JP2000515016A

JP2000515016A - 高親和性インターロイキン―４突然変異タンパク質

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Publication number: JP2000515016A
Application number: JP10506976A
Authority: JP
Inventors: グリーブ，ジエフリー; シヤナフエルト，アーメン・ビー; ロクズニアク，スチーブン
Original assignee: Bayer Corp
Current assignee: Bayer Corp
Priority date: 1996-07-19
Filing date: 1997-07-09
Publication date: 2000-11-14
Also published as: CN1201006C; RU2202364C2; NZ505238A; PL188738B1; ZA976368B; ID17491A; WO1998003654A2; DE69734723T2; EP0939817B1; TR199900100T2; AU3654597A; TW496871B; NZ333748A; CN1230223A; HK1022717A1; AR060630A2; CA2259940C; IL182509A0; IL182509A; AU718794B2

Abstract

(57)【要約】突然変異タンパク質が野生型ＩＬ−４のＡ−またはＣ−αヘリックスのいずれかの結合面中に少なくとも１個のアミノ酸置換を含んでなり、それにより突然変異タンパク質が天然のＩＬ−４より少なくとも大きい親和性でＩＬ−４Ｒα受容体に結合する、野生型ＩＬ−４に従って番号をつけられた組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。より好ましくは、置換がＡ−ヘリックス中の位置１３及び１６並びにＣ−ヘリックス中の位置８１及び８９からなる位置の群から選択される。最も好ましい態様は位置１３での置換がＴｈｒ→Ａｓｐである組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質である。製薬学的組成物、突然変異タンパク質をコードするアミノ酸及びポリヌクレオチド配列、形質転換された宿主細胞、突然変異タンパク質に対する抗体、並びに処置の方法も記述される。

Description

【発明の詳細な説明】高親和性インターロイキン−４突然変異タンパク質発明の背景１．発明の分野本発明は一般的に薬理学及び免疫学の分野に関する。より具体的には、本発明はサイトカインファミリー、特にヒトインターロイキン４（ＩＬ−４）の新規な変異体に関する。２．関連する分野の説明インターロイキン−４は活性化Ｔ細胞（Ｈｏｗａｒｄ等、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１５５：９１４（１９８２））、マスト細胞（Ｂｒｏｗｎ等、Ｃｅｌｌ５０：８０９（１９８７））及び好塩基球（Ｓｅｄｅｒ等、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８８：２８３５（１９９１））により分泌される１５ｋＤａ糖タンパク質であり、造血及び非造血細胞において広範囲の細胞機能を調節する。ＩＬ−４の配列は米国特許番号第５，０１７，６９１号に開示されている。インターロイキン４（ＩＬ−４）は免疫系の細胞、内皮細胞及び繊維芽細胞の性質のものに対する活性を有する多面的サイトカインである。報告されたＩＬ −４投与のインビトロ作用はＴ及びＢ細胞の増殖、Ｂ細胞における免疫グロブリンクラススイッチング、内皮細胞における細胞表面接着分子の生産の刺激、並びにＩＬ−６放出の刺激を含む。Ｔ細胞では、ＩＬ−４はマイトジェンでの前活性化後のＴ細胞増殖を刺激し、ＩＦＮ−γ生産をダウンレギュレートする。単球では、ＩＬ−４はクラスII ＭＨＣ分子の発現、リポ多糖により誘導されるｔＰＡの放出、及びＣＤ２３の発現を誘導する。内皮細胞（ＥＣ）では、ＩＬ−４はＶＣＡＭ−１の発現及びＩＬ−６の放出を誘導する。ＩＬ−４はＩＣＡＭ−１の発現を減らす。Ｍａｈｅｒ、ＤＷ、等、ＨｕｍａｎＩｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４：ＡｎＩｍｍｕｎｏｍｏｄｕｌａｔｏｒｗｉｔｈＰｏｔｅｎｔｉａｌＴｈｅｒａｐｅｕｔｉｃＡｐｐ１ｉｃａｔｉｏｎｓ、ＰｒｏｇｒｅｓｓｉｎＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒＲｅｓｅａｒｃｈ、３：４３−５６（１９９１））。ＩＬ−２にさらされることにより活性化されたＴ細胞の増殖を刺激するＩＬ− ４の能力のために、ＩＬ−４治療が進められている。例えば、ＩＬ−４は腎癌の動物モデルにおいて抗腫瘍活性を示しており、そしてマウスで腫瘍の退縮を誘導している（Ｂｏｓｃｏ、Ｍ．等、ＬｏｗＤｏｓｅｓｏｆＩＬ−４ＩｎｊｅｃｔｅｄＰｅｒｉｌｙｍｐｈａｔｉｃａｌｌｙｉｎＴｕｍｏｒ−ｂｅａｒｉｎｇＭｉｃｅＩｎｈｉｂｉｔｔｈｅＧｒｏｗｔｈｏｆＰｏｏｌｙａｎｄＡｐｐａｒｅｎｔｌｙＮｏｎｉｍｍｕｎｏｇｅｎｉｃＴｕｍｏｒｓａｎｄＩｎｄｕｃｅａＴｕｍｏｒＳｐｅｃｉｆｉｃＩｍｍｕｎｅＭｅｍｏｒｙ、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．、１４５：３１３６−４３（１９９０））。しかしながら、その毒性のためにヒトにおける投与量は限定される（Ｍａｒｇｏｌｉｎ、Ｋ．等、Ｐｈａｓｅ II ＳｔｕｄｉｅｓｏｆＨｕｍａｎＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔＩｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４ｉｎＡｄｖａｎｃｅｄＲｅｎａｌＣａｎｃｅｒａｎｄＭａｌｉｇｎａｎｔＭｅｌａｎｏｍａ、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ、１５：１４７−１５３（１９９４））。ＩＬ−４及び４個の逆平行αヘリックスドメイン（Ａ−Ｄ）を含有する関連した単量体リガンドの一般構造及び機能は現在知られている。ＩＬ−４の３次元構造は解明されている（Ｐｏｗｅｒｓ等、Ｓｃｉｅｎｃｅ２５６：１６７３（１９９２））。このタンパク質は４個の左巻きαヘリックス及び２個のβシートを含有する。ＩＬ−４受容体は少なくとも２個の鎖からなる。第一のＩＬ−４Ｒ鎖のＩＬ− ４Ｒαは成長因子受容体スーパーファミリーのＩＬ−２Ｒ及び他のメンバーのβ 鎖に著しい相同性を有する（Ｌｄｚｅｒｄａ等、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７１：８６１（１９９０））。第二のＩＬ−４Ｒ鎖は‘共通鎖’γ_cとしても知られているＩＬ−２Ｒの鎖と同定されている（Ｒｕｓｓｅｌｌ等、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６２：１８７７(１９９３)）。これら２つの結合部位は連続して起こる２つの結合事象におそらく関与しており、３要素から成る１：１：１複合体を生じる。ＩＬ−４Ｒαとの結合を招くと思われるＩＬ−４の領域はヘリックスＡ及びＣのいずれかまたは両方に位置すると考えられ、一方、γ_cと相互作用する領域はヘリックスＤに位置すると考えられる。現在の理論は第一の結合事象が最初の結合成分のＩＬ−４Ｒαに接触するリガンドを含むとみなす。いかなる細胞シグナリング活性もこの事象に関係しない。第二の結合事象はＩＬ−４／ＩＬ−４Ｒα複合体がもう一つの鎖、γ_cを召集すると起こる。この第二の結合事象の後にシグナリングが起こり、細胞活性が確立される。（細胞活性のために必要な）第二の領域により媒介される結合相互作用が減少または除去される場合には、ＩＬ−４Ｒ αへの結合を保持しながら野生型ＩＬ−４の拮抗作用が見いだされる。候補リガンドが第一及び第二の領域を介して両方の受容体成分に構造上相互作用する場合には作動作用（Ａｇｏｎｉｓｍ）が生じる。ＩＬ−４のアンタゴニストは文献に報告されている。アンタゴニストとして機能するＩＬ−４の突然変異体は、ＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質ＩＬ−４／Ｙ１２４Ｄ（ＫｒｕｓｅＮ、ＴｏｎｙＨ．Ｐ．、ＳｅｂａｌｄＷ．、Ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４ｉｎｔｏａｈｉｇｈａｆｆｉｎｉｔｙａｎｔａｇｏｎｉｓｔｂｙａｓｉｎｇｌｅａｍｉｎｏａｃｉｄｒｅｐｌａｃｅｍｅｎｔ、ＥｍｂｏＪ、１１：３２３７−４４（１９９２））及び二重突然変異タンパク質ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］（Ｔｏｎｙ、Ｈ．、等、ＤｅｓｉｇｎｏｆＨｕｍａｎＩｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４ＡｎｔａｇｏｎｉｓｔｓｉｎＩｎｈｉｂｉｔｉｎｇＩｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔａｎｄＩｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−１３−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔｒｅｓｐｏｎｓｅｓｉｎＴ−ｃｅｌｌｓａｎｄＢ−ｃｅｌｌｓｗｉｔｈｈｉｇｈｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２２５：６５９−６６４（１９９４））を含む。単一突然変異タンパク質はＤ−ヘリックス中の位置１２４でのアスパラギン酸によるチロシンの置換である。二重突然変異タンパク質はＤ−ヘリックス中の位置１２１でのアスパラギン酸によるアルギニン及び位置１２４でのアルパラギン酸によるチロシンの置換である。Ｄヘリックスのこの部分における変異は確かに第二の結合領域での相互作用の変化と相関する。野生型ＩＬ−４の作動作用または拮抗作用を示すＩＬ−４の突然変異体種はＩＬ−４の多面的作用のいずれかと関係する疾患を処置するために有用である可能性がある。例えば、ＩＬ−４のアンタゴニストは喘息、アレルギーまたは他の炎症反応関連疾患のようなＩＬ−４生産により悪化する疾患を処置することに有用である。ＩＬ−４のアゴニストはＩＬ −４の存在が疾病の改善または減衰と関係する疾患、例えば、慢性関節リウマチ、多発性硬化症、インシュリン依存型糖尿病等のような自己免疫疾患を処置するために有用である可能性がある。これらの自己免疫疾患はＴヘルパー細胞集団、１及び２型（Ｔｈ１、Ｔｈ２）の生産の偏向を特徴とする。生来のＣＤ４⁺Ｔ細胞は刺激中に存在するサイトカインによりＴｈ１またはＴｈ２サブセットに分化する。ＩＬ−４アゴニストは理想的には所望されるＴヘルパー細胞、すなわち、Ｔｈ２に生産を転じ、それにより治療作用を有する。ＰＣＴ／ＵＳ９３／０３６１３号はαヘリックスドメイン中にＰｈｅ−ＬｅｕまたはＴｙｒ−Ｌｅｕ配列及びそのＰｈｅ−ＬｅｕまたはＴｙｒ−Ｌｅｕ配列からすぐ上流または下流の２アミノ酸以内に負に荷電したアミノ酸を有するＩＬ− ４変異体を開示しており、その変異体は負に荷電したアミノ酸に置換された中性アミノ酸のためにＩＬ−４受容体に対する増加した親和性を有する。また、それは負に荷電した殊基の２残基以内のＩＬ−４のα−ヘリックス内のＴｒｐ−ＬｅｕまたはＰｈｅ−Ｌｅｕの特定の置換が向上した親和性をもたらすことを開示している。その変異体は（ジフテリア毒素との）ＩＬ−４融合タンパク質である。発明の要約本発明は突然変異タンパク質が野生型ＩＬ−４のＡ−またはＣ−αヘリックスのいずれかの結合表面中に少なくとも１個のアミノ酸置換を含んでなり、それにより突然変異タンパク質が天然のＩＬ−４より少なくとも大きい親和性でＩＬ− ４Ｒα受容体に結合する、野生型ＩＬ−４に従って番号をつけられた組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質に関する。置換は好ましくはＡ−ヘリックス中の位置１３及び１６並びにＣ −ヘリックス中の位置８１及び８９からなる位置の群から選択される。最も好ましい態様は位置１３での置換がＴｈｒ→Ａｓｐである組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質である。製薬学的組成物、突然変異タンパク質をコードするアミノ酸及びポリヌクレオチド配列、形質転換された宿主細胞、突然変異タンパク質に対する抗体、並びに処置の方法も記述される。また、本発明は第一にストレプトアビジンで被覆された「フラッシュプレート（ＦｌａｓｈＰｌａｔｅ）」中に受容体鎖の結合部分を導入し、ストレプトアビジンが結合することができるペプチドタグを受容体鎖の結合部分が保有し；第二に、受容体鎖の結合部分に対する親和性を有する放射性標識された天然のリガンドをフラッシュプレート中に導入し；第三に、受容体鎖の結合部分に対する親和性を有する突然変異タンパク質リガンドをフラッシュプレート中に導入し；平衡にさせた後、フラッシュプレートにより発せられるシグナルの量を測定し；そして最後に、天然のリガンドに対する突然変異タンパク質リガンドの相対的親和性を計算する工程を含んでなる、受容体に結合する突然変異タンパク質の能力を測定するためのアッセイにも関する。好ましい様式として、この方法は受容体鎖ＩＬ−４Ｒαを用いる。また、本発明は突然変異タンパク質が（ａ）野生型ＩＬ−４のＤ−ヘリックス中の置換Ｒ１２１Ｄ及びＹ１２４Ｄ；並びに（ｂ）野生型ＩＬ−４のＡ−またはＣ−αヘリックスのいずれかの結合表面中に少なくとも１個のアミノ酸置換を含んでなり、それにより突然変異タンパク質が天然のＩＬ−４より少なくとも大きい親和性でＩＬ−４Ｒα受容体に結合する、野生型ＩＬ−４に従って番号をつけられた組み換えヒトＩＬ− ４アンタゴニスト突然変異タンパク質にも関する。置換は好ましくはＡ−ヘリックス中の位置１３及び１６並びにＣ−ヘリックス中の位置８１及び８９からなる位置の群から選択される。最も好ましい態様は位置１３での置換がＴｈｒ→Ａｓｐである組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質である。また、製薬学的組成物、突然変異タンパク質をコードするアミノ酸及びポリヌクレオチド配列、形質転換された宿主細胞、突然変異タンパク質に対する抗体、並びに処置の方法も記述される。図面の簡単な説明図１はＩＬ−４のリガンド／受容体構造の概要図である。ＩＬ−４は４ヘリックス束（ｂｕｎｄｌｅ）タンパク質であり、ここでは、４個のヘリックス（それぞれ、ＮからＣ末端へＡ、Ｂ、Ｃ及びＤ）の「末端から見た」図で示される。ＩＬ−４受容体の最初の結合成分はＩＬ−４Ｒαであり、ＩＬ−４のＡ−及びＣ− ヘリックスを介してＩＬ−４リガンドと相互作用する。３要素からなる複合体ＩＬ−４／ＩＬ−４Ｒα／ＩＬ−２Ｒγの形成は標的細胞でシグナリングを誘導する。図２はＴ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］の競合的結合のＸ−Ｙプロットである。固相結合アッセイにおいて¹²⁵Ｉ−ＩＬ−４と競合するＴ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］の能力、●がＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］のもの、○に比較して示される。このアッセイを用いて測定されたＫ_dはＴ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］に対して０．２８ｎＭであり、ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］に対しては５．０ｎＭであった。図３はＴ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］、●によるＩＬ−４の拮抗作用を示す同様なＸ−Ｙプロットである。ＩＬ−４により誘導されるＰＨＡ−ブラスト（ｂｌａｓｔｓ）の増殖と競合するＴ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］の能力がＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］、○に比較して示される。このアッセイから測定されたＩＣ₅₀はＴ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］に対して２ｎＭであり、ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］に対しては１３ｎＭであった。図４はｓＩＬ−４Ｒα−ＳＴＸのアミノ酸配列表である。図５はＴ１３Ｄ−ＩＬ−４突然変異タンパク質の合成配列表である。図６はＴ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］突然変異タンパク質の合成配列表である。好ましい態様の説明本明細書に記述されるものは新規な突然変異タンパク質及びｗｔＩＬ−４受容体に対してより高い親和性を有する新規なＩＬ−４突然変異タンパク質を得るための手段である。本明細書に用いられる場合、「野生型ＩＬ−４」または「ｗｔＩＬ−４」は天然または組み換えのものであろうとも、引用することにより本明細書に組み込まれる米国特許番号第５，０１７，６９１号に開示されるような、天然のヒトＩＬ−４の１２９個の通常存在するアミノ酸配列を有するヒトインターロイキン− ４を意味する。本明細書に用いられる場合、「ＩＬ−４突然変異タンパク質」はヒト成熟インターロイキン−４タンパク質、具体的にはＡまたはＣ−ヘリックスのいずれか、より好ましくはそれらの結合表面を構成するアミノ酸に対して特定のアミノ酸置換がなされているポリペプチドを意味する。一般的に、Ａヘリックスの結合表面はアミノ酸の位置約５から約１６まで、そしてヘリックスＣでは位置約７７から約８９までであると見いだされている。いずれかのヘリックスに対するこれらの変異は得られる突然変異タンパク質のＩＬ− ４Ｒαに対する親和性を増し、その突然変異タンパク質は分子に対するさらなる置換の最終的な性質によりｗｔＩＬ−４のアゴニストまたはアンタゴニストのいずれかである可能性がある。本明細書に用いられる場合、「ＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質」はヒト成熟インターロイキン−４タンパク質に対して特定のアミノ酸置換がなされているポリペプチドを意味する。具体的には、本明細書に提示されるアンタゴニスト突然変異タンパク質は少なくとも３個の別個の置換を含有する。「ＩＬ− ４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］」の置換対は本明細書に含まれる全てのアンタゴニスト突然変異タンパク質に存在し、Ｄ−ヘリックス中のバックボーン置換対、Ｒ１２１Ｄ（Ａｒｇ→Ａｓｐ）及びＹ１２４Ｄ（Ｔｙｒ→Ａｓｐ）をさす。さらに、受容体α鎖への突然変異タンパク質の結合親和性を増加する位置でＡ−またはＣ−ヘリックスのいずれかの結合表面中に第三の置換が導入されている。これらの変異を除いて、最も好ましいＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質は他の置換されていない残基で野生型ＩＬ−４に同一のアミノ酸配列を有する。また、本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質は天然のＩＬ−４ポリペプチド鎖中の１個もしくはそれ以上の部位または他の残基でのアミノ酸の挿入、欠失、置換及び改変により特徴付けられてもよい。本発明によるあらゆるそのような挿入、欠失、置換及び改変は、そのＩＬ−４関連活性を保持するＩＬ−４突然変異タンパク質を生じるはずである。ＩＬ−４の他の位置での保存的改変及び置換（すなわち、突然変異タンパク質の二次または三次構造に対して最小限の影響を有するもの）が好ましい。そのような保存的置換はＤａｙｈｏｆｆによりＴｈｅＡｔｌａｓｏｆＰｒｏｔｅｉｎＳｅｑｕｅｎｃｅａｎｄＳｔｒｕｃｔｕｒｅ５（１９７８）中及びＡｒｇｏｓによりＥＭＢＯＪ．、８：７７９−７８５（１９８９）中に記述されたものを含む。例えば、以下の群 -ａｌａ、ｐｒｏ、ｇｌｙ、ｇｌｎ、ａｓｎ、ｓｅｒ、ｔｈｒ； -ｃｙｓ、ｓｅｒ、ｔｙｒ、ｔｈｒ； -ｖａｌ、ｉｌｅ、ｌｅｕ、ｍｅｔ、ａｌａ、ｐｈｅ； -ｌｙｓ、ａｒｇ、ｈｉｓ； -ｐｈｅ、ｔｙr、ｔｒｐ、ｈｉｓ；及び -ａｓｐ、ｇｌｕ、ｔｙｒのいずれかに属するアミノ酸は保存的変異を表す。また、分子間架橋または不適切なジスルフィド結合形成の部位を除く改変または置換も好ましい。例えば、ＩＬ−４は野生型の位置３、２４、４６、６５、９９及び１２７に６個のｃｙｓ残基を有することが知られており、それらの１個またはそれ以上が架橋相互作用に関与する可能性がある。置換は可能な限り野生型タンパク質の３次構造を保つように選択されるべきである。「野生型ＩＬ−４に従って番号をつけられた」は、野生型ＩＬ−４において通常存在する位置に関して選択アミノ酸を同定することを意味する。ＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質に挿入または欠失が作製される場合も、野生型ＩＬ−４に従って番号をつけられた時に、例えば、位置１２５に通常存在するＳｅｒ（Ｓ）が、突然変異タンパク質において位置が移動する可能性があることを当業者は認識する。しかしながら、隣接するアミノ酸を野生型ＩＬ−４でＳｅｒに隣接するものと調べて相関させることにより、移動したＳｅｒ（Ｓ）の位置を容易に決定することができる。本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質を当該技術分野で知られているあらゆる適当な方法により製造することができる。そのような方法は本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質をコードするＤＮＡ配列を構築し、それらの配列を適当に形質転換された宿主中で発現させることを含む。この方法により本発明の組み換え突然変異タンパク質が製造される。しかしながら、優先度は低いが、化学合成または化学合成と組み換えＤＮＡ技術の組み合わせにより本発明の突然変異タンパク質を製造してもよい。本発明の突然変異タンパク質を製造するための組み換え法の一つの態様として、野生型ＩＬ−４をコードするＤＮＡ配列を単離または合成し、次に部位特異的突然変異誘発によりトレオニン−１３のコドンをアスパラギン酸のコドンに変えることによりＤＮＡ配列を構築する。この技術はよく知られている。例えば、Ｍａｒｋ等、Ｓｉｔｅ−ｓｐｅｃｉｆｉｃＭｕｔａｇｅｎｅｓｉｓＯｆＴｈｅＨｕｍａｎＦｉｂｒｏｂｌａｓｔＩｎｔｅｒｆｅｒｏｎＧｅｎｅ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８１：５６６２−６６（１９８４）；引用することにより本明細書に組み込まれる米国特許番号第４，５８８，５８５号を参照。本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質をコードするＤＮＡ配列を構築する別の方法は化学合成である。例えば、所望するＩＬ−４突然変異タンパク質をコードする遺伝子をオリゴヌクレオチド合成機を用いて化学的手段により合成することができる。そのようなオリゴヌクレオチドは所望するＩＬ−４突然変異タンパク質のアミノ酸配列に基づいて、好ましくは組み換え突然変異タンパク質が生産される宿主細胞において好まれるコドンを選択して設計される。これに関連して、遺伝暗号が縮重していること、すなわち、１つのアミノ酸を１つ以上のコドンでコードすることができることはよく認識されている。例えば、Ｐｈｅ（Ｆ）は２つのコドンＴＴＣまたはＴＴＴによりコードされ、Ｔｙｒ（Ｙ）はＴＡＣまたはＴＡＴによりコードされ、そしてＨｉｓ（Ｈ）はＣＡＣまたはＣＡＴによりコードされる。Ｔｒｐ（Ｗ）は単一のコドンＴＧＧによりコードされる。従って、特定のＩＬ−４突然変異タンパク質をコードする一定のＤＮＡ配列に対して、そのＩＬ−４突然変異タンパク質をコードする多数の縮重ＤＮＡ配列があることが理解される。例えば、配列番号９に示される突然変異タンパク質Ｔ１３Ｄ −ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］の好ましいＤＮＡ配列に加えて、示されるＩＬ−４突然変異タンパク質をコードする多数の縮重ＤＮＡ配列があることが理解される。これらの縮重ＤＮＡ配列は本発明の範囲内とみなされる。それ故、本発明の文脈上「その縮重変異体」は特定の突然変異タンパク質をコードする全てのＤＮＡ配列を意味する。本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質をコードするＤＮＡ配列は、部位特異的突然変異誘発、化学合成または他の方法で調製されようとも、シグナル配列をコードするＤＮＡ配列を含んでもまたは含まなくともよい。そのようなシグナル配列は、存在する場合、ＩＬ−４突然変異タンパク質の発現のために選択された細胞により認識されるものでなければならない。それは原核生物のもの、真核生物のものまたはそれら２つの組み合わせであってもよい。また、それは天然のＩＬ−４のシグナル配列であってもよい。シグナル配列の包含はＩＬ−４突然変異タンパク質が製造される組み換え細胞からそれを分泌することが適切であるかどうかによる。選択された細胞が原核生物のものである場合、一般的に、ＤＮＡ配列がシグナル配列をコードしないが、直接発現のためにＮ末端のメチオニンを含むことが好ましい。選択された細胞が真核生物のものである場合、一般的に、シグナル配列をコードすることが好ましく、野生型ＩＬ−４シグナル配列を用いることが最も好ましい。本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質をコードする遺伝子を合成するために標準的な方法を適用することができる。例えば、完全なアミノ酸配列を用いて逆翻訳された遺伝子を構築することができる。ＩＬ−４突然変異タンパク質をコードするヌクレオチド配列を含有するＤＮＡオリゴマーを合成してもよい。例えば、所望するポリペプチドの一部をコードするいくつかの小さいオリゴヌクレオチドを合成し、次に連結することができる。個々のオリゴヌクレオチドは典型的に相補的組み立てのために５’または３’突出を含む。（合成、部位特異的突然変異誘発または別の方法により）いったん組み立てられると、本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質をコードするＤＮＡ配列を発現ベクター中に挿入し、所望する形質転換宿主におけるＩＬ−４突然変異タンパク質の発現のために適切な発現制御配列に機能的に連結する。ヌクレオチドシークエンシング、制限マッピング及び好適な宿主における生物学的に活性のあるポリペプチドの発現により正しい組み立てを確認することができる。当該技術分野でよく知られているように、宿主においてトランスフェクト遺伝子の高い発現レベルを得るためには、選択した発現宿主で機能できる転写及び翻訳発現制御配列に遺伝子を機能的に連結しなければならない。発現制御配列及び発現ベクターの選択は宿主の選択による。多種多様な発現宿主／ベクターの組み合わせを用いることができる。真核生物宿主のために有用な発現ベクターは、例えば、ＳＶ４０、ウシパピローマウイルス、アデノウイルス及びサイトメガロウイルスからの発現制御配列を含んでなるベクターを含む。バクテリア宿主のために有用な発現ベクターはｃｏｌＥ１、ｐＣＲ１、ｐＥＲ３２ｚ、ｐＭＢ９及びそれらの誘導体を初めとする大腸菌からのプラスミドのような既知のバクテリアプラスミド、ＲＰ４のようなより広い宿主範囲のプラスミド、ファージＤＮＡ、例えばファージラムダの多数の誘導体、例えばＮＭ９８９、並びにＭ１３及び糸状一本鎖ＤＮＡファージのような他のＤＮＡファージを含む。酵母細胞のために有用な発現ベクターは２μプラスミド及びその誘導体を含む。昆虫細胞のために有用なベクターはｐＶＬ９４１を含む。ｐＦａｓｔＢａｃ’ １（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）が好ましい。Ｃａｔｅ等、ＩｓｏｌａｔｉｏｎＯｆＴｈｅＢｏｖｉｎｅＡｎｄＨｕｍａｎＧｅｎｅｓＦｏｒＭｕｌｌｅｒｉａｎＩｎｈｉｂｉｔｉｎｇＳｕｂｓｔａｎｃｅＡｎｄＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＯｆＴｈｅＨｕｍａｎＧｅｎｅＩｎＡｎｉｍａｌＣｅｌｌｓ、Ｃｅｌｌ、４５：６８５−９８（１９８６）。さらに、あらゆる多種多様な発現制御配列をこれらのベクターに用いることができる。そのような有用な発現制御配列は前述の発現ベクターの構造遺伝子に関係する発現制御配列を含む。有用な発現制御配列の例は、例えば、ＳＶ４０またはアデノウイルスの初期及び後期プロモーター、ｌａｃ系、ｔｒｐ系、ＴＡＣまたはＴＲＣ系、ファージラムダの主要なオペレーター及びプロモーター領域、例えばＰＬ、ｆｄコートタンパク質の制御領域、３−ホスホグリセリン酸キナーゼまたは他の解糖酵素のプロモーター、酸性ホスファターゼのプロモーター、例えばＰｈｏＡ、酵母α−接合系のプロモーター、バキュロウイルスのポリヘドロンプロモーター、並びに原核もしくは真核細胞またはそれらのウイルスの遺伝子の発現を制御することが知られている他の配列、並びにそれらの各種組み合わせを含む。本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質を製造するために、バクテリア、（酵母を初めとする）真菌、植物、昆虫、哺乳類または他の適切な動物細胞もしくは細胞系及びトランスジェニック動物または植物を初めとするあらゆる好適な宿主を用いることができる。より具体的には、これらの宿主はエシェリキアコリ（Ｅ．ｃｏｌｉ）、シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）、バシラス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）、ストレプトマイセス（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ）の株、真菌、酵母、スポドプテラフルギペルダ（Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ）（Ｓｆ９）のような昆虫細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）及びＮＳ／Ｏのようなマウス細胞のような動物細胞、ＣＯＳ１、ＣＯＳ７、ＢＳＣ１、ＢＳＣ４０及びＢＮＴ１０のようなアフリカミドリザル細胞、並びにヒト細胞、並びに組織培養の植物細胞のようなよく知られている真核生物及び原核生物の宿主を含むことができる。動物細胞発現のためには培養物のＣＨＯ細胞及びＣＯＳ７細胞、特にＣＨＯ細胞系ＣＨＯ（ＤＨＦＲ^- ）が好ましい。もちろん、本明細書に記述されるＤＮＡ配列を発現させるために全てのベクター及び発現制御配列が同等によく機能するとは限らないことが理解されるはずである。また、全ての宿主が同じ発現系で同等によく機能するとは限らない。しかしながら、当業者は過度の実験なしにこれらのベクター、発現制御配列及び宿主の中で選択をすることができる。例えば、ベクターの選択では、ベクターは宿主の中で複製しなければならないので宿主を考慮しなければならない。ベクターのコピー数、そのコピー数を制御する能力、及び抗生物質マーカーのようなベクターによりコードされるあらゆる他のタンパク質の発現も考慮すべきである。例えば、本発明における使用のために好ましいベクターはＩＬ−４突然変異タンパク質をコードするＤＮＡがコピー数で増幅されるようにするものを含む。そのような増幅できるベクターは当該技術分野でよく知られている。それらは例えばＤＨＦＲ増幅（例えば、Ｋａｕｆｍａｎ、米国特許第４，４７０，４６１号、Ｋａｕｆｍａｎ及びＳｈａｒｐ、ＣｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎＯｆＡＭｏｄｕｌａｒＤｉｈｙｄｒａｆｏｌａｔｅＲｅｄｕｃｔａｓｅｃＤＮＡＧｅｎｅ：ＡｎａｌｙｓｉｓＯｆＳｉｇｎａｌｓＵｔｉｌｉｚｅｄＦｏｒＥｆｆｉｃｉｅｎｔＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎ、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．、２：１３０４−１９（１９８２）を参照）またはグルタミンシンテターゼ（「ＧＳ」）増幅（例えば、米国特許第５，１２２，４６４号及び欧州開示出願ＥＰＯ第３３８８４１号を参照）により増幅することができるベクターを含む。発現制御配列を選択する場合には、各種因子も考慮すべきである。例えば、これらは本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質をコードする実際のＤＮＡ配列との配列の相対的な強さ、その制御能力、及びその適合性を含み、特に可能性のある二次構造に関する。宿主は選択したベクターとそれらの適合性、本発明のＤＮＡ配列によりコードされる産物の毒性、それらの分泌特性、ポリペプチドを正しく折りたたむそれらの能力、それらの発酵または培養条件、及びＤＮＡ配列によりコードされる産物の精製の容易さを考慮することにより選択されるべきである。これらのパラメーターの範囲内で、当業者は発酵または例えばＣＨＯ細胞もしくはＣＯＳ７細胞を用いる大規模動物培養で所望するＤＮＡ配列を発現する各種ベクター／配列制御配列／宿主の組み合わせを選択することができる。本発明により得られるＩＬ−４突然変異タンパク質をその突然変異タンパク質を生産するために用いられる宿主生物によりグリコシル化または非グリコシル化することができる。バクテリアを宿主としで選択する場合、生産されるＩＬ−４突然変異タンパク質はグリコシル化されない。一方、真核細胞はおそらく天然のＩＬ−４がグリコシル化されるのと同じようにではないがＩＬ−４突然変異タンパク質をグリコシル化する。形質転換された宿主により生産されるＩＬ−４突然変異タンパク質をあらゆる好適な方法により精製することができる。ＩＬ−４を精製するための様々な方法が知られている。例えば、米国特許第５，０１３，８２４号及び第５，０１７，６９１号；並びにＷＯ第９６０４３０６−Ａ２号を参照。免疫アフィニティー精製が好ましい。例えば、Ｏｋａｍｕｒａ等、ＨｕｍａｎＦｉｂｒｏｂｌａｓｔｏｉｄＩｎｔｅｒｆｅｒｏｎ：ＩｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔＣｏｌｕｍｎＣｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙＡｎｄＮ−ＴｅｒｍｉｎａｌＡｍｉｎｏＡｃｉｄＳｅｑｕｅｎｃｅ、Ｂｉｏｃｈｅｍ．、１９：３８３１−３５（１９８０）を参照。本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質の生物学的活性を当該技術分野で知られているあらゆる好適な方法によりアッセイすることができる。そのようなアッセイはＥＰ−Ｂ１−第４１３１３号に記述されたような、抗ウイルス活性の抗体中和、プロテインキナーゼ、オリゴアデニル酸２，５−Ａシンテターゼまたはホスホジエステラーゼ活性の誘導を含む。また、そのようなアッセイは免疫制御アッセイ（例えば、米国特許第４，７５３，７９５号を参照）、増殖抑制アッセイ、Ｔ細胞増殖、内皮細胞におけるＩＬ−６の誘導及びＭＣＰ−１の誘導並びにインターロイキン−４受容体を発現する細胞への結合の測定も含む。ＳｐｉｔｓＨ、ＹｓｓｅｌＨ、ＴａｋｅｂｅＹ、等、ＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔＩｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４ＰｒｏｍｏｔｅｓｔｈｅＧｒｏｗｔｈｏｆＨｕｍａｎＴＣｅｌｌｓ、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３９：１１４２−４７（１９８７）も参照。本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質は野生型の天然または組み換えのＩＬ− ４での療法において用いられるものにほぼ等しいかまたはそれより多い投与量で投与される。好ましくは有効量のＩＬ−４突然変異タンパク質が投与される。「有効量」は処置される疾患または徴候の重さまたは広がりを防ぐかまたは緩和することができる量を意味する。ＩＬ−４突然変異タンパク質が単独または他の治療薬と共に投与されようとも、ＩＬ−４突然変異タンパク質の有効量がとりわけ疾病、投与量、ＩＬ−４突然変異タンパク質の投与計画、組成物の血清半減期及び患者の一般的な健康により決まることは当業者にとって明らかである。好ましくは、ＩＬ−４突然変異タンパク質は製薬学的に許容しうる担体を含有する組成物で投与される。「製薬学的に許容しうる担体」は投与される患者においていかなる不都合な作用も生じない担体を意味する。そのような製薬学的に許容しうる担体は当該技術分野においてよく知られている。ｐＨ７．０の２％ＨＳＡ／ＰＢＳが好ましい。本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質をよく知られている方法により製薬学的組成物中に配合することができる。例えば、引用することにより本明細書に組み込まれる、好適な配合物を記述するＥ．Ｗ．ＭａｒｔｉｎによるＲｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅを参照。ＩＬ−４突然変異タンパク質の製薬学的組成物を液体、ゲル、凍結乾燥またはあらゆる他の好適な形態を初めとする各種形態に配合することができる。好ましい形態は処置される特定の徴候により決まり、当業者にとって明らかである。ＩＬ−４突然変異タンパク質の製薬学的組成物を経口、エアロゾルにより、静脈内、筋肉内、腹腔内、皮内もしくは皮下にまたはあらゆる他の許容しうる方法で投与することができる。投与の好ましい形態は処置される特定の徴候により決まり、当業者にとって明らかである。ＩＬ−４突然変異タンパク質の製薬学的組成物を他の治療薬と共に投与することができる。これらの薬剤を同じ製薬学的組成物の一部として混和してもよく、またはＩＬ−４突然変異タンパク質とは別個に同時にかもしくはあらゆる他の許容しうる処置計画に従って投与してもよい。さらに、ＩＬ−４突然変異タンパク質の製薬学的組成物を他の治療の補助薬として用いることができる。従って、本発明はあらゆる適当な動物、好ましくは哺乳類、最も好ましくはヒトにおける免疫疾患、癌もしくは腫瘍、異常な細胞増殖の処置のためまたは免疫制御のための組成物及び方法を提供する。発明の背景の項で先に記述したように、ＩＬ−４は多数の作用を有する。これらのいくつかはＴ細胞増殖の刺激、Ｔ− ヘルパー細胞分化、ヒトＢ細胞活性化及び増殖の誘導並びにリンホカインによる免疫グロブリンの免疫グロブリンクラススイッチである。リンパ系に対する作用はＢ細胞上のＭＨＣクラスII抗原（Ｎｏｅｌｌｅ、Ｒ．等、ＩｎｃｒｅａｓｅｄＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎｏｆＩａＡｎｔｉｇｅｎｓｏｎｒｅｓｔｉｎｇＢｃｅｌｌｓ：ａＮｅｗＲｏｌｅｆｏｒＢＣｅｌｌＧｒｏｗｔｈＦａｃｔｏｒ、ＰＮＡＳＵＳＡ、８１：６１４９−５３（１９８４））及びＣＤ２３（Ｋｉｋｕｔａｎｉ、Ｈ．等、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＳｔｒｕｃｔｕｒｅｏｆＨｕｍａｎＬｙｍｐｈｏｃｙｔｅＲｅｃｅｐｔｏｒｆｏｒＩｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ、Ｃｅｌｌ４７：６５７−６１（１９８６））の発現を増加することを含む。従って、ＩＬ−４の生物学からそれがアレルギー及び喘息を初めとするアレルギー性炎症性疾患の発達に重要な役割を有する可能性があることが示唆される。Ｔ−ヘルパー細胞１型（Ｔｈ１）及び２型（Ｔｈ２）は免疫反応に関与する。刺激されたＴｈ２細胞はＩＬ−４を分泌し、Ｔｈ１の発達を阻止する。Ｔｈ２が関係するあらゆる疾病はＩＬ−４アンタゴニストによる処置に反応しやすく、同様に、Ｔｈ１が関係するあらゆる疾病はＩＬ−４アゴニストによる処置に反応しやすい。また意図されるものは遺伝子治療用途における本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質をコードするＤＮＡ配列の使用である。ＩＬ−４アゴニストに対して意図される遺伝子治療用途は、炎症関連疾患（喘息）またはアレルギーのような、存在する臨床疾患をＩＬ−４が引き起こすかまたは悪化させると考えられる疾病の処置を含む。アゴニスト適応症は慢性関節リウマチ、多発性硬化症及びインシュリン依存型糖尿病のような自己免疫疾患を含む。これらの自己免疫疾患はＴヘルパー１型（Ｔｈ１）へのＴヘルパー細胞集団の生産の偏向を特徴とする。遺伝子治療を用いたアゴニスト及びアンタゴニストの両方のＩＬ−４突然変異タンパク質の局所的運搬は、アゴニストの非特異的投与に関係する潜在的な毒性の問題を回避しながら標的領域に治療薬を与えることができる。インビトロ及びインビボの両方の遺伝子治療方法論が考えられる。特定の細胞集団に可能性のある治療遺伝子を導入するためのいくつかの方法が知られている。例えば、Ｍｕｌｌｉｇａｎ、ＴｈｅＢａｓｉｃＳｃｉｅｎｃｅＯｆＧｅｎｅＴｈｅｒａｐｙ、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２６０：９２６−３１（１９９３）を参照。これらの方法は１）直接遺伝子導入、例えば、Ｗｏｌｆｆ等、ＤｉｒｅｃｔＧｅｎｅｔｒａｎｓｆｅｒＩｎｔｏＭｏｕｓｅＭｕｓｃｌｅＩｎＶｉｖｏ、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２４７：１４６５−６８（１９９０）を参照；２）リポソームによるＤＮＡ導入、例えば、Ｃａｐｌｅｎ等、Ｌｉｐｏｓｏｍｅ−ｍｅｄｉａｔｅｄＣＦＴＲＧｅｎｅＴｒａｎｓｆｅｒＴｏＴｈｅＮａｓａｌＥｐｉｔｈｅｌｉｕｍＯｆＰａｔｉｅｎｔｓＷｉｔｈＣｙｓｔｉｃＦｉｂｒｏｓｉｓ、ＮａｔｕｒｅＭｅｄ．３：３９−４６（１９９５）；Ｃｒｙｓｔａｌ、ＴｈｅＧｅｎｅＡｓＡＤｒｕｇ、ＮａｔｕｒｅＭｅｄ．１：１５−１７（１９９５）；Ｇａｏ及びＨｕａｎｇ、ＡＮｏｖｅｌＣａｔｉｏｎｉｃＬｉｐｏｓｏｍｅＲｅａｇｅｎｔＦｏｒＥｆｆｉｃｉｅｎｔＴｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎＯｆＭａｍｍａｌｉａｎＣｅｌｌｓ、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍ．、１７９：２８０−８５（１９９１）を参照；３）レトロウイルスによるＤＮＡ導入、例えば、Ｋａｙ等、ＩｎＶｉｖｏＧｅｎｅＴｈｅｒａｐｙＯｆＨｅｍｏｐｈｉｌｉａＢ：ＳｕｓｔａｉｎｅｄＰａｒｔｉａｌＣｏｒｒｅｃｔｉｏｎＩｎＦａｃｔｏｒ IX− ＤｅｆｉｃｉｅｎｔＤｏｇｓ、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２６２：１１７−１９（１９９３）；Ａｎｄｅｒｓｏｎ、ＨｕｍａｎＧｅｎｅＴｈｅｒａｐｙ、Ｓｃｉｅｎｃｅ、２５６：８０８−１３（１９９２）を参照、４）ＤＮＡウイルスによるＤＮＡ導入、そのようなＤＮＡウイルスはアデノウイルス（好ましくはＡｄ−２またはＡｄ−５に基づくベクター）、ヘルペスウイルス（好ましくは単純ヘルペスウイルスに基づくベクター）及びパルボウイルス（好ましくは「欠損」または非自律的パルボウイルスに基づくベクター、より好ましくはアデノ随伴ウイルスに基づくベクター、最も好ましくはＡＡＶ−２に基づくベクター）を含む、例えば、Ａｌｉ等、ＴｈｅＵｓｅＯｆＤＮＡＶｉｒｕｓｅｓＡｓＶｅｃｔｏｒｓＦｏｒＧｅｎｅＴｈｅｒａｐｙ、ＧｅｎｅＴｈｅｒａｐｙ、１：３６７−８４（１９９４）；引用することにより本明細書に組み込まれる米国特許第４，７９７，３６８号及び引用することにより本明細書に組み込まれる米国特許第５，１３９，９４１号を参照、を含む。目的の遺伝子を導入するための特定のベクター系の選択は様々な因子による。一つの重要な因子は標的細胞集団の性質である。レトロウイルスベクターは詳細に研究され、多数の遺伝子治療用途に用いられているが、通常、これらのベクターは非分裂細胞に感染するためには不適当である。さらに、レトロウイルスは腫瘍原性の可能性を有する。アデノウイルスは広い宿主範囲を有するという利点があり、ニューロンまたは肝細胞のような静止または最終分化細胞に感染することができ、そして本質的に非腫瘍原性と思われる。例えば、Ａｌｉ等、上記、ｐ３６７を参照。アデノウイルスは宿主ゲノム中に組込むと思われない。それらは染色体外に存在するので、挿入突然変異誘発の危険が非常に下げられる。Ａｌｉ等、上記、ｐ３７３。アデノ随伴ウイルスはアデノウイルスに基づくベクターと同様な利点を示す。しかしながら、ＡＡＶはヒト染色体１９で部位特異的組込みを示す。Ａｌｉ等、上記、ｐ３７７。この態様に従って、本発明のＩＬ−４突然変異タンパク質をコードするＤＮＡでの遺伝子治療がそれを必要とする患者に診断と同時にかまたはそのすぐ後に与えられる。ＩＬ−４突然変異タンパク質ＤＮＡを含有するあらゆる好適な遺伝子治療ベクターをこの態様に従って使用できることを当業者は認識する。そのようなベクターを構築するための技術は知られている。例えば、Ｏｈｎｏ等、上記、ｐ７８４；Ｃｈａｎｇ等、上記、ｐ５２２を参照。標的部位へのＩＬ−４突然変異タンパク質ＤＮＡを含有するベクターの導入は、例えば、Ｏｈｎｏ等、上記、ｐ７８４に記述されたような既知の技術を用いて達成することができる。本発明をよりよく理解できるように以下の実施例が記述される。これらの実施例は例示の目的のためだけであり、本発明の範囲をいかようにも制限すると解釈されるものではない。実施例一般的に、ＩＬ−４のＡ−及びＣ−ヘリックスの表面上にあると予測される残基に対応する位置で部位特異的突然変異誘発によりアラニン置換を野生型ＩＬ−４配列に導入した（ＳｍｉｔｈＬＪ；ＲｅｄｆｉｅｌｄＣ；ＢｏｙｄＪ；ＬａｗｒｅｎｃｅＧＭ；ＥｄｗａｒｄｓＲＧ；ＳｍｉｔｈＲＡ及びＤｏｂｓｏｎＣＭ、Ｈｕｍａｎｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ４．Ｔｈｅｓｏｌｕｔｉｏｎｓｔｒｕｃｔｕｒｅｏｆａｆｏｕｒ−ｈｅｌｉｘｂｕｎｄｌｅｐｒｏｔｅｉｎ、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．、２２４（４）：８９９−９０４（１９９２））。これらの残基はＩＬ−４ＲαとＩＬ−４の相互作用（図１）を媒介すると最も思われ、ＩＬ−４Ｒαに対するアラニン置換されたＩＬ−４突然変異タンパク質の結合親和性への影響は、置換された残基が結合相互作用に関与する可能性があることを示す。親和性を向上する変異を同定するために、アラニンで置換された場合に親和性に対して中程度の影響を与える残基を詳細に置換した。親和性を向上した突然変異は、組み合わせた場合に、ＩＬ−４Ｒαに対するＩＬ−４（またはＩＬ−４関連ペプチド）の親和性の組み合わせの増加を達成する可能性がある。親和性の増加は増加した効能と相関するはずである。突然変異タンパク質を部位特異的突然変異誘発により作製し、バキュロウイルス系で発現させ、均質まで精製し、アミノ酸分析により定量し、そして受容体結合アッセイで評価した。この研究に用いた成熟ヒトＩＬ−４のアミノ酸配列（配列番号１）を以下に示し、位置１のＨｉｓは成熟ポリペプチドのＮ末端を表す。Ａ−、Ｃ−及びＤ−ヘリックスをそれらのそれぞれの開始点の上に示し、下線を引く。適切に置換された場合に、より高い親和性の変異体を生じたアミノ酸をボールド体で示す。この研究で調べられる突然変異をＤ−ヘリックス中に２個の置換、Ｒ１２１Ｄ及びＹ１２４Ｄを含有するヒトＩＬ−４の既知のアンタゴニスト変異体（ＴｏｎｙＨＰ等、Ｄｅｓｉｇｎｏｆｈｕｍａｎｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｓｉｎｈｉｂｉｔｉｎｇｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４ −ｄｅｐｅｎｄｅｎｔａｎｄｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−１３−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔｒｅｓｐｏｎｓｅｓｉｎＴ−ｃｅｌｌｓａｎｄＢ−ｃｅｌｌｓｗｉｔｈｈｉｇｈｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ、２２５（２）：６５９−６５（１９９４）；この突然変異タンパク質を「ＩＬ− ４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］」と称する）中に導入した。突然変異タンパク質をバキュロウイルス系で発現させ、均質まで精製し、そして固相ＩＬ−４Ｒα受容体結合アッセイで評価した。ＩＬ−４Ｒαに対する向上した親和性の生物学的意義をＴ細胞増殖アッセイで評価した。ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］突然変異タンパク質はＩＬ−４のアンタゴニストであるので、ＩＬ−４Ｒαに対する向上した親和性は、より高い親和性のアンタゴニスト突然変異タンパク質に対して減少したＩＣ₅₀を生じるはずである（ＩＣ₅₀は特定のアゴニスト反応を５０％阻害するために必要なアンタゴニストの濃度として定義される）。実施例１．突然変異タンパク質の製造本質的にＫｕｎｋｅｌＴＡ、ＲｏｂｅｒｔｓＪＤ及びＺａｋｏｕｒＲＡ、「Ｒａｐｉｄａｎｄｅｆｆｉｃｉｅｎｔｓｉｔｅ−ｓｐｅｃｉｆｉｃｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓｗｉｔｈｏｕｔｐｈｅｎｏｔｙｐｉｃｓｅｌｅｃｔｉｏｎ」、ＭｅｔｈｏｄｓＥｎｚｙｍｏｌ１５４：３６７−３８２（１９８７）により記述されたように、所望する突然変異に対応するコドンを含有するプライマーを用いて部位特異的突然変異誘発により突然変異タンパク質を作製した。簡潔に言えば、制限酵素部位ＢａｍＨＩ及びＸｂａＩを含有するヒトＩＬ−４ｃＤＮＡをＭ１３ファージベクターＭ１３ｍｐ１９（ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＢｉｏｌａｂｓ、Ｂｅｖｅｒｌｙ、ＭＡ）中に同じ部位を用いてサブクローン化した。ホルボール１２−ミリステート−１３−アセテート（１０ｎｇ／ｍｌ）で２４時間誘導したヒト末梢血リンパ球から単離したｍＲＮＡより作製したｃＤＮＡプールからポリメラーゼ連鎖反応（「ＰＣＲ」）を用いて野生型ＩＬ−４ｃＤＮＡを得た。用いたＰＣＲプライマーは、ＩＬ−４の読み枠の５’末端にはそしてＩＬ−４の読み枠の３’末端にはであった。制限酵素部位ＢａｍＨＩ（５’末端）及びＸｂａＩ（３’末端）を各オリゴヌクレオチド中に包含し、それらをイタリック体で示す。用いたＰＣＲ条件は９４ ℃で１分、５８．７℃で１分及び７２℃で１分を２５サイクルであった。そのようにして得られた正しいＩＬ−４ｃＤＮＡ配列をシーケナーゼ^R（Ｓｅｑｕｅｎａｓｅ^R）（商標）シークエンシングキット（ＡｍｅｒｓｈａｍＬｉｆｅＳｃｉｅｎｃｅｓ、ＡｒｌｉｎｇｔｏｎＨｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）を製造業者により記述されたように用いてシークエンシングにより確認した。ＩＬ−４ｃＤＮＡを含有するＭ１３ｍｐ１９で大腸菌株ＣＪ２３６（Ｂｉｏ−ＲａｄＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）を形質転換することによりウラシルを含有する一本鎖ＤＮＡ（Ｕ−ＤＮＡ）を得た。部位特異的突然変異誘発は一般的に突然変異誘発の標的となるコドンの５’の鋳型Ｕ−ＤＮＡに相同な１５ヌクレオチド、所望する変異を含むヌクレオチド及び最後の改変ヌクレオチドの３’の鋳型Ｕ−ＤＮＡに相同なさらなる１０ヌクレオチドを含有するプライマーを利用した。Ｄ−ヘリックス突然変異、Ａｒｇ−１２１→Ａｓｐ及びＴｙｒ−１２４→Ａｓｐを野生型ＩＬ−４配列に導入した。ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］と命名したこの変異体のウラシルＤＮＡを上記のように作製した。これらの研究で作製される全ての突然変異はＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］鋳型を用いて作製された。製造業者のプロトコルを用いてＴ４ポリヌクレオチドキナーゼ（ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＢｉｏｌａｂｓ、Ｂｅｖｅｒｌｙ、ＭＡ）を用いてプライマーをリン酸化した。次に、リン酸化されたプライマーをＵ−ＤＮＡ鋳型にアニーリングさせ、続いてＴ７ＤＮＡポリメラーゼ（Ｂｉｏ−ＲａｄＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）を製造業者（Ｂｉｏ−ＲａｄＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）により記述されたように用いて伸長した。大腸菌株ＤＨ５α^TM（商標）（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）の細胞を５μｌの反応混合物で形質転換し、０．７％の寒天を含有する「ＬＢ培地」で平板培養した。３７℃でインキュベーション後、各突然変異誘発反応から生じる３個の別個のプラークを選び、２ｍｌの「ＬＢ培地」に移すことによりプラークを広げ、３７℃で一晩増殖させた。Ｍ１３精製キット（Ｑｉａｇｅｎ，Ｉｎｃ．、Ｃｈａｔｓｗｏｒｔｈ、ＣＡ）を製造業者のプロトコルに従って用いて一本鎖ＤＮＡを単離し、シーケナーゼ^Rシークエンシングキット（ＡｍｅｒｓｈａｍＬｉｆｅＳｃｉｅｎｃｅｓ、ＡｒｌｉｎｇｔｏｎＨｅｉｇｈｔｓ、ＩＬ）を製造業者のプロトコルに従って用いて一本鎖ＤＮＡをシークエンシングすることにより所望する突然変異を含有するクローンを同定した。ＩＬ−４の正しい突然変異配列を含有するプラークに対応する複製型ＤＮＡ（Ｍ１３ファージの二本鎖型）をＱｉａｇｅｎプラスミドミニプレップキット（ＰｌａＳｍｉｄＭｉｎｉｐｒｅｐＫｉｔ）（Ｑｉａｇｅｎ，Ｉｎｃ．、Ｃｈａｔｓｗｏｒｔｈ、ＣＡ）を用いて単離した。精製された複製型ＤＮＡからＢａｍＨＩ及びＸｂａＩを用いてＬ−４突然変異タンパク質ｃＤＮＡを単離し、プラスミドベクターｐＦａｓｔＢａｃ^TM１（商標）（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）にサブクローン化した。サブクローニング後に、突然変異タンパク質ｃＤＮＡを含有するｐＦａｓｔＢａｃ^TM１を大腸菌株ＤＨ１０Ｂａｃ^TM（商標）（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）に製造業者により記述されたように形質転換することにより組み換えバキュロウイルスＤＮＡ（以下、バクミド（Ｂａｃｍｉｄ）と称する）を作製した。突然変異タンパク質をＢａｃ−ｔｏ−Ｂａｃ％₀（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）バキュロウイルス発現系を用いてスポドプテラ・フルギペルダ（Ｓｆ）９細胞で発現させた。全ての昆虫細胞インキュベーションは２８℃であった。簡潔に言えば、ＣｅｌｌＦＥＣＴＩＮ^TM（商標）（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）を用いてＳｆ９細胞の２ｍｌ培養物を５μｌの組み換えバクミドでトランスフェクトした。トランスフェクション後６０時間で上清を集め、グレース（Ｇｒａｃｅ’ｓ）培地（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）中１ｘ１０⁶ Ｓｆ９細胞／ｍｌの１００−２００ｍｌ培養物に感染させるために用いた。製造業者のプロトコルに従って、ＧＳＡローター（ＤｕｐｏｎｔＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔＣｏ．、Ｗｉｌｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＤＥ）を用いてＳｏｒｖａｌｌ^R（商標）ＲＣ−５Ｂ遠心機で５０００ｒｐｍで１０分間の遠心分離により感染後４８−６０時間で上清を集め、ウイルス力価をアッセイした（典型的に、＞１ｘ１０⁸プラーク形成単位／ｍｌが得られた）。タンパク質生産のために、５００ｍｌのＳＦ９００ II培地（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）中２−３ｘ１０⁶ Ｓｆ９細胞／ｍｌに４−１０の間の感染多重度で感染させ、感染の６０−７２時間後にＧＳＡローター（ＤｕｐｏｎｔＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔＣｏ．、Ｗｉｌｌｍｉｎｇｔｏｎ、ＤＥ）を用いてＳｏｒｖａｌｌ^RＲＣ−５Ｂ遠心機で５０００ｒｐｍで１０分間の遠心分離により上清を集め、滅菌した０．２μＭフィルター装置を通して濾過した。実施例２．突然変異タンパク質の精製．組み換えヒトＩＬ−４（ＧｅｎｚｙｍｅＤｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ、ＭＡ）を免疫原として用いてマウスから標準プロトコルを用いて抗 −ヒトＩＬ−４モノクローナル抗体Ｃ４００．１及びＣ４００．１７を作製し、腹水液として製造し、精製し、ＣＮＢｒ活性化セファロース（Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ）（Ｐｈａｒｍａｃｉａ、Ｕｐｐｓａｌａ、Ｓｗｅｄｅｎ）に製造業者のプロトコルに従って結合させた。それぞれのＩＬ−４突然変異タンパク質を含有する組み換えバキュロウイルスによるＳｆ９細胞の感染から得られたＳｆ９細胞上清を抗ＩＬ−４ＭＡｂを結合させたセファロースの１ｍｌカラム上に添加し、１００ｍＭＮａＨＣＯ₃、５００ｍＭＮａＣｌ、ｐＨ８．３で洗浄し、塩を除くために水で洗浄し、８カラム容量の１００ｍＭグリシン、ｐＨ３．０で溶出した。０．１容量の１ＭＴｒｉｓ、ｐＨ８．０を含有するシリコン処理したバイアル中に画分を集めた。バッファーＡ→Ｂ（バッファーＡ、水；バッファーＢ、アセトニトリル、０．１％トリフルオロ酢酸）の０−１００％勾配でＤｙｎａｍａｘ^R （商標）−３００ÅＣ₁₈カラム（ＲａｉｎｉｎＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔＣｏ．、Ｗｏｂｕｒｎ、ＭＡ）を用いて逆相クロマトグラフィーにより突然変異タンパク質をさらに精製した。画分をＳＤＳ−ＰＡＧＥにより評価し、突然変異タンパク質を含有する画分を保存のために凍結乾燥し、アッセイのために滅菌したリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ；１０ｍＭＮａＰＯ₄、１３７ｍＭＮａＣｌ、ｐＨ７．６）に再懸濁した。そのようにして精製された突然変異タンパク質はＳＤＳ− ＰＡＧＥ（銀染色）で見た場合に典型的に単一のバンドであり、アミノ酸分析によりそれらを定量した（精度、典型的に＞９０％）。実施例３．受容体結合アッセイＩＬ−４Ｒα（Ｌｄｚｅｒｄａ、Ｒ．L．等、Ｈｕｍａｎｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ４ｒｅｃｅｐｔｏｒｃｏｎｆｅｒｓｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｎｅｓｓａｎｄｄｅｆｉｎｅｓａｎｏｖｅｌｒｅｃｅｐｔｏｒｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１７１：８６１− ８７３（１９９０））に結合するＩＬ−４突然変異タンパク質の能力への置換の影響を測定するために固相受容体結合アッセイを開発した。簡潔に言えば、突然変異タンパク質の親和性を固体表面に結合させたＩＬ−４Ｒαから放射性標識されたＩＬ −４を置き換えるそれらの能力により測定した。図２に固相結合アッセイにおいて¹²⁵Ｉ−ＩＬ−４と競合するＴ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２４Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］の能力をＩＬ−４［Ｒ１２４Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］のものに比較して示す。このアッセイはストレプトアビジンで被覆された９６ウェルフラッシュプレート^R（ＤｕＰｏｎｔＮＥＮ^R（商標）、Ｂｏｓｔｏｎ、ＭＡ）を用いて構成され、ＩＬ− ４Ｒαの細胞外ドメインに設計されたストレプトアビジンに結合するペプチドタグによりＩＬ−４Ｒαの細胞外ドメインをこれらのプレートに結合させた。フラッシュプレートはプレートのプラスチック中に染み込ませたシンチラント（ｓｃｉｎｔｉｌｌａｎｔ）を含み、それはプレートの表面にごく接近した放射性標識化合物のみがシンチレーションを起こさせる特性を有する。放射性標識されたＩＬ−４及びＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質を含有するサンプルを各ウェルに添加し、平衡が得られるまでインキュベートした。結合しない放射性標識化合物はシンチレーションシグナルを誘導しないので、各ウェルの結合した放射能の量を評価する前に洗浄工程を必要としない。従って、測定される放射能はＩＬ−４Ｒαに結合した放射性標識されたＩＬ−４の量を表し、添加された非標識ＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質の量を考慮すると、ＩＬ−４Ｒα に対する非標識ＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質の親和性を計算できる。各突然変異タンパク質と同時にＩＬ−４［Ｒ１２４Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］の親和性を測定することにより各アッセイにおける内部標準を作製した。従って、親和性の特定の相対的比率を得ることができ、それによりＩＬ−４Ｒに対する親和性への個々の置換の影響を評価することができた。Ｊｕｒｋａｔ細胞λｇｔ１１ライブラリー（ＳｔｒａｔａｇｅｎｅＣｌｏｎｉｎｇＳｙｓｔｅｍｓ、ＬａＪｏｌｌａ、ＣＡ）からＰＣＲを用いてＩＬ− ４Ｒαの細胞外ドメインを回収した。ＩＬ−４Ｒαの細胞外ドメインを単離するために用いたＰＣＲプライマーは、ＩＬ−４Ｒαの読み枠の５’末端にはそしてＩＬ−４Ｒαの細胞外ドメインの３’末端にはであった。用いたＰＣＲ条件は９４℃で１分、６５．８℃で１分及び７２℃で１分を３０サイクルであった。得られたＰＣＲ産物を制限酵素ＢａｍＨＩ及びＥｃｏ４７II Iで消化し、配列Ｓｅｒ−Ａｌａ−Ｔｒｐ−Ａｒｇ−Ｈｉｓ−Ｐｒｏ−Ｇｌｎ− Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ（配列番号６）に対応するコドンを有するＤＮＡを含有する同じ酵素で消化したｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ^R（商標）ベクター（ＳｔｒａｔａｇｅｎｅＣｌｏｎｉｎｇＳｙｓｔｅｍｓ、ＬａＪｏｌｌａ、ＣＡ）中にサブクローン化した。この配列はストレプトアビジンに結合すると報告されている（ＳｃｈｍｉｄｔＴＧ及びＳｋｅｒｒａ、Ａ．、Ｔｈｅｒａｎｄｏｍｐｅｐｔｉｄｅｌｉｂｒａｒｙ−ａｓｓｉｓｔｅｄｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇｏｆａＣ−ｔｅｒｍｉｎａｌａｆｆｉｎｉｔｙｐｅｐｔｉｄｅ，ｕｓｅｆｕｌｆｏｒｔｈｅｄｅｔｅｃｔｉｏｎａｎｄｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆａｆｕｎｃｔｉｏｎａｌＩｇＦｖｆｒａｇｍｅｎｔ、ＰｒｏｔｅｉｎＥｎｇ６（１）：１０９−１２２（１９９２））。そのようにして作製されたＩＬ−４Ｒα の細胞外ドメインは細胞外ドメインのＣ末端でペプチド配列Ｓｅｒ−Ａｌａ−Ｔｒｐ−Ａｒｇ−Ｈｉｓ−Ｐｒｏ−Ｇｌｎ−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｇｌｙ（配列番号６）をコードし、ｓＩＬ−４Ｒα−ＳＴＸ（位置１のＭｅｔは成熟ＩＬ−４ＲαのＮ末端である）と命名され、そして配列番号７である。ＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質に対して用いたものと同じようにｓＩＬ−４Ｒα−ＳＴＸタンパク質をバキュロウイルス系を用いて製造し、記述されたように（ＫｒｕｓｅＮ、等、「Ｔｗｏｄｉｓｔｉｎｃｔｆｕｃｔｉｏｎａｌｓｉｔｅｓｏｆｈｕｍａｎｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ４ａｒｅｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄｂｙｖａｒｉａｎｔｓｉｍｐａｉｒｅｄｉｎｅｉｔｈｅｒｒｅｃｅｐｔｏｒｂｉｎｄｉｎｇｏｒｒｅｃｅｐｔｏｒａｃｔｉｖａｔｉｏｎ．」ＥＭＢＯＪ．、１２（１３）ｐ５１２１−９（１９９３））ＩＬ−４を結合させたマトリックスで親和性クロマトグラフィーにより精製し、ＰＢＳ中で保存した。製造業者（Ｐｈａｒｍａｃｉａ、Ｕｐｐｓａｌａ、Ｓｗｅｄｅｎ）により記述されたようにＣＮＢｒセファロース４Ｂに大腸菌で生産されたＩＬ−４を結合させることによりＩＬ−４マトリックスを作製した。ストレプトアビジンで被覆されたフラッシュプレート^R（ＤｕＰｏｎｔＮＥＮ^R、Ｂｏｓｔｏｎ、ＭＡ）を１００ｍＭＴｒｉｓ、０．１％ＢＳＡ、ｐＨ７．０中２μｇ／ｍｌのｓＩＬ−４Ｒα−ＳＴＸ１００μｌで２０℃で２時間被覆し、ＰＢＳ、０．１％ＢＳＡ、ｐＨ７．６で洗浄し、１００μｌのＰＢＳ、０．１％ＢＳＡ、ｐＨ７．６中の２００ｐＭ¹²⁵Ｉ−ＩＬ−４（ＤｕＰｏｎｔＮＥＮ^R、Ｂｏｓｔｏｎ、ＭＡ）及び異なる濃度のＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質と共に４つ一組で２０℃で１．５時間インキュベートした。少なくとも２回アッセイを繰り返した。内部基準として、同じフラッシュプレート^R上で各突然変異タンパク質と同時にＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］を滴定した。結合した放射能をトップカウント’シンチレーションカウンター（ＰａｃｋａｒｄＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔＣｏ．、Ｍｅｒｉｄｅｎ、ＣＴ）で測定し、リガンド（Ｌｉｇａｎｄ）プログラム（Ｍｕｎｓｏｎ、Ｐ．Ｊ．及びＲｏｄｂａｒｄ、Ｄ. 、「ＣｏｍｐｕｔｅｒｉｚｅｄＡｎａｌｙｓｉｓｏｆＬｉｇａｎｄＢｉｎｄｉｎｇＤａｔａ．」Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．９２ｐ５４３−５７６（１９８３））を用いてＫ_d値を計算し、％ＣＶとして表されるＫ_d値の誤差は２−２０％の間であった。各アッセイプレート内から得られたデータを用いて結果をＫ_d突然変異タンパク質／Ｋ_dＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］の比として表した。測定されたＫ_d値間の差はＩＬ−４Ｒαに対するそれぞれの突然変異タンパク質の親和性の相対的な増加（すなわち、Ｋ_d突然変異タンパク質／Ｋ_d ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］＜１）またはＩＬ−４Ｒαに対するそれぞれの突然変異タンパク質の親和性の相対的な減少（すなわち、Ｋ_d突然変異タンパク質／Ｋ_dＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］＞１）のいずれかを表す。実施例４．１°Ｔ細胞増殖アッセイ．一次Ｔ細胞を正常な提供者からの新鮮血から得、本質的にＫｒｕｓｅ、Ｎ．、Ｔｏｎｙ、Ｈ．Ｐ．及びＳｅｂａｌｄ、Ｗ．Ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４ｉｎｔｏａｈｉｇｈａｆｆｉｎｉｔｙａｎｔａｇｏｎｉｓｔｂｙａｓｉｎｇｌｅａｍｉｎｏａｃｉｄｒｅｐｌａｃｅｍｅｎｔ、ＥｍｂｏＪ．１１：３２３７−４４（１９９２）により記述されたようにＦｉｃｏｌｌ−Ｐａｑｕｅ^R（商標）Ｐｌｕｓ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ、Ｕｐｓａｌｌａ、Ｓｗｅｄｅｎ）を用いて遠心分離により精製した。精製された末梢血単核細胞を１０μｇ／ｍｌのフィトヘマグルチニン（ＳｉｇｍａＣｈｅｍｉｃａｌＣｏ．、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）と共に７日間インキュベートし、遠心分離により集め、ＲＰＭＩ１６４０培地（ＧｉｂｃｏＢＲＬ、Ｇａｉｔｈｅｒｓｂｕｒｇ、ＭＤ）で洗浄した。５ｘ１０⁴活性化Ｔ細胞／ウェル（ＰＨＡ−ブラスト）を９６ウェルプレートで１０％ウシ胎仔血清、１０ｍＭＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．５、２ｍＭＬ−グルタミン、１００ユニット／ｍｌペニシリンＧ及び１００μｇ／ｍｌストレプトマイシン硫酸塩を含有するＲＰＭＩ１６４０培地中で異なる量のＩＬ− ４または突然変異タンパク質と共に３７℃で４８時間インキュベートし、１μＣｉ ³Ｈ−チミジン（ＤｕＰｏｎｔＮＥＮ^R、Ｂｏｓｔｏｎ、ＭＡ）／ウェルで６時間パルス標識し、集め、トップカウント’シンチレーションカウンター（ＰａｃｋａｒｄＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔＣｏ．、Ｍｅｒｉｄｅｎ、ＣＴ）で放射能を測定した。実施例５．ＩＬ−４Ｒαに対するＩＬ−４の親和性へのアラニン置換の影響ＩＬ−４のＡ−及びＣ−ヘリックスの表面露出残基のアラニン置換のＩＬ−４Ｒαに対するＩＬ−４の親和性への影響を表１に示す。＊全ての突然変異はＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］バックボーン上に置かれた。アラニン置換は一般的にタンパク質の折りたたみの構造変化を引き起こさないので、活性、この場合親和性に対する影響を置換された側鎖の喪失の結果とすることができる（Ｃｕｎｎｉｎｇｈａｍ、Ｂ．Ｃ．、Ｗｅｌｌｓ、Ｊ．Ａ．、Ｈｉｇｈ−ｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎｅｐｉｔｏｐｅｍａｐｐｉｎｇｏｆｈＧＨ−ｒｅｃｅｐｔｏｒｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓｂｙａｌａｎｉｎｅ−ｓｃａｎｎｉｎｇｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ、Ｓｃｉｅｎｃｅ２４４（４９０８）：１０８１−５（１９８９））。アラニン置換の結果として生じるほんのわずかの親和性の変化（例えば〜２倍）は置換された残基／位置が相互作用に関与しないことを示唆し、大きい影響（例えば、＞１００倍）は置換された残基／位置が相互作用のために重要であることを示唆する（ＬｏｗｍａｎＨＢ、等、「Ｓｅｌｅｃｔｉｎｇｈｉｇｈ−ａｆｆｉｎｉｔｙｂｉｎｄｉｎｇｐｒｏｔｅｉｎｓｂｙｍｏｎｏｖａｌｅｎｔｐｈａｇｅｄｉｓｐｌａｙ．」Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ３０（４５）ｐ１０８３２−８（１９９１））。Ｌｏｗｍａｎ等（同書中）はアラニン置換の結果として結合に中程度の影響を示す残基が、最も感受性の残基に加えて、研究している相互作用に関係することを見いだした。これらの結論をこのＩＬ−４のＡ−及びＣ−ヘリックスのアラニン走査の結果に当てはめると、ＩＬ−４ＲαとＩＬ−４の相互作用のために最も重要な残基はＧｌｕ−９及びＡｒｇ−８８であり、中程度の残基はＩｌｅ−５＞Ａｓｎ８９＞Ｌｙｓ−８４〜Ａｒｇ−８１＞Ｔｈｒ−１３〜Ｇｌｎ−７８〜Ａｒｇ−８５〜Ｌｙｓ−７７を含み、おそらく相互作用に関与しない残基はＧｌｎ−８、Ｉｌｅ− １１、Ｌｙｓ−１２、Ａｓｎ−１５、Ｈｉｓ−７４、Ｐｈｅ−８２及びＴｒｐ− ９１を含む。アラニンで置換された場合に観察される親和性の増加に基づいて、Ｓｅｒ−１６はＩＬ−４とＩＬ−４Ｒαの間に形成される境界面またはその内側にある。これらの結果はＩＬ−４Ｒαに対するＩＬ−４の予想される結合面を特定し、それはＩＬ−４の構造（ＳｍｉｔｈＬＪ、等、Ｈｕｍａｎｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ４．Ｔｈｅｓｏｌｕｔｉｏｎｓｔｒｕｃｔｕｒｅｏｆａｆｏｕｒ−ｈｅｌｉｘｂｕｎｄｌｅｐｒｏｔｅｉｎ、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２２４（４）：８９９−９０４（１９９２））に関連させるとＩＬ−４のＡ−及びＣ−ヘリックスの隣接した部分からなり、各ヘリックス上のほぼ３らせん回転の間、すなわち、Ａヘリックス上の位置５−１６及びＣヘリックス上の７７−８９に及ぶ。ＩＬ−４受容体αとの接触に関与する最も可能性のある残基はＡ−ヘリックス中のＩｌｅ−５、Ｇｌｕ−９、Ｔｈｒ−１３及びＳｅｒ−１６；Ｃ−ヘリックス中のＬｙｓ−７７、Ｇｌｎ−７８、Ａｒｇ−８１、Ｌｙｓ−８４、Ａｒｇ−８５、Ａｒｇ−８８及びＡｓｎ−８９である。構造上、相互作用の重要な中心は残基Ｇｌｕ−９、Ａｒｇ−８８及びＡｓｎ−８９からなると思われ、観察されるアラニンの影響は一般的に分子のこの部分から移動するにつれて減少する。このように、この分析はＩＬ−４Ｒαに対するＩＬ−４の結合面を示す。実施例６．選択位置での置換突然変異タンパク質以前の成長ホルモンの分析において、アラニンで置換された場合に親和性への中程度の影響を有する残基に対する置換が、成長ホルモンのその受容体に対する親和性を向上することが見いだされた（Ｌｏｗｍａｎ、ＨＢ、等、「Ｓｅｌｅｃｔｉｎｇｈｉｇｈ−ａｆｆｉｎｉｔｙｂｉｎｄｉｎｇｐｒｏｔｅｉｎｓｂｙｍｏｎｏｖａｌｅｎｔｐｈａｇｅｄｉｓｐｌａｙ．」Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ３０（４５）ｐ１０８３２−８（１９９１））。向上した親和性をもたらす一定残基の置換の性質は予測できないことが見いだされた。従って、ここに示される分析では、固有の構造的影響がない（すなわち、Ｃｙｓ、Ｇｌｙ、Ｐｒｏを除いて）かまたは容易な酸化的反応を受ける（すなわち、Ｍｅｔを除いて）全ての置換を標的位置に導入した。＊全ての突然変異はＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］バックボーン上に置かれた。従って、このさらなる置換分析からシステイン、グリシン、メチオニン及びプロリンを除いた。アラニン置換時に５ないし８０倍の間の親和性の減少またはあらゆる親和性の増加がある場合に残基をさらなる分析のために選択し、この範囲はＬｏｗｍａｎ等（同書中）により得られた結果に基づいて選択された。さらに、アラニン置換の結果生じた観察される親和性の増加のためにＳｅｒ−１６をさらなる分析のために選択し、これはこの位置での他の置換も親和性の向上を生じる可能性があることを示唆した。実施例７．ＩＬ−４Ｒαに対する向上した親和性を生じた置換Ａ−及びＣ−ヘリックス中の個々の位置での置換を含有する突然変異タンパク質をＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］バックボーンと組み合わせて作製し、各突然変異タンパク質をＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］と同時に比較するように競合的結合アッセイを実施した。これによりＩＬ−４Ｒαに対する特定の突然変異タンパク質の親和性への各置換の影響について直接比較することができ、従って、結論を下すことができた。向上した親和性をもたらした全ての置換を表IIIに示す。比率「Ｋ_d ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］／Ｋ_d突然変異タンパク質」は各置換の結果して観察される親和性の相対的な増加を示す。大部分の置換はＩＬ−４Ｒαに対する親和性に有害であるかまたは何の影響もなかった（データは示さない）。しかしながら、いくつかの置換は確かに親和性を向上し、その最も顕著なものはＴｈｒ−１３→Ａｓｐ置換であり、ＩＬ−４Ｒαに対して驚くべき１８倍の親和性の増加をもたらした（図２）。アミノ酸Ｓｅｒ−１６はこの分析で独特であり、大部分の置換は親和性の適度な増加をもたらした。これらの他の突然変異タンパク質に対してそれらの相対的親和性と相関する類似した競合的結合特性が得られた（データは示さない）。親和性の向上はＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］親タンパク質に相対的なものである。これらの置換を１つのタンパク質に組み合わせると親和性の組み合わせの増加を生じる可能性がある、例えば、［Ｔ１３Ｄ／Ｎ８９Ｉ］−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］はＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］より３６倍大きい親和性を有する突然変異タンパク質を生じる可能性があると予想される。残基Ｔｈｒ−１３及びＳｅｒ−１６は適切な置換が同定された場合に親和性の最も優れた向上を生じた。このことはアラニンで置換された場合に突然変異タンパク質Ｔ１３ＡまたはＳ１６Ａのいずれかと類似した影響（それぞれ、６．４倍の減少及び２．５倍の増加）を与える他の残基も、適切に置換された場合におそらくより高い親和性のＩＬ−４変異体を生じることを示唆する。アラニン置換された残基のこのシリーズでは、これはＩｌｅ−１１、Ｌｙｓ−７７、Ｇｌｎ−７８、Ｌｙｓ−８４及びＡｒｇ−８５を含む。詳細に研究されている成長ホルモンでは、親和性の増加をもたらす単一の置換は１．５ないし５倍の次数であった（ＬｏｗｍａｎＨＢ；ＷｅｌｌｓＪＡ、「Ａｆｆｉｎｉｔｙｍａｔｕｒａｔｉｏｎｏｆｈｕｍａｎｇｒｏｗｔｈｈｏｒｍｏｎｅｂｙｍｏｎｏｖａｌｅｎｔｐｈａｇｅｄｉｓｐｌａｙ．」Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２３４（３）ｐ５６４−７８（１９９３））。しかしながら、最近、活性（ヒトＩＬ −３（ＯｌｉｎｓＰＯ、等、Ｓａｔｕｒａｔｉｏｎｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓｏｆｈｕｍａｎｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−３、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０（４０）：２３７５４−６０（１９９５））または親和性（ヒト毛様体神経栄養因子（ＣＮＴＦ）（ＳａｇｇｉｏＩ．、等、ＣＮＴＦｖａｒｉａｎｔｓｗｉｔｈｉｎｃｒｅａｓｅｄｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｐｏｔｅｎｃｙａｎｄｒｅｃｅｐｔｏｒｓｅｌｅｃｔｉｖｉｔｙｄｅｆｉｎｅａｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｓｉｔｅｏｆｒｅｃｅｐｔｏｒｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ、ＥＭＢＯＪ．１４（１３）：３０４５−５４（１９９５））のいずれかの大きな向上をもたらしている置換が同定されている。ＩＬ−３では１つの突然変異がインビトロ生物学的活性を〜２６倍増加し、ＣＮＴＦでは単一の置換が親和性を〜３２倍増加した。文献中の他のサイトカインに対しては、大部分の置換は一般的に親和性／活性に何の影響も生じないかまたは喪失をもたらした。従って、親和性及び／または活性に対するあらゆる一定の置換の絶対的な影響は予測できない。実施例８．生物学的活性に対するＴ１３Ｄ置換の影響ＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］はＩＬ−４のアンタゴニストであり（ＴｏｎｙＨＰ、ＳｈｅｎＢＪ、ＲｅｕｓｃｈＰ及びＳｅｂａｌｄＷ、「Ｄｅｓｉｇｎｏｆｈｕｍａｎｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｓｉｎｈｉｂｉｔｉｎｇｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔａｎｄｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−１３−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔｒｅｓｐｏｎｓｅｓｉｎＴ−ｃｅｌｌｓａｎｄＢ− ｃｅｌｌｓｗｉｔｈｈｉｇｈｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ．」Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．２２５（２）ｐ６５９−６５（１９９４））、ＩＬ−４活性を刺激する能力がないためにこの研究における「基準」ペプチドとして用いた。このアンタゴニスト突然変異タンパク質はＩＬ−４Ｒαに結合するがシグナリングに十分なようにγ_cを引きつけないその能力によりアンタゴニストであると考えられ、従って、ＩＬ−４がその同種の受容体複合体に結合することを阻止する。従って、ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］の生物学的作用（ＩＬ−４拮抗作用）は親和性により測定されるそのＩＬ−４Ｒαとの相互作用に単離される。受容体親和性が生物学的効能と相関することを証明するために、突然変異タンパク質Ｔ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］をＩＬ−４により誘導されるＰＨＡ−ブラストの増殖を阻止するその能力に関して評価した（図３）。ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］に比較して観察されるＩＣ₅₀（５０％の阻害が見られる濃度）が受容体親和性の観察される相対的変化にほぼ比例することが見いだされた。要約すると、ＩＬ−４Ｒαにより高い親和性で結合するが、Ｔ１３Ｄ−ＩＬ− ４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］はＩＬ−４アンタゴニストのままである。ＩＬ− ４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］に対するＴ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］のＩＣ₅₀は、これら２種のタンパク質に対して得られる（固相結合アッセイにおいて測定されるような）相対的Ｋ_d値にほぼ比例し、Ｔ１３Ｄ−ＩＬ− ４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］のＫ_dはＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］のＫ_dより〜１８倍低く（それぞれ、０．２８ｎＭ対５．０ｎＭ）、Ｔ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］のＩＣ₅₀はＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］のＩＣ₅₀より〜５−１０倍低い（それぞれ、２ｎＭ対１３ｎＭ）。相対的影響の特定のほんのわずかな差は各アッセィの特定の条件、すなわち、増殖アッセイでは３７℃で４８時間のインキュベーションに対して固相結合アッセイでは２０℃ での１．５時間のインキュベーションの結果である可能性がある。この研究で評価される他の突然変異タンパク質の生物学的アッセイにおいてＩＬ−４と競合する能力も、ＩＬ−４［Ｒ１２ＩＤ／Ｙ１２４Ｄ］に対するそれらの相対的Ｋ_dに比例した（データは示さない）。これらの結果からＩＬ−４Ｒαへの結合がＩＬ −４受容体の活性化から分離できる事象であり、この活性化がＩＬ−４Ｒαと少なくとも１個の他のサブユニット（例えば、γ_c）のヘテロダィマー化を必要とすることが示される。従って、Ａ−及びＣ−ヘリックスにおけるＩＬ−４への改変はＩＬ−４Ｒαに対するＩＬ−４の親和性を変え、生物学的関係においてＩＬ −４に拮抗する該突然変異タンパク質の能力に応じてそのようにする。また、この親和性への影響は、ＩＬ−４のその受容体との相互作用の機構により、ＩＬ− ４由来のアゴニストペプチドの効能を増加することにもなるはずである。この発明の理論を他のサイトカインにも適応することができる。ＩＬ−１３受容体複合体もＩＬ−４Ｒαを利用することから（ＺｕｒａｗｓｋｉＳ．Ｍ．、等、Ｔｈｅｐｒｉｍａｒｙｂｉｎｄｉｎｇｓｕｂｕｎｉｔｏｆｔｈｅｈｕｍａｎｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−４ｒｅｃｅｐｔｏｒｉｓａｌｓｏａｃｏｍｐｏｎｅｎｔｏｆｔｈｅｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−１３ｒｅｃｅｐｔｏｒ、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０：１３８６９−７８（１９９５））、最も明らかな標的はＩＬ−１３である。それ故、ＩＬ−１３のＡ−及びＣ−ヘリックスをＩＬ−４のものにより厳密に類似するように突然変異させることは、ＩＬ−４Ｒαに対する結合親和性の増加をもたらすはずである。２種のインターロイキンを並べることにより標的突然変異部位、例えばＩＬ− ４上のＴｈｒ１３に類似した位置を同定できる。２種のインターロイキンの結合面を以下の表IVに比較する。＊Ｂａｍｂｏｒｏｕｇｈ、Ｐ．、Ｄｕｎｃａｎ、Ｄ．及びＲｉｃｈａｒｄｓ、Ｗ．Ｇ．、「ＰｒｅｄｉｃｔｉｖｅＭｏｄｅｌｌｉｎｇｏｆｔｈｅ３−ＤＳｔｒｕｃｔｕｒｅｏｆＩｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ−１３」、ＰｒｏｔｅｉｎＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ、７、ｐｐ１００７−８２（１９９４）からの整列アラニン走査から同定されたＩＬ−４Ｒαとの相互作用を媒介するＩＬ−４の最も重要な残基、Ｇｌｕ−９及びＡｒｇ−８８をこの配列の整列に基づくＩＬ− １３中の対応する残基と同様にボールド体で示す。先に記述したように、ＩＬ− １３はその受容体複合体でＩＬ−４Ｒα鎖を利用する（ＺｕｒａｗｓｋｉＳ．Ｍ．、等、上記）。従って、ＩＬ−１３のＡ −及びｃ−ヘリックスをＩＬ−４のものにより厳密に類似するように変えることは、ＩＬ−４Ｒαに対する結合親和性の増加をもたらすはずである。さらに、ＩＬ−４Ｒαに対するＩＬ−４の親和性を増加することが見いだされた残基で位置的に同等なＩＬ−１３残基を置換（ＩＬ−４及びＩＬ−１３に対して二重下線で示される位置）することもＩＬ−１３のその受容体に対する増加した親和性、従って向上した効能をもたらすはずである。配列．以下の生物学的配列は本明細書に含まれる。配列番号１：アミノ酸配列、成熟ヒトＩＬ−４；配列番号２：ヌクレオチド配列、ＰＣＲプライマー；配列番号３：ヌクレオチド配列、ＰＣＲプライマー；配列番号４：ヌクレオチド配列、ＰＣＲプライマー；配列番号５：ヌクレオチド配列、ＰＣＲプライマー；配列番号６：ストレプトアビジンに対するペプチドタグのアミノ酸配列；配列番号７：ｓＩＬ−４Ｒα−ＳＴＸのアミノ酸配列；配列番号８：Ｔ１３Ｄ−ＩＬ−４のアミノ酸、ヌクレオチド配列；及び配列番号９：Ｔ１３Ｄ−ＩＬ−４［Ｒ１２１Ｄ／Ｙ１２４Ｄ］のアミノ酸、ヌクレオチド配列本発明の他の態様は当業者にとって明らかになる。本明細書に記述される概念及び実験方法は異種起源のマルチマー受容体系を利用する他のサイトカイン、特にＩＬ−２及び関連サイトカイン（例えば、ＩＬ−７、ＩＬ−９、ＩＬ−１０、ＩＬ−１３及びＩＬ−１５）、インターフェロンα及びインターフェロンγに適応できるはずである。

【手続補正書】特許法第１８４条の８第１項【提出日】平成１０年８月２４日（１９９８．８．２４）【補正内容】請求の範囲１．突然変異タンパク質が野生型ＩＬ−４のＡ−またはＣ−αヘリックスのいずれかの結合面中に少なくとも１個のアミノ酸置換を含んでなり、該置換がアラニン置換時に約２倍ないし約１００倍の間の親和性の変化を有し、それにより該突然変異タンパク質が天然のＩＬ−４より少なくとも大きい親和性でＩＬ−４Ｒα受容体に結合する、野生型ＩＬ−４に従って番号をつけられた組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。２．該置換がＡ−ヘリックス中の位置５、１１、１３及び１６並びにＣ−ヘリックス中の位置７７、７８、８１、８４、８５（Ｒ８５Ｑを除いて）及び８９からなる位置の群から選択される請求の範囲１の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。３．位置１３での該置換がＴｈｒ→Ａｓｐである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。４．請求の範囲１の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質を製薬学的に許容しうる担体と組み合わせて含んでなる製薬学的組成物。５．配列番号８のアミノ酸配列によりコードされる請求の範囲１の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。６．請求の範囲１の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質をコードする精製及び単離されたポリヌクレオチド配列。７．請求の範囲６の精製及び単離されたポリヌクレオチド配列で形質転換された宿主細胞。８．配列番号９のＤＮＡ配列または安定にハイブリダイズできるその変異体によりコードされる請求の範囲３の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。９．請求の範囲８の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質を発現することができる形質転換された宿主細胞。１０．請求の範囲４の組成物の製薬学的に有効な量を投与することを含んでなるそれを必要とするヒトの処置方法。１１．（ａ）ストレプトアビジンで被覆されたフラッシュプレート^R中に受容体鎖の結合部分を入れ、ストレプトアビジンが結合することができるペプチドタグを該受容体鎖の結合部分が保有し、（ｂ）該フラッシュプレート中に該受容体鎖の結合部分に対する親和性を有する放射性標識された天然のリガンドを入れ、（ｃ）該フラッシュプレート中に該受容体鎖の結合部分に対する親和性を有する突然変異タンパク質リガンドを入れ、（ｄ）平衡にさせた後、フラッシュプレートから発せられるシグナルの量を測定し、そして（ｅ）天然のリガンドに対する突然変異タンパク質リガンドの相対的な親和性を計算する工程を含んでなる、突然変異タンパク質の受容体に結合する能力を測定するためのアッセイ。１２．該受容体鎖がＩＬ−４Ｒαである請求の範囲１１の方法。１３．該ペプチドタグが配列番号６またはその縮重変異体を含んでなる請求の範囲１１の方法。１４．該ペプチドタグが受容体鎖から除かれ、そして受容体鎖がビオチン化されている請求の範囲１１の方法。１５．該受容体鎖の結合部分が配列番号７またはその縮重変異体によりコードされる請求の範囲１１の方法。１６．突然変異タンパク質が（ａ）野生型ＩＬ−４のＤ−ヘリックス中の置換Ｒ１２１Ｄ及びＹ１２４Ｄ；並びに（ｂ）野生型ＩＬ−４のＡ−またはＣ−αヘリックスのいずれかの結合面中に少なくとも１個のアミノ酸置換を含んでなり、該置換がアラニン置換時に約２倍ないし約１００倍の間の親和性の変化を有し、それにより該突然変異タンパク質が天然のＩＬ−４より少なくとも大きい親和性でＩＬ−４Ｒα受容体に結合する、野生型ＩＬ−４に従って番号をつけられた組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質。１７．該置換がＡ−ヘリックス中の位置５、１１、１３及び１６並びにＣ− ヘリックス中の位置７７、７８、８１、８４、８５（Ｒ８５Ｑを除いて）及び８９からなる位置の群から選択される請求の範囲１６の組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質。１８．位置１３での該置換がＴｈｒ→Ａｓｐである請求の範囲１７の組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質。１９．請求の範囲１６の組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質を製薬学的に許容しうる担体と組み合わせて含んでなる製薬学的組成物。２０．配列番号９のアミノ酸配列によりコードされる請求の範囲１６の組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質。２１．請求の範囲１６の組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質をコードする精製及び単離されたポリヌクレオチド配列。２２．請求の範囲２１の精製及び単離されたポリヌクレオチド配列で形質転換された宿主細胞。２３．配列番号９のＤＮＡ配列または安定にハイブリダイズできるその変異体によりコードされる請求の範囲１８の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。２４．請求の範囲２３の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質を発現することができる形質転換された宿主細胞。２５．請求の範囲１９の組成物の製薬学的に有効な量を投与することを含んでなるそれを必要とするヒトの処置方法。２６．位置１６での該置換がセリン→アラニンである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。２７．位置１６での該置換がセリン→アスパラギン酸である請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。２８．位置１６での該置換がセリン→ヒスチジンである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。２９．位置１６での該置換がセリン→イソロイシンである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。３０．位置１６での該置換がセリン→ロイシンである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。３１．位置１６での該置換がセリン→グルタミンである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。３２．位置１６での該置換がセリン→アルギニンである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。３３．位置１６での該置換がセリン→トレオニンである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。３４．位置１６での該置換がセリン→バリンである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。３５．位置１６での該置換がセリン→チロシンである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。３６．位置８１での該置換がアルギニン→リシンである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。３７．位置８９での該置換がアスパラギン→イソロイシンである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ｃ１２Ｎ 1/15 Ｃ１２Ｎ 1/19 1/19 1/21 1/21 Ｇ０１Ｎ 33/53 Ｄ 5/10 33/566 Ｇ０１Ｎ 33/53 Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ 33/566 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ａ // Ｃ１２Ｐ 21/02 Ａ６１Ｋ 37/00 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ

Claims

【特許請求の範囲】１．突然変異タンパク質が野生型ＩＬ−４のＡ−またはＣ−αヘリックスのいずれかの結合面中に少なくとも１個のアミノ酸置換を含んでなり、それにより該突然変異タンパク質が天然のＩＬ−４より少なくとも大きい親和性でＩＬ−４Ｒα受容体に結合する、野生型ＩＬ−４に従って番号をつけられた組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。２．該置換がＡ−ヘリックス中の位置１３及び１６並びにＣ−ヘリックス中の位置８１及び８９からなる位置の群から選択される請求の範囲１の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。３．位置１３での該置換がＴｈｒ→Ａｓｐである請求の範囲２の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。４．請求の範囲１の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質を製薬学的に許容しうる担体と組み合わせて含んでなる製薬学的組成物。５．請求の範囲１の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質をコードするアミノ酸配列。６．配列番号８のアミノ酸配列によりコードされる請求の範囲１の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。７．請求の範囲１の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質をコードする精製及び単離されたポリヌクレオチド配列。８．請求の範囲７の精製及び単離されたポリヌクレオチド配列で形質転換された宿主細胞。９．配列番号９のＤＮＡ配列または安定にハイブリダイズできるその変異体によりコードされる請求の範囲３の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。１０．請求の範囲９の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質を発現することができる形質転換された宿主細胞。１１．請求の範囲４の組成物の製薬学的に有効な量を投与することを含んでなるそれを必要とするヒトの処置方法。１２．（ａ）ストレプトアビジンで被覆されたフラッシュプレート^R中に受容体鎖の結合部分を入れ、ストレプトアビジンが結合することができるペプチドタグを該受容体鎖の結合部分が保有し、（ｂ）該フラッシュプレート中に該受容体鎖の結合部分に対する親和性を有する放射性標識された天然のリガンドを入れ、（ｃ）該フラッシュプレート中に該受容体鎖の結合部分に対する親和性を有する突然変異タンパク質リガンドを入れ、（ｄ）平衡にさせた後、フラッシュプレートから発せられるシグナルの量を測定し、そして（ｅ）天然のリガンドに対する突然変異タンパク質リガンドの相対的な親和性を計算する工程を含んでなる、突然変異タンパク質の受容体に結合する能力を測定するためのアッセイ。１３．該受容体鎖がＩＬ−４Ｒαである請求の範囲１２の方法。１４．該ペプチドタグが配列番号６またはその縮重変異体を含んでなる請求の範囲１２の方法。１５．該ペプチドタグが受容体鎖から除かれ、そして受容体鎖がビオチン化されている請求の範囲１２の方法。１６．該受容体鎖の結合部分が配列番号７またはその縮重変異体によりコードされる請求の範囲１２の方法。１７．突然変異タンパク質が（ａ）野生型ＩＬ−４のＤ−ヘリックス中の置換Ｒ１２１Ｄ及びＹ１２４Ｄ；並びに（ｂ）野生型ＩＬ−４のＡ−またはＣ−αヘリックスのいずれかの結合面中に少なくとも１個のアミノ酸置換を含んでなり、それにより該突然変異タンパク質が天然のＩＬ−４より少なくとも大きい親和性でＩＬ−４Ｒα受容体に結合する、野生型ＩＬ−４に従って番号がつけられた組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質。１８．該置換がＡ−ヘリックス中の位置１３及び１６並ひにＣ−ヘリックス中の位置８１及び８９からなる位置の群から選択される請求の範囲１７の組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質。１９．位置１３での該置換がＴｈｒ→Ａｓｐである請求の範囲１８の組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質。２０．請求の範囲１７の組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質を製薬学的に許容しうる担体と組み合わせて含んでなる製薬学的組成物。２１．請求の範囲１７の組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質をコードするアミノ酸配列。２２．配列番号９のアミノ酸配列によりコードされる請求の範囲１７の組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質。２３．請求の範囲１７の組み換えヒトＩＬ−４アンタゴニスト突然変異タンパク質をコードする精製及び単離されたポリヌクレオチド配列。２４．請求の範囲２３の精製及び単離されたポリヌクレオチド配列で形質転換された宿主細胞。２５．配列番号９のＤＮＡ配列または安定にハイブリダイズできるその変異体によりコードされる請求の範囲１９の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質。２６．請求の範囲２５の組み換えヒトＩＬ−４突然変異タンパク質を発現することができる形質転換された宿主細胞。２７．請求の範囲２０の組成物の製薬学的に有効な量を投与することを含んでなるそれを必要とするヒトの処置方法。