ES2280793T3 - Deteccion de algas toxicas. - Google Patents
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Abstract
Procedimiento electroquímico de detección para la detección rápida in situ de algas tóxicas en una muestra líquida, mediando utilización de por lo menos una sonda captadora inmovilizada, que es específica para ciertas secuencias, destinada a la hibridación selectiva en condiciones de hibridación de una secuencia complementaria de ácido nucleico, que caracteriza inequívocamente al alga que se ha detectar, a base del ARNr de la subunidad pequeña 18S o de la subunidad grande 28S del ribosoma específico para ciertas algas, de por lo menos una sonda cooperante y de por lo menos una sonda detectora, ambas de las cuales están situadas con una distancia entre secuencias lo más pequeña que sea posible, con una diferencia máxima de 150 a 200 bases, cerca de la sonda captadora específica para ciertas secuencias, con las etapas principales de procedimiento: * Preparación de la muestra líquida a investigar con el fin de liberar el ARN total de todas las algas contenidas en la muestra, * Establecimiento de una tanda de hibridación mediante mezcladura del ARN total puesto en libertad con la sonda cooperante y con la sonda detectora, que está marcada con un antígeno, en un tampón de hibridación para la hibridación con secuencias complementarias de ácidos nucleicos del ARNr del ribosoma específico para ciertas algas, del alga que se ha de detectar en la muestra, * Humectación de la sonda captadora específica para ciertas secuencias, con la tanda de hibridación, para la hibridación en emparedado de la secuencia de ácido de nucleico que caracteriza inequívocamente al alga que se ha de detectar, realizándose que la sonda cooperante hace posible o refuerza a la hibridación en emparedado y que la sonda detectora marca a la secuencia de ácido nucleico que se ha de detectar, * Humectación de la sonda captadora específica para ciertas secuencias, después de haberse efectuado la hibridación en emparedado con un conjugado enzimático con un anticuerpo, que se fija específicamente al antígeno de la sonda detectora, y con una enzima, que cataliza la reacción de detección, * Separación por enjuagado del conjugado enzimático no fijado, * Detección amperométrica o ciclovoltamétrica de la reacción enzimática que se ha establecido al efectuarse la hibridación en emparedado del alga que se ha detectar, con una tensión de medición previamente establecida.
Description
Detección de algas tóxicas.
El invento, en conexión con la detección de
algas tóxicas, se refiere a sondas captadoras específicas para
ciertas secuencias destinadas a la detección de algas mediante una
hibridación selectiva, que se efectúa en condiciones de hibridación
de una secuencia complementaria de ácido nucleico que caracteriza
inequívocamente al alga que se ha de detectar. Un objeto adicional
del invento es un procedimiento electroquímico de detección, para
la detección rápida in situ (en el sitio de uso) de algas
tóxicas en una muestra líquida, mediando utilización de por lo
menos una sonda captadora inmovilizada, que es específica para
ciertas secuencias. Otros objetos del invento son una disposición
para la realización del procedimiento de detección y una utilización
de la disposición.
La presencia de especies contaminantes que
forman toxinas en ecosistemas marinos es conocida desde hace mucho
tiempo. Después de un contacto con tales organismos o de un consumo
de organismos marinos enriquecidos con toxinas, pueden aparecer
daños fisiológicos en el caso de los seres humanos, que en el peor
de los casos pueden conducir hasta a la muerte. Precisamente en los
últimos diez hasta veinte años se están observando de manera
multiplicada flores de algas tóxicas que pueden tener como
consecuencia problemas ecológicos y sanitarios. Los ecosistemas
marinos pueden ser perturbados, pueden aparecer un crecimiento
masivo de algas y un síndrome venenoso de algas. También resultan
consecuencias económicas para los entornos afectados. La aparición
local de algas tóxicas se efectúa sin embargo con frecuencia de una
manera extremadamente repentina y solamente de una manera
transitoria, de modo tal que se dificultan las investigaciones. En
los últimos años se aislaron una serie de nuevas sustancias tóxicas
bioactivas. Una posibilidad de análisis cualitativos y cuantitativos
de los diferentes agentes causantes marinos para la producción de
toxinas, es por lo tanto imperativamente necesaria. Sin embargo,
los métodos convencionales de investigación son largos y difíciles,
de manera tal que solamente se pueden llevar a cabo en laboratorios
de ensayo por un personal especializado. En la publicación I
"Unbekanntem Leben auf der Spur" - “[Vida desconocida en la
huella]” de R. Amman y colaboradores, Naturwissenschaftliche
Rundschau [Revista de las Ciencias Naturales] 45, fascículo 9/92,
348-351, se describen sondas de ADN para la
identificación de bacterias no cultivables. Una sonda captadora en
forma de una secuencia de ADN monocatenario se fija en unas
condiciones de hibridación definidas con exactitud, de una manera
específica para ciertas secuencias, a una secuencia complementaria
de ADN o ARN. La hibridación de dos moléculas de ácidos nucleicos
se basa en el principio del apareamiento específico de bases de
adenina (A) y timina (T) (uracilo (U) en el caso de un ARN) y de
guanina G) con citosina (C). Actualmente están ganando en
importancia, por lo tanto, sondas moleculares disponibles de ácidos
nucleicos, que reconocen a determinadas secuencias dianas, en
particular a ARN ribosomales, anticuerpos, que se fijan a
determinadas moléculas superficiales de células o respectivamente
biomoléculas citoplásmaticas, y otros procedimientos moleculares y
bioquímicos para la detección de especies contaminantes. Entre
éstos se cuentan sobre todo también investigaciones genéticas
moleculares y, basándose en ellas, el establecimiento de una
taxonomía que se basa en secuencias de ADN inequívocamente
caracterizadoras de una especie, que hace posible el reconocimiento
de microalgas y bacterias potencialmente tóxicas. Como resultado de
estas investigaciones, se pueden definir también secuencias de ADN
específicas para especies, géneros y clases, que se pueden utilizar
como sondas de ADN muy específicas para la identificación inequívoca
de los respectivos microorganismos.
El valor de una sonda de ADN consiste por lo
tanto en la identificación inequívoca de un organismo o de un grupo
de organismos. Cualquier organismo eucariótico posee una secuencia
génica codificadora de la subunidad pequeña 18S y de la subunidad
grande 28S en el ribosoma. Éstas se usan para la identificación de
organismos, puesto que su secuencia es altamente específica para
cualquier organismo. En este caso no es sin embargo suficiente
escoger un fragmento arbitrariamente largo a partir de los ADN de
18S o 28S, sino que más bien se tiene que encontrar un segmento
especial de secuencia, que corresponda inequívocamente a los
criterios exigidos, tales como especificidad para una clase, un
género o una especie. Para la determinación de sondas moleculares,
que puedan ser consideradas como específicas, es necesario por lo
tanto un trabajo largo y penoso de desarrollo. A partir del
documento de patente de los EE. UU US 5.582.983 (de Anderson y
Scholin) se conocen sondas captadoras específicas para ciertas
secuencias, destinadas a la identificación de algunas especies de
Alexandrium (dinofíceas). En el documento US 5.958.689 (de Scholin,
Haydock y Cangelosi) se divulgan sondas captadoras específicas para
ciertas secuencias, para algunas algas silíceas marinas tóxicas del
género de las pseudo-Nitzschias. A causa de la
multiplicidad de especies de algas marinas no es ni con mucho
completa, sin embargo, la lista de sondas para algas marinas que se
han dado a través del Banco de Genes (GenBank) del NCBI (National
Center for Biotechnology Information [Centro nacional para
información sobre biotecnología], http://www.ncbi.nlm.nih.gov,
situación en 23./26.01.2001). Otras sondas para la detección de
algas tóxicas se describen en la publicación de Simon, N. y
colaboradores: "Oligonucleotide probes for the identification of
three algal groups by dot blot and fluorescent
whole-cell hybridization" [Sondas de
oligonucleótidos para la identificación de tres grupos de algas
mediante el sistema dot blot (transferencia de puntos) y la
hibridación fluorescente de células enteras], JOURNAL OF EUKARYOTIC
MICROBIOLOGY [REVISTA DE MICROBIOLOGÍA EUCARIÓTICA], tomo 47, Nº. 1,
Enero de 2000, páginas 76-84. Con el presente
invento se mencionan algunas nuevas sondas captadoras específicas
para ciertas secuencias, destinadas a la detección de algas, que se
distinguen por su toxicidad. Por medio de una aparición epidémica
posible, estas algas tóxicas son de interés especial en conexión con
la problemática para países litorales, ya abordada más arriba. En
este caso, las sondas captadoras trabajan mediante una hibridación
selectiva, que se efectúa en condiciones de hibridación, de una
secuencia complementaria de ácido nucleico, que caracteriza
inequívocamente al alga tóxica que se ha de detectar, a base del
ARNr (ácido ribonucleico ribosomal) de la subunidad pequeña 18S o
de la subunidad grande 28S del ribosoma específico para ciertas
algas. Las caracterizaciones de las sondas captadoras individuales
se pueden tomar del anejo protocolo de secuencias.
Con el fin de detectar una molécula de ácido
nucleico utilizada como sonda después de la hibridación con un ADN
o ARN complementario, unas sondas de ácidos nucleicos se marcan
mediante una molécula reportera. Por ejemplo, como sondas se pueden
emplear oligonucleótidos marcados por fluorescencia, con el fin de
detectar específicamente a los ARN ribosomales (ARNr) de una
especie. A partir de un biotopo arbitrario, por ejemplo procedente
de muestras de agua marina, se puede detectar por consiguiente de
una manera deliberada una especie, a causa de su específica
secuencia de ARNr. A partir del documento US 5.344.757 se conoce la
detección de ácidos nucleicos después de su hibridación con una
sonda de ADN, marcada (hibridación en emparedado). En este caso, la
sonda de ADN, que pasa a emplearse, es unida covalentemente con una
molécula reportera, un p. ej. hapteno esteroide, tal como
digoxigenina, que a su vez se puede detectar con ayuda de un
anticuerpo marcado, dirigido contra una molécula de receptor. La
detección de ácidos nucleicos después de una hibridación con una
sonda de ADN marcada con una enzima, se describe en el documento US
5.867.928, realizándose que la enzima
\beta-galactosidasa se presenta acoplada ya sea
directamente, a través de un grupo SH, o después de una modificación
mediante biotina o avidina, con la sonda de ADN, y el producto
resultante a partir de la reacción con
\beta-galactosidasa - como substrato se emplea el
o-nitrofenil-\beta-D-galactopiranósido
- es detectado ópticamente mediante rayos UV (ultravioletas).
A partir del documento de solicitud de patente
alemana DE-100-32.042 A1 se conoce
un biosensor electroquímico de un sólo uso para la determinación
cuantitativa de concentraciones de analitos en líquidos. En el caso
del procedimiento de detección, que constituye su fundamento, se
trata de un procedimiento electroquímico de detección mediando
utilización de una sonda captadora inmovilizada, específica para
ciertas secuencias, destinada a la hibridación selectiva, que se
efectúa en condiciones de hibridación, de una secuencia
complementaria de ácido nucleico del analito que se ha de detectar.
De acuerdo con el Ejemplo 4 de la mencionada publicación, sin
embargo, una detección se efectúa mediante una simple hibridación,
siendo marcada directamente con digoxigenina la cadena de ADN que
se ha detectar. Después de haberse efectuado una hibridación de la
cadena individual complementaria con la cadena individual
inmovilizada como sonda captadora, se efectúa la detección después
de haber añadido un conjugado enzimático, que se compone de un
anticuerpo y de una enzima, que reconoce a la marcación con
digoxigenina. Mediante oxidación y reducción de un mediador
circundante, se efectúa a continuación, mediando aplicación de una
tensión eléctrica de medición preestablecida, una valoración
amperométrica o ciclovoltamétrica. A causa de la marcación directa
de la secuencia de ADN que se ha de detectar, sin embargo, el
conocido procedimiento electroquímico de detección se ha de llevar
a cabo no obstante de una manera relativamente costosa. Éste dispone
además solamente de una sensibilidad de detección relativamente
pequeña. Como misión para el procedimiento de detección conforme al
invento, se ha de considerar por lo tanto un manifiesto aumento de
la eficiencia en el caso de la posibilidad de detección de algas
tóxicas, junto con una simultánea simplificación del
procedimiento.
Como solución para este problema está previsto
el procedimiento electroquímico de detección reivindicado de
acuerdo con la reivindicación 1, el cual, partiendo del
procedimiento electroquímico de detección, que es conocido de
acuerdo con el documento
DE-100-32.042 A1, comprende dos
perfeccionamientos esenciales del procedimiento. Por una parte, en
el caso del procedimiento de detección conforme al invento se
efectúa una hibridación en emparedado (sandwich) mediando
participación de una sonda detectora. De esta manera se suprime la
marcación directa del ADN o ARN, que se tiene que detectar, de la
especie de alga que se ha de detectar. La marcación, por ejemplo
con un antígeno, se aplica de una manera preparatoria general y
sencilla a la sonda detectora. El principio fundamental de la
hibridación en emparedado se puede deducir por ejemplo, en conexión
con un procedimiento de detección mediante amplificación con una
enzima, de la publicación II de B. Wicks y colaboradores:
"A Sandwich Hybridization Assay Employing Enzyme Amplification for
Determination of Specific Ribosomal RNA from Unpurified Cell
Lysates" [Un ensayo de hibridación en emparedado, que emplea la
amplificación con una enzima para la determinación de un ARN
ribosomal específico procedente de materiales lisados celulares sin
purificar] (Analytical Biochemistry [Bioquímica Analítica] 259
(1998), páginas 258-264). Éste ofrece la gran
ventaja, en comparación con la simple hibridación, de que se pueden
analizar también muestras impurificadas.
Por lo demás, en el caso del procedimiento
conforme al invento se utiliza una tercera sonda en forma de una
sonda cooperante. Ésta hace posible, generalmente por primera vez,
la detección en el caso de algunos tipos de especies, por ejemplo
Alexandrium tamarense. En el caso de otras especies de algas,
el empleo de una sonda cooperante eleva de manera significativa el
límite de detección. La función de una sonda cooperante, que
consiste en que, mediante una reacción por adición con el ADN o ARN
que se ha detectar, se evitan plegamientos de la cadena, es
conocida generalmente por ejemplo a partir de la publicación
III de B. M. Fuchs: "Unlabeled Helper Oligonucleotides
Increase the In Situ Accessibility to 16S rRNA of
fluorescently Labeled Oligonucleotide Probes" [Unos
oligonucleótidos cooperantes sin marcar aumentan la accesibilidad
in situ a un ARNr 16S de sondas de oligonucleótidos marcadas
fluorescentemente] (Applied and Environmental Microbiology
[Microbiología Aplicada y Ambiental], Agosto de 2000, páginas
3.603-3.607). La simultánea introducción, tanto de
la hibridación en emparedado mediando utilización de una sonda
detectora, como también de la utilización de una sonda cooperante
adicional, en el caso del procedimiento de detección conforme al
invento, aporta el deseado aumento manifiesto de la eficiencia en
comparación con el conocido procedimiento electroquímico de
detección.
Es decisiva, para el empleo efectivo de sondas
detectoras y cooperantes, la constitución molecular de éstas.
También estas sondas son asimismo específicas, pero no altamente
específicas y por lo tanto caracterizadoras de una especie, como lo
son las sondas captadoras. Ellas, por lo tanto, no se fijan a la
secuencia de ácido nucleico que caracteriza inequívocamente al alga
que se ha de detectar, sino a secuencias estrechamente contiguas en
relación con aquella, en el ARNr (o en el ADN monocatenario, siempre
y cuando que éste se encuentre presente). Para la producción de
apropiadas sondas detectoras y cooperantes, se ha de definir una
distancia máxima permitida de las dos sondas adicionales a partir
del sitio de acoplamiento de la sonda captadora. Se obtienen buenos
resultados, cuando esta distancia entre secuencias es establecida lo
más pequeña que sea posible, con una diferencia máxima de 150 a 200
bases. En el caso del conocimiento de las sondas captadoras
caracterizadoras de ciertas algas, tal como se pueden utilizar en
el caso del procedimiento de detección conforme al conforme al
invento de acuerdo con la reivindicación 2, en la subunidad pequeña
o grande del ribosoma, es posible por consiguiente, sin ninguna
dificultad, a causa del conocimiento de toda la secuencia, por lo
menos en esta zona, la definición de sondas detectoras y
cooperantes apropiadas de manera correspondiente para la especie
individual de alga. La reacción por adición de las sondas
adicionales con el alga que se ha de detectar, se efectúa entonces
en las mismas condiciones de hibridación que en el caso de la
reacción por adición de la secuencia de ácido nucleico
característica, con la sonda captadora.
Para la realización del procedimiento
electroquímico de detección, conocido a partir del documento
DE-100-32.042 A1, se describen
precisamente allí unos baratos chips biosensores de un sólo uso y un
aparato manual indicador con una unidad de potenciostato, en la que
se pueden introducir los chips sensores para la realización de la
medición. El chip sensor de un sólo uso, obtenible comercialmente,
está provisto de una disposición de tres electrodos (electrodos de
trabajo, de referencia y auxiliar). Aquél se introduce en el aparato
manual a través de una tira de contacto para la fácil manipulación.
El electrodo de trabajo de la pieza en bruto para un chip es
modificado de diferentes maneras, dependiendo de cual sea la
sustancia que se haya de detectar. Con el fin de determinar la
concentración de un analito, éste es aplicado con pipeta sobre el
electrodo de trabajo. La medición se efectúa amperométricamente o
ciclovoltamétricamente con ayuda de una unidad de potenciostato
integrada en el aparato manual, a través de la cual se pueden
preestablecer unas tensiones de medición. La concentración de la
muestra para análisis se puede leer después de un muy corto período
de tiempo de medición en el visualizador del aparato manual, que se
puede manipular sin problemas precisamente también por usuarios no
entrenados. Los chips biosensores de un sólo uso y el aparato manual
con una unidad de potenciostato son asimismo partes componentes de
la disposición reivindicada, destinada a la realización del
procedimiento electroquímico. Con esta disposición se pone a
disposición de un usuario ignorante un juego (en inglés set)
completo que, junto a los dos componentes principales mencionados y
a los necesarios reactivos, contiene además solamente uno o varios
recipientes destinados a la preparación de la muestra líquida que se
ha de investigar, con el que este usuario puede llevar a cabo in
situ sin problemas el procedimiento de detección para algas
tóxicas.
En este caso, el juego puede contener uno o
varios biosensores de un sólo uso con sondas captadores específicas
para ciertas secuencias en forma de secuencias de bases. Es posible
también una combinación de varias sondas captadoras diferentes en
un chip biosensor de un sólo uso, con el fin de obtener, mediante la
utilización de solamente un chip sensor, por lo menos una
declaración cualitativa acerca de la presencia de un espectro de
algas tóxicas en la muestra que se ha de investigar. Actualmente, la
detección de algas tóxicas mediante sondas de ácidos nucleicos
(compárese los documentos US 5.582.983 y US 5.958.689) es
relativamente larga en su realización, y exige un conocimiento
especial de técnicos especialistas. Éste solamente se puede llevar
a cabo en laboratorios de ensayo por un personal entrenado. En el
caso del procedimiento de detección de acuerdo con el invento, la
dedicación de tiempo mediando empleo de biosensores de un sólo uso,
previamente confeccionados, con sondas captadoras inmovilizadas así
como con sondas detectoras y cooperantes mantenidas en reserva de un
modo apropiado, es sólo de aproximadamente tres horas y se puede
llevar a cabo también por un personal no entrenado.
En la publicación IV de M.I. Pividori y
colaboradores: "Dot-blot amperometric genosensor
for detecting an novel determinant of
\beta-lactamase resistance in Staphylococcus
aureus" [Genosensor amperométrico por transferencia de
puntos para detectar un nuevo determinante de resistencia a
\beta-lactamasa en Staphylococcus aureus]
(a partir Analyst, 2001, 126, páginas 1551-1557) se
describe asimismo un procedimiento electroquímico de detección,
pero aquí, no obstante, con una constitución del sensor
fundamentalmente diferente a la del conocido biosensor de un sólo
uso para el aparato manual. Se lleva a cabo una hibridación de
transferencia de puntos sobre una membrana, que entonces es sujeta
y tensada en el sensor para la detección. Se efectúa por la tanto
una simple hibridación indirecta. La secuencia de ácido nucleico
específica para ciertas algas, del alga que se ha de detectar, es
inmovilizada sobre la membrana después de una amplificación
necesaria en primer término, mediante una reacción en cadena de
polimerasa (PCR), y a continuación se detecta mediante una sonda
captadora biotinilada. Por lo demás, se informa en la publicación
acerca de una doble hibridación con diferentes sondas.
Una aplicación especialmente preferida de la
disposición descrita con el presente invento, puede verse en la
utilización como un sistema de alarma precoz con respecto a algas
tóxicas. De esta manera, con el presente invento se pone a
disposición un sistema de alarma precoz, que es efectivo para el
análisis de un fitoplancton con el centro de importancia dirigido
hacia microorganismos marinos tóxicos (microalgas y bacterias), que
hasta ahora no ha existido. Él está constituido de modo favorable en
cuanto a la conservación y a los costos, se puede manipular de una
manera extremadamente sencilla y es fácil de transportar, de modo
tal que alcanza una elevadísima flexibilidad de empleo en lo que se
refiere al sitio de la medición para mediciones individuales, pero
también rutinarias, en cuyo caso se suprimen totalmente elementos
adicionales o etapas de preparación realizadas en laboratorios
ajenos. Además, el sistema de alarma precoz mediante la tecnología
empleada en lo referente a los biosensores utilizados con sondas
selectivas en forma de chips de un sólo uso, apto para
introducirse, es fácil de manipular y por consiguiente accesible,
sin ninguna dificultad, también para un usuario no entrenado. Con
las sondas especiales se pueden descubrir y trazar de una manera
confiable y rápida microorganismos marinos peligrosos, directamente
en el sitio de uso, con una alta sensibilidad incluso en un pequeño
número de células. Las vigilancias rutinarias son posibles por
consiguiente con un mínimo consumo de aparatos. En el caso de la
disposición reivindicada en su aplicación como sistema de alarma
precoz acerca de algas tóxicas, se trata por consiguiente de un
producto comercializable, con el que se pueden conseguir de manera
rápida y confiable unos resultados altamente sensibles. De esta
manera se puede vigilar en tiempo real la dinámica de población de
las algas tóxicas.
La disposición de acuerdo con el invento, en la
aplicación reivindicada como sistema de alarma precoz acerca de
algas tóxicas, se puede emplear en general en diferentes
disposiciones de investigación para investigaciones científicas
(investigación de la biodiversidad), pero puede también ayudar en
tal caso de manera extremadamente eficaz como sistema de alarma
precoz para determinar en tiempo real el comportamiento de
vegetación de flores de algas tóxicas, antes de que ellas pueblen
las costas y pueden provocar trastornos o incluso daños para los
seres humanos. El sistema se puede usar de manera muy eficaz por
ejemplo por municipios y autoridades en los sectores del turismo,
de la protección del medio ambiente o de la pesquería. Precisamente,
las misiones de vigilancia en costas y corrientes acuáticas,
impuestas por reglamentaciones legales, se pueden simplificar y
mejorar en su realización mediante un empleo de la disposición de
acuerdo con el invento. Para esto, una sonda de agua marina,
después de la correspondiente preparación (en ciertas circunstancias
mediante aportación de ayuda por terceras personas), se aplica gota
a gota de una manera sencilla sobre un chip biosensor de un sólo
uso, que tiene una secuencia de sonda correspondiente a una carga
tóxica con algas, que es característica para el entorno. Después de
haberse efectuado una hibridación en emparedado, se comienza el
desarrollo del análisis mediante introducción del chip biosensor de
un sólo uso, que ha recibido la adición de las gotas. En un período
de tiempo brevísimo, el aparato, sin ninguna ayuda adicional del
exterior, que adicionalmente cuesta tiempo y camino, suministra una
segura indicación de alarma cualitativa y cuantitativa, incluso en
el caso de pequeñas presencias de cantidades trazas. Así, flores de
algas tóxicas, como aparecen en los últimos años sobre todo en
regiones litorales, se pueden reconocer de una manera precoz. La
evitación de tales infestaciones masivas, que pueden aparecer
dentro de un período de tiempo brevísimo, son de importancia
existencial precisamente también para sectores que viven del turismo
y/o de la economía pesquera.
A continuación, el invento se ha de explicar con
mayor detalle en su extensión y alcance, en sus fundamentos y en
sus formas individuales de agudización, con ayuda de Ejemplos de
realización y de una Figura, que muestra en representación
esquemática la detección de la hibridación en emparedado en un chip
biosensor de un sólo uso.
En la Figura se representa, en la parte
izquierda de la Figura, un dibujo de detalle ampliado de un chip
biosensor de un sólo uso (1). Sobre un soporte (2) de chip se
encuentra el sensor (3) con un electrodo de trabajo (4), un
electrodo de referencia (5) y un electrodo auxiliar (6). El sensor
(3) trabaja amperométricamente: entre el electrodo de trabajo (4)
con la sonda captadora inmovilizada, específica para ciertas
secuencias (ADN monocatenario, compárese la parte derecha de la
Figura) y el electrodo de referencia (5) se aplica una tensión
eléctrica preestablecida de medición; se mide entonces la corriente
eléctrica, que fluye entre el electrodo de trabajo (4) y el
electrodo auxiliar (6) en el revestimiento del chip, siendo la
corriente resultante directamente proporcional a la concentración
que aparece de un producto enzimático y por consiguiente
directamente proporcional a la concentración del alga tóxica
especial que se busca. En el ejemplo de realización realizado
seguidamente, la corriente eléctrica medida resulta de la oxidación
del producto p-amino-fenol que se ha
formado a partir de la reacción enzimática, para dar la
p-imino-quinona.
En la parte derecha de la Figura, el electrodo
de trabajo (4) se representa de modo nuevamente ampliado, con el fin
de poder representar mejor la hibridación en emparedado para el
proceso de detección. La sonda captadora molecular (7), específica
para ciertas secuencias, está unida a través de biotina (8) con
avidina (9). La avidina (9) está aplicada sobre la superficie del
soporte (2) de chip en la zona del electrodo de trabajo (4), por lo
que, a través de la conexión de unión, la sonda captadora (7) es
inmovilizada sobre la superficie del chip. La secuencia de ácido
nucleico (10) (ARN, o ADN monocatenario) característica para ciertas
algas, del alga que se ha de detectar, había sido provista, en una
etapa precedente de hibridación, de una sonda detectora (11) de baja
especificidad y de una sonda cooperante (12) de baja especificidad.
En tal caso, la sonda cooperante (12) está situada más cerca de la
secuencia de ácido nucleico (10) característica para ciertas algas,
con el fin de facilitar su fijación, por dificultarse la formación
de estructuras secundarias en esta zona mediante la presencia de la
sonda cooperante (12). La sonda detectora (11) está marcada como dig
con un antígeno (13). Después de una aplicación con pipeta y de una
hibridación de la secuencia de ácido nucleico (10) característica
para ciertas algas, con la sonda captadora (7) específica para
ciertas secuencias, se presenta una hibridación en emparedado. En
este contexto, la sonda cooperante (12) actúa haciendo posible una
hibridación (por ejemplo, en el caso del alga Alexandrium
tamarense que forma neurotoxinas) o por lo menos reforzando esta
hibridación. Para la detección amperométrica, se añade con pipeta
sobre el electrodo de trabajo (4) un conjugado enzimático (conjugado
de un anticuerpo anti-dig y de una POD), acoplándose
los anticuerpos (15) marcados por la enzima (14), con los antígenos
(13) de las sondas detectoras (11). Mediante reducción/oxidación
(compárese más adelante) aparece en un mediador circundante un flujo
de corriente eléctrica, que es proporcional a la concentración de
las secuencias de ácidos nucleicos (10) específicas para ciertas
secuencias, y características para ciertas algas, que están
hi-
bridadas con las sondas captadoras (7), y que es por consiguiente la medida para el alga tóxica que se ha de detectar.
bridadas con las sondas captadoras (7), y que es por consiguiente la medida para el alga tóxica que se ha de detectar.
En el precedente Ejemplo de realización se
describe la inmovilización de una soda captadora, es decir de un
tipo de sonda captadora sobre el chip biosensor de un sólo uso. Con
un gran número de sondas captadoras, inmovilizadas con una especial
secuencia de bases. se puede detectar por consiguiente un alga
tóxica, o respectivamente una especie, con estrecha afinidad para
el tipo de especie. En este caso, la sensibilidad del procedimiento
de detección aumenta con el número de las sondas captadoras
inmovilizadas en un chip sensor. Por consiguiente, para la
detección de diferentes algas tóxicas se han de utilizar de modo
correspondiente diferentes chip sensores. Es posible también la
inmovilización de diferentes sondas captadoras para diferentes algas
tóxicas en un común chip sensor, con el fin de poder detectar en
una pasada del procedimiento ya un espectro completo de algas
tóxicas.
Al procedimiento de detección de algas tóxicas,
de acuerdo con el presente invento, pertenecen principalmente las
siguientes etapas de procedimiento:
El aislamiento del ARN total a partir de la
muestra líquida, que se ha de investigar en cuanto a la presencia de
algas tóxicas, por ejemplo un agua marina, se efectúa mediante un
estuche (Kit) terminado de preparar previamente, en un recipiente de
tratamiento (p. ej. de la entidad Qiagen (Hilden)).
El electrodo de trabajo en un chip biosensor de
un sólo uso, como pieza en bruto para chip, se reviste primeramente
con avidina. Después de esto, se efectúa la fijación de la sonda
captadora (oligonucleótido captador) sobre a través de biotina al
electrodo revestido con avidina (compárese la Figura). En este
caso, se aprovecha el hecho de que la avidina tiene una alta
afinidad de fijación para la biotina. Los chips biosensores de un
sólo uso, así preparados previamente, son estables a 4ºC por lo
durante tres meses.
En la tanda de hibridación se contienen el ARN
total, la sonda cooperante (oligonucleótido cooperante) y la sonda
detectora (oligonucleótido detector). La hibridación de las dos
sondas con el alga, que se ha de detectar, se efectúa en el tampón
para hibridación. La hibridación de la secuencia de ácido nucleico,
específica para ciertas algas, que ha sido preparada previamente
por la sonda cooperante y por la sonda detectora, con la sonda
captadora inmovilizada sobre el chip biosensor de un sólo uso, se
efectúa en el chip biosensor de un sólo uso después de que la tanda
de hibridación hubiera sido añadida con pipeta sobre el chip sensor.
Se presenta entonces una hibridación en emparedado entre la sonda
captadora y la sonda detectora, mediando ayuda de una sonda
cooperante, que debe facilitar la fijación del oligonucleótido
captador a la secuencia diana.
La detección de la hibridación en emparedado se
efectúa a través de una reacción enzimática, que también tiene lugar
en el sensor. La enzima está acoplada a un anticuerpo (por ejemplo
de la entidad Roche Diagnostics GmbH en Mannheim), que reconoce a
un epítopo (zonas especiales de antígenos, que son reconocidas
específicamente por anticuerpos), el cual está acoplado a la sonda
detectora (compárese la Figura). A continuación de la reacción con
el anticuerpo, se efectúa la detección de la hibridación en
emparedado a través de la reacción enzimática, después de haber
añadido una mezcla de substrato, que contiene el mediador y
H_{2}O_{2}. El chip biosensor de un sólo uso, hibridado, es
puesto en contacto entonces por introducción en el aparato manual.
Por el aparato manual se mide el flujo de electrones durante una
reacción de oxidación. Los substratos de la reacción son
H_{2}O_{2} (peróxido de hidrógeno como agente de oxidación) y
N-hidrocloruro de
fenil-1,4-fenilen-diamina
(mediador). La reacción del peróxido de hidrógeno con el agua es
catalizada mediante la enzima "peroxidasa de rábano rusticano
(horse-radish peroxidase) (POD)", que está
acoplada con un anticuerpo que reconoce a la sonda detectora
acoplada a una marcación con dig (digoxigenina). La peroxidasa
procede como enzima inalteradamente a partir de las reacciones,
puesto que ella pasa a tomar parte con los substratos solamente en
estados de transición de corta vida. En el transcurso de la reacción
redox, que es catalizada por la peroxidasa, se modifican el
mediador y el H_{2}O_{2}, y se transfieren electrones, lo cual
se puede medir como una corriente eléctrica. La corriente eléctrica
que se ha medido es entonces la medida para la concentración del
alga tóxica, que se ha detectar, presente en la muestra.
Una disposición en forma de un juego completo,
que se puede utilizar como sistema de alarma precoz para la
detección de algas tóxicas, sobre la base de una hibridación en
emparedado mediando ayuda de una sonda cooperante, puede contener
los siguientes componentes:
- \bullet
- Propuestas para la preparación de las muestras
- \bullet
- Chips biosensores de un solo uso, revestidos con las sondas captadoras específicas para ciertas secuencias, para las algas que se han de detectar
- \bullet
- Una solución para hibridación (tampón para hibridación, sondas cooperantes y sondas detectoras en vecindad de secuencias con las sondas captadoras)
- \bullet
- Recipiente para hibridación
- \bullet
- Pipetas
- \bullet
- Soluciones para la detección de la hibridación en emparedado
- \bullet
- Aparato manual con indicador y unidad de potenciostato para la detección electroquímica de las algas tóxicas que se han de detectar.
| Alga tóxica que se ha de detectar: | Alexandrium ostenfeldii | |
| Sonda captadora (Seq. Nº 19): | CAA CCC TTC CCA ATA GTC AGG T | |
| Sonda detectora: | GAA TCA CCA AGG TTC CAA GCA G | |
| Sonda cooperante a: | TTA ATC TTT GAG ACA AGC ATA TGA AC | |
| Sonda cooperante b: | ACC TGA CTA TTG GGA AGG GTT G |
En el ejemplo de realización, para la detección
del alga tóxica "Alexandrium ostenfeldii" se utiliza la
sonda captadora específica para ciertas secuencias, conforme a la
Secuencia Nº 19. La sonda detectora necesaria para la hibridación
en emparedado, se encuentra situada en un intervalo de distancias de
como máximo 200 bases contiguamente a la secuencia de ARN
complementario, específica para ciertas algas, o respectivamente la
secuencia de ADN monocatenario, específica para ciertas algas, y
tiene en el ejemplo de realización escogido la secuencia de bases
arriba mostrada. La sonda cooperante, que ayuda a la hibridación del
ARN complementario o al ADN monocatenario, específico para ciertas
algas, con la sonda captadora, se encuentra situada asimismo en un
intervalo de distancias de como máximo 200 bases, con respecto a
ella y puede tener alternativamente la secuencia de bases a o b,
arriba mostrada. Ambas sondas cooperantes cumplen la misión
establecida para ellas, de ayudar a la hibridación. En este lugar,
se ha mencionar el hecho de que, en particular en el caso de algas
tóxicas de la especie "Alexandrium tamarense" (sonda
captadora de acuerdo con la secuencia Nº 5, 6 ó 18, la utilización
de una sonda cooperante hace posible la hibridación por lo general
por primera vez. Esta especie de alga muy tóxica se distingue como
responsable de la formación de neurotoxinas, y fue investigada
intensamente ya en la ciencia de investigación.
- 1.
- Los biosensores de un sólo uso (en lo sucesivo denominados brevemente sensores) se humedecieron con 50 \mul de un tampón de carbonato de pH 9,6. El tampón de carbonato es aspirado mediante una bomba de vacío.
- 2.
- Incubación de los sensores con 2 \mul de avidina en un tampón de carbonato, de pH 9,6 [200 \mug/ml] durante por lo menos 4,5 horas a 4ºC (en un armario frigorífico).
- 3.
- La avidina en exceso es separada por lavado con una PBS [solución salina tamponada con fosfato] (de pH 7,6), para esto los sensores son sumergidos varias veces en una cápsula de Petri con una PBS (de pH 7,6). Los sensores son secados mediante aspiración del líquido con una bomba de vacío.
- 4.
- A continuación de esto, los sensores son bloqueados durante 1 hora a la TA (temperatura ambiente) con 20 \mul de caseína al 3% en una PBS (de pH 7,6).
- 5.
- La caseína es separada por lavado con una PBS (de pH 7,6).
- 6.
- Los sensores revestidos con avidina se pueden almacenar en el armario frigorífico por lo menos durante 3 meses, después de una incubación con trehalosa al 2% en una PBS (de pH 7,6). Para esto, los sensores son incubados con 15 \mul de la solución de trehalosa a 37ºC en un armario de calentamiento hasta la evaporación del líquido. Antes de una utilización ulterior, la trehalosa secada es separada por lavado con una PBS (de pH 7,6).
- 1.
- Los sensores son incubados durante 30 min., con 2 \mul de la sonda captadora biotinilada (sonda de ADN) [0,1 pmol/\mul] en un "tampón de perlas (Bead)".
- 2.
- Los sensores son revestidos con 50 \mul de un 1x tampón de hibridación. El tampón de hibridación es a continuación separado directamente por aspiración
- 3.
- Los sensores revestidos con un ADN, después una incubación con trehalosa al 2% en una PBS (de pH 7,6), se pueden almacenar asimismo en un armario frigorífico durante por lo menos 3 meses. Para esto, los sensores son incubados con 15 \mul de la solución de trehalosa a 37ºC en un armario de calentamiento hasta conseguir la evaporación del líquido. Antes de una utilización adicional, la trehalosa secada es separada por lavado con una PBS (de pH 7,6).
- 1.
- La tanda típica de hibridación comprende 14 \mul y contiene un 1x tampón de hibridación, 0,25 \mug/\mul de ADN de esperma de arenque, 0,1 pmol/\mul de una sonda cooperante, 0,1 pmol/\mul de una sonda detectora marcada con dig y 6,5 \mul de un ARN (- 500 ng/\mul - 700 ng/\mul) de la especie de algas, que se ha detectar, el volumen que falta es completado con agua.
- 2.
- La tanda de hibridación se calienta a 94ºC durante 4 min., y después de esto se enfría inmediatamente (con un bloque metálico a -20ºC). Por cada sensor se aplican 2 \mul de la tanda de hibridación.
- 3.
- Se incuba durante 30 min., a 46ºC, en una cámara húmeda saturada con vapor. La cámara húmeda debería tener, al comienzo de la hibridación, ya una temperatura de 46ºC, y por lo tanto, precisamente al comienzo del procedimiento, debería ser colocada dentro de la estufa de hibridación.
- 4.
- Después del transcurso del período de tiempo de incubación a 46ºC, los sensores se enfrían durante 5 min., a la temperatura ambiente.
- 1.
- Después de la hibridación, los sensores se lavan con un tampón POP (de pH 6,45).
- 2.
- Sigue una incubación de los sensores con 1,5 \mul de una POD anti-dig ([7,5 U/ml] en PBSBT) durante 30 min., a la temperatura ambiente en la cámara de incubación saturada con vapor.
- 3.
- Después de la incubación, los sensores se lavan con un tampón POP (de pH 6,45).
- 4.
- Después de esto los sensores se secan y, para la realización de la medición, se introducen dentro del aparato manual. La medición se efectúa después de haber añadido 20 \mul de un substrato de POD. La medición debería seguir en tal caso directamente a la etapa de lavado.
Hay que tener en cuenta
que:
- \sqbullet
- Las etapas individuales deberían ser realizadas rápidamente unas tras de otras
- \sqbullet
- Los sensores son lavados por inmersión en una cápsula de Petri, llenada en cada caso con el respectivo tampón de lavado.
| Concentración | |
| NaHCO_{3} | 50 mM |
El tampón es filtrado en condiciones estériles a
través de un filtro de membrana de 0,22 \mum (filtro prolongación
de jeringa).
| Concentración | |
| NaH_{2}PO_{4}*H_{2}O | 0,5 M |
| NaCl, de pH 7,4 | 1,54 M |
Después de una dilución del 10x PBS a 1x PBS
debería ser ensayado de nuevo el pH.
| Concentración | |
| NaCl | 0,3 M |
| Tris, de pH 7,6 | 0,1 M |
El tampón es tratado en autoclave después de la
aplicación.
| Concentración | |
| NaCl | 0,3 M |
| Tris, de pH 8,0 | 80 mM |
| SDS | 0,04% |
| SDS = dodecilsulfato de sodio. |
Antes del uso, el tampón debería ser tratado en
autoclave.
| Concentración | |
| NaH_{2}PO_{4}*H_{2}O | 0,5 M |
| NaCl, de pH 6,45 | 1 M |
La solución es tratada en autoclave después de
su formulación.
| Concentración | |
| PBS | 1x |
| BSA | 0,1% [p/v] |
| TWEEN 20, de pH 7,4 | 0,05% [v/v] |
| BSA = albúmina de suero bovino. |
El tampón es filtrado en condiciones estériles a
través de un filtro de membrana de 0,22 \mum (filtro prolongación
de jeringa).
1,1 mg de hidrocloruro de
N-fenil-1,4-fenilen-diamina
(mediador ADPA, amino-difenil-amina)
se disuelven en 110 \mul de EtOH. Esta solución se mezcla con 250
\mul de H_{2}O_{2} 100 mM (12 \mul de H_{2}O_{2}
concentrado + 988 \mul de H_{2}O) y se completa hasta 25 ml con
un tampón 1x POP (de pH 6,45). Esto corresponde a 1 mM de
H_{2}O_{2} y 0,2 mM de ADPA.
- 1.
- Chip biosensor de un sólo uso
- 2.
- Soporte de chip
- 3.
- Sensor
- 4.
- Electrodo de trabajo
- 5.
- Electrodo de referencia
- 6.
- Electrodo auxiliar
- 7.
- Sonda captadora, específica para ciertas secuencias
- 8.
- Biotina
- 9.
- Avidina
- 10.
- Secuencia de ácido nucleico, específica para ciertas secuencias, del alga que se ha de detectar (ARN, o ADN monocatenario)
- 11.
- Sonda detectora
- 12.
- Sonda cooperante
- 13.
- Antígeno
- 14.
- Enzima
- 15.
- Anticuerpo.
<110> Stiftung
Alfred-Wegener-Institut für Polar-
und Meeresforschung, Columbusstrasse, 27568 Bremerhaven,
Alemania
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Detección de algas tóxicas
\vskip0.400000\baselineskip
<130> AWI 01/0602DE
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Heterokonta, tóxica
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipacgacttcac cttcctct
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Prymnesium gl01A, tóxica
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgctcgccaa cgaggtgt
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Prymnesium gl02B, tóxica
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipaagaagtgct cgccaacg
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213>
Pseudo-nitzschia
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcagtacagcg caatcact
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Alexandrium
tamarense/fundyense/catenella especie compleja, tóxica
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttcaaggcca aacacctg
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Alexandrium tamarense
(América del Norte)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipaacactccca ccaagcaa
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Gymnodinium mikimotoi especie
compleja
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttccgggcaa ggtcgaaa
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Prorocentrum lima
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipccttctgcta agtcgggt
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Prorocentrum lima
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipctctagcatt tccacggg
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Prorocentrum lima especie
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipacaccccaat tgcctcgt
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Prorocentrum lima especie
cluster (racimo)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgcaatcagaa cccatcct
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Alexandrium ostenfeldii
(G+15)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcaccaaggtt ccaagcag
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Alexandrium ostenfeldii
(D)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptccatgtagc aatcgacc
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Pseudo-nitzschia
australis
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipaacgtcgttc cgccaat
\hfill17
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Pseudo-nitzschia
multiseries
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgccgccaaa aggcatgc
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Pseudo-nitzschia
pungens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgggcaccctc agtacgac
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Alexandrium minutum
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptccaggcaag gttgcaaa
\hfill18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Alexandrium tamarense
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1,1cmtgcacctctg ttggtrrtac att (R=A/G)
\hskip10,4cm23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Alexandrium ostenfeldii
(captadora)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcaacccttcc caatagtcag gt
\hfill22
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (2)
1. Procedimiento electroquímico de
detección para la detección rápida in situ de algas tóxicas
en una muestra líquida, mediando utilización de por lo menos una
sonda captadora inmovilizada, que es específica para ciertas
secuencias, destinada a la hibridación selectiva en condiciones de
hibridación de una secuencia complementaria de ácido nucleico, que
caracteriza inequívocamente al alga que se ha detectar, a base del
ARNr de la subunidad pequeña 18S o de la subunidad grande 28S del
ribosoma específico para ciertas algas, de por lo menos una sonda
cooperante y de por lo menos una sonda detectora, ambas de las
cuales están situadas con una distancia entre secuencias lo más
pequeña que sea posible, con una diferencia máxima de 150 a 200
bases, cerca de la sonda captadora específica para ciertas
secuencias, con las etapas principales de procedimiento:
- \bullet
- Preparación de la muestra líquida a investigar con el fin de liberar el ARN total de todas las algas contenidas en la muestra,
- \bullet
- Establecimiento de una tanda de hibridación mediante mezcladura del ARN total puesto en libertad con la sonda cooperante y con la sonda detectora, que está marcada con un antígeno, en un tampón de hibridación para la hibridación con secuencias complementarias de ácidos nucleicos del ARNr del ribosoma específico para ciertas algas, del alga que se ha de detectar en la muestra,
- \bullet
- Humectación de la sonda captadora específica para ciertas secuencias, con la tanda de hibridación, para la hibridación en emparedado de la secuencia de ácido de nucleico que caracteriza inequívocamente al alga que se ha de detectar, realizándose que la sonda cooperante hace posible o refuerza a la hibridación en emparedado y que la sonda detectora marca a la secuencia de ácido nucleico que se ha de detectar,
- \bullet
- Humectación de la sonda captadora específica para ciertas secuencias, después de haberse efectuado la hibridación en emparedado con un conjugado enzimático con un anticuerpo, que se fija específicamente al antígeno de la sonda detectora, y con una enzima, que cataliza la reacción de detección,
- \bullet
- Separación por enjuagado del conjugado enzimático no fijado,
- \bullet
- Detección amperométrica o ciclovoltamétrica de la reacción enzimática que se ha establecido al efectuarse la hibridación en emparedado del alga que se ha detectar, con una tensión de medición previamente establecida.
2. Procedimiento electroquímico de
detección de acuerdo con la reivindicación 1, con una utilización de
por lo menos una sonda captadora específica para ciertas secuencias,
de acuerdo con la siguiente tabla
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(Tabla pasa a página
siguiente)
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