ES2207305T3 - Seleccion y utilizacion de cepas de bacterias lacticas moduladoras de la inmunidad no especofica. - Google Patents
Seleccion y utilizacion de cepas de bacterias lacticas moduladoras de la inmunidad no especofica.Info
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Abstract
Utilización de bacterias lácticas de una cepa de L. casei capaz de reducir la producción de NO (óxido nítrico) por cultivos de enterocitos preactivados por citoquinas proinflamatorias y LPS (lipopolisacáridos) bactrianos, para la obtención de una composición para prevenir o tratar patologías inflamatorias agudas o crónicas del intestino.
Description
Selección y utilización de cepas de bacterias
lácticas moduladoras de la inmunidad no específica.
La invención se refiere a la utilización de
bacterias lácticas como reguladores de la inflamación de la mucosa
intestinal.
Las bacterias lácticas se utilizan
tradicionalmente para fabricar productos alimentarios fermentados,
en particular productos lácteos.
Se ha informado de que además de sus cualidades
nutricionales, algunos de estos productos alimentarios ejercían
efectos beneficiosos para la salud; estas propiedades han sido
objeto de un interés particular desde hace algunas décadas, y se
han efectuado numerosas investigaciones con el fin de confirmarlas y
de definir más concretamente el papel que desempeñan los fermentos
lácticos.
De este modo se ha demostrado que ciertas
bacterias lácticas, en particular entre los lactobacilos y las
bifidobacterias, mejoraban la inmunidad respecto de agentes
infecciosos [PAUBERT-BRAQUET et al., Int.
Immunother. 11, 153-161 (1995); KAILA et al.,
Dis. Child, 72, 51-53 (1995); HUDAULT et
al., Appl. Environ. Microb. 63, 513-518 (1997)],
y poseían también una actividad antitumoral [HAYATSU et al.,
Cancer Lett. 73, 173-179 (1993); HOSONO et
al., Agric. Biol. Chem. 54, 1639-1643 (1990),
HOSODA et al., J. Dairy. Sci. 75, 976-981
(1992)].
Estos efectos han sido particularmente atribuidos
a una acción sobre la composición de la microflora intestinal, en
detrimento de los microorganismos patógenos, y/o a una acción más
directa del sistema inmunitario, que se manifiesta en particular por
un aumento del nivel de citoquinas activadoras del sistema
inmunitario, tales como IFN-\gamma o
interleuquinas, así como un aumento del número de células activadas
que intervienen en la respuesta inmune específica o no específica,
tales como los linfocitos y los macrófagos, y una mayor secreción
de inmunoglobulinas [PERDIGÓN et al., Int. J. Immunother. 9,
29-52, (1993); PORTIER et al., Int. J.
Immunother. 9, 217-224 (1993); SOLIS PEREYRA y
LEMONNIER, Nutr. Research 13, 1127-1140 (1993)]; DE
SIMONE et al., Int. J. Immunother. 9, 23-28
20 (1993); PERDIGON et al., J. Dairy Res. 61,
553-562 (1994); SCHIFFRIN et al., J. Dairy
Sci. 78, 491-497 (1995)].
Sin embargo, parece que los efectos beneficiosos
inducidos por las bacterias lácticas pueden variar según el origen
de la patología en cuestión, la especie y/o la cepa bacteriana
utilizada, y las condiciones de administración. Para mejor adaptar
la utilización de estas bacterias, o de los productos que las
contienen, en el marco del tratamiento o de la prevención de
patologías específicas, y para estar en condiciones de seleccionar
las bacterias más apropiadas para la utilización deseada, es
necesario por los tanto, conocer mejor los mecanismos por los
cuales se ejercen sus efectos.
Los inventores se han propuesto estudiar el
efecto sobre la mucosa intestinal de bacterias lácticas del grupo
Lactobacillus casei; han elegido, con este objetivo la cepa
de L. Casei DN 114001. Esta cepa se describe en la
solicitud PCT WO 96/20607 a nombre de COMPAGNIE GERVAIS DANONE, y se
registró el 30 de diciembre de 1994, en la CNCM (Colección Nacional
de Cultivos de Microorganismos) gestionado por el Instituto Pasteur,
25 rue du Docteur Roux, en París, con el número
I-1518, y se han demostrado sus propiedades
beneficiosas en el marco del tratamiento de las diarreas.
Los inventores han estudiado el efecto in
vitro de esta cepa de L. Casei sobre la producción de
mediadores de la inmunidad no específica
(citoquinas-proinflamatorias y óxido nítrico) por
enterocitos cultivados.
Estas líneas de células, que proceden del
epitelio intestinal humano, constituyen un modelo de estudio de la
respuesta de éste a una agresión infecciosa o de otro tipo. Esta
respuesta se manifiesta en particular por la producción de citoquina
proinflamatorias (principalmente IL-1,
IL-6, TNF-\alpha) y de óxido
nítrico (NO), generado por la isoforma inducible de la
NO-sintasa (iNOS). El óxido nítrico participa, por
sus propiedades antimicrobianas, en la defensa contra los
microorganismos patógenos, y cuando se produce en pequeñas
cantidades, en la protección de la mucosa intestinal. Sin embargo,
en grandes dosis, reduce la viabilidad de las células epiteliales, y
contribuye a la instauración y al mantenimiento de un estado
inflamatorio crónico [ALICAN y KUBES, Am, J. Physiol. 270,
G225-237, (1996); TEPPERMAN et al., J.
Pharmacol. Exp. Ther. 271, 1477-1482, (1994)] La
producción de NO por los enterocitos cultivados se puede inducir por
las citoquinas proinflamatorias [VALETTE et al., Br, J.
Pharmacol., 121, 187-182 (1997); KOLIOS et
al., Br. J. Pharmacol., 116, 2866-2872, (1995),
así como por las toxinas lipopolisacarídicas (LPS) de ciertas
bacterias gram negativo (TEPPERMAN et al., 1994, publicación
anteriormente mencionada). Unos estudios recientes [SALZMAN et
al., Gastroenterology. 114., 93-102, (1998);
WITTHOFT et al., Am. J. Physiol., 275,
G564-571, (1998)] indican que las bacterias
enteropatógenas Escherichia coli, Salmonella dublin, Shigella
flexneri inducen la expresión de la iNOS y la producción de NO
en cultivos de enterocitos, preactivos o no por citoquinas
proinflamatorias.
Los inventores han constatado actualmente que, en
el caso de sus experimentaciones con L. Casei, la acción
sobre la producción de citoquinas proinflamatorias y de NO variaba
según el estado de activación de los enterocitos. En efecto, cuando
las células están en su estado basal, no se observa ningún efecto de
L. Casei; cuando están activadas por la adición de citoquinas
proinflamatorias (lo que reproduce las condiciones de una agresión,
infecciosa o de otro tipo), se observa una producción reducida de NO
y de TNF; esta respuesta a la agresión aumenta muy
significativamente por la adición de L. Casei. Finalmente, en
el caso de células hiperactivadas por la adición de citoquinas
inflamatorias y de LPS (lo que reproduce las condiciones de un
estado inflamatorio patógeno), se observa por el contrario, una
reducción de la producción de NO y de TNF, que vuelve a un nivel
óptimo.
Parece por lo tanto que esta cepa de L.
Casei favorece una respuesta adaptativa de las células a una
agresión mediante la modulación de factores que intervienen en la
inmunidad no específica.
La puesta en evidencia de estas propiedades
permite proponer la utilización de la cepa CNCM
I-1518 de L. Casei, y/o de cualquier otra
cepa de bacteria láctica capaz de reducir la producción de NO por
cultivos de enterocitos preactivados por citoquinas
proinflamatorias y LPS bacterianos, para la obtención de
composiciones reguladoras de la respuesta inflamatoria de los
enterocitos, y en particular inhibidoras de una respuesta
inflamatoria patógena.
Ventajosamente, se utilizará una cepa capaz de
aumentar además la producción de NO por cultivos de enterocitos
preactivados por citoquinas proinflamatorias.
Las composiciones obtenidas se pueden utilizar
para la prevención o el tratamiento de patologías inflamatorias
agudas o crónicas del intestino (colitis, enteritis, enfermedad de
Crohn, rectocolitis hemorrágicas, etc.), sean estas patologías de
origen infeccioso (inducidas por bacterias, virus, levaduras, etc)
o no; son particularmente apropiadas en el marco del tratamiento de
los estados inflamatorios crónicos.
Según la invención, las bacterias lácticas se
pueden utilizar en forma de bacterias enteras vivas o no, en forma
de lisado bacteriano, o en forma de fracciones bacterianas; las
fracciones bacterianas adecuadas para esta utilización se pueden
elegir ensayando sus propiedades de aumento de la producción de NO
por cultivos de enterocitos preactivados por citoquinas
proinflamatorias, y de reducción de la producción de NO por cultivos
de enterocitos preactivados por citoquinas proinflamatorias y LPS
bacterianos.
Preferiblemente, estas composiciones se pueden
administrar en forma de complementos alimentarios. Puede tratarse en
particular de productos lácteos fermentados; en este caso, las
bacterias lácticas utilizadas, según la invención, para la
obtención de estas composiciones pueden formar parte del fermento
utilizado para la obtención de estos productos lácteos.
Se utiliza una cepa de L. Casei, y
preferiblemente, la cepa CNCM I.1518.
Se pueden obtener nuevas cepas de bacterias
lácticas provistas de propiedades moduladoras de la inmunidad no
específica y utilizables en particular para la obtención de
composiciones reguladoras de la respuesta inflamatoria de los
enterocitos, por la utilización de un procedimiento de cribado que
comprende la selección de cepas de bacterias lácticas capaces de
reducir la producción de NO por cultivos de enterocitos preactivados
por citoquinas proinflamatorias y LPS bacterianos.
Ventajosamente, dicho procedimiento comprende
además una etapa de selección de las cepas capaces de aumentar la
producción de NO por cultivos de enterocitos preactivados por
citoquinas proinflamatorias, y opcionalmente, una etapa de selección
de las cepas que no ejercen ningún efecto sobre la producción de NO
por enterocitos no activados.
Según una realización preferida del procedimiento
según la invención, dichas cepas se criban a partir de cultivos de
bacterias lácticas elegidas en el grupo constituido por
lactobacilos, lactococos, estreptococos y las bifidobacterias.
La invención se refiere también a los alimentos y
complementos nutricionales, en particular a los productos lácteos
fermentados que contienen estas nuevas cepas, o productos derivados
de éstas, particularmente por lisis y/o fraccionamiento
celular.
La presente invención se entenderá mejor con la
ayuda del siguiente complemento de descripción, que se refiere a
ejemplos no limitativos que muestran la puesta en evidencia de las
propiedades de la cepa CNCM I-1518.
Las citoquinas recombinantes humanas
(IL-1\beta, TNF-\alpha,
IFN-\gamma, 10^{7} U/mg) utilizadas proceden de
la sociedad IMMUGENEX (Los Angeles, CA); el PDTC (inhibidor de la
formación del factor de transcripción NF\kappa-B),
el L-NAME (inhibidor de las
NO-sintasas), y el lipopolisacárido de
Escherichia coli proceden de la sociedad SIGMA (St Louis,
Misuri).
Los kits de dosificación por ELISA de las
citoquinas IL-1\beta, y
TNF-\alpha proceden de la sociedad BIOSOURCE.
Los extractos totales de L. Casei
utilizados durante los experimentos se obtienen por sonicación
durante 10 minutos de suspensiones de la cepa CNCM
I-1518, para romper las bacterias.
Se han utilizado las 2 líneas de células de
carcinoma del colón HT29 y Caco-2.
La línea HT29, inicialmente aislada por FOGH y
TREMPE (Human Tumor Cells In Vitro, 115-156,
J. FOGH Ed, Plenum Press, Nueva York, 1975) está disponible en el
registro ATCC, (Rockville EE.UU.), con el número ATCC
HTB-38.
La línea Caco-2, inicialmente
aislada por FOGH (J. Natl. Cancer Inst. 58, 209-214,
1977) está disponible en el registro ATCC (Rockville EE.UU.), con el
número ATCC HTB-37.
La figura 1 representa la producción de NO por
las células Caco-2, preactivadas (\bullet) o no
(\circ) por el CYTOMIX, o por las células HT-29
preactivadas (\blacksquare) o no (\boxempty) por el CYTOMIX, en
presencia de cantidades crecientes de extracto total de la cepa
CNCM I-1518.
La figura 2 representa el efecto del
L-NAME sobre la producción de NO por las células
Caco-2 o por las células HT-29
preactivadas por el CYTOMIX, en presencia o no de extracto total (3%
v/v) de la cepa CNCM I-1518,
(
\sqdl) + L-NAME
(\blacksquare) Control
La figura 3 representa el efecto del
L-NAME y del PDTC sobre la producción de TNF por las
células Caco-2 o por las células
HT-29 preactivadas por el CYTOMIX, en presencia o no
de extracto total (3% v/v) de la cepa CNCM
I-1518.
(
\sqdl) + L-NAME
(\blacksquare) Control
\sqvh+ PDTC
La figura 4 representa la producción de NO por
las células Caco-2, preactivadas por el CYTOMIX solo
(\circ) o por el CYTOMIX + LPS (\bullet), o por las células
HT-29 preactivadas por el CYTOMIX solo (\boxempty)
o por el CYTOMIX + LPS (\blacksquare) en presencia de cantidades
crecientes de extracto total de la cepa CNCM
I-1518.
Cada una de las 2 líneas se ha sembrado en una
cantidad de 2x10^{5} células/pocillo en placas de 96 pocillos, en
medio DMEM suplementado con 5% de SVF, con 100 U/ml de penicilina,
con 100 \mug/ml de estreptomicina y con 2 mM de
L-glutamina.
Las células se han preincubado durante 24 horas a
37ºC, 5% de CO_{2}, en presencia de CYTOMIX (mezcla de
IL-
\hbox{1 \beta :} 10 ng/ml,
TNF-\alpha : 25 ng/ml,
IFN-\gamma : 10^{3} U/ml). Las células se
incuban a continuación durante 24 horas adicionales en presencia o
no de cantidades crecientes de extractos totales de L. Casei
(en % vol/vol).
Después de la incubación, los sobrenadantes de
cultivo se recuperan y se congelan antes de la determinación de la
concentración de nitritos. Para ciertos experimentos, se añade
L-NAME (1 mM), que es un análogo de la
L-arginina y que constituye un inhibidor competitivo
específico de las No-sintasas, al mismo tiempo que
los extractos de L. Casei.
Se evalúa la cantidad de NO producida por la
dosificación en los sobrenadantes de cultivo, de los derivados
estables de este radical después de su reacción en medio acuoso: los
nitritos y los nitratos. Los nitratos en un primer tiempo se
reducen en nitritos por bacterias que expresan la
nitrato-reductasa y los nitritos se dosifican a
continuación por el procedimiento de GRIESS. A 100 \mul de
sobrenadante se añaden 100 \mul de una solución compuesta en
volumen por una solución de sulfanilamida al 1% en ácido acético al
60%. Se realiza una curva de calibración estándar en presencia de
diferentes concentraciones de nitrito de sodio diluido en medio de
cultivo (DMEM 5% SVF). A continuación, se determinan las
absorbencias en 540 nm utilizando un lector MULTISCAN MCC34O,
(LABSYSTEM).
La figura 1 muestra que en presencia del CYTOMIX
solo, no se observa más que una producción limitada de NO por las
líneas HT-29 y Caco-2; esta
producción aumenta de manera dosis-dependiente por
la adición del extracto de L. Casei. Se observa un efecto
máximo para una concentración de aproximadamente el 3% (v/v) de
extracto de L. Casei. En ausencia de CYTOMIX, L. Casei
no tiene ningún efecto sobre la producción de NO de una u otra
línea.
La figura 2 muestra que esta producción inducida
por el CYTOMIX se inhibe por la adición de L-NAME,
en presencia o no de extracto total de L. Casei (3%
v/v).
Cada una de las 2 líneas se ha sembrado en una
cantidad de 2x10^{6} células/pocillo en placas de 24 pocillos, en
medio DMEM suplementado con 5% de SVF, con 100 U/ml de penicilina,
con 100 \mug/ml de estreptomicina y con 2 mM de
L-glutamina. Las células se han preincubado durante
24 horas en presencia de CYTOMIX, y a continuación durante 24 horas
más en presencia de extractos totales de L. Casei. Para
ciertos experimentos se ha añadido L-NAME (1 mM)
o un inhibidor de la vía de transducción) NF\kappaB (el PDTC : 10
pM) al mismo tiempo que los extractos bacterianos.
Los sobrenadantes de cultivo se recuperan a
continuación y se determina su concentración de citoquinas por
ELISA.
La figura 3 muestra que en presencia del CYTOMIX
solo, no se observa más que una baja producción de
TNF-\alpha por la línea Caco-2, y
una ausencia de producción de esta citoquina por la línea
HT-29. Esta producción aumenta en gran medida para
las dos líneas, por la adición de extracto total de L.
Casei; se inhibe por la adición de L-NAME o de
PDTC, lo que demuestra que la activación de la producción de
citoquinas proinflamatorias por L. Casei hace intervenir la
producción de NO y la activación de NF\kappaB.
Los resultados presentados en la siguiente tabla
I muestran que la adición de L. Casei a las células
preactivadas por el CYTOMIX activa también la producción de
IL-1\beta.
| Célula | Preactivación | Estimulación | II-1\beta (pg/ml) | TNF-\alpha (pg/ml) |
| Caco-2 | Ninguna | Ninguna | SD | SD |
| Caco-2 | CYTOMIX | Ninguna | 150\pm15 | 75\pm11 |
| Caco-2 | Ninguna | CNCM I-1518 | 95\pm8 | SD |
| Caco-2 | CYTOMIX | CNCM I-1518 | 1254\pm55 | 975\pm85 |
| HT-29 | Ninguna | Ninguna | SD | SD |
| HT-29 | CYTOMIX | Ninguna | SD | SD |
| HT-29 | Ninguna | CNCM I-1518 | SD | SD |
| HT-29 | CYTOMIX | CNCM I-1518 | 908\pm63 | 789\pm45 |
| SD= Sin determinar |
El protocolo es idéntico al del ejemplo 1
anterior, añadiéndose 10 \mug/ml de LPS de E. coli durante
la incubación con el extracto total de L. casei.
Los resultados se ilustran en la figura 4 que
muestra una producción importante de NO en ausencia de L.
casei (células estimuladas por CYTOMIX + LPS), que se reduce en
presencia de cantidades crecientes de L. casei, hasta volver
al nivel de la de las células activadas por las citoquinas
solas.
Claims (8)
1. Utilización de bacterias lácticas de una
cepa de L. casei capaz de reducir la producción de NO (óxido
nítrico) por cultivos de enterocitos preactivados por citoquinas
proinflamatorias y LPS (lipopolisacáridos) bactrianos, para la
obtención de una composición para prevenir o tratar patologías
inflamatorias agudas o crónicas del intestino.
2. Utilización según la reivindicación 1
caracterizada porque dicha cepa es además capaz de aumentar
la producción de NO por cultivos de enterocitos preactivados por
citoquinas proinflamatorias.
3. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones 1 ó 2, caracterizada porque dicha cepa de
L. casei es la cepa de L. casei CNCM
I-1518.
4. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, caracterizada porque dicha
composición está en forma de un complemento alimentario.
5. Utilización según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4, caracterizada porque dicha
composición está en forma de un producto lácteo fermentado.
6. Procedimiento de cribado de nuevas cepas de
bacterias lácticas provistas de propiedades moduladoras de la
inmunidad no específica, caracterizado porque comprende la
selección de cepas de bacterias lácticas capaces de inhibir la
producción de NO por cultivos de enterocitos preactivados por
citoquinas proinflamatorias y LPS bacterianos.
7. Procedimiento según la reivindicación 6,
caracterizado porque comprende además una etapa de selección
de las cepas capaces de aumentar la producción de NO por cultivos de
enterocitos preactivados por citoquinas proinflamatorias, y
opcionalmente, una etapa de selección de las cepas que no ejercen
ningún efecto sobre la producción de NO por enterocitos no
activados.
8. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones 6 ó 7, caracterizado porque dichas cepas se
criban a partir de cultivos de bacterias lácticas elegidas en el
grupo constituido por los lactobacilos, los lactococos, los
estreptococos y las bifidobacterias.
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