ES2290195T3 - Uso de hidratos de carbono para eliminar infecciones intestinales en animales. - Google Patents
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Abstract
Uso de al menos un hidrato de carbono no degradable por los enzimas del tracto digestivo, escogido del grupo formado por 1-O-a-D-glucopiranosil-D-sorbita, 6-O-a-D-glucopiranosil-D-sorbita, ácido lactobiónico y ácido maltobiónico y una mezcla de ellos, como principio activo para preparar un fármaco destinado al tratamiento de las infecciones intestinales causadas por un microorganismo del género Salmonella, E. coli o Shigella en un animal.
Description
Uso de hidratos de carbono para eliminar
infecciones intestinales en animales.
La presente invención se refiere al uso de
hidratos de carbono, en concreto de
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita,
6-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita,
ácido lactobiónico, ácido maltobiónico y una mezcla de ellos, para
tratar infecciones intestinales bacterianas en animales
monogástricos, así como productos para forrajes o piensos dietéticos
que llevan uno de estos hidratos de carbono como aditivo.
Las inflamaciones intestinales infecciosas en
los animales pueden estar causadas por bacterias, virus, hongos o
parásitos. El síntoma principal de estas inflamaciones intestinales
es la diarrea. Pueden ir acompañadas de alteraciones de la mucosa,
aunque no forzosamente. El cuadro clínico de las inflamaciones
intestinales infecciosas es muy variable. Los mismos agentes
patógenos causantes de la infección pueden provocar fenómenos
severos como diarreas, fiebre y trastornos de nutrición, o también
procesos asintomáticos. Asimismo es importante localizar la
infección. En caso de afecciones del tracto intestinal superior cabe
esperar trastornos nutricionales, meteorismos o evacuaciones
masivas de heces sólidas, mientras que la infección del tracto
inferior provoca muchas evacuaciones líquidas. Además pueden
aparecer signos inespecíficos como dolores viscerales, náuseas,
vómitos y fiebre.
Los agentes más comunes de las infecciones
intestinales son las bacterias. La condición para su patogenicidad
es la capacidad de fijarse a la superficie intestinal. Solo son
peligrosas, por ejemplo, las colibacterias capaces de tal
adherencia. Algunas bacterias, como los vibriones coléricos, las
colibacterias endotóxicas, los estafilicocos, Shigellas y
Klebsiellas generan toxinas bacterianas que activan la adenilciclasa
intracelular y por lo tanto una mayor secreción de líquido y
electrolitos. Las toxinas bacterianas de este tipo también pueden
causar una destrucción directa de enterocitos. Algunas bacterias,
como las colibacterias, Shigellas, salmonellas, Campylobacter
jejuni y Yersinia enterocolitica pueden penetrar a través
de la superficie epitelial, destruyendo la mucosa, lo cual se hace
evidente por la presencia de sangre y eventualmente de pus en las
heces.
Las infecciones intestinales debidas a bacterias
son causadas principalmente por Salmonellas. Basándose en
propiedades antígenas se han podido distinguir unos 1400 subtipos de
Salmonella. Proceden de la orina y heces de animales enfermos o de
los llamados portadores crónicos asintomáticos, pues el contagio
tiene lugar frecuentemente por ingestión de alimentos contaminados
o de agua potable contaminada. En el hombre, por ejemplo, la
infección por Salmonellas se desarrolla de cinco formas diferentes,
que pueden ser muy variables en cada caso. En el 75% de los casos
se trata de gastroenteritis aguda. En el 10% de los casos se trata
de bacteremia, acompañada o no de fenómenos intestinales.
Aproximadamente un 8% de los infectados por Salmonellas contraen
tifus o fiebre tifoidea. Cerca del 5% de las infecciones son de tipo
local, por ejemplo de los huesos y articulaciones. Menos del 1% de
los casos corresponde a un estado de portador asintomático, en el
cual se encuentran los agentes patógenos durante más de un año,
mayormente en la vesícula biliar.
Las infecciones intestinales con gérmenes
patógenos como las Salmonellas o las Shigellas constituyen un
problema grave, sobre todo para el engorde de los cerdos y la
avicultura. El peligro para la salud animal y también para la salud
humana no proviene en concreto de los animales verdaderamente
enfermos, sino de los llamados portadores crónicos de Salmonellas.
Cada año hay muchos casos de personas infectadas por Salmonellas, a
causa de productos cárnicos, u otros productos de origen animal,
infectados.
El tratamiento de las enfermedades intestinales
infecciosas puede ir dirigido contra los efectos de la infección -
como por ejemplo la deshidratación y el desequilibrio electrolítico
- o contra los verdaderos agentes patógenos. Un tratamiento de las
infecciones intestinales bacterianas dirigido contra los agentes
patógenos puede incluir, por ejemplo, la administración de
antibióticos. Para infecciones intestinales bacterianas se
recomiendan antibióticos como la ampilicina, el cotrimoxazol y los
inhibidores de la girasa, pero solo en casos graves, con fiebre,
etc., ya que este tipo de tratamiento con antibióticos puede
provocar una resistencia adversa. La excepción la constituyen sobre
todo las shigellosis graves, que pueden tratarse con penicilina.
Aparte de la problemática de los restos de antibióticos en los
productos cárnicos, el tratamiento antibiótico tampoco es deseable
para los cerdos, sobre todo porque los gérmenes a combatir
desarrollan resistencias a los antibióticos. Se ha reportado el
caso de un niño que enfermó por Salmonellas resistentes a los
antibióticos, tras el contacto con animales estabulados (Food
Chemical News,
(Mayo, 2000), 21-22).
(Mayo, 2000), 21-22).
Es sabido que en una fase temprana de la
gastroenteritis la microflora comensal normal se reviste de
bacterias patógenas productoras de ureasa (Salminen y otros,
Chemotherapy, 41 (Suppl.) (1995), 5-15). Por tanto,
una estrategia para el tratamiento de las enfermedades intestinales
infecciosas tiene por objeto normalizar la microflora
gastrointestinal, sobre todo durante la fase de diarrea aguda,
administrando preparados bacterianos que lleven gérmenes no
patógenos. Por ejemplo, la patente WO 99/26642 describe el empleo de
la cepa DSM 6601 de Escherichia coli para tratar diarreas de
tipo microbiano en el sector veterinario.
También es conocido el uso de lactulosa para
tratar las infecciones intestinales bacterianas del hombre
(Ballongue y otros, Scand. J. Gastroenterol. Suppl., 222 (1997),
41-44). La lactulosa no se digiere y produce un
medio ácido en el intestino grueso, favoreciendo el crecimiento de
especies de Lactobacillus y acelerando así, probablemente, la
eliminación de Salmonellas. Por tanto también se ha propuesto el uso
de lactulosa para el tratamiento de los cerdos infectados por
Salmonellas (Ley y otros, Top Agrar, 10 (1999),
20-21). Sin embargo, en el tratamiento con
lactulosa se producen grandes flatulencias y diarrea como efectos
secundarios, de modo que los pacientes tienden a rehusar la toma de
lactulosa. Además la lactulosa es demasiado cara como ingrediente
para piensos.
También es conocido el uso de
D-manosa en el agua potable para los pollos (Oyofo y
otros, Poultry Science, 68 (1989), 1357-1360). Los
pollos así tratados demostraron mucha menor propensión a infectarse
con Salmonellas (21-43%), en comparación con los
pollos que no habían recibido D-manosa en absoluto,
de los cuales entre un 78% y un 93% presentaron una infección por
Salmonellas. Como no hay D-manosa disponible para
usarla de modo general en piensos y además es muy cara, se propuso
el uso de paredes celulares de levaduras lisadas y secadas, que
contienen manosa, como aditivo para los piensos de pollos y cerdos
(Bae y otros, Han'guk Chuksan Hakhoechi, 41(1) (1999),
23-30). Mediante un tratamiento de 7 días con
paredes celulares de levaduras, la densidad de población de
Salmonella typhimurium en el ciego de los pollos tan solo se
redujo de 10^{5} CFU/ml a 10^{4} CFU/ml. Por tanto este
resultado no es satisfactorio. Además, estas sustancias que
contienen manosa tienen la desventaja de estar impurificadas con
otros componentes de la pared celular.
Las patentes WO 99/55342 y US 6,139,864
describen el uso de
6-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita
y
1-O-\alpha-D-gluco-piranosil-D-manita
como principios activos antimicrobianos.
Por lo tanto el problema técnico del que parte
la presente invención es el de proporcionar unos productos para el
tratamiento de los animales con infecciones intestinales causadas
por un microorganismo del género Salmonella, E. Coli o
Shigella, que permitan la curación de dichas infecciones en
mayor medida que los productos empleados hasta la fecha, sin que
aparezcan los efectos secundarios descritos en el estado técnico, y
que sean mucho más económicos de elaborar que los productos
convencionalmente utilizados.
La presente invención resuelve ese problema
técnico usando al menos un hidrato de carbono, no degradable por
los enzimas del tracto digestivo, escogido del grupo formado por
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita,
6-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita,
ácido lactobiónico y ácido maltobiónico y una mezcla de ellos, como
principio activo para tratar las infecciones intestinales de un
animal causadas por un microorganismo del género Salmonella, E.
Coli o Shigella. Según la presente invención está
previsto que estos hidratos de carbono se usen de manera especial y
preferente para el tratamiento de infecciones intestinales causadas
por un microorganismo del género Salmonella o
Shigella. Los compuestos empleados según la presente
invención no son disociados por los enzimas del intestino delgado y
por lo tanto llegan inalterados al ciego y al intestino grueso. Por
consiguiente pueden desplegar su acción inhibidora o supresora de la
infección en el tracto gastrointestinal mediante uno o varios de
los siguientes mecanismos. Algunos de los compuestos empleados
según la presente invención pueden ser fermentados por bacterias
anaeróbicas de la flora intestinal, dando ácidos grasos de cadena
corta (SCFA), preferentemente ácido butírico. Otros compuestos
utilizados según la presente invención pueden ser fermentados por
bacterias de la flora intestinal, pero también hasta ácido láctico
y/o ácido acético, rebajando así el valor pH en el intestino grueso.
Con la disminución del valor pH se puede favorecer el crecimiento
de especies de bacterias no patógenas, mientras que al mismo tiempo
se inhibe el de los gérmenes patógenos. Pero algunos de los
hidratos de carbono no degradables por los enzimas del tracto
digestivo también pueden actuar impidiendo la fijación de gérmenes
patógenos a las células del epitelio intestinal o bloqueando las
fimbrias de los gérmenes patógenos y por tanto su adhesión a las
células epiteliales. Estos mecanismos de actuación permiten una
terapia tópica y selectiva de las infecciones intestinales causadas
por micro-organismos del género Salmonella, E.
coli o Shigella en las personas y en los animales.
Según la presente invención está prevista la
posibilidad de usar no solamente un único principio activo, sino
una combinación de principios activos, para el tratamiento de las
infecciones intestinales provocadas por microorganismos del género
Salmonella, E. Coli o Shigella. Es especialmente
conveniente que dichos principios activos se puedan administrar a
un animal enfermo como preparado farmacéutico o aditivo al pienso o
al agua potable, según la forma en que se desarrolle la infección
intestinal. En los casos graves de desarrollo agudo de la infección
intestinal la presente invención prevé especialmente la
administración de los principios activos, solos o en combinación, a
concentración relativamente alta y en forma de composición
farmacéutica. Para los casos menos graves o para la profilaxis, los
principios activos empleados según la presente invención se incluyen
como aditivo en el pienso o en el agua potable, de modo que puedan
llegar al intestino mediante la alimentación. Otra ventaja concreta
es que los principios activos conforme a la presente invención
pueden prepararse en grandes cantidades de manera fácil y económica
mediante procedimientos conocidos.
Teniendo en cuenta que los principios activos de
la presente invención no se degradan en el estómago ni en el
intestino delgado, sino solo en el intestino grueso, su
biodisponibilidad en el punto de acción farmacológica es
extraordinariamente elevada. Contrariamente al caso de los
principios activos corrientes - como los antibióticos - los
factores de tipo farmacéutico y fisiológico que pueden afectar en
gran medida a la biodisponibilidad del principio activo de un
fármaco convencional no tienen ninguna influencia. Por tanto la
eliminación presistémica (efecto de primer paso), es decir la
degradación metabólica de principios activos antes de llegar a su
punto de acción, que de otro modo puede limitar considerablemente
la biodisponibilidad de los principios activos, no juega aquí ningún
papel digno de mención.
El organismo a tratar es preferentemente un
animal monogástrico. En el marco de la presente invención el
término "animales monogástricos" se refiere a animales
vertebrados, sobre todo aves y mamíferos, cuyo estómago consta
principalmente de una molleja o estómago muscular. En las aves
básicamente monogástricas la molleja puede tener una parte llamada
estómago glandular. En los mamíferos monogástricos, concretamente
los de tipo carnívoro y omnívoro, el estómago comprende tres partes
principales: el cardias cerca de la desembocadura del esófago; el
fondo, es decir la parte principal del estómago, con glándulas
tubulares, y el píloro cerca de la salida del estómago, con
glándulas mucosas ramificadas. El término "animales
monogástricos" excluye por ello los rumiantes, cuyo estómago
incluye cuatro partes sucesivas anatómicamente diferentes: la panza,
donde tiene lugar la disgregación química del alimento - sobre todo
la digestión de la celulosa - por medio de microorganismos
simbióticos; la redecilla o bonete, el libro y el cuajar. Al
contrario que los animales monogástricos, en los rumiantes primero
el alimento es regurgitado desde el bonete hacia la cavidad bucal.
Una vez remasticado, el alimento pasa a través del canal reticular
hacia el libro, desde el cual los líquidos y el quimo espesado son
transportados hacia el cuajar.
En caso de los animales monogástricos se trata
concretamente de animales útiles, no rumiantes, que son criados por
el hombre en establecimientos agropecuarios por motivos de
rendimiento laboral, de consumo alimentario o para obtener materias
primas. Preferentemente se trata de animales útiles afectados de
enfermedades intestinales infecciosas originadas por
Salmonellas, E. coli o Shigellas o portadores crónicos
de estos gérmenes infecciosos, que luego pueden causar infecciones
en otros organismos - por ejemplo en el hombre - a través de la
cadena alimenticia. Estos animales útiles son preferentemente
cerdos, gansos, pollos, patos y pavos.
En el marco de la presente invención los
términos "infecciones intestinales" o "inflamaciones
intestinales infecciosas" se refieren a las enfermedades del
intestino originadas a consecuencia de una colonización con un
microorganismo del género Salmonella, E. coli o
Shigella. El término comprende especialmente las infecciones
intestinales de tipo bacteriano, como las diversas formas evolutivas
de la salmonelosis, sobre todo gastroenteritis, bacteremia,
infecciones locales por Salmonellas y/o shigelosis en estado de
portador asintomático, colitis hemorrágica causada por E.
coli 0157. El término también abarca todas las enfermedades
extraintestinales concomitantes con las inflamaciones infecciosas
del intestino, por ejemplo las infecciones de órganos que se
producen frecuentemente por bacteremia con Samonellas, como la
neumonía, la artritis, la colecistitis y similares.
En el marco de la presente invención se entiende
como "principio activo" cualquier sustancia, concretamente de
naturaleza química, capaz de influenciar o reconocer células
biológicas o partes de ellas, sobre todo organelas o componentes
celulares. En el marco de la presente invención, el término
"principios activos" se refiere especialmente a productos
terapéuticos, es decir sustancias que pueden emplearse para la
profilaxis o el tratamiento de enfermedades, con el fin de evitar,
aliviar y/o eliminar estados patógenos, sobre todo las inflamaciones
intestinales infecciosas.
"Hidratos de carbono no degradables por los
enzimas del tracto digestivo" se refiere concretamente a
polihidroxi-aldehídos y polihidroxicetonas, así como
a compuestos macromoleculares hidrolizables a polihidroxialdehídos
y polihidro-xicetonas, que durante la digestión, es
decir tras la disgregación mecánica de los alimentos, su
licuefacción mediante la saliva y su acidificación con el jugo
gástrico, no se pueden desdoblar en componentes absorbibles, y por
tanto asimilables por la sangre o la linfa, mediante la acción de
los enzimas digestivos en la zona del intestino delgado del tracto
digestivo. En cualquier caso, los hidratos de carbono no digeridos
o indigeribles se pueden degradar a componentes de bajo peso
molecular por la flora bacteriana del intestino grueso de un animal
monogástrico. Los hidratos de carbono no degradables en el intestino
delgado de un animal monogástrico son
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita,
6-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita,
ácido lactobiónico y ácido maltobiónico.
Como "oligosacárido" se entiende un
compuesto formado por la condensación de 2 hasta 10 monosacáridos.
Preferentemente se trata de un disacárido, de un trisacárido o de un
tetrasacárido, exceptuando la lactulosa. Como "derivados" se
entienden equivalentes funcionales o modificaciones de un
oligosacárido utilizable, los cuales se obtienen sustituyendo
átomos o grupos o restos moleculares en la misma estructura y/o
difieren del oligosacárido en, al menos, una posición de su
estructura química. Las diferencias entre un derivado y un
oligosacárido pueden resultar, por ejemplo, de reacciones de
adición, de eliminación o de sustitución. Estos derivados se pueden
obtener por separación a partir de productos naturales o bien se
pueden preparar por modificación de compuestos ya existentes o, si
es preciso, por síntesis total.
Como "hidrolizado de un hidrato de carbono
polimérico" se entienden los polisacáridos, poliurónidos,
mucopolisacáridos, glicoproteínas, glicolípidos, mureínas, y
sustancias capsulares y mucosas de naturaleza polisacárida, que se
han disociado por acción del agua. Una hidrólisis de tal tipo puede
ocurrir mediante reacciones químicas adecuadas o con el uso de
enzimas, por ejemplo hidrolasas como la pectinliasa.
Como alternativa, aparte de la presente
invención, se emplea un disacárido, un trisacárido, un
tetrasacárido, un producto de oxidación, de reducción o de
condensación de los mismos o bien un anhídrido de estos compuestos,
en calidad de principio activo para el tratamiento de infecciones
intestinales inflamatorias. Como "producto de oxidación" se
entiende un producto que se obtiene cuando la sustancia oxidable
cede electrones a un oxidante. Los productos de oxidación de los
azúcares de tipo oligosacárido son por ejemplo ácidos ónicos, ácidos
urónicos y ácidos sacaro-dicarboxílicos. Como
"productos de reducción" se entienden aquellos productos
resultantes de la separación química de oxígeno en un compuesto,
mediante uno o varios agentes desoxidantes. Una de las
características del proceso de reducción o hidrogenación es que la
sustancia reducible toma electrones del agente reductor. Los
productos de reducción de los oligosacáridos son, por ejemplo,
azúcar-alcoholes alifáticos y ciclitoles o
ciclitos. Como "producto de condensación" se entiende el
producto resultante de una reacción química catalizada, por la cual
se unen al menos dos moléculas, formando una molécula mayor y
desprendiendo simultáneamente una molécula sencilla como agua. Como
dianhídridos se entienden los compuestos que se forman por
calentamiento, desprendiendo dos moléculas de agua.
En una forma de ejecución especialmente
preferida se utiliza
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita
(en lo sucesivo 1,1-GPS) y/o
6-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita
(en lo sucesivo 1,6-GPS) como principio activo para
tratar infecciones intestinales de tipo bacteriano.
Los métodos para preparar los
azúcar-alcoholes 1,1-GPS y
1,6-GPS o las mezclas que los contienen son
conocidos. Por ejemplo en la patente DE 195 23 008 A1 se revela un
método para preparar mezclas de 1,6-GPS y
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-manita
(1,1-GPM), que incluye la hidrogenación de
isomaltulosa bajo 50 atmósferas de presión, usando un catalizador.
En la patente EP 0 625 578 B1 se describen métodos para obtener
mezclas de azúcar-alcoholes que contienen
1,1-GPM, 1,1-GPS y
1,6-GPS, por los cuales primero se transforma
sacarosa en una mezcla que contiene isomaltulosa y trehalulosa, y
el producto así obtenido se hidrogena catalíticamente para dar una
mezcla que lleva 1,1-GPM, 1,1-GPS y
1,6-GPS.
En una forma de ejecución especialmente
preferida de la presente invención se emplea una mezcla de
disacárido-alcoholes que lleva
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-manita
(1,1-GPM) y
6-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita
(1,6-GPS), preferentemente en una relación
cuantitativa de 1:99 hasta 99:1, sobre todo de aprox. 50:50 (% en
peso). La mezcla casi equimolecular de 1,1-GPM y
1,6-GPS puede adquirirse en el comercio y se
denomina Palatinit® o Isomalt. Naturalmente también pueden usarse
mezclas enriquecidas con 1,1-GPM o
1,6-GPS como las descritas en la patente DE 195 32
396 C2.
En otra forma de ejecución preferida se emplea
una mezcla disacárido-alcohólica compuesta por
1,1-GPM, 1,6-GPS y
1,1-GPS, y dado el caso, en combinación con manita,
sorbita y oligómeros. En la patente EP 0 625 578 B1 está descrita
una mezcla de este tipo. El contenido revelado en esos documentos en
cuanto a la preparación y a la composición de las mezclas de azúcar
está totalmente incorporado al contenido revelado en la presente
exposición y por tanto se solicita su protección en relación con la
presente exposición.
En otra forma de ejecución especialmente
preferida se usa ácido lactobiónico y/o ácido maltobiónico como
principio activo para tratar infecciones intestinales bacterianas.
Aparte de la presente invención también se puede usar "palatinosa
condensada", es decir el producto formado por la condensación de
moléculas de isomaltulosa, y/o un dianhídrido de difructosa.
Los ácidos lactobiónico y maltobiónico pueden
prepararse por oxidación de lactosa y maltosa, respectivamente. Los
dianhídridos de difructosa pueden prepararse enzimática o
químicamente por ejemplo, calentando inulina y/o
fructooligosacáridos. Así, por ejemplo, los fructooligosacáridos
pueden transformarse en dianhídrido de difructosa III por medio de
la inulinfructotransferasa de Arthrobacter ureafaciens.
En otra forma de ejecución, aparte de la
presente invención, se usa un fructooligosacárido, un
fructooligosacárido hidrogenado, un quitooligosacárido, un
quitosanoligosacárido y/o un galactomananoligosacárido como
principio activo para tratar infecciones intestinales
bacterianas.
Como "fructooligosacáridos" se entienden
aquellos sacáridos formados por 2 hasta 10 unidades de fructosa
conectadas entre sí mediante enlaces
\beta-glicosídicos. Los
fructo-oligosacáridos se pueden preparar, por
ejemplo, a partir de inulina mediante el uso de
endo-inulinasa. Como "fructooligosacáridos
hidrogenados" se entienden los fructooligosacáridos que han sido
modificados por adición de átomos de hidrógeno, mediante el uso de
catalizadores y/o aplicación de presiones elevadas. Como
"quitooligosacáridos" se entienden los sacáridos que contienen
aminoazúcares y que constan de 2 hasta 10 restos de
N-acetil-D-glucosamina
unidos entre sí por enlaces
\beta-1,4-glicosídicos. Como
"quitosanoligosacáridos" se entienden los quitooligosacáridos
desacetilados. Como "galactomananoligosacáridos" se entienden
aquellos sacáridos cuyas cadenas constan de dos hasta diez unidades
de manosa en forma de \beta-piranosa enlazadas
1->4, a las cuales van unidas moléculas de galactosa en forma de
ramificaciones cortas 1->6.
En otra forma de ejecución, aparte de la
presente invención, como principio activo para tratar infecciones
intestinales bacterianas se utiliza un hidrolizado de pectina que
contiene oligogalacturónidos.
En un caso de infección intestinal por
Salmonellas, E. coli o Shigellas se prevé la
administración a un animal monogástrico de una dosis de principio
activo suficiente para sanar o prevenir el estado de la infección
intestinal, frenar la progresión de la infección intestinal y/o
aliviar sus síntomas. Por tanto, la dosificación del principio
activo tiene lugar de manera que se logre un resultado
médico-terapéutico óptimo sin efectos tóxicos
secundarios importantes y el tratamiento tenga un éxito duradero. La
cantidad del principio activo administrado a un animal depende
entre otras cosas de la forma de administración, de la edad, del
sexo y del peso corporal del organismo a tratar y de la gravedad de
la enfermedad. Por lo tanto la dosis exacta con que debe tratarse
un animal monogástrico debe fijarla el veterinario en cada caso.
Por consiguiente, en una forma de ejecución
preferida de la presente invención se prevé el uso de un hidrato de
carbono conforme a la presente invención - no degradable por los
enzimas del tracto digestivo - como principio activo para tratar
infecciones intestinales causadas por microorganismos del género
Salmonella, E. coli o Shigella, sobre todo
salmonelosis o shigelosis, el cual, una vez aislado y purificado, se
administra a un animal monogástrico en forma de preparado
farmacéutico. Por tanto la administración de los principios activos
según la presente invención en composiciones farmacéuticas está
especialmente indicada en los casos graves de infección bacteriana
aguda. Como "preparado farmacéutico" en relación con la
presente invención se entiende una mezcla que lleva principios
activos naturales o sintéticos, empleada con fines diagnósticos,
terapéuticos y/o profilácticos, en la cual los principios activos
están contenidos en una forma que pueda aplicarse bien a un animal.
El preparado farmacéutico puede ser una mezcla sólida o líquida. Por
ejemplo, una composición farmacéutica que incluye el principio
activo puede llevar uno o más excipientes farmacéuticamente
compatibles. Además el preparado farmacéutico puede contener los
aditivos habitualmente empleados en el sector, como por ejemplo
estabilizantes, espesantes, desmoldantes, disgregantes, lubricantes,
colorantes, aromas, saborizantes, emulsionantes u otras sustancias
corrientes.
La presente invención contempla preferentemente
la administración oral del preparado farmacéutico que contiene el
principio activo. Se prefiere especialmente la administración oral
del principio activo, porque así se alcanzan las zonas afectadas
del tracto digestivo que deben tratarse y por tanto los principios
activos se dirigen directamente a los órganos interesados. Según la
presente invención se prefiere especialmente que el principio
activo se administre en forma de suspensión, tableta, píldora,
cápsula, granulado, polvo u otra forma de administración apropiada.
Aunque los principios activos utilizados según la presente invención
son bastante insensibles al ácido gástrico, se prefieren los
medicamentos que presentan un revestimiento resistente al jugo
gástrico, a fin de que los principios activos contenidos en el
preparado farmacéutico puedan pasar libremente por el estómago y
preferiblemente no se disuelvan hasta llegar a las partes superiores
del intestino. La composición de los revestimientos resistentes al
jugo gástrico y los métodos para su elaboración son conocidos del
sector. En una forma de ejecución especialmente preferida de la
presente invención se usan medicamentos que poseen un mecanismo de
liberación retardada del principio activo, a fin de permitir una
terapia tópica a largo plazo de las infecciones intestinales
bacterianas. La forma y composición de esta clase de medicamentos
con liberación retardada del principio activo también son conocidas
del sector.
Una administración de los principios activos de
la presente invención en preparados farmacéuticos está
especialmente indicada para los casos graves de infección bacteriana
aguda. Tal es el caso por ejemplo de las diarreas severas que van
acompañadas de una fuerte secreción de líquido y electrolitos, cuyas
amenazadoras consecuencias pueden ser deshidratación, shock y
acidosis. En concreto para estos casos graves de evolución aguda se
puede llevar a cabo una terapia combinada, administrando junto con
el/los principio(s) activo(s) empleado(s)
según la presente invención al menos otro fármaco para la misma
indicación. El/los principio(s) activo(s) de la
presente invención y al menos un fármaco adicional se pueden
administrar por separado o en forma de combinaciones fijas. El
empleo combinado del/de los principio(s) activo (s) según la
presente invención y al menos un fármaco adicional puede tener como
fin el refuerzo de los efectos terapéuticos, pero también puede
actuar sobre diversos sistemas biológicos del organismo, aumentando
el efecto global. Por ejemplo, el/los principio(s)
activo(s) utilizado(s) en la presente invención se
pueden combinar con soluciones de electrolito-azúcar
especialmente ajustadas, como por ejemplo Elotrans®, que también
pueden administrarse por vía oral. En casos excepcionales, es decir
en las formas agudas con peligro vital, los principios activos
empleados según la presente invención también pueden combinarse con
antibióticos tales como, por ejemplo, ampicilina, cloramfenicol,
tetraciclinas y similares.
En otra forma de ejecución preferida de la
presente invención está previsto el uso de los hidratos de carbono
no degradables por los enzimas del tracto digestivo, para tratar
infecciones intestinales, de manera que estén contenidos como
aditivo en forrajes, piensos dietéticos o en el agua potable y
puedan llegar al tracto digestivo con la alimentación ingerida.
Según la presente invención, el aporte de los hidratos de carbono
usados conforme a la presente invención a través de la alimentación
está previsto, sobre todo, para las formas leves de infección
intestinal bacteriana. Además, la alimentación regular con piensos,
por ejemplo, que contengan dichos hidratos de carbono permite la
realización a largo plazo de una profilaxis de las infecciones
intestinales bacterianas.
En relación con la presente invención
"forraje" o "pienso" se refiere a cualquier sustancia o
mezcla, en estado inalterado, preparado, elaborado o transformado,
destinada a la alimentación de los animales. Los piensos pueden
estar en forma sólida o líquida. Por lo tanto los términos
"forraje" o "pienso" también incluyen el agua potable
para animales. Los piensos pueden ser simples o compuestos. Los
principios activos de la presente invención se pueden mezclar con
el pienso tanto en forma disuelta como en estado sólido. Para su
administración a los cerdos los principios activos de la presente
invención se pueden agregar en forma de polvo, por ejemplo, a las
mezclas de sustancias minerales empleadas en la nutrición animal.
Para su administración a los pollos, los principios activos
empleados según la presente invención pueden añadirse en forma de
polvo, por ejemplo, al pienso de las gallinas ponedoras.
En el marco de la presente invención como
"pienso dietético" se entiende un pienso destinado a una
determinada finalidad nutricional, que aporta ciertos nutrientes u
otras sustancias de efecto dietético-fisiológico
según una relación cuantitativa definida o una determinada calidad.
Por lo tanto los piensos dietéticos se distinguen normalmente por
su composición o sus propiedades de los piensos de tipo comparable.
Los piensos dietéticos sirven normalmente para una finalidad
alimenticia especial, sobre todo porque contribuyen a satisfacer
determinados requisitos nutricionales, como los debidos por ejemplo
a enfermedades, anomalías funcionales o reacciones alérgicas contra
los piensos simples o sus ingredientes. Los piensos dietéticos
también pueden existir en forma sólida o líquida.
Los principios activos utilizados según la
presente invención también se pueden agregar al agua potable para
los animales. Los principios activos de la presente invención se
añaden al agua potable, por ejemplo en forma de polvos o granulados
y con preferencia inmediatamente antes del uso, a fin de que se
disuelvan con rapidez y sin dejar restos.
La presente invención también se refiere a
forrajes y piensos dietéticos que llevan ácido lactobiónico y/o
ácido maltobiónico como aditivo. Dichos piensos según la presente
invención, suministrados regularmente a los animales monogástricos,
proporcionan una protección duradera contra las infecciones
intestinales causadas por bacterias de los géneros Salmonella,
Shigella o E. coli. No son de la presente invención los
forrajes y los piensos dietéticos que llevan
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita,
6-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita,
"palatinosa condensada", un dianhídrido de difructosa, un
fructooligosacárido, fructooligosacárido hidrogenado,
quitooligosacárido, quitosanoligosacárido, galactomananoligosacárido
y/o un hidrolizado de pectina que contiene oligogalacturónidos, como
aditivo.
La presente invención también se refiere a los
usos anteriormente mencionados de los citados hidratos de carbono,
para elaborar preparados farmacéuticos destinados a la terapia, es
decir, a la profilaxis y curación de dichos cuadros patológicos.
Otras formas ventajosas de la presente invención
se desprenden de las reivindicaciones secundarias.
La presente invención se ilustra con más detalle
mediante los siguientes ejemplos.
\vskip1.000000\baselineskip
Se disuelve trehalulosa, preparada según la
patente DE 32 41 788, en agua desmineralizada de modo que resulte
una solución al 40% (peso/peso) y se hidrogena a 120ºC y a 10 Mpa de
presión de hidrógeno en presencia de un catalizador níquel Raney.
De la mezcla obtenida, formada por 1,1-GPS y
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-manita
(1,1-GPM), se separa una parte de la
1,1-GPM por cristalización. La
1,1-GPM que queda en la mezcla restante no perturba
el uso de la 1,1-GPS según la presente invención.
Por tanto la mezcla restante de 1,1-GPS y
1,1-GPM se puede emplear en los piensos sin
purificarla más.
Se disuelve isomaltulosa, preparada según la
patente EP 28 900, en agua desmineralizada de modo que resulte una
solución al 40% (peso/peso) y se hidrogena a 120ºC y a 10 Mpa de
presión de hidrógeno en presencia de un catalizador níquel Raney.
De la mezcla obtenida, formada por 1,6-GPS y
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-manita
(1,1-GPM), se separa una parte de la
1,1-GPM por cristalización. La
1,1-GPM que queda en la mezcla restante no perturba
el uso de la 1,6-GPS según la presente invención.
Por tanto la mezcla restante de 1,6-GPS y
1,1-GPM se puede emplear en los piensos sin
purificarla más.
En un equipo de oxidación de funcionamiento
continuo se disuelven 80 g de lactosa-monohidrato en
agua desmineralizada de modo que resulte una solución al 4%. La
solución se satura luego con oxígeno. La oxidación tiene lugar
sobre un catalizador de lecho sólido de Pt/C a 40ºC. El producto de
oxidación resultante se separa continuamente a través de una unidad
de electrodiálisis. Tras la liofilización se separa el ácido
lactobiónico (sal Na) en forma sólida con una pureza de al menos
86%.
En un equipo de oxidación de funcionamiento
continuo se disuelven 100 g de maltosa-monohidrato
en agua desmineralizada de modo que resulte una solución al 5%. La
solución se satura luego con oxígeno. La oxidación tiene lugar
sobre un catalizador de lecho sólido de Pt/C a 40ºC. El producto de
oxidación resultante se separa continuamente a través de una unidad
de electrodiálisis. Tras la liofilización se separa el ácido
maltobiónico (sal Na) en forma sólida con una pureza de al menos
85%.
Se calientan a 160ºC 0,15 kg de isomaltulosa
molida tras la adición de ácido cítrico molido (0,15 g) y se dejan
a esa temperatura durante 60 minutos. La masa fundida se diluye con
agua totalmente desmineralizada hasta 45% de materia seca y se
cromatografía a 70ºC en un intercambiador catiónico cargado con
Ca^{2+} (IMAC-Ca^{2+} de la firma Rohm &
Haas)(lecho de la columna 20 1), utilizando agua como eluyente. Las
fracciones de mayor peso molecular (\geq DP 4) se reúnen, se
concentran por evaporación y se secan por pulverización. La tabla 1
muestra la composición de la "palatinosa condensada" tras la
separación por cromatografía de gel.
\vskip1.000000\baselineskip
En un recipiente cilíndrico de acero colocado en
un baño de aceite se calentaron a 200ºC durante 40 minutos 40 g de
inulina (Raftiline® HP). Los dianhídridos de fructosa se extrajeron
(3 x 200 ml de metanol) de la masa fundida después de enfriar. Los
extractos reunidos se concentraron hasta la sequedad en un
evaporador rotativo y a continuación se disolvieron de nuevo en
agua totalmente desmineralizada. La solución del 10% de materia
seca (100 ml) se fraccionó mediante cromatografía de gel (Fractogel
HW40S, 3 columnas separadoras de 120 cm de longitud y 10 cm de
diámetro cada una) a 55ºC y con un flujo de 600 ml/hora. Las
fracciones que contenían los dianhídridos de fructosa se reunieron
y se concentraron hasta 15% de materia seca.
Esta solución se cromatografió y fraccionó en
una fase reversa (Nucleosil
120-7-C18, 34 cm de longitud,
incluyendo precolumna, 2,1 cm de diámetro) a temperatura ambiente,
con un flujo de 5 ml/min., empleando agua totalmente
desmineralizada y microfiltrada como eluyente. Después de recargar
(0,2 ml por separación) se cromatografiaron 5 g de sustancia seca y
se fraccionaron apropiadamente, obteniéndose 1,3 g de DFA I con una
pureza del 95% y 1,1 g de DFA II con una pureza del 91%.
De un cultivo inclinado en agar de la cepa
Arthrobacter ureafaciens (ATCC 21 124) se extrajo una
cantidad y se transfirió a un matraz agitado (300 ml) que contenía
un medio de nutrición (pH 7,0) compuesto por 6 g/l de inulina
(Raftiline® St de la firma Orafti), 2 g/l de hidrógenofosfato
disódico, 1 g/l de dihidrógenofosfato potásico, 1 g/l de nitrato
amónico, 0,5 g/l de sulfato magnésico, 0,01 g/l de sulfato de
hierro, 0,03 g/l de sulfato cálcico y 0,5 g/l de extracto de
levadura. Luego se realizó una incubación de 24 horas a 27ºC y 120
rpm.
La biomasa (3 g) obtenida mediante
centrifugación se completó hasta 300 ml con una solución de inulina
al 10% (Raftiline® St) previamente ajustada a un valor pH de 5,5 con
tampón de fosfato 0,02 M. Luego se incubó durante 4 horas a 40ºC
bajo agitación. Terminada la reacción se separó la biomasa por
centrifugación y se microfiltró (0,45 \mum) el sobrenadante
obtenido.
Después de concentrarlo hasta 15% de materia
seca, el filtrado se fraccionó por cromatografía de gel (Fractogel
HW40S, 3 columnas separadoras de 120 cm de longitud y 10 cm de
diámetro cada una) a 55ºC y con un flujo de 600 ml/hora.
Así se obtuvieron 15 g de DFA III con una pureza
del 95%.
Mediante un proceso continuo en una máquina
homogenizadora Supraton se elaboró una papilla con 60 kg de raíces
de achicoria previamente trituradas, después de añadir 120 l de
agua. La papilla se calentó a 95ºC y se dejó 30 min. a esa
temperatura. Tras enfriar la papilla a 56ºC se ajustó el pH a 5,4
con H_{2}SO_{4} al 33%. Después de agregar 2 unidades de
endo-inulinasa (SP 168 de Novo) por gramo de
inulina, la mezcla se agitó durante 15 horas a 56ºC. El valor pH se
mantuvo constante a 5,4 dosificando lechada de cal.
La reacción enzimática se paró aumentando el
valor pH hasta 10,7 mediante la adición de
Ca(OH)_{2}. Transcurridos 30 minutos se separó el
sólido con un filtro prensa y se lavó repetidamente con 50 l de
agua. A continuación los filtrados reunidos se neutralizaron con
dióxido de carbono.
El producto se usó directamente después de
concentrarlo y secarlo o bien se sometió primero a una operación de
desalinización y decoloración. La desalinización y la decoloración
se realizaron con un intercambiador catiónico débilmente ácido en
forma H^{+} (como por ejemplo Lewatit® CNP 80, de Bayer AG) y un
intercambiador aniónico de basicidad media en forma OH (como por
ejemplo Lewatit® MP 64, de Bayer AG). Las columnas estaban
conectadas una tras otra, de tal manera, que la solución del
producto pasaba primero por el intercambiador catiónico y luego por
el intercambiador aniónico. Esta etapa se llevó a cabo a temperatura
ambiente.
El producto de elución que contenía los FOS se
concentró hasta 20% de materia seca y luego se secó por
pulverización, obteniéndose 7,85 kg de producto.
La tabla 2 muestra la composición del producto
tras la separación por cromatografía de gel.
\vskip1.000000\baselineskip
El contenido de glucosa, fructosa y sacarosa
sobre materia seca fue respectivamente de 3,4%, 2,3% y 6,5%.
Agitando en 30 l de agua totalmente
desmineralizada se disolvió 1 kg de inulina de cadena larga (como
por ejemplo Inulin-HP de Orafti), con una longitud
media de cadena de 25, y se calentó a 85ºC. Después de enfriar la
solución a 54ºC y ajustar el pH a 5,3 mediante adición de NaOH 1 N
se agregaron 2.000 unidades de endo-inulinasa
(denominación del producto: "SP 168", de Novo). La mezcla se
agitó lentamente durante 48 horas a 54ºC y a continuación se paró la
reacción calentando durante 20 minutos a 95ºC.
Un análisis por HPLC demostró que el producto
constaba de 83%, respecto a materia seca, de fructooligosacáridos
homooligómeros con una distribución DP de 2-7. El
resto era de fructooligosacáridos heterooligómeros y fructosa
libre.
La solución evaporada hasta 40% de materia seca
se hidrogenó durante 18 horas en un autoclave de laboratorio con
hidrógeno a 150 bar y a 80ºC, en presencia de níquel Raney. La
solución obtenida se filtró y se purificó por intercambio
iónico.
La solución purificada se puede utilizar en
forma líquida, pero también puede transformarse en una forma sólida
mediante procedimientos conocidos de secado, como por ejemplo la
pulverización.
Durante 10 minutos a 20ºC se agitaron en un
matraz de tres bocas (250 ml) 25 g de quitina (Primex), de tamaño
de partícula \geq 0,12 mm, con 100 ml de HCl 12 M. Luego la
quitina se sometió a una hidrólisis de 110 minutos a 40ºC. La
mezcla reactiva se traspasó a un recipiente de vidrio de 400 ml para
neutralizarla y se enfrió a 5ºC. La neutralización se llevó a cabo
añadiendo lentamente solución helada de NaOH al 50% bajo agitación
y controlando la temperatura (T < 25ºC). Luego las materias
sólidas se separaron por centrifugación. El residuo se lavó tres
veces con agua totalmente desmineralizada y los sobrenadantes
reunidos se filtraron (0,45 \mum) y a continuación se
desalinizaron.
La desalinización se realizó por electrodiálisis
(BEL 2, de la firma Berghof).
Con una conductividad de 10 mS/cm y una tensión
de 8 V la desalinización quedó ampliamente completada después de 44
horas (valor final: 0,28 mS/cm). Luego la solución de producto se
concentró hasta 10% de materia seca y a continuación se liofilizó,
obteniéndose 17,5 g de quitooligosacáridos. La tabla 3 muestra la
composición del producto obtenido tras la separación por
cromatografía de gel.
\vskip1.000000\baselineskip
Primero se preparó un quitosano completamente
des-acetilado (A. Domard y M. Rinando, Int. I. Biol.
Macromol., 5 (1983), 49-52).
En un matraz de tres bocas (1 litro) se
disolvieron 12 g del quitosano desacetilado con 600 ml de HCl 12 M
y se agitó durante 3 horas a 72ºC. La reacción se paró enfriando a
4ºC. A continuación, la solución se concentró hasta sequedad en el
evaporador rotativo, se disolvió dos veces en 500 ml de agua y se
evaporó de nuevo hasta sequedad. Luego se añadieron 300 ml de agua
y el valor pH de la disolución resultante se ajustó a 3 añadiendo
NaOH concentrado bajo agitación.
La desalinización se realizó por electrodiálisis
(BEL 2, membranas: CMX y AMX, de la firma Berghof). Con una
conductividad > 20 mS/cm y una tensión de 8 V la desalinización
quedó ampliamente completada al cabo de 48 horas (valor final: 0,35
mS/cm). Después de concentrar y liofilizar se pudieron obtener 9 g
de quitosanoligosacáridos. En la tabla 4 se indica la composición
del producto tras la separación por cromatografía de gel (Fractogel
HW40S, 2 columnas separadoras de 2,6 x 150 cm; eluyente: acetato
amónico 0,25 M, pH 4,0).
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
Se agitaron 6 kg de citropectina de alto grado
de esterificación en 180 l de agua totalmente desmineralizada.
Después de añadir 200 ml de una pectinilasa (como por ejemplo
Rohapect PTE, de Röhm) se realizó una incubación de 2 horas a 45ºC
y a un pH de 4,5. Luego se incorporaron otros 14 kg de citropectina
de alto grado de esterificación y se ajustó de nuevo el pH a 4,5
con NaOH 1 N. Después de agregar 200 ml de
endo-poligalacturonasa (por ejemplo Pectinase PL,
de la firma Amano) se siguió incubando durante 17 horas más bajo
agitación. Luego se inactivaron los enzimas calentando durante 10
minutos a 80ºC.
El residuo insoluble se eliminó por
centrifugación y la solución transparente se concentró hasta 45% de
materia seca y, dado el caso, se secó. La tabla 5 muestra la
composición de del producto resultante.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
En una forma de ejecución preferida se
trituraron cáscaras secas de naranja o bolitas de cítricos, hasta
llegar a un tamaño de partícula de aprox. 1-5 mm. De
ahí se agitaron 100 g en 400 ml de agua, con lo cual se hincharon
las partículas. Luego se añadió ácido clorhídrico concentrado (8 g).
La suspensión se calentó a 85ºC y se agitó a esta temperatura
durante 1,5 horas. Tras enfriar a 45ºC se incrementó el valor del pH
hasta 4,5 con NaOH. Después de agregar 0,3 ml de una pectinilasa
(como por ejemplo Rohapect PTE, de la firma Röhm) se incubó durante
2 horas. Después se incorporaron 0,75 ml de una
endopoligalacturonasa (como por ejemplo Pectinase PL, de la firma
Amano) y se siguió incubando 3 horas más bajo agitación, sin variar
las condiciones de reacción. Luego se inactivaron los enzimas
calentando a 95ºC. La suspensión obtenida se concentró y se secó en
un secador
\vskip1.000000\baselineskip
(Controles)
La estabilidad de una sustancia durante el
tránsito estomacal se puede determinar analizando los hidrolizados
a un valor pH de 1,0 y 2,0, y comparándolos con sacarosa como
control. Para el control se incubó durante 3 horas a 37ºC una
solución de sacáridos al 1% a pH 1,0 (HCl 0,1 M) y a pH 2,0 (HCl
0,01 M). De las respectivas mezclas reactivas se tomaron muestras a
los 60, 120 y 180 minutos y se analizaron según el método HPAEC. Los
resultados figuran en la siguiente tabla 6 (indicación de los
hidrolizados en %).
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
De esta tabla se desprende que los sacáridos no
se desdoblan, o solo en parte, y por tanto resisten el paso por el
estómago, preferentemente inalteradas.
\vskip1.000000\baselineskip
La secreción del páncreas contiene una gran
cantidad de hidrolasas, entre ellas, también los enzimas que
descomponen los hidratos de carbono, como la
\alpha-amilasa, la cual desdobla los
\alpha-1,4-glucanos (almidón,
glucógeno), preferentemente en maltosa y maltooligosacáridos.
La estabilidad de los sacáridos frente a los
enzimas pancreáticos se analizó del modo siguiente.
Los sacáridos investigados se disolvieron
respectivamente en tampón de fosfato-Na 20 mM de pH
7,0 que contenía NaCl 6 mM (solución 1), resultando una solución al
1%. Como control se preparó una solución de almidón (almidón
soluble según Zulkowski) al 1% en la solución 1. Asimismo se preparó
una solución de pancreatina (de la firma Sigma) al 0,2% en la
solución 1. A 3,0 ml de cada solución de muestra y a 3,0 ml del
control se añadieron 0,1 ml de la solución de pancreatina
anteriormente preparada. Tras una incubación de 210 minutos en el
termomezclador (agitación por intervalos) a 37ºC, se terminó la
reacción calentando durante 15 minutos a 95ºC. La muestra que
contenía almidón se hidrolizó totalmente calentándola 3 horas a 95ºC
en HCl 1 M. Luego se analizaron las muestras por HPAEC y se midió
la glucosa formada. Los resultados se indican en la siguiente tabla
7.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
La tabla 7 demuestra que los sacáridos empleados
en la presente invención no son atacados por los enzimas
pancreáticos.
\vskip1.000000\baselineskip
Los complejos enzimáticos de sacarasa/isomaltasa
y glucoamilasa/maltasa que hay en el intestino delgado, procedentes
de la mucosa, actúan in vivo para que los disacáridos maltosa
y sacarosa y también en parte los maltooligosacáridos llegados al
intestino delgado se desdoblen en monosacáridos y pasen como tales
al torrente sanguíneo, a través de la pared intestinal.
La estabilidad de los sacáridos de la presente
invención frente a estos enzimas se ensayó del modo siguiente.
Primero se aislaron los complejos enzimáticos
sacarasa/isomaltasa (complejo SI) y glucoamilasa/maltasa (complejo
GM) del intestino delgado del cerdo, siguiendo el método de H.
Heymann (Disertación, Hannover, 1991).
Los sacáridos analizados se disolvieron en
tampón de trietanolamina (TRA) 0,1 M, pH 7,0, obteniéndose una
solución al 1%. Como control se prepararon disoluciones al 1% de
maltosa y sacarosa empleando el mismo tampón TRA. Los enzimas
anteriormente aislados de la mucosa también se disolvieron en tampón
TRA.
A 1,2 ml de la solución de hidrato de carbono
temperada a 37ºC se añadieron 0,7 U (unidades) del complejo
enzimático sacarasa/isomaltasa o del complejo enzimático
gluco-amilasa/maltasa a t = 0. Después de mezclar,
cada preparación reactiva se incubó a 37ºC. Al cabo de 2 horas se
paró toda reacción, calentando durante 15 minutos a 95ºC. Los
monosacáridos formados y las sustancias de ensayo empleadas se
determinaron cuantitativamente por HPAEC. Los resultados figuran en
la tabla 8.
\vskip1.000000\baselineskip
Los resultados indican que, en las condiciones
elegidas, la sacarosa y la maltosa fueron casi totalmente
hidrolizadas por el complejo enzimático SI. Además la maltosa
también fue casi totalmente hidrolizada por el complejo enzimático
GM. En cambio los sacáridos empleados según la presente invención
para tratar infecciones intestinales bacterianas no fueron
prácticamente desdoblados por ambos complejos enzimáticos o solo en
muy pequeña medida.
\vskip1.000000\baselineskip
Se ensayó in vitro la fermentación de las
sustancias galactomananoligosacáridos, dianhídrido de difructosa II
(DFA II) y "palatinosa condensada" a ácidos grasos de cadena
corta. Para ello se tomaron heces recientes de cinco cerdos y se
reunieron a partes iguales formando una muestra mixta. Con esta
muestra se preparó una suspensión al 10% en tampón anaeróbico de
fosfato 50 mM, pH 7,0, mediante una amasadora marca Stomacher. Se
introdujeron respectivamente 0,5 ml de dicha suspensión en 9,5 ml de
un medio cuya composición está indicada en la tabla 9 y se
incubaron en condiciones anaeróbicas durante 28 h a 37ºC en tubos
Hungate.
\vskip1.000000\baselineskip
En un ensayo de control se incubó el medio con
suspensión de heces, pero sin adición de hidratos de carbono. Las
siguientes tablas 10 hasta 13 muestran la velocidad de la
fermentación de los hidratos de carbono analizados, el valor del pH
al término de la fermentación in vitro y los ácidos grasos de
cadena corta formados.
\vskip1.000000\baselineskip
Valor del pH al término de la fermentación:
7,2
Valor del pH al término de la fermentación:
6,6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Valor pH al término de la fermentación: 5,4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Valor pH al término de la fermentación: 5,7
En un establecimiento de engorde de cerdos
primero se identificaron los portadores de Salmonellas analizando
los excrementos. De los animales hallados como portadores positivos
se escogieron 75 con un peso de 65-75 kg, se
dividieron en tres grupos de 25 y se alojaron en establos
separados.
El primer grupo recibió pienso que contenía
"palatinosa condensada" (no conforme a la presente invención),
el segundo grupo pienso con ácido lactobiónico (conforme a la
presente invención), y el tercer grupo pienso con
fructooligosacáridos hidrogenados (no conforme a la presente
invención). La dosificación de los hidratos de carbono tuvo lugar
de modo que a través del pienso se aportaran respectivamente 0,5 g
de hidrato de carbono por kg vivo y por día. Se tomaron diariamente
muestras de excrementos y se analizó la presencia de Salmonellas.
Además se comparó el aumento de peso de los animales de cada grupo
con el de los animales del control (portadores de Salmonellas, con
pienso sin aditivos).
Al cabo de un tiempo de tratamiento de 7 días,
en el grupo que se había alimentado de pienso con "palatinosa
condensada" solo se pudieron detectar dos portadores de
Salmonellas. En el grupo alimentado de pienso con
fructooligosacáridos hidrogenados solo se halló un portador de
Salmonellas y en el grupo alimentado con ácido lactobiónico no se
pudo hallar ninguno. En cuanto al incremento de peso no se
encontraron diferencias apreciables entre el control y los grupos
tratados.
Claims (12)
1. Uso de al menos un hidrato de carbono no
degradable por los enzimas del tracto digestivo, escogido del grupo
formado por
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita,
6-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita,
ácido lactobiónico y ácido maltobiónico y una mezcla de ellos, como
principio activo para preparar un fármaco destinado al tratamiento
de las infecciones intestinales causadas por un microorganismo del
género Salmonella, E. coli o Shigella en un
animal.
2. Uso según la reivindicación 1, en que dicho
animal es un animal monogástrico.
3. Uso según la reivindicación 1 o 2, en que
dicho animal monogástrico es un animal útil.
4. Uso según una de las reivindicaciones 1 a 3,
en que el animal útil es un cerdo o un pollo.
5. Uso según una de las reivindicaciones 1 a 4,
en que la
6-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita
está contenida en una mezcla que además lleva
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-manita,
de tal modo que ambos componentes se hallan en una relación
cuantitativa de 1:99 hasta 99:1.
6. Uso según una de las reivindicaciones 1 a 4,
en que la
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita
y la
6-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-sorbita
están contenidas en una mezcla que lleva asimismo
1-O-\alpha-D-glucopiranosil-D-manita.
7. Uso según una de las reivindicaciones 1 a 6,
en que el principio activo se administra en un preparado
farmacéutico.
8. Uso según la reivindicación 7, en que el
principio activo se administra por vía oral.
9. Uso según la reivindicación 8, en que el
principio activo se administra en forma de suspensión, tableta,
píldora, cápsula, granulado o polvo.
10. Uso según una de las reivindicaciones 1 a 6,
en que el hidrato de carbono administrado está contenido en un
forraje, en un pienso dietético o en el agua potable.
11. Pienso que contiene como aditivo al menos un
hidrato de carbono no degradable por los enzimas del tracto
digestivo, escogido del grupo formado por ácido lactobiónico y ácido
maltobiónico y una mezcla de ambos.
12. Pienso según la reivindicación 11, que es un
pienso de tipo dietético.
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