
contiene leucocitos en un aparato de filtración para eliminar
leucocitos que presenten un volumen del aparato no inferior a 3 mL
pero inferior a 20 mL por unidad. Aquí, el término "una unidad"
se refiere a aproximadamente de 300 mL a 550 mL de una preparación
sanguínea entera o de una preparación concentrada de hematíes.
Cuando el volumen del aparato por unidad es inferior a 3 mL, la
posibilidad de que no se pueda alcanzar una tasa alta de eliminación
de los leucocitos es importante, por lo que no es deseable. Cuando
el volumen del aparato por unidad no sea inferior a 20 mL, la
cantidad de los componentes útiles en la solución que contiene
leucocitos que permanecen no recuperados en el aparato, en otras
palabras, la pérdida de los componentes útiles se convierte en
grande, por lo que no es deseable. Filtrando la preparación entera
de sangre o la preparación concentrada de hematíes en el aparato de
filtración para eliminar los leucocitos de la presente invención,
éstos pueden eliminarse hasta que el número de los leucocitos
residuales en la solución recuperada sea inferior a 1 x 10^{3}
leucocitos/unidad.
Cuando la solución que contiene leucocitos es una
preparación concentrada de plaquetas, es preferible tratar a la
solución que contiene leucocitos en una aparato de filtración para
eliminar los leucocitos que tienen un volumen por 5 unidades no
inferior a 1 mL pero inferior a 10 ml. Aquí, el término "5
unidades" se refiere a una cantidad entre 170 mL y 200 mL
aproximadamente de una preparación concentrada de plaquetas. Cuando
el volumen del aparato para 5 unidades es inferior a 1 mL, la
posibilidad de que no pueda alcanzarse una tasa alta de eliminación
de leucocitos es alta, de forma que no es deseable. Cuando el
volumen del aparato por 5 unidades no es inferior a 10 mL, la
cantidad de los componentes útiles que permanece no recuperada en el
aparato es grande, de forma que no es deseable. Filtrando la
preparación concentrada de plaquetas en el aparato de filtración
para eliminar los leucocitos de la presente invención, éstos pueden
eliminarse hasta que el número de los residuales en la solución
recuperada sea inferior a 1 x 10^{3} leucocitos/5 unidades.
Cuando los leucocitos son eliminados utilizando
el aparato del filtro de la presente invención para hacerlo,
mientras la transfusión de sangre se lleva a cabo al lado de la cama
en un hospital, es preferible filtrar la solución que contiene los
leucocitos a una velocidad no inferior a 1 g /min pero menor que 20
g/min. Por otra parte, cuando se eliminan los leucocitos de una
preparación sanguínea para realizar una transfusión sanguínea
utilizando el aparato de filtración de la presente invención para
eliminar los leucocitos en el centro de sangre, es preferible
filtrar la solución que contiene los leucocitos a una velocidad no
inferior a 20 g/min pero menor que 100 g/min.
El aparato de filtración de la presente invención
para eliminar los leucocitos, puede utilizarse con el objetivo no
sólo de eliminar a éstos, que causan varios efectos secundarios
después de la transfusión a partir de una preparación sanguínea,
sino también para eliminar los leucocitos en la terapia de
circulación extracorpórea de una enfermedad autoinmune. La terapia
de circulación extracorpórea de una enfermedad autoinmune incluye el
filtrado de forma continua del fluido corporal de un paciente, el
cual es una solución que contiene leucocitos, en el aparato de
filtración de la presente invención para eliminarlos, y el retorno
de la solución recuperada al organismo, eliminando de este modo los
leucocitos del fluido corporal.
Tal como se ha descrito anteriormente, el
material del filtro de la presente invención para eliminar los
leucocitos muestra una elevada afinidad con éstos, de forma que es
posible tratar eficientemente a la solución que contiene los
leucocitos sin disminuir la tasa de tratamiento.
La presente invención se explica más
detalladamente a continuación, basándose en los Ejemplos; sin
embargo, el alcance de la presente invención no deberá interpretarse
limitándose a estos Ejemplos.
La preparación de fibras muy finas se llevó a
cabo mediante el procedimiento siguiente. Hilos de rayón cupramónico
con un diámetro de fibra de aproximadamente de 10 \mum (hilos de
Benberg® de 40 d/45 f fabricados por Asahi Kasei Kogyo K. K.) se
utilizaron como fibras capaces de fragmentarse y se cortaron en
fibras con una longitud de 3 mm. Se sumergieron en una solución de
ácido sulfúrico acuosa al 3% en peso, y se sometieron a tratamiento
ácido a 70ºC durante 30 minutos con agitación lenta 60 rpm. El ácido
sulfúrico se lavó con agua pura y entonces 1,5 g de las fibras
obtenidas se dispersaron en 1 L de agua pura, agitándose
violentamente entonces a 10.000 rpm durante 30 minutos utilizando un
homogenizador para preparar fibras extremadamente finas.
Como elemento poroso que constituía la base
material, se utilizó una estructura sin tejer fabricada con
poliéster con un diámetro promedio de fibra de 1,2 \mum preparada
mediante un método de soplado en fusión y revestida con un
copolímero compuesto por 2-hidroxietil metacrilato
y N,N-dimetilaminoetil metacrilato (al que se hará
alusión después en la presente memoria como DM) (el contenido de DM
en el copolímero fue de 3 moles %). Más detalladamente, la
estructura anterior sin tejer fabricada con el poliéster se sumergió
a 40ºC durante 1 minuto en una solución etanólica al 0,2% del
copolímero mencionado y se eliminó después la solución copolimérica
en exceso mediante una reducción lumínica, después de lo cual la
estructura sin tejer se empaquetó en un recipiente exclusivo,
secándose mientras se suministraba nitrógeno a su interior. El
diámetro del poro medía un promedio de 9,2 \mum, con un grosor de
0,2 mm, una densidad de masa de 0,2 g/cm^{3} y un peso base de 40
g/m^{2}. La medición del diámetro promedio del poro se realizó
utilizando PORE SIZER 9320 (Shimadzu Corp.) con una presión del
orden de 6,89.10^{3} Pa (1 psia) a 1,83.10^{7} Pa (2.650 psia),
determinándose que el diámetro promedio del poro era un diámetro de
poro fino que correspondía a una cantidad de mercurio presurizado
del 50% obtenida bajo las condiciones de que la cantidad de mercurio
presurizado con una presión de presurización de 6,89 x 10^{3} Pa
(1 psia) fue 0%, y la cantidad de mercurio presurizado con una
presión de presurización de 1,83 x 10^{7} Pa (2,650 psia) fue del
100%. El elemento poroso anterior se cortó con forma de un círculo
verdadero con un diámetro de 15 cm y se dispuso sobre la base de un
embudo magnético con un diámetro de 15 cm, después de lo cual se
almacenó agua pura hasta una altura de aproximadamente de 1 cm a
partir de la superficie del elemento poroso. Entonces se vertieron
suavemente en el interior 50 mL de una dispersión acuosa de las
fibras muy finas (concentración de éstas: 0,1 g/L) y se agitaron
lentamente. Después, el agua se descargó una vez a partir de la base
del embudo magnético para mantener las fibras extremadamente finas
sobre el elemento poroso, secándose éstas bajo vacío a 40ºC durante
16 horas, para obtener un material de filtro. Esta operación se
repitió dos veces para preparar un material de filtro en el que
fibras extremadamente finas son mantenidas sobre ambas superficies
del lado anterior y posterior del elemento poroso.
El diámetro promedio de la fibra de la estructura
fibrosa que se mantuvo sobre el elemento poroso fue de 0,29 \mum.
El diámetro promedio de la fibra se determinó tomando una
microfotografía electrónica del material de filtro obtenido
utilizando un microscopio electrónico de tipo rastreo
(S-2460N, fabricado por Hitachi Ltd), seleccionando
al azar fibras extremadamente finas, midiendo los diámetros de las
fibras en 100 puntos o más y calculando su valor numérico promedio.
De acuerdo con esto, la proporción entre el diámetro promedio de
poro del elemento poroso y el diámetro promedio de la fibra de la
estructura fibrosa fue de 31,7 y la proporción del diámetro promedio
de la fibra del elemento poroso y del diámetro promedio de la fibra
de la estructura fibrosa fue de 4,1.
Además, la porosidad del material de filtro fue
de 85%, siendo del 1,1% en peso la proporción de mantenimiento de la
estructura fibrosa respecto al material del filtro. La medición de
la porosidad se realizó de la siguiente forma: se midió el peso seco
(W_{1}) del material de filtro cortado para un círculo de 25 mm de
diámetro, midiéndose posteriormente su grosor utilizando PEACOK para
calcular el volumen (V). Este material de filtro se sumergió en agua
pura y se sometió a desaireación mientras se irradiaba con una onda
ultrasónica durante 30 segundos aproximadamente, después de lo cual
se midió el peso (W_{2}) del material de filtro que contenía agua.
A partir de estos valores, se determinó la porosidad según la
ecuación de cálculo que se muestra a continuación. A este respecto,
en la siguiente ecuación, \rho es la densidad del agua pura y en
el presente experimento, se sustituyó por 1,0 g/cm^{3}.
Porosidad (%) = 100 x
[(W_{2}-W_{1})/\rho]/V
La medición de la proporción de mantenimiento de
las fibras extremadamente finas se llevó a cabo mediante el método
que se muestra a continuación. Es decir, tres láminas de un material
de filtro cortado para un círculo de 25 mm de diámetro, se
sumergieron en 5 mL de una solución preparada disolviendo 50 mg de
celulasa (fabricada por Wako Pure Chemical Industries, Ltd) en 100
mL de 0,1 moles/L de una solución tampón de ácido acético (pJ 4,8) y
que agitó gradualmente a 50ºC durante 24 horas para descomponer las
fibras extremadamente finas en glucosa, que se extrajo. La glucosa
descompuesta y extraída se sometió a determinación cuantitativa
utilizando CII-TESTWAKO de glucosa (fabricado por
Wako Pure Chemical Industries, Ltd), que era un reactivo de
determinación de la glucosa, y a partir de la cantidad de ésta, se
calculó la proporción de mantenimiento de las fibras extremadamente
finas introducidas en el elemento poroso.
Un laminado (2,6 g) de 7 láminas del material de
filtro preparado tal como se mencionó anteriormente, se empaquetó en
un recipiente que tenía un área seccional efectiva de la parte
filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x 3,0 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento llegó a ser de 0,21 g/cm^{3} para
preparar un aparato de filtración para eliminar los leucocitos. El
volumen total del material del filtro fue de 1,26 cm^{3}. A 400 mL
de sangre se añadieron 56 mL de una solución CPD (composición: 26,3
g/L de citrato sódico, 3,27 g/L de ácido cítrico, 23,20 g/L de
glucosa y 2,51 g/L del dihidrato fosfato ácido sódico) para preparar
456 mL de sangre entera, centrifugándose ésta y extrayendo después
el plasma rico en plaquetas, después de lo cual 95 mL de una
solución MAP: (composición: 1,50 g/L de citrato sódico, 0,20 g/L de
ácido cítrico, 7,21 g/L de glucosa, 0,94 g/L del dihidrato fosfato
ácido sódico, 4,97 g/L de cloruro sódico, 0,14 g/L de adenina y
14,57 g/l de manitol) se añadieron para preparar los hematíes
concentrados (RC-MAP). 50 gramos de los hematíes
concentrados (RC-MAP, hematocrito: 64%, número de
hematíes: 3.425 células/\muL) que se habían guardado a 4ºC durante
8 días, se filtraron a través del aparato de filtración antes
mencionado para eliminar los leucocitos. La temperatura de los
hematíes concentrados justamente antes del comienzo de la filtración
fue de 10ºC. La filtración de los hematíes concentrados en el
aparato de filtración mencionado se llevó a cabo a una distancia de
caída de 1,0 m hasta que la presencia de los hematíes concentrados
en la bolsa sanguínea no se confirmó, para recuperar la sangre (a
los hematíes concentrados recuperados se les hace referencia después
en la presente memoria como el líquido recuperado). La tasa promedio
de tratamiento en la filtración de los hematíes concentrados fue de
11,6 g /min.
Se midieron los volúmenes de los hematíes
concentrados antes de la filtración (a los que se hace alusión
después en la presente memoria como el líquido antes de la
filtración), el líquido recuperado y el número de leucocitos,
determinándose la proporción de los leucocitos residuales.
Proporción de los leucocitos residuales =(número
de leucocitos en el líquido recuperado)/(número de leucocitos en el
líquido antes de filtración).
A este respecto, los volúmenes del líquido antes
de la filtración y el líquido recuperado fueron valores obtenidos
dividiendo los pesos respectivos por el peso específico de la
preparación sanguínea (1,075). La concentración de los leucocitos en
el líquido antes de la filtración se midió inyectando éste, diluido
10 veces con el reactivo de Türk, en un hemocitómetro
Bürker-Türk y contando el número de leucocitos
utilizando un microscopio óptico. Asimismo, la medición de la
concentración leucocitaria en el líquido recuperado se llevó a cabo
mediante el método que se muestra a continuación. El líquido
recuperado se diluyó hasta 5 veces con una solución LEUCOPLATE
(fabricada por la Compañía SOBIODA). El líquido diluido se mezcló
bien y se dejó entonces permanecer a temperatura ambiente durante 6
a 10 minutos. Éste se centrifugó a 2.750 x g durante 6 minutos y el
sobrenadante se recogió para ajustar la cantidad del líquido a 1,02
gramos. Este líquido muestra se mezcló bien y se inyectó entonces en
un hemocitómetro Nageotte, contándose el número de leucocitos
utilizando un microscopio óptico, determinando de este modo la
concentración de leucocitos. A partir de los resultados anteriores,
se encontró que la proporción de los leucocitos residuales fue de
10^{-2,71}.
Ejemplo Comparativo
1
Un laminado (0,29 g) de 8 láminas de sólo el
mismo elemento poroso que el demandado en el Ejemplo 1 (diámetro
promedio de la fibra: 1,2 \mum, diámetro promedio del poro: 9,2
\mum), se empaquetó en un recipiente que presentaba un área
seccional efectiva de la parte filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x
3,0 cm), de forma que la densidad de empaquetamiento alcanzara 0,20
g/cm^{3}, para preparar un aparato de filtración para eliminar los
leucocitos. La porosidad del elemento poroso anterior fue del 86% y
su volumen fue de 1,44 cm^{3}. Utilizando este aparato de
filtración, 50 g del mismo líquido eritrocitario concentrado que en
el Ejemplo 1, se filtraron de la misma forma que en éste. La
temperatura de los hematíes concentrados justamente antes de empezar
la filtración, era de 10ºC. A partir de los resultados anteriores,
se encontró que la tasa promedio de tratamiento fue de 13,2 g/min y
la proporción de los leucocitos residuales, fue de 10^{-1,18}.
Ejemplo Comparativo
2
Una estructura sin tejer hecha de polietileno,
con un diámetro promedio de fibra de 0,6 \mum preparada mediante
un procedimiento de rotación instantánea se trituró por congelación
utilizando nitrógeno líquido para obtener una pequeña masa de fibras
con un diámetro más largo inferior a 1 mm. En 5 L de una solución
etanólica de Tween® 20 al 1% en peso se dispersaron 0,1 g de la
pequeña masa fibrosa mencionada y 1,5 g de fibras preparadas
cortando fibras largas hechas de poliéster, con un diámetro promedio
de fibra de 7,2 \mum hasta una longitud de fibra de 5 mm. Esta
dispersión se vertió en un embudo magnético, sobre la base del cual
se dispuso una red con un diámetro de poro abierto de 200 \mum,
descargándose entonces el etanol en un momento determinado para
obtener un filtro con un peso base de 50 g/m^{2}.
LeukoNet®, que es un filtro eliminador de
leucocitos fabricado por la compañía HEMASURE, se desmontó,
extrayendo un material de filtro. Este material de filtro consistía
en uno con una estructura no entretejida, fabricado con una mezcla
de fibras con distintos diámetros de fibra, en el que el diámetro
promedio de fibra de las fibras más extremadamente finas era de 0,5
\mum; el diámetro promedio de fibra del material de base era de
7,8 \mum; la proporción entre el diámetro promedio de fibra del
material de base y el diámetro promedio de fibra de la fibra
extremadamente fina era de 15,6; y la porosidad del material de
filtro era del 92%. Como resultado de la observación a través de un
microscopio electrónico, los dos tipos antes mencionados de
materiales de filtro eran similares estructuralmente y ambos no
formaban una estructura reticulada. Una microfotografía electrónica
del último material de filtro se muestra en la figura 3. Entre los
dos tipos anteriores de materiales de filtro, una lámina (0,20 g)
del último material de filtro se empaquetó en un recipiente con un
área seccional efectiva de la parte filtrante de 9,0 cm^{3} (3,0
cm x 3,0 cm), de forma que la densidad de empaquetamiento llegó a
0,13 g/cm^{3} para preparar un material de filtro eliminador de
leucocitos. El volumen total del material de filtro fue de 1,53
cm^{3}. Utilizando este aparato de filtración, 50 g de los mismos
eritrocitos concentrados en el Ejemplo 1 se filtraron de la misma
forma que en éste. La temperatura de los hematíes concentrados
justamente antes de empezar la filtración, fue de 10ºC. A partir de
los resultados anteriores, se encontró que la tasa promedio de
tratamiento fue de 9,5 g/min y la proporción de los leucocitos
residuales fue de 10^{-0,68}.
El Ejemplo 1, el Ejemplo Comparativo 1 y el
Ejemplo Comparativo 2 son comparaciones del efecto de la
introducción de fibras con un diámetro promedio de fibra no inferior
a 0,01 \mum, pero inferior a 1,0 \mum y del efecto de la
estructura reticulada de dichas fibras. Asimismo, se observa a
menudo en el caso del material de filtro convencional de tipo
fibroso eliminador de leucocitos, que éstos son capturados en el
estado en el que contactan con las fibras en aproximadamente de 1 a
3 puntos o lugares; sin embargo, se observa relativamente a menudo
en el caso del material de filtro de la presente invención, que los
leucocitos son capturados en el estado en que contactan con las
fibras en tantos puntos como 3 o más.
Las fibras anteriores preparadas de la misma
forma que en el Ejemplo 1, se mantuvieron de la misma manera que en
dicho Ejemplo sobre el mismo elemento poroso que el utilizado en el
Ejemplo 1, para preparar un material de filtro en el cual, fibras
extremadamente finas se mantuvieron sobre ambas superficies en los
lados anteriores y posteriores del elemento poroso. Las fibras
extremadamente finas que se mantuvieron tenían un diámetro promedio
de 0,25 \mum; la proporción entre el diámetro promedio de poro del
elemento poroso y el diámetro promedio de fibra de las fibras
extremadamente finas fue de 36,8; la proporción entre el diámetro
promedio de fibra del elemento poroso y el diámetro promedio de
fibra de las fibras extremadamente finas, fue de 4,8; la porosidad
del material de filtro fue del 85% y la proporción de mantenimiento
de la estructura fibrosa respecto al material de filtro fue del 1,3%
en peso. Un laminado (0,26 g) de 7 láminas de este material de
filtro se empaquetó en un recipiente que presentaba un área
seccional efectiva de la parte filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x
3,0 cm), de forma que la densidad de empaquetamiento alcanzara 0,21
g/cm^{3} para preparar un aparato de filtración para eliminar los
leucocitos. El volumen total del material de filtro fue de 1,26
cm^{3}. Utilizando este aparato de filtración, 50 g de los
hematíes concentrados (RC-MAP, hematocrito: 62%,
número de leucocitos: 3.785 células/\muL) que se habían conservado
a 4ºC durante 7 días, se filtraron de la misma forma que en el
Ejemplo 1. La temperatura de los hematíes concentrados justamente
antes de comenzar la filtración fue de 10ºC. A partir de los
resultados anteriores, se encontró que la tasa promedio de
tratamiento fue de 10,2 g/min y que la proporción de los leucocitos
residuales fue de 10^{-2,97}.
El mismo elemento poroso que el utilizado en el
Ejemplo 1 se cortó hasta un tamaño de 25 cm x 35 cm, se sumergió en
375 mL de un medio de cultivo con una concentración de bacterias del
ácido acético de 164 células/mL, y se sometió en este estado a un
cultivo estacionario a 28ºC durante 14 horas. Durante el cultivo
estacionario, al elemento poroso se le dio la vuelta cada dos horas.
Después de finalizar el cultivo estacionario, se llevó a cabo el
lavado con una corriente de agua para eliminar las bacterias del
ácido acético. Según el procedimiento anteriormente mencionado, se
obtuvo un material de filtro en el que una estructura reticulada
compuesta de fibras de celulosa producidas por las bacterias del
ácido acético con un diámetro promedio de fibra de 0,02 \mum, se
mantuvo sobre las superficies de los lados anteriores y posteriores
del elemento poroso. Como bacteria del ácido acético, se utilizó
Acetobacter xylinum IFO13693). La composición del medio de
cultivo fue un 2% de azúcar de uva, 0,5% de polipeptona, 0,5% de
extracto de levadura, 0,27% de anhídrido fosfato ácido sódico y
0,115% de ácido cítrico monohidrato. Como método para determinar el
número de células bacterianas en el medio de cultivo, se utilizó un
método de contaje colonial. Es decir, una suspensión de la bacteria
del ácido acético en el medio de cultivo se diluyó, y una cantidad
determinada suya se muestreó. Esta se mezcló con un medio de cultivo
que contenía 0,75% de agar, vertiéndose entonces en una placa de
petri y enfriándose durante un corto período de tiempo para que se
solidificara. A la misma se añadió posteriormente una cantidad dada
de un medio de cultivo que contenía 0,75% de agar, continuándose el
cultivo durante 4 días por lo menos, contando el número de colonias
formado fuera de las células de las bacterias del ácido acético,
determinándose de este modo el número de células bacterianas. Como
resultado de la observación a través de un microscopio electrónico,
este material de filtro formó una estructura reticulada. El diámetro
promedio de la fibra de la estructura fibrosa fue de 0,02 \mum, la
proporción entre el diámetro promedio del poro del elemento poroso
respecto al diámetro promedio de la fibra de la estructura fibrosa
fue de 460, la proporción entre el diámetro promedio de la fibra del
elemento poroso y el diámetro promedio de la fibra de la estructura
fibrosa fue 60, la porosidad del material de filtro fue de 85% y la
proporción de mantenimiento de la estructura fibrosa respecto al
material del filtro fue del 0,05% en peso.
0,26 g de este material del filtro se
empaquetaron en un recipiente con un área seccional efectiva de la
parte filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x 3,0 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento alcanzó 0,21 g/cm^{3} para preparar un
aparato de filtración para eliminar leucocitos. El volumen total del
material del filtro fue de 1,26 cm^{3}. Utilizando este aparato de
filtración, 50 g de los mismos hematíes concentrados que en el
Ejemplo 2 (RC-MAP, hematocrito: 62%, número de
leucocitos: 3.785 células/\muL) se filtraron de la misma forma que
en el Ejemplo 1. La temperatura de los hematíes concentrados
justamente antes del comienzo de la filtración fue de 10ºC. A partir
de los resultados anteriores, se encontró que la tasa promedio de
tratamiento fue de 12,4 g/min y la proporción de los leucocitos
residuales fue de 10^{-2,80}.
Se sometió a un tratamiento líquido de alta
presión un material de filtro en el que las fibras extremadamente
finas se mantuvieron sobre ambas superficies de los lados anteriores
y posteriores de un elemento poroso cuyo material de filtración se
había obtenido sometiendo a la misma operación que en el Ejemplo 1
el mismo elemento poroso que se utilizó en el Ejemplo 1,
preparándose fibras extremadamente finas cortando hilos de rayón
cupramónico (hilos de Benberg® de 40 d/45 f fabricados por Asahi
Kasei Kogyo K. K.) con un diámetro de fibra de aproximadamente de 10
\mum, de forma que la longitud de la fibra resultó de 0,8 mm
aproximadamente, y sometiendo las fibras a la misma operación que en
el Ejemplo 1. Es decir, el material de filtro mencionado se sometió
a un tratamiento de corriente columnar (15 kg/cm^{2}) bajo las
condiciones de que el diámetro de la tobera fue de 0,2 mm, el paso
de la tobera fue de 5 mm, el número de líneas de toberas fue 18, la
distancia entre la red y la tobera fue de 30 mm, el número de
revoluciones del cabezal de la tobera fue de 150 rpm y la velocidad
a la que se movía el material del filtro fue de 5 m/min para
preparar un material de filtro. Como resultado de la observación a
través de un microscopio electrónico, este material de filtro formó
una estructura reticulada. El diámetro promedio de la fibra de las
fibras extremadamente finas fue de 0,23 \mum, la proporción entre
el diámetro promedio del poro del elemento poroso y el diámetro
promedio de la fibra de las fibras extremadamente finas fue de 40,0,
la proporción entre el diámetro promedio de la fibra del elemento
poroso y el diámetro promedio de la fibra de las fibras
extremadamente finas fue de 5,2, la porosidad del material de filtro
fue de 82% y la proporción de mantenimiento de la estructura fibrosa
respecto al material del filtro fue del 10,3% en peso.
0,33 g de este material del filtro se
empaquetaron en un recipiente con un área seccional efectiva de la
parte filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x 3,0 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento alcanzó 0,26 g/cm^{3} para preparar un
aparato de filtración para eliminar leucocitos. El volumen total del
material del filtro fueron 1,26 cm^{3}. Utilizando este aparato de
filtración, los mismos hematíes concentrados que en el Ejemplo 2
(RC-MAP, hematocrito: 62%, número de leucocitos:
3.785 células/\muL) se filtraron de la misma forma que en el
Ejemplo 1. La temperatura de los hematíes concentrados justamente
antes del comienzo de la filtración fue de 10ºC. A partir de los
resultados anteriores, se encontró que la velocidad promedio de
tratamiento fue de 6,7 g/min y la proporción de los leucocitos
residuales fue de 10^{-3,10}.
Ejemplo Comparativo
3
El mismo elemento poroso que el utilizado en el
Ejemplo 1 se cortó hasta un tamaño de 25 cm x 35 cm, se sumergió en
375 mL de un medio de cultivo con una concentración de bacterias del
ácido acético de 164 células/mL, y se sometió en este estado a un
cultivo estacionario a 28ºC durante 2 horas. Después de finalizar el
cultivo estacionario, se llevó a cabo el lavado con una corriente de
agua para eliminar las bacterias del ácido acético. Mediante el
procedimiento anteriormente mencionado, se obtuvo un material de
filtro en el que una estructura reticulada compuesta de fibras de
celulosa producidas por las bacterias del ácido acético con un
diámetro promedio de fibra de 0,02 \mum, se mantuvo sobre la
superficie de un lado del elemento poroso. La bacteria del ácido
acético utilizada y la composición del medio de cultivo fueron las
mismas que en el Ejemplo 3. El diámetro promedio de la fibra de la
estructura de las fibras extremadamente finas fue de 0,02 \mum, la
proporción entre el diámetro promedio del poro del elemento poroso
respecto al diámetro promedio de las fibras de la estructura de las
fibras extremadamente finas de 460, la proporción entre el diámetro
promedio de la fibra del elemento poroso y el diámetro promedio de
la fibra de la estructura de las fibras extremadamente finas fue 60,
la porosidad del material de filtro fue de 85% y la proporción de
mantenimiento de la estructura de las fibras extremadamente finas
respecto al material del filtro fue del 0,005% en peso.
0,26 g de este material del filtro se
empaquetaron en un recipiente con un área seccional efectiva de la
parte filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x 3,0 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento alcanzó 0,21 g/cm^{3} para preparar un
aparato de filtración para eliminar leucocitos. El volumen total del
material del filtro fueron 1,26 cm^{3}. Utilizando este aparato de
filtración, 50 g de los mismos hematíes concentrados que en el
Ejemplo 2 (RC-MAP, hematocrito: 62%, número de
leucocitos: 3.785 células/\muL) se filtraron de la misma forma que
en el Ejemplo 1. La temperatura de los hematíes concentrados
justamente antes del comienzo de la filtración fue de 10ºC. A partir
de los resultados anteriores, se encontró que la tasa promedio de
tratamiento fue de 10,2 g/min y la proporción de los leucocitos
residuales fue de 10^{-1,67}.
Ejemplo Comparativo
4
Fibras extremadamente finas preparadas de la
misma forma que en el Ejemplo 1 y el mismo elemento poroso que el
utilizado en el Ejemplo 1, se sometieron a la misma operación que en
el Ejemplo 1, para preparar un material de filtro en el cual las
fibras extremadamente finas se mantuvieron sobre ambas superficies
en los lados anteriores y posteriores del elemento poroso. Dicho
material de filtro se preparó de modo que el diámetro promedio de la
fibra de las fibras extremadamente finas fue de 0,25 \mum; la
proporción entre el diámetro promedio de poro del elemento poroso y
el diámetro promedio de fibra de las fibras extremadamente finas,
fue de 36,8, la proporción entre el diámetro promedio de fibra del
elemento poroso y el diámetro promedio de fibra de la estructura
extremadamente fina, fue de 4,8, la porosidad del material de filtro
fue del 48% y la proporción de mantenimiento de la estructura
fibrosa respecto al material de filtro fue del 59% en peso.
0,91 g de este material del filtro se
empaquetaron en un recipiente con un área seccional efectiva de la
parte filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x 3,0 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento alcanzó 0,72 g/cm^{3} para preparar un
aparato de filtración para eliminar leucocitos. El volumen total del
material del filtro fueron 1,26 cm^{3}. Utilizando este aparato de
filtración, 50 g de los hematíes concentrados
(RC-MAP, hematocrito: 62%, número de leucocitos:
3.785 células/\muL) se filtraron de la misma forma que en el
Ejemplo 1. Sin embargo, el material del filtro se atascó pronto, y
los hematíes concentrados no fluyeron en absoluto. La temperatura de
los hematíes concentrados justamente antes del comienzo de la
filtración fue de 10ºC.
filtración fue de 10ºC.
Ejemplo Comparativo
5
Hilos de rayón cupramónico (hilos de Benberg® de
40 d/45 f fabricados por Asahi Kasei Kogyo K. K.) con un diámetro de
fibra de aproximadamente de 10 \mum, se cortaron de modo que la
longitud de la fibra alcanzó 5 mm y se prepararon fibras
extremadamente finas según la operación del Ejemplo 1. El
tratamiento en un homogenizador se realizó a 10.000 rpm durante 5
minutos. Utilizando las fibras extremadamente finas que se habían
preparado, una estructura sin tejer fabricada con poliéster, con un
diámetro promedio de fibra de 1,2 \mum y un diámetro promedio de
poro de 1,6 \mum, preparada mediante un método de
fusión-inyección, como elemento poroso, se sometió a
un tratamiento de revestimiento utilizando una solución etanólica al
0,2 % de un copolímero compuesto por 2-hidroxietil
metacrilato y N,N-dimetilaminoetil metacrilato (el
contenido de DM en el copolímero fue de 3 moles %) de la misma forma
que en el Ejemplo 1, y entonces a comprensión calorífica a 110ºC.
Utilizando este elemento poroso, se obtuvo, de la misma manera que
en el Ejemplo 1, un material de filtro en el cual las fibras
extremadamente finas se mantuvieron sobre ambas superficies en los
lados anteriores y posteriores del elemento poroso. La estructura
fibrosa que se mantenía sobre el elemento poroso, formó una
estructura reticulada. Dicho material de filtro se preparó de modo
que el diámetro promedio de la fibra de la estructura fibrosa fue de
0,93 \mum; la proporción entre el diámetro promedio de poro del
elemento poroso y el diámetro promedio de fibra de la estructura
fibrosa fue de 1,7, la proporción entre el diámetro promedio de
fibra del elemento poroso y el diámetro promedio de fibra de la
estructura fibrosa fue de 1,3, la porosidad del material de filtro
fue del 55% y la proporción de mantenimiento de la estructura
fibrosa respecto al material de filtro fue del 1,3% en peso.
0,78 g de este material del filtro se
empaquetaron en un recipiente con un área seccional efectiva de la
parte filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x 3,0 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento alcanzó 0,62 g/cm^{3} para preparar un
aparato de filtración para eliminar leucocitos. El volumen total del
material del filtro fueron 1,26 cm^{3}. Utilizando este aparato de
filtración, 50 g de los hematíes concentrados
(RC-MAP, hematocrito: 62%, número de leucocitos:
3.785 células/\muL) se filtraron de la misma forma que en el
Ejemplo 1. Sin embargo, el material del filtro pronto provocó un
atasco, y los hematíes concentrados no fluyeron en absoluto. La
temperatura de los hematíes concentrados justamente antes del
comienzo de la filtración fue de 10ºC.
Ejemplo Comparativo
6
Un elemento poroso preparado sometiendo una
estructura sin tejer fabricada con poliéster, con un diámetro
promedio de fibra de 25 \mum y un diámetro promedio de poro de 85
\mum, para un tratamiento de revestimiento con una solución
etanólica al 0,2% de un copolímero formado por
2-hidroxietil metacrilato y
N,N-dimetilaminoetil metacrilato (DM) (el contenido
de DM en el copolímero fue de 3 moles%) de la misma forma que en el
Ejemplo 1, se cortó hasta un tamaño de 25 cm x 35 cm, se sumergió en
375 mL de un medio de cultivo con una concentración de bacterias del
ácido acético de 112 células /mL; y se sometió en este estado a un
cultivo estacionario a 28ºC durante 10 horas. Durante el cultivo
estacionario, al elemento poroso se le dio la vuelta cada dos horas.
Después de finalizar el cultivo estacionario, se llevó a cabo el
lavado con una corriente de agua para eliminar las bacterias del
ácido acético. Según el procedimiento anteriormente mencionado, se
obtuvo un material de filtro en el que una estructura fibrosa
compuesta de fibras de celulosa con un diámetro promedio de fibra de
0,02 \mum, producidas por las bacterias del ácido acético, se
mantuvo sobre las superficies de los lados anteriores y posteriores
del elemento poroso. La bacteria del ácido acético utilizada y la
composición del medio de cultivo empleado fueron las mismas que en
el Ejemplo 3. El diámetro promedio de la fibra de la estructura
fibrosa fue de 0,02 \mum, la proporción entre el diámetro promedio
del poro del elemento poroso y el diámetro promedio de las fibra de
la estructura fibrosa fue de 4.250, la proporción entre el diámetro
promedio de la fibra del elemento poroso y el diámetro promedio de
la fibra de la estructura fibrosa fue 1.250, la porosidad del
elemento poroso fue del 85% y la proporción de mantenimiento de la
estructura fibrosa al material de filtro fue del 0,01% en peso.
0,26 g de este material del filtro se
empaquetaron en un recipiente con un área seccional efectiva de la
parte filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x 3,0 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento alcanzó 0,21 g/cm^{3} para preparar un
aparato de filtración para eliminar leucocitos. El volumen total del
material del filtro fueron 1,26 cm^{3}. Utilizando este aparato de
filtración de la misma manera que en el Ejemplo 1, 50 g de los
mismos hematíes concentrados que en el Ejemplo 2
(RC-MAP, hematocrito: 62%, número de leucocitos:
3.785 células/\muL) se filtraron. La temperatura de los hematíes
concentrados justamente antes del comienzo de la filtración fue de
10ºC. A partir de los resultados anteriores, se encontró que la tasa
promedio del tratamiento fue de 25,2 g/min y la proporción de los
leucocitos residuales fue de 10^{-0,08}.
Los Ejemplos 2 a 4 y los Ejemplos Comparativos 3
a 6 son comparaciones de la proporción de mantenimiento de las
fibras con un diámetro promedio de fibra no inferior a 0,01 \mum
pero inferior a 1,0 \mum respecto al material de filtro, la
proporción entre el diámetro promedio de poro del elemento poroso y
el diámetro promedio de fibra de la estructura fibrosa, o la
proporción entre el diámetro promedio de fibra del elemento poroso y
el diámetro promedio de fibra de la estructura fibrosa.
Fibras extremadamente finas preparadas de la
misma manera que en el Ejemplo 1 y un elemento poroso continuo
fabricado de poliuretano con un diámetro promedio de poro de 7,6
\mum como elemento poroso, se sometieron a la misma operación que
en el Ejemplo 1 para obtener un material de filtro en el que las
fibras extremadamente finas se mantuvieron sobre ambas superficies
de los lados anterior y posterior del elemento poroso. Las fibras
extremadamente finas tenían un diámetro promedio de 0,25 \mum; la
proporción entre el diámetro promedio de poro del elemento poroso y
el diámetro promedio de fibra de la estructura fibrosa fue de 30,4,
la porosidad del material de filtro fue del 87% y la proporción de
mantenimiento de la estructura fibrosa respecto al material de
filtro fue del 1,3% en peso.
0,23 g de este material del filtro se
empaquetaron en un recipiente con un área seccional efectiva de la
parte filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x 3,0 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento alcanzó 0,21 g/cm^{3} para preparar un
aparato de filtración para eliminar leucocitos. El volumen total del
material del filtro fue de 1,08 cm^{3}. Utilizando este aparato de
filtración de la misma manera que en el Ejemplo 1, 50 g de los
hematíes concentrados (RC-MAP, hematocrito: 62%,
número de leucocitos: 4.125 células/\muL) que se habían conservado
a 4ºC durante 8 días, se filtraron. La temperatura de los hematíes
concentrados justamente antes del comienzo de la filtración fue de
10ºC. A partir de los resultados anteriores, se encontró que la tasa
promedio del tratamiento fue de 14,6 g/min y la proporción de los
leucocitos residuales fue de 10^{-2,83}.
El mismo elemento poroso que el utilizado en el
Ejemplo 1 se cortó hasta un tamaño de 25 cm x 35 cm, se sumergió en
375 mL de un medio de cultivo con una concentración de bacterias del
ácido acético de 183 células/mL, y se sometió en este estado a un
cultivo estacionario a 28ºC durante 14 horas. Durante el cultivo
estacionario, el elemento poroso se le dio la vuelta cada dos horas.
Después de finalizar el cultivo estacionario, se llevó a cabo el
lavado con una corriente de agua para eliminar las bacterias del
ácido acético. Según el procedimiento de producción anteriormente
mencionado, se obtuvo un material de filtro en el que una estructura
fibrosa reticulada compuesta de fibras de celulosa producidas por
las bacterias del ácido acético con un diámetro promedio de fibra de
0,02 \mum, se mantuvieron sobre las superficies de los lados
anterior y posterior del elemento poroso. La bacteria del ácido
acético utilizada y la composición del medio de cultivo fueron las
mismas que en el Ejemplo 3. El diámetro promedio de la fibra de la
estructura fibrosa fue de 0,02 \mum, la proporción entre el
diámetro promedio del poro del elemento poroso y el diámetro
promedio de las fibras de la estructura fibrosa fue de 460, la
proporción entre el diámetro promedio de la fibra del elemento
poroso y el diámetro promedio de la fibra de la estructura fibrosa
fue 60, la porosidad del material de filtro fue de 85% y la
proporción de mantenimiento de la estructura de las fibras respecto
al material de filtro fue del 0,06% en peso.
0,30 g de este material del filtro se
empaquetaron en un recipiente con un área seccional efectiva de la
parte filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x 3,0 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento alcanzó 0,21 g/cm^{3} para preparar un
aparato de filtración para eliminar leucocitos. El volumen total del
material del filtro fueron 1,44 cm^{3}. Utilizando este aparato de
filtración de la misma manera que en el Ejemplo 1, 50 g de los
mismos hematíes concentrados que en el Ejemplo 5
(RC-MAP, hematocrito: 62%, número de leucocitos:
4.125 células/\muL) se filtraron. La temperatura de los hematíes
concentrados justamente antes del comienzo de la filtración fue de
10ºC. A partir de los resultados anteriores, se encontró que la tasa
promedio del tratamiento fue de 11,2 g/min y la proporción de los
leucocitos residuales fue de 10^{-2,92}.
Ejemplo Comparativo
7
El mismo elemento poroso que el utilizado en el
Ejemplo 1 se cortó hasta un tamaño de 25 cm x 35 cm, se sumergió en
500 mL de un medio de cultivo con una concentración de bacterias del
ácido acético de 465 células/mL, y se sometió en este estado a un
cultivo estacionario a 28ºC durante 10 horas. Después de finalizar
el cultivo estacionario, se llevó a cabo el lavado con una corriente
de agua para eliminar las bacterias del ácido acético. Según el
procedimiento de producción anteriormente mencionado, se obtuvo un
material de filtro que consistía en un compuesto del elemento poroso
con la membrana celulósica bacteriana. La bacteria del ácido acético
utilizada y la composición del medio de cultivo empleado fueron los
mismos que en el Ejemplo 3. El diámetro promedio de fibra de las
fibras que formaban la membrana celulósica bacteriana fue de 0,02
\mum, la proporción entre el diámetro promedio del poro del
elemento poroso al diámetro promedio de las fibra de la estructura
fibrosa fue de 460, la proporción entre el diámetro promedio de la
fibra del elemento poroso y el diámetro promedio de la fibra de la
estructura fibrosa fue 60, la porosidad del material de filtro fue
de 85% y la proporción de mantenimiento de la estructura fibrosa
respecto al material de filtro fue del 50,3% en peso.
0,67 g de este material del filtro se
empaquetaron en un recipiente con un área seccional efectiva de la
parte filtrante de 9,0 cm^{2} (3,0 cm x 3,0 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento alcanzó 0,40 g/cm^{3} para preparar un
aparato de filtración para eliminar leucocitos. El volumen total del
material del filtro fueron 1,68 cm^{3}. Utilizando este aparato de
filtración de la misma manera que en el Ejemplo 1, 50 g de los
mismos hematíes concentrados que en el Ejemplo 5
(RC-MAP, hematocrito: 62%, número de leucocitos:
4.125 células/\muL) se filtraron. sin embargo, el material del
filtro provocó un rápido atasco y los hematíes concentrados no
fluyeron en absoluto. La temperatura de los hematíes concentrados
justamente antes del comienzo de la filtración fue de 10ºC.
A la misma operación que en el Ejemplo 1 se
sometieron fibras extremadamente finas preparadas de la misma forma
que en el Ejemplo 1 y una estructura sin tejer fabricada con
poliéster, con un diámetro promedio de fibra de 1,2 \mum y un
diámetro promedio de poro de 9,2 \mum, preparada mediante un
método de fusión-inyección para obtener un material
de filtro en el cual las fibras extremadamente finas se mantuvieron
sobre ambas superficies en los lados anteriores y posteriores del
elemento poroso. El diámetro promedio de fibra de las fibras
extremadamente finas fue de 0,29 \mum, la proporción entre el
diámetro promedio de poro del elemento poroso y el diámetro promedio
de fibra de la estructura fibrosa fue de 31,7, la proporción entre
el diámetro promedio de fibra del elemento poroso y el diámetro
promedio de fibra de la estructura fibrosa fue de 4,1, la porosidad
del material de filtro fue del 85% y la proporción de mantenimiento
de la estructura fibrosa respecto al material de filtro fue del 1,2%
en peso.
Sobre el lado superior de la corriente de 1,8
gramos de este material de filtro, se dispusieron 0,63 g de una
estructura no entretejida fabricada de un poliéster con un diámetro
promedio de fibra de 19 \mum y un peso base de 70 g/m^{2}, 0,27
g de una estructura no entretejida fabricada de un poliéster con un
diámetro promedio de fibra de 12 \mum y un peso base de 30
g/m^{2} y 0,59 g de un estructura no entretejida fabricada de un
poliéster con un diámetro promedio de fibra de 1,7 \mum y un peso
base de 66 g/m^{2}, empaquetándose en un recipiente con un área
seccional efectiva de la parte filtrante de 45 cm^{2} (6,7 cm x
6,7 cm), de forma que la densidad de empaquetamiento alcanzó 0,23
g/cm^{3}. En este recipiente se vertió con una velocidad de flujo
de 80 g/min una solución etanólica al 0,2% de un copolímero formado
por 2-hidroxietil metacrilato y
N,N-dimetilaminoetil metacrilato (DM) (el contenido
de DM en el copolímero fue de 3 moles %), mientras se conservaba a
40ºC la solución etanólica, reciclándose entonces durante 1,5 horas,
después de lo cual se introdujo nitrógeno en el recipiente con una
velocidad de flujo de 1,5 L/min para eliminar el exceso de solución
de revestimiento. Se realizó posteriormente el secado al vacío a
60ºC durante 16 horas para preparar un aparato de filtración para
eliminar los leucocitos.
Utilizando este aparato de filtración, se
filtraron 515 g de CPD-sangre entera humana recién
preparada añadida (hematocrito: 39%, número de leucocitos: 4.865
células/\muL). La temperatura de CPD-sangre entera
humana recién preparada añadida justamente antes del comienzo de la
filtración fue de 25ºC. Cuando empezó la filtración, el aparato
filtrante se conectó a una bolsa de sangre que contenía
CPD-sangre entera humana recién preparada añadida a
través del circuito sanguíneo, y seguidamente, se aplicó una presión
de 100 mmHg a la bolsa de sangre, utilizando un manguito de
presurización para rellenar enérgicamente el aparato filtrante con
CPD-sangre entera humana recién preparada añadida.
Después de que el aparato filtrante se hubiera llenado con
CPD-sangre entera humana recién preparada añadida,
tal como se ha mencionado anteriormente, la
CPD-sangre entera humana recién preparada añadida se
trató a una distancia de caída de 0,7 m y la filtración se llevó a
cabo hasta que la presencia de CPD-sangre entera
humana recién preparada añadida en la bolsa de sangre no se hubiera
confirmado, recuperándose la sangre filtrada. A partir de los
resultados anteriores, se encontró que la tasa promedio de
tratamiento fueron 29,6 g/min, la proporción de los leucocitos
residuales fue de 10^{-3,99} y la recuperación de los hematíes
fue del 93,8%.
Ejemplo Comparativo
8
En el Ejemplo 7, 5,78 g de una estructura no
entretejida fabricada de poliéster con un diámetro promedio de fibra
de 1,2 \mum y un diámetro promedio de poro de 9,3 \mum,
preparada mediante un procedimiento de
fusión-inyección, se empaquetó en lugar del material
de filtro de la presente invención y se sometió al mismo tratamiento
de revestimiento que en el Ejemplo 7, para preparar un aparato de
filtración. A este respecto, la densidad de empaquetamiento fue
ajustada a 0,26 g/cm^{3}.
Utilizando este aparato de filtración, la misma
CPD-sangre entera humana recién preparada añadida
que en el Ejemplo 7 fue tratada de la misma forma que en este
Ejemplo. Como resultado, se encontró que la tasa promedio de
tratamiento fue de 24,8 g/min, la proporción de los leucocitos
residuales fue de 10^{-3,91}y la recuperación de los hematíes fue
del 89,6%.
Aunque la cantidad del material del filtro en el
aparato de filtración en el Ejemplo 7 fue 1/3 aproximadamente de la
cantidad del material principal del filtro (material del filtro con
un diámetro promedio de fibra de 1,2 \mum) en el aparato de
filtración en el Ejemplo Comparativo 8, puede apreciarse que el
llevar a cabo la eliminación de los leucocitos y la tasa promedio de
tratamiento fueron por lo menos equivalentes y la pérdida de
hematíes se redujo en un 40%.
Sobre el lado superior de la corriente de 1,3
gramos del mismo material de filtro de la presente invención que en
el Ejemplo 7, se dispusieron 1,35 g de una estructura no entretejida
fabricada de un poliéster con un diámetro promedio de fibra de 33
\mum y un peso base de 50 g/m^{2}, 0,81 g de una estructura no
entretejida fabricada de un poliéster con un diámetro promedio de
fibra de 12 \mum y un peso base de 30 g/m^{2} y 0,59 g de una
estructura no entretejida fabricada de un poliéster con un diámetro
promedio de fibra de 1,7 \mum y un peso base de 66 g/m^{2},
empaquetándose en un recipiente con un área seccional efectiva de la
parte filtrante de 45 cm^{2} (6,7 cm x 6,7 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento alcanzó 0,22 g/cm^{3}, sometiéndose
entonces al mismo tratamiento de revestimiento que en el Ejemplo 7
para preparar un aparato filtrante.
Utilizando este aparato de filtración, 325 g de
hematíes concentrados (RC-MAP, hematocrito: 64%,
número de leucocitos: 5.260 células/\muL), que se habían
conservado a 4ºC durante 10 días, se filtraron de la misma forma que
en el Ejemplo 7 a una distancia de caída de 1,0 m. La temperatura de
los hematíes concentrados justamente antes del comienzo de la
filtración fue de 12ºC. A partir de los resultados anteriores, se
encontró que la tasa promedio del tratamiento fue de 17,6 g/min, la
proporción de los leucocitos residuales fue de 10^{-4,02}y la
recuperación de los hematíes fue del 94,3%.
Ejemplo Comparativo
9
En el Ejemplo 8, una estructura no entretejida
fabricada de poliéster con un diámetro promedio de fibra de 1,2
\mum y un diámetro promedio de poro de 9,3 \mum, preparada
mediante un procedimiento de fusión-inyección, se
empaquetó en lugar del material de filtro de la presente invención y
se sometió al mismo tratamiento de revestimiento que en el Ejemplo
7, para preparar un aparato de filtración. A este respecto, la
densidad de empaquetamiento fue ajustada a 0,22 g/cm^{3}.
Utilizando este aparato de filtración, 325 g de
los mismos hematíes concentrados que en el Ejemplo 8
(RC-MAP, hematocrito: 64%, número de leucocitos:
5.260 células/\muL) se filtraron de la misma forma que en el
Ejemplo 8 con una distancia de caída de 1,0 m. Como resultado, se
encontró que la tasa promedio de tratamiento fue de 19,5 g/min, la
proporción de los leucocitos residuales 10^{-3,94}y la
recuperación de los hematíes fue de 89,2%.
Aunque la cantidad del material del filtro en el
aparato de filtración en el Ejemplo 8 fue 1/3 aproximadamente de la
cantidad del material principal del filtro (material del filtro con
un diámetro promedio de fibra de 1,2 \mum) en el aparato de
filtración del Ejemplo Comparativo 9, puede apreciarse que el llevar
a cabo la eliminación de los leucocitos y la tasa promedio de
tratamiento en el aparato de filtro del Ejemplo 8 fueron por lo
menos equivalentes y la pérdida de hematíes se redujo en un 50%.
Sobre el lado superior de la corriente de 0,32
gramos del mismo material de filtro de la presente invención que en
el Ejemplo 7, se dispusieron 0,13 g de una estructura no entretejida
fabricada de un poliéster con un diámetro promedio de fibra de 19
\mum y un peso base de 70 g/m^{2} y 0,11 g de una estructura no
entretejida fabricada de poliéster con un diámetro promedio de fibra
de 2,3 \mum y un peso base de 60 g/m^{2}, empaquetándose en un
recipiente con un área seccional efectiva de la parte filtrante de 9
cm^{2} (3,0 cm x 3,0 cm), de forma que la densidad de
empaquetamiento alcanzó 0,21 g/cm^{3}. En este recipiente se
vertió con una velocidad de flujo de 80 g/min una solución etanólica
al 1,0% de un copolímero formado por 2-hidroxietil
metacrilato y N,N-dimetilaminoetil metacrilato (DM)
(el contenido de DM en el copolímero fue de 3 moles%), mientras se
conservaba a 40ºC la solución etanólica, reciclándose entonces
durante 1,5 minutos, después de lo cual se introdujo nitrógeno en el
recipiente con una velocidad de flujo de 1,5 L/min para eliminar el
exceso de solución de revestimiento. Además se preparó un aparato de
filtración para eliminar los leucocitos llevando a cabo además el
secado al vacío a 40ºC durante 16 horas.
Utilizando este aparato de filtración, 400 g de
concentrado plaquetario (número de plaquetas: 9,9 x 10^{5}
células/\muL, número de leucocitos: 1.075 células/\muL) que se
había conservado a temperatura ambiente durante 4 días con agitación
suave, se filtró. La temperatura del concentrado plaquetario
justamente antes de empezar la filtración fue de 23 ºC. El
concentrado plaquetario se trató a una distancia descendente de 1,0
m y la filtración se realizó hasta que la presencia del concentrado
en la bolsa de sangre no se confirmó, recuperándose la sangre
filtrada. La concentración de los leucocitos en el líquido antes de
la filtración se midió inyectando éste, diluido 10 veces con el
reactivo de Türk, en un hemocitómetro tipo
Bürker-Türk y contando el número de leucocitos
mediante un microscopio óptico para determinar la concentración
leucocitaria. Ésta se determinó en el líquido recuperado
concentrando éste 10 veces o 20 veces mediante centrifugación (800 G
x 10 minutos), tiñendo los leucocitos con una solución de naranja de
acridina y contándolos, entonces, mediante un hemocitómetro
Neubauer. La concentración plaquetaria se midió mediante un
hemocitómetro automático Sysmex K-4500 (fabricado
por Toa Iyo Denshi K.K.). A partir de los resultados anteriores, se
encontró que la tasa promedio de tratamiento fue de 27,3 g/min, la
proporción de los leucocitos residuales fue de 10^{-3,73}y la
recuperación de las plaquetas fue del 93,7%.
Ejemplo Comparativo
10
En el Ejemplo 9, una estructura no entretejida
fabricada de poliéster con un diámetro promedio de fibra de 1,2
\mum y un diámetro promedio de poro de 9,3 \mum, preparada
mediante un procedimiento de fusión-inyección, se
empaquetó en lugar del material de filtro de la presente invención y
se sometió al mismo tratamiento de revestimiento que en el Ejemplo
9, para preparar un aparato de filtración. A este respecto, la
densidad de empaquetamiento fue ajustada a 0,23 g/cm^{3}.
Utilizando este aparato de filtración, el mismo
concentrado plaquetario que en el Ejemplo 9 se trató de la misma
forma que en el Ejemplo 9. Como resultado, se encontró que la tasa
promedio de tratamiento fue de 30,1 g/min, la proporción de los
leucocitos residuales 10^{-3,38} y la recuperación de los hematíes
fue de 85,4%.
Aunque la cantidad del material principal del
filtro en el aparato de filtración en el Ejemplo 9 fue 1/3
aproximadamente de la cantidad del material principal del filtro
(material del filtro con un diámetro promedio de fibra inferior a
1,2 \mum) en el aparato de filtración del Ejemplo Comparativo 10,
puede apreciarse que llevar a cabo la eliminación de los leucocitos
y la tasa promedio de tratamiento en el aparato de filtración en el
Ejemplo 9 fueron por lo menos equivalentes y, además, la pérdida de
las plaquetas se redujo en
un 55%.
un 55%.
Fibras extremadamente finas preparadas de la
misma forma que en el Ejemplo 1 y una estructura que no forma un
tejido fabricada con poliéster, con un diámetro promedio de fibra de
1,2 \mum y un diámetro promedio de poro de 9,2 \mum, preparada
mediante un método de fusión-inyección, se
sometieron a la misma operación que en el Ejemplo 1 para obtener un
material de filtro que se mantuvo sobre ambas superficies en los
lados anteriores y posteriores del elemento poroso. El diámetro
promedio de fibra de las fibras extremadamente finas fue de 0,19
\mum, la proporción entre el diámetro promedio de poro del
elemento poroso y el diámetro promedio de fibra de la estructura
fibrosa fue de 48,4, la proporción entre el diámetro promedio de
fibra del elemento poroso y el diámetro promedio de fibra de la
estructura fibrosa fue de 6,3, la porosidad del material de filtro
fue del 85% y la proporción de mantenimiento de la estructura
fibrosa respecto al material de filtro fue del 1,4% en peso.
Sobre el lado superior de la corriente de 3,96
gramos de este material de filtro, se dispusieron 1,35 g de una
estructura no entretejida fabricada de un poliéster con un diámetro
promedio de fibra de 33 \mum y un peso base de 50 g/m^{2}, 0,81
g de una estructura no entretejida fabricada de un poliéster con un
diámetro promedio de fibra de 12 \mum y un peso base de 30
g/m^{2} y 0,59 g de un estructura no entretejida fabricada de un
poliéster con un diámetro promedio de fibra de 1,7 \mum y un peso
base de 66 g/m^{2}, empaquetándose en un recipiente con un área
seccional efectiva de la parte filtrante de 45 cm^{2} (6,7 cm x
6,7 cm), de forma que la densidad de empaquetamiento alcanzó 0,22
g/cm^{3}. Posteriormente, aplicando idéntico tratamiento de
recubrimiento que en el Ejemplo 7, se preparó un aparato de
filtración para eliminar los leucocitos.
Utilizando este aparato de filtración, 325 g de
los hematíes concentrados (RC-MAP, hematocrito: 63%,
número de leucocitos: 4.935 células/\muL), que se habían
conservado a 4ºC durante 7 días, se filtraron. La temperatura de los
hematíes concentrados justamente antes del comienzo de la filtración
fue de 12ºC. Cuando empezó la filtración, el aparato filtrante se
conectó a una bolsa de sangre que contenía los hematíes concentrados
a través del circuito sanguíneo, y seguidamente, se aplicó a aquélla
una presión de 100 mmHg utilizando un manguito de presurización para
rellenar enérgicamente el aparato filtrante con los hematíes
concentrados. Después de que el aparato filtrante se hubiera llenado
con el concentrado de hematíes, tal como se ha mencionado
anteriormente, el concentrado se trató a una distancia descendente
de 1,0 m, llevándose a cabo la filtración hasta que la presencia del
concentrado de hematíes en la bolsa de sangre no se hubiera
confirmado, recuperándose la sangre filtrada. A partir de los
resultados anteriores, se encontró que la tasa promedio de
tratamiento fue de 16,6 g/min y la proporción de los leucocitos
residuales fue de 10^{-5,99} o inferior.
Ejemplo Comparativo
11
En el Ejemplo 10, una estructura no entretejida
fabricada de poliéster con un diámetro promedio de fibra de 1,2
\mum y un diámetro promedio de poro de 9,2 \mum, preparada
mediante un procedimiento de fusión-inyección, se
empaquetó en lugar del material de filtro de la presente invención y
se sometió al mismo tratamiento de revestimiento que en el Ejemplo
10, para preparar un aparato de filtración. A este respecto, la
densidad de empaquetamiento fue ajustada a 0,22 g/cm^{3}.
Utilizando este aparato de filtración, 325 g de los mismos hematíes
concentrados que en el Ejemplo 10 (RC-MAP,
hematocrito: 63%, número de leucocitos: 4.935 células/\muL) se
filtraron de la misma forma que en el Ejemplo 10 a una distancia
descendente de 1,0 m. Como resultado, se encontró que la tasa
promedio de tratamiento fue de 15,8 g/min y la proporción de los
leucocitos residuales 10^{-3,98}.
Aunque las cantidades de los materiales del
filtro en el aparato de filtración en el Ejemplo 10 y en el Ejemplo
Comparativo 11 fueron las mismas, puede apreciarse que en el caso
del aparato de filtración en el Ejemplo 10, la eliminación de los
leucocitos fue extremadamente intensa comparada con la llevada a
cabo por el aparato de filtración en el Ejemplo Comparativo 11.
Sobre el lado superior de la corriente de 1,3
gramos del mismo material de filtro de la presente invención que en
el Ejemplo 10, se dispusieron 1,35 g de una estructura no
entretejida fabricada de un poliéster con un diámetro promedio de
fibra de 33 \mum y un peso base de 50 g/m^{2}, 0,81 g de una
estructura no entretejida fabricada de un poliéster con un diámetro
promedio de fibra de 12 \mum y un peso base de 30 g/m^{2} y 0,59
g de una estructura no entretejida fabricada de un poliéster con un
diámetro promedio de fibra de 1,7 \mum y un peso base de 66
g/m^{2}, empaquetándose en un recipiente con un área seccional
efectiva de la parte filtrante de 45 cm^{2} (6,7 cm x 6,7 cm), de
forma que la densidad de empaquetamiento alcanzó 0,22 g/cm^{3},
sometiéndose entonces al mismo tratamiento de revestimiento que en
el Ejemplo 10 para preparar un aparato filtrante.
Utilizando este aparato de filtración, 325 g de
hematíes concentrados (RC-MAP, hematocrito: 62%,
número de leucocitos: 6.335 células/\muL), que se habían
conservado a 4ºC durante 9 días, se filtraron de la misma forma que
en el Ejemplo 10 a una distancia descendente de 1,0 m con una tasa
promedio de tratamiento ajustada a 5,6 g/min. La temperatura de los
hematíes concentrados justamente antes del comienzo de la filtración
fue de 12ºC. A partir de los resultados anteriores, se encontró que
la proporción de los leucocitos residuales fue de 10^{-4,10}, y la
recuperación de los hematíes fue de 94,6%.
Utilizando el mismo aparato de filtración que en
el Ejemplo 11, el mismo concentrado de hematíes que en el Ejemplo 11
(RC-MAP, hematocrito: 62%, número de leucocitos:
6.335 células/\muL), se trató de la misma forma que en el Ejemplo
11 con una tasa promedio de tratamiento de 19,8 g/min. Como
resultado, se encontró que la proporción de los leucocitos
residuales fue de 10^{-3,93}, y la recuperación de los hematíes
fue de 93,9%.
Sobre el lado superior de la corriente de 1,3
gramos del mismo material de filtro de la presente invención que en
el Ejemplo 3, se dispusieron 1,35 g de una estructura no entretejida
fabricada de un poliéster con un diámetro promedio de fibra de 33
\mum y un peso base de 50 g/m^{2}, 0,81 g de una estructura no
entretejida fabricada de un poliéster con un diámetro promedio de
fibra de 12 \mum y un peso base de 30 g/m^{2} y 0,59 g de una
estructura no entretejida fabricada de un poliéster con un diámetro
promedio de fibra de 1,7 \mum y un peso base de 66 g/m^{2},
empaquetándose en un recipiente con un área seccional efectiva de la
parte filtrante de 45 cm^{2} (6,7 cm x 6,7 cm), de forma que la
densidad de empaquetamiento alcanzó 0,22 g/cm^{3}, sometiéndose
entonces al mismo tratamiento de revestimiento que en el Ejemplo 10
para preparar un aparato filtrante.
Utilizando este aparato de filtración, 325 g de
hematíes concentrados (RC-MAP, hematocrito: 64%,
número de leucocitos: 3.387 células/\muL), que se habían
conservado a 4ºC durante 10 días, se filtraron de la misma forma que
en el Ejemplo 10 a una distancia descendente de 1,0 m. La
temperatura de los hematíes concentrados justamente antes del
comienzo de la filtración fue de 12ºC. A partir de los resultados
anteriores, se encontró que la proporción promedio de tratamiento
fue de 24,4 g/min, y la proporción de los leucocitos residuales fue
de 10^{-3,78}, y la recuperación de los hematíes fue del
95,1%.
El mismo elemento poroso que el utilizado en el
Ejemplo 1 se cortó hasta un tamaño de 25 cm x 35 cm, se sumergió en
375 mL de un medio de cultivo con una concentración de bacterias del
ácido acético de 498 células/mL, y se sometió en este estado a un
cultivo estacionario a 28ºC durante 14 horas. Durante el cultivo
estacionario, el elemento poroso se le dio la vuelta cada dos horas.
Después de finalizar el cultivo estacionario, se llevó a cabo el
lavado con una corriente de agua para eliminar las bacterias del
ácido acético. Según el procedimiento de producción anteriormente
mencionado, se obtuvo un material de filtro en el que una estructura
fibrosa reticulada compuesta de fibras de celulosa producidas por
las bacterias del ácido acético con un diámetro promedio de fibra de
0,02 \mum, se mantuvieron sobre las superficies de los lados
anterior y posterior del elemento poroso. La bacteria del ácido
acético utilizada y la composición del medio de cultivo fueron los
mismos que en el Ejemplo 3. El diámetro promedio de la fibra de la
estructura fibrosa fue de 0,02 \mum, la proporción entre el
diámetro promedio del poro del elemento poroso y el diámetro
promedio de las fibras de la estructura fibrosa fue de 460, la
proporción entre el diámetro promedio de la fibra del elemento
poroso y el diámetro promedio de la fibra de la estructura fibrosa
fue 60, la porosidad del material de filtro fue de 85% y la
proporción de mantenimiento de la estructura de las fibras respecto
al material de filtro fue del 0,12% en peso.
Sobre el lado superior de la corriente de 1,3
gramos de este material de filtro, se dispusieron 1,35 g de una
estructura no entretejida fabricada de un poliéster con un diámetro
promedio de fibra de 33 \mum y un peso base de 50 g/m^{2}, 0,81
g de una estructura no entretejida fabricada de un poliéster con un
diámetro promedio de fibra de 12 \mum y un peso base de 30
g/cm^{2} y 0,59 g de una estructura no entretejida fabricada de un
poliéster con un diámetro promedio de fibra de 1,7 \mum y un peso
base de 66 g/cm^{2}, empaquetándose en un recipiente con un área
seccional efectiva de la parte filtrante de 45 cm^{2} (6,7 cm x
6,7 cm), de forma que la densidad de empaquetamiento alcanzó 0,22
g/cm^{3}, sometiéndose entonces al mismo tratamiento de
revestimiento que en el Ejemplo 10 para preparar un aparato
filtrante. Utilizando este aparato de filtración, 325 g de los
mismos hematíes concentrados del Ejemplo 13 (RC-MAP,
hematocrito: 64 %, número de leucocitos: 3.387 células/\muL), se
filtraron de la misma forma que en el Ejemplo 10 a una distancia
descendente de 1,0 m. La temperatura de los hematíes concentrados
justamente antes del comienzo de la filtración, fue de 12ºC. A
partir de los resultados anteriores, se encontró que la proporción
promedio de tratamiento fue de 14,8 g/min, la proporción de los
leucocitos residuales fue de 10^{-4,24}, y la recuperación de los
hematíes fue del 94,2%.
El material de filtro de la presente invención,
que elimina los leucocitos, es útil como material de filtración para
utilizar en la transfusión de componentes sanguíneos, ya que puede
eliminar leucocitos, causa de efectos secundarios, con una alta
eficiencia, mientras se mantenga una alta recuperación de los
componentes sanguíneos útiles.
Claims (57)
1. Material de filtración que elimina leucocitos
que está compuesto por un elemento poroso y una estructura fibrosa
que se mantiene sobre el elemento poroso, caracterizado
porque
el diámetro promedio de poro del elemento poroso
no es inferior a 1,0 \mum pero es inferior a 100 \mum, y el
diámetro promedio de la fibra de la estructura fibrosa no es
inferior a 0,01 \mum pero es inferior a 1,0 \mum,
la porosidad del material de filtro no es
inferior a 50 % pero es inferior al 95%,
la proporción de la estructura fibrosa respecto
al material del filtro no es inferior a 0,01% en peso, pero es
inferior a 30% en peso,
la proporción entre el diámetro promedio del poro
del elemento poroso y el diámetro promedio de la fibra de la
estructura fibrosa no es inferior a 2, pero es inferior a 2.000,
y
la estructura fibrosa forma una estructura
reticulada con redes curvas o poligonales.
2. Material de filtración que elimina leucocitos,
según la reivindicación 1, en el que la proporción del diámetro
promedio de poro del elemento poroso anterior, respecto al diámetro
promedio de fibra de la estructura fibrosa mencionada, no es
inferior a 10, pero es inferior a 1.800.
3. Material de filtración que elimina leucocitos,
según la reivindicación 1, en el que la proporción de la estructura
fibrosa mencionada anteriormente respecto al material de filtro
mencionado no es inferior al 0,03% en peso, pero inferior al 10% en
peso.
4. Material de filtración que elimina leucocitos,
según la reivindicación 1, en el que cada una de las fibras que
constituyen la estructura fibrosa mencionada es una fibra única.
5. Material de filtración que elimina leucocitos,
según la reivindicación 1, en el que el diámetro promedio de fibra
de la estructura fibrosa mencionada no es inferior a 0,01 \mum
pero es inferior a 0,8 \mum.
6. Material de filtración que elimina leucocitos,
según la reivindicación 1, en el que la estructura fibrosa
mencionada anteriormente se mantiene sobre el conjunto del elemento
poroso mencionado.
7. Material de filtración que elimina leucocitos,
según la reivindicación 6, en el que la estructura fibrosa
mencionada se mantiene sustancialmente de manera uniforme sobre la
totalidad del elemento poroso mencionado.
8. Material de filtración que elimina leucocitos,
según la reivindicación 1, en el que la estructura fibrosa
mencionada anteriormente se mantiene sobre la superficie de un lado
del elemento poroso mencionado.
9. Material de filtración que elimina leucocitos,
según la reivindicación 8, en el que la estructura fibrosa
mencionada se mantiene sustancialmente de manera uniforme sobre la
superficie.
10. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que la estructura
fibrosa mencionada anteriormente, se mantiene sobre las superficies
en los dos lados del elemento poroso anterior.
11. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 10, en el que la estructura
fibrosa mencionada se mantiene sustancialmente de modo uniforme
sobre las superficies.
12. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que el elemento poroso
es una congregación de fibras.
13. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 12, en el que la proporción del
diámetro promedio de fibra de la congregación anterior de fibras,
respecto al diámetro promedio de fibra de la estructura fibrosa
mencionada, no es inferior a 10, pero es inferior a 1.000.
14. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 13, en el que la congregación de
fibras mencionada es una estructura que no está entretejida.
15. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 13, en el que la congregación
fibrosa anterior es de fibras largas.
16. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que el elemento poroso
anterior es un material poroso esponjoso interconectado.
17. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que el grosor del
material de filtro anteriormente mencionado en la dirección del
flujo no es inferior a 0,1 mm, pero es inferior a 30 mm.
18. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 17, en el que el grosor del
material de filtro mencionado anteriormente en la dirección del
flujo no es inferior a 0,1 mm pero es inferior a 15 mm.
19. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que el elemento poroso
anteriormente mencionado y/o la estructura fibrosa mencionada se
modifica en la superficie.
20. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 19, en el que la superficie del
elemento poroso anteriormente mencionado y/o de la estructura
fibrosa anteriormente mencionada, es revestida con un material
altamente polimérico.
21. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 20, en el que la superficie del
elemento poroso anteriormente mencionado y/o de la estructura
fibrosa anteriormente mencionada, es revestida con un material
altamente polimérico que presenta un grupo hidrofílico no
iónico.
22. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 20 ó 21, en el que el material
altamente polimérico anteriormente mencionado es un copolímero que
incluye un monómero polimerizable que posee un grupo funcional que
contiene nitrógeno básico en una cuantía de 0,1 a 20% como unidad
monomérica.
23. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que la estructura
reticulada anteriormente mencionada es una estructura reticulada
uniforme.
24. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que la proporción del
diámetro promedio de poro del elemento poroso, respecto al diámetro
promedio de la fibra de la estructura fibrosa mencionada, no es
inferior a 16, pero es inferior a 300.
25. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que la proporción de la
estructura fibrosa mencionada anteriormente respecto al material de
filtro mencionado no es inferior al 0,3% en peso, pero es inferior
al 5,0% en peso.
26. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que el diámetro
promedio de la fibra de la estructura fibrosa anteriormente
mencionada, no es inferior a 0,05 \mum, pero es inferior a 0,5
\mum.
27. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que la proporción del
diámetro promedio de poro del elemento poroso anteriormente
mencionado, respecto al diámetro promedio de la fibra de la
estructura fibrosa mencionada, no es inferior a 160, pero es
inferior a 1.500.
28. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que la proporción de la
estructura fibrosa mencionada anteriormente, respecto al material de
filtro mencionado no es inferior al 0,03% en peso, pero es inferior
al 1,0% en peso.
29. Material de filtración que elimina
leucocitos, según la reivindicación 1, en el que el diámetro
promedio de la fibra de la estructura fibrosa anteriormente
mencionada no es inferior a 0,01 \mum, pero es inferior a 0,05
\mum.
30. Procedimiento para la producción de un
material de filtración que elimina leucocitos, según la
reivindicación 1, que comprende la dispersión de fibras curvadas con
un diámetro promedio de la fibra no inferior a 0,01 \mum pero
inferior a 1,0 \mum en un medio de dispersión, de forma que la
concentración de las fibras en la dispersión no sea inferior a 0,01
g/l pero sea inferior a 1,0 g/l, y manteniendo las mismas, mediante
la fabricación del filtro, sobre un elemento poroso que posee un
diámetro promedio de poro no inferior a 1,0 \mum pero inferior a
100 \mum.
31. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 30, en el que las fibras anteriormente mencionadas,
que poseen un diámetro promedio de la fibra no inferior a 0,01
\mum pero inferior a 1,0 \mum, son las obtenidas mediante la
fragmentación de fibras capaces de dividirse.
32. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 31, en el que las fibras capaces de fragmentarse
anteriormente citadas, son fibras de celulosa regeneradas.
33. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 32, en el que el método para dividir las fibras
anteriormente citadas, capaces de fragmentarse, es un método de
producción de fibras.
34. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 30, que comprende además una etapa en la que las
fibras anteriormente mencionadas, con un diámetro promedio de la
fibra no inferior a 0,01 \mum pero inferior a 1,0 \mum, se
obtienen cultivando un microorganismo que posee la capacidad de
producir celulosa en un medio líquido de cultivo, aplicando
intermitente o continuamente una vibración y recuperando las fibras
mencionadas a partir de este medio de cultivo.
35. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 34, que comprende además una etapa de división de las
fibras recuperadas que se han mencionado anteriormente.
36. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 30, que comprende además una etapa en la que las
fibras anteriormente mencionadas, con un diámetro promedio de la
fibra no inferior a 0,01 \mum pero inferior a 1,0 \mum, se
obtienen dividiendo la masa de fibras de
celulosa-microorganismos.
37. Procedimiento de producción del material de
filtración que elimina los leucocitos, según la reivindicación 30,
que comprende la etapa de someter subsiguientemente el material de
filtración resultante a un tratamiento líquido de alta presión,
entre 3 kg/cm^{2} y 200 kg/cm^{2}.
38. Procedimiento para producir un material de
filtración que elimina los leucocitos, según la reivindicación 1,
que comprende la disposición de un elemento poroso con un diámetro
promedio de poro no inferior a 1,0 \mum pero inferior a 100
\mum, en un medio líquido de cultivo, en el cual se dispersa un
microorganismo con la capacidad de producir fibras de celulosa para
obtener una concentración de microorganismos no inferior a 1
célula/ml pero inferior a 1,0 x 10^{7} células/ml, cultivando
dicho microorganismo en el medio de cultivo anteriormente mencionado
no menos que 0,5 horas pero menos que 48 horas, y recuperando
entonces el elemento poroso anteriormente mencionado.
39. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 38, en el que el microorganismo que posee la
capacidad de producir las fibras de celulosa, es una bacteria del
ácido acético.
40. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 38, en el que el cultivo es un cultivo
estacionario.
41. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 38, en el que el nivel del líquido del medio líquido
de cultivo anteriormente citado se cambia intermitente o
continuamente para permitir que pase al exterior e interior del
elemento poroso mencionado, cultivando de este modo el
microorganismo citado.
42. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 38, en el que el microorganismo citado se cultiva
mientras se introduce un gas en el medio líquido de cultivo
anteriormente mencionado y/o en el interior del elemento poroso
mencionado.
43. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 38, que comprende además, durante el cultivo, una
etapa en la que se le da la vuelta al elemento poroso.
44. Procedimiento para la producción, de un
material de filtrado que elimina los leucocitos, según la
reivindicación 1, que comprende la rotación de un elemento poroso
con un diámetro promedio de poro no inferior a 1,0 \mum pero
inferior a 100 \mum mediante un procedimiento de
fusión-inyección y la mezcla de fibras curvadas con
un diámetro promedio de fibra no inferior a 0,01 \mum pero
inferior a 1,0 \mum, en una corriente de haces de fibras que está
rotando.
45. Procedimiento de producción, según la
reivindicación 44, que comprende una etapa de sometimiento ulterior
del elemento poroso mencionado y de la estructura fibrosa
mencionada, que se mantiene sobre la estructura porosa citada a un
tratamiento líquido de alta presión, entre 3 kg/cm^{2} y 200
kg/cm^{2}.
46. Aparato para eliminar los leucocitos de una
solución que los contiene, que incluye: 1) una abertura de
suministro, 2) un material de filtración, según se define en la
reivindicación 1, y 3) una abertura de descarga.
47. Aparato, según la reivindicación 46, en el
que diversas láminas del material de filtración anteriormente citado
están laminadas en la dirección del flujo.
48. Aparato, según la reivindicación 46, en el
que sobre el lado superior de la corriente y/o sobre el lado
inferior de la corriente del material de filtración anteriormente
citado, se disponen otros materiales de filtración.
49. Aparato, según la reivindicación 48, que
comprende un material de filtración para eliminar los aglomerados
finos que se encuentran sobre el lado superior de la corriente del
material de filtración anteriormente citado.
50. Aparato, según la reivindicación 46, en el
que el área seccional del material de filtración anteriormente
citado en la dirección lineal normal a la dirección de flujo, no es
inferior a 3 cm^{2} pero es inferior a 100 cm^{2}.
51. Procedimiento para eliminar los leucocitos de
una solución que los contiene, que incluye la utilización de un
aparato que comprende: 1) una abertura de suministro, 2) un material
de filtración según la reivindicación 1, y 3) una abertura de
descarga; el vaciado de la solución que contiene los leucocitos
desde la abertura de suministro; y la recuperación del líquido
filtrado mediante el material de filtración, a partir de la abertura
de descarga.
52. Procedimiento, según la reivindicación 51, en
el que la solución que contiene los leucocitos constituye una
preparación entera sanguínea, una preparación concentrada de
hematíes, o una preparación concentrada de plaquetas.
53. Procedimiento, según la reivindicación 52, en
el que la solución anteriormente mencionada que contiene los
leucocitos, constituye una preparación entera sanguínea o una
preparación concentrada de hematíes, y el volumen del aparato no es
inferior a 3 mL pero es inferior a 20 mL por unidad.
54. Procedimiento, según la reivindicación 53, en
el que la solución anteriormente citada que contiene los leucocitos
es una preparación entera de sangre, o una preparación concentrada
de hematíes y el número de los leucocitos, que permanecen, en la
solución recuperada es inferior a 1 x 10^{3} células/unidad.
55. Procedimiento, según la reivindicación 52, en
el que la solución anteriormente mencionada que contiene leucocitos
es una preparación concentrada de plaquetas y el volumen del aparato
por 5 unidades no es inferior a 1 mL pero es inferior a 10 mL.
56. Procedimiento, según la reivindicación 55, en
el que la solución anteriormente mencionada que contiene leucocitos
es una preparación concentrada de plaquetas y el número de los
leucocitos que permanecen en la solución recuperada es inferior a 1
x 10^{3} células/5 unidades.
57. Procedimiento, según la reivindicación 51, en
el que la solución anteriormente mencionada que contiene leucocitos
es un líquido corporal, introduciéndose continuamente a partir de la
abertura de suministro dicha solución, y recuperándose a partir de
la abertura de descarga el líquido filtrado por el filtro
anteriormente mencionado.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP35071895 | 1995-12-26 | ||
| JP35071895 | 1995-12-26 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2202491T3 true ES2202491T3 (es) | 2004-04-01 |
Family
ID=18412388
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES96942654T Expired - Lifetime ES2202491T3 (es) | 1995-12-26 | 1996-12-26 | Material de filtracion para la eliminacion de leucocitos. |
Country Status (10)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US6048464A (es) |
| EP (1) | EP0811412B1 (es) |
| JP (1) | JP3941838B2 (es) |
| KR (1) | KR100220927B1 (es) |
| CN (1) | CN1067911C (es) |
| AT (1) | ATE246028T1 (es) |
| CA (1) | CA2213092C (es) |
| DE (1) | DE69629280T2 (es) |
| ES (1) | ES2202491T3 (es) |
| WO (1) | WO1997023266A1 (es) |
Families Citing this family (53)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| KR20010020506A (ko) * | 1997-06-26 | 2001-03-15 | 아사히 메디칼 가부시키가이샤 | 백혈구 제거 필터재 |
| CN1288445C (zh) * | 1997-11-11 | 2006-12-06 | 兴和株式会社 | 白细胞计数方法和白细胞计数装置 |
| US6537614B1 (en) | 1998-12-18 | 2003-03-25 | Kimberly-Clark Worldwide, Inc. | Cationically charged coating on hydrophobic polymer fibers with poly (vinyl alcohol) assist |
| US6274041B1 (en) | 1998-12-18 | 2001-08-14 | Kimberly-Clark Worldwide, Inc. | Integrated filter combining physical adsorption and electrokinetic adsorption |
| US6337026B1 (en) | 1999-03-08 | 2002-01-08 | Whatman Hemasure, Inc. | Leukocyte reduction filtration media |
| US6645388B2 (en) | 1999-12-22 | 2003-11-11 | Kimberly-Clark Corporation | Leukocyte depletion filter media, filter produced therefrom, method of making same and method of using same |
| US6800117B2 (en) | 2000-09-05 | 2004-10-05 | Donaldson Company, Inc. | Filtration arrangement utilizing pleated construction and method |
| US6673136B2 (en) | 2000-09-05 | 2004-01-06 | Donaldson Company, Inc. | Air filtration arrangements having fluted media constructions and methods |
| US6746517B2 (en) * | 2000-09-05 | 2004-06-08 | Donaldson Company, Inc. | Filter structure with two or more layers of fine fiber having extended useful service life |
| US6740142B2 (en) | 2000-09-05 | 2004-05-25 | Donaldson Company, Inc. | Industrial bag house elements |
| US6743273B2 (en) | 2000-09-05 | 2004-06-01 | Donaldson Company, Inc. | Polymer, polymer microfiber, polymer nanofiber and applications including filter structures |
| US6716274B2 (en) | 2000-09-05 | 2004-04-06 | Donaldson Company, Inc. | Air filter assembly for filtering an air stream to remove particulate matter entrained in the stream |
| US20020092423A1 (en) | 2000-09-05 | 2002-07-18 | Gillingham Gary R. | Methods for filtering air for a gas turbine system |
| US7270693B2 (en) | 2000-09-05 | 2007-09-18 | Donaldson Company, Inc. | Polymer, polymer microfiber, polymer nanofiber and applications including filter structures |
| RU2300543C2 (ru) | 2001-05-31 | 2007-06-10 | Дональдсон Компани, Инк. | Составы тонкого волокна, способы их получения, способ изготовления тонковолокнистого материала |
| DE20120897U1 (de) * | 2001-12-28 | 2003-05-08 | IWS Ingenieurgesellschaft Weiner & Schröter mbH,, 47475 Kamp-Lintfort | Schutztür für Fahrerkabinen, insbesondere von Nutzfahrzeugen |
| US7591954B2 (en) * | 2002-12-02 | 2009-09-22 | Asahi Kasei Medical Co., Ltd. | Method for removing leukocytes, leukocyte-removing filter and utilization thereof |
| US7125434B2 (en) * | 2002-12-19 | 2006-10-24 | Millipore Corporation | Deep gradient-density filter device |
| DE10304365A1 (de) * | 2003-02-04 | 2004-08-05 | Ls-Medcap Gmbh | Filtervorrichtung |
| US20040178162A1 (en) * | 2003-03-14 | 2004-09-16 | Dorothea Zucker-Franklin | Devices and methods for removal of leukocytes from breast milk |
| TWI349567B (en) * | 2003-10-10 | 2011-10-01 | Asahi Kasei Medical Co Ltd | A method of preparation of cell concentrates,a method of lyophilization storage of cells,a cell composition,and a cell lyophilized product |
| JP4706275B2 (ja) * | 2004-02-27 | 2011-06-22 | 東レ株式会社 | フィルターおよびフィルターエレメント |
| TWI341230B (en) | 2004-04-21 | 2011-05-01 | Toray Industries | Polishing cloth and production method for the nanofiber construction |
| EP1745808A4 (en) * | 2004-04-21 | 2012-10-03 | Toray Industries | MEDICAL MEDICAL FILTER MATERIAL AND TRAFFIC COLUMN AND EXTRACORPOREAL BLOOD FILTER USING THE SAME |
| GB0418123D0 (en) * | 2004-08-13 | 2004-09-15 | Asahi Chemical Ind | Polymers useful as medical materials |
| AU2005323672B2 (en) * | 2005-01-06 | 2008-12-18 | Asahi Kasei Medical Co., Ltd. | Method of removing leukocyte |
| DE102006017453B4 (de) * | 2006-04-12 | 2010-01-28 | Renaselect Gmbh & Co.Kg | Membran für Flüssigphasenseparationsprozesse und Verfahren zu ihrer Herstellung |
| US20070005006A1 (en) * | 2005-06-15 | 2007-01-04 | Rosenfeld Paul E | Methods and devices for removal of toxic compounds from breast milk |
| FR2925352B1 (fr) * | 2007-12-21 | 2010-02-26 | Maco Pharma Sa | Procede de greffage d'un element poreux pour la deleucocytation |
| TWI446939B (zh) | 2008-04-14 | 2014-08-01 | Asahi Kasei Medical Co Ltd | The filter method for removing the filter material and the blood preparation |
| KR101452866B1 (ko) * | 2008-08-25 | 2014-10-23 | 코오롱인더스트리 주식회사 | 백혈구 제거필터용 밀봉재 |
| JP2012000550A (ja) * | 2010-06-15 | 2012-01-05 | Asahi Kasei Fibers Corp | セルロース繊維から構成される濾材 |
| JP5855337B2 (ja) * | 2010-10-07 | 2016-02-09 | 北越紀州製紙株式会社 | 多孔質体及びその製造方法 |
| JP5612130B2 (ja) | 2010-12-27 | 2014-10-22 | 旭化成メディカル株式会社 | 血液処理フィルター、血液回路システム及び遠心分離方法 |
| US10064406B2 (en) * | 2011-01-06 | 2018-09-04 | Cytosorbents Corporation | Polymeric sorbent for removal of impurities from whole blood and blood products |
| US20150075406A1 (en) * | 2012-02-15 | 2015-03-19 | Hokuetsu Kishu Paper Co., Ltd. | Porous body and process for manufacturing same |
| JP6073072B2 (ja) * | 2012-04-27 | 2017-02-01 | 株式会社キコーコーポレーション | ナノファイバー不織布を用いたろ過装置 |
| CN104487105B (zh) | 2012-07-25 | 2016-12-07 | 旭化成医疗株式会社 | 血液处理过滤器、血液回路以及血液处理方法 |
| WO2014095959A1 (en) * | 2012-12-20 | 2014-06-26 | Dsm Ip Assets B.V. | Membrane construction with fiber layers for blood filtration |
| US10478537B2 (en) | 2013-10-18 | 2019-11-19 | Kaneka Corporation | Cell separation filter material and filter obtained by layering same |
| TWI481442B (zh) * | 2013-11-14 | 2015-04-21 | 中原大學 | 雙離子電荷偏差型血球篩選用材料 |
| US11213776B2 (en) * | 2013-12-13 | 2022-01-04 | Asahi Kasei Medical Co., Ltd. | Leukocyte removal filter material and leukocyte removal method |
| US9782707B2 (en) | 2014-03-24 | 2017-10-10 | Fenwal, Inc. | Biological fluid filters having flexible walls and methods for making such filters |
| US9968738B2 (en) | 2014-03-24 | 2018-05-15 | Fenwal, Inc. | Biological fluid filters with molded frame and methods for making such filters |
| US10159778B2 (en) | 2014-03-24 | 2018-12-25 | Fenwal, Inc. | Biological fluid filters having flexible walls and methods for making such filters |
| US9796166B2 (en) | 2014-03-24 | 2017-10-24 | Fenwal, Inc. | Flexible biological fluid filters |
| US10376627B2 (en) | 2014-03-24 | 2019-08-13 | Fenwal, Inc. | Flexible biological fluid filters |
| JP5990219B2 (ja) * | 2014-05-28 | 2016-09-07 | 北越紀州製紙株式会社 | 多孔質体の製造方法 |
| JP5993408B2 (ja) * | 2014-06-23 | 2016-09-14 | 北越紀州製紙株式会社 | 多孔質体及びその製造方法 |
| US10556197B2 (en) | 2015-08-03 | 2020-02-11 | Hokuetsu Corporation | Method for manufacturing filter medium for air filter |
| JP6721919B2 (ja) * | 2016-03-23 | 2020-07-15 | 北越コーポレーション株式会社 | エアフィルタ用濾材 |
| WO2017208665A1 (ja) * | 2016-06-03 | 2017-12-07 | 花王株式会社 | 血球凝集性繊維 |
| WO2018152683A1 (en) * | 2017-02-22 | 2018-08-30 | W. L. Gore & Associates, Inc. | Layered filter assembly for enclosure protection |
Family Cites Families (19)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB1242493A (en) * | 1969-12-05 | 1971-08-11 | Roy Laver Swank | Blood treating method and apparatus |
| JPS603367B2 (ja) * | 1979-10-09 | 1985-01-28 | 旭化成株式会社 | 白血球分離法および白血球分離材 |
| JPS60193468A (ja) * | 1984-03-15 | 1985-10-01 | 旭メデイカル株式会社 | 白血球除去フイルタ− |
| EP0155003B1 (en) * | 1984-03-15 | 1990-07-04 | ASAHI MEDICAL Co., Ltd. | Filtering unit for removing leukocytes |
| EP0267286B1 (en) * | 1986-03-28 | 1993-05-26 | ASAHI MEDICAL Co., Ltd. | Filter medium for selectively removing leucocytes |
| JP2807469B2 (ja) * | 1988-08-10 | 1998-10-08 | 川澄化学工業株式会社 | 白血球分離材 |
| ATE234621T1 (de) * | 1990-09-25 | 2003-04-15 | Asahi Medical Co | Methode und filtersystem zur entfernung von leukozyten |
| JPH0515584A (ja) * | 1991-07-05 | 1993-01-26 | Nissho Corp | 白血球除去フイルター |
| US5190657A (en) * | 1991-07-22 | 1993-03-02 | Lydall, Inc. | Blood filter and method of filtration |
| US5290449A (en) * | 1991-07-22 | 1994-03-01 | Lydall, Inc. | Blood filter material |
| DE69231566T2 (de) * | 1991-08-22 | 2001-06-21 | Asahi Medical Co. Ltd., Tokio/Tokyo | Filtermedium zur selektiven entfernung von leukozyten und entsprechende vorrichtung |
| JP3270125B2 (ja) * | 1992-07-09 | 2002-04-02 | 旭メディカル株式会社 | 白血球捕捉材 |
| JPH05229063A (ja) * | 1991-11-08 | 1993-09-07 | Japan Vilene Co Ltd | バイオセルロース膜複合体およびその製造方法 |
| DE69319471T2 (de) * | 1992-03-17 | 1999-04-15 | Asahi Medical Co. Ltd., Tokio/Tokyo | Filtermedium mit begrenzter negativer Oberflächenladung für die Behandlung von Blutmaterial |
| US5591337A (en) * | 1993-09-14 | 1997-01-07 | Baxter International Inc. | Apparatus for filtering leukocytes from blood cells |
| US5456835A (en) * | 1993-11-08 | 1995-10-10 | Hemasure, Inc. | Device and process for removing free hemoglobin from blood |
| US5639376A (en) * | 1994-01-10 | 1997-06-17 | Hemasure, Inc. | Process for simultaneously removing leukocytes and methylene blue from plasma |
| CA2180328A1 (en) * | 1994-01-10 | 1995-07-13 | Franco Castino | Device and process for removing leukocytes and viral inactivating agents from blood |
| US5591335A (en) * | 1995-05-02 | 1997-01-07 | Memtec America Corporation | Filter cartridges having nonwoven melt blown filtration media with integral co-located support and filtration |
-
1996
- 1996-12-26 ES ES96942654T patent/ES2202491T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1996-12-26 AT AT96942654T patent/ATE246028T1/de not_active IP Right Cessation
- 1996-12-26 US US08/894,320 patent/US6048464A/en not_active Expired - Fee Related
- 1996-12-26 CN CN96192159A patent/CN1067911C/zh not_active Expired - Fee Related
- 1996-12-26 KR KR1019970705894A patent/KR100220927B1/ko not_active Expired - Fee Related
- 1996-12-26 WO PCT/JP1996/003814 patent/WO1997023266A1/ja not_active Ceased
- 1996-12-26 JP JP51330097A patent/JP3941838B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 1996-12-26 DE DE69629280T patent/DE69629280T2/de not_active Expired - Lifetime
- 1996-12-26 CA CA002213092A patent/CA2213092C/en not_active Expired - Fee Related
- 1996-12-26 EP EP96942654A patent/EP0811412B1/en not_active Expired - Lifetime
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| EP0811412A1 (en) | 1997-12-10 |
| KR100220927B1 (ko) | 1999-09-15 |
| CA2213092C (en) | 2001-01-23 |
| KR19980702494A (ko) | 1998-07-15 |
| JP3941838B2 (ja) | 2007-07-04 |
| CN1176607A (zh) | 1998-03-18 |
| AU1174097A (en) | 1997-07-17 |
| CA2213092A1 (en) | 1997-07-03 |
| US6048464A (en) | 2000-04-11 |
| EP0811412B1 (en) | 2003-07-30 |
| WO1997023266A1 (en) | 1997-07-03 |
| DE69629280T2 (de) | 2004-04-22 |
| EP0811412A4 (en) | 2001-08-22 |
| CN1067911C (zh) | 2001-07-04 |
| DE69629280D1 (de) | 2003-09-04 |
| ATE246028T1 (de) | 2003-08-15 |
| AU697577B2 (en) | 1998-10-08 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| EP0811412B1 (en) | Filter medium for leukocyte removal | |
| EP0406485A1 (en) | A method for the removal of leukocytes from a leukocyte-containing suspension and filter unit for use with the method | |
| JPWO1997023266A1 (ja) | 白血球除去フィルター材 | |
| JP4587213B2 (ja) | 生体適合性ポリマーおよびそれを用いた白血球選択除去フィルター材 | |
| KR0129797B1 (ko) | 백혈구를 제거하기 위한 여과재, 장치 및 방법 | |
| CN1177620C (zh) | 除白细胞的过滤介质 | |
| JP5826168B2 (ja) | 白血球除去器のプライミングシステム及びプライミング方法 | |
| WO1987005812A1 (fr) | Filtre pour l'extraction selective de leucocytes | |
| US5540841A (en) | Cardioplegia filter and method for processing cardioplegia fluid | |
| WO1999000172A1 (en) | Leukapheretic filter medium | |
| JPWO1999011304A1 (ja) | 白血球除去フィルター材 | |
| JP3124565B2 (ja) | 白血球除去フィルターおよび白血球除去装置 | |
| JP3741320B2 (ja) | 白血球選択除去フィルター材 | |
| EP0887098B1 (en) | Gas plasma treated porous medium and method of separation using same | |
| JPH067429A (ja) | 血液濾過材 | |
| US6182834B1 (en) | Filter coated with chitosan for removal of leucocytes | |
| JPH0624995A (ja) | 白血球捕捉材 | |
| JP2918595B2 (ja) | 白血球分離器 | |
| JPH0780062A (ja) | エンドトキシン除去器および浄化血液の製造方法 | |
| JP2007050013A (ja) | 白血球除去方法および白血球除去フィルター | |
| JP3272099B2 (ja) | ブラジキニン吸着体 | |
| JPH06247862A (ja) | 白血球除去フィルター材料、白血球除去装置および白血球除去方法 | |
| JP3192711B2 (ja) | 造影剤用の吸着体 | |
| JP2521090B2 (ja) | 血球分離装置 | |
| JPH01256971A (ja) | 白血球除去材及び白血球除去フイルター |