ES2241124T3 - Actividad inhibidora de serin-proteinasa mediante tetraciclina hidrofoba. - Google Patents

Actividad inhibidora de serin-proteinasa mediante tetraciclina hidrofoba.

Info

Publication number
ES2241124T3
ES2241124T3 ES98908747T ES98908747T ES2241124T3 ES 2241124 T3 ES2241124 T3 ES 2241124T3 ES 98908747 T ES98908747 T ES 98908747T ES 98908747 T ES98908747 T ES 98908747T ES 2241124 T3 ES2241124 T3 ES 2241124T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
tetracycline
cmt
use according
activity
elastase
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES98908747T
Other languages
English (en)
Inventor
Sanford R. Simon
Elizabeth J. Roemer
Lorne M. Golub
Nungavaram S. Ramamurthy
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Research Foundation of the State University of New York
Original Assignee
Research Foundation of the State University of New York
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Research Foundation of the State University of New York filed Critical Research Foundation of the State University of New York
Application granted granted Critical
Publication of ES2241124T3 publication Critical patent/ES2241124T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
    • A61K31/65—Tetracyclines
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P11/00—Drugs for disorders of the respiratory system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P13/00—Drugs for disorders of the urinary system
    • A61P13/12—Drugs for disorders of the urinary system of the kidneys
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P29/00—Non-central analgesic, antipyretic or antiinflammatory agents, e.g. antirheumatic agents; Non-steroidal antiinflammatory drugs [NSAID]
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Pain & Pain Management (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Cosmetics (AREA)

Abstract

Un procedimiento para inhibir la actividad de la serina proteinasa en sistemas biológicos que comprende la administración al sistema de una cantidad de 4- (dimetilamino) tetraciclina hidrofóbica, inhibidor de la serina proteinasa. El procedimiento reduce la destrucción de tejido durante la inflamación producida por la actividad de la elastasa de los leucocitos humanos. El procedimiento se emplea con fines farmacéuticos o cosméticos.

Description

Actividad inhibitoria de serin-proteinasa mediante tetraciclina hidrófoba.
Esta invención se realizó con apoyo gubernamental bajo los documentos DE 10985 y R37-DE03987 concedidos por el Instituto Nacional de Investigación Dental (NIH). El gobierno tiene ciertos derechos sobre la invención.
Antecedentes de la invención 1. Campo de la invención
Esta invención se refiere al uso de una tetraciclina hidrófoba para la inhibición de la actividad de serin-proteinasa en sistemas biológicos. La invención se refiere más particularmente a un uso terapéutico de una 4-des(dimetilamino)tetraciclina para tratar mamíferos que padecen de destrucción de tejidos mediada por inflamación que resulta de la actividad de elastasa de leucocitos de serin-proteinasa.
2. Descripción de la técnica relacionada
El deterioro de los tejidos conectivos es una complicación principal de la respuesta inflamatoria. Esta lesión inflamatoria de tejidos contribuye, por ejemplo, a los cambios patológicos de las articulaciones en la artritis, de los pulmones en el enfisema y al síndrome de dificultad respiratoria, de los riñones y el tracto digestivo en el síndrome de fallo orgánico multisistémico, de las encías y el periodoncio en la periodontitis y al fallo cardíaco y cerebral en el síndrome de isquemia-reperfusión. Las proteasas liberadas por los leucocitos desempeñan una función principal en la lesión de tejidos asociada a la respuesta inflamatoria.
Dos clases de proteasas han estado asociadas a la lesión inflamatoria de tejidos: serin-proteinasas y metaloproteinasas de matriz (MMP). Las serin-proteinasas tienen una especifidad de sustratos y un modo de unión a sustratos que difieren completamente de la especifidad de sustrato y el modo de unión a sustrato de las MMP.
Las serin-proteinasas han sido clasificadas por su especifidad de sustratos en tres tipos: de tipo tripsina, tipo timotripsina y tipo elastasa. La elastasa de serin-proteinasa prefiere sustratos con cadenas alifáticas pequeñas (por ejemplo, Ala, Val) en la posición P_{1}. Los P_{1}, P_{2}, etc. son grupos en el sustrato natural de una proteasa que flanquean el sitio de escisión del sustrato y se cree encajan en los subsitios de la enzima, habitualmente denominados S_{1}, S_{2}, etc. El modo de acción de las serin-proteinasas incluye el aminoácido serina que tiene un grupo hidroxilo que actúa como un nucleófilo para la escisión hidrolítica. Por el contrario, en las metaloproteinasas de matriz, un metal, que habitualmente es el zinc, coordina y activa el grupo carbonilo de la amida de la proteína diana para la hidrólisis. Por lo tanto, la elastasa de serin-proteinasa difiere de la elastasa de MMP.
Se ha dedicado un considerable esfuerzo a desarrollar inhibidores de elastasa de serin-proteinasa (elastasa de leucocitos humanos o HLE), especialmente debido a su función putativa en el mecanismo de la lesión pulmonar asociada con enfisema y síndrome de dificultad respiratoria.
La inhibición de elastasa de leucocitos humanos por productos naturales no péptidos, como por ejemplo triterpenoides pentacíclicos de origen vegetal, particularmente ácido ursólico, se describe por Q-L Ying y cols. "Inhibition of Human Leucocyte Elastase by Ursolic Acid: Evidence for a Binding Site for Pentacyclic Triterpenes", Biochem J. 277, 521-526 (1991).
Otros inhibidores no péptidos de elastasa de leucocitos humanos de origen sintético, como 2-1-(1-metil-2-pirrolil)butirato de 4-(metilsulfinil)fenilo y los derivados relacionados de sulfuros y sulfonas, son descritos por R.T. Cunningham, y cols., "Synthesis and Evaluation of CE-0266: A New Human Neeutrophil Elastase Inhibitor", Bioorganic Chemistry, 20, 345-355 (1992). Análogos adicionales de estos compuestos que son inhibidores de HLE son descritos por G.P. Kirschenheuter y cols., "Synthesis and Chaaracterization of Human Neutrophil Elastase Inhibitors Derived From Aromatic Esters of Phenylalkanoic Acids", in Proteases, Protease Inhibitors and Protease-Derived Peptides, Birkhäuser Verlag, Basel (1993), pag. 71-82. Estos compuestos no péptidos de origen natural o sintético son inhibidores aniónicos, hidrófobos, de bajo peso molecular.
Se cree que los inhibidores de bajo peso molecular de HLE tienen preferentemente un dominio hidrófobo prolongado, con un centro de carga negativa. Un análisis del sitio de unión tridimensional de la elastasa de leucocitos por cristalografía X indica que el sitio de unión de sustrato prolongado para esta enzima está ampliamente alineado con residuos hidrófobos, pero una cadena lateral de arginina (que no es directamente parte de la tríada catalítica) en la mitad de este medio hidrófobo contribuye estructuralmente a estabilizar la estructura del sitio activo. Se supone que los compuestos aniónicos hidrófobos basados en péptidos y no basados en péptidos que pueden servir como inhibidores se unen al sitio de unión de sustrato prolongado a través de una combinación de fuerzas hidrófobas e interacciones electrostáticas con el residuo de arginina.
Otros ejemplos de inhibidores hidrófobos-aniónicos no péptidos de HLE son los ácidos grasos, ácidos bílicos y ácido pireno-trisulfónico, todos los cuales han sido también investigados en el laboratorio de uno de los presentes inventores. S. Simon, y cols., "Inhibition of Human Neutrophil Elastase by Polyguanylic Acid and Other Synthetic Polynucleotides", Adv. Exp. Med. Biol. 240, 65-74 (1988); S.C. Tyagi y S.R. Simon, "Inhibitors Directed to Binding Domains in Neutrophil Elastase", Biochemistry 20, 9970-9977 (1990); S. Tyagi y S.R. Simon, "Parinaric Acids as Probes of Binding Domains in Neutrophil Elastase", J. Biol. Chem. 266, 15185-15191 (1991); S. Tyagi y S.R. Dimon, "Interaction of Neutrophil Elastase with Hidrophobic Polyanionic chelators", Biochem. Cell Biol. 69, 624-629 (1991). Estos compuestos son todos inhibidores reversibles, y forman interacciones no covalentes con la enzima. Puesto que se unen en el sitio de unión del sustrato prolongado, son inhibidores competitivos de la hidrólisis enzimática de sustratos de oligopéptidos y proteínas mayores como elastina, pero son inhibidores no competitivos de la hidrólisis de los sustratos sintéticos más pequeños que se unen solamente en las proximidades inmediatas de la tríada catalítica en el sitio activo.
Ninguno de estos compuestos no péptidos de origen natural o sintético se parece a la tetraciclina.
Las tetraciclinas son una clase de compuestos que son particularmente bien conocidos por su éxito temprano y espectacular como antibióticos. Estos compuestos como tetraciclina, esporociclina, etc., son antibióticos de amplio espectro, que tienen utilidad contra una amplia diversidad de bacterias y otros microbios. El compuesto parental, la tetraciclina, tiene la siguiente estructura general:
1
El sistema de numeración del núcleo de anillos múltiples es como sigue:
2
La tetraciclina, así como los derivados de 5-OH (oxitetraciclina, por ejemplo, terramicina®) y 7-Cl (clorotetraciclina, por ejemplo, aureomicina®), existen en la naturaleza, y son todos antibióticos bien conocidos. Las tetraciclinas semisintéticas incluyen, por ejemplo, doxiciclina, minociclina y metaciclina. El uso de antibióticos de tetraciclina, aunque generalmente es eficaz para tratar una infección, puede conducir a efectos secundarios indeseables. Por ejemplo, la administración a largo plazo de tetraciclinas antibióticas puede reducir o eliminar la flora saludable, como la flora intestinal, y puede conducir a la producción de organismos resistentes a los antibióticos o al sobrecrecimiento de levaduras y hongos. Estas desventajas significativas normalmente desaconsejan los regímenes de tratamiento que requieran la administración crónica de estos compuestos.
Las tetraciclinas naturales pueden ser modificadas sin pérdida de sus propiedades antibióticas, aunque ciertos elementos de la estructura deben ser retenidos para que sea así. Ha sido definida una clase de compuestos que están estructuralmente relacionados con las tetraciclinas antibióticas, pero cuya actividad antibiótica ha sido sustancial o completamente extinguida por modificación química. Las modificaciones que pueden o no pueden hacerse a la estructura básica de la tetraciclina fueron examinadas por Mitscher, L.A. The Chemistry of the Tetracycline Antibiotics, Marcel Dekker, New York (1978), capítulo 6. Según Mitscher, la modificación en las posiciones 5-9 del sistema de anillos de la tetraciclina se puede hacer sin provocar la pérdida completa de las propiedades antibióticas. Sin embargo, los cambios de la estructura básica del sistema de anillos, o sustitución de los sustituyentes en las posiciones 1-4 o 10-12,conduce generalmente a tetraciclinas sintéticas con una actividad antibacteriana sustancialmente menor o esencialmente nula.
Las tetraciclinas químicamente modificadas (CMT) incluyen, por ejemplo, 4-des(dimetilamino)tetraciclina (CMT-1), tetraciclinonitrilo (CMT-2), 6-desmetil-6-desoxi-4-des(dimetilamino)tetraciclina (CMT-3), 7-cloro-4-des(dimetilamino)tetraciclina (CMT-4), tetraciclina-pirazol (CMT-5), 4-hidroxi-4-des(dimetilamino)tetraciclina (CMT-6), 4-des(dimetilamino)12\alpha-desoxitetraciclina (CMT-7), 6-desoxi-5\alpha-hidroxi-4-des(dimetilamino)tetraciclina (CMT-8), 4-des(dimetilamino)-12\alpha-desoxianhidrotetraciclina (CMT-9) o 4-des(dimetilamino)minociclina (CMT-10).
Ejemplos adicionales de tetraciclinas modificadas para una actividad antimicrobiana reducida incluyen 4-epímeros de oxitetraciclina y clorotetraciclina (epi-oxitetraciclina y epi-clorotetrciclina).
Se ha mostrado que ciertas tetraciclinas suprimen las metaloproteinasas de matriz, y los laboratorios de dos de los presentes inventores han desempeñado una función principal en la identificación de tetraciclinas como una familia de compuestos que pueden inhibir MMP independientemente de la actividad antibiótica de la tetraciclina. Las patentes de EE.UU. nº 5.459.135 de Golub y cols., 5.321.017 de Golub y cols., 5.308.839 de Golub y cols., 4.935.412 de McNamara y cols., 4.704.383 de McNamara y cols. y 4.666.897 de Golub y cols. describen el uso de tetraciclinas no antimicrobianas para tratar estados destructores de tejidos, inflamación crónica y otros estados asociados a una excesiva actividad de metaloproteasa de metaloproteinasas de matriz como colagenasa, gelatinasa y elastasa de MMP.
La inhibición de la actividad de metaloproteinasas de matriz por tetraciclinas es mostrada en una serie de estudios que incluyen animales experimentales en los que es iatrogénicamente inducida una periodontitis por infección con agentes patógenos orales o en los que es inducida una atrofia de ligamentos periodontales por destrucción de islotes pancreáticos, que dan lugar a una elevación patológica de la actividad de MMP en los sitios de la lesión tisular. El tratamiento de estos animales con tetraciclinas semisintéticas que retienen la actividad antibiótica así como tetraciclinas químicamente modificadas desprovistas de actividad antibiótica da lugar a una reducción considerable en los niveles de MMP en los sitios de la lesión de los tejidos así como una marcada mejora del periodoncio en los animales. Véase, por ejemplo, K. M. Chang y cols., "Local and Systemic Factors in Periodontal Disease Increase Matrix-Degrading Enzyme Activities in Rat Gingiva; Effect of Minocycline Therapy", Research Communications in Molecular Pathology and Pharmacology, 91, 303-318 (1996); M.E. Ryan, y cols., "Matrix Metalloproteinases and Their Inhibition in Periodontal Treatment", Current Opinion in Periodontology, 3, 85-96 (1996).
Pero en esta serie inter-relacionada de estudios se encontró que aunque diversas tetraciclinas modificadas inhibían la actividad de metaloproteinasa de matriz-elastasa, las tetraciclinas caracterizadas en ese momento no inhibían la actividad de elastasa de serin-proteinasa in vitro de PMN ni de rata ni de sinovio humano. Véase, por ejemplo, L. Golub y cols., "Tetracyclines Inhibit Connective Tissue Breakdown: New Therapeutic Implications For an Old Family of Drugs" Crit. Rev. Oral Biol. Med., 2, 297-322(1991) en las páginas 300 y 301.
Las metaloproteinasas y serin-proteinasas pueden funcionar en combinación para llevar a cabo la destrucción de la mayoría de los elementos de la matriz extracelular incluidos el estroma intersticial y las membranas de basamento. En esta interacción 1) la catepsina G (una serin-proteinasa) puede activar NEAP-8; 2) la elastasa de leucocitos humanos (una serin-proteinasa) puede desactivar los principales inhibidores de tejidos endógenos de metaloproteinasas de matriz (TIMP); y 3) MMP-8 y MMP-9 pueden desactivar el inhibidor de \alpha_{1}-proteinasa (\alpha_{1}-PI), el principal inhibidor endógeno de la elastasa de leucocitos humanos. Véase, por ejemplo, S. K. Mallya, y cols., "Interaction of Matrix Metalloproteinases With Serine Protease Inhibitors", Annals of the New York Academy of Science, 732, 303-314 (1994); y A. R. Rinehart, y cols., "Human \alpha-Proteinase Inhibitor Binds to Extracellular Matrix In Vitro", Am. J. Respir. Cell Mol. Biol., 9. 666-679 (1993). Por tanto, contribuyendo a la activación de proteasas e inactivando los inhibidores endógenos, las dos clases de proteinasas pueden desviar el equilibrio proteasa-antiproteasa hacia la degradación de tejidos patológicos. Aunque las enzimas están reguladas bajo condiciones normales, una descomposición del mecanismo de control pueden conducir a diversos estados de enfermedad caracterizados por una excesiva actividad de serin-proteinasa.
Por ejemplo, bajo condiciones de infiltración con grandes números de neutrófilos, como se puede encontrar en el síndrome de dificultad respiratoria, en el que los niveles endógenos de \alpha_{1}-PI no pueden neutralizar eficazmente los niveles de elastasa de leucocitos humanos, el equilibrio proteasa-antiproteasa puede resultar desviado de tal forma que la protección de la antielastasa endógena no sea suficiente para proporcionar una protección a partir de la lesión mediada por HLE.
Hasta ahora no ha sido descubierto un inhibidor exógeno de proteinasa que sea capaz de restaurar completamente el equilibrio proteasa-antiproteasa.
Sumario de la invención
Consecuentemente, la invención proporciona el uso de una tetraciclina hidrófoba para elaborar una composición para inhibir la excesiva actividad de elastasa de leucocitos en un sistema biológico, en el que la tetraciclina hidrófoba comprende 6-desmetil-6-desoxi-4-des(dimetilamino)tetraciclina (CMT-3).
La invención proporciona adicionalmente el uso de una tetraciclina hidrófoba para elaborar una composición para tratar un sujeto que padece un deterioro de tejidos que resulta de una excesiva actividad de elastasa de leucocitos, en el que la tetraciclina hidrófoba comprende 6-desmetil-6-desoxi-4-des(dimetilamino)-tetraciclina (CMT-3).
La 6-desmetil-6-desoxi-4-des(dimetilamino)tetraciclina es administrada a un mamífero en una cantidad suficiente para inhibir la actividad de elastasa de leucocitos y, por tanto, es reducida la destrucción inflamatoria relacionada con la actividad de la elastasa de leucocitos. El mamífero es preferentemente un ser humano, pero pueden ser tratados ventajosamente también otros animales.
La invención es útil para fines farmacéuticos así como cosméticos. El inhibidor tiene ventajas considerables como un agente terapéutico que restaura el equilibrio proteasa-antiproteasa.
Breve descripción de los dibujos
La Figura 1 es un gráfico de barras de la inhibición de la degradación mediada por neutrófilos humanos de matriz extracelular de once tetraciclinas diferentes, como se expone en el Ejemplo 1. Un estudio de la dependencia de la dosis de esta inhibición se muestra en la Tabla I.
La Figura 2 es un gráfico de barras que ilustra una inhibición comparable de la degradación mediada por neutrófilos humanos y mediada por elastasa de leucocitos humanos de matriz extracelular por CMT-3 (COL-3), como se expone en los Ejemplos 1 y 2.
Las Figuras 3A,B y 4A,B ilustran gráficos de Dixon (Figura 3A y 4A) y gráficos de Cornish-Bowden (figuras 3B y 4B) de la inhibición de la actividad amidolítica de elastasa de leucocitos humanos por CMT-3 (COL-3), como se describe en el Ejemplo 2. La intersección de los gráficos de Dixon anteriores en el eje X y las pendientes paralelas de os gráficos de Cornish-Bowden confirman que la CMT-3 (COL-3) es un inhibidor competitivo de la actividad amidolítica de elastasa de leucocitos humanos hacia el sustrato cromógeno de oligopéptidos metoxisuccinil-Ala-Ala-Fro-Yal-p-nitroanilida.
La Figura 5 ilustra un gráfico de Dixon de la actividad amidolítica de HLE en presencia de doxiciclina, que solamente muestra una inhibición muy débil por esta tetraciclina en contraste con la CMT-3, como se expuso en el Ejemplo 2.
La Figura 6 es un gráfico de barras que ilustra la capacidad de CMT-3 administrada por vía oral para reducir la actividad de elastasa de leucocitos en extractos de tejidos de las encías de ratas que habían recibido inyecciones en las encías de tipo polisacárido bacteriano para inducir la inflamación local en el Ejemplo 3.
Descripción detallada de la invención
Según la invención, una tetraciclina hidrófoba tiene una eficaz actividad inhibidora de elastasa de serin-proteinasa.
La elastasa de leucocitos humanos (HLE) y la catepsina G son serin-proteinasas que se encuentran en los gránulos azurofílicos de leucocitos polimorfonucleares humanos (neutrófilos). Esta elastasa se denomina a veces elastasa de neutrófilos humanos (HNE). El sustrato natural, elastina, es una proteína flexible que es altamente reticulada por desmosina y \alpha-isodesmosina y otros restos reticulantes. La elastasa de serin-proteinasa es capaz de degradar fibras elásticas, colágeno de tipo IV (que se produce en la membrana de basamento de los vasos sanguíneos), colágeno de tipo III que se produce en las encías y músculos lisos, proteoglicanos, glicoproteínas de adhesión como fibronectina y laminina. TIMP y otros componentes proteicos de tejidos conectivos y fluidos intersticiales.
La elastasa de leucocitos humanos (HLE) de serin-proteinasa tiene la capacidad potencial de la destrucción de tejidos en muchos estados de enfermedad como artritis, enfermedad periodontal, glomerulonefritis, enfermedad pulmonar aguda, fibrosis cística y algunos cánceres malignos caracterizados por la invasión de la matriz extracelular por células tumorales. La actividad de HLE ha estado implicada en colapsos sépticos, fallos orgánicos multisistémicos (MOF)y estados de reperfusión-isquemia de miocardio. La actividad de HLE ha estado también implicada en el mecanismo de la lesión pulmonar asociada con el enfisema y con el síndrome de dificultad respiratoria en adultos (ARDS). Se cree que el daño pulmonar está provocado, al menos en parte, por un desequilibrio entre proteasas y antiproteinasas endógenas (por ejemplo, TIMP y \alpha_{1}-PI). La antiproteinasa endógena principal que inhibe la elastasa de leucocitos es \alpha_{t}-PI.
Se ha descubierto ahora que una tetraciclina químicamente modificada puede ser usada para la actividad inhibidora de la elastasa de leucocitos. La tetraciclina es una 4-des(dimetilamino)tetraciclina hidrófoba, lo más preferentemente 6-desmetil-6-desoxi-4-des(dimetilamino)tetraciclina (CMT-3). La inhibición de la HLE no solamente reducirá la lesión directa de tejidos provocada pro esta enzima, sino que también conservará los niveles de la TIMP, manteniendo así los inhibidores endógenos de MMP en su estado activo.
La inhibición de proteasas de neutrófilos usando tetraciclinas no antibacterianas no plantea una respuesta eficaz a la infección a ningún riesgo apreciable porque estos compuestos, cuando son empleados a dosis congruentes con su actividad inhibidora in vitro, no son propensos a obstaculizar la capacidad de los neutrófilos para extravasar e invadir los estromas intersticiales en respuesta a los quimio-atractores generados en los sitios de infección bacteriana.
Se ha encontrado ahora que ciertas CMT, particularmente la CMT-3, demuestran una sustancial actividad inhibidora de elastasa de leucocitos mientras que la minociclina, doxiciclina y otras tetraciclinas químicamente modificadas no exhiben ninguna actividad inhibidora sustancial de elastasa de leucocitos.
La actividad de diversas tetraciclinas fue investigada empleando un ensayo in vitro de lesión inflamatoria de tejidos en la que se permitió que neutrófilos humanos degradaran una matriz extracelular estromal intersticial completa (ECM) preparada por vía biosintética. Un neutrófilo es un tipo de leucocito (leucocito polimorfonuclear). Los estudios con este sistema experimental muestran que la degradación mediada por neutrófilos de esta ECM puede ser inhibida de forma virtualmente completa mediante la adición de \alpha_{1}-PI, que es un potente inhibidor de elastasa de leucocitos así como un sustrato competitivo para las MMP. E.J. Roemer, K.J. Stanton, y S.R. Simon, "In Vitro Assay Systems for Inflammatory Cell-Mediated Damage to Interstitial Extracellular Matrix," In Vitro Toxicol. 7,75-81 (1994); E.J. Roemer, K.J. Stanton y S.R. Simon, "In Vitro Assay Systems for Cell Interactions With Interstitial Extracellular Matrix," In Vitro Toxicol. 7, 209-224 (1994). Cuando se ensayaron las tetraciclinas (Ejemplo 1) en cuanto a su capacidad para inhibir la degradación de ECM en este sistema, a una dosis, por ejemplo, de 30 \muM, la CMT-3 fue muy superior a las demás tetraciclinas en la protección de la ECM de la destrucción mediada por neutrófilos, como se muestra en la Figura 1. En estudios adicionales de respuesta a la dosis usando este ensayo in vitro, se pudo conseguir una inhibición de aproximadamente 50% de la degradación de ECM mediada por neutrófilos con 25-50 \muM. La mayoría de las otras tetraciclinas ensayadas sobre el mismo intervalo de dosis fueron incapaces de inhibir más de -20% de la degradación de ECM mediada por neutrófilos usando este ensayo.
La inhibición directa de HLE por CMT-3 se determinó (Ejemplo 2) usando una modificación del ensayo de la actividad de la elastasa de leucocitos humanos (HLE) descrito por Ying y cols. (Q. Ying, A.R. Rinehart, S.R. Simon y J.C. Cheronis, "Inhibition of Human Leukocyte Elastase by Ursolic Acid: Evidence for a Hydrophobic Binding Site for Pentacyclic Triterpenes," Biochem. J. 277, 521-526 (1991)) en el que se redujeron las concentraciones de detergente y disolvente orgánico, usando un ensayo tradicional de actividad de elastasa de leucocitos humanos (HLE) mediante la medición de la amidolisis del sustrato de oligopéptido cromógeno, metoxisuccinil-Ala-Ala-Pro-Val-p-nitroanilida. Este oligopéptido se supone que generalmente ocupa los cinco primeros subsitios del dominio de unión del sustrato extendido en HLE. Usando una combinación de gráficos Dixon y Cornish-Bowden para analizar los datos de la velocidad de la misma forma que se describió previamente para otros inhibidores de elastasa no péptidos por Ying y cols. {Biochem. J. 277, 521-526 (1991)), se mostró que la CMT-3 es un inhibidor predominantemente competitivo de la amidolisis de metoxisuccinil-ala-Ala-Pro-Val-p-nitroanilida, con un valor aparente de K de 18-40 \muM, como se ilustra en las Figuras 3A,B y 4A,B. Por el contrario, la doxiciclina, que es capaz de inhibir la actividad de MMP-8 in vitro con un valor de K_{1} de 25-50 \muM, es solamente un inhibidor muy débil de HLE, con un exceso de K_{1} de 300 \muM, como se muestra por la pendiente del gráfico Dixon en la Figura 5. cuando se emplea CMT-3 en el ensayo de degradación de ECM mediado por HLE purificada en lugar de neutrófilos vivos, se demuestra que es un inhibidor eficaz, con un valor aparente de I_{50} de \sim 25-50 \muM.
Los ensayos in vivo (Ejemplo 3) demostraron que la administración de CMT-3 a ratas en las que se indujo una inflamación periodontal aguda mediante la administración de endotoxina, redujo la actividad de la elastasa de leucocitos, según se ensayó mediante un ensayo amidolítico con el sustrato succinil-Ala-Ala-p-nitroanilida.
Los estados que pueden ser tratados según la presente invención se producen en sujetos mamíferos. Los pacientes humanos son con diferencia los sujetos más importantes, pero el método puede ser practicado para el aprovechamiento de otros mamíferos que incluyen, por ejemplo, animales mascotas como perros y gatos y animales de laboratorio, como ratas y ratones, así como animales de granja.
La invención puede ser usada para tratar sujetos que padecen un deterioro de tejidos que resulta de una excesiva actividad de elastasa de leucocitos humanos, por ejemplo, en algunas enfermedades pulmonares y enfermedades renales. Las enfermedades pulmonares de este tipo incluyen fibrosis cística, enfisema, síndrome de dificultad respiratoria en adultos como una complicación de un politraumatismo, estrés quirúrgico, sepsia, o como un componente de un fallo orgánico multisistémico; también una lesión pulmonar aguda que resulta de la inhalación de agentes tóxicos como ácidos, productos químicos, venenos industriales y militares y el humo de otros productos tóxicos de combustión. Las enfermedades renales de este tipo incluyen glomerulonefritis y fallo renal agudo como una complicación de politraumatismo o sepsia, o como un componente de un fallo orgánico multisistémi-
co.
La invención puede ser usada también para tratar lesiones y enfermedades inflamatorias de la piel que incluyen una infiltración considerable de la unión dérmica-epidérmica con neutrófilos y que da lugar a la separación de la unión dérmica-epidérmica. Estos estados pueden ser de origen inmunológico (autoinmune o como consecuencia de reacciones de fármacos) o puede ser provocado por una toxina bacteriana (como en la "piel escaldada" de niños). Es altamente probable que la elastasa de leucocitos contribuya a la destrucción de la unión dérmica-epidérmica en estos estados. Algunas lesiones provocadas por agentes vesicantes químicos (que incluyen exposiciones tanto industriales como militares) en los que se produce una infiltración neutrofílica y la separación de la unión dérmica-epidérmica, incluyen también elastasa de leucocitos, y son también candidatos para un tratamiento por medio de terapia con CMT-3. Algunas lesiones oculares tienen también infiltración neutrofílica como un componente de la herida, y pueden ser tratadas más eficazmente con una antiproteinasa como CMT-3.
La invención incluye la administración del compuesto de tetraciclina en una cantidad que sea eficaz para reducir o inhibir consecuencias indeseables asociadas con una excesiva actividad de elastasa de leucocitos. El compuesto de tetraciclina preferido es modificado químicamente para reducir o eliminar sus propiedades antimicrobianas. Esta tetraciclina químicamente modificada puede ser usada a niveles superiores a los de las tetraciclinas antimicrobianas, aunque evitando ciertas desventajas, como la destrucción indiscriminada de microbios beneficiosos que acompañan a menudo el uso de cantidades antimicrobianas o antibacterianas de estos compuestos.
La dosificación máxima para un sujeto es la dosificación más elevada que no provoca efectos secundarios indeseables o intolerables. Por ejemplo, el compuesto de tetraciclina puede ser administrado en una cantidad de aproximadamente 0,1 mg/kg/día a aproximadamente 24 mg/kg/día y, preferentemente, de aproximadamente 2 mg/kg/día a aproximadamente 18 mg/kg/día. Para los fines de la presente invención, los efectos secundarios incluyen una actividad antimicrobiana o antibacteriana clínicamente significativa, así como efectos tóxicos. Por ejemplo, una dosis por encima de aproximadamente 50 mg/kg/día producirá probablemente efectos secundarios en la mayoría de los mamíferos, incluidos los seres humanos. En cualquier caso, el facultativo puede guiarse por la experiencia y los conocimientos en el campo técnico, y la presente invención incluye, sin limitación, las dosificaciones que sean eficaces para conseguir los fenómenos descritos.
La composición farmacéutica preferida para ser usada en la invención comprende una combinación del compuesto de tetraciclina en un vehículo farmacéutico adecuado, como es entendido por lo facultativos de la técnica.
Para los fines farmacéuticos anteriormente descritos, la tetraciclina de la invención puede ser formulada por sí misma en preparaciones farmacéuticas opcionalmente con adyuvantes o vehículos conocidos farmacéuticamente aceptables. Estas preparaciones pueden ser realizadas según métodos químicos convencionales y pueden ser administradas por vía interna, por ejemplo, por vía oral mediante comprimidos o líquidos, o por medio de supositorios; por vía parenteral, pro ejemplo, por vía intravenosa, intramuscular o subcutánea, en forma de soluciones o suspensiones inyectables; por vía tópica en la forma de una pulverización o aerosol de gotitas dentro del intervalo respirable para la inhalación en los pulmones y vías respiratorias. Estos aerosoles pueden incluir vehículos como preparaciones de tensioactivos pulmonares que pueden contribuir a una eficacia terapéutica adicional. Puede ser empleada una administración de liberación retardada o de suministro controlado.
Las preparaciones farmacéuticas o cosméticas contienen una cantidad eficaz inhibidora de serin-proteasa, particularmente inhibidora de elastasa de leucocitos de la tetraciclina.
En otra realización, la tetraciclina puede ser usada como un agente en preparaciones cosméticas como cremas y lociones para la piel, mascarillas cosméticas, parches cosméticos, vendajes cosméticos y champúes para tratamientos cosméticos. Debe entenderse que el término "cosmético" está destinado a indicar un realce o mejora de la apariencia física.
Para una aplicación tópica o cosmética, las formulaciones adecuadas incluyen, pero sin limitación, liposomas, soluciones, suspensiones, emulsiones, cremas, ungüentos, polvos, linimentos, pomadas, aerosoles, etc., que, si se desea, son esterilizados y/o mezclados con agentes auxiliares, por ejemplo, conservantes, estabilizantes, agentes humectantes, tampones o sales para influir en la presión osmótica, etc.
Debe apreciarse que las cantidades reales preferidas de compuesto activo en un caso especifico variarán según las composiciones particulares formuladas, el modo de aplicación y los sitios particulares del sujeto que está siendo tratado. Las dosificaciones serán determinadas usando consideraciones convencionales, por ejemplo, mediante una comparación habitual de las actividades diferenciales de las formulaciones de un agente conocido, por ejemplo, por medio de un protocolo farmacológico o cosmético convencional y apropiado.
Para usos cosméticos, pueden incorporarse a la tetraciclina muchos materiales adicionales biocompatibles o biológicamente inertes. "Biocompatible" significa que es no tóxico o no perjudicial para los tejidos humanos y no humanos. Estos materiales adicionales incluyen, por ejemplo, humectantes, es decir, sustancias que tienen afinidad al agua como glicerina, propilenglicol o isopropanol-propilenglicol, sales orgánicas o inorgánicas como compuestos de amonio cuaternario y sales de zinc, alcoholes como alcohol bencílico o alcoholes alifáticos inferiores, látices polímeros, materiales de carga como sílice y talco, aceites como aceite mineral, aceite de ricino y petrolato, agentes humectantes o dispersantes o tensioactivos como copolímeros de bloque de óxido de etileno y óxido de propileno, colorantes, fragancias, pigmentos, óxido de zinc, dióxido de titanio, medicamentos tópicos como salicilato de metilo, nicotinatos, capsaicina y mentol, medicamentos anti-acné como peróxido de benzoilo, resorcinol y ácido retinoico, antibacterianos tópicos como sulfadiazina de plata, otras tetraciclinas y cefazolina, agentes hidratantes de la piel como ácido pirrolidino-carboxílico de sodio y agentes protectores solares absorbentes de radiaciones UV-A y/o UV-B como ácido p-aminobenzoico (PABA) o 4-N,N-dimetilaminobenzoato de 2-etilhexilo (Padimate O). Pueden usarse también sustratos para proporcionar un refuerzo, una barrera gaseosa o líquida, o protección de la zona de tratamiento. Los sustratos son virtualmente ilimitados e incluyen películas de polímeros, hojas metálicas, materiales celulósicos y otros materiales naturales o sintéticos.
Los siguientes ejemplos se proporcionan para ayudar a una mejor comprensión de la invención y no están destinados a ser limitativos de su alcance razonable.
Ejemplo 1
La actividad inhibidora de serin-proteinasa de las tetraciclinas se ensayó usando un ensayo in vitro de la lesión inflamatoria de tejidos en la que se permitió que neutrófilos humanos (PMN vivos) degradaran una matriz extracelular estromal intersticial completa (ECM) preparada biosintéticamente producida por medio de células de músculos lisos cardíacos de rata R22 cultivadas como se describe por Roemer y cols. (E.J. Roomer, K.J. Stanton y S.R Simon, "In Vitro Assay Systems for Inflammatory Cell-Mediated Damage to Interstitial Extracellular Matrix", In Vitro Toxicol. 7,75-81 (1994); E.J. Roemer, K.J. Stanton y S.R. Simon, "In Vitro Assay Systems for Cell Interactions With Interstitial Extracellular Matrix," In Vitro Toxicol. 7,209-224 (1994). Se añadieron diez tetraciclinas diferentes modificadas químicamente (CMT) denominadas CMT-1 a CMT-10 y doxiciclina, a concentraciones que variaban en el intervalo de 5 \muM
a 50 \muM a la ECM simultáneamente con una suspensión de 2 x 10^{6} PMN humanas viables/ml en solución de sales equilibradas de Hank (HBSS). En estos estudios, la ECM fue radiomarcada metabólicamente con H^{3}-prolina, y los recuentos solubilizados después de seis horas de incubación se midieron y se compararon con los recuentos liberados después de una incubación solamente con PMN. Los resultados para concentraciones de 5 \mum, 25 \mum y 50 \mum se muestran en la Tabla 1 y los resultados para 30 \mum se muestran la Figura 1.
TABLA 1
3
La Tabla 1 y la Figura 1 muestran que la CMT-3 era capaz de conseguir una inhibición significativa de la degradación de ECM mediada por neutrófilos (inhibición de \sim 50% a concentraciones de \geq 25-30 \muM) y con una buena inhibición de la degradación de ECM a todas las dosis empleadas en este ensayo. La CMT-8 y la CMT-10, particularmente la CMT-8, a algunas concentraciones, mostraron alguna inhibición de la degradación de ECM.
La Figura 2 ilustra una comparación de la potencia inhibidora de CMT-3 25 \muM (COL-3) en ensayos paralelos de la degradación de ECM mediada por 2 x 10^{6} PMN/ml o por medio de HLE purificada 10 \muM, usando los mismos métodos anteriormente citados.
Ejemplo 2
El efecto inhibidor directo de las tetraciclinas sobre la actividad amidolítica de la elastasa de leucocitos humanos /HLE) se evaluó mediante el método descrito por Ying y cols., Biochem. J. 277, 521-526 (1991), modificado rebajando la concentración en DMSO hasta 2% y eliminando el uso del detergente Triton X-100. Para evitar la adsorción dependiente del tiempo de HLE en las paredes de las microplacas de 96 pocillos usadas en los análisis amidolíticos, las placas fueron previamente tratadas con una solución de albúmina de suero bovino al 0,2%. Se empleó una gama de concentraciones del sustrato de oligopéptido cromógeno metoxisuccinil-Ala-Ala-Pro-Val-p-nitroanilida desde 100 \muM hasta 300 \muM para todas las mediciones; se cree que este sustrato ocupa los subsitios de unión del sustrato S_{1} a S_{5} en HLE sobre la base de análisis cristalográficos de rayos X (W. Bode, E. Meyer y J. C, Powers, "Human Leukocyte and Porcine Pancreatic Elastase: X-Ray Crystal Structures, Mechanism; Substrate Specificity, and Mechanism-Based Inhibitors," Biochemistry 28, 1951-1963 (1989)). La inhibición de la actividad amidolítico se analizó mediante los métodos gráficos de Dixon (M. Dixon, Biochem. J. 55, 170-171 (1953)) y Cornish-Bowden (A. Comish-Bowden, Biochem. J. 137, 143-144 (1974)) como en Ying y cols.: intersección de gráficos de Dixon obtenidos a diferentes concentraciones de sustrato en un punto por encima del eje X que establece un mecanismo de inhibición no competitiva pura, mientras que los gráficos paralelos de Cornish-Bowden obtenidos a diferentes concentraciones de sustrato son congruentes con la inhibición competitiva pura. La concentración de sustrato a la que los gráficos de Dixon intersecan es una medida de la K_{i} para el inhibidor. Los gráficos típicos de Dixon y Cornish-Bowden para la inhibición de HLE por CMT-3 (COL-3) se ilustran en las Figuras 3A,B y 4A,B. A partir de estos datos, el valor de K_{i} para la inhibición de la actividad amidolítica de HLE por CMT-3 se puede estimar que es de 25-40 \muM. En presencia de dimetilsulfóxido al 10% y Triton X-100 al 0,1%, la potencia inhibidora de CMT-3 se reduce considerablemente, apoyando la conclusión de que las interacciones hidrófobas contribuyen a la estabilización de la unión de CMT-3 a HLE.
Se determinó la actividad inhibidora de la doxiciclina hacia la amidolisis de metoxisuccinil-Ala-Ala-Pro-Val-p-nitroanilida por HLE también en presencia de 2% de DMSO y sin detergente, como se describió anteriormente para CMT-3. El análisis de la pendiente del gráfico de Dixon para la inhibición de la actividad amidolítica de HLE por doxiciclina indica un valor mucho más elevado de K_{i}, de aproximadamente 300 \muM, como se ilustra en la Figura 5. Otros derivados de tetraciclina que mostraron una potencia comparablemente baja o nula como inhibidores de la actividad amidolítica de HLE fueron oxitetraciclina y su 4-epímero, epi-oxitetraciclina; clorotetraciclina y su 4-epímero, epi-clorotetraciclina; anhidroclorotetraciclina; y CMT-5, una tetraciclina modificada químicamente en la que los restos oxo e hidroxi en la base de los cuatro anillos condensados están sustituidos por un anillo de pirazol. Se cree que como carece únicamente de cualquiera de los sustituyentes en las posiciones 6 ó 4 del sistema de anillos condensados de las tetraciclinas, inesperadamente parece que la CMT-3 es capaz de unirse con una afinidad mucho mayor a HLE que a cualquiera de las otras tetraciclinas ensayadas.
La capacidad de la CMT-3 para inhibir HLE no está restringida a ensayos amidolíticos, como ya se mostró en la Figura 2, en la que la degradación de una matriz extracelular intersticial completa por HLE purificada es inhibida por CMT-3. La potencia de la actividad inhibidora de CMT-3 en este ensayo de inhibición de la degradación de la matriz por HLE es comparable a la determinada a partir de los ensayos de la actividad amidolítica de HLE, consistente con la interpretación de que el mecanismo de inhibición en los dos tipos de ensayos incluye la unión de CMT-3 a la enzima de una forma que bloquea la unión de cualesquiera sustratos de péptidos o proteínas. En el ensayo de degradación mediada por HLE de ECM, las otras tetraciclinas ensayadas no fueron eficaces a dosis comparables a las ensayadas con CMT-3.
Ejemplo 3
Se demostró la capacidad de CMT-3 administrada por vía oral (COL-3) para reducir la actividad in vivo de la elastasa de leucocitos en un modelo de animal de inflamación aguda e infiltración neutrofílica, usando un protocolo experimental análogo al descrito por Chang y cols. (K.M. Chang, M.E. Ryan, L.M. Golub, N.S. Ramamurthy y T.F. McNamara, "Local and Systemic Factors in Periodontal Disease Increase Matrix-Degrading Enzyme Activities in Rat Gingiva: Effect of Minocycline Therapy," Res. Comm. Mol. Path. Pharm. 91, 303-318 (1996)). Las ratas recibieron 0,01 mg de liposacárido (LPS) de E. coli o solamente un vehículo de solución salina inyectado en un volumen de 10 \mul
en la encía labial maxilar y mandibular en días alternados durante un período de seis días. Dos conjuntos de ratas también recibieron 2 mg o 5 mg de CMT-3 diariamente en un volumen de 1 ml, administrado por alimentación oral forzada, durante el período de seis días, mientras que los otros conjuntos de ratas recibieron solamente el vehículo de 2% de carboximetilcelulosa. Al final de este período de tratamiento de seis días, los animales fueron sacrificados y los tejidos de las encías fueron diseccionados. Los tejidos de cada grupo experimental fueron reunidos, congelados y descongelados y extraídos para ensayos de la actividad enzimática según el procedimiento de Yu y cols. (Z. Yu, N.S. Ramamurthy, M. Leung, K.M. Chang, T.F. McNamara y L.M. Golub, "Chemically Modified Tetracycline Normalizes Collagen Metabolism in Diabetic Rats," J. Periodont. Res. 28, 420-428 (1993)). La actividad de la elastasa de leucocitos se valoró usando el sustrato succinil-Ala-Ala-Ala-p-nitroanilida según el procedimiento de Ramamurthy y Golub (1983) (N.S, Ramamurthy y L.M. Golub, "Diabetes Increases Collagenase Activity in Extracts of Rat Gingiva and Skin," J. Periodont. Res. 18, 23-30 (1983)). El descubrimiento expuesto en la presente memoria descriptiva es la capacidad de la CMT-3 administrada por vía oral para reducir el nivel de actividad de elastasa de leucocitos en los extractos de encías de ratas inyectadas con LPS. La Figura 6 ilustra los niveles reducidos de actividad de elastasa de leucocitos en los extractos de encías de ratas inyectadas con LPS tratadas con ambas dosis de CMT-3, en comparación con la actividad de elastasa en extractos de encías de ratas que recibieron inyecciones de LPS y alimentación forzada de vehículo solo o inyecciones de solución salina. La administración de CMT-3 parece que reduce los niveles de la actividad de elastasa en los extractos de encías de ratas inyectadas con LPS hasta los niveles detectados en animales que recibían inyecciones en las encías de solución salina sola. Este resultado demuestra que la administración de CMT-3 in vivo da lugar a niveles reducidos de elastasa de leucocitos en los sitios de inflamación aguda localizada con infiltración de neutrófilos.
Por tanto, se ha descrito lo que actualmente se cree que son las realizaciones preferidas de la invención, y los expertos en la técnica se darán cuenta de que se pueden hacer cambios y modificaciones en las mismas sin apartarse de las características generales de la invención, y está previsto reivindicar todos estos cambios y modificaciones para que caigan dentro del verdadero alcance de la invención.

Claims (11)

1. Uso de una tetraciclina hidrófoba para elaborar una composición para inhibir la excesiva actividad de elastasa de leucocitos en un sistema biológico, en el que la tetraciclina hidrófoba comprende 6-desmetil-6-desoxi-4-des(dimetilamino)-tetraciclina (CMT-3).
2. Uso según la reivindicación 1, en el que la composición es una composición cosmética.
3. Uso según la reivindicación 1, en el que la composición es una composición farmacéutica.
4. Uso de una tetraciclina hidrófoba para elaborar una composición para tratar un sujeto que padece un deterioro de tejidos que resulta de una excesiva actividad de elastasa de leucocitos, en el que la tetraciclina hidrófoba comprende 6-desmetil-6-desoxi-4-des(dimetilamino)-tetraciclina (CMT-3).
5. Uso según la reivindicación 4, en el que el sujeto es un mamífero.
6. Uso según la reivindicación 4, en el que el deterioro de tejidos que resulta de la excesiva actividad de elastasa de leucocitos es una enfermedad pulmonar.
7. Uso según la reivindicación 6, en el que la enfermedad pulmonar es fibrosis cística, enfisema, síndrome de dificultad respiratoria en adultos o lesión pulmonar aguda que resulta de la inhalación de materias tóxicas.
8. Uso según la reivindicación 7, en el que el síndrome de dificultad respiratoria es una complicación de politraumatismos, estrés quirúrgico, sepsia o es un componente de un fallo orgánico multisistémico.
9. Uso según la reivindicación 7, en el que la materia tóxica es un ácido, un producto químico, un veneno industrial, un veneno militar, humo o un producto tóxico de combustión.
10. Uso según la reivindicación 4, en el que el deterioro de tejidos que resulta de la excesiva actividad de elastasa de leucocitos es una enfermedad renal.
11. Uso según la reivindicación 10, en el que la enfermedad renal es glomerulonefritis, fallo renal agudo como una complicación de un politraumatismo o sepsia, o fallo renal agudo como un componente de un fallo orgánico multisistémico.
ES98908747T 1997-03-13 1998-02-26 Actividad inhibidora de serin-proteinasa mediante tetraciclina hidrofoba. Expired - Lifetime ES2241124T3 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US816551 1997-03-13
US08/816,551 US5773430A (en) 1997-03-13 1997-03-13 Serine proteinase inhibitory activity by hydrophobic tetracycline

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2241124T3 true ES2241124T3 (es) 2005-10-16

Family

ID=25220936

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES98908747T Expired - Lifetime ES2241124T3 (es) 1997-03-13 1998-02-26 Actividad inhibidora de serin-proteinasa mediante tetraciclina hidrofoba.

Country Status (13)

Country Link
US (1) US5773430A (es)
EP (1) EP0975349B1 (es)
JP (1) JP4339411B2 (es)
KR (1) KR100530683B1 (es)
AT (1) ATE292972T1 (es)
AU (1) AU733308B2 (es)
CA (1) CA2283071C (es)
DE (1) DE69829748T2 (es)
DK (1) DK0975349T3 (es)
ES (1) ES2241124T3 (es)
NZ (1) NZ337578A (es)
PT (1) PT975349E (es)
WO (1) WO1998040079A1 (es)

Families Citing this family (48)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU7688998A (en) * 1997-05-20 1998-12-11 Trustees Of Columbia University In The City Of New York, The Use of metalloproteinase inhibitors in the treatment and prevention of pulmonaryemphysema
US5977091A (en) * 1998-09-21 1999-11-02 The Research Foundation Of State University Of New York Method of preventing acute lung injury
US5998390A (en) * 1998-09-28 1999-12-07 The Research Foundation Of State University Of New York Combination of bisphosphonate and tetracycline
US6946453B2 (en) 1998-11-18 2005-09-20 Collagenex Pharmaceuticals, Inc. 4-dedimethylaminotracycline derivatives
US6506740B1 (en) 1998-11-18 2003-01-14 Robert A. Ashley 4-dedimethylaminotetracycline derivatives
US6887678B2 (en) * 1998-12-02 2005-05-03 Cindy L. Bristow Method for the quantitative determination of proteinase inhibitors
CA2372443C (en) * 1999-04-30 2010-07-13 Apt Pharmaceuticals, L.L.C. Local administration of anti-malarial agents for the treatment of inflammatory diseases
GB0004531D0 (en) * 2000-02-25 2000-04-19 Richards Andrew J M The treatment of respiratory diseases
US6627785B1 (en) * 2000-02-29 2003-09-30 Virginia Commwealth University Wound dressings with protease-lowering activity
US6503892B2 (en) 2000-04-26 2003-01-07 New England Medical Center Hospitals Inc. Method of using matrix metalloproteinase inhibitors in filtering blebs following glaucoma filtering surgery and in the treatment of ischemic damage to the retina and optic nerve
US20020132798A1 (en) * 2000-06-16 2002-09-19 Nelson Mark L. 7-phenyl-substituted tetracycline compounds
US7247704B2 (en) * 2000-12-18 2007-07-24 Arriva Pharmaceuticals, Inc. Multifunctional protease inhibitors and their use in treatment of disease
CA2447008A1 (en) * 2001-04-05 2002-10-24 Collagenex Pharmaceuticals, Inc. Controlled delivery of tetracycline compounds and tetracycline derivatives
WO2002099134A1 (en) * 2001-06-05 2002-12-12 Auckland Uniservices Limited Methods and compositions for assessment of pulmonary function and disorders
US20060194773A1 (en) * 2001-07-13 2006-08-31 Paratek Pharmaceuticals, Inc. Tetracyline compounds having target therapeutic activities
EP1408987B1 (en) * 2001-07-13 2013-04-10 Paratek Pharmaceuticals, Inc. Tetracycline compounds having target therapeutic activities
US20030181371A1 (en) * 2001-12-28 2003-09-25 Angiotech Pharmaceuticals, Inc. Compositions and methods of using collajolie
EP2311797A1 (en) 2002-01-08 2011-04-20 Paratek Pharmaceuticals, Inc. 4-dedimethylamino tetracycline compounds
JP2005526754A (ja) 2002-03-08 2005-09-08 パラテック ファーマシューティカルズ インコーポレイテッド アミノメチル置換されたテトラサイクリン化合物
EP1503981A4 (en) 2002-03-21 2007-08-15 Paratek Pharm Innc SUBSTITUTED TETRACYCLINE COMPOUNDS
WO2004006850A2 (en) 2002-07-12 2004-01-22 Paratek Pharmaceuticals, Inc 3, 10, AND 12a SUBSTITUTED TETRACYCLINE COMPOUNDS
US20040092491A1 (en) * 2002-11-09 2004-05-13 The Research Foundation Of State University Of New York Method of treating sepsis-induced ARDS
CA2521885C (en) * 2003-04-07 2013-06-25 Shire Laboratories, Inc. Once daily formulations of tetracyclines
EP1624866A2 (en) * 2003-05-16 2006-02-15 Arriva Pharmaceuticals, Inc. Treatment of respiratory disease by inhalation of synthetic matrix metalloprotease inhibitors
WO2005009943A2 (en) 2003-07-09 2005-02-03 Paratek Pharmaceuticals, Inc. Substituted tetracycline compounds
JP4738333B2 (ja) 2003-07-09 2011-08-03 パラテック ファーマシューティカルズ インコーポレイテッド 9−アミノメチルテトラサイクリン化合物のプロドラッグ
EP2332904A3 (en) * 2004-01-15 2012-04-11 Paratek Pharmaceuticals, Inc. Derivatives of tetracycline compounds
JP2008518025A (ja) 2004-10-25 2008-05-29 パラテック ファーマシューティカルズ インコーポレイテッド 4−アミノテトラサイクリンおよびその使用の方法
WO2006047756A2 (en) 2004-10-25 2006-05-04 Paratek Pharmaceuticals, Inc. Substituted tetracycline compounds
EP1896607A4 (en) * 2005-05-10 2009-12-16 Synergenz Bioscience Ltd METHOD AND COMPOSITIONS FOR THE ASSESSMENT OF LUNG FUNCTION AND RESPIRATORY DISEASE
JP2008545390A (ja) * 2005-05-19 2008-12-18 シナージェンズ バイオサイエンス リミティド 遺伝的多型を用いた肺癌を発達させるリスクの評価方法
WO2006123943A1 (en) * 2005-05-20 2006-11-23 Synergenz Bioscience Limited Methods of analysis of polymorphisms and uses thereof
CA2616224A1 (en) * 2005-07-21 2007-02-01 Paratek Pharmaceuticals, Inc. 10-substituted tetracyclines and methods of use thereof
US8795730B2 (en) * 2006-01-31 2014-08-05 David John Vachon Compositions and methods for promoting the healing of tissue of multicellular organisms
PL2120963T3 (pl) 2006-12-21 2019-05-31 Paratek Pharm Innc Podstawione związki tetracyklinowe do leczenia zaburzeń zapalnych skóry
IL270446B2 (en) * 2006-12-21 2023-10-01 Paratek Pharm Innc A tetracycline compound, a pharmaceutical preparation containing the tetracycline compound, and the tetracycline compound or the pharmaceutical preparation for the treatment of the tetracycline-responsive condition
EP2144870A2 (en) * 2007-04-27 2010-01-20 Paratek Pharmaceuticals, Inc. Methods for synthesizing and purifying aminoalkyl tetracycline compounds
WO2009009042A1 (en) * 2007-07-06 2009-01-15 Paratek Pharmaceuticals, Inc. Methods for synthesizing substituted tetracycline compounds
TWI585071B (zh) 2008-05-19 2017-06-01 派洛泰克藥物股份有限公司 四環素化合物之甲苯磺酸鹽及同素異形體
HUE026562T2 (hu) 2008-08-08 2016-06-28 Tetraphase Pharmaceuticals Inc C7-fluor-helyettesített tetraciklin vegyületek
JP2012501456A (ja) 2008-08-28 2012-01-19 アスチュート メディカル,インコーポレイテッド 腎損傷および腎不全の診断および予後のための方法および組成物
CN102459153A (zh) 2009-05-08 2012-05-16 四相制药公司 四环素类化合物
EP2470500B1 (en) 2009-08-28 2017-10-04 Tetraphase Pharmaceuticals, Inc. Tetracycline compounds
WO2011123536A1 (en) 2010-03-31 2011-10-06 Tetraphase Pharmaceuticals, Inc. Polycyclic tetracycline compounds
TR201902057T4 (tr) 2012-08-31 2019-03-21 Tetraphase Pharmaceuticals Inc Tetrasiklin bileşikleri.
MA46567A (fr) 2016-10-19 2019-08-28 Tetraphase Pharmaceuticals Inc Formes cristallines de l'éravacycline
WO2020097450A1 (en) 2018-11-09 2020-05-14 Tetraphase Pharmaceuticals, Inc. Polymorphic forms of a compound and uses thereof
EP4460313A4 (en) * 2022-01-04 2026-01-14 Univ New York State Res Found CMT-3 FORMULATIONS AND THEIR METHODS OF USE

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4666897A (en) * 1983-12-29 1987-05-19 Research Foundation Of State University Inhibition of mammalian collagenolytic enzymes by tetracyclines
US4935412A (en) * 1983-12-29 1990-06-19 The Research Foundation Of State University Of New York Non-antibacterial tetracycline compositions possessing anti-collagenolytic properties and methods of preparing and using same
US4925833A (en) * 1983-12-29 1990-05-15 The Research Foundation Of State University Of New York Use of tetracycline to enhance bone protein synthesis and/or treatment of osteoporosis
US4704383A (en) * 1983-12-29 1987-11-03 The Research Foundation Of State University Of New York Non-antibacterial tetracycline compositions possessing anti-collagenolytic properties and methods of preparing and using same
USRE34656E (en) * 1983-12-29 1994-07-05 The Research Foundation Of State University Of New York Use of tetracycline to enhance bone protein synthesis and/or treatment of bone deficiency
US5308839A (en) * 1989-12-04 1994-05-03 The Research Foundation Of State University Of New York Composition comprising non-steroidal anti-inflammatory agent tenidap and effectively non-antibacterial tetracycline
JP3016587B2 (ja) * 1989-12-04 2000-03-06 ザ・リサーチ・ファンデーション・オブ・ステート・ユニバーシティ・オブ・ニューヨーク 非ステロイド抗炎症剤及びテトラサイクリンの配合
US5045538A (en) * 1990-06-28 1991-09-03 The Research Foundation Of State University Of New York Inhibition of wasting and protein degradation of mammalian muscle by tetracyclines
US5223248A (en) * 1991-02-11 1993-06-29 The Research Foundation Of State University Of New York Non-antibacterial tetracycline compositions possessing antiplaque properties
US5258371A (en) * 1992-05-29 1993-11-02 Kuraray Co., Ltd. Method to reduce connective tissue destruction
JPH06256280A (ja) * 1992-11-17 1994-09-13 Univ New York State 糖尿病における過度のコラーゲン架橋結合を阻害する非抗菌性化学修飾テトラサイクリンを含むテトラサイクリン
US5523297A (en) * 1993-03-02 1996-06-04 The Research Foundation Of State University Of New York Inhibition of excessive phospholipase A2 activity and/or production by non-antimicrobial tetracyclines
CA2170030A1 (en) * 1993-09-14 1995-03-23 Robert A. Lazarus Pharmaceutical compositions containing ecotin and homologs thereof
US5618792A (en) * 1994-11-21 1997-04-08 Cortech, Inc. Substituted heterocyclic compounds useful as inhibitors of (serine proteases) human neutrophil elastase
GB9502152D0 (en) * 1995-02-03 1995-03-29 Zeneca Ltd Proline derivatives
US5789395A (en) * 1996-08-30 1998-08-04 The Research Foundation Of State University Of New York Method of using tetracycline compounds for inhibition of endogenous nitric oxide production

Also Published As

Publication number Publication date
KR100530683B1 (ko) 2005-11-24
JP2001524948A (ja) 2001-12-04
DE69829748T2 (de) 2006-03-09
EP0975349B1 (en) 2005-04-13
CA2283071A1 (en) 1998-09-17
DE69829748D1 (de) 2005-05-19
ATE292972T1 (de) 2005-04-15
CA2283071C (en) 2009-01-27
EP0975349A4 (en) 2002-10-30
DK0975349T3 (da) 2005-08-01
PT975349E (pt) 2005-08-31
AU6669898A (en) 1998-09-29
KR20000076231A (ko) 2000-12-26
EP0975349A1 (en) 2000-02-02
NZ337578A (en) 2001-08-31
AU733308B2 (en) 2001-05-10
JP4339411B2 (ja) 2009-10-07
WO1998040079A1 (en) 1998-09-17
US5773430A (en) 1998-06-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5773430A (en) Serine proteinase inhibitory activity by hydrophobic tetracycline
US6277061B1 (en) Method of inhibiting membrane-type matrix metalloproteinase
US6759432B2 (en) Medical use of matrix metalloproteinase inhibitors for inhibiting tissue contraction
US5532227A (en) Tetracyclines including non-antimicrobial chemically-modified tetracyclines inhibit excessive glycosylation of different types of collagen and other proteins during diabetes
ES2260912T3 (es) Uso de tetraciclinas para tratar la enfermedad de la glandula meibomiana.
EP3638369B1 (en) Compositions and methods for treatment of netherton syndrome with lekti expressing recombinant microbes
EP0848951B1 (en) Use of acetylcysteine for the manufacture of a medicament for the treatment of chronic ulcers
JP2006508971A (ja) プロテアーゼ阻害剤を使用して炎症性疾患を治療する組成物及び方法
Hurewitz et al. Tetracycline and doxycycline inhibit pleural fluid metalloproteinases: a possible mechanism for chemical pleurodesis
US6949509B2 (en) Pharmaceutical composition containing a small or medium size peptide
FI119543B (fi) Alfa-hydroksihappojen käyttö valmistettaessa lääkettä tulehduksen hoitoon
AU7816400A (en) Pharmaceutical composition for treatment of mucosal epithelial ulceration and/or erosion
KR0163563B1 (ko) 피부질환 치료용 의약조성물
Pukale et al. Synthesis, characterization and topical application of novel bifunctional peptide metallodendrimer
BRPI0615588A2 (pt) uso de um inibidor de aureolisina para o tratamento de condições inflamatórias da pele caracterizadas por colonização com staphylococcus aureus
EP0723782B1 (en) Use of a preparation comprising a plasminogen activator to improve wound healing
Valenta et al. Lysozyme-caffeic acid conjugates: possible novel preservatives for dermal formulations
US7655676B2 (en) Use of amide derivative of GE 2270 factor A3 for the treatment of acne
EP1121935A1 (en) Pharmaceutical composition containing a small or medium size peptide
BRPI0816662B1 (pt) Método in vitro para inibir crescimento de esporo de c. difficile