ES2212799T3 - Dispositivo y procedimiento que utilizan matrices de estructuras de fijacion de objetos de analisis. - Google Patents
Dispositivo y procedimiento que utilizan matrices de estructuras de fijacion de objetos de analisis.Info
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Abstract
LA PRESENTE INVENCION SE RELACIONA CON DISPOSITIVOS ANALITICOS PAR DETERMINAR LA PRESENCIA O CANTIDAD DE UN ANALITO EN UNA MUESTRA DE PRUEBA. LOS DISPOSITIVOS ANALITICOS COMPRENDEN UN PUERTO DE ENTRADA, UN RESPIRADERO, UN CANAL Y UN SISTEMA DE ESTRUCTURAS. LAS ESTRUCTURAS TIENEN UN REACTIVO INMOVILIZADO UNIDO COVALENTE O NO-COVALENTEMENTE CON LA SUPERFICIE DE LAS ESTRUCTURAS. EL REACTIVO INMOVILIZADO CAPTURA EL ANALITO EN LA MUESTRA DE PRUEBA DONDE ES DETECTADO POR UN SISTEMA DE DETECCION. LA PRESENTE INVENCION PROPORCIONA TAMBIEN UNOS METODOS Y REACTIVOS PARA LLEVAR A CABO ENSAYOS QUE UTILIZAN LOS DISPOSITIVOS ANALITICOS DE LA PRESENTE INVENCION. LA PRESENTE INVENCION PROPORCIONA TAMBIEN LOS METODOS DE FABRICACION DE LOS DISPOSITIVOS ANALITICOS DE LA PRESENTE INVENCION.
Description
Dispositivo y procedimiento que utilizan matrices
de estructuras de fijación de objetos de análisis.
Esta invención se refiere a dispositivos
analíticos para la detección de analitos en una muestra de prueba.
Los dispositivos utilizan una red de estructuras en el dispositivo
para capturar el analito.
La determinación cualitativa o cuantitativa de
analitos en muestras de prueba sigue siendo importante en los
diagnósticos de estados fisiológicos y no fisiológicos. El análisis
de una muestra de prueba mezclada con reactivos da lugar a una
señal detectable con y sin la ayuda de instrumentación.
Se han facilitado métodos y dispositivos que dan
determinaciones de varios analitos en una muestra de prueba. De
interés particular a los efectos de la presente invención son los
pequeños dispositivos desechables. Tales dispositivos implican en
general una tira o un dispositivo de pista.
Los dispositivos porosos emplean en general
alguna forma de material poroso que transporta un fluido a través
del dispositivo. Estos dispositivos tienen generalmente forma de
hojas, tiras, varillas de inmersión, etc. Los dispositivos de tira
tienen ventajosamente un área superficial grande y poros pequeños.
Una de las desventajas de los dispositivos que utilizan tales
materiales es que el material poroso puede variar de un lote a otro
debido al proceso aleatorio al formar los dispositivos. Las
variaciones pueden producir diferencias del rendimiento de los
dispositivos.
Los dispositivos de pista proporcionan
superficies uniformes que son fácilmente reproducibles, pero, no
obstante, proporcionan una espaciación demasiado grande para
permitir la difusión de analito y la captura siguiente en una
superficie interior en un período de tiempo razonable.
Por lo tanto, sería ventajoso crear pequeños
dispositivos desechables que tengan la reproducibilidad dimensional
de los dispositivos de pista y los poros pequeños y el área
superficial grande de los dispositivos que emplean material poroso.
Entonces se resolverían simultáneamente los problemas de los
dispositivos porosos y los dispositivos de pista.
Se ha utilizado varios procesos para crear
dispositivos pequeños en la industria electrónica. Por ejemplo,
Munchmeyer y otros, Rev. Sci. Instrum., 63 (1)
713-721, (1992), describen tecnología LIGA para
producir microcomponentes ópticos y eléctricos que utilizan
litografía por radiación sincrotónica para producir maestros.
Angell y otros, Scientific American, 248:
44-55 (1983) describen atacar por tecnología de
micromaquinado pastillas de silicio para efectos microelectrónicos.
Manz y otros, Trends en Analytical Chemistry. Vol. 10, nº 5,
pp. 144-149, (1991), describen vidrio y silicio
microcristalinos micromaquinados reproducibles para análisis de
inyección de flujo y detector celdas que proporcionan para
separaciones cromatográficas y electroforéticas más rápidas.
La tendencia a los dispositivos pequeños no se
limita a la industria electrónica. Sato y otros, Sensors and
Actuators, A21-A23, pp. 948-953,
(1990), describen dispositivos micromecánicos de silicio que
permiten realizar simultáneamente operaciones de fusión celular una
a una entre dos grupos de células diferentes. Se halló que las
células se fundían con éxito en las microcámaras.
La patente de Estados Unidos 4.789.628 concedida
a Nayak describe una pluralidad de salientes espaciados que se
extienden hacia arriba desde el fondo para proporcionar un área
superficial incrementada para ensayos de ligando:antiligando. La
pluralidad de salientes espaciados forma un canal de interconexión.
Sin embargo, los tamaños grandes de los salientes y las anchuras
grandes de los canales no proporcionan ensayos de microvolumen o
desarrollo rápido de señal con niveles bajos de analitos.
WO 93/22053 A1 concedida a Wilding y otros
describe dispositivos de detección microfabricados que detectan
analito en una muestra de prueba. El dispositivo tiene un canal de
escala micrométrica que se extiende desde el orificio de entrada.
Los canales se construyeron por micromaquinado en silicio. Los
radicales de unión alinean el canal que realiza la detección de
analito.
Las técnicas analíticas corrientes, a saber, los
dispositivos porosos y de pista, no proporcionan materiales que dan
lugar a realización satisfactoria de ensayos. Se necesita un
dispositivo reproducible que permita microvolúmenes de flujo de
fluido a tasas aceptables y la captura de analito con eficiencias
aceptables.
La figura 1 ilustra una red de estructuras en
forma de diamante. Las superficies de las estructuras son el lugar
de captura de analito. Las flechas en las figuras representan la
dirección de flujo de fluido en el dispositivo. Las filas de
diamantes en la red están escalonadas con relación a la dirección
de flujo de fluido.
\newpage
La figura 2 ilustra una red de estructuras de
forma hexagonal a usar en los dispositivos analíticos de la presente
invención.
La figura 3 ilustra una red de estructuras de
forma triangular a usar en los dispositivos analíticos de la
presente invención.
La figura 4 ilustra una red de estructuras de
forma circular a usar en los dispositivos analíticos de la presente
invención.
La figura 5 muestra los resultados de un ensayo
hTSH realizado en el Ejemplo 1 utilizando un dispositivo analítico
de la presente invención.
La figura 6 ilustra una realización de un
dispositivo analítico de la presente invención.
La presente invención se refiere a dispositivos
analíticos para determinar la presencia o una cantidad de un analito
en una muestra de prueba incluyendo una red de estructuras donde
las estructuras tienen una superficie que proporciona un lugar para
inmovilizar reactivo. El reactivo inmovilizado se une
covalentemente o no covalentemente a dicha superficie de las
estructuras y es capaz de unir un analito, análogo de analito,
elemento auxiliar de unión, o un reactivo marcado. Los dispositivos
analíticos de la presente invención también incluyen una pluralidad
de canales donde una muestra de prueba conteniendo un analito,
análogo de analito, elemento auxiliar de unión, o reactivo marcado
puede fluir a través de los canales, y el analito, análogo de
analito, elemento auxiliar de unión, o reactivo marcado puede
difundirse a lo ancho de dichos canales uniéndose por lo tanto al
reactivo inmovilizado. El reactivo marcado incluyendo un elemento
de unión específico se conjuga a un marcador detectable donde el
marcador detectable produce una señal que determina la presencia o
cantidad del analito presente en la muestra de prueba.
La presente invención también se refiere a
métodos de utilizar los dispositivos analíticos de la presente
invención así como a métodos de fabricar tales dispositivos.
Antes de proseguir con la descripción de las
varias realizaciones de la presente invención, se definirán varios
términos utilizados en la presente memoria.
"Elemento de unión específico auxiliar" se
refiere a cualquier elemento de unión específico que se utilice en
el ensayo además de los elementos de unión específicos del reactivo
marcado o reactivo inmovilizado. Se puede utilizar uno o varios
elementos de unión específicos auxiliares en un ensayo. Por ejemplo,
un elemento de unión específico auxiliar puede ser capaz de unir el
reactivo marcado al analito de interés, en los casos en que el
analito propiamente dicho no podría unirse directamente al reactivo
marcado. Alternativamente, un elemento de unión específico auxiliar
puede ser capaz de unir el reactivo inmovilizado al analito de
interés, en los casos en que el analito propiamente dicho no podría
unirse directamente al reactivo inmovilizado. El elemento de unión
específico auxiliar se puede incorporar al dispositivo de ensayo,
añadir a la muestra, o añadir como un reactivo separado.
"Analito" o "analito de interés" se
refiere al compuesto o composición a detectar o medir, que tiene al
menos un epítopo o lugar de unión. El analito puede ser cualquier
sustancia para la que existe un elemento de unión natural
específico de analito o para la que se puede preparar un elemento de
unión específico de analito. Los analitos incluyen, aunque sin
limitación, toxinas, compuestos orgánicos, proteínas, lípidos,
ácidos grasos, péptidos, microorganismos, aminoácidos, ácidos
nucleicos, hormonas, azúcares, esteroides, vitaminas, drogas
(incluyendo las administradas para efectos terapéuticos así como
las administradas para fines ilícitos), y metabolitos o anticuerpos
de alguna de las sustancias anteriores. El término "analito"
también incluye cualquier sustancia antigénica, haptenos,
anticuerpos, macromoléculas y sus combinaciones.
"Análogo de analito" se refiere a una
sustancia que reacciona transversalmente con el elemento de unión
específico de analito, aunque puede hacerlo así en mayor o menor
medida que lo hace el analito propiamente dicho. El análogo de
analito puede incluir un analito modificado así como una porción
fragmentada o sintética de la molécula de analito, a condición de
que el análogo de analito tenga al menos un sitio epitópico en
común con el analito de interés. Un ejemplo de un análogo de
analito es una secuencia de péptidos sintéticos que duplica al
menos un epítopo del analito de molécula entera de manera que el
análogo de analito se pueda unir al elemento de unión específico de
analito.
"Capilar" se refiere a una superficie sólida
que rodea un vacío, en el que el aire puede ser desplazado
preferentemente por un líquido de la tensión superficial correcta.
El mecanismo de capilaridad depende de la energía superficial libre
del sistema. Para que se produzca dispersión espontánea del líquido
mediante un capilar, la energía superficial libre del sistema debe
disminuir durante el proceso de dispersión. Esto se puede realizar
para los dispositivos aquí utilizados seleccionando las superficies
sólidas apropiadas para el fluido biológico de interés.
"Lugar de captura" se refiere a una porción
delimitada o definida de las estructuras de tal manera que la
reacción de unión específica se produzca entre el reactivo
inmovilizado y el analito.
"Cámara" se refiere a un espacio cerrado o
cavidad de dimensiones definidas que no es un capilar. La cámara
puede tener agujeros de entrada y de salida. La cámara se puede
llenar por fuerzas capilares o por presión diferencial. El control
de las dimensiones para una cámara particular permite el control de
adiciones de reactivo, flujo, incubación, zonas de reacción, o
detección. Además, el reactivo se puede unir covalentemente o no
covalentemente a la superficie de las cámaras.
"Canal(es)" se refiere al espacio
entre estructuras adyacentes en el dispositivo. Los canales también
pueden ser capilares. En general, el canal tiene acceso a un
orificio de entrada, otros capilares o una cámara. La longitud de
canal será suficiente para determinaciones y detecciones de
analito.
"Conjugación" se refiere al acoplamiento
químico de un radical a otro para formar un conjugado. Se ha
descrito agentes de acoplamiento para conjugación covalente a
proteína en la Patente de Estados Unidos número 5.053.520. También
se conocen en la técnica agentes de acoplamiento homobifuncionales
para acoplar enzimas a anticuerpos como se describe en la
Publicación P.C.T. número WO 92/07268, publicada el 30 de abril de
1992.
"Agente de acoplamiento" se refiere a
agentes bifuncionales de entrecruzamiento o acoplamiento, es decir,
moléculas conteniendo dos grupos reactivos o "extremos", que
pueden ser unidos por un separador. Los extremos reactivos pueden
ser cualquiera de varias funcionalidades incluyendo, aunque sin
limitación: extremos amino reactivos, tal como ésteres
n-hidroxisuccinimida (NHS) activos, imidoésteres,
aldehídos, epóxidos, sulfonil haluros, isocianato, isotiocianato, y
nitroaril haluros; y extremos tiol reactivos tal como disulfuros de
piridilo, maleimidas, tioftalimidas, y halógenos activos. Los
reactivos heterobifuncionales de entrecruzamiento tienen dos
extremos reactivos diferentes, por ejemplo, un extremo
amino-reactivo y un extremo
carboxilo-reactivo, mientras que los reactivos
homobifuncionales tienen radicales reactivos similares en cada
extremo.
Los reactivos heterobifuncionales comercialmente
disponibles para uso en la presente invención incluyen, aunque sin
limitación, los agentes de acoplamiento de ésteres
maleimido-NHS activos, tal como
m-maleimidobenzoil-N-hidroxi-succinimida
éster (MBS); succinimidil
4-(N-maleimido-metil)
ciclohexano-1-carboxilato (SMCC);
succinimidil 4-(p-maleimidofenil) butirato (SMPB) y
sus derivados, incluyendo derivados de sulfosuccinimidil tales como
sulfosuccinimidil-4-(N-maleimido-metil)
ciclohexano-1-carboxilato
(sulfo-SMCC);
m-maleimidobenzoil-sulfosuccinimida
éster (sulfo-MBS) y sulfosuccinimidil
4-(p-maleimidofenil)butirato
(sulfo-SMPB).
Otros reactivos heterobifuncionales incluyen los
agentes de acoplamiento de halógeno activo-ésteres NHS activos
comercializados tal como N-succinimidil
bromoacetato y N-succinimidil
(4-yodoacetil)aminobenzoato (STAB) y los
derivados de sulfosuccinimidil tal como sulfosuccinimidil
(4-yodoacetil)aminobenzoato
(sulfo-SIAB).
Otro grupo de agentes de acoplamiento son los
agentes heterobifuncionales y tiol clivables tal como
N-succinimidil
3-(2-piridiltio)propionato (SPDP). También se
puede utilizar agentes tiol clivables, tal como N,
N'-didansil-L-cistina
y L-cistina dimetiléster dihidrocloruro.
"Zona(s) muerta(s)" se refiere
a zonas dentro del (de los) canal(es) donde se acumulan
fluidos o el flujo de fluido no es en un sentido directo desde el
orificio de entrada a la zona de detección del dispositivo.
"Difusión" se refiere al movimiento
aleatorio de una entidad debido a colisiones de moléculas de fluido
circundantes. La difusión da lugar a un movimiento neto de la
entidad desde niveles de concentración más altos a más bajos de la
entidad.
"Reactivo inmovilizado" se refiere a
reactivo que está unido covalentemente o no covalentemente a la
superficie de la estructura. El reactivo inmovilizado se puede
aplicar a la superficie de la estructura mediante varios métodos
conocidos en la técnica, por ejemplo, inmersión, inscripción con un
lápiz, dispensación mediante un tubo capilar o mediante la
utilización de impresión por chorro de reactivo u otras técnicas de
dispensación adecuadas. Los métodos de aplicación y unión no son
críticos para la presente invención.
En general, el reactivo inmovilizado es un
elemento de unión específico que se une covalentemente o non
covalentemente en una superficie de la estructura para formar un
"lugar de captura". Típicamente, el reactivo inmovilizado se
selecciona para unir el analito, el reactivo marcado o su complejo.
En realizaciones preferidas, el reactivo inmovilizado se une al
analito para la terminación de un complejo intercalado. El reactivo
inmovilizado se puede elegir para unir directamente el analito o
unir indirectamente el analito por medio de un elemento de unión
específico auxiliar que se une al analito. El reactivo inmovilizado
se puede inmovilizar en la estructura antes o durante la
realización del ensayo por medio de cualquier método de unión
adecuado. Además, el reactivo inmovilizado puede ralentizar la
migración del analito y/o reactivo marcado a través del canal. El
reactivo inmovilizado también se puede unir a la estructura de tal
forma que pueda ser extraído por el fluido. Además, el lugar de
captura puede estar marcado, por ejemplo con un colorante, de tal
manera que la posición del lugar de captura en las estructuras se
pueda determinar visual o instrumentalmente incluso cuando no haya
marcador inmovilizado en el lugar de captura. Para ello, se puede
utilizar cualquier colorante, a condición de que el colorante no
interfiera con el ensayo o componentes del ensayo.
El reactivo inmovilizado se puede disponer en un
solo lugar de captura o en múltiples lugares de captura. El reactivo
inmovilizado también puede estar configurado para proporcionar
varias configuraciones, es decir, para producir diferentes formatos
de detección o medición. alternativamente, el reactivo inmovilizado
se puede distribuir sobre una porción grande de la estructura de
manera sustancialmente uniforme para formar el lugar de captura. El
grado de producción de señal en el lugar de captura se refiere a la
cantidad de analito en la muestra de prueba.
"Orificio de entrada" u "orificio de
admisión" o "muestra introducida" son términos sinónimos.
Se refieren al lugar donde la muestra de prueba es introducida en
el dispositivo analítico. El lugar accede a una zona receptora del
dispositivo. La zona receptora del dispositivo puede ser una cámara,
un capilar o un canal.
"Reactivo marcado" se refiere a una
sustancia incluyendo un marcador detectable unido a un elemento de
unión específico. La unión puede ser unión covalente o no covalente,
pero el método de unión no es crítico para la presente invención. El
reactivo marcado produce una señal detectable que está relacionada
directa o indirectamente con la cantidad de analito en la muestra
de prueba. El componente elemento de unión específico del reactivo
marcado se selecciona para unirse directamente al analito o para
unirse indirectamente al analito por medio de un elemento de unión
específico auxiliar, que se describe con más detalle más adelante.
Además, el reactivo marcado puede incluir un marcador detectable
unido a un elemento de unión específico que se une específicamente
al reactivo inmovilizado. El reactivo marcado se puede incorporar
al dispositivo de prueba, se puede combinar con la muestra de
prueba para formar una solución de prueba, se puede añadir al
dispositivo por separado de la muestra de prueba o puede estar
predepositado o inmovilizado de forma reversible en el lugar de
captura. Adicionalmente, el elemento de unión específico puede ser
marcado antes o durante de la realización del ensayo por medio de
un método de unión adecuado.
"Marcador" o "marcado" se refiere a
cualquier sustancia que sea capaz de producir una señal que es
detectable por medios visuales o instrumentales. Varios marcadores
adecuados para ser utilizados en la presente invención incluyen
marcadores que producen señales mediante medios químicos o físicos.
Tales marcadores pueden incluir enzimas y sustratos; cromógenos;
catalizadores; compuestos fluorescentes; compuestos
quimiluminiscentes; marcadores radioactivos; marcadores visuales
directos incluyendo partículas metálicas coloidales tal como oro,
partículas no metálicas coloidales tal como selenio, partículas
teñidas o coloreadas tal como un plástico teñido o un microorganismo
teñido, partículas de color o coloreables de látex de polímero
orgánico, y liposomas u otras vesículas conteniendo directamente
sustancias visibles, y análogos. Se describen metales coloidales y
partículas colorantes en las Patentes de Estados Unidos 4.313.734 y
4.373.932. La preparación y el uso de coloidales no metálicos se
describen en la Patente de Estados Unidos 4.954.452. Se describen
partículas de látex de polímero orgánico para uso como marcadores
en la Patente de Estados Unidos 4.252.459.
La selección de un marcador particular no es
crítica para la presente invención, a condición de que el marcador
sea capaz de generar una señal detectable por sí mismo, tal como
una partícula de látex de polímero orgánico de color detectable
visualmente, o detectable instrumentalmente, tal como un compuesto
fluorescente, o detectable en unión con uno o varios componentes
adicionales productores de señal, tal como un sistema productor de
señal de enzima/sustrato. Se puede formar varios reactivos marcados
diferentes variando el marcador o el componente elemento de unión
específico del reactivo marcado; los expertos en la técnica
apreciarán que la elección implica consideración del analito a
detectar y los medios de detección deseados.
"Mezcla de reacción", en el sentido en que
se usa aquí, significa una mezcla de la muestra de prueba y otras
sustancias biológicas, químicas y físicas y reactivos para la
detección de analito en la muestra de prueba. La mezcla de reacción
también puede incluir diluyentes y soluciones tampón.
"Componente productor de señal" se refiere a
cualquier sustancia capaz de reaccionar con otro reactivo de ensayo
o con el analito para producir un producto de reacción o señal que
indica la presencia del analito y que es detectable por medios
visuales o instrumentales. "Sistema de producción de señal",
en el sentido en que se usa aquí, se refiere al grupo de reactivos
de ensayo que se necesitan para producir el producto de reacción o
señal deseado. Por ejemplo, se puede hacer reaccionar con el
marcador uno o varios componentes productores de señal para generar
una señal detectable, por ejemplo, cuando el marcador es una
enzima, la amplificación de la señal detectable se obtiene
reaccionando la enzima con uno o varios sustratos o enzimas y
sustratos adicionales para producir un producto de reacción
detectable.
"Elemento de unión específico" se refiere a
un elemento que se une específicamente a otra molécula mediante
medios químicos o físicos. Además de elementos específicos de unión
a antígeno y anticuerpo, otros elementos de unión específicos
incluyen, como ejemplos sin limitación, biotina y avidina, hidratos
de carbono y lectinas, secuencias de nucleótidos complementarias,
secuencias de péptidos complementarias, moléculas efectoras y
receptoras, cofactores de enzima y enzimas, inhibidores enzimáticos
y enzimas, una secuencia de péptidos y un anticuerpo específico
para la secuencia o la proteína completa, ácidos poliméricos y
bases, colorantes y aglutinantes proteínicos, péptidos y
aglutinantes proteínicos específicos (por ejemplo, ribonucleasa,
péptido S y proteína S ribonucleasa), y análogos. Además, los
elementos de unión específicos pueden incluir moléculas que son
análogas del elemento de unión específico original, por ejemplo un
análogo de analito o un elemento de unión específico hecho por
técnicas recombinantes o ingeniería molecular. Si el elemento de
unión específico es un inmunorreactivo, puede ser, por ejemplo, un
anticuerpo, antígeno, hapteno, o su complejo, y si se utiliza un
anticuerpo, puede ser un anticuerpo monoclonal o policlonal, una
proteína recombinante o anticuerpo, un anticuerpo quimérico,
una(s) mezcla(s) o fragmento(s) de los mismos,
así como una mezcla de un anticuerpo y otros elementos de unión
específicos. Los detalles de la preparación de tales anticuerpos y
su idoneidad para uso como elementos de unión específicos son
conocidos por los expertos en la materia.
"Estructuras" se refiere a la forma física
que surge de la capa base de los dispositivos de la presente
invención. Las superficies de las estructuras proporcionan un área
superficial grande. Las estructuras están dispuestas en una
configuración o red para proporcionar suficiente captura de analito
en lugares de captura en las superficies de las estructuras. Se
puede utilizar varias formas para las estructuras. Por ejemplo, se
puede utilizar estructuras triangulares para capturar analito.
Además, se puede utilizar varias formas diferentes conjuntamente en
el mismo dispositivo, por ejemplo, se puede utilizar estructuras
triangulares y estructuras en forma de diamante en el mismo
dispositivo para capturar reactivo.
"Muestra de prueba" se refiere a la muestra
conteniendo un analito a detectar usando la presente invención. Una
muestra de prueba puede contener otros componentes además del
analito, puede tener los atributos físicos de líquidos, líquidos
biológicos, o un sólido donde el sólido se puede hacer soluble en un
líquido, y puede ser de cualquier tamaño o volumen, incluyendo por
ejemplo, una corriente móvil de líquido. La muestra de prueba puede
contener sustancias distintas del analito a condición de que las
otras sustancias no interfieran con el analito o el análogo de
analito. Los ejemplos de muestras de prueba incluyen, aunque sin
limitación: suero, plasma, alimentos, fluido espinal, esputo, fluido
seminal, fluido amniótico, orina, saliva, otros fluidos corporales,
y muestras medioambientales tal como agua subterránea o agua
residual, extractos de tierra y residuos de pesticidas.
Los dispositivos de la presente invención
utilizan una red de estructuras para capturar analito en una muestra
de prueba. Las estructuras están dispuestas en una red para
proporcionar esencialmente canales uniformes para el transporte de
fluido y un área superficial grande. El analito se difunde en la
muestra de prueba donde es capturado por un elemento de unión
específico unido en la superficie de las estructuras. Los
dispositivos analíticos de la presente invención se pueden utilizar
como hojas, varillas de inmersión, tiras, cubetas, etc. Además, la
presencia o cantidad de más de un analito se puede determinar en un
solo dispositivo analítico. La presente invención proporciona
preferiblemente dispositivos y métodos, donde los dispositivos se
basan en acción capilar o presión diferencial para realizar el
movimiento de fluidos a través del dispositivo para controlar la
medición de fluidos, la secuencia de eventos, la captura de
reactivos o entidades, los tiempos de reacción, la mezcla de
reactivos, y para determinar una señal detectable, etc. Variando el
recorrido por el que fluye el fluido, se puede realizar varias
actividades tal como mezcla, incubación, reacción y detección.
Los dispositivos analíticos de la presente
invención se basan en una red de estructuras en el dispositivo para
captura de analito. Las estructuras se pueden hacer por varios
procesos incluyendo, aunque sin limitación acción láser, gofrado,
Lithographie Galvanoformung Abforrnung (LIGA), electrochapado,
electroformación, fotolitografía, ataque de iones reactivos, fresado
por haz de iones, moldeo por compresión, fundición, moldeo de
inyección y reacción, moldeo por inyección, y micromaquinado del
material. Como se entenderá, los métodos utilizados para fabricar
las estructuras de la presente invención no son críticos a condición
de que el método dé lugar a grandes cantidades de estructuras y
dispositivos uniformes. Además, el método debe dar lugar a un área
superficial grande de la estructura y dispuesta muy cerca una de
otra para producir canales estrechos. Los canales estrechos permiten
que se produzca difusión de analito en el fluido para mejorar la
eficiencia de captura de analito y/o reactivo marcado en el lugar de
captura. En general y preferiblemente, las estructuras en el
dispositivo analítico se hacen del mismo material que la capa base
del dispositivo.
Todas estas técnicas comienzan con una tecnología
que producirá un maestro. Se suele hacer una herramienta del maestro
que después se utilizará para producir en serie los dispositivos
analíticos de la presente invención, o, en algunos casos, los
maestros se pueden hacer en cantidad suficiente para utilizarlos
directamente como los dispositivos analíticos de la presente
invención.
Las estructuras producidas en serie se hacen
preferiblemente de cualquier número de materiales poliméricos.
Entre estos se incluyen, aunque sin pretender limitación alguna,
poliolefinas tal como polipropileno y polietileno, poliésteres tal
como tereftalato de polietileno, polímeros conteniendo estireno tal
como poliestireno, estireno acrilonitrilo, y acrilonitrilo butadieno
estireno, policarbonato, polímeros acrílicos tal como
polimetilmetacrilato y poliacrilonitrilo, polímeros conteniendo
cloro tal como cloruro de polivinilo y cloruro de polivinilideno,
homopolímeros y copolímeros de acetal, celulósicos y sus ésteres,
nitrato de celulosa, polímeros conteniendo flúor tal como fluoruro
de polivinilideno, politetrafluoroetileno, poliamidas, poliimidas,
polieteretercetona, polímeros conteniendo azufre tal como sulfuro de
polifenileno y polietersulfona, poliuretanos, polímeros conteniendo
silicio tal como polidimetilsiloxano. Además, las estructuras se
pueden hacer de copolímeros, mezclas y/o laminados de los
materiales anteriores, láminas metálicas tal como lámina de
aluminio, películas metalizadas y metales depositados sobre los
materiales anteriores, así como vidrio y materiales cerámicos.
En tal método se puede usar un láser, tal como un
láser excimer, para iluminar una fotomáscara de manera que la luz
que pase a través de la fotomáscara ablada un material subyacente
que forma canales en el sustrato del material. Sercel, J., y otros,
SPIE Proceedings, Vol. 998, (septiembre, 1988). Esta técnica se
puede usar para hacer un maestro. El maestro puede ser utilizado
directamente como un dispositivo y producido en grandes cantidades
o se puede utilizar como una plantilla para fabricar una
herramienta que se usará para reproducir dispositivos en grandes
cantidades.
Otro método de hacer los dispositivos es la
técnica LIGA, descrita por D. Munchmeyer y otros, Rev. Sci.
Instrum., 63 (1), 1992. Se utiliza una fuente sincrotónica de rayos
X para irradiar un fotorresist. El fotorresist desarrollado forma
un maestro que puede ser electrochapado con níquel para formar una
cavidad de molde. Después se puede vaciar o inyectar un polímero
líquido al molde de níquel. Esta técnica se puede usar para hacer
directamente dispositivos analíticos o para fabricar una
herramienta a partir de un maestro.
Otro método de hacer los dispositivos de la
presente invención es utilizar técnicas de fabricación de
semiconductores tal como, aunque sin pretender limitación alguna,
fotolitografía, ataque de iones reactivos, y fresado por haz de
iones para definir estructuras apropiadas en fotorresists u otros
materiales. Estas técnicas se pueden usar para hacer dispositivos
directamente o se puede usar para hacer una herramienta de la que
se puede hacer grandes cantidades de dispositivos.
Otro método de hacer los dispositivos de la
presente invención es micromaquinarlos. El micromaquinado implica el
proceso de utilizar herramientas finas para cortar canales en los
materiales tal como, aunque sin limitación, acero, plástico,
polímeros sintéticos y no sintéticos, pastillas de silicio, y otros
metales, cerámica y vidrio. Estas técnicas se pueden usar para hacer
dispositivos directamente o se puede usar para hacer una
herramienta de la que se puede hacer grandes cantidades de
dispositivos.
Las herramientas que se fabrican para producir en
serie los dispositivos analíticos de la presente invención se
pueden hacer a partir de las técnicas anteriores. Las herramientas
se pueden hacer por medios tales como, aunque sin pretender
limitación alguna, electrochapado. Este proceso genera una
herramienta endurecida, tal como níquel, para reproducir el
maestro.
Una vez que se ha fabricado una herramienta, los
dispositivos analíticos pueden ser producidos en serie, aunque sin
pretender limitación alguna, por gofrado, moldeo por inyección,
moldeo de inyección y reacción, fundición, y moldeo por compresión.
El gofrado implica imprimir una herramienta duradera calentada en un
sustrato polimérico calentado. Alternativamente, se puede imprimir
una herramienta fría en un sustrato polimérico calentado. El moldeo
por inyección usa un polímero fundido a inyectar a una cavidad de
molde. El moldeo de inyección y reacción inyecta una resina líquida
que solidifica por un proceso químico. La fundición usa un proceso
de moldeo a baja presión. El moldeo por compresión utiliza una
herramienta calentada que se funde y conforma los dispositivos.
En general, los dispositivos de la presente
invención incluirán un orificio de entrada al que se presenta
inicialmente la muestra de prueba. En general, los canales son
capilares y realizan el transporte de la muestra de prueba desde el
orificio de entrada a través del dispositivo, una red de estructuras
que proporcionan un lugar de captura, y un agujero de ventilación,
tal como un orificio de salida, que ventea los gases en el
dispositivo. Además, se puede añadir cámaras y capilares
adicionales para personalizar un dispositivo. En general, el
movimiento de la muestra de prueba a través del dispositivo se basa
en fuerzas capilares. Además, se puede usar uno o varios capilares
para llevar la muestra de prueba desde el orificio de entrada a los
canales. Además, se puede usar uno o varios capilares para salir
del área de estructuras del dispositivo. Sin embargo, se puede usar
presión diferencial para mover el flujo de fluido en los
dispositivos en lugar o además de las fuerzas capilares.
En lugar de un orificio de salida, se puede usar
materiales de autoventilación para ventear gases en el dispositivo
así como realizar la admisión de oxígeno al dispositivo. El oxígeno
se puede usar en reacciones. Por ejemplo, reacciones de oxidasa,
dentro del dispositivo. Se describen materiales de autoventilación y
sus usos en dispositivos analíticos en la Patente de Estados Unidos
US 5 478 751.
Se crean canales entre estructuras adyacentes
mediante las que puede fluir fluido. Los diseños de los canales y
las estructuras son importantes para optimizar el contacto entre
las superficies de las estructuras y las moléculas de fluido.
Típicamente, la profundidad de los canales es del orden de
aproximadamente 1 micrómetro (\mum) a aproximadamente 1 milímetro
(mm). La anchura media de los canales es típicamente del orden de
aproximadamente 0,02 \mum a 20 \mum. La altura de las
estructuras es típicamente del orden de aproximadamente 1 \mum a 1
mm y la anchura media es típicamente del orden de 1 \mum a 1 mm.
Se puede seleccionar cualquier número de redes de estructuras
configuradas a condición de que las zonas muertas se minimicen o
eliminen. Las configuraciones preferidas de la red de estructuras
están dispuestas en una red, tal como una red de diamantes, una red
de octágonos, una red de hexágonos, o análogos. Las estructuras
preferidas minimizan las zonas muertas. Las figuras 1, 2, 3 y 4
muestran las configuraciones preferidas de las estructuras. Además,
se puede disponer más de un área de estructuras en una serie. La
serie de redes se pueden conectar entre sí por capilares.
Los ensayos realizados en los dispositivos de la
presente invención optimizan la captura en la superficie de la
estructura. Utilizando los métodos aquí descritos, el control
estricto de la geometría del lugar de captura mejora la uniformidad
y eficiencia de la captura. Los canales estrechos profundos y el
área superficial grande de las estructuras realizan la difusión de
analito y una mejor captura de analito. El diseño de canal se basa
en la difusión de una entidad en la muestra de prueba para
interactuar con reactivo inmovilizado en la superficie de las
estructuras. Típicamente, la entidad se distribuye aleatoriamente
en la sección transversal del canal. La entidad se difunde a la
superficie de estructura donde la entidad puede interactuar con el
reactivo inmovilizado.
El reactivo inmovilizado puede estar unido
covalentemente o no covalentemente sobre la superficie de las
estructuras así como dentro de los capilares y/o cámaras. El
reactivo se puede aplicar como un reactivo de liberación en el
tiempo, reactivo separado espacialmente, o recubrir y secar sobre la
superficie. Tales técnicas de colocación de reactivo inmovilizado
en las superficies son conocidas por los expertos en la
materia.
Los métodos para utilizar dispositivos de la
presente invención implican elementos de unión específicos. Los
métodos de detección pueden implicar la unión de un marcador de
color, tal como un colorante fluorescente o una partícula de color.
Alternativamente, la detección puede implicar la unión de una
enzima que puede producir un producto de color.
Dado que los dispositivos se basan en capilares u
otras cámaras para controlar el movimiento de fluidos, es esencial
el control exacto de las dimensiones de las cámaras internas. Los
dispositivos de la presente invención se pueden utilizar en
aglutinación, ensayos competitivos, no competitivos e intercalados,
así como con ensayos químicos clínicos estándar, tal como de glucosa
y colesterol. Los ensayos pueden ser homogéneos, donde no son
necesarios unos medios de separación, o heterogéneos, donde se
utiliza un paso de separación. Típicamente, los ensayos realizados
en los dispositivos de la presente invención son homogéneos.
Se puede usar uno o varios recorridos de flujo
alternativos en los dispositivos de la presente invención. El
capilar que transporta la muestra de prueba desde el orificio de
entrada se bifurca en recorridos diferentes, el recorrido principal
a las estructuras y los recorridos alternativos. Los recorridos
alternativos pueden volver a entrar en el recorrido principal a
cierta distancia del punto de bifurcación. Si la resistencia
fluídica del recorrido alternativo es aproximadamente la misma que
la del recorrido principal, el flujo de muestra de prueba pasará
por igual por los recorridos del dispositivo. Si el recorrido
alternativo tiene una resistencia fluídica sustancialmente mayor que
la del recorrido principal, el flujo en el recorrido alternativo
será más lento. Si el recorrido alternativo tiene una resistencia
fluídica inferior a la del recorrido principal, el flujo de la
muestra de prueba en el recorrido alternativo será mayor. La
resistencia fluídica se puede variar dentro de cada recorrido
variando el área en sección transversal del flujo, la tensión
superficial, la ventilación, y viscosidad de la muestra de prueba.
Estos parámetros y la distancia pueden determinar el tiempo para la
reentrada en el recorrido principal. Alternativamente, cada
recorrido alternativo puede fluir directamente a su propia red
separada de estructuras a caudales independientes. Esto permitiría
múltiples lugares de captura y permitiría determinaciones
simultáneas de la presencia o cantidad de múltiples analitos en un
único lugar de
prueba.
prueba.
Los recorridos alternativos pueden incluir zonas
para la mezcla de reactivos con muestras de prueba. Por ejemplo, se
puede usar cámaras como zonas de adición de reactivo. La cámara o
cámaras se pueden colocar en el recorrido alternativo así como en
el recorrido principal.
Además, se puede incluir dispositivos de
atrapamiento en el recorrido del dispositivo para quitar
constituyentes de fluido superiores a un cierto tamaño. Por
ejemplo, los dispositivos de la presente invención pueden incluir
separadores, por ejemplo, para separar plasma o suero de sangre
entera. Por ejemplo, una matriz de material poroso sinterizado
hidrófilo puede tener un agente aglutinante de glóbulos rojos
aplicado a su superficie. La matriz se podría colocar en el
dispositivo antes que las estructuras. Los glóbulos rojos en toda
la muestra de sangre quedan atrapados en los intersticios de la
matriz mientras que el suero o plasma sustancialmente libre de
glóbulos pasa a través de la matriz y es transportado por acción
capilar a la parte de estructuras del dispositivo (véase la Patente
de Estados Unidos 4.933.092).
Una ventaja de los dispositivos de la presente
invención es que permite verificar la presencia o cantidad de un
analito en microvolúmenes de muestras de prueba. Por ejemplo, se
puede usar microvolúmenes de suero o plasma de una muestra de
sangre entera para comprobar un analito.
Las muestras de prueba conteniendo un analito a
detectar pueden ser un fluido que se utiliza directamente tal como
se obtiene de la fuente o puede ser pretratado de varias formas
para modificar su carácter. La muestra de prueba se introducirá
entonces en el dispositivo mediante un orificio de entrada que
accede a una zona receptora del dispositivo. La zona receptora del
dispositivo será una cámara o un capilar. La muestra de prueba será
transportada después mediante el capilar. La muestra de prueba
puede encontrar uno o varios reactivos dentro de los capilares, las
cámaras anteriores a las estructuras, o en las superficies de las
estructuras. Los reactivos pueden implicar un sistema a partir del
que se puede producir una señal detectable.
Se puede emplear cualquier muestra de prueba
líquida, donde la muestra de prueba tendrá una velocidad de flujo
razonable debido a la acción capilar o presión diferencial. Se ha
de entender que la acción capilar o presión diferencial es la
fuerza motriz del transporte de muestra de prueba. La acción capilar
depende de tres factores críticos: (1) las energías superficiales
del gas, la superficie en la que fluye el fluido, y el fluido, (2)
las dimensiones del canal capilar, y (3) la eficiencia de
ventilación. El caudal para el flujo capilar y el flujo a presión
diferencial será influenciado por la geometría del capilar o la
cámara y la viscosidad del fluido. Se puede influir, además, en el
caudal incrementando o disminuyendo la presión diferencial. Los
métodos de aplicar presiones diferenciales incluyen, aunque sin
pretender limitación alguna, manuales, motores, bombas, vacío o
análogos.
Si la muestra de prueba es demasiado viscosa, se
puede diluir para proporcionar un caudal capilar que permite un
tiempo de flujo razonable que controlará el período de tiempo para
el ensayo.
La muestra de prueba se puede derivar de una
fuente tal como, pero no se pretende limitarla, un fluido
fisiológico tal como sangre, suero, plasma, saliva, fluido del
cristalino ocular, fluido espinal cerebral, pus, sudor, exudado,
orina, leche o análogos. La muestra de prueba se puede someter a
tratamiento anterior, tal como, aunque sin pretender limitación
alguna, extracción, adición, separación, dilución, concentración,
filtración, destilación, diálisis o análogos. Además de fluidos
fisiológicos, se puede emplear otras muestras de prueba líquidas y
los componentes de interés pueden ser líquidos o sólidos por lo que
los sólidos se disuelven o suspenden en un medio líquido.
El medio de muestra de prueba empleado puede ser
un medio natural o la muestra de prueba se puede introducir en un
medio líquido que proporcione las características deseadas
necesarias para acción capilar y una señal detectable. Se pueden
añadir aditivos y solventes al medio de muestra de prueba para
incrementar o disminuir la oxigenación, estabilidad y fluidez.
Los métodos de detección incluyen, aunque sin
pretender limitación alguna, cambios de color, absorción de luz, o
transmisión de luz, pH, conductividad, fluorescencia, cambio de
fase física o análogos.
Las muestras de prueba pueden proporcionar un
componente detectable del sistema de detección, o se puede añadir
tales componentes. Los componentes variarán ampliamente dependiendo
de la naturaleza del sistema de detección. Tal método de detección
implicará el uso de partículas, donde las partículas proporcionan
dispersión de luz o un cambio de la velocidad de flujo. Las
partículas puede ser, aunque sin pretender limitación alguna,
células, partículas poliméricas que no son miscibles con un sistema
líquido, partículas de látex, partículas de carbón vegetal,
partículas metálicas, polisacáridos o partículas proteínicas,
partículas cerámicas, partículas de ácido nucleico, partículas
aglutinadas o análogos. La elección de las partículas dependerá del
método de detección, la dispersibilidad o la estabilidad de la
dispersión, inercia, participación en el cambio de flujo, o
análogos.
La unión de un analito a un elemento de unión
específico en el lugar de captura se puede detectar opcionalmente
verificando la presión de la muestra de prueba en el dispositivo.
Por ejemplo, un detector de presión conectado a la muestra de
prueba que entra y sale del canal permitirá la detección de las
disminuciones de presión producidas por unión de analito que da
lugar a restricción del flujo del canal.
Otro método de detección incluye ensayos de
hibridación. La superficie de las estructuras se puede recubrir con
un reactivo inmovilizado tal como sondas de polinucleótido. Después
de la unión del polinucleótido de analito complementario a la sonda
de polinucleótido inmovilizada, se puede añadir una sonda marcada,
por ejemplo, una sonda marcada con fluorescente, para unión al
polinucleótido de analito. La cantidad de fluorescencia es
directamente proporcional a la cantidad de analito en la muestra de
prueba. Alternativamente, el ensayo de hibridación se puede
realizar en un formato competitivo donde un polinucleótido se
conjuga a un marcador detectable. El polinucleótido reactivo
marcado compite con el analito para unión al polinucleótido
inmovilizado.
La reacción de un analito con un elemento de
unión específico en el lugar de captura se puede detectar por medio
de aglutinación. Por ejemplo, se puede usar una molécula marcada
con fluorescente o luminiscente capaz de unirse al analito o el
elemento de unión específico de analito complejo en el lugar de
captura para detectar la presencia o cantidad de analito en la
muestra de prueba. Por ejemplo, la aglutinación de células
sanguíneas en el lugar de captura puede servir como una prueba
positiva del tipo de sangre de la muestra de prueba. El reactivo
inmovilizado en la superficie de las estructuras induce
aglutinación, dando por ello una prueba positiva del tipo de
sangre.
Se puede detectar luminiscencia en dispositivos
de la presente invención. Por ejemplo, la emisión de luminiscencia
puede ser fácilmente detectable usando un lector de microplacas. El
analito se puede detectar por un elemento de unión específico
incluyendo dos anticuerpos capaces de unión al analito, donde un
anticuerpo está marcado con fluoresceína, que emite luz, y un
segundo anticuerpo está marcado con rodamina, que absorbe luz.
Cuando los anticuerpos marcados con rodamina y fluoresceína se unen
al analito, se puede observar un apagado de la fluoresceína,
indicando la presencia del analito. Otro ejemplo es donde los
anticuerpos de fluoresceína se inmovilizan en el lugar de captura.
El analito y el anticuerpo marcado con rodamina se suministran
después al lugar de captura y se observa apagado de la fluoresceína
indicando la presencia del analito.
Otro sistema de detección puede incluir detección
química. Por ejemplo, la medición de glucosa correlaciona los
cambios de absorción o reflectancia del medio con la concentración
de glucosa. Un método común para la determinación de glucosa emplea
glucosa oxidasa (GOD) y peroxidasa (POD) junto con
4-minoantipireno (4-AAP) y sulfonato
de diclorohidroxibenceno (DCHBS) para medir los niveles de glucosa
en orina o suero. Todos los reactivos se combinan en una matriz
hinchable en agua tal como gelatina, y disponen sobre las
estructuras. Las estructuras se laminan por arriba con una película
clara tal como tereftalato de polietileno (PET). La muestra de
prueba, generalmente suero u orina, se introduce en el orificio de
entrada. Al contacto con la muestra de prueba, la gelatina
dispuesta en las estructuras se hincha y libera los reactivos que
reaccionan con la glucosa. A la reacción con glucosa, se forma un
colorante soluble rojo que se puede medir por absorbancia,
reflectancia o por observación visual.
Alternativamente, se pueden inmovilizar POD o GOD
en las estructuras y se puede introducir 4-AAP y
DCHBS con la muestra de prueba, iniciando la reacción.
A veces, es conveniente inmovilizar los reactivos
formadores de color en un ensayo para glucosa, colesterol o
analitos similares. En este caso, se puede añadir grupos de lastre,
grupos alquilo de cadena larga, a una parte de la molécula
colorante para hacerla menos soluble. Ejemplos de moléculas
colorantes hechas menos solubles por la incorporación de unos
grupos de lastre se puede hallar en Principles and Chemistry of
Color Photography, Thirtle, J.R., en The Theory of the Photographic
Process, 4ª edición., T.H. James, Ed., MacMillian Publishing Co.,
Inc., New York, 1977, pp. 369-372. Los análogos de
DCHBS con lastre se podrían recubrir directamente sobre las
estructuras permitiendo que se produzca formación de color
solamente en una zona localizada de las estructuras.
La detección también se puede realizar utilizando
enzimas. El reactivo inmovilizado se une específicamente al
analito. El reactivo marcado incluye una enzima conjugada a un
elemento de unión específico para el analito. Se adiciona un
sustrato para la enzima haciendo por ello una reacción enzimática
entre la enzima y el sustrato. La cantidad de la enzima detectada y
medida se puede correlacionar con la cantidad de analito presente
en la muestra de prueba. Por ejemplo, se usa comúnmente fosfatasa
alcalina como un reactivo de detección enzimático en ensayos de
diagnóstico, en particular formatos de ensayo de unión específica.
Alternativamente, el reactivo marcado puede incluir una enzima y un
elemento de unión específico que se une específicamente al reactivo
inmovilizado. Se añade un sustrato para la enzima haciendo por ello
una reacción enzimática entre la enzima y el sustrato. La cantidad
de la enzima detectada y medida se puede correlacionar con la
cantidad de analito presente en la muestra de prueba.
Los analitos de interés varían ampliamente
dependiendo de las finalidades del ensayo y la fuente de la muestra
de prueba. Los analitos pueden incluir una proteína, un péptido, un
aminoácido, un hidrato de carbono, una hormona, un esteroide, una
vitamina, un lípido, un ácido nucleico, un elemento traza, una
droga incluyendo las administradas para efectos terapéuticos así
como las administradas para fines ilícitos, una bacteria, un virus,
y un metabolito. La agregación de moléculas también puede ser de
interés, en particular las agregaciones que existen naturalmente
tal como viroides, virus, células procarióticas y eucarióticas
incluyendo microorganismos unicelulares, células de mamíferos tal
como linfocitos, células epiteliales, neoplásicos y análogos.
Además, los analitos pueden ser cualquier sustancia para la que
existe una molécula de unión natural (por ejemplo, un receptor de
unión de anticuerpo) o para la que se puede preparar una molécula
de unión, y el analito se puede unir a una o varias moléculas de
unión en un ensayo. El analito incluye así sustancias antigénicas,
haptenos, anticuerpos, sus combinaciones, y análogos.
Se puede incluir otros aditivos para efectos
específicos. Las soluciones tampón pueden ser deseables para
mantener un pH particular. También se puede incluir inhibidores
enzimáticos. Otros reactivos de interés son, aunque sin pretender
limitación alguna, anticuerpos, enzimas, antígenos, péptidos,
biotina/avidina, conservantes, estabilizantes, activadores,
sustratos enzimáticos y cofactores, oxidantes, reductores, o
análogos. Como se entenderá, los aditivos o reactivos adicionales
no interferirán con la realización del ensayo.
Además, se puede utilizar unos medios de control
para verificar un resultado de ensayo. Unos medios de control
incluyen un ensayo de confirmación que se lleva a cabo
esencialmente automática y simultáneamente con el ensayo para la
detección de analito. En una realización concreta, la muestra de
prueba conteniendo el analito se pone en contacto con una cantidad
predeterminada de reactivo marcado para formar una mezcla
conteniendo un complejo de analito/reactivo marcado. La mezcla
resultante es transportada a través del dispositivo por acción
capilar. En un primer recorrido, la mezcla contacta un lugar de
captura conteniendo un elemento de unión específico antianalito
inmovilizado que se une al complejo de analito/reactivo marcado.
Este lugar de captura es el lugar de captura de muestra de prueba.
En un segundo recorrido, la mezcla contacta primero una zona de
reactivo conteniendo un reactivo de control positivo. El reactivo de
control positivo es un elemento de unión específico móvil que tiene
la misma especificidad de unión para el reactivo marcado que el
analito de muestra de prueba. El reactivo de control positivo puede
ser un analito idéntico al de la muestra de prueba o un análogo de
analito correspondiente. Cuando la mezcla contacta la zona de
reactivo de control positivo, el reactivo de control positivo se
reconstituye y une específicamente con reactivo marcado no unido
para formar un complejo de reactivo de control positivo/reactivo
marcado. Este complejo migra al lugar de captura de control
positivo. El lugar de captura de control positivo contiene el mismo
elemento de unión específico antianalito inmovilizado que el primer
recorrido. Por lo tanto, el lugar de captura de control positivo es
capaz de formar un complejo inmovilizado detectable. Una señal
detectable en el lugar de captura de control positivo confirma que
los reactivos de ensayo son funcionales y que el resultado de
prueba es válido. Por ejemplo, cuando no está presente analito en
una muestra de prueba, el resultado negativo de la muestra de
prueba se confirma como un resultado de prueba válido cuando el
lugar de captura de control positivo tiene una señal detectable y el
lugar de muestra de prueba no tiene señal detectable. Cuando está
presente analito en una muestra de prueba, el resultado positivo de
la muestra del paciente se confirma como un resultado de prueba
válido cuando el lugar de captura de control positivo tiene una
señal detectable y el lugar de captura de muestra de prueba tiene
señal detectable. Ninguna señal detectable en el lugar de captura
de control positivo propiamente dicho indica que los reactivos del
sistema de marcación se han degradado o que otros factores en la
muestra de prueba han interferido con la unión del reactivo marcado
al reactivo de control positivo o con la unión del complejo de
control positivo marcado al elemento de unión específico
inmovilizado situado en el lugar de captura de control
positivo.
positivo.
Los dispositivos de la presente invención también
pueden incorporar mecanismos y/o zonas de control adicionales, por
ejemplo, para indicar el final de un ensayo. Estos otros mecanismos
de control son conocidos por los expertos en la materia.
El dispositivo puede tener varias regiones que se
pueden usar para adición de reactivo, filtración y análogos así como
que tiene zonas separadas donde la acción capilar y la presión
diferencial mueven por separado el flujo de fluido.
Los tipos de ensayos que utilizan los
dispositivos analíticos de la presente invención son numerosos. En
ensayos intercalados, el reactivo marcado que incluye un elemento
de unión específico con afinidad para el antígeno se puede unir al
complejo de elemento de unión específico/analito inmovilizado. La
respuesta de señal es directamente proporcional a la concentración
de analito.
En ensayos de competición, la competición se
establece entre los analitos y el reactivo marcado. La respuesta de
señal es inversamente proporcional a la concentración de
analito.
Los dispositivos de la presente invención también
se pueden hacer en forma de una cubeta. Las estructuras se pueden
hacer dentro de una caja que tiene una ventana transparente que
permitirá a los instrumentos detectar la captura en el lugar de
captura. La cubeta se puede colocar en un espectrofotómetro y leer.
Por ejemplo, se puede construir una cubeta colocando una capa
superior de película Filcher Hamilton (Filcher Hamilton
Corporation, Greer, S.C., 29651) encima del dispositivo de la
presente invención. Se puede colocar un orificio de entrada en la
capa superior o puede permanecer como una parte del dispositivo. Se
aplicó una cinta adhesiva de doble cara (3M Corp., St. Paul, MN.,
55144) a la superficie inferior de la capa superior. Se puede
colocar una muestra de prueba en el orificio de entrada y la
captura se produce en los lugares de captura.
Los dispositivos de la presente invención también
se pueden hacer en forma de una tira de ensayo donde un extremo de
la tira de ensayo se pone en contacto con una muestra de prueba
líquida conteniendo un analito. La muestra de prueba es
transportada a través del dispositivo por acción capilar donde la
captura del analito se producirá en las estructuras. Tales
dispositivos también se pueden hacer en forma de varillas de
inmersión (véase la Patente de Estados Unidos 5.200.317).
Los dispositivos de la presente invención también
pueden comprobar múltiples analitos en un solo dispositivo
analítico. Se puede diseñar regiones de estructuras diferentes y/o
separadas, teniendo cada una un reactivo inmovilizado específico
para un analito diferente colocado en ellas que se unirá al analito
y/o reactivo marcado respectivo. Las regiones de estructuras
separadas se pueden disponer en una serie o se pueden disponer con
múltiples recorridos. La instrumentación se puede programar para
leer independientemente las diferentes regiones. Un ejemplo es un
ensayo de abuso de drogas por lo que una región de las estructuras
tiene anticuerpos antibenzoilecognina inmovilizados en ella, otra
región de las estructuras tiene anticuerpos anticannabinoides
inmovilizados, y otra región de las estructuras tiene anticuerpos
antianfetamina inmovilizados. Una muestra de prueba conteniendo
metabolitos y/o moléculas de alguna o las tres drogas se unirá a
sus regiones respectivas. Las detecciones de positivos y negativos
se pueden hacer visualmente y/o con instrumentación. Cada región de
las estructuras que comprueba un analito diferente puede tener
reactivos específicos inmovilizados para dicho analito.
Lo que sigue es un resumen de las ecuaciones
necesarias para calcular aproximadamente la eficiencia de captura
en dispositivos de la presente invención que utilizan estructuras
para captura de analito. Las ecuaciones se han generalizado para
aplicación a una geometría en sección transversal arbitraria de los
canales. Estas ecuaciones deberán dirigir una amplia variedad de
diseños de canal potenciales. Puesto que las ecuaciones se aplican a
un diseño general, no proporcionan directamente una predicción
numérica de la eficiencia de captura. En cambio, la forma en
sección transversal de los canales se debe definir primero y se
debe precalcular la correspondiente distribución de velocidad de
fluido, U(y, z), usando métodos estándar. Después,
incorporando estos dos valores a las ecuaciones, se puede derivar
una única aproximación numérica de la eficiencia de captura y
correlacionar frente a parámetros tales como la longitud de canal
(L), el diámetro de entidad (d), y los coeficientes de reacción de
pared (k). Dos secciones transversales de canal ejemplares para las
que se puede formular fácilmente un resultado numérico incluyen una
forma rectangular y otra circular. Sin embargo, no hay límites con
respecto al tipo de forma en sección transversal que se puede
evaluar.
A continuación se describen todos los supuestos
analíticos que implican las ecuaciones. Éstas definen el rango de
diseños de canal y condiciones de flujo para los que las ecuaciones
son válidas.
1. Condiciones de estado de régimen del fluido.
El fluido (con entidades) llena completamente el canal, y la
velocidad del fluido no varía con el tiempo.
2. Flujo laminar incompresible. Este supuesto es
aplicable a todos los tipos de líquidos y valores de caudal
explicados.
3. Niveles diluidos de concentración de entidades
(inferiores a 5% por volumen). Esto garantiza que la distribución
de velocidad del fluido se pueda resolver independientemente de
presencia de entidades, y que no se produzcan interacciones
apreciables entre entidades durante el transporte de fluido.
4. La forma en sección transversal de los canales
y el tamaño permanecen constantes en toda la longitud del canal
(por lo tanto, se excluyen los pasos convergentes o divergentes de
fluido en la zona de captura). Esto implica que todo el fluido
avanza exclusivamente en la dirección del canal y no hay
variaciones de la velocidad a lo largo de la longitud.
Transporte de régimen de entidades suspendidas
dentro del canal, debido a efectos de convección y difusión de
fluido, donde C = C(x,y,z) = nivel de concentración de
entidades locales:
Coordenadas espaciales normalizadas y velocidad
normalizada del fluido dentro del canal:
x^{*}=x/L
\hskip0.5cmU^{*}_{x}=U_{x}/\overline{U}
y^{*}
=y/\overline{W}
z^{*}
=z/\overline{W}
Ecuación de la velocidad de unión de entidades
que contactan las paredes de canal:
Velocidad de flujo de las entidades que entran en
el canal y salen del canal:
Valor de eficiencia de captura de entidades:
Densidad local de entidades capturadas a lo largo
de la longitud de canal:
- C
- Nivel de concentración local de entidades suspendidas dentro del canal = f(x,y,z).
- x
- Coordenada espacial en la dirección de flujo de canal (paralela a las paredes de canal).
- y,
- z Coordenadas espaciales ortogonales a la dirección de flujo de canal.
- \overline{W}
- Valor característico de la anchura de canal.
- L
- Longitud de canal.
- d
- Diámetro de entidad.
- D
- Coeficiente de difusión de entidades dentro del fluido.
- k
- Coeficiente de unión-reacción de entidades en las paredes de canal.
- \Phi
- Parámetro de dispersión de canal.
- \overline{U}
- Velocidad media del fluido de canal.
- U_{x}
- Perfil de velocidad de fluido de canal = f(y, z).
- n_{y}
- Vector normal unitario en la pared de canal que mira al fluido (componente y de vector).
- n_{z}
- Vector normal unitario en la pared de canal que mira al fluido (componente z de vector).
- \varepsilon
- Valor de eficiencia de captura de entidades del canal.
- \rho(x)
- Densidad local de entidades capturadas a lo largo de la longitud de canal (entidades/longitud unitaria).
- N_{in}
- Cantidad total de entidades que entran en el canal.
Las directrices de diseño del dispositivo para
maximizar la captura de entidades por difusión son: minimizar la
anchura de canal y los caudales maximizando al mismo tiempo el área
superficial de captura de las estructuras. El uso de diseños de
estructura particulares puede minimizar las zonas muertas de fluido.
Esto permite exponer al flujo de fluido cualquier reactivo
inmovilizado en la superficie de las estructuras.
Además, los dispositivos de la presente invención
pueden tener un aspecto de control del caudal volumétrico de
fluido. En otros dispositivos movidos por capilares, los caudales
muestran una disminución en el tiempo cuando el fluido pasa a
través del dispositivo, dando lugar a una eficiencia de captura
cambiante con el tiempo. La presente invención puede incluir una
disminución de las dimensiones de los capilares, un cambio del área
en sección transversal, o un cambio de la humectabilidad para
mantener constante el caudal de muestra total con el tiempo en el
dispositivo. El control de la velocidad de flujo volumétrico en
dispositivos de la presente invención permite una eficiencia de
captura controlada.
En los ejemplos siguientes se describen ensayos
que utilizan la presente invención. Se pretende que los ejemplos
sean realizaciones de la presente invención y no se pretende
limitar la presente invención a los ejemplos. En los ejemplos, las
estructuras están dispuestas en filas a lo ancho del dispositivo.
En los Ejemplos 2-5, un resultado positivo para
analito en una muestra de prueba producirá una barra visual a lo
ancho del dispositivo en el lugar de captura.
Se recubren las estructuras con 0,5 microlitros
(\mul) de solución de 2 miligramos por mililitro (mg/ml) de
hormona humana estimulante del tiroides anti-beta
(hTSH) (Abbott Laboratories, Abbott Park, IL., 60064) e incuban
durante 90 minutos a 37º Celsius (C). Las estructuras se recubren
después con 1 mg/ml de albúmina sérica bovina (BSA) en solución
tampón de ácido 3-[N-morfolino] propanosulfónico
(MOPS) (Sigma Chemical Co., St. Louis, MO., 63178), pH 7,0, y se
deja incubar durante 4 horas al menos. Las estructuras se lavan
después en salina fosfato tamponada (PBS) para quitar cualquier
proteína no unida.
Las estructuras de poliestireno se laminan en la
parte superior con una capa de película de policarbonato recubierta
Vistek con refuerzo de adhesivo.
Se introducen muestras de 50 \mul de
calibradores hTSH en un orificio de entrada de los dispositivos
mediante una Hamiliton Syringe de 250 \mul (Hamilton Co., Reno,
NV., 89502) movida por una Sage Instruments Syringe Pump
(Cole-Parmer Instruments, Chicago, IL., 60648) a un
caudal de 0,55 \mul/minuto. Las muestras se premezclan con
micropartículas fluorescentes naranja de 282 nanómetros (nm) de
diámetro en solución (Molecular Probes, Inc., Eugene, OR., 97402)
con hTSH antialfa (Abbott Laboratories) conjugada a la superficie
de las micropartículas.
La mezcla incluye 1 parte de una solución de
micropartículas a 0,1%, 2 partes de diluyente IMx® (Abbott
Laboratories, Abbott Park, IL) y 6 partes de los calibradores hTSH
(50 \mul = 6 partes). El ensayo se realiza durante
aproximadamente 5 minutos.
Los dispositivos se analizan con un medidor de
reflectancia usando un haz dividido de 2 milímetros (mm) explorado
mediante un filtro de excitación de 485 nm, un filtro dicroico de
505 nm, y un filtro de emisión de 560 nm. Las micropartículas
tienen una longitud de onda de excitación máxima de 505 nm y una
fluorescencia máxima a 560 nm. Las partes se exploran a través de
toda su longitud de 15 mm con una velocidad de muestreo de 100
puntos por milímetro. La captura de micropartículas por anticuerpo
hTSH antibeta unido a estructura es directamente proporcional a la
concentración de hTSH en la muestra.
Se recubren partículas de polipirrol negras con
anticuerpo policlonal de cabra a antígeno de superficie de hepatitis
B (antiHBsAg). Las partículas de polipirrol recubiertas se aplican
a la superficie de una cámara anterior a las estructuras del
dispositivo. Las estructuras tienen anticuerpo antiHBsAg monoclonal
de ratón inmovilizado en sus superficies. El anticuerpo monoclonal
de ratón es reactivo a un epítopo de antígeno de superficie
diferente del anticuerpo policlonal de cabra.
Se adiciona una muestra de prueba conteniendo
HBsAg al orificio de entrada del dispositivo donde se transporta a
la cámara. La muestra de prueba se mezcla con las partículas de
polipirrol recubiertas, por lo que la muestra de prueba HBsAg se
une específicamente a las partículas recubiertas de antiHBsAg. La
acción capilar saca el complejo
antígeno-anticuerpo-partícula de la
cámara y lo lleva a la red de estructuras. El complejo
antígeno-anticuerpo-partícula se
acumulará en el lugar de captura en proporción a la cantidad de
muestra de prueba HBsAg. Una inspección visual de la formación de
una barra negra indica la presencia de HBsAg en la muestra de
prueba.
Se recubren partículas de polipirrol negras con
un antígeno HBsAg recombinante. Las partículas de polipirrol
recubiertas se aplican a la superficie de una cámara anterior a las
estructuras del dispositivo. Las estructuras se recubren con un
antígeno HBsAg recombinante diferente. Se adiciona una muestra de
prueba conteniendo anticuerpo antiHBsAg al orificio de entrada del
dispositivo donde se transporta a la cámara. La muestra de prueba
se mezcla con las partículas de polipirrol recubiertas, por lo que
el anticuerpo antiHBsAg de la muestra de prueba se une
específicamente a las partículas recubiertas con HBsAg
recombinante. La acción capilar saca el complejo
antígeno-anticuerpo-partícula de la
cámara y lo lleva a la red de estructuras. Las partículas de
polipirrol se acumularán en el lugar de captura en proporción a la
cantidad de anticuerpo antiHBsAg de la muestra de prueba. La
presencia del anticuerpo antiHBsAg en la muestra de prueba se
determina por la formación de una barra negra.
Se recubren partículas de polipirrol negras con
antígeno VIH recombinante p41 que es común a ambos
VIH-1 y VIH-2. Las partículas de
polipirrol recubiertas se aplican a la superficie de una cámara
anterior a las estructuras del dispositivo. Las estructuras se
recubren con antígeno recombinante p41 así como antígeno p24 de
ambos virus VIH-1 y VIH-2.
Una muestra de prueba conteniendo anticuerpo
antiVIH se adiciona al orificio de entrada del dispositivo donde se
transporta a la cámara. La muestra de prueba se mezcla con las
partículas de polipirrol recubiertas, por lo que se une anticuerpo
antiVIH de muestra de prueba específico para el antígeno VIH
recombinante recubierto en las partículas. La acción capilar saca el
complejo
anticuerpo-antígeno-partícula de la
cámara y lo lleva a la red de estructuras.
Las partículas de polipirrol se acumularán en el
lugar de captura en proporción a la cantidad de anticuerpo antiVIH
de muestra de prueba. Una inspección visual de la formación de una
barra negra indica la presencia de anticuerpo antiVIH en la muestra
de prueba.
Se recubren partículas de polipirrol negras con
una mezcla de anticuerpos monoclonales específicos para antígeno
VIH común a ambos VIH-1 y VIH-2. Las
estructuras se recubren con una mezcla de anticuerpos monoclonales
específicos para antígeno VIH común a ambos virus
VIH-1 y VIH-2.
Una muestra de prueba conteniendo antígeno VIH
común a ambos virus VIH-1 y VIH-2
se adiciona al orificio de entrada del dispositivo donde es
transportada por acción capilar a la red de estructuras. El
antígeno VIH común a ambos virus VIH-1 y
VIH-2 en la muestra de prueba se une específicamente
a los anticuerpos monoclonales que se recubren en la superficie de
las estructuras. Una solución de partículas de polipirrol
recubiertas en salina fosfato tamponada (PBS) se adiciona al
orificio de entrada y es transportada por fuerzas capilares a las
estructuras donde las partículas de polipirrol se unen
específicamente al antígeno VIH capturado en el lugar de
captura.
Las partículas de polipirrol se acumularán en el
lugar de captura en proporción a la cantidad de antígeno VIH de la
muestra de prueba. Una inspección visual de la formación de una
barra negra indica la presencia de VIH antígeno en la muestra de
prueba
Se une un polinucleótido a una partícula marcada
con fluorescente (fluoresceína). Las partículas fluorescentes
recubiertas se aplican a la superficie de una cámara anterior a las
estructuras del dispositivo. Las estructuras también se recubren
con un polinucleótido que es complementario del nucleótido de
interés.
Una muestra de prueba conteniendo una secuencia
de nucleótidos de interés que está presente en una muestra de
prueba o ha sido amplificada mediante reacción en cadena de
polimerasa (PCR) o reacción en cadena de ligasa (LCR), se adiciona
al orificio de entrada del dispositivo donde se transporta a la
cámara. La muestra de prueba se mezcla con las partículas
fluorescentes recubiertas de polinucleótido, por lo que el
nucleótido de interés de la muestra de prueba se une a las
partículas marcadas con fluorescente de polinucleótido
complementario. La acción capilar saca el completo de
nucleótido-polinucleótido
complementario-partícula fluorescente de la cámara y
lo lleva a la red de estructuras.
El complejo se unirá al polinucleótido
complementario en el lugar de captura en proporción a la cantidad de
nucleótido de interés de la muestra de prueba.
Se acopla un material polianiónico a una mezcla
de anticuerpos antiVIH monoclonales que son específicos para
antígeno VIH común a ambos VIH-1 y
VIH-2. El material polianiónico se coloca en la
superficie de una cámara anterior a las estructuras del
dispositivo. Las estructuras se tratan con una solución catiónica,
tal como ácido poliglutámico.
Una muestra de prueba conteniendo antígeno VIH
común a ambos VIH-1 y VIH-2 se
adiciona al orificio de entrada del dispositivo donde es
transportada por acción capilar a la cámara. La muestra de prueba
se mezcla con los anticuerpos acoplados al material polianiónico,
por lo que el antígeno VIH de la muestra de prueba común a ambos
VIH-1 y VIH-2 se unirá
específicamente a los anticuerpos. La acción capilar saca el
complejo de antígeno VIH-anticuerpo
antiVIH-polianión de la cámara y lo lleva a la red
de estructuras.
El material polianiónico se capturará por el
material catiónico en las superficies de las estructuras. Las
partículas marcadas con fluorescente (fluoresceína) acopladas a
anticuerpos antiVIH que son específicos para antígeno VIH común a
ambos VIH-1 y VIH-2 se adicionan al
orificio de entrada del dispositivo. La acción capilar transporta
las partículas marcadas acopladas a anticuerpos antiVIH a las
estructuras del dispositivo donde se unirán a antígeno VIH común a
ambos VIH-1 y VIH-2 que son
capturados al lugar de captura.
Las partículas marcadas con fluorescente
acopladas a anticuerpos antiVIH se acumularán en el lugar de captura
en proporción a la cantidad de antígeno VIH de la muestra de prueba
común a ambos VIH-1 y VIH-2.
Claims (12)
1. Un dispositivo analítico para determinar la
presencia o una cantidad de un analito en una muestra de prueba
incluyendo, en combinación:
una capa base;
una red de estructuras que tiene una anchura
media del orden de 1 \mum a 1 mm y una altura del orden de 1
\mum a 1 mm que surge de dicha capa base, teniendo cada una de
dichas estructuras una superficie que proporciona reactivo
inmovilizado, dicho reactivo inmovilizado unido covalentemente o no
covalentemente a dicha superficie de dicha estructura, siendo dicho
reactivo inmovilizado capaz de unir un elemento seleccionado del
grupo que consta de analito, análogo de analito, elemento auxiliar
de unión, y reactivo marcado; y
una pluralidad de canales que tienen una anchura
media del orden de 0,02 \mum a 20 \mum y una profundidad del
orden de 1 \mum a 1 mm junto a dichas estructuras, donde dicha
muestra de prueba conteniendo dicho analito, análogo de analito,
elemento auxiliar de unión, o reactivo marcado fluye a través de
dichos canales, difundiéndose dicho analito, análogo de analito,
elemento auxiliar de unión, o reactivo marcado a lo ancho de dichos
canales uniéndose a dicho reactivo inmovilizado,
caracterizado porque las estructuras están
dispuestas en filas a lo ancho del dispositivo y son de forma
similar, seleccionándose dichas formas a partir del grupo que
consta de diamantes, hexágonos, octágonos, rectángulos, cuadrados,
círculos, semicírculos, triángulos y elipses.
2. El dispositivo analítico de la reivindicación
1, donde dicho analito se selecciona a partir del grupo que consta
de antígeno, secuencia de nucleótidos, lectina, o avidina y dicho
reactivo inmovilizado se selecciona a partir del grupo que consta
de anticuerpo, secuencia de nucleótidos complementaria, hidrato de
carbono o biotina.
3. El dispositivo analítico de la reivindicación
1, donde dichas estructuras se hacen con copolímeros, mezclas,
laminados, láminas metalizadas, películas metalizadas o metales
depositados sobre un material seleccionado del grupo que consta
de:
poliolefinas, poliésteres, polímeros conteniendo
estireno, policarbonato, polímeros acrílicos, polímeros conteniendo
cloro, homopolímeros y copolímeros de acetal, celulósicos y sus
ésteres, nitrato de celulosa, polímeros conteniendo flúor,
poliamidas, poliimidas, polieteretercetonas, polímeros conteniendo
azufre, poliuretanos, polímeros conteniendo silicio, vidrio, y
materiales cerámicos.
4. El dispositivo analítico de la reivindicación
1, donde dicha red de estructuras están escalonadas con relación a
la dirección de flujo de muestra de prueba.
5. El dispositivo analítico de la reivindicación
1, incluyendo además un separador tratado con un agente aglutinante
de glóbulos rojos.
6. El dispositivo analítico de la reivindicación
1, donde dicha red de estructuras tienen múltiples reactivos
inmovilizados para analizar múltiples analitos en dicha muestra de
prueba.
7. El dispositivo analítico de la reivindicación
1, incluyendo además una cámara para la adición de muestra,
teniendo dicha cámara una pluralidad de recorridos para transportar
dicha muestra de prueba desde dicha cámara, conduciendo cada uno de
dichos recorridos a una red de dichas estructuras.
8. El dispositivo analítico de la reivindicación
1, donde dicho reactivo inmovilizado es capaz de unir un elemento
en dicha muestra de prueba seleccionado a partir del grupo que
consta de analito, analito analógico y un elemento auxiliar de
unión, incluyendo además dicho dispositivo un reactivo marcado
incluyendo un elemento de unión específico conjugado a un marcador
detectable, siendo dicho marcador detectable capaz de producir una
señal en dicho reactivo inmovilizado, indicando dicha señal la
presencia o cantidad de dicho analito en dicha muestra de
prueba.
9. El dispositivo analítico de la reivindicación
1, incluyendo además un orificio de entrada y un agujero de
ventilación.
10. Un método para determinar la presencia o una
cantidad de un analito en una muestra de prueba empleando un
dispositivo analítico incluyendo, en combinación:
una capa base;
un orificio de entrada y un agujero de
ventilación;
una red de estructuras que tiene una anchura
media del orden de 1 \mum a 1 mm y una altura del orden de 1
\mum a 1 mm que surgen de dicha capa base, teniendo cada una de
dichas estructuras una superficie que proporciona reactivo
inmovilizado, dicho reactivo inmovilizado unido covalentemente o no
covalentemente a dicha superficie de dicha estructura, siendo dicho
reactivo inmovilizado capaz de unir un elemento seleccionado del
grupo que consta de analito, análogo de analito, elemento auxiliar
de unión, y reactivo marcado; y
una pluralidad de canales que tienen una anchura
media del orden de 0,02 \mum a 20 \mum y una profundidad del
orden de 1 \mum a 1 mm junto a dichas estructuras;
incluyendo dicho método añadir dicha muestra de
prueba a dicho orificio de entrada, transportando dicha pluralidad
de canales dicha muestra de prueba desde dicho orificio de entrada
a dicha red de estructuras;
entrando dicha muestra de prueba en dichos
canales, difundiéndose dicho analito a lo ancho de dichos canales
donde dicho analito está unido a dicho reactivo inmovilizado; y
detectar dicho analito a través de un sistema de
detección de analito que incluye un elemento de unión específico
conjugado a un marcador detectable, siendo dicho marcador
detectable capaz de producir una señal en dicho reactivo
inmovilizado,
caracterizado porque las estructuras están
dispuestas en filas a lo ancho del dispositivo y son de forma
similar, seleccionándose dichas formas a partir del grupo que
consta de diamantes, hexágonos, octágonos, rectángulos, cuadrados,
círculos, semicírculos, triángulos y elipses.
11. El método de la reivindicación 10, donde
dicho reactivo inmovilizado es un material policatiónico capaz de
unir un elemento auxiliar de unión que es un material polianiónico
acoplado a un elemento de unión específico de analito, incluyendo
además dicho método el paso de combinar dicho elemento auxiliar de
unión con dicha muestra de prueba donde dicho elemento de unión
específico de analito une dicho analito antes de añadir dicha
muestra de prueba a dicho orificio de entrada.
12. Un método de fabricar un dispositivo
analítico de cualquiera de las reivindicaciones 1-9
a partir de un maestro, seleccionándose dicho método a partir del
grupo que consta de acción láser, LIGA, micromaquinado,
fotolitografía, ataque de iones reactivos, fresado por haz de iones,
gofrado, electroformación, electrochapado, moldeo por inyección,
moldeo por compresión, fundición o moldeo por inyección y
reacción.
Applications Claiming Priority (2)
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|---|---|---|---|
| US315364 | 1989-02-23 | ||
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| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
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