ES2289235T3 - Nuevo antagonista de leptina. - Google Patents

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ES2289235T3 ES03102619T ES03102619T ES2289235T3 ES 2289235 T3 ES2289235 T3 ES 2289235T3 ES 03102619 T ES03102619 T ES 03102619T ES 03102619 T ES03102619 T ES 03102619T ES 2289235 T3 ES2289235 T3 ES 2289235T3
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Jan Tavernier
Frank Peelman
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Abstract

Antagonista de leptina que consta del ID de Secuencia nº 1.

Description

Nuevo antagonista de leptina.
La presente invención se refiere a un antagonista o inhibidor de leptina que es indicado por el receptor de leptina. El antagonista de leptina se enlaza con el receptor de leptina, pero es incapaz de inducir la transducción de señal JAK-STAT por medio del receptor de leptina. Al enlazarse con el receptor de leptina, el antagonista de leptina perjudica la unión de la leptina con el receptor de leptina y bloquea la señalización de la leptina.
Tras la escisión del péptido de señal de sus aminoácidos 21 (Cohen et al., 1996), se segrega leptina humana madura como proteína de aminoácido 146. con una estructura típica de de intereleucina de tipo II, consistente en un haz de 4 hélices (hélice 1-4) con una topología arriba-arriba-abajo-abajo (Zhang et al., 1997). La leptina es segregada al torrente sanguíneo sobre todo mediante adipocitos, mientras que concentraciones sanguíneas de leptina se hallan en correlación con masa de tejido adiposo blanco. La leptina actúa como una hormona de homeostasis de energía, que regula el gasto de energía y la ingesta de alimento.
La leptina lleva a cabo esta función enlazando con el receptor de leptina en ciertas zonas del hipotálamo, lo que conduce a la fosforilación de las moléculas STAT que como consecuencia de ello migran al núcleo de la célula e inducen la transcripción de diferentes genes.
Además de la adipostática, la leptina tiene muchas otras funciones: puede inducir la proliferación, la diferenciación y la activación funcional de las células hemopoiéticas (Gainsford et al., 1996), e induce la angiogénesis (Sierra-Honigmann et al., 1998).
La leptina también interacciona con las respuestas inmunitarias e inflamatorias (Loffreda et al., 1998).
Los niveles de leptina aumentan considerablemente debido a los estímulos inflamatorios o a las citoquinas proinflamatorias TNF-\alpha e IL-1 (Grunfeld et al., 1996). La leptina misma regula la producción de diversas citoquinas in Vitro, regula el equilibrio del T coadyuvante (Th1/Th2) y puede regular por completo las respuestas inflamatorias (Loffreda et. Al, 1998); Lord et al., 1998).
El receptor de leptina humana se excpresa en la superficie celular de muchos tejidos diferentes. Hasta ahora se han hallado al menos seis variantes diferentes de empalme de leptina humana. El isoformo más largo del receptor de leptina humana consta de 1.162 aminoácidos, con una región extracelular entre los residuos 1 y 840, una región transmembrana entre los residuos 841 y 863 y una región intracelular entre los residuos 864 y 1.162.
La parte extracelular del receptor de leptina humana contiene al menos 7 dominios estructurales (Fong et al., 1998).
El dominio 1 (residuos 62-178) y 2 (residuos 235-328) tienen un pliegue de fibronectina de tipo III y juntos forman un módulo de receptor de citoquina (CRM) llamado CRM1.
El dominio 3 (residuos 329-427) tiene un pliegue de tipo inmunoglobulina.
Los dominios 4 (residuos 428-535) y 5 (residuos 536-635) también tienen un pliegue de fibronectina de tipo III y juntos forman un segundo módulo de receptor de citoquina (CRM) llamado CRM2.
Los dominios 6 y 7 tienen una estructura de dominio de fibronectina de tipo III.
Como todos los miembros de la familia de los receptores de citoquina de clase I, el receptor de leptina no tiene actividad de quinasa intrínseca y usa una quinasa citoplásmica asociada Janus (JAK2 en el caso del receptor de leptina) para la señalización intracelular (Ghilardi et al., 1997). En un modelo generalmente aceptado, la unión de la leptina conduce a la formación de un complejo de receptores, permitiendo la activación de JAK2 mediante la fosforilación cruzada. Entonces el JAK2 fosforila rápidamente varios residuos de tirosina en el dominio citosólico del receptor de leptina. Estos residuos residuos de tirosina fosforilados proporcionan sitios de acoplamiento para SH2 que contienen moléculas señalizadoras. En el receptor de leptina de ratón, la tirosina 1138 sirve como sitio de unión para el transductor de señal de señal y activador de transcripción 3 (STAT3) (Baumann et al., 1996). El propio STAT3 es un sustrato para JAK2
y se dimeriza con la fosforilación, se translocaliza en el núcleo y modula la transcripción de los genes destino.
El receptor de leptina muestra la semejanza de secuencia en su mayor grado con los receptores de citoquina de la familia IL-6 y con el Factor Estimulador de Colonias de Granulocitos (G-CSF). Las investigaciones sobre la semejanza estructural de FSSP (Holm y Sander, 1997) revelan que el mayor grado de semejanza estructural de la leptina se da con las citoquinas de la familia IL-6 y G-CSF, y en menor grado con otras citoquinas de cadena larga, como la hormona del crecimiento y la hormona somatotrófica. La estructura cristalina del herpesvirus asociado al sarcoma, de Kaposi, IL-6 (vlL6, IL-6 viral) en un complejo a 2:2 con los tres dominios extracelulares N-terminales del gp130 humano pone de manifiesto dos sitios de unión, el sitio de unión II y el sitio de unión III, para la interacción entre vlL6 y gp130 (Chow et al., 2001). El sitio de unión II, que consta de residuos en las hélices 1 y 3 de vlL6, interacciona con el módulo receptor de citoquina (CRM) de gp130. El sitio de unión III en vlL6 consta de residuos en el N-terminal de la hélice 4, en el bucle de unión entre las hélices 3 y 4 y en el bucle de unión entre las hélices 1 y 2, e interacciona con el dominio similar a la inmunoglobulina de gp130. Se identificó los correspondientes residuos de los sitios II y III en otros miembros de la familia IL-6 de citoquinas mediante mutagénesis específica puntual: el IL-6 humano, el IL-11 humano, el factor inhibidor de leucemia (LIF), la oncostatina M (OSM) y el factor neurotrófico ciliar (CNTF) (Kalai et al., 1997; Savino et al., 1993: Di Marco et al., 1996; Hudson et al., 1996: Inoue et al, 1995; Barton et al., 1999; Bravo y Heath, 2000).
El IL-6 contiene un tercer sitio de unión, el sitio de unión I, para la interacción con el receptor de IL-6 \alpha. El IL-6 humano forma un complejo hexamérico a 2:2:2 con sus cadenas de receptor de gp130 e IL-6 \alpha; cada molécula de IL-6 une dos moléculas de gp130 por sus sitios de unión II y III, y una subunidad de receptor \alpha de IL-6 (IL-R \alpha) por su sitio de unión I (figura 1). (Boulanger et al. 2003).
La activación del receptor de leptina mediante la unión de la leptina desempeña un papel en variso procesos fisiológicos. Se ha descrito diversas formas variantes y mutantes de leptina que pueden usarse en diferentes aplicaciones. El documento WO02062833 describe polipéptidos de leptina modificados que son sustancialmente no inmunogénicos o menos inmunogénicos que cualquier homólogo no modificado cuando se usan in vivo. Estos polipéptidos pueden administrarse a seres humanos con fines terapéuticos. El documento WO09700319 da a conocer polipéptidos de leptina quiméricos que incluyen leptina o un mutante o una variante de la misma fusionada con un dominio de inmunoglobulina humana. Estos derivados quiméricos han prolongado los tipos de compensación y pueden ser útiles para el tratamiento o profilaxis de la obesidad, o de enfermedades y estados fisiológicos asociados con la obesidad, como la arterioesclerosis, la hipertensión y la diabetes de tipo II. El documento WO09720933 da a conocer variantes mutacionales de la leptina de los mamíferos. Estas moléculas pueden servir de agonista o antagonista de la leptina de tipo natural; su capacidad para inducir la ruta de señalización uniéndose al receptor varía según las diferentes luteínas. En el documento WO09812224 se describe el uso de fragmentos, derivados de la leptina, como antagonistas de la leptina, especialmente para el tratamiento de la diabetes de tipo II.
Verpfloegen et al. (Febs Letters 405 (1997): 237) dan a conocer un antagonista de la leptina con la sustitución de aminoácido R128Q que es capaz de unir el receptor de leptina con la misma afinidad que la leptina de tipo natural sin inducir señalización intracelular.
No obstante, sigue haciendo falta un mutante de leptina que sea capaz de unirse al receptor con una afinidad similar o mayor que la leptina de tipo natural, pero sin que continúe indicando actividad. Dicho mutante de leptina sería un poderoso antagonista y se podría usar para el tratamiento de enfermedades mediadas por leptina.
Para nuestra sorpresa, descubrimos que la leptina, similar al IL-6 y al G-CSF, tiene sitios de unión II y III, implicados ambos en la unión con el receptor de leptina. Como en el caso del G-CSF y de los miembros de la familia del IL-6, en sitio de unión II consta de residuos en la hélice 1 (residuos 4-26) y 3 (residuos 71-93). Estos residuos tienen que ver con la alta afinidad de unión con el módulo CRM2 del receptor de leptina, mientras que las mutaciones en el sitio de unión II de la leptina de ratón reducen o incluso suprimen la afinidad de la leptina mutante con el receptor de leptina de ratón.
Debido a la reducción de la unión, estos mutantes muestran una reducción de la inducción de la señalización JAK-STAT por medio del receptor de leptina.
El sitio de unión III consta de residuos en el bucle de unión entre las hélices 1 y 2 (residuos 27-50) y de residuos en el N-terminal de la hélice 4 (residuos 105-122). Las mutaciones en este sitio de unión no afectan la alta afinidad de unión con el receptor de leptina o con el módulo CRM2, pero muestran todavía una reducción de la inducción de la señalización JAK-STAT por medio del receptor de leptina. La mutación S120AT121A en el sitio de unión III de la leptina de ratón es incapaz de inducir actividad alguna del informador JAK-STAT por medio de del receptor de leptina de ratón, aunque la afinidad de unión de este mutante con el receptor de leptina o con el CMR2 del receptor de leptina de ratón es similar a la de la leptina de tipo natural.
Fue aún más sorprendente descubrir que el mutante de la leptina de ratón S120AT121A puede inhibir la unión de la leptina de tipo natural con su receptor, y puede inhibir la señal inducida por la leptina de tipo natural. Esto se debe a que el mutante de leptina S120AT121A muestra intacto el sitio de unión II y se une ávidamente con el CMR2 del receptor de leptina, compitiendo así por la unión con la leptina de tipo natural. A diferencia de la leptina de tipo natural, no obstante, la unión del mutante S120AT121A no induce la señalización JAK-STAT.
Un primer aspecto de la invención es un antagonista de leptina de naturaleza polipeptídica, que comprende el ID de Secuencia nº 1. A ser posible, dicho antagonista de leptina debe contener el ID de Secuencia nº 2 o 3, y mejor aún, dicho antagonista de leptina debe contener el ID de Secuencia nº 4. A ser posible, dicho antagonista de leptina va unido al receptor de leptina, sin inducir la ruta de señalización. Una de las materializaciones elegidas consiste en un antagonista de leptina según la invención, capaz de unir el receptor de leptina sin inducir la ruta de señalización, por medio del cual dicho antagonista muta a aminoácido 120 y/o 121 del ID de Secuencia nº 5. A ser posible, el aminoácido 120 o el aminoácido 121 mutan a una alanina. Y mejor aún, ambos aminoácidos cambian a alanina. Otra de las materializaciones elegidas consiste en un antagonista de leptina de naturaleza polipeptídica, capaz de unir el receptor de leptina sin inducir la ruta de señalización, y que contiene el ID de Secuencia nº 5 o un fragmento funcional. Un fragmento funcional tal como se usa aquí, es un fragmento que aún se puede unir al receptor de leptina. También pueden tenerse en cuenta las modificaciones químicas del antagonista.
Las modificaciones químicas de los polipéptidos resultan conocidas a los experimentados en la técnica, e incluyen, pero sin estar limitadas a ellas, modificaciones que se dan naturalmente, como la glicosilación, la fosforilación o la ubicuitinilación, y modificaciones artificiales como la PEGilación. A ser posible, dicha modificación química debe aumentar el tiempo medio de vida del polipéptido. Y mejor aún, dicha modificación química es la PEGilación. Dicho fragmento funcional puede usarse como tal, o bien puede fusionarse con otro polipéptido. En el último caso, y a ser posible, el polipéptido de fusión debe tener capacidad antagonística aumentada.
Como posibles socios de fusión, y sin que el ejemplo sea excluyente, están los polipéptidos que aumentan el tiempo medio de vida del polipéptido in vivo. Dichos polipéptidos se dan a conocer, entre otros documentos, en WO9700319. Por otra parte, el socio de fusión puede captar la leptina él mismo, aumentando así la actividad de antagonista. Los polipéptidos que captan la leptina son, como ejemplo no exhaustivo, los anticuerpos de leptina, a ser posible los anticuerpos de cadena sencilla, o un dominio del receptor de leptina que se una con la leptina.
Un socio de fusión ideal para el antagonista es el dominio de pliegue de tipo inmunoglobulina del receptor de leptina. Este dominio está implicado en la oligomerización dependiente de leptina del receptor de leptina y la consiguiente señalización. Por lo tanto, la fusión de este dominio con el antagonista producirá un efecto antagonístico aumentado al interrumpir la oligomerización inducida por leptina del receptor.
Otro aspecto de la invención es el uso de un antagonista de leptina según la invención para la preparación de un fármaco para el tratamiento de las enfermedades inmunitarias y/o autoinmunitarias mediadas por células T. En efecto, la leptina mejora las respuestas inmunitarias mediadas por células T mediante la señalización con la forma larga del receptor de leptina en linfocitos CD4+T (Lord et al., 1998).
La leptina cambia las respuestas de las células T a un tipo Th1, con un aumento de secreción de citoquinas pro-inflamatorias IL-2 e interferón gamma y una reducción de producción de IL-4. Por consiguiente, los antagonistas de leptina pueden usarse para modificar o atenuar las respuestas inmunitarias de células T, como medicamento para el tratamiento de enfermedades (auto-)inmunitarias mediadas por células T.
Un aspecto más de la invención es el uso de un antagonista según la invención para la preparación de un fármaco para el tratamiento de enfermedades de inflamación intestinal. A ser posible, la enfermedad de inflamación intestinal elegida pertenecerá al grupo formado por la enfermedad de Crohn, las colitis ulcerosa y las enfermedades de infección intestinal. En los sistemas modelo experimentales con ratones, donde se induce la colitis aguda y crónica mediante sodio sulfato de dextrano o ácido sulfónico de trinitrobenceno, los ratones con carencia de leptina (ratones ob/ob) mostraron una reducción de la gravedad de la colitis en un 72% y una disminución similar de las citoquinas pro-inflamatorias en el instestino en comparación con los ratones de tipo natural (Siegmund et al., 2002). La administración de leptina a los ratones con carencia de la misma suprime la resistencia a la colitis inducida experimentalmente (Siegmund et al., 2002). La administración de la toxina A del Clostridium Difficile induce colitis severa en los ratones. Los ratones con carencia de leptina (ob/ob), así como los ratones con receptor de leptina deficiente (db/db) se hallan protegidos parcialmente la secreción en inflamación intestinales inducidas por la toxina A (Mykoniatis et al., 2003). En los ratones ob/ob, pero no en los db/db, la administración de leptina invierte la protección contra la secreción en inflamación intestinales inducidas por la toxina A (Mykoniatis et al., 2003). Por lo tanto, puede usarse un antagonista de leptina como fármaco para el tratamiento de enfermedades de inflamación intestinal, como la enfermedad de Crohn, las colitis ulcerosa y las enfermedades de infección intestinal.
En el caso de las enfermedades de inflamación intestinal, un método aconsejable para la administración del antagonista de leptina según la invención es un sistema de administración in vivo, tal como se describe en WO09714806. Por consiguiente, otro aspecto de la invención es una bacteria de ácido láctico que produce un antagonista de leptina según la invención. A ser posible, dicha bacteria de ácido láctico debe ser un lactobacilo, y mejor aún si dicha bacteria de ácido láctico es un lactococo.
Un aspecto más de la invención es el uso de un antagonistas de leptina según la invención para la preparación de un fármaco para el tratamiento de la artritis reumatoide. La administración a los ratones de BSA desnaturalizado en las rodillas provoca el desarrollo de artritis inducida por antígenos. Si se compara con ratones de tipo natural, los ratones con carencia de leptina (ob/ob) y los ratones con receptor de leptina deficiente (db/db) desarrollan una artritis menos grave, con una disminución del IL-1\beta y TNF-\alpha en el fluido sinovial de la rodilla, una disminución de los niveles de suero de los anticuerpos de BSA desnaturalizado y una disminución de la respuesta proliferativa de la célula T específica de los antígenos (Busso et al., 2002). Por consiguiente, puede usarse un antagonista de leptina como medicamento para el tratamiento de la artritis reumatoide.
Otro aspecto de la invención es el uso de un antagonista de leptina según la invención para la preparación un fármaco para el tratamiento de la esclerosis múltiple. La aparición clínica de la encefalomielitis autoinmunitaria experimental (EAE), un modelo en ratones para la esclerosis múltiple, en ratones C57BL/6J(H-2b) y SJL/J(H-2s) susceptibles a la enfermedad va precedida por un aumento de las concentraciones de leptina en el suero (Sanna et al., 2003. Este aumento se halla en correlación con la susceptibilidad a la enfermedad. La inanición aguda, que reduce los niveles de leptina en el suero, retrasa la aparición de la enfermedad y atenúa los síntomas de EAE. Los ratones con carencia de leptina C57BL/6J-ob/ob son resistentes a la EAE, pero esta resistencia desaparece con la administración de leptina (Matarese et al., 2001). Estos datos indican de manera clara que la leptina es un factor necesario para el desarrollo de la EAE y, de este modo, probablemente también de la esclerosis múltiple. Por consiguiente, puede usarse un antagonista de leptina como fármaco para el tratamiento de la esclerosis múltiple.
Otro aspecto más de la invención es el uso de un antagonista de leptina según la invención para la preparación de un fármaco para el tratamiento de la diabetes de tipo I. La diabetes de tipo I es una enfermedad autoinmunitaria en la que las células \beta pancreáticas son destruidas por procesos inflamatorios. En un ratón diabético no obeso (NOD), animal modelo para la diabetes de tipo I, un aumento del nivel de leptina en el suero precede a la diabetes en hembras susceptibles, mientras que la inyección de leptina acelera la destrucción autoinmunitaria de las células \beta pancreáticas (Matarese et al., 2002). Puede usarse un antagonista de leptina como fármaco para el tratamiento/prevención de la diabetes de tipo I.
Un aspecto más de la invención es el uso de un antagonista de leptina según la invención para la preparación de un medicamento para prevenir y/o tratar enfermedades caracterizadas por la toxicidad hepática mediada por células T. Los ratones ob/ob con carencia de leptina están protegidos contra la hepatitis mediada por células T, inducida experimentalmentecon ConA o con exotoxina A Pseudomona aeruginosa (Faggioni et al., 2000). La inyección de leptina en los ratones con carencia de leptina restablece la toxicidad hepática de esos componentes (Faggioni et al., 2000). Por consiguiente, se puede usar un antagonista de leptina para el tratamiento y/o prevención de las enfermedades caracterizadas por la toxicidad hepática mediada por células T. Otro aspecto más de la invención es una composición farmacéutica que incluye un antagonista de leptina según la invención, opcionalmente con un excipiente aceptable desde el punto de vista farmacéutico. Los excipientes adecuados son conocidos a los experimentados en la técnica, y son inherentemente no tóxicos y no terapéuticos. Los excipientes pueden ser, como ejemplo no exhaustivo, la solución de Ringer, la solución de dextrosa o la solución de Hank. También pueden usarse soluciones no acuosas como los aceites fijos y el etil-oleato. Un excipiente aconsejable es 5% de dextrosa en solución salina. El excipiente puede contener pequeñas cantidades de aditivos tales como las sustancias que mejoran la isotonicidad y la estabilidad química, incluidos los tampones y los conservantes.
Breve descripción de las figuras
Figura 1: composición del complejo 2:2:2 IL-6: gp130: IL-6R\alpha.
Figura 2: Activación de la luciferasa como informador mediante leptina WT y el mutante S120AT121A.
Figura 3: Competencia de los mutantes de la leptina para la unión de Leptina-SEAP con LepR CRM2. Recuadro interior: unión de Leptina-SEAP con LepR CMR2 en presencia de un medio no diluido que contiene leptina WT o la leptina mutante R20N o S120AT121A.
Figura 4: La incubación de las células transfectadas HEK293T con la leptina WT de ratón HA induce la actividad de la luciferasa. La coincubación con la leptina de ratón S120AT121A con etiqueta HA, purificada en la columna de afinidad anti-HA, provoca una fuerte inhibición de de la actividad de la luciferasa inducida por leptina, y la actividad de la luciferasa baja al nivel de las células no estimuladas. 50 \mul de las células HEK293T fueron diluidos en leptina WT y 50 \mul de diferentes diluciones de las fracciones 1 (O), 2 (K) y 3 (\Delta) fueron eluidos a partir de de la columna anti-HA con 1 mgr/ml de péptido HA en tampón de equilibrado. Como control (+),50 \mul de las células HEK293T fueron incubadas con leptina WT y con 50 \mul de diferentes diluciones del tampón de elución (1 mg/1 ml de péptido HA en tampón de equilibrado).
Ejemplos Ejemplo 1 Detección de los sitios de unión II y III en la leptina humana y de ratón mediante superposición estructural
Las investigaciones sobre la semejanza estructural de FSSP revelan que el mayor grado de semejanza estructural de la leptina se da con las citoquinas de la familia IL-6 y G-CSF, y en menor grado con otras citoquinas de cadena larga, como la hormona del crecimiento y la hormona somatotrófica.
Las estructuras cristalinas de la leptina humana (1ax8), el CNTF humano (1cnt), el IL-6 humano (1alu), el G-CSF bovino (1bgc), el vlL6 (1i1r), el lactógeno placentario ovino (1f6f), el LIF de ratón (11ki) y el OSM humano (1evs) se superpusieron mediante los algoritmos FSSP y Prosup. Los residuos de leptina humana superpuestos a los residuos de los sitios de unión II y III en las otras citoquinas se consideraron como posibles residuos de los sitios de unión II y III en la leptina humana.
Se construyó una homología modelo para la leptina de ratón reemplazando residuos no idénticos en la estructura de la leptina humana mediante el rotamer óptimo del residuo correspondiente en la leptina de ratón, seguido de minimización de energía mediante el campo de fuerzas moe y charmm22. Los residuos alineados con los posibles sitios de unión II o III en la leptina humana se consideraron como posibles residuos de los sitios de unión II o III en la leptina humana. Los residuos expuestos a disolvente en los sitios de unión II y III previstos se mutaron en el vector de expresión pMET7-SigK-HA-mLep, y la leptina mutante se expresó en células COS-1.
Ejemplo 2 Generación del vector de expresión de la leptina de ratón pMET7-SigK-HA-mLep
El vector pCDM8 mleptina-AP contiene la secuencia de la leptina de ratón, seguido de la secuencia de fosfatasa alcalina humana. De este vector se aisló la secuencia de tipo natural (wt) de leptina de ratón mediante PCR, usando el cebo oligomérico delantero de 5' 5'-GCGTCCGGAATCCAGAAAGTCCAGGATG-3', que contenía un sitio de restricción BspEI, y el cebo inverso de 3' 5'-CGCTCTAGATTAGCATTCAGGGCTAACATCC-3', que contenía un sitio de restricción XbaI. El plásmido pMET7-SlgK-HALRio contiene el péptido de señal SigK, seguido de la secuencia de etiqueta HA y la secuencia del receptor de leptina de ratón. De este vector se eliminó la secuencia del receptor de leptina mediante las enzimas de restricción BspEI y XbaI, y se ligó la secuencia de la leptina de ratón a este vector abierto. El vector resultante, pMET7-SigK-HA-mLep, permite la expresión de una proteína de fusión, consistente en el péptido de señal SigK, seguido de la secuencia de etiqueta HA, seguida de un enlace GGSG de 4 aminoácido, seguido de los aminoácidos 3 a 146 de la leptina de ratón. Al expresarlo en células eucarióticas, el péptido de señal SlgK se escinde y la proteína con etiqueta HA se segrega al medio.
Secuencia de aminoácido de la leptina de ratón SlgK-HA: la flecha indica el sitio de escisión previsto del péptido de señal Slg-K; los números encima de la secuencia indican los números de residuo en la leptina de ratón:
100
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 3 Generación de mutantes de leptina de ratón
La mutación de leptina de ratón S120AT121A se introdujo en el pMET7-SigK-HA-mLep mediante PCR usando los cebos O-1821 y O-1822.
La mutación de leptina de ratón R20N se introdujo en el pMET7-SigK-HA-mLep mediante PCR usando los cebos O-1701 y O-1702.
La mutación de leptina de ratón L13N se introdujo en el pMET7-SigK-HA-mLep mediante PCR usando los cebos O-1769 y O-1770.
1
\vskip1.000000\baselineskip
Todas las mutaciones se introdujeron con el método Quickchange (Stratagene) según las especificaciones del fabricante.
Secuencia de aminoácido de los mutantes de leptina de ratón: las flechas verticales indican la posición de las mutaciones; los números encima de la secuencia indican los números de residuo en la leptina de ratón:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
101
102
\newpage
Ejemplo 4 Expresión de la leptina de ratón etiquetada con HA y de los mutantes de leptina de ratón etiquetada con HA en células COS-1
Se sembró células COS-1 a 4 x 10^{5} células/pocillo en placas de 6 pocillos y se las dejó crecer durante la noche. Luego se transfectó las células usando el método de transfección polietileneimina (PEI) con el pMET7-SigK-HA-mLep o los mutantes R20N, L13N o S120AT121A en este vector.
Se sustituyó el medio tras 4 horas de transfección y las células se incubaron durante la noche, tras lo cual se sustituyó el medio por 2 ml de medio OPTI-MEM (Gibco-BRL). Tras otras 72 horas, se recogió el medio OPTI-MEM que contenía la leptina segregada etiquetada con HA o el mutante de leptina etiquetada con HA y se retiró las células mediante centrifugado.
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Ejemplo 5 Purificación de leptina de ratón S120AT121A etiquetada con HA
Se sembró células COS-1 a 8 x 10^{6} células por matraz de 175 cm^{2} en un medio DMEM. Se transfectó diez matraces de 175 cm^{2 }con el mutante S120AT121A pMET7-SigK-HA-mLep mediante transfección de polietileneimina. Tras 4 horas, se sustituyó el medio por un medio DMEM fresco y se dejó crecer las células durante la noche. Luego se sustituyó el medio por 50 ml de OPTI-MEM y las células se incubaron en este medio durante otras 72 horas. Se recogió el medio con la leptina de ratón S120AT121A etiquetada con HA, se lo pasó por un filtro de 0,22 \mum y se le añadió inhibidor de proteasa completo (Roche Diagnostics).
La leptina de ratón S120AT121A etiquetada con HA se purificó en una columna de afinidad anti-HA de 1 ml (Roche Diagnostics). Se cargó el medio a un caudal de 0,3 ml/min. Se lavó la columna con 25 ml de tampón de equilibrado (20 mM Tris/HCl, pH 7.5, 100 mM NaCl, 0.1 mM EDTA) + 0.05% Tween-20, seguido de 10 ml de tampón de equilibrado sin Tween-20. La leptina de ratón S120AT121A-HA se eluyó con péptido HA (1 mg/ml) en tampón de equilibrado.
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Ejemplo 6 El mutante de leptina de ratón S120AT121A no induce la señalización JAK-STAT del receptor de leptina de ratón
Se sembró células HEK293T en placas de 6 pocillos a 4 x 10^{5} células/pocillo y se las dejó crecer durante 20 horas. Luego se transfectó las células con los plásmidos pMET7-mLRIo y pXP2d2-rPAP1 mediante la técnica estándar de precipitación de fosfato de calcio. Un día después de la transfección, se lavó las células con solución salina fosfatada y se las cultivó en un medio DMEM complementado con 10% de suero fetal de ternera y 50 \mug/ml de gentamicina. Dos días después de la transfección, se disoció las células con tampón disociador de células (Invitrogen) y se las volvió a suspender en 2 ml de medio DMEM complementado con 10% de suero fetal de ternera y 50 \mug/ml de gentamicina. Se sembró 50 \mul de la suspensión de células en cada pocillo de una placa negra de 96 pocillos (Costar). En cada pocillo se echó 50 \mul de la dilución de medio adecuada, que contenía o leptina de ratón etiquetada con HA, o leptina de ratón R20N, o leptina de ratón L13N o leptina de ratón S120AT121A.
El plásmido pMET7-mLRIo codifica la forma larga del receptor de leptina de ratón, con una etiqueta myc de Terminal C. El plásmido pXP2d2-rPAP1 codifica el gene de la luciferasa, bajo el control del promotor de proteína 1 asociado a la pancreatitis de rata dependiente de STAT3.
La incubación de las células HEK293T transfectadas con la leptina de ratón de tipo natural etiquetada con HA provoca la actividad de la luciferasa dependiente de concentración. La incubación de las células HEK293T transfectadas con la leptina de ratón etiquetada con HA del mutante R20N, la leptina de ratón etiquetada con HA del mutante L13N o la leptina de ratón S120AT121A no provoca un aumento apreciable de la actividad de la luciferasa en las células transfectadas.
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Ejemplo 7 La leptina de ratón S120AT121A inhibe la unión de la leptina de tipo natural con el receptor de leptina
Se sembró 8 x 10^{6} células COS-1 en un matraz de 175 cm^{2 } y se las dejó crecer durante la noche en un medio DMEM complementado con 10% de suero fetal de ternera y 50 \mug/ml de gentamicina.
Se transfectó las células con el pMET7-mLRCM2-his6 usando el método de transfección PEI. El pMET7-
mLRCM2-his6 codifica los aminoácidos 407-604, que corresponden al módulo CRM2 del receptor de leptina de ratón, seguido de una etiqueta his6 de Terminal C. Al cabo de 4 horas se sustituyó el medio por un medio DMEM fresco complementado con 10% de suero fetal de ternera y 50 \mug/ml de gentamicina, y se dejó crecer las células durante la noche. Luego se sustituyó el medio por 50 ml de OPTI-MEM y las células se incubaron en este medio durante otras 72 horas. Se recogió el medio con la leptina CRM2 segregada, etiquetada con His, y se retiró las células mediante centrifugado. A este medio se lo denomina medio CRM2-his.
Se sembró 8 x 10^{6} células COS-1 en un matraz de 175 cm^{2 }y se las dejó crecer durante la noche en un medio DMEM complementado con 10% de suero fetal de ternera y 50 \mug/ml de gentamicina.
Se transfectó las células con el plásmido pCDM8 AP-mlep usando el método de transfección PEI. El plásmido pCDM8 AP-mlep permite la expresión de una proteína de fusión que consta de leptina de ratón vinculada al terminal C de de la fosfatasa alcalina humana segregada (SEAP). Al cabo de 4 horas se sustituyó el medio por un medio DMEM fresco y se dejó crecer las células durante la noche. Luego se sustituyó el medio por 50 ml de OPTI-MEM y las células se incubaron en este medio durante otras 72 horas. Se recogió el medio con la leptina-SEAP segregada y se retiró las células mediante centrifugado. A este medio se lo denomina medio de leptina-SEAP.
Se dejó cubiertas placas Maxisorp (Nunc) durante la noche a 6ºC con 0,25 \mug/ml de anticuerpo anti-His5 (Qiagen). Se lavó las plazas cuatro veces con solución salina fosfatada pH 7,5 que contenía 0,1% de Tween 20. Se bloqueó los puntos libres de unión de proteína en las placas mediante incubación con 1% de caseína en solución salina fosfatada pH 7,5 que contenía 0,1% de Tween 20. Se incubó las placas durante 2 horas a 37ºC con el medio no diluido que contenía el CMR2 con etiqueta his del receptor de leptina de ratón. Se lavó las plazas cuatro veces con solución salina fosfatada pH 7,5 que contenía 0,1% de Tween 20. Luego se incubó las placas con medio de leptina-SEAP y diferentes concentraciones bien de leptina de ratón con etiqueta HA o bien del antagonista de leptina S120AT121A. La añadidura de la leptina de ratón S120AT121A o de la leptina WT, pero no del mutante R20N, inhibe la unión de la leptina-SEAP con el CRM2 con etiqueta his del receptor de leptina de ratón. Los resultados se muestran en la Figura 3.
Ejemplo 8 El mutante de leptina de ratón S120AT121A inhibe la señalización JAK-STAT del receptor de leptina de ratón
Se sembró células HEK293T en placas de 6 pocillos a 4 x 10^{5} células/pocillo y se las dejó crecer durante 20 horas. Luego se transfectó las células con los plásmidos pMET7-mLRIo y pXP2d2-rPAP1 mediante la técnica estándar de precipitación de fosfato de calcio. Un día después de la transfección, se lavó las células con solución salina fosfatada y se las cultivó en un medio DMEM complementado con 10% de suero fetal de ternera y 50 \mug/ml de gentamicina. Dos días después de la transfección, se disoció las células con tampón disociador de células (Invitrogen) y se las volvió a suspender en 2 ml de medio DMEM complementado con 10% de suero fetal de ternera y 50 \mug/ml de gentamicina. Se sembró 50 \mul de la suspensión de células en cada pocillo de una placa negra de 96 pocillos (Costar). Un medio OPTI-MEM, que contenía leptina WT con etiqueta HA (vease ejemplo 4), se diluyó multiplicado por 16 en OPTI-MEM. Se añadió a las células 50 \mul de este medio diluido, junto con 50 \mul de dilución de leptina S120AT121A con etiqueta HA y purificada de anti-HA (véase ejemplo 5). A continuación las células se incubaron durante la noche. Se retiró el medio y las células se incubaron con 50 \mul de tampón de lisis (25 mM de Tris, pH 7.8; 2 mM EDTA; 2 mM de DTT; 10% de glicerol; 1% de Triton X-100) durante 10 minutos. Luego se añadió al lisado 35 \mul de tampón de sustrato de luciferasa (20 mM de Tricina; 1.07 mM (MgCO_{3})_{4}Mg(OH)_{2}.5H_{2}O; 2,67 mM de MgSO_{4}. 7H_{2}O; 0,1 mM EDTA; 33,3 mM de DTT; 270 mM de Coenzima A; 470 mM de Luciferina; 530 mM de ATP; pH final 7.8), y se midió la emisión de luz en un Contador de Quimiluminescencia Top Count (Packard).
Los resultados se muestran en la Figura 4. La incubación de las células HEK293T transfectadas con la leptina de ratón WT con etiqueta HA induce la actividad de la luciferasa. La coincubación con el mutante S120AT121A inhibe la actividad de la luciferasa inducida por leptina. Este efecto inhibitorio no se aprecia con el mutante L13N ni con el R20N.
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Referencias citadas en la descripción
Esta lista de referencias citadas por el solicitante es sólo para comodidad del lector y no forma parte del documento de la patente europea. Aunque se ha tenido mucho cuidado al reunir las referencias, no se puede excluir errores u omisiones y la Oficina Europea de Patentes declina toda responsabilidad a este respecto.
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\bulletMATARESE, G.; DI GIACOMO, A.; SANNA, V.; LORD, G.M.; HOWARD, J.K.; DITUORO, A.; BLOOM, S.R.; LECHLER, R.I.; ZAPPACOSTA, S.; FONTANA, S. Requirement for leptin in the induction and progression of autoimmune encephalomyelitis. (Necesidad de la leptina en la inducción y progresión de encefalomielitis autoinmunitaria) J. Immunology, 2001, vol. 166, 5909-5916.
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<110> VIB vzw
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<120> NUEVO ANTAGONISTA DE LEPTINA
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<130> JTA -leptant -163
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<160> 17
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<170> PatentIn, versión 3.1
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<210> 1
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<211> 16
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<223> un antagonista de leptina
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<221> CARACTERÍSTICA MISCELÁNEA
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<222> (1)..(1)
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<223> X puede ser cualquier aminoácido, excepto S
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<220>
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<221> CARACTERÍSTICA MISCELÁNEA
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<222> (2)..(2)
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<223> X puede ser cualquier aminoácido, excepto T
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<221> CARACTERÍSTICA MISCELÁNEA
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<222> (9)..(9)
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<223> X puede ser una R o una W
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<223> X puede ser cualquier aminoácido, excepto T
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<223> X puede ser una R o una W
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<223> un antagonista de leptina
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<223> X puede ser cualquier aminoácido, excepto S
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<223> X puede ser una R o una W
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<223> X puede ser una G, A o una R
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<223> X puede ser una S o una A
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<213> Secuencia artificial
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<223> un antagonista de leptina
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<222> (9)..(9)
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<223> X puede ser una R o una W
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<221> CARACTERÍSTICA MISCELÁNEA
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<222> (12)..(12)
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<223> X puede ser una G, una A o una R
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<221> CARACTERÍSTICA MISCELÁNEA
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<222> (13)..(13)
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<223> X puede ser una S o una A
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\sa{Ala Ala Glu Val Val Ala Leu Ser Xaa Leu Gln Xaa Xaa Leu Gln Asp}
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<213> Secuencia artificial
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<223> un antagonista de leptina
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<221> CARACTERÍSTICA MISCELÁNEA
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<222> (120)..(120)
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<223> X puede ser cualquier aminoácido, excepto S
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<221> CARACTERÍSTICA MISCELÁNEA
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<222> (121)..(121)
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<223> X puede ser cualquier aminoácido, excepto T
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<212> DNA
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> cebo oligomérico delantero usado en el ejemplo 2
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gcgtccggaa tccagaaagt ccaggatg
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28
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> cebo inverso usado en el ejemplo 2
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<400> 7
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<212> PRT
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<213> Mus musculus
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<220>
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<221> CARACTERÍSTICA MISCELÁNEA
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<223> Leptina de ratón Sigk-HA
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<223> cebo O -1702
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<223> cebo O -1821
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\hfill
37
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<223> cebo O -1769
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ggatgacacc aaaaccaaca tcaagacaat tgtcaccagg atc
\hfill
43
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
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<211> 43
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<223> cebo O-1770
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gatcctggtg acaattgtct tgatgttggt tttggtgtca tcc
\hfill
43
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<210> 15
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> mutante de leptina de ratón R20N
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<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
104
5
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 178
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> mutante de leptina de ratón L13N
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<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
6
7
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<210> 17
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<211> 178
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> mutante de leptina de ratón S120AT121A
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<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
8
9

Claims (12)

1. Antagonista de leptina que consta del ID de Secuencia nº 1.
2. Antagonista de leptina según la reivindicación 1, que consta de una secuencia seleccionada del grupo formado por los ID de Secuencia nº 2, 3 y 4.
3. Antagonista de leptina capaz de unir el receptor de leptina sin inducir la ruta de señalización, que consta del ID de Secuencia nº 5 o de un fragmento funcional del mismo.
4. Antagonista de leptina según la reivindicación 3, donde dicho antagonista consta de un residuo A en la posición 120 y/o la posición 121 del ID de Secuencia nº 5.
5. El uso de un antagonista de leptina según una de las anteriores reivindicaciones para la preparación de un medicamento para el tratamiento de enfermedades inmunitarias y/o autoinmunitarias mediadas por células T.
6. El uso de un antagonista de leptina según una de las reivindicaciones 1-4 para la preparación de un fármaco para el tratamiento de enfermedades de inflamación intestinal.
7. El uso de un antagonista de leptina según la reivindicación 6, donde dicha enfermedad de inflamación intestinal se selecciona del grupo formado por la enfermedad de Crohn, la colitis ulcerosa y las enfermedades de infección intestinal.
8. El uso de un antagonista de leptina según una de las reivindicaciones 1-4 para la preparación de un fármaco para el tratamiento de la artritis reumatoide.
9. El uso de un antagonista de leptina según una de las reivindicaciones 1-4 para la preparación de un fármaco para el tratamiento de la esclerosis múltiple.
10. El uso de un antagonista de leptina según una de las reivindicaciones 1-4 para la preparación de un fármaco para el tratamiento de la diabetes de tipo 1.
11. El uso de un antagonista de leptina según una de las reivindicaciones 1-4 para la preparación de un fármaco para el tratamiento de la toxicidad hepática mediada por células T.
12. Composición farmacéutica que consta de un antagonista de leptina según una de las reivindicaciones 1-4.
ES03102619T 2003-08-21 2003-08-21 Nuevo antagonista de leptina. Expired - Lifetime ES2289235T3 (es)

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