ES2279650T3 - Dispositivo de entrega para una composicion de una sustancia farmaceuticamente activa. - Google Patents

Dispositivo de entrega para una composicion de una sustancia farmaceuticamente activa. Download PDF

Info

Publication number
ES2279650T3
ES2279650T3 ES99971718T ES99971718T ES2279650T3 ES 2279650 T3 ES2279650 T3 ES 2279650T3 ES 99971718 T ES99971718 T ES 99971718T ES 99971718 T ES99971718 T ES 99971718T ES 2279650 T3 ES2279650 T3 ES 2279650T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
nasal
sleeve
delivery device
delivery
section
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES99971718T
Other languages
English (en)
Inventor
Reinhard Gluck
Ulrich Gluck
Andre Collioud
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Cilag GmbH International
Original Assignee
Berna Biotech AG
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=7886959&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=ES2279650(T3) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Berna Biotech AG filed Critical Berna Biotech AG
Application granted granted Critical
Publication of ES2279650T3 publication Critical patent/ES2279650T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/145Orthomyxoviridae, e.g. influenza virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/025Enterobacteriales, e.g. Enterobacter
    • A61K39/0258Escherichia
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/39Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the immunostimulating additives, e.g. chemical adjuvants
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P11/00Drugs for disorders of the respiratory system
    • A61P11/02Nasal agents, e.g. decongestants
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P27/00Drugs for disorders of the senses
    • A61P27/16Otologicals
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/14Antivirals for RNA viruses
    • A61P31/16Antivirals for RNA viruses for influenza or rhinoviruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525Virus
    • A61K2039/5258Virus-like particles
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/53DNA (RNA) vaccination
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/54Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the route of administration
    • A61K2039/541Mucosal route
    • A61K2039/543Mucosal route intranasal
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/555Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by a specific combination antigen/adjuvant
    • A61K2039/55511Organic adjuvants
    • A61K2039/55544Bacterial toxins
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/70Multivalent vaccine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2730/00Reverse transcribing DNA viruses
    • C12N2730/00011Details
    • C12N2730/10011Hepadnaviridae
    • C12N2730/10111Orthohepadnavirus, e.g. hepatitis B virus
    • C12N2730/10134Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2760/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
    • C12N2760/00011Details
    • C12N2760/16011Orthomyxoviridae
    • C12N2760/16111Influenzavirus A, i.e. influenza A virus
    • C12N2760/16134Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2760/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
    • C12N2760/00011Details
    • C12N2760/16011Orthomyxoviridae
    • C12N2760/16211Influenzavirus B, i.e. influenza B virus
    • C12N2760/16234Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2760/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
    • C12N2760/00011Details
    • C12N2760/18011Paramyxoviridae
    • C12N2760/18711Rubulavirus, e.g. mumps virus, parainfluenza 2,4
    • C12N2760/18734Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Otolaryngology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

Manguito (24) con un dispositivo de unión (28) para la disposición de un dispositivo de entrega (2), en especial para la entrega por atomización de una sustancia farmacéuticamente activa, y un dispositivo de apoyo (30), estando el dispositivo de unión (28) y el dispositivo de apoyo (30) dispuestos de manera que juntos definen un ángulo de atomización óptimo (a) para la entrega de la sustancia desde el dispositivo de entrega, estando el dispositivo de apoyo (30) en el lado del usuario, curvado de manera que esencialmente corresponde a la forma de una sección exterior del labio superior de un usuario, y teniendo el ángulo de atomización (a) un valor entre 50º y 80º con respecto a la horizontal).

Description

Dispositivo de entrega para una composición de una sustancia farmacéuticamente activa.
La presente solicitud se refiere a composiciones de una sustancia farmacéuticamente activa, en especial antígenos, que están mezcladas con un adyuvante mucosal y que pueden aplicarse sobre la mucosa nasal mediante un dispositivo de entrega configurado como aplicador de spray (atomizador), de modo tal que puede obtenerse una eficacia no lograda hasta ahora.
En especial, la solicitud describe una vacuna para aplicación intranasal, consistente en:
(a) proteínas de superficie de influenza, que están formuladas con liposomas (virosomas);
(b) adyuvante mucosal de procedencia bacteriana;
(c) aplicador específico de spray, que está construido de manera tal que casi el 100% del impacto del spray puede aplicarse por completo sobre la mucosa nasal, importante para la eficacia.
Los antígenos son preferentemente glicoproteínas de superficie de influenza, que están formuladas con liposomas (denominados virosomas). Estos virosomas se mezclan con un adyuvante mucosal, que es de procedencia bacteriana. Idealmente, proviene de la clase de las toxinas activas o inactivas, tales como HLT (Heat Labile Toxin, Toxina Térmicamente Inestable), coleratoxina (CT) o procoleragenoide (PCG). El aplicador nasal de spray está construido de manera tal que la sustancia activa puede aplicarse sustancialmente sin desperdicio sobre la mucosa nasal. La fórmula sobre la cual se basa la invención puede utilizarse para diversas indicaciones médicas, tales como vacunación contra gripe u otras enfermedades infecciosas, así como para el tratamiento terapéutico de nariz obstruida, de restitución de mucosa nasal dañada o en términos generales de enfermedades localizadas en las mucosas.
Diversos autores han descrito la acción inmunoestimulante de los liposomas (membranas artificiales) (Gregoriadis, G.: Immunological adjuvants: A role for liposomes, Immunol. Today 11 (1990) 89-97). Esta acción inmunoestimulante se logra acoplando los antígenos sobre las superficies de los liposomas (Glück R, Mischler R, Finkel B, Que JU, Scarpa B, Cryz SJ Jr: Immunogenicity of new virosome influenza vaccine in the elderly people. Lancet 344 (1994) 160-163), encerrándolos en el interior de los liposomas (Gregoriadis G, Davis D, Davis A: Liposomes as immunological adjuvants: Antigen incorporation studies. Vaccine 5 (1987) 145-151) o mezclándolos con liposomas solamente (De Haan A, Geerligs HJ, Huckshorn JP, Van Scharrenburg GJM, Palache AM, Wilschut J: Mucosal Immunoadjuvant activity of liposomes: induction of systemic IgG and secretory IgA responses in mice by intranasal immunization with an influenza subunit vaccine and coadministered liposomes. Vaccine 13 (1995) 613-616). Se observó una acción inmunoestimulante adicional cuando se "clavaron" tales liposomas con glicoproteínas transmembranales y fusógenas (por ejemplo, glicoproteínas de influenza (Glück, R., Mischler, R., Brantschen, S., Just. M., Althaus, B., Cryz, S. J., Jr.: Immunopotentiating reconstituted influenza virosome (IRIV) vaccine delivery system for immunization against hepatitis A.J. Invest. 90 (1992) 2491-2495), o sendaiglicoproteínas (Gould-Fogerite, S., Mazurkiewicz, J.E. Bhisitkui, D., Mannino, R.J.: The reconstitution of biologically active glycoproteins into large liposomes. Use as a delivery vehicle to animal cells. En: C.H. Kim, J. Diwan, H. Tedeschi y J. J. Salerno (Editores), Advances in Membrane Biochemistry and Bioenergetics, Plenum Publishing Corp., Nueva York (1987), página 569).
Sin embargo, hasta ahora se ha descrito esta acción por lo general después de aplicación parenteral (i.m., s.c. o i.p.). No obstante ello, algunos autores han descubierto que tales formulaciones pueden administrarse exitosamente con métodos convencionales (gotero o spray nasal convencional). Empero, los resultados se refieren casi exclusivamente a experimentos con animales de laboratorio, generalmente ratones, que en relación con su peso corporal poseen una mucosa nasal mucho mas grande en comparación con el ser humano. Además, la cantidad de antígeno administrada era tan elevada, que sólo por razones económicas como también de seguridad del producto no cabía considerar una aplicación en seres humanos. También pudo demostrarse que en caso de una dosificación razonable del antígeno (influenza), a pesar de una formulación liposomal y de una correcta aplicación nasal, no podía lograrse una acción satisfactoria.
Por ello otros autores intentaron desarrollar una vacuna aplicable nasalmente eficaz mediante la mezcladura del antígeno con un adyuvante mucosal de origen bacteriano en lugar de la formulación liposomal. En este caso se utilizaron en especial HLT, CT o derivados no tóxicos de HLT o de CT (Elson CO, Ealding W: Generalized systemic and mucosal immunity in mice after mucosal stimulation with cholera toxin, J. Immunol. 132 (1984) 2736-2741).
Los resultados en la bibliografía mostraban de hecho acciones muy prometedoras después de aplicación nasal, las cuales, nuevamente, se lograban especialmente en animales de laboratorio. Sin embargo, unos pocos ensayos clínicos en seres humanos confirmaron una determinada eficacia (Tamura S-J, Ishikira K, Miyata K, Aizawa C, Kurata T: Mechanism of enhancement of the immune responses to influenza vaccine with cholera toxin B subunit and a trace amount of holotoxin. Vaccine 13 (1995) 339-341). Pero nuevamente, las cantidades de antígeno y de adyuvante a utilizarse eran muy elevadas, lo cual a su vez dejaba pendiente reservas en cuanto a la seguridad del producto y la posibilidad de su comercialización.
\newpage
Otras desventajas de los experimentos descritos hasta aquí para el desarrollo de una vacuna aplicable por vía nasal, eficaz desde el punto de vista preventivo o terapéutico, son los sistemas aplicadores insuficientes actualmente disponibles.
En la actualidad existen sprays nasales como aplicadores de una sola dosis, de dos dosis o de múltiples dosis. Las investigaciones y exámenes exhaustivos de los sprays nasales de hasta ahora mediante aplicación de colorantes (azul de metileno) y endoscopía nasal han dado como resultado que a lo sumo el 25% de la sustancia a atomizarse (vacuna, solución farmacéutica) llega a la membrana mucosa del sistema inmunológico, asociado con la mucosa, de los turbinales.
La mucosa del sistema inmunológico asociada con la mucosa se encuentra en la fosa nasal en el tabique lateral de la nariz en la zona de los turbinales (conchas nasales), como se muestra por ejemplo en la Figura 1, que representa los turbinales humanas y los turbinales de un corzo. Nuestras investigaciones han dado como resultado que con los sprays nasales de hasta ahora, debido a considerables pérdidas en el vestíbulo nasal (véase la Figura 2), como también en el tabique nasal, solamente llega una cantidad insuficiente de la sustancia farmacéuticamente activa a las fosas principales de la nariz. Estas estructuras nasales están revestidas de epitelio de placa y de glándulas sebáceas, inmunológicamente inactivas (Walter Becker, Hans Heinz Naumann, Carl Rudolf Pfaltz: Hals-Nasen-Ohren-Heilkunde, Thieme Verlag, Stuttgart, Nueva York 1992).
El documento US 5.797.390 divulga un aplicador de spray nasal con una parte removible. La parte removible está dimensionada y conformada de manera tal que calza exactamente en las ventanas nasales (de un ser humano o de un animal); en este caso, un extremo proximal de la parte removible se extiende preferentemente hacia fuera, a efectos de impedir que el usuario introduzca la pieza removible a una profundidad excesiva en el orificio nasal.
El documento FR 2 739 294 describe un dispositivo de entrega con un manguito. Sin embargo, el manguito tiene por finalidad limitar intencionalmente la longitud de la sección del dispositivo de entrega que penetra en el orificio nasal, a efectos de prevenir una lesión de la mucosa nasal por el dispositivo de entrega.
El documento US 2.434.875 divulga un dispositivo de atomización para la administración nasal de medicamentos, para lo cual se atomiza una cantidad medida de medicamento en forma de un delgado chorro, usualmente en forma de aguja, en el conducto nasal.
El documento EP-A-0 170 198 describe un dispensador para la aplicación intranasal de soluciones de sustancias activas, que está conformado de modo tal que el usuario inclina necesariamente la cabeza hacia atrás y de esta manera adopta la posición de la cabeza deseada desde el punto de vista médico.
El documento WO 98/57690 divulga un aplicador de spray nasal, que contiene un manguito, que al ser accionado se introduce por lo menos en parte en un orificio nasal. El aplicador de spray nasal puede también presentar una pieza de unión que puede insertarse en el aplicador de spray nasal en una orientación definida, así como un dispositivo de apoyo, que garantiza una orientación controlada del aplicador durante la utilización.
Las causas de la incapacidad de los aplicadores nasales de hasta ahora de atomizar una dosis suficiente sobre la membrana mucosa respiratoria (lugar de defensa específico y no específico), son de diversos tipos:
(1) a causa de insuficientes conocimientos anatómicos, el vector principal del chorro de atomización se orienta en una dirección errónea durante la aplicación del spray. Con ello la sustancia farmacéuticamente activa llega apenas a la cavidad principal de la nariz. El líquido atomizado fluye en parte sobre el labio superior hacia abajo.
(2) el diámetro del inserto de atomización junto a la parte de nariz no está adaptado a las circunstancias anatómicas. El orificio nasal interno tiene por naturaleza una forma de hendidura y tiene la función de una boquilla (véase la Figura 2). Las piezas nasales, usualmente anchas, no están en condiciones de superar este estrecho anatómico. Durante la atomización en la luz de la nariz (lumen nasi) llega a las cavidades principales de la nariz solamente aquel sector del cono de atomización que corresponde al ancho de la luz de la nariz.
(3) hasta ahora, el ángulo de atomización óptimo no se ha sondeado de manera científica. En el caso de los aplicadores de spray convencionales, el mismo varía arbitrariamente entre 30º y 80º con respecto a la horizontal en caso de mantenerse la cabeza en posición normal, o con respecto a una normal al eje longitudinal del cuerpo de un ser humano. Con esto se explican también las considerables pérdidas, a saber de hasta 90% del volumen aplicado. Nuestras investigaciones sistemáticas han demostrado que el ángulo de atomización óptimo está entre 50 y 80ºC.
(4) los sprays nasales convencionales tienen una pieza nasal demasiado corta. La distancia del manguito para los dedos hasta la abertura de atomización es demasiado corta. Con los sprays de hasta ahora no se llega ni siquiera al interior del orificio de la nariz. La pieza nasal debería tener por lo menos 0,7 cm de longitud adicional; en especial, se prefiere especialmente que la pieza nasal presente una longitud de 1 a 1,5 cm.
Por ello, la presente invención tiene la misión poner a disposición un dispositivo de entrega mejorado, así como un manguito con un dispositivo de unión para su disposición en el dispositivo de entrega, en especial para la prevención y tratamiento de enfermedades infecciosas. Esta misión se logra gracias a las características de reivindicaciones.
La composición más eficaz para la acción preventiva y terapéutica consiste en la fórmula con el efecto, sorprendentemente coestimulante, de liposomas mezclados con un adyuvante mucosal y aplicado con un nuevo dispositivo de entrega, o con un nuevo spray nasal.
Por consiguiente, el complejo de la invención consiste en los componentes siguientes:
(a) una sustancia activa (antígeno);
(b) una mezcla ponderada de liposomas y de adyuvante mucosal; y
(c) un nuevo aparato médico, a saber un dispositivo de entrega específico o spray nasal.
\vskip1.000000\baselineskip
En especial, se describen vacunas para la aplicación intranasal, consistentes en:
(a) proteínas de superficie de influenza, que están formuladas con liposomas (virosomas):
(b) adyuvante mucosal de origen bacteriano; y
(c) aplicador específico de spray, que está diseñado de manera tal que casi el 100% del impacto de spray puede aplicarse sin desperdicio sobre la mucosa nasal, importante para la eficacia.
Por ello, la sustancia activa se refiere a antígenos, en especial a glicoproteínas de influenza, las cuales, debido a sus dominios transmembranales, pueden incorporarse fácilmente en membranas artificiales (liposomas). Sin embargo, es también fácil acoplar otros antígenos, solos o en combinación, con los antígenos de influenza sobre la superficie de los liposomas. El acoplamiento tiene lugar en función de la naturaleza química de los antígenos, de manera espontánea o mediante una molécula química de reticulación, como ya se había descrito con anterioridad (Martin FJ, Papahadiopoulos D: Irreversible coupling of immunoglobulin fragments to preformed vesicles, J. Biol. Chem. 257 (1982) 286-288). También puede tratarse de un SDN-plásmido o de un SRN -plásmido, que codifica un antígeno y que puede incluirse en los liposomas.
En el sentido de la presente invención, el término "antígeno" abarca tanto moléculas completas como también fragmentos de estas moléculas, que tienen propiedades antígenas y/o que pueden emplearse para la inmunización. Además, el término "antígeno" abarca moléculas y/o fragmentos de moléculas, que son inmunoestimulantes.
La proteína de superficie de influenza empleada en la vacuna conforme a la invención abarca preferentemente hemaglutinina (HA). Además, la proteína de superficie de influenza puede abarcar hemaglutinina (HA) en compuesto/combinación con neuraminidasa (NA).
En una forma de realización especial, la invención se refiere a una vacuna que contiene otros antígenos. En especial, los otros antígenos pueden estar unidos a la superficie de los virosomas.
En otra forma de realización preferida, la solicitud se refiere a vacunas conformes a la invención, que además del antígeno consistente en proteína(s) de superficie de influenza contienen otros antígenos, preferentemente de organismos patógenos. En este caso, el organismo patógeno puede ser un virus, una bacteria, un hongo o un parásito. Estos organismos abarcan diversos agentes patógenos como, por ejemplo, virus de hepatitis A, virus de hepatitis B, virus sincitial respiratorio (neumovirus), virus de parainfluenza, virus de paperas, mobillivirus, VIH, bacteria de difteria (Corynebacterium diphtheriae), bacilo de tétanos (Costridium tetani), neumococos, Haemophilus influenzae, E. coli, Candida albicans, Candida tropicalis, Candida pseudotropicalis, Candida parapsilosis, Candida krusei, especies de Aspergillus, especies de Tricomonas, especies de Tripanosoma, especies de Leishmania, Toxoplasma gondii, Plasmodium faliciparum, Plasmodium vivax, Plasmodium ovale, Plasmodium malariae, especies de trematodos y especies de nematodos. En especial, las especies de trematodos abarcan Schistoma haemotobium, S. mansoni, S. japonicum y las especies de nematodos Tricharis trichiura, Ascaris lumbricoides y Trichinella spiralis.
Por otra parte, la invención abarca una vacuna que es una vacuna contra influenza. En especial, la invención abarca una vacuna, que puede utilizarse para la prevención y/o tratamiento de infecciones/enfermedades infecciosas generales. Además, la vacuna sirve para la prevención y/o tratamiento de enfermedades de influenza, para la prevención y tratamiento de nariz taponada, para el tratamiento de lesiones de mucosas de nariz. Además, la invención abarca preferentemente vacunas, caso éste en el que el contenido en hemaglutinina por dosis (100 \mug) se halla entre 1-30 \mug, con ventaja entre 3-10 \mug y mejor aún, es de aproximadamente 3,75 \mug.
En una forma de realización preferida la invención muestra una vacuna, en la que la relación entre liposomas-fosfolípido y HA se encuentra entre 1:10 y 20:1, preferentemente entre 1:1 y 10:1, y que de manera especialmente preferida, es de 3:1.
Además de ello, la invención se refiere preferentemente a una vacuna en la que el fosfolípido de los liposomas ha sido elegido del grupo de los fosfoslípidos neutros, catiónicos y/o aniónicos.
En una forma de realización preferida, la invención se refiere a una vacuna en la que el adyuvante mucosal es una toxina activa, una toxina inactiva y/o una toxina no tóxica. En especial, el adyuvante mucosal abarca preferentemente HTL (Heat Labile Toxin, Toxina Térmicamente Inestable), coleratoxina (CT) y/o procoleragenoide (PCG). En otra forma de realización preferida, el adyuvante mucosal es la toxina térmicamente Inestable (HLT) de Escherichia coli. En otra forma de realización preferida, las toxinas pueden estar desactivadas. Esta desactivación puede tener lugar mediante tecnología de recombinación.
En otra forma de realización, la invención abarca una vacuna, que contiene HLT (Heat Labile Toxin) y/o CT (coleratoxina) en una relación que se encuentra entre 1:2 a 20:1, mejor entre 1:1 y 1:10, y que en especial es de 7,5:1.
La expresión arriba utilizada "mezcla ponderada de liposomas y adyuvante mucosal" se refiere por una parte a la relación correcta entre antígeno y fosfolípidos así como adyuvante mucosal, que es necesaria para una eficacia satisfactoria. Las investigaciones clínicas han demostrado lo siguiente: la relación ideal entre fosfolípido (por ejemplo, fosfatidilcolina, fosfatidiletanolamina, fosfolípidos neutros, aniónicos o catiónicos) y antígeno de influenza, se halla entre 1:1 y 20:1. El valor ideal es de 3:1. La relación entre antígeno de influenza y adyuvante mucosal activo (toxina) HLT o CT, se encuentra entre 1:2 y 20:1. La relación más ventajosa es de 7,5:1.
Como se mencionó arriba, la relación entre antígeno de influenza y adyuvante mucosal inactivo (toxina inactiva) PCG o derivado no toxico de HLT y CT, se encuentra entre 3:1 y 1: 20, e idealmente tiene un valor 1:2.
Los experimentos in-vitro para la medición de la acción inmunoestimulante sobre la mucosa han demostrado sorpresivamente que una mezcla de los adyuvantes liposomas y adyuvante mucosal no causa una adición de las acciones, sino que la adición se eleva en un factor por lo menos igual a cinco.
La expresión "nuevo aparato médico" se refiere a un aplicador de spray que es especialmente adecuado para la inmunización (vacunación) intranasal. No basta con componer una sustancia que sea mucosalmente eficaz, si su aplicación es mala o insuficiente.
El nuevo aparato se destaca porque tiene en cuenta por completo las características anatómicas de la nariz:
(1) la distancia entre los manguitos para los dedos hasta el cabezal de atomización es preferentemente de por lo menos 4,0 cm;
(2) la parte anterior de la pieza para nariz consiste en un inserto adicional esencialmente cilíndrico, que tiene por ejemplo una longitud mínima de 5 mm y un diámetro de a lo sumo 5 mm;
(3) el ángulo de atomización del dispositivo de entrega descrito en esta invención, es preferentemente de 50 a 70º con respecto a la horizontal;
(4) el eje de la dirección principal del dispositivo de entrega, o del aplicador de atomización, se determina preferentemente mediante un manguito especial: el manguito puede insertarse preferentemente sobre la parte anterior de la pieza para la nariz del dispositivo de entrega, y está configurado de manera tal que durante la aplicación nasal de atomización puede apoyarse sobre el labio superior, de modo tal que la dirección de la atomización apunta esencialmente hacia la pared lateral de la fosa nasal.
Se prefiere una configuración del manguito para apoyar sobre el labio superior, por cuanto el labio superior se encuentra relativamente cerca de la nariz, a pesar de lo cual la distancia es suficientemente grande para formar una palanca eficaz para una orientación ventajosa. Además, los sensores táctiles sensibles de los labios permiten que el usuario verifique el apoyo correcto (céntrico o paralelo) del manguito, sin echar un vistazo en un espejo. Además, también es posible configurar el manguito para su apoyo en otras partes del cuerpo o de la cabeza.
La pieza de nariz esbelta tiene preferentemente una longitud mínima de 0,5 cm, mejor de 1 cm, y la pieza de nariz subsiguiente, más gruesa, tiene preferentemente una longitud de 1 cm, ventajosamente de 2 cm. La distancia entre la superficie dorsal de los dedos y la punta de spray debería como mínimo de 2 cm, ventajosamente de 2,5 a 3 cm, o la distancia entre el descanso para los dedos (manguito) hasta la punta del atomizador debería ser de por lo menos 3 cm, ventajosamente de 4 a 5 cm. El ángulo de atomización del spray debería ser preferentemente de 50 a 70º con respecto a la horizontal, cuando se mantenga la cabeza en una posición vertical normal.
Además, el vector principal del impacto de atomización debería estar orientado entre la concha nasal media e inferior, es decir, debería estar orientado hacia el conducto medio de la nariz. Esto presupone una orientación casi horizontal del aplicador. Tal como se describe en la presente invención, esta orientación puede fijarse mediante la colocación de un manguito especial del aplicador. También es posible configurar el manguito y el aplicador de una sola pieza o solidarios entre si. En este caso, el dispositivo de fijación/dispositivo de unión está vinculado solidariamente al aplicador, o ha sido realizado de una sola pieza con el mismo.
En una forma de realización preferida, en el caso del aplicador de atomización, se trata de un aparato cuya pieza de nariz con cabezal atomizador tiene un espesor de a lo sumo 5 mm y una longitud mínima de 5 mm, preferentemente de 7 mm, cuya distancia entre el manguito para los dedos y la punta del cabezal de atomización es de por lo menos 3 cm y que mediante un manguito montable permite la introducción en la fosa nasal de manera tal que el sector principal del spray nasal forma un ángulo de aproximadamente 15 a 20º con la horizontal.
En otra forma de realización preferida, el antígeno es una mezcla de antígenos de superficie de influenza, que se presenta en la superficie de liposomas. Este agente puede combinarse con antígenos de otros microorganismos patógenos. Por ello, y tal como se mencionó arriba, las vacunas conformes a la invención pueden contener otros antígenos, preferentemente antígenos de otros organismos patógenos.
En otra forma de realización, el procedimiento antes descrito sirve para la profilaxis de enfermedades infecciosas, para el tratamiento de una nariz taponada y de diversos trastornos de la mucosa nasal.
A continuación se describen formas de realización preferidas de la invención, haciéndose referencia a los dibujos a título de ejemplo. En los dibujos:
la Figura 1 muestra una representación comparativa entre turbinales humanos y los turbinales de un corzo;
la Figura 2 es una representación esquemática de la estructura anatómica de un orificio nasal interior;
la Figura 3 es una representación esquemática de la estructura fundamental de una forma de realización preferida del dispositivo de entrega conforme a la invención;
la Figura 4 es una representación del ángulo de atomización correcto en el caso de una aplicación eficaz;
la Figura 5 es una representación de una citología nasal: cuantificación de las diversas poblaciones celulares, que se obtuvieron mediante técnica de frotis nasal de los individuos (20 de cada grupo) hasta 29 días después de tres tipos diferentes de vacuna intranasal. Obsérvese el manifiesto incremento de los centroblastos como síntomas de una inmunorespuesta local en el grupo A en contraste con un incremento, manifiestamente menor, en los grupos B y C (p < 0,005);
la Figura 6 representa una forma de realización preferida del dispositivo de entrega conforme a la invención sin manguito; y
las Figuras 7a y 7b son dos vistas de una forma de realización preferida de un manguito para el dispositivo de entrega conforme a la invención de la Figura 6.
Ejemplo 1 Producción de una vacuna virosomal mucosal contra el virus de influenza, con HLT como adyuvante mucosal adicional
La producción de una vacuna virosómica contra influenza ha sido descrita por Glück R, Wegmann A: Liposomal presentation of influenza antigens. In: Nicholson KG, Webster RG, Hay AJ, editores, Textbook of Influenza (1998) pàginas 400-409. Londres. Blackwell. En breve, la producción abarca: las cepas H1N1 A/Singapur/6/86, H3N2 A/Wuhan/359/95 y B/Beijing/184/93 del virus de influenza, que se cultivaron en huevos de gallina empollados, fueron provistas por el National Institute of Biological Standards and Control, Londres, GB. Se aislaron viriones intactos del líquido de la corioallantosis por centrifugación de zonas, y se los inactivó mediante \beta-propiolactona. Se introdujeron viriones depurados en un tampón que contenía OEG (octaetilenglicolmono(N-dodecil)éter (Nikko Chemicals, Japón) 0,1 M en PBS-NaCl. Los mismos se incubaron durante 20 minutos a 21ºC, a efectos de posibilitar la descomposición completa de los componentes de virus.
Para la extracción de hemaglutinina (HA) y de neuraminidasa (NA) se centrifugó la mezcla durante 60 minutos a 100.000xg. El sobrenadante, que contenía HA, NA y fosfolípidos (PL) virales, se utilizó para la producción de las diversas formulaciones de vacuna intranasales. Se añadieron fosfolípidos adicionales (fosfatidilcolina [lipoide, Alemania], y se los solubilizó. Los virosomas se formaron espontáneamente durante la separación del OEG-detergente mediante cromatografía. A una dosis de vacuna mucosal (100 \mul), que contenía 3,75 \mug de HA de cada una de las tres cepas de virus de influenza, tal como recomienda la OMS, y 35 \mug de lecitina, se añadieron 0,5 \mug de HLT (Heat Labile Toxin, Toxina Térmicamente Inestable) de E. coli de la cepa de producción E. coli HE22VK (Vogel FR, Powell MF: A compendium of vaccine adjuvants and excipients. En: Vaccine Design: The Subunit and Adjuvant Approach (M.F. Powell, M.J. Newmann, editores), Plenum Press, Nueva York (1995), página 141) en calidad de adyuvante
mucosal.
Ejemplo 2
Las células de E.coli se sedimentan en una centrífuga continua (Westfalia AG) y se suspenden en PBS (Phosphate buffered saline, solución salina tamponada con fosfato, 6,06 g/L Na_{2}HPO_{4}, 1,46 g/L KH_{2}PO_{4} 2,4 g/L NaCl pH 7,4).
La liberación de la toxina intracelular inestable al calor (HLT) tiene lugar mediante desintegración celular en un molino de bolas (por ejemplo, Dyna-Mill, W. Bachofen AG) o en una prensa French. Por ejemplo: una suspensión de células de 10 L se bombea con un caudal de 33 mL/min a través del molino de bolas. El molino de bolas se llena con 500 mL de bolillas de vidrio, se hace rotar a 3.000 rpm, y la abertura de ranura es de 0,05 mm.
La separación de los componentes sólidos de las células desintegradas tiene lugar mediante microfiltración tangencial. Por ejemplo: el lisado de 10 L de células se reúne en un sistema Prostak (Millipore AG) bajo utilización de un filtro cuyos poros tienen un tamaño de 0,2 \mu, hasta completar aproximadamente 4 L. Seguidamente se efectúa un lavado final con 24 L de PBS. El permeado se filtra a través de un filtro estéril de 0,2 \mu (por ejemplo, Gelman Supor DCF, Pall). Del filtrado se aísla la HTL mediante cromatografía de afinidad. Como fase estacionaria se utiliza galactosa inmovilizada (Galactosa-gel, por ejemplo, de Pierce) o lactosa inmovilizada (lactosil-gel, por ejemplo de Pharmacia). La fase móvil consiste en PBS (tampón A) y 5% (g/v) de lactosa en PBS semiconcentrada (tampón B). Por ejemplo: el lisado de células, filtrado estérilmente, se aplica sobre la columna preacondicionada con tampón A, y la columna se enjuaga seguidamente con tampón A, hasta que la absorción de UV a 280 nm llega a la línea de base. A continuación se separa la HLT de la columna por elución con tampón B.
Ejemplo 3 Preparación de una vacuna mucosal virosomal contra la influenza con PCG como adyuvante mucosal adicional
La producción de una vacuna virosomal contra la influenza está descrita en el Ejemplo 1. A una dosis de vacuna mucosal (100 \mul), que contenía 3,75 \mug de HA de cada una de tres cepas de vacunas de influenza, tal como recomienda la OMS, y 35 \mug de lecitina, se añadieron 6 \mug de procoleragenoide, producido mediante calentamiento de CT purificada, que provenía de V. cholerae (Inaba 569B), a título de adyuvante mucosal (Pierce NF, Cray WC, Sacci JB, Craig JP, Germanier R, Furer E: Procholeragenoide: A safe and effective antigen for oral immunization against experimental cholera. Inf. Immunity 40, 3 (1983) 1112-1118).
Ejemplo 4 Preparación de una vacuna mucosal contra Hepatitis B (HBs)
Se disolvió fosfatidiletanolamina (R. Berchtold, Biochemisches Labor, Berna, Suiza) en metanol, y se añadió trietilamina al 0,1% (vol/vol). La solución se mezcló seguidamente con N-hidroxisuccinimida éster de ácido \gamma-maleimidobutírico (GMBS, \gamma-Maleimidobuttersaure-N-hydroxysuccinidester) (Pierce Chemical Company, Rockford, IL) (relación fosfatidiletanolamina: GMBS = 2:1), que había sido disuelto anteriormente en DMSO (dimetilsulfóxido). Después de una incubación de 15 minutos a temperatura ambiente se evaporaron los disolventes durante una hora bajo vacío en una centrifuga Speedvac. Las partículas de HBs recombinantes se prepararon en cepas de células HLO siguiendo procedimientos conocidos, y se purificaron.
A efectos de obtener partículas de HBs reducidas con restos de cisteína libres, se trataron las partículas con 40 mMol/l de DTT (DL-ditiotreitol) durante 5 minutos a temperatura ambiente. La DTT se separó mediante utilización de una columna Sephadex-G10 (Pharmacia LKB Technology, Uppsaia, Suecia), y se adicionó octaetilenglicol (OEG, Fluka Chemicals, Suiza) con una concentración final de 100 mMol/l. Seguidamente se mezcló la fosfatidiletanolamina-GMBS evaporada con la solución de HBs durante una hora (Relación HBs: GMBS = 1:2), y el GMBS no ligado se capturó mediante cisteína. Las reacciones se supervisaron mediante cromatografía de capa delgada.
32 mg de fosfatidilcolina (Lipoid GmbH, Ludwigshafen, Alemania) y 6 mg de fosfatidiletanolamina se añadieron a la fosfatidiletanolamina-GMBS-HBS anteriormente reticulada, y se disolvió esta mezcla en un volumen total de 2,66 ml de PBS, que contenía 100 mM de OEG (PBS-OEG).
Se purificó la hemaglutinina de influenza A/Singapur, como anteriormente descrito en el Ejemplo (1). Se centrifugó durante 30 minutos a 100,000 g una solución que contenía 4 mg de hemaglutinina, y el sedimento se disolvió en 1,33 ml de PBS-OEG.
Los fosfolípidos y la solución de hemaglutinina se mezclaron y se trataron durante 1 minuto con ultrasonido. La mezcla se centrifugó entonces a 100.000 g, y el sobrenadante se filtró estérilmente (0,22 \mum).
Seguidamente se separaron virosomas con HBs adsorbido mediante separación del detergente con utilización de pellas BioRad-SM-Bio-Beads de acuerdo con el Ejemplo 1. Se añadió una solución madre que contenía 50 \mug de HBs-antígeno/ml con 10 \mug/ml del Ejemplo 2, y se trasegó en aplicadores de atomización de acuerdo con el Ejemplo 6.
Ejemplo 5 Ensayo in-vitro para ensayar la actividad del adyuvante mucosal
Las actividades biológicas de los adyuvantes mucosales se midieron con virosomas de influenza, HLT, PCG, una mezcla de virosomas y HLT conforme al Ejemplo 1 y una mezcla de virosomas y PCG conforme al Ejemplo (2). Las siguientes soluciones fueron añadidas a células de cápsulas suprarrenales Y-1 según ATCC: CCL 79 (tumor adrenal Y-1, mouse steroid secreting) en minicultivo según Sack DA y Sack RB (Sack DA y Sack RB: Test for enterotoxigenic Escherichia using Y-1-adrenal cells en miniculture. Infect. Immun. 11 (1974) 334-336):
(a) HLT (5 \mug/ml), (b) PCG (60 \mug/ml), (c) virosomas de influenza y HLT: 37 \mug/ml hemaglutinina de influenza de en cada caso 3 cepas (H1N1, H3N2, B), 100 \mug/ml de fosfatidilcolina y 5 \mug/ml, asi como (d) virosomas de influenza y PCG 37 \mug/ml de hemaglutinina de influenza en cada caso de 3 cepas, 100 \mug/ml de fiosfatidilcolina y 60 mg/ml de PCG.
Se determinaron las siguientes actividades de los adyuvantes (en unidades):
(a) 15 unidades, (b) 6 unidades, (c) 80 unidades, (d) 36 unidades. La máxima actividad biológica de adyuvante se llevó a cabo con la mezcla de virosoma y HLT o de virosomas y PCG. La acción de los adyuvantes se determinó mediante parámetros de toxicidad celular.
Ejemplo 6 Evaluación clínica de diversos aplicadores de spray
En su estructura básica, el dispositivo de entrega conforme a la invención es esencialmente comparable con aplicadores de spray convencionales, pero se adapta de manera especialmente buena a las circunstancias anatómicas para una aplicación nasal de una sustancia farmacéuticamente activa arbitraria, pero en especial de la descrita en la presente.
En las Figuras 3 y 6 se muestra una forma de realización preferida del dispositivo de entrega conforme a la invención. En la vista lateral, representada en la Figura 3, del dispositivo de entrega conforme a la invención (aplicador de spray) son reconocibles los componentes esenciales. El dispositivo de entrega 2 presenta esencialmente un contenedor 4 con una sustancia farmacéuticamente activa (no representada) y un mecanismo de atomización o de bombeo, 6. El mecanismo de bomba 6 está unido de manera hermética a los fluidos con el recipiente 4, por medio de un tramo o sección de unión 8. El bombeo y la atomización con el dispositivo de entrega conforme a la invención, 2, tiene lugar de manera convencional mediante el accionamiento de un manguito para los dedos, 10. La sustancia farmacéuticamente activa que se encuentra en el recipiente 4, se entrega por medio de una abertura 12 que se extiende a través del mecanismo de bombeo 12, en una abertura de salida, 14.
El dispositivo de entrega conforme a la invención, 2, se diferencia de los aplicadores de spray conocidos, en especial debido a la configuración constructiva de la pieza nasal 16, que desempeña un rol esencial en la aplicación efectiva de la sustancia farmacéuticamente activa. La pieza nasal, 16, está preferiblemente configurada de manera integral junto con el mecanismo de bomba, 8, y con el manguito para los dedos, 10. La pieza nasal 16 está preferentemente subdividida en dos tramos o secciones, 18 y 20, presentando la sección 18 dispuesta en la dirección del manguito para los dedos, 10, un diámetro mayor que el del tramo 20 de la pieza nasal 16 dispuesta en la proximidad de la apertura de salida 14. La zona de transición entre ambas secciones, 16 y 20, configura un tope, 22, para - de acuerdo con una forma de realización preferida de la presente invención - un manguito 24, que puede ser fijada en la sección 20 de la pieza nasal 16, para su apoyo sobre el labio superior de un usuario.
La sección 20 situada en la proximidad de la apertura de salida 14, en la pieza nasal 16, está preferentemente configurada en forma de cilindro, y presenta un diámetro d_{20} máximo de 5 mm, preferiblemente entre aproximadamente 2 y 4 mm. La longitud, l_{20}, de la sección anterior 20 de la pieza nasal 16 es por ejemplo, de por lo menos 5 mm, preferiblemente de por lo menos 10 mm, y de manera especialmente preferida, de 10 a 20 mm. El manguito 24 puede deslizarse sobre la sección 20 de la pieza nasal 16, preferentemente desde la apertura de salida 14, y es preferible que se mantenga sobre el dispositivo de entrega 2 fijo contra la rotación gracias a un seguro contra la rotación. El seguro contra la rotación puede estar realizado por ejemplo en forma de un perfil poligonal, por ejemplo, con sección transversal elíptica, en la sección anterior 20 de la pieza nasal 16 y con un correspondiente recorte 26 en el manguito 24.
De manera correspondiente a otra forma de realización de dispositivo de entrega 2 conforme a la invención, la sección del aplicador de spray que penetra en la nariz de un paciente, también puede estar configurada en el manguito 24. En la Figura 7b se ha representado a título de ejemplo una forma de realización de este tipo. Tal como se muestra en la Figura 7b, en el manguito 24 se ha configurado un tope 28 de forma esencialmente tubular, que puede montarse sobre la sección 20 de la pieza nasal 16 situada en la proximidad de la apertura de salida 14. En este caso, las dimensiones de la sección tubular 28 corresponden preferentemente a las dimensiones (d_{20} y l_{20}) de la forma de realización anteriormente descrita.
La sección 18 de la pieza nasal 16 presenta preferentemente una longitud l_{18} de por lo menos 10 mm y preferentemente de aproximadamente 20 mm. Las dimensiones de ambas secciones, 18 y 20, se eligen preferentemente de manera que la distancia entre la superficie dorsal de los dedos de usuario y la punta del spray, o la apertura de salida, 14, es de por lo menos 2 cm, pero de manera ventajosa de 2,5 a 3 cm. Esto se garantiza en especial cuando la distancia entre el manguito 24 hasta la punta del spray, 14, es de por lo menos 3 cm, o de manera ventajosa, de 4 a 5 cm.
Gracias al dispositivo de entrega 2 conforme a la invención, con estas dimensiones es posible atomizar la sustancia farmacéuticamente activa con una puntería esencialmente mejor en la cavidad principal de la nariz, o en la fosa nasal interior de la nariz, de modo tal que puede lograrse una eficacia considerablemente más elevada que con sistemas conocidos.
El dispositivo de entrega 2 conforme a la invención está preferentemente previsto con el manguito 24 de modo que además de las dimensiones más favorables, es posible ajustar un ángulo de atomización \alpha óptimo. Sin embargo, el manguito 24, independientemente del aplicado de spray 2 anteriormente descrito, también puede ser provisto en dispositivos de entrega convencionales de modo que también con estos aplicadores de spray tradicionales es posible lograr una eficacia considerablemente mejorada gracias al ángulo de atomización \alpha ajustable con exactitud.
Por lo tanto, el dispositivo de entrega 2 conforme a la invención puede lograr la eficacia mejorada sea mediante la elección de las dimensiones de la pieza nasal 16 sea mediante un manguito 24 adecuado para el ajuste de un ángulo \alpha de atomización óptimo. Sin embargo, se prefiere una combinación del novedoso dispositivo de entrega 2 con las dimensiones anteriormente descritas y con el manguito 24 para el ajuste de un ángulo de atomización \alpha óptimo, a efectos de lograr los mejores resultados de tratamiento posibles.
Tal como se explicó brevemente en lo que precede, el manguito se desliza con la sección tubular 28 sobre la sección 20 de la pieza nasal 16. En estado montado, el manguito 24 se encuentra unido al dispositivo de entrega 2, preferentemente bloqueado contra rotación. A título de ejemplo, el seguro contra la rotación puede consistir en un perfil circular en la pieza nasal 16, aplanado en por lo menos un lado, con el cual es posible montar, de manera de impedir su rotación, el manguito 24 mediante una abertura correspondientemente formada. El manguito 24 presenta una sección de apoyo 30, que puede aplicarse sobre el labio superior de un usuario, para, junto con la sección 20 de la pieza nasal 16 orientada hacia el orificio nasal de un paciente, definir y fijar el ángulo de atomización \alpha. El ángulo de atomización \alpha óptimo se encuentra preferentemente entre 50º y 70º.
La sección de apoyo 30 del manguito 24 presenta preferentemente una ligera curvatura en correspondencia a la forma del labio superior, a efectos de poner a disposición una superficie óptima de contacto y de apoyo. El manguito 24 puede producirse de cualquier material adecuado, pero se prefieren materiales sintéticos colables por inyección.
Para la evaluación de la eficacia se ensayaron diversos dispositivos de entrega. A tal efecto se introdujo una solución de azul de metileno al 1% en cinco tipos distintos de aplicadores nasales:
(a) un aplicador de spray de acuerdo con esta invención, con manguito direccional, que fija la dirección del impacto de la atomización;
(b) un aplicador de spray, de acuerdo con esta invención, sin manguito direccional;
(c) un aplicador de spray convencional comercial, sin pieza nasal estrecha, de 2 cm de longitud y 4 mm de diámetro con un ángulo de atomización de 50º;
(d) un aplicador de spray conforme a esta invención, pero con un ángulo de atomización de 50º; y finalmente
(e) un aplicador de spray conforme a esta invención, pero con manguitos para los dedos, que solamente estaban separadas 3 cm del cabezal del atomizador.
La totalidad de los aplicadores de spray eran de los denominados aplicadores bidosis. Cada aplicador de spray fue probado en cada caso por cinco personas de ensayo bajo supervisión médica. Cada una de las personas que participaron en el ensayo atomizó una dosis de solución de azul de metileno en sus propios fosas nasales derecha e izquierda. Mediante endoscopía nasal se iluminaron los turbinales de la mucosa y se fijaron fotográficamente. La intensidad de la coloración azul así como las áreas teñidas de azul de los turbinales se evaluó en una escala de 1 a 4. La evaluación arrojó el siguiente resultado (medias geométricas):
Grupo (a): 19 puntos, grupo (b): 16 puntos; grupo (c): 7 puntos; grupo (d): 9 puntos; grupo (e): 12 puntos.
Solamente en el grupo (a) se aplicó el líquido de spray casi exclusivamente sobre la mucosa nasal. También en el grupo (b) una mayor parte del contenido de spray se atomizó sobre la mucosa. En los demás grupos se atomizó una proporción importante del contenido de spray en el vestíbulo nasal. Allí, el líquido de spray a aplicarse no puede ejercer ninguna eficacia.
Ejemplo 7
Comparación de la eficacia clínica de vacunas intranasales virosomáticas contra influenza con y sin HLT, utilizadas en un nuevo aparato de spray, que se describe en la presente invención, en voluntarios humanos, comparado con una vacuna parenteral comercial contra influenza.
Los estudios clínicos abiertos aleatorizados se llevaron en completa concordancia con los principios de la Declaración de Helsinki y con las leyes y directivas locales relacionados con estudios clínicos. Después de la autorización del protocolo por el Comité de Ética del Cantón de Lucerna y la notificación a la administración federal suiza de salud publica, 80 voluntarios sanos (edades: de 18 a 64 años) dieron su consentimiento escrito informado para participar. Se excluyeron voluntarios si en el momento de la inmunización presentaban síntomas de una enfermedad aguda o crónica o si existía un tratamiento simultáneo con medicamentos inmunosupresores o una conocida debilidad inmunologica.
Las formulaciones de vacuna intranasales se administraron a cada uno de tres grupos de 20 voluntarios (Tabla 1). Los grupos A y B recibieron 2 dosis de la formulación A o B en cada orificio nasal en el día 1, y 2 dosis una semana mas tarde. El grupo C obtuvo dos dosis de formulación A de concentración doble en el día 1. El grupo D fue vacunado intramuscularmente en la zona del deltoides con la formulación parenteral. Se tomaron muestras de sangre y de saliva (Omnisal ®, GB) inmediatamente antes de la primera inmunización y un mes después de la primera inmunización (día 29 \pm 2). Debido a un problema técnico sólo pudieron evaluarse las muestras de saliva de las primeras 47 personas. La citología de cepillado de los orificios nasales fue llevada a cabo antes de la inmunización y en los días 4, 8 y 1 mes después de la inmunización inicial.
Para los análisis se codificaron las muestras de sangre y las muestras de saliva.
La inmunorespuesta de suero frente a los componentes de vacuna-HA se determinó mediante un ensayo estándar bajo utilización de cuatro unidades de hemaglutinina de los antígenos correspondientes. Los sueros fueron tratados antes del ensayo durante 30 minutos a 56ºC. Los títulos se expresan como valor reciproco de la dilución más elevada del suero que impedía por completo la hemaglutinación. Se consideró como protector un título \geq 1:40.
Los anticuerpos-IgA globales e influenza-específicos se determinaron mediante procedimientos ELISA conocidos (Tamura Sl, Ito Y, Asanuma H et al., Cross-protection against influenza virus infection afforded by trivalent inactivated vaccines inoculated intranasally with cholera toxin B subunit, J, Immunol. 149 (1992) 981-987). Los valores de Ig virus-específicos se expresaron como unidades de ELISA de IgA específico por \mug de concentración total de IgA.
Las células epiteliales de nariz se reunieron exclusivamente de los maxilloturbinados de ambas fosas nasales en cada persona con el mismo tipo de un pequeño cepillo de nylon que el empleado en las investigaciones citopatológicas durante la broncoscopía (Glück U, Gebbers J-O, Nasal cytopathology in smokers: a possible biomarker o fair-
pollution ? Am. J. Rhinol. 10 (1996) 55-57). La toma de muestras se efectuó por el mismo investigador (U.G.) bajo control rinoscópico con un movimiento rotante y traslacional a lo largo de la fijación inferior de los turbinados. Las células se transfirieron a un portaobjeto de vidrio y se las fijó de inmediato en una solución de 200 ml de etanol + 100 ml de acetona + 6 gotas de ácido tricloroacetico.
Los portaobjetos, teñidos según Papanicolaou, fueron investigados por patólogos, que se habían capacitado en el Institut fur Pathologie in Cytopatologie (Instituto de Patología en Citopatologia), Hospital Cantonal de Lucerna, y que no habían sido informados acerca del estado de vacunación.
Los conteos celulares promedios de células ciliadas, células caliciformes, linfocitos, centroblastos, neutrófilos, eosinófilos y células epiteliales escamosas, se determinaron en 25 zonas representativas para cada portaobjetos, a
100 x.
La significancia entre los títulos de línea básica y de postinmunización se determinó mediante un ensayo Paired-T. Las diferencias en la capacidad de las 4 vacunaciones, de anticuerpos Anti-HA en los grupos de estudio, se determinaron mediante X^{2}.
Todos los acontecimientos desfavorables observados durante el estudio clínico debían registrarse. Por definición, un acontecimiento desfavorable era una variación desventajosa del estado de línea básica (prevacunación) de las personas, independientemente de si el acontecimiento se considerase relacionado con la vacunación o no. Los acontecimientos desfavorables (reacción local o sistémica) que se presentaron después de la inmunización, fueron registrados por el clínico sobre un formulario informativo especial para acontecimientos desfavorables. La pendiente de la línea básica de los acontecimientos desfavorables se determinó antes de la inmunización.
Para el estudio se reclutaron 80 personas con una edad promedia de 40 años y con status social comparable. El 27,5% de los participantes eran femeninos. La totalidad de los tres preparados de vacunación nasales así como las vacunas parenterales fueron bien toleradas. Desde el punto de vista de la anamnesis no hubo una diferencia significativa entre los 3 grupos de material de vacunación nasal, y la totalidad de las 3 formulaciones fueron bien toleradas. En casos individuales se informó acerca de posibles reacciones acompañantes posteriores: fiebre, cansancio, náuseas, rinitis, nariz obstruida y rinofaringitis. También las vacunas virosomales parenterales fueron muy bien toleradas.
La inmunorespuesta serológica se muestra en la Tabla 2. Se midieron incrementos significativos en los títulos en el grupo A (2 vacunas nasales con una separación de 7 días), grupo C (1 vacunación nasal, dosis doble), así como en el grupo D (vacunación parenteral contra la totalidad de las 3 cepas de virus). Las medias geométricas más elevadas de los títulos de anticuerpos (GMT) se encontraron en los grupos A y D. El grupo D tenia significativamente el valor de GMT mas elevado contra la cepa H1N1 (p \leq 0,05). En el caso de la cepa H3N2 no hubo diferencias significativas entre los grupos A y D.
Estos grupos reaccionaron de manera significativamente mejor que los grupos B y C. En el caso de la cepa B no hubo diferencias significativas en los grupos A, C y D. Sin embargo, éstos mostraron títulos significativamente mas elevados que el grupo B. Los coeficientes de conversión de suero mas elevados correspondieron a los grupos A y D. Habitualmente eran significativamente mas elevados que los índices de los grupos B y C y satisfacían para la totalidad de las 3 cepas los requisitos serológicos de vacuna parenteral contra la influenza conforme a las Directivas de la Comunidad Europea (Comisión de la Comunidad Europea, Richtlinien fuer Medicinprodukte in der Europaesichen Gemeinschaft. Harmonisierung der Anforderungen an Influenzavakzine (1992), páginas 93-98. Luxemburgo: Oficina de Publicaciones de la Comunidad Europea).
La inmunorespuesta humoral mucosal (saliva) está indicada en la Tabla 3. Los incrementos más elevados en título de IgA se midieron en el grupo A. Estos eran significativamente mejores que en los otros grupos. Teniendo en cuenta el IgA global, los GMT en el grupo A también eran los más elevados. El índice de conversión de muco (cuádruple incremento de título de IgA) fue nuevamente mas elevado en el grupo A. En el caso de la vacunación intramuscular hubo solamente índices de conversión de muco muy débiles.
La citología por cepillado de la mucosa nasal fue llevada a cabo en los grupos A, B y C. Los resultados se han resumido en la Figura 5. Hemos determinado el recuento celular del epitelio de mucosa nasal (células cilíndricas ciliadas y no ciliadas, células caliciformes y células epiteliales escamosas) y de las células de los mielo/mono- y linfopoeisis (linfocitos, eosinófilos, neutrófilos y centroblastos). En el grupo A pudo comprobarse una manifiesta hiperplasia de células caliciformes en el día 4º y 8º después de la primera vacunación. Además, hemos observado un fuerte incremento de linfocitos y de centroblastos en los mismos días. Además, se observó un incremento en eosinófilos y neutrófilos en el día 8º después de la vacunación inicial. La cantidad de células cilíndricas se mantuvo sin
cambios.
En el grupo B hubo solamente un ligero incremento en linfocitos, granulocitos neutrófilos y granulocitos. En este grupo no hubo indicios de linfocitos activados.
En el grupo C se comprobó una hiperplasia de células caliciformes aún mas fuerte que en el grupo A. Además, en este grupo los granulocitos eosinófilos y neutrófilos se habían incrementado más fuertemente en los días 4 y 8. En este grupo, el incremento en linfoblastos fue mas débil que en el grupo A. p = \leq 0,05. Un mes después de la primera vacunación, se había restablecido en los todos los grupos el estado anterior de la composición de las células.
La Figura 5 se refiere a la citología nasal: cuantificación de las diversas poblaciones celulares, que se obtuvieron mediante técnica de frotis nasal de los individuos (a razón de 20 por cada grupo) hasta 29 días después de tres tipos diversos de la vacunación intranasal. Obsérvese el manifiesto incremento de los centrobastos como indicio de una inmunorespuesta local en el grupo A, en contraste con el incremento, significativamente menor, en los grupos B y C (p < 0,005).
Ejemplo 8 Comparación de la eficacia clínica de vacunas intranasales virosomales contra influenza con HLT o PCG en voluntarios humanos, administradas mediante un nuevo aparato de spray, que se describe en la presente invención
La inmunorespuesta y tolerabilidad de dos vacunas de spray anti-influenza se investigaron en un estudio doblemente a ciegas, que fue llevado a cabo con en total 158 voluntarios suizos sanos con edades de 18 a 67 años.
Una vacuna trivalente virosomal contra influenza (HA purificado, formulado con fosfatidilcolina) se combinó con HLT (Heat Labile Toxin) de E. coli en un formato que es adecuado para la administración intranasal. Una dosis humana contenía 7,5 \mug de HA de cada cepa de influenza y 2 \mug de HLT. Se administró una dosis en cada orificio nasal en los días 1 y 8 en grupos de individuos en edades de 18-59 o de \geq 60 años. Se tomaron muestras de suero después de aproximadamente 4 semanas después de la inmunización. Las reacciones fueron raras y débiles. Los porcentajes de personas (adultos o mayores), que alcanzaron un título de anticuerpos suero-anti-HA protector (\geq 40) eran como sigue: A/Baviera (92%, 91%). A/Wuhan (92%, 78%), y B/Beijing (59%, 50%). Los GMT después de la inmunización y los múltiplos del aumento de GMT eran comparables entre ambos grupos de edades. El porcentaje de personas (adultos o mayores), que poseían un título de línea básica no protector, pero que después de la inmunización alcanzaron niveles protectores, era como sigue: A/Baviera (79%, 85%), A/Wuhan (86%, 56%) y B/Beijing (48%, 41%).
Un segundo preparado mucosal contenía 75 \mug de HA y 12 \mug de procoleragenoide (PCG). Este preparado también fue muy bien tolerado y demostró ser un tanto menos inmunógeno que el preparado de HLT. El porcentaje de personas que alcanzaron un título de anticuerpos de suero-Anti-HA protector, era como sigue: A/Baviera 94,2%, A/Wuhan 80,8% y B/Beijing 36,5%. Los índices de seroconversión de todos los grupos se muestra en la Tabla 4.
Estos resultados muestran que la vacuna virosomal contra influenza administrada intranasalmente, es segura y muy inmunógena en personas adultas, personas mayores incluidas.
Ejemplo 9 Inmunorespuesta de la mucosa en ratones después de utilización intranasal de una vacuna virosomal contra influenza con HLT, con PCG o sin adyuvante mucosal adicional
Grupos de 10 ratones Balb/c hembra adultos fueron vacunados intranasalmente con 30 \mul sea de la vacuna contra influenza descrita en el Ejemplo (1) sea con la vacuna contra influencia descrita en el Ejemplo (2). Un grupo de control de 10 ratones recibió un preparado de vacuna virosomal sin adyuvante adicional, pero con la misma composición de virosomas. Una mitad de cada grupo recibió una segunda dosis intranasal una semana después. Tres semanas mas tarde se llevaron a cabo lavados nasales (NW, Nasenwäschen) y enjuagues bronquioalveolares (BAL, bronchoalveolarspülungen). Tabla 5, correspondiente al Ejemplo 9. La determinación del IgA específico se llevó a cabo mediante un procedimiento ELISA conocido. Los resultados (GMT) se han resumido en la Tabla 6.
Los GMT mas elevados para la totalidad de las tres cepas de vacuna (A/Johannesburgo, B/Nanquin, B/Harbin) pudieron determinarse en los grupos que habían sido vacunados dos veces con la vacuna conforme al Ejemplo (1). Este grupo reaccionó aún con los niveles de IgA mas elevados en los BAL, después de que los mismos hubiesen sido vacunados solamente una vez.
Una respuesta de IgA satisfactoria también se obtuvo en los grupos de ratones que habían sido vacunados dos veces intranasalmente con el preparado del Ejemplo (2). El grupo de control, en el que se había aplicado el preparado de virosomas sin adyuvante mucosal adicional, sólo mostró una inmumorespuesta mucosa muy débil.
Los resultados muestran que en ratones, una vacuna virosomal contra influenza, administrada por vía intranasal, que contenían un adyuvante mucosal, podía inducir una elevada respuesta de anticuerpos en las mucosas.
Estudios preclínicos de las vacunas virosomales contra influenza en ratones: aplicación intranasal
\hskip0,2cm (Tabla 5 para el ejemplo 9)
1
\hskip1,5cm Anticuerpos de IgA-influenza en ratones
\hskip1,5cm GMT de los títulos inversos (ELISA)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip0,5cm (Tabla 6 para ejemplo 9)
2
Ejemplo 10 Evaluación clínica de una vacuna mucocal contra Hepatitis-B (HBs-)
La vacuna se preparó conforme al Ejemplo 4 y se introdujo en un aplicador-atomizador nasal conforme al Ejemplo 5. El producto se ensayó en 10 voluntarios: en el día 1 se aplicaron 100 \mul por cada fosa nasal, y se repitió una semana después. Se extrajeron muestras de sangre el día 1 (antes de la vacunación) así como el día 29. Los anticuerpos anti-HBs se determinaron mediante RIA (Abbott). La media geométrica de los títulos antes de la vacunación era de 7 UI/ml, y en el día 29, de 159 UI/ml.
Ejemplo 11 Inmunorespuesta mucosal de las mucosas de ratones después de utilización intranasal de un plásmido de ADN, que codifica el antígeno HN del virus de paperas, introducido en virosomas de influenza, que contenían 10% de fosfolípidos catiónicos, y mezclado con HLT (5 \mug/ml)
Hemos inmunizado grupos de ratones intranasalmente con a) ADN desnudo que codificaba el antígeno-HN del virus de paperas (grupo C) ó b) ADN encerrado en virosomas después de preinmunización con virosomas (grupo A) ó c) sin preinmunización (grupo B). Un grupo de control (H) fue inmunizado por vía i.n. con virus de paperas de Urabe vivo (Priorix, SKB Rixenzsart). Como se muestra en la Tabla 7, la media geométrica del título (GMT) del IgG en el grupo de ratones que habían recibido la preinmunización (A), era mas elevada que la descrita en los grupos B y C de los ratones (Lovell GH: Proteosomes, hydrophobic anchors, iscoms and liposomes for improved presentation of peptide and protein vaccines. En: New Generation Vaccines (1990) (G.C. Woodrow und M.M. Levine, Editores) Dekker, Nueva York, página 141-168; Cusi MG und Glück R: Intranasal inmmunization of mice with mumps DNA entrapped into influenza virosomes, IBC´s 4th Annual Conference on Genetic Vaccines, 25-27. Okt. 1998, Washington DC). El grupo de ratones que se habían inmunizado con ADN desnudo, desarrolló un nivel de IgG muy bajo, mientras que en cambio los ratones que habían sido inmunizados por vía i.n. con virus de paperas (grupo H) mostraron una buena respuesta de IgG. En el análisis de la inmunidad de las mucosas descubrimos que todos los grupos de ratones, excepto los inmunizados con ADN desnudo, desarrollaban IgG. Solamente en los lavados nasales (NW, Nasenwäschen) de los ratones inmunizados por vía i.n. con el virus de paperas pudimos determinar un título aumentado en IgG
(grupo H).
Se llevaron a cabo mediciones de citoquina bajo utilización de células primarias de bazo de bazo de ratón, que se habían extraído doce días después de la inmunización. La Tabla 8 resume mediciones representativas, que se habían obtenido de dos experimentos separados. Células estimuladas con antígeno de virus de paperas, de ratones que anteriormente se habían vacunado (i.n.) con virosomas de ADN, indujeron la producción de IL-2 y IFN-\gamma. Además, ratones infectados con gripe indujeron la producción de IL-4. Células tomadas de animales inmunizados con virus de paperas produjeron IFN-\gamma, IL-2, IL-4 e IL-10 después de estimulación in-vitro con antígeno de paperas. La inmunización con virosomas de ADN, así como la inmunización de control con los antígenos paperas purificados se correlacionaban con el fenotipo Th1. Además, considerado desde el punto de vista de la relación entre el nivel global de IgG y el IgG1 ó IgG2a, virus-específicos, predominó la cantidad de isotipo IgG2a en el grupo A, lo que indica una respuesta
de Th2.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 7 La media geométrica del título (GMT) de IgG humoral, IgA en el enjuague broquioalveolar (BAL, Bronchoalveolarspülung) e IgA en el lavado nasal de ratones
\vskip1.000000\baselineskip
3
TABLA 8 Mediciones representativas de la producción de citoquinas en ratones, obtenidas a partir de de dos experimentos separados
\vskip1.000000\baselineskip
4
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 12 Tratamiento de nariz obstruida en voluntarios mediante virosomas de influenza con y sin HLT en un nuevo aplicador de atomización
En una clínica se seleccionaron 30 voluntarios con síntomas de resfriado y obstrucción nasal aguda. Para la totalidad de los voluntarios se midió la intensidad respiratoria rinonanométrica (en Pascal) para cada orificio nasal individualmente. Seguidamente se los aleatorizoo y subdividió en 3 grupos de 10. El grupo A obtuvo una dosis de vacuna (100 \mul en cada fosa nasal) de acuerdo con el Ejemplo (1), el grupo B recibió la misma dosis, sin embargo sin el adyuvante mucosal HLT. El grupo C recibió en cada caso NaCl al 0,9% (solución fisiológica salina) en cada orificio nasal. Las corrientes de aire se midieron 15 min, 30 min, 1 hora asi como 2 horas mas tarde.
Los datos de medición se han resumido en la Tabla 9. Tanto en el Grupo A como en el Grupo B los valores eran significativamente mejores que en el Grupo C. En ambos grupos pudo comprobarse una manifiesta mejora de las funciones respiratorias.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 9 Valores rinonanométricos geométricos medios en voluntarios antes y después del tratamiento de atomización
5
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 13 Tratamiento de lesiones en las mucosas de voluntarios mediante virosomas de influenza y HLT
Se vacunaron voluntarios intranasalmente, cono descrito en el Ejemplo (7). Tal como se describió aquí, se determinaron las células caliciformes promedios a los 3, 7 y 28 días después de la vacunación intranasal. Pudimos determinar modificaciones epiteliales con hiperplasia de células caliciformes en frotis citológicos (Glück U, Gebber J-O: Nasal cytopathology in smokers: a posible biomarker o air pollution? Am. J. Rhinol. 10 (1996) 55-57). Las células caliciformes tienen una función de protección para la capa de mucosa. Un mes después de la primera vacunación nasal, la condición celular de la mucosa era significativamente mejor en comparación con el estado anterior.
Por ello, estas nuevas vacunas pueden utilizarse como agente terapéutico para el tratamiento de una mucosa nasal en estado dañado.
Ejemplo 14 Prevención de diarrea enterotóxica por E. coli mediante aplicación nasal de HLT con y sin virosomas de influenza
Un grupo de viajeros, que visitaban Túnez, consistía en 38 personas. Después de una aceptación informada, todos los participantes consintieron en el estudio. Después de aleatorización se vacunaron 19 voluntarios dos veces con intervalos de 1 semana con el preparado conforme al Ejemplo (1); en cambio, 19 personas no recibieron ninguna vacuna. 28 días después de la primera vacuna intranasal se tomaron muestras de sangre de todos los voluntarios. Las 19 personas vacunadas mostraron elevados niveles de IgG en el suero con respecto al adyuvante mucosal (HLT). El grupo de control permaneció anti-HLT-negativo. Antes de salir de Túnez, un mes después, se distribuyó un cuestionario especial sobre eventos de salud a todos los participantes. El grupo regresó de Túnez 20 días después, y se evaluó el cuestionario sobre eventos de salud en busca de enfermedades diarreicas. En el grupo de los vacunados sólo dos personas informaron haber tenido problemas de diarrea, mientras que en cambio en el grupo no vacunado, 9 personas sufrieron de diarrea durante su estadía en Túnez. Estos datos muestran que la vacuna también es eficaz para prevenir diarrea de la enfermedad enterotóxica por E. coli.
Ejemplo 7 TABLA 1 Protocolo clínico
6

Claims (12)

1. Manguito (24) con un dispositivo de unión (28) para la disposición de un dispositivo de entrega (2), en especial para la entrega por atomización de una sustancia farmacéuticamente activa, y un dispositivo de apoyo (30), estando el dispositivo de unión (28) y el dispositivo de apoyo (30) dispuestos de manera que juntos definen un ángulo de atomización óptimo (\alpha) para la entrega de la sustancia desde el dispositivo de entrega, estando el dispositivo de apoyo (30) en el lado del usuario, curvado de manera que esencialmente corresponde a la forma de una sección exterior del labio superior de un usuario, y teniendo el ángulo de atomización (\alpha) un valor entre 50º y 80º con respecto a la horizontal).
2. Manguito (24) conforme a la reivindicación 1, en donde el dispositivo de unión (28) es una sección de tubo esencialmente cilíndrica.
3. Manguito (24) conforme a la reivindicación 2, en donde la sección de tubo (28) puede deslizarse por lo menos sobre una parte de una pieza nasal (20) del dispositivo de entrega (2).
4. Manguito (24) conforme a una de las de las reivindicaciones 1 a 3, en el que el manguito (24) puede disponerse bloqueado a la rotación sobre el dispositivo de entrega (2).
5. Manguito (24) conforme a la reivindicación 4, en donde la sección de tubo (28) y la parte de la pieza nasal (20), sobre el que puede deslizarse la sección de tubo (28), están configuradas por lo menos en parte en forma de polígono, a efectos de configurar un bloqueo contra la rotación.
6. Dispositivo de entrega (2), en especial para la entrega por atomización de una sustancia farmacéuticamente activa con un dispositivo de bomba (6), un manguito de dedos (10) para el accionamiento del dispositivo de bomba (6), un elemento de empalme (8) para la unión hermética con un recipiente de contenido (4) y una pieza nasal (16) que presenta una primera sección (18) y una segunda sección (20), estando ambas secciones (18, 20) de la pieza nasal (16) dimensionadas de manera tal, que una abertura de atomización (14) de la pieza nasal (16) sobresale esencialmente hasta en la cavidad principal de la nariz de un paciente, presentando el dispositivo de entrega (2) además un manguito (24) de acuerdo con una de las reivindicaciones 1 a 5.
7. Dispositivo de entrega (2) conforme a la reivindicación 6, en donde por lo menos la segunda sección (20) de la pieza nasal (16) tiene una configuración esencialmente cilíndrica.
8. Dispositivo de entrega (2) conforme a la reivindicación 7, en el que el diámetro de la segunda sección (20) es de 3 mm a 10 mm, y es preferentemente de aproximadamente 7 mm.
9. Dispositivo de entrega (2) conforme a una de las reivindicaciones 6 a 8, en donde la segunda sección (20) de la pieza nasal (16) presenta una longitud entre 5 y 50 mm, preferentemente de aproximadamente 20 mm.
10. Dispositivo de entrega (2) conforme a una de las reivindicaciones 6 a 9, en el que la primera sección (18) de la pieza nasal (16) presente una longitud entre 10 y 40 mm, preferentemente de aproximadamente 30 mm.
11. Dispositivo de entrega (2) conforme a una de las reivindicaciones 6 a 10, siendo la distancia entre el manguito para los dedos, (10), y la abertura de atomización (14) prevista en una de las puntas, de por lo menos 30 mm, preferentemente de aproximadamente 45 mm.
12. Dispositivo de entrega (2) conforme a la reivindicación 6, que está configurado solidariamente con el manguito (24) o que forma una sola pieza con el mismo.
ES99971718T 1998-11-06 1999-11-08 Dispositivo de entrega para una composicion de una sustancia farmaceuticamente activa. Expired - Lifetime ES2279650T3 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19851282 1998-11-06
DE19851282A DE19851282A1 (de) 1998-11-06 1998-11-06 Zusammensetzung einer pharmazeutisch wirksamen Substanz, appliziert in einem spezifischen Delivery-System zur Prävention und Behandlung von Infektions-Krankheiten

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2279650T3 true ES2279650T3 (es) 2007-08-16

Family

ID=7886959

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES99971718T Expired - Lifetime ES2279650T3 (es) 1998-11-06 1999-11-08 Dispositivo de entrega para una composicion de una sustancia farmaceuticamente activa.

Country Status (17)

Country Link
EP (1) EP1126875B1 (es)
JP (1) JP2002529427A (es)
KR (1) KR20010080955A (es)
CN (1) CN1331604A (es)
AT (1) ATE353224T1 (es)
AU (1) AU776669B2 (es)
BR (1) BR9915123A (es)
CA (1) CA2348474C (es)
CZ (1) CZ20011567A3 (es)
DE (2) DE19851282A1 (es)
ES (1) ES2279650T3 (es)
HR (1) HRP20010300A2 (es)
HU (1) HUP0202931A2 (es)
PL (1) PL348202A1 (es)
SK (1) SK6092001A3 (es)
WO (1) WO2000027430A2 (es)
ZA (1) ZA200103607B (es)

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7226786B2 (en) 1999-05-18 2007-06-05 Dnavec Research Inc. Envelope gene-deficient Paramyxovirus vector
DE10125731A1 (de) * 2001-05-17 2003-03-06 A I D Autoimmun Diagnostika Gm Darreichungsform von immunologischen Wirkstoffen
CA2484287A1 (en) * 2002-04-30 2003-11-13 Dnavec Research Inc. Pharmaceutical- or gene-carrier compositions with reduced hemagglutinating activity
CN100425288C (zh) * 2005-01-28 2008-10-15 北京金迪克生物技术研究所 鼻腔喷雾型流感病毒灭活疫苗及其制备方法
WO2006122546A1 (de) 2005-05-18 2006-11-23 Forschungsverbund Berlin E.V. Nicht-peptidische inhibitoren der akap-pka-wechselwirkung
DK1950307T3 (en) 2005-10-28 2016-02-15 Id Pharma Co Ltd Luftvejsepitelstamcelle for gene transfer using a lentiviral vector, which is pseudo typified by RNA virus spike protein
WO2007132790A1 (ja) * 2006-05-12 2007-11-22 National University Corporation Hokkaido University 細菌菌体成分を含む脂質膜を有するリポソーム
CN101754770B (zh) * 2007-06-14 2015-05-20 克鲁塞尔瑞士股份公司 皮内流感疫苗
JP2014140588A (ja) * 2013-01-25 2014-08-07 Shinko Chemical Co Ltd 噴霧容器
AU2019283122B2 (en) 2018-06-05 2026-02-05 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia Hepatitis B vaccine transnasal administration system
FR3119772B1 (fr) 2021-02-15 2024-06-14 Aptar France Sas Tête de distribution pour dispositif de distribution nasale d’un produit fluide ou pulvérulent
FR3164925A1 (fr) * 2024-07-26 2026-01-30 Aptar France Sas Dispositif de distribution nasale

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2434875A (en) * 1945-08-11 1948-01-20 Turnbull Jetting device
FR1257220A (fr) * 1960-02-19 1961-03-31 Dispositif nasal électro-thermique d'inhalation
DE8422872U1 (de) * 1984-08-01 1984-10-25 Anasco GmbH, 6200 Wiesbaden Spender zur intranasalen applikation von fluessigkeiten in form von sprays oder tropfen
JP2849632B2 (ja) * 1988-04-08 1999-01-20 社団法人北里研究所 ワクチン製剤
JP2922935B2 (ja) * 1989-08-11 1999-07-26 東興薬品工業株式会社 粘稠液用鼻孔内噴霧容器の使捨てアダプタ
IT1253009B (it) * 1991-12-31 1995-07-10 Sclavo Ricerca S R L Mutanti immunogenici detossificati della tossina colerica e della tossina lt, loro preparazione ed uso per la preparazione di vaccini
FR2739294B1 (fr) * 1995-09-29 1998-01-16 Lhd Lab Hygiene Dietetique Embout nasal de securite
US5797390A (en) * 1996-03-06 1998-08-25 Mcsoley; Thomas E. Nasal inhaler having a directed spray pattern
FR2764807B1 (fr) * 1997-06-18 1999-08-20 Valois Sa Dispositif de distribution nasale d'un produit fluide ou pulverulent

Also Published As

Publication number Publication date
CA2348474C (en) 2008-01-08
AU776669B2 (en) 2004-09-16
HRP20010300A2 (en) 2002-06-30
ZA200103607B (en) 2003-09-30
WO2000027430A3 (de) 2000-11-23
ATE353224T1 (de) 2007-02-15
KR20010080955A (ko) 2001-08-25
EP1126875B1 (de) 2007-02-07
CZ20011567A3 (cs) 2001-08-15
BR9915123A (pt) 2001-07-31
WO2000027430A2 (de) 2000-05-18
SK6092001A3 (en) 2001-12-03
AU1161200A (en) 2000-05-29
PL348202A1 (en) 2002-05-06
HUP0202931A2 (hu) 2002-12-28
DE59914183D1 (de) 2007-03-22
DE19851282A1 (de) 2000-05-11
CN1331604A (zh) 2002-01-16
CA2348474A1 (en) 2000-05-18
JP2002529427A (ja) 2002-09-10
EP1126875A2 (de) 2001-08-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AU765824B2 (en) Vaccines
ES2293923T3 (es) Vacuna intranasal contra el virus influenza.
US20220160632A1 (en) Pegylated liposomes and methods of use
ES2139879T5 (es) Adyuvante de la mucosa no toxico.
ES2279650T3 (es) Dispositivo de entrega para una composicion de una sustancia farmaceuticamente activa.
CN102123724B (zh) 治疗流行性感冒的组合物和方法
ES2369550T3 (es) Formulación de adyuvante para administración en mucosas.
RU2348428C2 (ru) Функционально реконструированные вирусные мембраны, содержащие адъювант
HUP0203817A2 (hu) Polioxietilén-alkil-étert vagy -észtert és legalább egy nemionos felületaktív anyagot tartalmazó adjuváns
US20030180351A1 (en) Pharmaceutically active composition and dispensing device
JP2023522592A (ja) 抗原性部位とリポソーム調製物とを含む免疫原性組成物、当該組成物を作製する方法、薬物として使用するための、特にワクチンとして使用するための、当該組成物
MXPA01004520A (es) Composicion de una sustancia farmaceuticamente activa y dispositivo de administracion
PL206260B1 (pl) Immunogenna kompozycja liposomowa, jej zastosowanie, sposoby jej wytwarzania i kompozycja szczepionki
PT721782E (pt) Vacina contra a gripe contendo toxina da tosse convulsa
WO2020067302A1 (ja) 粘膜アジュバント
ES2358900T3 (es) Composiciones que comprenden complejos de antígenos, procedimiento para su preparación así como precedimientos de utilización de los complejos de antígenos para la vacunación.