ES2283452T3 - Vacuana mejorada a base de bacterina de i mycoplasma hyopneumoniae/ i. - Google Patents
Vacuana mejorada a base de bacterina de i mycoplasma hyopneumoniae/ i. Download PDFInfo
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Abstract
Composición de vacuna para inmunizar a un animal contra la infección por Mycoplasma hyopneumoniae, que comprende: una cantidad inmunizante de bacterina de Mycoplasma hyopneumoniae; un sistema adyuvante que se puede obtener mezclando un polímero de ácido acrílico y una mezcla de un aceite metabolizable y un copolímero de bloques de polioxietileno-polioxipropileno; y un vehículo farmacéuticamente aceptable, cuya composición de vacuna, después de una sola administración, produce inmunidad protectora frente a Mycoplasma hyopneumoniae.
Description
Vacuna mejorada a base de bacterina de
Mycoplasma hyopneumoniae.
La presente invención se refiere a métodos
mejorados para inducir inmunidad protectora contra
Mycoplasma hyopneumoniae, utilizando específicamente
una bacterina de Mycoplasma hyopneumoniae inactivada, en una
cantidad eficaz para inmunizar un animal receptor contra la
infección por Mycoplasma hyopneumoniae en una única
dosis.
La Mycoplasma hyopneumoniae es el agente
etiológico de la neumonía micoplásmica en cerdos. Está enfermedad
es una causa importante de pérdida económica en la industria
porcícola, debido a la ganancia de peso reducida y a la pobre
deficiencia de la alimentación. La enfermedad causa una tos crónica,
pelaje opaco, crecimiento retardado y aspecto desmedrado que dura
varias semanas. En los animales infectados se observan lesiones
características de áreas de consolidación de color púrpura a gris,
particularmente en los lóbulos ventrales apical y cardiaco. Aunque
la enfermedad causa poca mortalidad, los cerdos afectados son a
menudo susceptibles a infecciones secundarias causadas por
patógenos oportunistas, dando como resultado la muerte o estrés. Las
pérdidas económicas solamente han sido estimadas entre 200 y 250
millones de dólares anualmente.
La Mycoplasma hyopneumoniae es una
bacteria exigente, de crecimiento lento, que carece de pared
celular. Frecuentemente es difícil aislarla del aparato
respiratorio, debido a Mycoplasma hyorhinis, un agente
secundario común también localizado en el aparato respiratorio. La
enfermedad se disemina en forma aerosol, producido al toser, y por
contacto directo con un cerdo vehículo afectado o convaleciente. La
reunión de animales afectados y animales no infectados da como
resultado la reinfección temprana y frecuente. La infección empieza
frecuentemente con la infección de los cerditos por las cerdas
vehículoas, al parir. Debido a técnicas de manejo de manadas, la
infección puede no ser evidente hasta después en la vida del animal.
La infección adicional se observa habitualmente después del
destete, cuando los cerdos son reunidos en grupos. La enfermedad
manifiesta se observa normalmente en cerdos de seis semanas o
mayores. Las tasas de crecimiento y las tasas de conversión del
alimento se reducen notablemente en los animales afectados. Los
tratamientos que usan antibióticos son caros y requieren el uso
prolongado. La reinfección es también un problema. Las vacunas son
actualmente el método más eficaz para evitar infecciones y sus
consecuencias.
Fort Dodge Animal Health (FDAH) comercializa la
bacterina de Mycoplasma hyopneumoniae, con el nombre de
Suvaxyn® Respifend® MH en los Estados Unidos de América, para uso
como una vacuna para proteger a los cerdos sanos contra signos
clínicos causados por Mycoplasma hyopneumoniae. La vacuna
contiene Carbopol como adyuvante, y se recomienda como una vacuna
de dos dosis para cerdos de por lo menos una semana, administrándose
la segunda dosis dos a tres semanas después de la primera
vacunación. Sin embargo, una vacuna de dos dosis tiene la desventaja
obvia de requerir una segunda manipulación de los animales a fin de
proporcionar una protección completa contra la enfermedad.
Por lo tanto, un objetivo de la presente
invención consiste en proporcionar una vacuna eficaz contra
Mycoplasma hyopneumoniae que produzca inmunidad protectora y
prevenga la enfermedad causada por este organismo, con una
administración de una sola dosis de la vacuna.
Otro objetivo de la presente invención consiste
en proporcionar una composición de vacuna adecuada para uso en
cerdos, contra la infección y enfermedad causada por Mycoplasma
hyopneumoniae, y que se pueda usar en combinación con otras
bacterinas y/o toxoides.
Todavía otro objetivo adicional de la presente
invención consiste en proporcionar un método para la prevención o
alivio de la enfermedad, en el que el organismo causante sea
Mycoplasma hyopneumoniae, utilizando una formulación
adyuvante que potencie la inmunogenicidad de la bacterina, a fin de
producir inmunidad protectora después de una sola dosis de la
vacuna.
Otros objetivos y características de la presente
invención resultarán evidentes a partir de la descripción detallada
presentada a continuación.
La presente invención se refiere a una
composición de vacuna para inmunizar un animal contra la infección
por
Mycoplasma hyopneumoniae, que comprende una cantidad inmunizante de una bacterina de Mycoplasma hyopneumoniae inactivada; una mezcla adyuvante obtenible mezclando un polímero de ácido acrílico y una mezcla de un aceite metabolizable y un copolímero de bloques de polioxietileno-polioxipropileno; y un vehículo farmacéuticamente aceptable, composición de vacuna que, después de una sola administración, produce inmunidad protectora contra Mycoplasma hyopneumoniae.
Mycoplasma hyopneumoniae, que comprende una cantidad inmunizante de una bacterina de Mycoplasma hyopneumoniae inactivada; una mezcla adyuvante obtenible mezclando un polímero de ácido acrílico y una mezcla de un aceite metabolizable y un copolímero de bloques de polioxietileno-polioxipropileno; y un vehículo farmacéuticamente aceptable, composición de vacuna que, después de una sola administración, produce inmunidad protectora contra Mycoplasma hyopneumoniae.
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En otro aspecto, la presente invención
proporciona una composición inmunogénica para inmunizar a un
animal contra la infección por Mycoplasma hyopneumoniae, que comprende una bacterina de Mycoplasma hyopneumoniae inactivada combinada con la mezcla adyuvante anterior, y un estabilizador, vehículo o diluyente farmacéuticamente aceptable. El adyuvante está presente habitualmente en esta composición de vacuna en una concentración final de aproximadamente 1-25% (v/v), y de forma preferible aproximadamente 5-12% (v/v). La composición puede incluir también otros componentes de vacuna, incluyendo bacterinas inactivadas o toxoides purificados, de uno o más patógenos, tales como la Haemonphilus parasuis, Pasteurella multiocida, Streptococcum suis, Actinobacillus pleuropneumoniae, Bordetella bronchiseptica, Salmonella choleraesuis y leptospira, y se puede administrar por las vías intramuscular, subcutánea, oral, aerosol o intranasal.
animal contra la infección por Mycoplasma hyopneumoniae, que comprende una bacterina de Mycoplasma hyopneumoniae inactivada combinada con la mezcla adyuvante anterior, y un estabilizador, vehículo o diluyente farmacéuticamente aceptable. El adyuvante está presente habitualmente en esta composición de vacuna en una concentración final de aproximadamente 1-25% (v/v), y de forma preferible aproximadamente 5-12% (v/v). La composición puede incluir también otros componentes de vacuna, incluyendo bacterinas inactivadas o toxoides purificados, de uno o más patógenos, tales como la Haemonphilus parasuis, Pasteurella multiocida, Streptococcum suis, Actinobacillus pleuropneumoniae, Bordetella bronchiseptica, Salmonella choleraesuis y leptospira, y se puede administrar por las vías intramuscular, subcutánea, oral, aerosol o intranasal.
Todavía en otro aspecto, la presente invención
proporciona un método para proteger a un animal contra la enfermedad
causada por Mycoplasma hyopneumoniae, administrando una sola
dosis de la vacuna anterior que contiene la bacterina de
Mycoplasma hyopneumoniae inactivada y la mezcla
adyuvante.
Como se usa en la presente memoria, una
"bacterina" es un cultivo bacteriano que ha sido inactivado y
que, en combinación con ciertos adyuvantes, puede producir
inmunidad protectora para proteger contra una enfermedad o
infección cuando se administra a animales.
El término "Adyuvante" significa una
composición compuesta de una o más substancias que potencia la
inmunogenicidad y eficacia de la bacterina de Mycoplasma
hyopneumoniae en una composición de vacuna.
Como se usa en la memoria descriptiva y en las
reivindicaciones, el término MHDCE designa equivalentes celulares
de ADN de Mycoplasma hyopneumoniae.
La "cantidad inmunizante" es la cantidad de
bacterina que proporcionará inmunidad frente a Mycoplasma
hyopneumoniae. La "cantidad inmunizante" dependerá de la
especie, raza, edad, tamaño, estado de salud, y de si al animal se
le ha proporcionado o no previamente una vacuna contra el mismo
organismo.
La presente invención proporciona una vacuna
contra Mycoplasma hyopneumoniae, que es adecuada para la
inmunización con una sola dosis. La vacuna de la presente invención
incluye una mezcla adyuvante que potencia la inmunogenicidad de la
bacterina y proporciona así una sola administración para suscitar
inmunidad protectora.
La vacuna se puede preparar a partir de cultivos
recién cultivados, a través de métodos que son estándares en la
técnica (véase, por ejemplo, la patente US nº 5.338.543 o la patente
US nº 5.565.205, así como el Ejemplo 2 descrito a continuación). Es
decir, el organismo se puede propagar en un medio de cultivo tal
como medio completo PPLO (organismo similar a la Pleuropneumonia) de
los laboratorios [Difco]. El crecimiento del organismo se
monitoriza a través de técnicas estándares tales como la
determinación de unidades de cambio del color (CCU), y se recolecta
cuando se ha logrado un título lo suficientemente alto. Los lotes se
pueden concentrar o liofilizar adicionalmente a través de métodos
convencionales antes de la inclusión en la vacuna para su
formulación. Se pueden emplear otros métodos, tales como los
descritos en Thomas, et al., Agri-Practice,
Vol. 7, nº 5, págs. 26-30.
La vacuna de la presente invención comprende la
bacterina de Mycoplasma hyopneumoniae inactivada, combinada
con la mezcla adyuvante y uno o más vehículos farmacéuticamente
aceptables. Los vehículos adecuados para uso incluyen medios
acuosos, por ejemplo, disolución salina, disolución salina tamponada
con fosfato, Medio Esencial Mínimo (MEM), o MEM con tampón de
HEPES.
La mezcla adyuvante para uso en las
composiciones de vacuna de la presente invención potencia la
respuesta inmunitaria y comprende una mezcla de un polímero de
poli(ácido acrílico) con una mezcla de aceite metabolizable, por
ejemplo un hidrocarburo terpénico insaturado o un producto de
hidrogenación del mismo, preferentemente escualano
(2,3,10,15,19,23-hexametiltetracosano) o escualeno,
y un copolímero de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno. Ese polímero de
ácido acrílico puede hacer un homopolímero o un copolímero. El
polímero de ácido acrílico es preferentemente un carbómero. Los
carbómeros se encuentran disponibles comercialmente con el nombre
comercial de Carbopol. Los polímeros de ácido acrílico se
describen, por ejemplo, en las patentes US nº 2.909.462 y US nº
3.790.665. Los copolímeros de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno son agentes
tensioactivos, preferentemente agentes tensioactivos líquidos, que
ayudan a suspender los componentes sólidos y líquidos. Los agentes
tensioactivos se encuentran disponibles comercialmente como
polímeros con el nombre comercial de Pluronic®. El agente
tensioactivo preferido es el poloxámero 401, que se encuentra
disponible comercialmente con el nombre comercial de Pluronic®
L121.
La mezcla adyuvante inmunogénicamente
estimulante se encuentra presente típicamente en la composición de
vacuna de la invención en cantidades v/v de aproximadamente 1% a
25%, preferentemente entre aproximadamente 2% y 15%, más
preferentemente entre aproximadamente 5% y 12% v/v. La cantidad de
uso de la mezcla adyuvante y la relación de los dos componentes del
adyuvante pueden variar dependiendo de la adición de otras
bacterinas o toxoides purificados. La mezcla adyuvante comprende
generalmente un aceite metabolizable, un polímero de ácido acrílico
y un copolímero de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno, formulados como una
emulsión en un medio acuoso.
En esta mezcla adyuvante, el aceite
metabolizable y el polímero de ácido acrílico pueden estar presentes
en cantidades comprendida entre 10 y 150 ml/l y entre 0,5 y 10 g/l,
respectivamente. En una forma de realización preferida de la mezcla
adyuvante, la mezcla del aceite metabolizable y componente de
copolímeo de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno es una mezcla de
escualano y Pluronic® L121 (poloxámero 401), que puede estar
presente en una cantidad de aproximadamente 50 a 100 ml/l, y el
polímero carboximetilénico es Carbopol 934P (Carbómero 934P), que
puede estar presente en una cantidad de aproximadamente 2 ml/l.
Típicamente, la mezcla adyuvante contiene aproximadamente una
relación de 1:25 a 1:50 de polímero de ácido acrílico con relación
a la mezcla de aceite metabolizable/copolímero de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno.
Los polímeros de ácido acrílico preferidos son
aquellos comercializados por B. F. Goodrich como Carbopol 934 P NF
y 941 NF, que son polímeros de ácido acrílico reticulado con
polialilsacarosa, y que tienen la fórmula química
(CH_{2}CHOOOH)_{n}. Estos polímeros forman geles acuosos
que se formulan adecuadamente con vehículos acuosos. Los
copolímeros de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno preferidos son los
agentes tensioactivos no iónicos comercializados por BASF como
Pluronic® L121, L61, L81 o L101.
La vacuna de la presente invención se puede
administrar a través de las vías intramuscular, subcutánea,
intranasal, intraperitoneal u oral, preferentemente a través de las
vías intramuscular o subcutánea.
La vacuna de la invención comprende en general
Mycoplasma hyopneumoniae inactivada, un aceite metabolizable,
un copolímero de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno y un polímero de
ácido acrílico, en forma de una emulsión de aceite en agua. La
vacuna contiene preferentemente el polímero de ácido acrílico en una
concentración dentro del intervalo de 0,5 a 10 g/l. La vacuna
contiene preferentemente el aceite metabolizable en una
concentración dentro del intervalo de 2 a 6 ml/l. La vacuna
contiene preferentemente el copolímero de bloques de
polioxietileno-propileno en una concentración
dentro del intervalo de 1 a 3 ml/l.
Para la administración de una sola dosis, la
vacuna deberá contener preferentemente una cantidad de bacterina de
Mycoplasma hyopneumoniae que corresponde a aproximadamente 1
x 10^{8} a 3 x 10^{11} MHDCE/ml, preferentemente de
aproximadamente 1 x 10^{9} a 3 x 10^{9} MHDCE/ml. Se pueden
administrar aproximadamente uno a cinco ml, preferentemente 2 ml,
por animal, intramuscularmente, subcutáneamente, o
intraperitonealmente. Se pueden administrar de uno a diez ml,
preferentemente de 2 a 5 ml, oral o intranasalmente.
Los siguientes ejemplos están destinados a
ilustrar adicionalmente la invención, sin limitar su alcance.
Ejemplo
1
Descripción de los lotes víricos. La
Mycoplasma hyopneumoniae se puede obtener a partir de cierto
número de fuentes fácilmente disponibles. En una realización, se
puede usar la cepa P-5722-3 de
Mycoplasma hyopneumoniae. El cultivo se obtuvo de C.
Armstrong, Purdue University, West Lafayette, Indiana. Después de la
recepción del cultivo de Mycoplasma hyopneumoniae, se pasó
siete veces en caldo de Mycoplasma hyopneumoniae para
establecer la Siembra Maestra.
Cultivo celular. La Mycoplasma
hyopneumoniae se hizo crecer en un medio que comprende polvo de
Bacto PPLO, extracto de levadura, glucosa, hidrocloruro de
L-cisteína, ampicilina, acetato de talio, rojo
fenol, antiespumante, suero estéril normal de cerdo, y agua,
durante periodos que oscilaban desde 18 hasta 144 horas. Para la
inactivación, se añadió etilenimina binaria (BEI) directo al
cultivo de producción, dentro del recipiente de fermentación. El pH
se ajustó a 7,4, y luego se recolectó de acuerdo con procedimientos
convencionales, para proporcionar la bacterina de Mycoplasma
hyopneumoniae.
Composición de Conservantes y Proporciones
Usadas. La bacterina recolectada se conservó mediante adición de
timerosal y la sal tetrasódica del ácido etilendiaminotetraacético
(EDTA), a razón de no más de 0,01% y 0,07%, respectivamente. En el
medio de crecimiento hay ampicilina U.S.P. en una cantidad de 0,250
gramos/litro. La concentración de la ampicilina residual variará en
el producto final, dependiendo del volumen de los fluidos
recolectados, no superando la concentración de ampicilina residual
en el producto completado la cantidad de 30 pg/ml.
Estandarización del producto. El
concentrado de Mycoplasma se cuantifica mediante un ensayo
fluorométrico de ADN.
Una mezcla de un aceite metabolizable que
comprende uno o más hidrocarburos terpénicos y un copolímero de
bloques de polioxietileno-polioxipropileno, por
ejemplo una mezcla de escualano/Pluronic L121, se prepara
disolviendo 10 g de cloruro de sodio, 0,25 g de cloruro de potasio,
2,72 g de fosfato dibásico de sodio, 0,25 g de fostato monobásico
de potasio, 20 ml de Pluronic L121 (BASF Corporation), 40 ml de
escualano (Kodak), 3,2 ml de Tween 80, en 900 ml de agua
purificada, y cantidad suficiente para 1000 ml. Después de mezclar,
los ingredientes se pueden someter a autoclave. Después, la mezcla
se homogeniza hasta que se forma una emulsión estable. Se puede
añadir formalina hasta una concentración final de 0,02%, o se puede
añadir timerosal hasta una concentración final de 1:10.000.
Ensamblaje de unidades para obtener una
serie. Los concentrados satisfactorios de Mycoplasma
hyopneumoniae se combinan asépticamente con los adyuvantes, el
conservante y el diluyente, en un recipiente estéril equipado con
un agitador, y se mezclan durante un tiempo no menor que 30
minutos.
Método y técnica para llenar y sellar los
recipientes finales. El producto se puede filtrar de forma basta
a través de un elemento filtrante estéril de 200 a 500 micrómetros,
y se puede rellenar, en las condiciones especificadas en 9 CFR
114.6, en recipientes estériles finales en una habitación diseñada
para operaciones de llenado. Los recipientes de vidrio o plástico
se cierran con un tapón de caucho, y se sellan con plisado con
sellos de aluminio. Cada dosis de 2,0 ml contendrá no menos de 2 x
10^{9} equivalentes celulares de ADN de Mycoplasma
hyopneumoniae.
Ensayo para determinar la potencia. La
potencia de muestras a granel o del recipiente final, del producto
terminado, se puede ensayar según lo siguiente:
Método de Ensayo para Determinar la Potencia: Se
usaron ratones hembra ICR, de seis a siete semanas, de un solo
pedido, de Harlan Sprage Dawley u otros proveedores aceptables. Se
requiere un mínimo de 20 ratones para la inmunización con cada
bacterina Desconocida y de Referencia. Se conservan un mínimo de
cinco ratones como controles no inoculados. Las bacterinas de
prueba y de referencia se mezclan individualmente a conciencia. Se
usan jeringas desechables estériles, con agujas de calibre 25 de 5/8
pulgadas (1,59 centímetros), para inocular los ratones
subcutáneamente en la región inguinal con 1/10 de una dosis de un
animal huésped (0,2 ml). Cada grupo de ratones se alojó como una
unidad individual, y se le dejó libre acceso a alimento y agua
durante 14 días. Posteriormente, cada ratón se anestesió. El ratón
anestesiado se colocó sobre su lomo. Usando una mano, se sostuvo la
cabeza hacia abajo y se extendió una pata frontal alejándola del
cuerpo. Usando un escalpelo, se realizó una incisión en la piel, de
una longitud de aproximadamente 1/2 pulgadas (1,27 centímetros),
entre la pata frontal extendida y el tórax, cortando la arteria
braquial. Usando una jeringa de 3,0 ml, sin aguja, se recolectó la
sangre que se acumuló en la incisión. La sangre se descargó en un
tubo de ensayo etiquetado, y se dejó coagular. Los tubos coagulados
se centrifugaron a 1.000 x g para separar el suero del coágulo. Los
sueros individuales se almacenaron a -20ºC o a una temperatura
menor, hasta que se analicen.
Análisis serológico: Se usó un
procedimiento de ELISA para medir la respuesta de anticuerpos de los
ratones a las bacterinas de Referencia y/o Desconocida. El
procedimiento de ELISA se lleva a cabo usando placas de
microtitulación de fondo plano desechables Immulon II, de Dynatech o
equivalente, y un lector de placas de ELISA.
\vskip1.000000\baselineskip
Suero de Control Positivo: El Suero de Control
Positivo es un conjunto de sueros de ratones vacunados con
bacterina de Mycoplasma hyopneumoniae.
El conjugado marcado con peroxidasa de
anti-IgG de ratón, purificado por afinidad, se
obtuvo de Kirkegaard and Perry Laboratories, Inc. (nº de catálogo
074-1802). El procedimiento para determinar la
dilución óptima del conjugado se detalla a continuación. Las
disoluciones de substrato de peroxidasa (ABTS) se obtuvieron de
Kirkegaard and Perry, Inc.
Titulación del Conjugado: Se revistió una placa
de fondo plano Immulon II con 100 \mul por pocillo de antígeno de
célula completa de Mycoplasma hyopneumoniae de concentración
de 20 \mug por ml, diluido en 10 mM de GBS. La placa se incubó
durante no menos de una hora a 37ºC \pm 2ºC, y se transfirió a
2-7ºC durante no menos de 18 horas y no más de una
semana. Antes de usar la placa, ésta se lavó tres veces con PBST,
con un tiempo de empapamiento de un minuto entre cada lavado, y se
le dio golpecitos hasta que se secó. Se preparó una dilución 1:40
en PBST del Suero de Control Positivo, y el Suero Positivo diluido
(100 \mul/pocillo) se añadió a la mitad de los pocillos en la
placa. Se añadió PBST a la otra mitad de los pocillos. La placa se
incubó durante una hora a temperatura ambiente, después de lo cual
la placa se lavó tres veces. El Suero Conjugado se diluyó en serie
con PBST, dos veces, empezando con una dilución de 1:100 y
terminando con una dilución de 1:10.240. Se añadieron 100 \mul de
cada dilución de conjugado a cuatro pocillos del Suero Positivo y a
cuatro pocillos del PBST, y se dejó reaccionar durante media hora a
temperatura ambiente. Las placas se lavaron cuatro veces, y se
añadieron 100 \mul de la disolución de Substrato de Peroxidasa
(abts) por pocillo. La placa se leyó a un ajuste de longitud de
onda dual de T \lambda = 450. Se selecciona una dilución de
Conjugado que proporciona una lectura de 0,850 a 1,050 para el Suero
de Control Positivo cuando el valor del Control de PBST se resta
del valor del Suero de Control Positivo.
El antígeno de Mycoplasma hyopneumoniae
es una preparación de célula completa, y es suministrado por Fort
Dodge Animal Health.
El ELISA se lleva a cabo según lo siguiente: Se
usan placas de microtitulación de fondo plano Immulon II de
Dynatech. Un vial de antígeno de células completas de Mycoplasma
hyopneumoniae liofilizadas se reconstituye hasta diez ml con
Disolución Salina Tamponada con Glicina (GBS). La concentración de
la proteína de Mycoplasma reconstituida es de 20 \mug/ml.
Entonces se añaden a todos los pocillos de una placa 100 \mul (2
\mug) de antígeno diluido. La placa se incuba a 37ºC \pm 2ºC
durante no menos de una hora, y luego se transfiere a una
temperatura de 2-7ºC durante un mínimo de 18 horas y
un máximo de una semana. Las placas se lavan tres veces con PBST,
empapando un minuto entre cada lavado, y luego se secan dándoles
golpecitos. Los sueros se diluyeron 1:40 en PBST. El Suero de
Control Positivo se incluirá por cuadruplicado en cada placa. El
volumen de la muestra por pocillo es de 100 \mul. Las Muestra de
Suero de Ensayo y las Muestra de Suero de Referencia, en serie, se
ensayarán por duplicado en la misma placa. Las placas se incuban
durante una hora a temperatura ambiente, y se lavan tres veces con
PBST. Se añaden a todos los pocillos 100 \mul de conjugado marcado
con peroxidasa de anti-IgG de ratón (Kirkegaard and
Perry), diluidos en PBST, y los pocillos se incuban durante 30
minutos a temperatura ambiente. Las placas se lavan cuatro veces con
PBST. Se añaden a todos los pocillos 100 \mul de una disolución
de Substrato de Peroxidasa (ABTS), y las placas se incuban hasta que
el Control de Suero Positivo alcanza una OD_{405} (450) de 0,850
hasta 1,050 cuando la máquina se referencia contra los pocillos de
control con PBST. Las placas se leen y se referencian contra los
pocillos con PBST. Para que sea una prueba válida, los sueros de
los ratones inoculados con la Bacterina de Referencia deben producir
un valor medio mínimo de 0,500, y los sueros de los ratones de
control no vacunados no deben exceder el valor medio máximo de
0,100; o la diferencia entre el valor medio de los sueros de ratones
inoculados con la Bacterina de Referencia y los sueros de los
ratones de control no vacunados debe ser mayor o igual a 0,400.
Los Valores Medios para los animales vacunados
en Serie, los animales vacunados de Referencia y los Controles se
calculan y evalúan según lo siguiente: Para que sea satisfactoria,
la Bacterina de Ensayo debe demostrar un Valor promedio de Densidad
Óptica Media igual o mayor que la Referencia. O, usando una prueba
de la t de Student de una cola, la Bacterina de Ensayo no debe ser
significativamente (Nivel de Confianza p\leq 0,05) menor que la
Bacterina de Referencia. Cualquier Valor T calculado igual o mayor
que 1,686 indicará una diferencia significativa entre la Bacterina
de Referencia y la Bacterina de Ensayo, y provocará que se rechace
la Bacterina de Ensayo. Cualquier Valor T calculado menor que 1,686
indicará una serie satisfactoria. Cualquier bacterina de ensayo,
determinada mediante el Ensayo como no satisfactoria por alguna
razón no relacionada con la eficacia del producto, se vuelve a
analizar, y el ensayo inicial se considera inválido.
Ejemplo
2
La vacuna para análisis se preparó de acuerdo
con los procedimientos detallados en el Ejemplo 1, usando 5% de una
mezcla de un aceite metabolizable que comprende uno o más
hidrocarburos terpénicos y un copolímero de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno (mezcla de
escualano/Pluronic L121) y 0,2% de polímero de ácido acrílico
(Carbopol) como adyuvante, y 2 x 10^{9} equivalentes celulares de
ADN de M. hyopneumoniae (MHDCE) por dosis.
Ejemplo
3
Este estudio se diseñó para demostrar la
duración de cuatro meses de la inmunidad (DOI) en cerdos, inducida
por una vacunación de una dosis, de la vacuna del Ejemplo 2, a una
edad de tres semanas.
Para este estudio se llevaron a cabo dos pruebas
en animales separadas. Todos los cerdos en ambas pruebas eran
seronegativos (título de anticuerpo <10) en el momento de la
vacunación, indicando que los animales eran susceptibles a la
Mycoplasma hyopneumoniae. Todos los cerdos en los grupos de
control permanecieron sero-negativos antes de la
exposición. Esto indica que la respuesta inmunitaria en los cerdos
vacunados se debió a la vacuna y no ninguna exposición
ambiental.
En la primer prueba, se evaluó una vacuna del
Ejemplo 2 junto con un producto comercialmente disponible, Ingelvac
M. hyo® fabricado por Boehringer Ingelheim (BI), mediante un alto
nivel de exposición a M. hyopneumoniae virulenta (0,4 x
10^{6} organismos). Se vacunaron veintidós (22) cerdos de 18 a 21
días con la vacuna del Ejemplo 2 intramuscularmente (IM), y ocho
(8) cerdos con el Ingelvac M. hyo® [serie 271 032]. Veintidós (22)
cerdos sirvieron como controles de la exposición, y 10 cerdos como
controles de la ausencia de exposición. Los cerdos en los grupos de
control vacunados y de la exposición se expusieron a M.
hyopneumoniae virulenta, a los cuatro meses después de la
vacunación. Los cerdos vacunados con la vacuna del Ejemplo 2
tuvieron lesiones pulmonares promedio de 15,9%, y los cerdos de
control de la exposición tuvieron lesiones pulmonares promedio de
19,6%. Las lesiones pulmonares promedio en el grupo vacunado con la
vacuna del Ejemplo 2 fueron menores que los controles, aun cuando
los cerdos habían sido expuestos a una mayor dosis que la
recomendada por la Universidad del Estado de Iowa (ISU); sin
embargo, la diferencia no fue significativa (p=0,19). De igual
manera, cuando el producto comercial Ingelvac M. hyo® se evaluó en
el mismo grupo de animales, con la misma dosis de exposición, se
observó también un nivel similar de lesiones pulmonares (14,6%).
Tampoco hubo diferencia significativa entre el grupo vacunado con
Ingelvac M. hyo® y el grupo de control (p=0,27) y entre el grupo
vacunado con Ingelvac M. hyo® y el grupo vacunado con la vacuna del
Ejemplo 2.
En la segunda prueba, se evaluó una vacuna del
Ejemplo 2 mediante exposición a M. hyopneumoniae virulenta,
al nivel sugerido por la ISU (1,0 x 10^{6} organismos) a los
cuatro meses después de la vacunación. Se vacunaron veintitrés (23)
cerdos con una dosis de la vacuna, a la edad de 21 días; 25 cerdos
sirvieron como controles de la exposición, y 7 cerdos como
controles de la ausencia de exposición. Los cerdos en los grupos de
control vacunados y de exposición se expusieron a M.
hyopneumoniae virulenta a los cuatro meses después de la
vacunación. El grupo de control tuvo lesiones pulmonares promedio
de 10,4%, y el grupo vacunado tuvo lesiones pulmonares promedio de
5,5%. Hubo una diferencia significativa entre el grupo vacunado y el
grupo de control (p=0,031). Esto indica que la vacuna del Ejemplo 2
es eficaz estimulando la inmunidad protectora, la cual puede durar
por lo menos cuatro meses después de una vacunación de una sola
dosis en cerdos de tres semanas.
Cuando se combinaron y analizaron los datos
relacionados con la vacuna del Ejemplo 2, en las dos pruebas, las
lesiones pulmonares promedio del grupo vacunado fueron
significativamente menores que las del grupo de control.
En conclusión, la vacuna del Ejemplo 2 induce
inmunidad protectora contra la exposición a M. hyopneumoniae
virulenta, a los cuatro meses después de una vacunación de una
dosis, en cerdos de tres semanas.
En este estudio se llevaron a cabo dos ensayos
separados. En el ensayo 1, se asignaron sesenta y siete (67) cerdos
a cuatro grupos, usando el programa de distribución al azar de
Microsoft Excel. Se vacunaron intramuscularmente (IM) veinticuatro
(24) cerdos de 18 a 21 días con una dosis de una vacuna preparada de
acuerdo con el Ejemplo 2. Veinticuatro (24) cerdos sirvieron como
controles de la exposición, y 10 cerdos como controles de ausencia
de exposición. Se vacunaron IM nueve cerdos con el producto
comercial Ingelvac M. hyo® [serie 271 032, fabricado por Boehringer
Ingelheim (BI)], según la instrucción de la etiqueta. Cinco cerdos
(dos cerdos vacunados con la vacuna del Ejemplo 2, uno con la
vacuna de BI, y dos controles) murieron durante el periodo de
cuarentena de la vacunación, debido a razones no relacionadas con
la vacunación. Los cerdos restantes en los grupos vacunados y en el
grupo de control de la exposición se expusieron a 14 ml de M.
hyopneumoniae virulenta (1,4 x 10^{6} organismos) a los
cuatro meses después de la vacunación. Los cerdos en los cuatro
grupos se sacrificaron mediante eutanasia 30 días después de la
exposición, y se dio una puntuación a las lesiones pulmonares para
cada cerdo en la prueba.
En una segunda prueba, se vacunaron IM
veinticinco (25) cerdos de 21 días con una dosis de una vacuna
preparada de acuerdo con el Ejemplo 2. Veinticinco (25) cerdos
sirvieron como controles de la exposición, y 10 cerdos como
controles de ausencia de exposición. Dos cerdos murieron debido a
razones no relacionadas con la vacunación, y un cerdo se vendió por
error durante el periodo de cuarentena de la vacunación. Los cerdos
restantes en los grupos vacunados y de control de la exposición se
expusieron a 10 ml de M. hyopneumoniae virulenta (1,0 x
10^{6} organismos) a los cuatro meses después de la vacunación.
Dos cerdos murieron durante el periodo de observación posterior a
la exposición, debido a razones no relacionadas con la
vacunación/exposición. Los cerdos restantes en los tres grupos se
sacrificaron mediante eutanasia 30 días después de la exposición, y
se dio una puntuación a las lesiones pulmonares para cada cerdo en
la prueba.
A cada cerdo en los grupos de vacunación se les
dio, intramuscularmente, una dosis de 2 ml de las vacunas de prueba
en el costado del cuello.
El lote de la exposición a M.
hyopneumoniae virulenta, un homogenado de pulmón congelado
(-70ºC), se preparó por Dr. Eileen Thacker de la Universidad del
Estado de Iowa (ISU). Se confirmó que el lote de la exposición era
puro y contenía aproximadamente 10^{7} organismos de M.
hyopneumoniae por ml. La dosis de exposición recomendada es de
10 ml de un lote diluido en proporción 1:100 (es decir, 1,0 x
10^{6} organismos).
Los cerdos en los grupos vacunado y de control
de la exposición, en la primera prueba, se expusieron a 14 ml de
lote diluido en proporción 1:100 (es decir, 1,4 x 10^{6}
organismos). Los cerdos en la segunda prueba se expusieron a 10 ml
de lote diluido en proporción 1:100 (es decir, 1,0 x 10^{6}
organismos), según lo recomendado.
El día de la exposición, el homogenado se
descongeló rápidamente en agua tibia y se diluyó de acuerdo con las
recomendaciones de la ISU usando medio de crecimiento estéril de
M. hyopneumoniae. Los cerdos se sedaron con una mezcla de
Xylazine-Ketamine-Telazol^{TM} que
consiste en 50 mg/ml de xilazina, 50 mg/ml de ketamina y 100 mg/ml
de Telazol. La mezcla anestésica se administró intramuscularmente a
razón de 0,022-0,044 ml/kilogramo de peso corporal
(0,01-0,02 ml/libra de peso corporal). A cada cerdo
se le administró una sola dosis de 14 ml (primera prueba) o de 10
ml (segunda prueba) del material de exposición, intratraquealmente.
Para asegurar que la colocación de la aguja era correcta, se extrajo
aire hacia la jeringa antes de la administración de la dosis de
exposición. Los cerdos de control no sometidos a exposición, no
vacunados, se mantuvieron en habitaciones separadas, y no se
sometieron a la exposición.
A los 30 días después de la exposición (DPC),
todos los cerdos se sacrificaron mediante eutanasia. Se extrajeron
los pulmones, y las lesiones grandes de los pulmones recibieron una
puntuación por una persona que no tenía conocimientos de los grupos
de ensayo.
Se recogieron muestras de sangre de todos los
cerdos el día de la vacunación (0 DPV), un mes después de la
vacunación (1 MPV), 4 MPV/0 DPC, y 30 DPC en busca de anticuerpos
del suero contra M. hyopneumoniae, detectado por un kit de
ELISA competitivo (fabricado por DAKO Co.). Las muestras de suero se
almacenaron a -20ºC antes de ser analizadas.
Las puntaciones de las lesiones pulmonares se
compararon entre grupos vacunados y no vacunados, mediante análisis
de variancia (ANOVA). A las puntaciones de los pulmones se les
realizó la transformación de arcoseno para mejorar la distribución
de los residuales.
Serología: Todos los cerdos en ambas
pruebas se analizaron en busca de anticuerpos del suero contra la
M. hyopneumoniae mediante un kit comercial de ELISA
competitivo, usando una dilución del suero de 1:10 para todos los
ensayos. Todos los cerdos fueron seronegativos (título de
anticuerpos menor que 10) en el momento de la vacunación, indicando
que los animales eran susceptibles a M. hyopneumoniae. Todos
los cerdos en los grupos de control permanecieron seronegativos
antes de la exposición. Esto indica que la respuesta inmunitaria en
los cerdos vacunados se debió a la vacuna y no a ninguna exposición
ambiental. Todos los cerdos en los grupos vacunados, y la mayor
parte de los cerdos en los grupos de control de la exposición (de 18
de 22 cerdos en la prueba uno, y 15 de 25 en la prueba 2),
sufrieron la conversión serológica a M. hyopneumoniae después
de la exposición, mientras que todos los animales no expuestos
siguieron siendo seronegativos. Esto implica que la exposición fue
específica para M. hyopneumoniae. El estado serológico de los
animales de ensayo se resume en la Tabla 1.
La primera prueba se llevó a cabo para
determinar si la vacuna del Ejemplo 2 podría estimular fuerte
inmunidad que pudiese proteger contra un mayor nivel de exposición
que el recomendado por la ISU a los cuatro meses después de la
vacunación. Esta prueba comparó también una vacuna del Ejemplo 2 con
la disponible comercialmente, Ingelvac M. hyo®, con respecto a su
capacidad para estimular inmunidad protectora a los cuatro meses
después de la vacunación.
Veintidós cerdos vacunados con FDAH Suvaxyn
MH-One y ocho cerdos con un producto de patente,
Ingelvac M. hyo® serie 271.032, se expusieron a 1,4 x 10^{6}
organismos por cerdo, del material de exposición (1,0 x 10^{6}
organismos por cerdo fue lo recomendado por la ISU, ver la Sección
5.5). Veintidós cerdos sirvieron como controles de la exposición, y
10 cerdos como controles de la ausencia de exposición. Los
porcentajes de lesiones pulmonares se resumen en la Tabla 2. Los
cerdos vacunados con la vacuna del Ejemplo 2 tuvieron lesiones
pulmonares medias de 15,9%, y los cerdos de control expuestos
tuvieron lesiones pulmonares medias de 19,6%. Las lesiones
pulmonares en el grupo vacunado con la vacuna del Ejemplo 2 fueron
menores que las del control, incluso cuando los cerdos se
expusieron con una dosis mayor de M. hyopneumoniae. Sin
embargo, la diferencia no fue significativa (p=0,19). De igual
manera, cuando se evaluó un producto comercialmente disponible, el
Ingelvac M. hyo®, en el mismo grupo de animales, con la misma dosis
de exposición, se obtuvo también un nivel similar de lesiones
pulmonares (14,6%). No hubo diferencia significativa entre el grupo
vacunado con Ingelvac M. hyo® y el grupo de control (p=0,27) y
entre el grupo vacunado con Ingelvac M. hyo® y el grupo vacunado con
la vacuna del Ejemplo 2 (p=0,88).
Aunque en el grupo que recibió la vacuna del
Ejemplo 2 se registró una reducción numérica no significativa de
las lesiones, los datos obtenidos en esta prueba sugieren que la
mayor dosis de exposición (1,4 x 10^{6} organismos) usada en esta
prueba fue probablemente abrumadora, incluso para la inmunidad de
los cerdos estimulada por el producto comercial Ingelvac. Este
nivel de exposición probablemente no es apropiado para la evaluación
del estudio de vacunación/exposición, usando tamaños de grupo de
20-25 animales, aunque con tamaños de grupos
mayores es posible que se mejore la significancia.
Los cerdos en los grupos vacunados y de control
expuesto, en la prueba 2, fueron evaluados con la dosis de
exposición (1,0 x 10^{6} organismos) tal como lo recomienda la
ISU, a los cuatro meses después de la vacunación, para demostrar la
DOI a los cuatro meses. Los porcentajes de lesión pulmonar se resume
en la Tabla 3. El grupo de control tuvo una lesión pulmonar media
de 10,4%. El grupo vacunado tuvo una lesión pulmonar media de 5,5%.
Hay una diferencia significativa entre los grupos vacunado y de
control (p=0,031). Esto indica que la vacuna del Ejemplo 2 es
eficaz estimulando la inmunidad protectora, que puede durar por lo
menos cuatro meses después de una vacunación con una sola dosis en
cerdos de tres semanas.
Aunque las dos pruebas fueron significativamente
diferentes, el efecto de la prueba en el grupo no fue significativo.
La magnitud del efecto de grupo fue similar entre las dos pruebas.
De este modo, el efecto del grupo se pudo evaluar sin considerar la
prueba. Dado que el análisis del modelo completo mostró que la
interacción entre el grupo y la prueba no fue significativa, esto
respalda la noción de que el efecto de grupo fue el mismo en ambas
pruebas, y justifica la combinación de datos de las dos pruebas en
un solo análisis. Como tal, cuando se combinaron los datos
relacionados con la vacuna del Ejemplo 2 procedentes de la dos
pruebas, y cuando la variable transformada mediante arcoseno para
la lesión pulmonar se analizó con el grupo y la prueba como
variables independientes (modelo reducido), el grupo es
estadísticamente significativo (p=0,013).
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
4
Usando esencialmente los mismos procedimientos
descritos en los Ejemplos 1 y 2, y empleando las cantidades
mostradas abajo, se preparó la vacuna de prueba A.
El pH de la serie se ajustó hasta 7,0 \pm
0,2.
MHDCE - equivalentes celulares de ADN de
Mycoplasma hyopneumoniae
En esta evaluación participaron treinta y tres
cerdos de 21 días. Se vacunaron veinte cerdos con una dosis de
vacuna A intramuscularmente (IM) a la edad de tres semanas. Diez
cerdos sirvieron como controles no vacunados, y tres cerdos como
controles ambientales sin exposición.
Todos los cerdos fueron seronegativos (título de
anticuerpos < 10) en el momento de la vacunación, indicando que
los animales eran susceptibles a M. hyopneumoniae. Todos los
cerdos en los grupos de control permanecieron seronegativos antes
de la exposición. Esto indica que la respuesta inmunitaria en los
cerdos vacunados se debió a la vacuna y no a ninguna exposición
ambiental.
Seis meses después de la vacunación, 20 cerdos
vacunados y 10 cerdos de control no vacunados se expusieron a M.
hyopneumoniae virulenta (1,0 x 10^{6} organismos por cerdo).
Tres cerdos sirvieron como controles sin exposición. Los cerdos
vacunados tuvieron una puntuación media de lesión pulmonar de 3,6%,
y los cerdos de control expuestos tuvieron una puntuación media de
lesión pulmonar de 14,6%. Las lesiones pulmonares en el grupo
vacunado fueron significativamente menores que las de los controles
(p=0,0215).
Los datos obtenidos en esta evaluación
demuestran que la vacuna de prueba A indujo inmunidad protectora a
la largo plazo contra el desafío con M. hyopneumoniae
virulenta, seis meses después de una vacunación con una sola
dosis.
Treinta y tres cerdos de 21 días se asignaron
aleatoriamente a tres grupos (grupo vacunado, grupo de control de
la exposición y grupo de control ambiental sin exposición), usando
el programa de aleatorización de Microsoft Excel por camada. Se
vacunaron veinte cerdos con una dosis de la vacuna de prueba A
intramuscularmente, a la edad de tres semanas. Diez cerdos
sirvieron como controles de la exposición, y tres cerdos como
controles ambientales sin exposición. Los cerdos en el grupo
vacunado y los controles de la exposición se expusieron a 10 ml de
un cultivo de M. hyopneumoniae virulenta (1,0 x 10^{6}
organismos) por cerdo a los seis meses después de la vacunación. Se
usaron tres cerdos no vacunados como controles de la ausencia de
exposición. Los cerdos expuestos y los controles de la ausencia de
exposición se sacrificaron por eutanasia 26 días después de la
exposición, y se dio una puntación a las lesiones pulmonares para
cada cerdo.
Cada cerdo en los grupos de vacunación recibió
una dosis de 2 ml de la vacuna de prueba, intramuscularmente, en el
costado del cuello.
El medio concentrado de exposición de M.
hyopneumoniae virulenta, un homogenado de pulmón congelado
(\leq -70ºC), se preparó por Dr. Eileen Thacker de la Universidad
del Estado de Iowa (ISU). Se confirmó que el medio concentrado de
exposición era puro y contenía aproximadamente 10^{7} organismos
de M. hyopneumoniae por ml.
Los cerdos se expusieron a 10 ml de una dilución
1:100 del medio concentrado (es decir, aproximadamente 1,0 x
10^{6} organismos).
En el día de la exposición, el homogenado se
descongeló rápidamente en agua tibia, y se diluyó de acuerdo con
las recomendaciones de la ISU, usando medio de crecimiento de M.
hyopneumoniae estéril. Los cerdos se sedaron con una mezcla de
xilazina-quetamina-Telazol^{TM}
que consistía en 50 mg/ml de xilazina, 50 mg/ml de quetamina, y 100
mg/ml de Telazol. La mezcla anestésica se administró IM a razón de
0,01-0,02 ml/libra de peso corporal. A cada cerdo
se le administró una sola dosis de 10 ml del material de exposición
(1,0 x 10^{6} organismos), intratraquealmente. Para asegurar que
la colocación de la aguja era correcta, se extrajo aire hacia la
jeringa antes de la administración de la dosis de exposición. Los
cerdos de control no vacunados, no expuestos, se mantuvieron en
habitaciones separadas, y no se expusieron.
A los 26 días después de la exposición (DPC),
todos los cerdos fueron sacrificados por eutanasia. Los pulmones se
extrajeron, y las lesiones pulmonares grandes recibieron una
puntuación tal como se describió en el Ejemplo 3.
Se recogieron muestras de sangre de todos los
cerdos el día de la vacunación (0 DPV), a 35 DPV, - 1 DPC y 26
DPC, para la determinación de anticuerpos del suero frente a M.
hyopneumoniae, según se detectan mediante un kit de ELISA
competitivo (fabricado por DAKO Co.) Las muestras de suero se
almacenaron a \leq -20ºC antes de ser analizadas.
Las puntuaciones de lesiones pulmonares se
compararon entre los animales vacunados y los controles, mediante
ANOVA unilateral. Las puntuaciones de las lesiones pulmonares se
transformaron por arcoseno, para mejorar la distribución de los
residuales. Dado que la suposición de normalidad para las
puntuaciones de lesiones pulmonares fue cuestionable, tanto las
puntuaciones de lesiones pulmonares como las puntuaciones de
lesiones pulmonares transformadas por arcoseno se analizaron
mediante la prueba de la Suma de Rangos de Wilcoxon. El nivel de
significancia se ajustó a p<0,05. Los resultados de la prueba de
la Suma de Rangos de Wilcoxon, no paramétrica, se usaron con fines
informativos.
Todos los cerdos se analizaron para determinar
anticuerpos del suero contra M. hyopneumoniae mediante un kit
comercial de ELISA competitivo, usando una dilución del suero de
1:10 para todos los ensayos. Las muestras con resultados de ensayo
dudosos según las instrucciones del kit se trataron como positivas
en el análisis de datos. Todos los cerdos fueron seronegativos
(título de anticuerpos <10) en el momento de la vacunación,
indicando que los animales eran susceptibles a M.
hyopneumoniae. Todos los cerdos en los grupos de control
permanecieron seronegativos antes de la exposición. Después de la
vacunación, quince de veinte animales vacunados (15/20) se
volvieron seropositivos a M. hyopneumoniae por lo menos una
vez (muestras recogidas a 35 DPV y -1 DPC). Esto indica que la
respuesta inmunitaria en los cerdos vacunados se debió a la vacuna y
no a ninguna exposición ambiental. Todos los cerdos vacunados y
cuatro de diez cerdos en el grupo de control de la exposición se
volvieron seropositivos a M. hyopneumoniae después de la
exposición, mientras que todos los animales expuestos siguieron
siendo seronegativos. El estado serológico de los animales de ensayo
se resume en la Tabla 4.
Veinte cerdos vacunados con la vacuna de prueba
A y diez cerdos de control no vacunados se expusieron a M.
hyopneumoniae virulenta (1,0 x 10^{6} organismos por cerdo) a
los seis meses después de la vacunación. Tres cerdos sirvieron como
controles de ausencia de exposición. Ocho de veinte animales
vacunados (40%) no desarrollaron lesiones pulmonares después de la
exposición, mientras que en el grupo de control solamente uno de 10
cerdos (10%) no tuvo lesión pulmonar. Los porcentajes de lesiones
pulmonares se resumen en la Tabla 5. Los cerdos vacunados tuvieron
una puntuación media de lesiones pulmonares de 3,6%, y los cerdos de
control expuestos tuvieron una puntuación media de lesiones
pulmonares de 14,6%. Las lesiones pulmonares en el grupo vacunado
fueron significativamente menores que para los controles
(p=0,0215).
\vskip1.000000\baselineskip
Como se puede observar a partir de los datos
mostrados en la Tablas 4 y 5, la vacuna de prueba A induce inmunidad
protectora contra una exposición a M. hyopneumoniae
virulenta, durante seis meses después de una administración de una
sola dosis en cerdos vacunados a la edad de tres semanas.
Claims (18)
1. Composición de vacuna para inmunizar a un
animal contra la infección por Mycoplasma hyopneumoniae, que
comprende:
una cantidad inmunizante de bacterina de
Mycoplasma hyopneumoniae;
un sistema adyuvante que se puede obtener
mezclando un polímero de ácido acrílico y una mezcla de un aceite
metabolizable y un copolímero de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno; y
un vehículo farmacéuticamente aceptable, cuya
composición de vacuna, después de una sola administración, produce
inmunidad protectora frente a Mycoplasma hyopneumoniae.
2. Composición de vacuna según la reivindicación
1, en la que el sistema adyuvante está constituido por un polímero
de ácido acrílico y una mezcla de un aceite metabolizable que
comprende uno o más hidrocarburos de terpeno y un copolímero de
bloques de polioxietileno-polioxipropileno en una
relación de aproximadamente 1:25 a 1:50 de polímero de ácido
acrílico con respecto a la mezcla de aceite metabolizable/copolímero
de bloques de polioxietileno-polioxipropileno.
3. Composición de vacuna según la reivindicación
1, en la que el sistema adyuvante está presente en una
concentración de aproximadamente 1-25% v/v de la
composición de vacuna.
4. Composición de vacuna según la reivindicación
3, en la que el polímero de ácido acrílico está presente en una
concentración final de aproximadamente 1% v/v, y la mezcla de
hidrocarburos de terpeno/copolímeros de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno está presente en una
concentración final de aproximadamente 5% a 10% v/v.
5. Composición de vacuna según la reivindicación
3, en la que el sistema adyuvante está presente en una
concentración de aproximadamente 2% - 15% v/v de la composición de
vacuna.
6. Composición de vacuna según la reivindicación
5, en la que el sistema adyuvante está presente en una
concentración de aproximadamente 5% - 12% v/v de la composición de
vacuna.
7. Composición de vacuna según la reivindicación
1, en la que el aceite metabolizable es escualano o escualeno.
8. Composición de vacuna según la reivindicación
6 ó 7, en la que el polímero de ácido acrílico es un carbómero.
9. Composición de vacuna según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 8, que comprende además por lo menos una
bacterina seleccionada de entre el grupo constituido por la bacteria
Haemophilus parasuis, Pasteurella multiocida, Streptococcum
suis, Actinobacillus pleuropneumoniae, Bordetella bronchiseptica,
Salmonella choleraesuis y leptospira.
10. Uso de la bacterina de Mycoplasma
hyopneumoniae en combinación con una mezcla adyuvante que
comprende un polímero de ácido acrílico y una mezcla de aceite
metabolizable y un copolímero de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno, y un vehículo
farmacéuticamente aceptable, para la preparación de una composición
de vacuna para proteger a un animal frente a una enfermedad causada
por Mycoplasma hyopneumoniae, composición la cual, después de
una sola dosis, produce inmunidad protectora frente a la infección
por Mycoplasma hyopneumoniae.
11. Uso según la reivindicación 10, en el que la
cantidad inmunizante de la bacterina de Mycoplasma
hyopneumoniae es de aproximadamente 1 x 10^{8} a 3 x
10^{11} MHDCE/ml, en el que MHDCE es el número de equivalentes
celulares de ADN de Mycoplasma hyopneumoniae.
12. Uso según la reivindicación 11, en el que la
cantidad inmunizante de dicha bacterina es de aproximadamente 1 x
10^{9} a 3 x 10^{9} MHDCE/ml.
13. Uso según la reivindicación 10, en el que la
composición de vacuna es para la administración intramuscular,
subcutánea, intraperitoneal, en aerosol, oral o intranasal.
14. Uso según la reivindicación 10, en el que el
sistema adyuvante consiste en un polímero de ácido acrílico y una
mezcla de aceite metabolizable que comprende uno o más hidrocarburos
de terpeno y un copolímero de bloques de
polioxietileno-polioxipropileno, presente en una
concentración final de aproximadamente 1 - 25% v/v.
15. Uso según la reivindicación 14, en el que el
polímero de ácido acrílico de la mezcla adyuvante es un
carbómero.
16. Uso según la reivindicación 14, en el que el
aceite metabolizable del sistema adyuvante es un hidrocarburo de
terpeno seleccionado de entre el grupo del escualeno y
escualano.
\newpage
17. Uso según cualquiera de las reivindicaciones
10 a 16, en el que además la composición de vacuna comprende por lo
menos una bacterina adicional seleccionada de entre el grupo
constituido por la bacteria Haemophilus parasuis, Pasteurella
multiocida, Streptococcum suis, Actinobacillus pleuropneumoniae,
Bordetella bronchiseptica, Salmonella choleraesuis y
leptospira.
18. Vacuna según la reivindicación 1, en la que
el polímero de ácido acrílico está presente en forma de una
emulsión de aceite en agua.
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|---|---|---|---|---|
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| MY129765A (en) * | 2000-12-19 | 2007-04-30 | Wyeth Corp | Improved mycoplasma hyopneumoniae bacterin vaccine |
| GB0400264D0 (en) * | 2004-01-07 | 2004-02-11 | Polytherics Ltd | Complexes |
| US7700285B1 (en) | 2005-12-29 | 2010-04-20 | Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. | PCV2 immunogenic compositions and methods of producing such compositions |
| UA95602C2 (ru) | 2004-12-30 | 2011-08-25 | Берингер Ингельхейм Ветмедика, Инк. | Иммуногенная композиция цвс2 и способы приготовления такой композиции |
| US7833707B2 (en) | 2004-12-30 | 2010-11-16 | Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. | Methods of overexpression and recovery of porcine circovirus type 2 ORF2 |
| US8834891B2 (en) | 2005-03-14 | 2014-09-16 | Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. | Immunogenic compositions comprising Lawsonia intracellularis |
| CA2635430A1 (en) | 2005-12-29 | 2007-08-23 | Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. | Use of a pcv2 immunogenic composition for lessening clinical symptoms in pigs |
| DK2275132T3 (da) | 2005-12-29 | 2021-05-17 | Boehringer Ingelheim Animal Health Usa Inc | Multivalente pcv2-immunogeniske sammensætninger og fremgangsmåder til at fremstille dem |
| WO2008073464A2 (en) | 2006-12-11 | 2008-06-19 | Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. | Effective method of treatment of porcine circovirus and lawsonia intracellularis infections |
| PT2094872T (pt) | 2006-12-15 | 2017-04-27 | Boehringer Ingelheim Vetmedica Inc | Tratamento de porcos seropositivos para o anticorpo anti-pcv2 com antigénio de pcv2 |
| EP1941903A1 (en) | 2007-01-03 | 2008-07-09 | Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh | Prophylaxis and treatment of PRDC |
| EP1958644A1 (en) | 2007-02-13 | 2008-08-20 | Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh | Prevention and treatment of sub-clinical pcvd |
| US7829274B2 (en) | 2007-09-04 | 2010-11-09 | Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. | Reduction of concomitant infections in pigs by the use of PCV2 antigen |
| US9056909B2 (en) | 2007-11-06 | 2015-06-16 | Zoetis Services Llc | Mycoplasma hyopneumoniae avirulent adjuvanted live vaccine |
| KR20100113582A (ko) | 2008-01-23 | 2010-10-21 | 베링거잉겔하임베트메디카인코퍼레이티드 | Pcv2 마이코플라즈마 히오뉴모니에 면역원성 조성물 및 당해 조성물의 생산 방법 |
| US8444989B1 (en) * | 2008-04-18 | 2013-05-21 | Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh | One dose vaccination against mycoplasma infections of pigs |
| EP2291194B1 (en) * | 2008-06-25 | 2017-02-22 | Braasch Biotech LLC | Compositions and methods for enhanced somatostatin immunogenicity |
| PE20120909A1 (es) * | 2009-05-19 | 2012-08-19 | Bioproperties Pty Ltd | Cepa de vacuna de mycoplasma hyopneumoniae sensible a la temperatura y usos de la misma |
| WO2010140377A1 (ja) | 2009-06-04 | 2010-12-09 | 独立行政法人産業技術総合研究所 | マイコプラズマ感染症用ワクチン |
| TWI627281B (zh) | 2009-09-02 | 2018-06-21 | 百靈佳殷格翰家畜藥品公司 | 降低pcv-2組合物殺病毒活性之方法及具有改良免疫原性之pcv-2組合物 |
| DK2475384T3 (en) * | 2009-09-10 | 2016-10-24 | Merial Inc | NEW VACCINE FORMULATIONS COMPREHENSIVE saponin-CONTAINING ADJUVANTS |
| EP2563389B1 (en) | 2010-04-30 | 2015-07-08 | Temasek Life Sciences Laboratory Limited | Universal vaccine against h5n1 lineages |
| WO2013149017A1 (en) * | 2012-03-28 | 2013-10-03 | Kansas State University Research Foundation | Vaccine adjuvant |
| US9120859B2 (en) | 2012-04-04 | 2015-09-01 | Zoetis Services Llc | Mycoplasma hyopneumoniae vaccine |
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| UA114504C2 (uk) | 2012-04-04 | 2017-06-26 | Зоетіс Сервісіз Ллс | Комбінована вакцина pcv, mycoplasma hyopneumoniae та prrs |
| CN103623400B (zh) * | 2012-08-24 | 2016-08-17 | 普莱柯生物工程股份有限公司 | 抗猪支原体肺炎、传染性胸膜肺炎疫苗组合物及制备方法 |
| AU2013370982C9 (en) | 2012-12-28 | 2019-01-24 | Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh | Immunogenic composition comprising mycoplasma antigens |
| PT2938747T (pt) | 2012-12-28 | 2019-08-01 | Boehringer Ingelheim Vetmedica Gmbh | Método de preparação de uma vacina de micoplasma |
| CN104338128B (zh) * | 2013-07-31 | 2017-09-05 | 普莱柯生物工程股份有限公司 | 一种疫苗组合物及其制备方法和应用 |
| ES2778425T3 (es) | 2013-10-02 | 2020-08-10 | Boehringer Ingelheim Animal Health Usa Inc | Variante de la proteína ORF2 del PCV2 y partículas similares a virus compuestas por esta |
| AU2016380864B2 (en) | 2015-12-28 | 2019-10-31 | Boehringer Ingelheim Animal Health USA Inc. | M hyo multivalent vaccine and uses thereof |
| CA3022006A1 (en) * | 2016-05-11 | 2017-11-16 | Phibro Animal Health Corporation | A composition comprising antigens and a mucosal adjuvant and a method for using |
| US11883476B2 (en) * | 2017-12-04 | 2024-01-30 | Intervet Inc. | Canine lyme disease vaccine |
| CN108324941A (zh) * | 2018-04-03 | 2018-07-27 | 林淑卿 | 猪疾病疫苗用佐剂及其制备方法 |
| CN117100851A (zh) * | 2023-10-23 | 2023-11-24 | 成都依思康生物科技有限公司 | 一种佐剂、疫苗组合物及其制备方法和应用 |
Family Cites Families (30)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US2909462A (en) * | 1955-12-08 | 1959-10-20 | Bristol Myers Co | Acrylic acid polymer laxative compositions |
| US3790665A (en) * | 1968-02-23 | 1974-02-05 | Haver Lockhart Labor Inc | Injectable adjuvant,method of preparing same and compositions including such adjuvant |
| US4606918A (en) * | 1983-08-22 | 1986-08-19 | Syntex (U.S.A.) Inc. | Polyoxypropylene-polyoxyethylene block polymer based adjuvants |
| JPH0832637B2 (ja) * | 1985-02-14 | 1996-03-29 | アクゾ・エヌ・ヴエー | 合成免疫原 |
| ES2052685T3 (es) | 1987-03-17 | 1994-07-16 | Akzo Nv | Metodo para producir un adyuvante libre. |
| ES2097840T3 (es) * | 1987-11-03 | 1997-04-16 | Syntex Inc | Adyuvante de vacuna que comprende un tetrapoliol. |
| US5240706A (en) * | 1989-04-07 | 1993-08-31 | Ml Technology Ventures, L.P. | Intranasal administration of Mycoplasma hyopneumoniae antigen |
| AU657907B2 (en) | 1990-05-29 | 1995-03-30 | Wyeth Holdings Corporation | Mycoplasma hyopneumoniae vaccine |
| US6113916A (en) * | 1990-05-29 | 2000-09-05 | American Cyanamid Company | Method of enhancing cell mediated immune responses |
| US5695769A (en) * | 1990-06-13 | 1997-12-09 | Pfizer Inc. | Pasteurella multocida toxoid vaccines |
| US5565205A (en) * | 1990-08-16 | 1996-10-15 | Solvay Animal Health, Inc. | Inactivated Mycoplasma hypopneumoniae bacterin and method of use thereof |
| ES2194841T3 (es) | 1991-11-15 | 2003-12-01 | Pfizer | Procedimiento de produccion de vacunas bacterianas gram negativas. |
| US5338543A (en) * | 1992-02-27 | 1994-08-16 | Ambico, Inc. | Thimerosal inactivated mycoplasma hyopneumoniae vaccine |
| US5534256A (en) * | 1992-07-02 | 1996-07-09 | University Of Saskatchewan | Haemophilus somnus outer membrane protein extract enriched with iron-regulated proteins |
| JP3265095B2 (ja) * | 1993-11-19 | 2002-03-11 | 本田技研工業株式会社 | キャニスタ |
| EP1820512B1 (en) * | 1994-05-10 | 2013-07-03 | Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. | Improved modified live brsv vaccine |
| US5820869A (en) * | 1995-06-07 | 1998-10-13 | American Home Products Corporation | Recombinant raccoon pox viruses and their use as an effective vaccine against feline immunodeficiency virus infection |
| DE19601754A1 (de) * | 1996-01-19 | 1997-07-24 | Hoechst Ag | Dictyocaulus viviparus Antigen zur Diagnose des Lungenwurmbefalls und zur Vakzinierung |
| US5846735A (en) * | 1996-04-18 | 1998-12-08 | University Of Iowa Research Foundation | Hepatitis C virus Fc-binding function |
| DE69740108D1 (de) * | 1996-12-20 | 2011-03-10 | Univ Texas | Moraxella catarrhalis antigene uspa1 und uspa2 |
| FR2775601B1 (fr) * | 1998-03-03 | 2001-09-21 | Merial Sas | Vaccins vivants recombines et adjuves |
| US6342231B1 (en) * | 1998-07-01 | 2002-01-29 | Akzo Nobel N.V. | Haemophilus parasuis vaccine and diagnostic |
| US6632439B2 (en) * | 1999-09-29 | 2003-10-14 | Novartis Animal Health, Inc. | Fusobacterium necrophorum vaccine and method for making such vaccine |
| US6585981B1 (en) | 2000-07-27 | 2003-07-01 | Regents Of The University Of Minnesota | Temperature-sensitive live vaccine for Mycoplasma hyopneumoniae |
| MY129765A (en) * | 2000-12-19 | 2007-04-30 | Wyeth Corp | Improved mycoplasma hyopneumoniae bacterin vaccine |
| US7018638B2 (en) * | 2000-12-19 | 2006-03-28 | Wyeth | Mycoplasma hyopneumoniae bacterin vaccine |
| JP2005515162A (ja) * | 2001-07-02 | 2005-05-26 | ファイザー・プロダクツ・インク | マイコプラズマ・ハイオニューモニエ(Mycoplasmahyopneumoniae)を用いた単回ワクチン接種 |
| AU2003214387A1 (en) * | 2002-03-07 | 2003-09-16 | Biocompatibles Uk Limited | Drug carriers comprising amphiphilic block copolymers |
| ITMI20030269A1 (it) * | 2003-02-14 | 2004-08-15 | Advance Holdings Ltd | Sale di cetilpiridino di un agente antiinfiammatorio |
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| US8187588B2 (en) | Mycoplasma hyopneumoniae bacterin vaccine | |
| HK1111103B (en) | Combined vaccine against mycoplasma hyopneumoniae and porcine circovirs | |
| HK1056513B (en) | Improved i mycoplasma hyopneumoniae /i bacterin vaccine |