ES2285840T3 - Medio de cultivo para el cultivo de celulas animales y metodo para producir proteinas que utilizan dicho metodo. - Google Patents

Medio de cultivo para el cultivo de celulas animales y metodo para producir proteinas que utilizan dicho metodo. Download PDF

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Kazushi Chugai Seiyaku K. K. SHIBUYA
Masaru Chugai Seiyaku K. K. ATSUMI
Shigeyuki Chugai Seiyaku K. K. TSUNAKAWA
Kaneo Chugai Seiyaku K. K. NOGAKI
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Abstract

Un medio de cultivo adecuado para el cultivo de una célula animal, caracterizado por contener un producto de degradación enzimática de carne de pescado o un extracto de carne de pescado.

Description

Medio de cultivo para el cultivo de células animales y método para producir proteínas que utilizan dicho método.
Campo industrial
Esta invención se refiere a un medio de cultivo para el cultivo de una célula animal y a un método para producir una proteína utilizando dicho método. Más específicamente, la invención se refiere a un medio de cultivo para el cultivo de una célula animal, conteniendo el medio de cultivo un extracto de carne de pescado, o un producto de la degradación enzimática de carne de pescado, pero no contiene componente derivado de mamífero tal como proteína o su producto de descomposición; y a un método para producir una proteína utilizando el medio de cultivo.
Antecedentes de la invención
En el cultivo de una célula animal para obtener una proteína natural producida por la célula animal, o en el cultivo de una célula animal incorporando un gen que codifica para una proteína deseada para producir esa deseada proteína, etc., se añaden al medio de cultivo nutrientes esenciales tales como bases, azúcares, aminoácidos y vitaminas. Además, se añade habitualmente un extracto derivado de mamífero, concretamente, suero tal como suero bovino fetal, en una cantidad en el intervalo de 5 a 20% para proliferación de la célula animal. Sin embargo, tal suero derivado de mamífero tiene una serie de desventajas. Supone un 75 a un 96% del coste del medio de cultivo, y a causa de las diferencias que existen entre lotes en cuanto a calidad, no se alcanza una proliferación estable. Además, el suero derivado de mamífero no puede esterilizarse en un autoclave o similar, por lo que puede contaminarse con virus y micoplasmas. Aunque la mayoría de estos virus o micoplasmas no son patógenos, pueden llegar a ser factores desconocidos adicionales desde el punto de vista de una producción estable. Además, el suero contiene más de 500 tipos de proteínas, lo que complica el aislamiento y purificación de la proteína deseada, el producto de la célula, desde el medio de cultivo. Para resolver estos problemas con una producción estable, se llevan a cabo métodos que utilizan una proteína purificada derivada del suero tal como fetuina, insulina o transferrina, en lugar del suero. También se han intentado métodos que utilizan componentes de medio de cultivo extraído de animales, desde el punto de vista de los costes de producción.
En años recientes, se ha expresado la preocupación sobre la relación de componentes derivados de mamíferos con la enfermedad de las vacas locas, encefalopatía espongiforme bovina (BSE), encefalopatía espongiforme transmisible (TSE), y enfermedad de Creutzfeld- Jakob (CJD). Por eso, por el aspecto de la seguridad, existe la demanda del desarrollo de un medio de cultivo para el cultivo de una célula animal, medio de cultivo que esté libre de estos componentes derivados de mamífero.
En el cultivo de una célula animal, el no añadir los anteriormente mencionados componentes derivados de mamífero al medio de cultivo da lugar a una marcada caída en la tasa de supervivencia de las células, y una disminución en el número de células viables en el caldo de cultivo, en un estadio temprano del cultivo. Estos episodios hacen imposible el cultivo a largo plazo o a gran escala. La presente invención tiene como objetivo proporcionar un medio de cultivo de una célula animal, medio de cultivo que no contiene componentes derivados de mamífero y que está libre de los anteriores problemas, y un método para producir una proteína empleando el medio de cultivo.
Descripción de la invención
Para conseguir el anterior objetivo, los autores de la presente invención han eliminado los componentes derivados de mamífero de los medios de cultivo convencionales para cultivar las células animales. Han añadido varias substancias a los medios de cultivo resultantes y han llevado a cabo un estudio exhaustivo utilizando célula CHO transformada con un gen que codifica una proteína anticuerpo. El propósito del estudio era la obtención de una substancia que estimulara la proliferación de la célula CHO, produciendo así una elevada concentración de la proteína anticuerpo. El estudio ha conducido al hallazgo de que podía conseguirse el propósito por adición de un extracto de carne de pescado o un producto de degradación enzimática de la carne de pescado, y basándose en este hallazgo se ha completado la presente invención.
Según esto, la invención se refiere a un medio de cultivo para cultivo de una célula animal, medio de cultivo que contiene un extracto de carne de pescado o un producto de degradación enzimática de carne de pescado, y un método para producir una proteína con el empleo del medio de cultivo.
Breve descripción de las figuras
La Figura 1 es una gráfica que muestra la densidad de células viables de células CHO cultivadas en medios de cultivo que contienen 1% Brix y 2% Brix de un producto de degradación enzimática de carne de pescado, y 10 g/l de hidrolizado de buey, respectivamente.
La Figura 2 es una gráfica que muestra las tasas de supervivencia (%) de células CHO cultivadas en medios de cultivo que contienen 1% Brix y 2% Brix de un producto de degradación enzimática de carne de pescado, y 10 g/l de un hidrolizado de buey, respectivamente.
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La Figura 3 es una gráfica que muestra las concentraciones (mg/l) de una proteína anticuerpo producida en medios de cultivo por células CHO que habían sido cultivadas en medios de cultivo que contiene 1% Brix y 2% Brix de un producto de degradación enzimática de carne de pescado, y 10 g/l de un hidrolizado de buey, respectivamente.
La Figura 4 muestra los resultados de cultivo de células utilizando un dispositivo de cultivo de células tipo matraz de sacudidor del Ejemplo 5. Los ejes verticales de los paneles de la Figura 4 representan la densidad de célula viables, la tasa de supervivencia de células, y la cantidad de proteína anticuerpo producida, respectivamente. Los ejes horizontales representan, cada uno, el número de días de cultivo tras comenzar el cultivo utilizando el medio de cultivo B.
El mejor modo de llevar a cabo la invención
La presente invención se describirá a continuación con detalle. Todos los documentos aquí citados lo son como referencia.
El medio de cultivo de la invención es un medio de cultivo de una célula animal, medio de cultivo que contiene un extracto de carne de pescado o un producto de degradación enzimática de la carne de pescado. Según la invención, se puede cultivar satisfactoriamente una célula animal sin adición de componentes derivados de mamífero en un medio de cultivo que ha sido utilizado generalmente como medio de cultivo para el cultivo de una célula animal.
Entre los ejemplos de la carne del pescado utilizado en la invención están la de los pescados de carne roja, tales como bonito, caballa fragata, atún, caballa, jurel, sardina, caballa equina, y salmón, y los pescados de carne blanca, tales como bacalao, perca de los mares de Japón, platija de ojo derecho, platija de ojo izquierdo y ciprínido marino. Los ejemplos que se prefieren son bonito, caballa fragata, bacalao, caballa, salmón, y sardina.
El extracto de carne de pescado utilizado en la invención se puede obtener cortando la carne del pescado en trozos adecuados, o desmenuzando la carne del pescado hasta formar una pasta y extrayendo los componentes solubles de los trozos o la pasta con agua caliente, por ejemplo, agua caliente entre 90 y 95ºC, durante varias decenas de minutos a varias decenas de horas. Ejemplos concretos son los stocks hechos de bonito hervido para producción de bonito desecado, y el drenado de la cocción durante la producción del alimento enlatado.
El producto de degradación de enzima de la carne de pescado se puede obtener, por ejemplo, por adición de una cantidad adecuada de agua a la carne del pescado cocida como tal, o la carne de pescado desmenuzada hasta una pasta, o el extracto de la carne del pescado anterior, seguido, si es necesario, por calentamiento para desnaturalización de la proteína, tratando entonces el material con una proteasa, y centrifugando o filtrando el material tratado según se desee, para separar aceites e insolubles. El extracto de carne de pescado resultante o el producto de degradación enzimática de la carne de pescado se ajusta deseablemente a pH 7 a 7,4 para su uso.
La proteasa utilizada en la invención es, por ejemplo, una proteinasa y/o una peptidasa. En la invención, el término proteinasa se refiere a una enzima que hidroliza una proteína como substrato, mientras que el término peptidasa se refiere a una hidrolasa del enlace péptido para un péptido como substrato. Es decir, la actividad de la proteasa frente al substrato proteína se puede designar como actividad de proteínasa, mientras que la actividad de proteasa frente al substrato péptido se puede designar como actividad de peptidasa. Cuando se cataliza la escisión de una cadena de enlaces peptídicos, en su posición intermedia, por la actividad de proteasa frente al substrato proteína, se utiliza el término proteinasa. Por tanto, endopeptidasa se utiliza aquí como una de las proteinasas.
Entre los ejemplos de enzimas que se utilizan están las enzimas de origen vegetal, tales como papaína, quimopapaína, bromomelaína, y ficina, y enzimas de microrganismos, tales como mohos, bacterias y levaduras. Estas incluyen endopeptidasa, exopeptidasa, aminopeptidasa, carboxipeptidasa y dipeptidasa. Estas enzimas se pueden utilizar solas o en combinación. Cuando se combinan, se pueden añadir al mismo tiempo o progresivamente.
El producto de degradación enzimática de la carne de pescado en la presente invención es, preferiblemente, un producto de degradación enzimática de la carne de pescado obtenido por tratamiento con la proteinasa, seguido del tratamiento con la peptidasa.
Las condiciones para el tratamiento con la encima difieren según el tipo de la enzima utilizada. Normalmente, el tratamiento de enzima se lleva a cabo durante 30 minutos a 72 horas, preferiblemente 3 a 24 horas, a pH 2 a 12, preferiblemente pH 4 a 8, a 30, a 90ºC, preferiblemente 40 a 65ºC. La enzima se utiliza en una proporción de aproximadamente 0,01 a 10%, preferiblemente 0,5 a 5%, más preferiblemente 1 a 3%, basado en la proteína como substrato.
La enzima en el producto de degradación enzimática resultante de la carne de pescado se inactiva por calentamiento o similar y llevando a cabo centrifugación o filtración, según se desee, para separar aceites insolubles, con lo que se puede preparar el producto de degradación enzimática.
Como otros componentes del medio de cultivo de la invención, se pueden utilizar varios componentes en medios de cultivo de células animales según se desee. Estos incluyen aminoácidos, vitaminas, factores de lípidos, fuentes de energía, reguladores osmóticos, fuentes de hierro y reguladores de pH. Además de estos componentes, se pueden añadir elementos de metal traza, agentes tensioactivos, cofactores de crecimiento, y nucleosidos.
Entre los ejemplos están aminoácidos, tales como L-alanina, L-arginina, L-asparagina, ácido L-aspártico, L-cisteína, L-cistina, L-glutamina, ácido L-glutámico, glicina, L-histidina, L-isoleucina, L-leucina, L-lisina, L-metionina, L-ornitina. L-fenilalanina, L-prolina, L-serina, L-treonina, L-triptofano, L-tirosina, y L.valina, preferiblemente, L-alanina, L-arginina, L-asparagina, ácido L-aspártico, L-cistina, L-glutamina, ácido L-glutámico, glicina, L-histidina, L-isoleucina, L-leucina, L-lisina, L-metionina, L-fenilalanina, L-prolina, L-serina, L-treonina, L-triptofano, L-tirosina y L-valina; vitaminas, tales como i-inositol, biotina, ácido fólico, ácido lipoico, nicotinamida, ácido nicotínico, ácido p-aminobenzoco, pantotenato de calcio, hidrocloruro de piridoxal, hidrocloruro de piridoxina, riboflavina, hidrocloruro de tiamina, vitamina B_{12}, y ácido ascórbico, preferiblemente biotina, ácido fólico, ácido lipoico, nicotinamida, pantotenato de calcio, hidrocloruro de piridoxal, riboflavina, hidrocloruro de tiamina, vitamina B_{12}, y ácido ascórbico; factores de lípidos, tales como cloruro de colina, tartrato de colina, ácido linoleico, ácido oleico y colesterol, preferiblemente, cloruro de colina; fuentes de energía, tales como glucosa, galactosa, manosa y fructosa, preferiblemente, glucosa; reguladores osmóticos, tales como cloruro de sodio, cloruro de potasio, y nitrato de potasio, preferiblemente, cloruro de sodio; fuentes de hierro, tales como EDTA de hierro, citrato férrico, cloruro ferroso, cloruro férrico, sulfato ferroso, sulfato férrico y nitrato férrico, preferiblemente, cloruro férrico, EDTA de hierro y citrato férrico y reguladores del pH, tales como bicarbonato de sodio, cloruro de calcio, fosfato monobásico de sodio, HEPES, y MOPS, preferiblemente bicarbonato de sodio. Se pueden citar como ejemplos los medios de cultivo que contienen cualquiera de estos componentes.
Junto con los anteriores componentes, se pueden añadir elementos metálicos traza, tales como sulfato de cobre, sulfato de manganeso, sulfato de zinc, sulfato de magnesio, cloruro de níquel, cloruro de estaño, cloruro de magnesio, y subsilicato de sodio, preferiblemente sulfato de cobre, sulfato de zinc, y sulfato de magnesio; agentes tensioactivos, tales como Tween 80, y Pluronic F68; cofactores de crecimiento, tales como insulina recombinante, IGF recombinante, EGF recombinante, FGF recombinante PDGF recombinante, TGF-\alpha recombinante, hidrocloruro de etanolamina, selenito de sodio, ácido retinoico, y dihidrocloruro de putrescina, preferiblemente, selenito de sodio, hidrocloruro de etanolamina, IGF recombinante, y dihidrocloruro de putrescina; y nucleosidos, tales como desoxiadenosina, desoxicitidina, desoxiguanosina, adenosina, citidina, guanosina y uridina. En modos de realización preferidos de la presente invención, puede estar contenidos antibióticos, tales como estreptomicina, penicilina G potasio y gentamicina, e indicadores de pH, tales como Rojo fenol.
Para preparar, en concreto, el medio de cultivo de la invención, se puede añadir el extracto de la carne del pescado, o el producto de la degradación enzimática de la carne de pescado, en lugar de los componentes derivados del mamífero, a un medio de cultivo disponible comercialmente, para el cultivo de la célula animal, por ejemplo medio BME, medio MEM, medio DMEM, medio F10, o medio F12.
En la invención, se añade el extracto de carne del pescado, o producto de la degradación enzimática de la carne de pescado al medio de cultivo a una concentración de aproximadamente 5% Brix o menos, preferiblemente 0,5 a 3% Brix, preferiblemente en particular 1 a 2% Brix, en el medio de cultivo. Esta concentración es una concentración determinada por los sólidos solubles, como un índice, medida con un refractómetro para el contenido de azúcar.
Las cantidades de los otros componentes en el medio de cultivo son 0,05 a 1.500 mg/l para aminoácidos, 0,001 a 10 mg/l para vitaminas, 0 a 200 mg/l para factores de lípidos, 1 a 20 g/l para fuentes de energía, 0,1 a 10.000 mg/l para reguladores osmóticos, 0,1 a 500 mg/l para fuentes de hierro, 1 a 10.000 mg/l para agentes tampón de pH, 0,00001 a 200 mg/l para elementos de metal traza, 0 a 5.000 mg/l para agentes tensioactivos, 0,05 a 10.000 \mug/l para cofactores de crecimiento, y 0,001 a 50 mg/l para nucleosidos. Sus cantidades se pueden determinar, según se requiera, dependiendo del tipo de célula animal que se cultiva y el tipo de proteína deseada.
El pH del medio de cultivo difiere según la célula que se cultiva, pero generalmente es un pH de 6,8 a 7,6, pH 7,2 a 7,4 en muchos casos.
El medio de cultivo de la invención se puede utilizar sin restricción para cultivar preferiblemente varios tipos de células animales. Por ejemplo, se puede cultivar una célula COS o célula CHO que tiene un gen para el deseado anticuerpo o substancia fisiológicamente activa incorporado por un procedimiento de ingeniería genética o una célula fundida que produce anticuerpo tipificada por un hibridoma, tal como una ratón.- humano. ratón-ratón o ratón-rata. El medio de cultivo es preferido en particular para cultivar una célula CHO. No hace falta decir que el medio de cultivo para cultivar una célula animal según la invención se puede utilizar cuando se cultiva una célula animal para obtener una proteína natural producida por la célula animal. El medio de cultivo se puede utilizar para cultivar una célula de BHK y una célula HeLa así como las células antes mencionadas.
Las condiciones de cultivo difieren según el tipo de célula utilizada, y se pueden determinar las condiciones preferidas según se desee. La célula CHO, por ejemplo, se cultiva normalmente durante 1 a 14 días en una atmósfera con una concentración de CO_{2} en la fase gaseosa de 0 a 40%, preferiblemente 2 a 10%, a 30 a 39ºC, preferiblemente aproximadamente 37ºC.
El cultivo se puede llevar a cabo utilizando varios dispositivos de cultivo para cultivo de células animales, por ejemplo un dispositivo de cultivo de depósito tipo fermentador, un dispositivo de cultivo de tipo elevador neumático, un dispositivo de cultivo del tipo matraz de cultivo, un dispositivo de cultivo tipo matraz giratorio, un dispositivo de cultivo tipo microtransportador, un dispositivo de cultivo de lecho fluidizado, un dispositivo de cultivo de tipo fibra hueca, un dispositivo de cultivo del tipo botella rodillo, y un dispositivo de cultivo del tipo lecho empaquetado.
Por realización de un cultivo en el medio de cultivo para cultivar una célula animal según la invención, se puede obtener una proteína producida por la célula animal en el medio de cultivo. Para producir la proteína desde la célula animal, puede ser suficiente el simple cultivo, o se puede requerir un procedimiento especial. El procedimiento, condiciones, etc. se pueden determinar, según se requiera, dependiendo de la célula animal que se cultiva. En el caso de una célula CHO transformada por un vector que contiene un gen que codifica un anticuerpo quimérico ratón-humano por una operación de ingeniería genética, por ejemplo, el cultivo se realiza en las condiciones antes mencionadas, con lo que puede obtenerse la proteína deseada en el medio de cultivo en aproximadamente 1 a 14 días, preferiblemente en aproximadamente 7 a 10 días. El medio de cultivo se somete a aislamiento y purificación por los métodos acostumbrados (véase, por ejemplo, "Introducción a Ingeniería de Anticuerpos", editorial Chijin Sho Kan, páginas 102-104; Principios y Métodos de Cromatografía de Afinidad; Amersham Pharmacia Bitech, páginas 56-60), con lo que se puede obtener la proteína deseada.
Los métodos anteriores de producción pueden producir proteínas de gen recombinantes, tales como anticuerpos recombinantes tales como anticuerpo de receptor IL-6 anti-humano (incluyendo anticuerpos quiméricos, anticuerpos humanizados, anticuerpos humanos), factor estimulante de colonia de granulocitos (G-CSF), factor estimulante de colonia de macrófagos granulocitos (GM-CSF), eritropoyetina, interferon, interleucinas (por ejemplo, IL-1 y IL-6), t-PA, urocinasa, albúmina de suero, y factor VIII de coagulación de la sangre.
Aplicabilidad industrial
El medio de cultivo para cultivar una célula animal según la presente invención contiene un extracto de carne de un pescado o un producto de degradación enzimática de la carne de pescado, haciendo así posible cultivar establemente una célula animal, sin emplear una proteína cara que varía mucho en calidad, tal como el suero bovino fetal. Además, por cultivo de la célula animal en el medio de cultivo para cultivar una célula animal según la presente invención, es decir, el medio de cultivo que tiene el extracto de la carne de pescado o el producto de degradación enzimática de la carne de pescado, se puede eliminar el riesgo de contaminación por prion anormal o por virus, que es el problema que ha aparecido en los últimos años, y se pueden producir productos biotecnológicos seguros y disponer de ellos.
Ejemplos
A continuación se dan ejemplos para describir con más detalle la presente invención, pero la invención no queda limitada por estos ejemplos. Se pueden realizar cambios y modificaciones por personas especialistas en esta área, los cuales también se incluyen en el marco de la invención.
Ejemplo 1 Preparación del extracto de la carne de pescado (sardina)
Se utilizó sardina comercial como carne de pescado. A 500 g de la carne de pescado desmenuzada, se añadieron 2.500 g de agua y la carne del pescado se dejó en extracción durante 90 minutos a una temperatura de 95ºC.
El extracto se centrifugó y filtró para separar insolubles y aceites. El residuo se concentró para obtener 64 g de un extracto de la carne del pescado (sardinas).
Ejemplo 2 Preparación de un producto de degradación enzimática de carne de pescado (bonito)
Se utilizó bonito disponible comercialmente como carne del pescado. A 1.000 g del bonito desmenuzado, se añadieron 1.500 g de agua. La mezcla se incubó durante 1 hora junto con 4 g de papaina derivada de vegetal a un pH 6,0 y 50ºC para degradación enzimática. Se llevó a cabo entonces más degradación enzimática con 4 g de exopeptidasa derivada de mohos durante 20 minutos bajo las condiciones anteriores, después de lo cual se calentó el sistema a 95ºC para inactivar las enzimas. Se centrifugó entonces el sistema y se filtró para separar los insolubles y aceites. Se concentró el residuo para obtener 500 g de un producto de degradación enzimática de carne de pescado (bonito) según la invención.
Ejemplo 3 Preparación de medio de cultivo
Se separaron timidina e hipoxantina de un medio DMEM/F12 comercialmente disponible (Productos GIBCO BRL y Guía de Referencia, páginas 357-358). Al medio resultante se añadieron los siguientes componentes (la mezcla se citará después como Medio de Cultivo A) y la mezcla se utilizó como medio de base para el cultivo de una célula animal.
Medio de cultivo A
Se separaron la timidina y la hipoxantina de un medio comercial DMEM/F12, y se añadieron los siguientes componentes:
30 mg/l de ácido ascórbico
10 mg/l de desoxiadenosina (1H_{2}O)
10 mg/l de desoxicitina
10 mg/l de desoxiguanosina
5 mg/l de adenosina
5 mg/l de citidina
5 mg/l de guanosina
4 mg/l de uridina
4 mg/l de etanolamina (HCl)
1000 mg/l de Pluronic F-68
18,9 mg/l de cloruro férrico (6H_{2}O).
Al anterior medio de cultivo A, se añadió el producto de degradación enzimática preparado en el Ejemplo 2 a una concentración final de 1% Brix o 2% Brix, y la mezcla se esterilizó por filtración.
Ejemplo 4 Efecto sobre la cantidad de anticuerpo producido
Se llevó a cabo un ensayo utilizando cepa de células CHO que producían anticuerpo humanizado (anticuerpo de receptor IL-6 anti-humano) que se preparó según el método descrito en el Ejemplo de referencia 2 de la Publicación de Patente sin examinar No. 99902/1996 por utilización de promotor I\alpha de factor de elongación humano descrito en el Ejemplo 10 de la Publicación de Solicitud de Patente Internacional Nº WO92/19759.
Las anteriores células (1,5 x 10^{5} células/ml) se añadieron a Medio de cultivo A que contenía el producto de degradación enzimática de la carne del pescado, que se había preparado en el Ejemplo 2 de la presente invención, a una concentración final de 1% Brix o 2% Brix. El sistema se cultivó durante 10 días en las condiciones de incubadora de 37ºC, 5% de CO_{2}, por medio de un dispositivo de cultivo de células tipo matraz de sacudidor.
Se midieron entonces la densidad de células viables, la tasa de células supervivientes, y la cantidad de producción de una proteína de anticuerpo obtenida desde el medio de cultivo. La cantidad de producción se midió utilizando cromatografía de líquidos de alto rendimiento de fase inversa.
Se preparó, como control, un medio de cultivo que contenía 10 g/litro de un hidrolizado de buey (Primatone^{TM}: Quest, Estados Unidos) en lugar del producto de degradación de enzima del Ejemplo 2, y las células CHO se cultivaron de la misma manera.
Los resultados obtenidos se muestran en la Figura 1. Comparando con el control, las células CHO cultivadas en el medio de cultivo que contenía 1% Brix del producto de degradación enzimática de bonito mostraba un crecimiento celular comparable al del control. Las células CHO cultivadas en el medio de cultivo que contenía 2% Brix del producto de degradación enzimática de bonito producían una cantidad mayor de proteína de anticuerpo que el control.
Ejemplo 5 Efecto del medio de cultivo utilizando productos de degradación enzimática de varias carnes de pescado sobre la cantidad de producción de anticuerpo
Se añadieron productos de degradación enzimática de las carnes de pescado de bonito, sardina, salmón, caballa fragata, bacalao y caballa a un medio de cultivo de origen no-mamífero, y se estudió la cantidad de producción de proteína anticuerpo.
Preparación del producto de degradación de la carne de pescado
Se preparó un producto de degradación de la carne de los pescados anteriores por el método descrito en el Ejemplo 2. Es decir, se desmenuzó la carne del pescado y se sometió a degradación enzimática con papaína, una endopeptidasa derivada de vegetales. Se sometió entonces el material a más degradación con exopeptidasa derivada de moho, después de lo cual se calentó el sistema para inactivar las enzimas. Se centrifugó entones el sistema y se filtró para separar insolubles y aceites. Se concentró el residuo para preparar un producto de degradación enzimática de la carne de pescado.
Preparación del medio de cultivo y método de ensayo
Se añadieron células CHO dhfr (-) transformadas con un gen que codifica el anticuerpo PM-1 humanizado (anticuerpo de receptor IL-6 anti-humano) descrito en el Ejemplo 4, y se añadió gen marcador selectivo dhfr al medio de cultivo B que contenía el producto de degradación enzimática de bonito, sardina, salmón, caballa fragata, bacalao o caballa a una concentración final de 10 g/litro (1% Brix) o 15 g/litro (1,5% Brix). Se cultivó el sistema durante 10 días bajo condiciones de incubadora, 37ºC, 5% de CO_{2}, en un dispositivo de cultivo de células tipo matraz de sacudidor. Se determinaron entonces la densidad de células viables, la tasa de supervivencia de células, y la cantidad de producción de una proteína anticuerpo. A continuación se muestran los componentes del medio de cultivo B.
Medio de cultivo B
Se separaron timidina e hipoxantina de un medio DMEM/F12 comercial, y se añadieron los siguientes componentes:
12,5 mg/l de ácido ascórbico
2,5 mg/l de desoxiadenosina (1H_{2}O)
2,5 mg/l de desoxicitina
2,5 mg/l de desoxiguanosina
2,5 mg/l de adenosina
2,5 mg/l de citidina
2,5 mg/l de guanosina
5,0 mg/l de uridina
0,2 mg/l de putrescina (HCl)
0.975 mg/l de etanolamina (HCl)
500 mg/l de Pluronic F-68
10 mg/l de citrato férrico.
Resultados
Los resultados obtenidos se muestran en la Figura 4. Había diferencias en la cantidad de la proteína de anticuerpo producido por el hidrolizado de carne de pescado. Es decir, cuando se añadió el producto de degradación de la carne de pescado a una concentración final de 1% Brix (10 g/l), las cantidades producidas, en orden decreciente eran las siguientes: bonito > caballa fragata > bacalao > salmón > caballa > sardina. Cuando se añadió el producto de degradación enzimática de la carne de pescado a una concentración final de 1,5% Brix (15 g/l), las cantidades producidas, en orden decreciente, eran las siguientes: bonito > caballa fragata > bacalao > caballa > salmón > sardina.
Los anteriores ensayos demuestran que el producto de degradación enzimática de la carne de pescado muestra diferentes efectos sobre la cantidad de producción de proteína anticuerpo según el tipo de carne de pescado utilizada, pero es eficaz para el crecimiento de células CHO dhfr (-) transformadas con un gen que codifica proteína anticuerpo y un gen marcador selectivo de dhfr, y es eficaz también para la producción de una proteína anticuerpo.

Claims (14)

1. Un medio de cultivo adecuado para el cultivo de una célula animal, caracterizado por contener un producto de degradación enzimática de carne de pescado o un extracto de carne de pescado.
2. El medio de cultivo según la reivindicación 1, que es un medio de cultivo para producir una proteína deseada por cultivo de una célula animal, conteniendo el medio de cultivo el extracto de carne de pescado.
3. El medio de cultivo según la reivindicación 1, que es un medio de cultivo para producir una proteína deseada por cultivo de célula animal, conteniendo el medio de cultivo el producto de degradación enzimática de la carne del pescado.
4. El medio de cultivo según la reivindicación 3, donde el producto de degradación enzimática de la carne del pescado ha sido obtenido por tratamiento de la carne del pescado o extracto de la carne del pescado con una proteasa.
5. El medio de cultivo según la reivindicación 4, donde la proteasa es una proteinasa y/o una peptidasa.
6. El medio de cultivo según la reivindicación 4, donde el producto de degradación enzimática de la carne de pescado ha sido obtenido por tratamiento de la carne de pescado o extracto de la carne de pescado con una proteinasa y luego con una peptidasa.
7. El medio de cultivo según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, que es un medio libre de componentes derivados de un mamífero.
8. El medio de cultivo sobre cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7, que contiene aminoácidos, vitaminas, factores de lípido, fuentes de energía, reguladores osmóticos, fuentes de hierro y reguladores del pH.
9. El medio de cultivo según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 8, donde la célula animal es una célula animal a la que se ha transducido un gen que codifica la proteína deseada.
10. El medio de cultivo según la reivindicación 9, donde la proteína deseada es un anticuerpo o substancia fisiológicamente activa.
11. El medio de cultivo según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10, donde la célula animal es una célula CHO.
12. El medio de cultivo según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 11, donde la carne del pescado deriva de uno o más miembros seleccionados del grupo formado por bonito, caballa fragata, bacalao, caballa, salmón y sardina.
13. Un método para producir una proteína deseada que comprende el cultivo de una célula animal, donde el citado cultivo se lleva a cabo con el medio de cultivo de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 12.
14. El método según la reivindicación 13, que comprende además la obtención de la citada proteína desde el medio de cultivo.
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Families Citing this family (29)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU736282B2 (en) 1997-03-21 2001-07-26 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha A preventive or therapeutic agent for sensitized T cell- mediated diseases comprising IL-6 antagonist as an active ingredient
DE60009956T2 (de) * 1999-12-28 2005-04-28 Iso Tis N.V. Wachstumsfaktoren und l-glutamin enthaltendes zellkulturmedium
UA80091C2 (en) 2001-04-02 2007-08-27 Chugai Pharmaceutical Co Ltd Remedies for infant chronic arthritis-relating diseases and still's disease which contain an interleukin-6 (il-6) antagonist
DE10124820A1 (de) * 2001-05-21 2002-12-05 Heinrich Wieland Zusammensetzung und Verwendung von Substanzen zur Stabilisierung von schwefelhaltigen Aminosäuren im Blut
WO2003068260A1 (fr) 2002-02-14 2003-08-21 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Produits pharmaceutiques en solution contenant des anticorps
GB2401040A (en) 2003-04-28 2004-11-03 Chugai Pharmaceutical Co Ltd Method for treating interleukin-6 related diseases
EP3269738A1 (en) 2004-03-24 2018-01-17 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Subtypes of humanized antibody against interleukin-6 receptor
US7335491B2 (en) * 2004-08-27 2008-02-26 Wyeth Research Ireland Limited Production of anti-abeta
US20060094104A1 (en) 2004-10-29 2006-05-04 Leopold Grillberger Animal protein-free media for cultivation of cells
KR100679112B1 (ko) * 2004-11-17 2007-02-07 삼성정밀화학 주식회사 동물세포 배양방법
US9714410B2 (en) * 2005-01-05 2017-07-25 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Cell culture method and utilization of the same
EP3026109B1 (en) * 2005-12-08 2022-03-09 Amgen Inc. Improved production of glycoproteins using manganese
ES2474573T3 (es) 2006-01-04 2014-07-09 Baxter International Inc Medio de cultivo celular sin oligop�ptidos
PE20091174A1 (es) 2007-12-27 2009-08-03 Chugai Pharmaceutical Co Ltd Formulacion liquida con contenido de alta concentracion de anticuerpo
US20110117087A1 (en) 2009-10-26 2011-05-19 Reinhard Franze Method for the production of a glycosylated immunoglobulin
MD191Z5 (ro) * 2010-01-21 2010-11-30 Государственный Медицинский И Фармацевтический Университет "Nicolae Testemitanu" Республики Молдова Mediu nutritiv pentru cultivarea celulelor de origine animală
KR101933197B1 (ko) 2010-11-08 2018-12-27 제넨테크, 인크. 피하 투여용 항―il―6 수용체 항체
JP6563910B2 (ja) 2013-07-04 2019-08-21 エフ.ホフマン−ラ ロシュ アーゲーF. Hoffmann−La Roche Aktiengesellschaft 血清サンプル中の抗薬物抗体を検出するための干渉抑制イムノアッセイ
US20160251625A1 (en) 2013-10-30 2016-09-01 The Curators Of The University Of Missouri Method for scalable skeletal muscle lineage specification and cultivation
KR20180009760A (ko) 2015-05-27 2018-01-29 아스테라스 세이야쿠 가부시키가이샤 핵산 함유 배지를 이용한 세포 배양 방법
US11484591B2 (en) 2016-02-22 2022-11-01 Ohio State Innovation Foundation Chemoprevention using controlled-release formulations of anti-interleukin 6 agents, synthetic vitamin A analogues or metabolites, and estradiol metabolites
US11033496B2 (en) 2017-03-17 2021-06-15 The Regents Of The University Of Michigan Nanoparticles for delivery of chemopreventive agents
ES2985769T3 (es) 2017-05-06 2024-11-07 Upside Foods Inc Composiciones y métodos para aumentar la densidad de cultivo de una biomasa celular dentro de una infraestructura de cultivo
US11479792B2 (en) 2017-07-13 2022-10-25 Upside Foods, Inc. Compositions and methods for increasing the efficiency of cell cultures used for food production
WO2020201362A2 (en) 2019-04-02 2020-10-08 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Methods of predicting and preventing cancer in patients having premalignant lesions
WO2022137357A1 (ja) 2020-12-22 2022-06-30 株式会社マルハチ村松 ペプチド、細胞増殖促進剤、タンパク質産生促進剤、培地、該ペプチドを用いた細胞増殖方法、及び、該ペプチドを用いたタンパク質産生方法
WO2023240152A1 (en) 2022-06-07 2023-12-14 Upside Foods, Inc. Engineering cell lines capable of proliferation in growth factor free media formulations
WO2024218715A1 (en) 2023-04-19 2024-10-24 Btl Healthcare Technologies A.S. Culture media based on protein hydrolysate and a process for preparing thereof
US12668774B2 (en) 2023-10-12 2026-06-30 Btl Healthcare Technologies A.S. Product, system and method of cell cultivation

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS509877B2 (es) * 1972-09-13 1975-04-16
US3962425A (en) * 1972-09-21 1976-06-08 Weyerhaeuser Company Ruminant repellent from enzymatically putrefied lipoidal material
JPS5336033B2 (es) * 1972-12-11 1978-09-30
JPH01148181A (ja) * 1987-12-07 1989-06-09 Jgc Corp グルタチオンの菌体内蓄積法
JPH0239882A (ja) * 1988-07-29 1990-02-08 Japan Synthetic Rubber Co Ltd 動物細胞培養用培地
JPH0638704A (ja) * 1991-06-19 1994-02-15 Morinaga Milk Ind Co Ltd 発酵調味料及びその製造法
US5426045A (en) 1993-12-16 1995-06-20 Sea Run Holdings, Inc. Method for culturing mammalian cells in a medium containing fish serum
WO1995023212A1 (en) 1994-02-23 1995-08-31 Sea Run Holdings, Inc. Method for culturing mammalian cells and insect cells in a medium containing fish serum
RU2103360C1 (ru) * 1996-07-25 1998-01-27 Инна Георгиевна Ермишина Питательная среда для культивирования клеток эукариотов и способ получения основы питательной среды - протеолитического гидролизата
CN1157694A (zh) 1996-10-15 1997-08-27 玉环县海天营养源有限公司 一种液化鱼蛋白粉的制作方法

Also Published As

Publication number Publication date
WO1999063058A1 (en) 1999-12-09
CN1309698A (zh) 2001-08-22
ATE361360T1 (de) 2007-05-15
RU2214455C2 (ru) 2003-10-20
NO326180B1 (no) 2008-10-13
AU744715B2 (en) 2002-02-28
IL139974A (en) 2005-09-25
AU744715C (en) 1999-12-20
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US6537782B1 (en) 2003-03-25
JP3510858B2 (ja) 2004-03-29
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AU3958499A (en) 1999-12-20
CA2333966C (en) 2006-07-25
NO20006096D0 (no) 2000-11-30
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CA2333966A1 (en) 1999-12-09
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US20030096372A1 (en) 2003-05-22
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DE69935978D1 (de) 2007-06-14
KR100430447B1 (ko) 2004-05-10

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