ES2241850T3 - Tratamiento fotodinamico e irradiacion con uv-b de una suspension de trombocitos. - Google Patents

Tratamiento fotodinamico e irradiacion con uv-b de una suspension de trombocitos.

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ES2241850T3 ES01957701T ES01957701T ES2241850T3 ES 2241850 T3 ES2241850 T3 ES 2241850T3 ES 01957701 T ES01957701 T ES 01957701T ES 01957701 T ES01957701 T ES 01957701T ES 2241850 T3 ES2241850 T3 ES 2241850T3
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Abstract

Procedimiento para el tratamiento de una suspensión de trombocitos que comprende las siguientes etapas: (A) exponer la suspensión a una radiación de un intervalo de longitud de onda de desde 400 hasta 750 nm en presencia de una o varias sustancias fotoactivas, que presentan uno o varios máximos de absorción en el intervalo de longitud de onda, y (B) exponer la suspensión a una radiación de un intervalo de longitud de onda de desde 270 hasta 320 nm con un aporte energético de desde 0, 1 a 10 J/cm2, de modo que - las etapas (A) y (B) pueden aplicarse en la orden primero (A), luego (B) y - en la etapa (B) no está presente ninguna sustancia fotoactiva que presente un máximo de absorción en el intervalo de longitud de onda según la etapa (B).

Description

Tratamiento fotodinámico e irradiación con UV-B de una suspensión de trombocitos.
La invención se refiere a un procedimiento para la inactivación de virus y para la destrucción de leucocitos en suspensiones de trombocitos mediante una combinación de tratamiento fotodinámico e irradiación con UV-B.
Se sabe que el uso terapéutico de preparados sanguíneos entraña el riesgo de que el receptor del preparado sanguíneo se infecte con virus. Deben mencionarse, por ejemplo, los virus de la hepatitis B (VHB) y C (VHC), así como los agentes etiológicos del sida VIH-1 y VIH-2. El riesgo existe siempre que en la fabricación del preparado no se lleva a cabo ninguna etapa de inactivación de virus o eliminación de virus.
En el caso de concentrados de proteínas plasmáticas purificados, como por ejemplo albúmina, preparados de factor VIII y factor IX, se aplican procedimientos para la inactivación de virus o eliminación de virus, de modo que a partir de entonces éstos se consideran seguros en cuanto a los virus. También puede al menos reducirse el riesgo por virus en el plasma fresco usando diferentes métodos. Un método es, por ejemplo, el almacenamiento en cuarentena. Es este caso, el plasma se almacena congelado durante de 3 a 6 meses y sólo se autoriza para su uso cuando se repite el análisis de una nueva muestra de sangre del donante respectivo para determinar los marcadores habituales para VHB, VHC, VIH-1 y VIH-2 y da un resultado negativo. Un método de este tipo no puede aplicarse a productos sanguíneos celulares, como por ejemplo concentrados de eritrocitos y trombocitos, ya que éstos sólo poseen una vida útil de almacenamiento de aproximadamente 7 semanas o 5 días. Los productos sanguíneos celulares tampoco pueden prepararse de manera segura en cuanto a los virus, por razones claras, mediante un tratamiento de disolvente/detergente, como es posible en el caso de concentrados de proteínas plasmáticas y también en el caso del plasma: los eritrocitos y trombocitos se lisarían en este proceso.
Se ha trabajado intensamente para descontaminar productos sanguíneos celulares por medio de un procedimiento fotodinámico. La inactivación fotodinámica de virus se basa en que el preparado respectivo en solución o en suspensión se expone a una sustancia fotoactiva, un fotosensibilizador. La luz irradiada debe presentar una longitud de onda que la sustancia fotoactiva absorba. De esta manera se activa y se transmite esta energía de activación, o bien directamente sobre un sustrato, que mediante esto se destruye o queda dañado, o bien sobre moléculas de oxígeno: especies de oxígeno activadas, es decir, los radicales de oxígeno u oxígeno singlete, tienen una fuerte acción virucida. En el caso favorable, la sustancia fotoactiva utilizada posee una gran afinidad por los constituyentes víricos, por ejemplo, por ácidos nucleicos víricos y sólo una pequeña afinidad por otros componentes que están contenidos en el preparado respectivo. Así, se inactivan los virus y no se alteran otros componentes. Actualmente, solamente encuentra una aplicación más amplia un procedimiento fotodinámico según la patente europea 0 491 757-B1 (H. Mohr y B. Lambrecht, Procedimiento para la inactivación de virus en sangre y productos sanguíneos). Se utiliza para la inactivación de virus en el plasma fresco. En la aplicación técnica sirve como sustancia fotoactiva sobre todo el colorante de fenotiazina, azul de metileno. En lugar de azul de metileno también puede utilizarse azul de toluidina. También los productos de desmetilación del azul de metileno, es decir, los colorantes de azur A, B y C, así como tionina, son fotodinámicamente activos y adecuados para la inactivación fotodinámica de virus.
La patente de EE.UU. 5.545.516 (S. J. Wagner: Inactivación de virus con envoltura extracelulares en sangre y componentes sanguíneos por colorantes de 5-fentiazinio más luz) describe la inactivación de virus extracelulares con ayuda de colorantes de fenotiazina en combinación con luz visible. Según el documento US 5.545.516, los preparados quedan libres de leucocitos antes del tratamiento fotodinámico por medio de filtros especiales, ya que el método de inactivación de virus no considera ningún virus o provirus asociado a células. El método tampoco puede inactivar a los pequeños virus sin envoltura presentes en la sangre, como por ejemplo virus de la hepatitis A (VHA). Por el contrario, los virus libres que poseen envolturas lipídicas, como por ejemplo el agente etiológico del sida VIH-1 y los virus de las hepatitis B y C (VHB, VHC), no pueden inactivarse según este procedimiento. A partir de los documentos WO 00/04930 y WO 96/08965 también se conocen procedimientos para la inactivación de patógenos en muestras biológicas que utilizan sustancias fotoactivas, que se absorben, entre otros, en el intervalo de UV-A y se activan con radiación en el intervalo de longitud de onda de desde el UV-A hasta el intervalo visible.
Los leucocitos en productos sanguíneos pueden destruirse por medio de irradiación con UV-B. En el caso de suspensiones de trombocitos, ha demostrado ser útil para esto la irradiación con UV-B (intervalo de longitud de onda de 290-320 nm), ya que normalmente para la reducción del número de leucocitos es suficiente un aporte energético de desde 1 hasta 3 J/cm^{2}, que no afecta todavía mucho a los trombocitos, de modo que siguen siendo terapéuticamente útiles. Un aporte de energía mediante irradiación con UV-B superior a 10 J/cm^{2} actúa además de forma virucida (K.N. Prodoux; J.C. Fratanoni, E.J. Boone y R.F. Bonner en Blood, 70(2), 589-592 (1987): Use of Laser-UV for inactivation of virus in blood products. No obstante, de esta manera se dañan trombocitos, de modo que debe cuestionarse su aplicabilidad (J.C. Fratanoni y K.N. Prodoux en Transfusion 30(6); 480-481 (1990); Viral inactivation of blood products).
Por tanto, el objetivo de la invención es poner a disposición un método eficaz para la inactivación de virus patogénicos humanos y de leucocitos en suspensiones de trombocitos, especialmente en concentrados de trombocitos (CT). Los CT se obtienen de donaciones de sangre mediante centrifugación diferencial o directamente de donantes mediante aféresis automática de trombocitos.
Se encontró de manera sorprendente que la combinación de tratamiento fotodinámico con una irradiación con UV-B en suspensiones de trombocitos o CT es eficaz contra los virus a los que se puede llegar con la inactivación fotodinámica, y simultáneamente consigue destruir los leucocitos contenidos en los medios y por tanto, eliminar el riesgo de infección mediante virus o provirus asociados a células. Además, se encontró de manera sorprendente que mediante la combinación de los métodos, la cantidad necesaria para destruir los leucocitos puede ser significativamente menor en cuanto a radiación UV-B que en el caso de solamente irradiación con UV-B. Igualmente fue sorprendente que el tratamiento adicional de las suspensiones de trombocitos con UV-B con una intensidad que, por sí sola, es casi ineficaz en la inactivación de virus, aumenta claramente la eficacia del tratamiento fotodinámico.
El procedimiento según la invención para el tratamiento de una suspensión de trombocitos se caracteriza por:
(A) exponer la suspensión a una radiación de un intervalo de longitud de onda de desde 400 hasta 750 nm, preferiblemente de 550 a 700 nm, en presencia de una o varias sustancias fotoactivas que presentan uno o varios máximos de absorción en el intervalo de longitud de onda, y
(B) exponer la suspensión a una radiación de un intervalo de longitud de onda de desde 270 hasta 320 nm, preferiblemente de 290 a 320 nm, con un aporte energético de desde 0,1 a 10 J/cm^{2}. de modo que en la etapa (B) no está presente ninguna sustancia que pueda fotoactivarse en el intervalo de longitud de onda según la etapa (B) y las etapas (A) y (B) pueden aplicarse en el orden primero (A), luego (B). Las formas de realización preferidas son objeto de las reivindicaciones dependientes.
La suspensión de trombocitos presenta preferiblemente una concentración de más de 5x10^{8} trombocitos por ml, de manera especialmente preferida más de 10^{9}/ml. Los trombocitos pueden suspenderse, por ejemplo, en plasma o en un medio de almacenamiento de trombocitos con un contenido en plasma cualquiera.
La etapa A incluye un tratamiento fotodinámico de la suspensión de trombocitos en presencia de una sustancia fotoactiva con luz visible; la etapa B incluye la irradiación del preparado (la suspensión que contiene trombocitos) con luz en un intervalo de longitud de onda de UV-B. En el sentido de la invención, se considera como intervalo de UV-B de la irradiación el intervalo de longitud de onda de 270 nm a 330 nm.
La concentración de la sustancia fotoactiva y el aporte energético mediante la exposición a la luz y la irradiación con UV-B se miden de tal manera que finalmente se inactivan los virus presentes y se destruyen los leucocitos contenidos en las suspensiones de trombocitos, pero se conserva la funcionalidad de los trombocitos.
Como recipientes para el tratamiento de las suspensiones de trombocitos sirven recipientes transparentes a UV-B, que consisten preferiblemente en plástico y pueden tener, por ejemplo, la forma de bolsas. También es posible llevar a cabo el tratamiento fotodinámico y con UV-B en diferentes recipientes.
También es posible llevar a cabo el tratamiento con UV-B de las suspensiones de trombocitos durante el transvase de las suspensiones de trombocitos de un recipiente a otro.
Como sustancias fotoactivas pueden utilizarse por ejemplo los colorantes de fenotiazina, azul de metileno, azur A, B, C y tionina. Igualmente pueden utilizarse de manera ventajosa otras sustancias fotoactivas, por ejemplo, en las concentraciones conocidas a partir de la literatura para la inactivación de virus en productos sanguíneos. En el caso de colorantes de fenotiazina como tionina, el intervalo concentración posible está entre aproximadamente 0,1 y 10 \muM, preferiblemente entre aproximadamente 0,5 y 5 \muM o 1 y 5 \muM.
Como fuente luminosa para el tratamiento fotodinámico, especialmente en el uso de tionina, sirven preferiblemente las lámparas de vapor de sodio a baja presión, cuyo máximo de emisión luminosa se encuentra en 590 nm. Esto se corresponde aproximadamente con el máximo de absorción de la tionina, que en solución acuosa es de aproximadamente 595 nm. Pero también son posibles otras fuentes luminosas, especialmente cuando se utiliza una sustancia fotoactiva que absorbe luz en otro intervalo de longitud de onda, como por ejemplo la tionina.
Para la irradiación con UV-B pueden utilizarse tubos, lámparas o láser especiales, que emiten luz ultravioleta en el intervalo de longitud de onda de entre aproximadamente 270 - 330 nm. El aporte energético mediante el tratamiento con UV-B puede estar entre 0,1 y 10 J/cm^{2}, preferiblemente entre 0,3 y 6 J/cm^{2}, de manera especialmente preferida entre 0,5 y 3 J/cm^{2}.
Ejemplos experimentales 1. General
Los experimentos descritos a continuación se llevaron a cabo con CT que se aislaron a partir de donaciones de sangre individuales y estaban suspendidos en plasma sanguíneo. Como sustancia fotoactiva se utilizó tionina (Th). Pero también pueden obtenerse resultados similares con otras sustancias fotoactivas, por ejemplo con los colorantes de fenotiazina, azul de metileno y sus derivados de azur A, B y C. La invención solamente se aclara mediante los ejemplos experimentales, pero no se limita en su alcance.
2. Materiales y métodos
Los CT utilizados en los experimentos se almacenaron en aparatos de rotación de trombocitos durante un máximo de 5 días. Los recipientes de almacenamiento eran bolsas de PVC que pueden obtenerse comercialmente. Para el tratamiento fotodinámico y con UV-B se transvasaron los CT a bolsas de plástico de poliolefina, cuyo material laminado es transparente para UV-B. Para la exposición a la luz en presencia de tionina se utilizó una instalación que está equipada con lámparas de vapor de sodio a baja presión. Los CT se expusieron a la luz por ambos lados. Para la irradiación con UV-B se utilizó un proyector plano que estaba dotado de tubos UV, que emitían principalmente luz UV en el intervalo de longitud de onda entre 290 y 320 nm.
Como virus de prueba se utilizó generalmente el virus de la estomatitis vesicular (VEV), que se propaga rápidamente en el cultivo celular y a consecuencia de esto también puede cuantificarse en ensayos de ECP (ECP = efecto citopático). En el experimento 1 se utilizó además una serie de otros virus. El VEV se propagó en células Vero. Las mismas células se utilizaron también para los ensayos de infectividad, con los que se determinó el título de virus. El medio de cultivo celular utilizado era RPMI 1640 con 10% de suero bovino fetal y antibióticos. Los ensayos se llevaron a cabo en placas de microtitulación. Las muestras respectivas se diluyeron de 1 a 3 veces. Se analizaron 8 replicados por dilución. Los títulos de virus se expresan como log_{10}TCID_{50} (TCID = "Tissue Culture Infective Doses" (dosis infectante en cultivo celular)) y se calcularon de manera correspondiente a las normas de Kärber y Spearman (G. Kärber en Naunym-Schmiedebers Arch. Exp. Pathol. Pharmakol. 162, 480-483 (1931): Beitrag zur kollektiven Behandlung pharmakologischer Reihenversuche; C. Spearman in Br.J.Psychol. 2, 277-282 (1908): The method of "right and wrong cases" ("constant stimuli") without Gauss formulae).
Como pruebas de función para los trombocitos se utilizaron la reacción de colapso hipotónico y la agregación inducida por colágeno.
Las células mononucleares se aislaron por medio de centrifugación en gradiente de densidad a partir de sangre de donantes. En el caso de los experimentos respectivos, éstas se añadieron en una concentración de 5 x 10^{5}/ml a las suspensiones de trombocitos. Después del tratamiento fotodinámico o irradiación con UV-B, se centrifugaron alícuotas de las suspensiones a bajo número de revoluciones (1500 rpm durante 4 min.). Las células sedimentadas se lavaron tres veces con medio de cultivo celular (RPMI 1640 con 10% de suero bovino fetal y antibióticos) y entonces se suspendieron de nuevo en el mismo medio. La concentración de células se ajustó a 5x10^{5}/ml. Para el ensayo de proliferación, las células se estimularon con concanavalina A (ConA, 2 \mug/ml) y se cultivaron en alícuotas de 200 \mul durante 3 - 4 días a 37ºC en un incubador con inyección de CO_{2}. Entonces se añadieron los cultivos celulares. Cuatro horas más tarde se determinó la tasa de incorporación de BRDU (BRDU = bromo-desoxiuridina) con un espectrofotómetro a una longitud de onda de 450 nm (DO_{450}). Los valores de extinción son proporcionales a la incorporación de BRDU y por tanto a la viabilidad de las células.
Experimento 1
Inactivación de virus en CT mediante tratamiento con tionina/luz
A continuación se investigó en una serie de virus si podían inactivarse mediante el tratamiento con tionina/luz y en qué medida. La concentración de la sustancia fotoactiva era de 1 \muM. Como muestran los resultados recogidos en la tabla 1, distintos virus demuestran distinta sensibilidad: así, los virus del modelo para el virus de la hepatitis C humana, VDVB y VPPC, así como el togavirus SFV, se inactivaron completamente después de 5 minutos de exposición a la luz, mientras que la infectividad del VEV y del SV-40 todavía no se habían eliminado completamente después de 30 minutos.
Experimento 2
Inactivación de VEV en CT mediante irradiación con UV-B
Como se deduce de la tabla 2, el VEV es muy resistente a la irradiación con UV-B. Incluso después de 60 min. o de un aporte energético de aproximadamente 20 J/cm^{2}, el virus todavía no se había inactivado completamente. A partir de aproximadamente 10 min. o 3 J/cm^{2}, la irradiación con UV-B repercute, por el contrario, de manera negativa sobre las funciones y la capacidad de conservación de los trombocitos (no mostrado).
TABLA 1 Inactivación fotodinámica de virus en CT mediante tratamiento con tionina/luz. VEV = virus de la estomatitis vesicular; VPPC = virus de la peste porcina clásica; VDVB = virus de la diarrea vírica bovina; SFV = virus del bosque de Semliki; VIH-1 = virus de la inmunodeficiencia humana, tipo 1; VHS-1 = virus del herpes simple, tipo 1; SV-40 = virus de los simios 40; ARNss = cadena de cadena sencilla; ADNds = ADN de cadena doble, * Reducción de títulos de virus en log_{10}TCID_{50}
6
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 2 Inactivación de VEV en concentrados de trombocitos mediante irradiación con UV-B
1
Experimento 3
Inactivación de VEV en CT mediante la combinación tionina/luz e irradiación con UV-B
En estos experimentos, la concentración de tionina era de nuevo 1 \muM y el tiempo de exposición a la luz de 30 min. El aporte energético mediante radiación UV-B era de 2,4 J/cm^{2} (tiempo de irradiación: 8 min). Mediante el tratamiento fotodinámico solo se redujo la infectividad a aproximadamente 4 o 4,42 log_{10}, mediante radiación UV-B sola a 1,97 o 2,21 log_{10}. En la combinación, en el primer experimento se eliminó completamente la infectividad (\geq 7,04 log_{10}), en el segundo se redujo a aproximadamente 6,26 log_{10} (tabla 3).
TABLA 3 Inactivación de VEV en CT mediante tionina/luz, UV-B y la combinación de ambas etapas de trabajo
2
Experimento 4
Influencia del tratamiento con tionina/luz en combinación con UV-B sobre las funciones de los trombocitos
Como muestran las tablas 4 y 5, tanto la HSR (reacción de colapso hipotónico) como también la agregación inducida por colágeno de los CT no están esencialmente influenciados de manera más notable mediante el tratamiento combinado con tionina/luz y UV-B (condiciones de los experimentos: véase experimento 3) que mediante el tratamiento fotodinámico solo.
TABLA 4 Influencia del tratamiento de suspensiones de trombocitos con tionina/luz \pm UV-B en la HSR (expresado en %), medida el día 1 y el día 3 después del tratamiento
3
TABLA 5 Influencia del tratamiento de suspensiones de trombocitos con tionina/luz \pm UVB en la agregación inducida por colágeno (expresado en %), medida el día 1 y el día 3 después del tratamiento
4
Experimento 5
Inactivación de linfocitos T en CT mediante UV-B; influencia de tionina/luz
Se añadieron células mononucleares al CT en una concentración de 5x10^{5}/ml; después se irradiaron durante distintos tiempos con UV-B o se trataron sólo o adicionalmente con tionina/luz (concentración de colorante: 2 \muM; duración de la exposición a la luz: 30 min.). Como muestran los resultados recogidos en la tabla 6, para la inactivación total de las células se necesitó un tiempo de irradiación de al menos 4 min. (1,2 J/cm^{2}). Cuando los CT se trataron adicionalmente con tionina/ luz, pudo acortarse a aproximadamente 3 min., aunque la tionina/luz sola no tuvo ninguna influencia en la proliferación de las células.
TABLA 6 Inactivación de linfocitos T en concentrados de trombocitos mediante irradiación con UV-B. Aumento del efecto mediante el tratamiento previo con Th/luz durante 30 min. Las células se estimularon con ConA después de la irradiación o del tratamiento con Th/luz. Los valores de la DO_{450 \ nm} son valores medios a partir de tres determinaciones. Representan la tasa de incorporación de BRDU en las células después de un tiempo de cultivo de 3 días
5

Claims (12)

1. Procedimiento para el tratamiento de una suspensión de trombocitos que comprende las siguientes etapas:
(A) exponer la suspensión a una radiación de un intervalo de longitud de onda de desde 400 hasta 750 nm en presencia de una o varias sustancias fotoactivas, que presentan uno o varios máximos de absorción en el intervalo de longitud de onda, y
(B) exponer la suspensión a una radiación de un intervalo de longitud de onda de desde 270 hasta 320 nm con un aporte energético de desde 0,1 a 10 J/cm^{2},
de modo que
-
las etapas (A) y (B) pueden aplicarse en la orden primero (A), luego (B) y
-
en la etapa (B) no está presente ninguna sustancia fotoactiva que presente un máximo de absorción en el intervalo de longitud de onda según la etapa (B).
2. Procedimiento según la reivindicación 1, caracterizado porque la sustancia fotoactiva es un colorante de fenotiazina.
3. Procedimiento según la reivindicación 2, caracterizado porque como colorante de fenotiazina se utilizan tionina, azul de metileno, azul de toluidina y/o los colorantes de azur A, B y C.
4. Procedimiento según una de las reivindicaciones 2 o 3, caracterizado porque la sustancia fotoactiva se utiliza en la etapa (A) en una concentración de desde 0,5 hasta 10 \muM, preferiblemente de 0,5 a 5 \muM.
5. Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque la intensidad de la radiación en la etapa (B) se mide de tal manera que la capacidad de proliferación de los linfocitos T que están contenidos en los concentrados de trombocitos se reduce en aproximadamente al menos el 50%, preferiblemente en aproximadamente más del 75%.
6. Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque en la etapa (B) el aporte energético es de 0,5 a 3 J/cm^{2}.
7. Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque en la etapa (B) la suspensión se expone a una radiación de un intervalo de longitud de onda de desde 290 hasta 320 nm.
8. Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque las suspensiones de trombocitos son concentrados de trombocitos.
9. Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque las suspensiones de trombocitos o concentrados de trombocitos se obtienen a partir de donaciones de sangre o mediante aféresis de trombocitos.
10. Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque el tratamiento de la suspensión según la etapa (A) y/o etapa (B) tiene lugar en recipientes de plástico transparentes para la respectiva radiación.
11. Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque el tratamiento de la suspensión según la etapa (A) y/o etapa (B) tiene lugar en una aparato de circulación transparente para la respectiva radiación.
12. Procedimiento según una de las reivindicaciones anteriores, caracterizado porque la concentración de virus de la suspensión diminuye en aproximadamente al menos 5, preferiblemente aproximadamente en al menos 6 en escala de log_{10}.
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