ES2293967T3 - Lineas de tumor mamario en raton que expresan receptores de estrogeno y progesterona. - Google Patents
Lineas de tumor mamario en raton que expresan receptores de estrogeno y progesterona. Download PDFInfo
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Abstract
Una línea de célula MC4-L2 de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico, que tiene el número de Acceso de ATCC PTA-892, la línea de célula para ser obtenida subclonando la línea de célula MC4-L1 que deriva de un tumor de ratón CC4-HD dependiente de progestina.
Description
Líneas de tumor mamario en ratón que expresan
receptores de estrógeno y progesterona.
La presente invención se refiere a las líneas de
células de adenocarcinoma mamario de los ratones que expresan los
receptores de progesterona y estrógeno como una herramienta para
estudiar el efecto de las hormonas, los compuestos farmacológicos y
los agentes ambientales. La presente invención también se refiere a
los métodos in vitro e in vivo para probar las
hormonas u otras moléculas relacionadas para la proliferación de la
célula o la proliferación del tumor.
Los neoplasmas malignos mamarios epiteliales de
la glándula mamaria son una de las formas más comunes de cáncer
entre las mujeres de América del Norte, América del Sur, Europa y
Australia y cuenta con el 15-18% de las muertes en
esta población (Lynn y Relss 1995 J. Natl Cáncer Inst. 87: 867:
Moller Jensen y colaboradores 1990 Eur. J. Cancer 26:
1167-1256: Boring y colaboradores 1993 Cancer J.
Clin. 43: 7-26). A pesar del desarrollo de los
diferentes enfoques terapéuticos, la mortalidad ha continuado
subiendo en los últimos treinta años: la incidencia del cáncer
mamario está incrementándose por alrededor del 1% por año en casi
todas las poblaciones tanto en los países industrializados y los en
vía de desarrollo (Miller y colaboradores 1991 Cancer Causes
Control 2:67-74. Levi F. 1993 Eur J Cancer
29:2315-2319) y se estima que la enfermedad afectará
5 millones de mujeres en la próxima década (Corry JF. y Lonning PE.
1994 Pharmacol. Econom 5: 198-212). Obviamente con
el envejecimiento, la población femenina, la prevención y el
tratamiento del cáncer mamario va a continuar representando un
desafío importante.
La etiología del cáncer mamario continúa en gran
parte desconocida y el dilema del desarrollo del tumor mamario y
los mecanismos relacionados con el tumor han sido estudiados con
diferentes enfoques experimentales. El modelo del tumor mamario del
ratón inducido por el virus (MMTV) tiene diferentes inconvenientes;
la mayor parte de los tumores inducidos por MMTV no son sensibles a
la hormona o sensibles al embarazo (Welsch CW y Nagasawa H. 1977
Cancer Res 37:951-963. Sluyser M. y Van Nie R. 1974
Cancer Res 34:3253-3257), y no se demostró una
involucración definitiva por un virus en la etiología de los tumores
mamarios en los seres humanos (Michalides R. y colaboradores
Current Topics in Microbiology and Immunology, Vol. 106, Eds: PK
Vogt y H Koprowski, Springer Verlag, Berlín, páginas
57-78. Pogo BG. y colaboradores 1997 Médicina
(Buenos Aires). 57 Suppl 2: 75-80). Los modelos de
carcinógeno químico permitieron la disección de los iniciadores y
promotores, y los tumores originados en los modelos de ratas MNU y
los modelos de rata DMBA, fueron sensibles a la hormona y expresaron
los receptores de estrógeno (ER) (Gullino P. y colaboradores 1975 J
Natl Cancer Inst. 54:401-404. Russo IH. y
colaboradores 1982 Breast Cancer Res and Treat
2:5-73). No dieron lugar, sin embargo, a la
metástasis y alojaron mutaciones de puntos en ciertos oncogenes no
descubiertos en la enfermedad humana, que están probablemente
relacionados con el carcinógeno químico (lp C. 1996 J. Mammary Gland
Biol Neopl 1: 37-47).
Otro método implica el establecimiento de las
líneas de célula humanas. Las líneas de células del cáncer mamario
humanas más ampliamente usadas son las MCF-7 (Soule
HD. y colaboradores 1973 J Natl Cancer Inst
51:1409-1416), la
T-47-D (Engel LW. y colaboradores
1978 Cancer Res. 38: 3352-3364), y la
ZR-75-31 (Keydar l. y colaboradores
1979 Cancer 51: 659-670). Estas líneas expresan ER y
los receptores de progesterona (PR) y son hormonas sensibles. En los
últimos años se han establecido otras líneas de célula: PMC42
(Whitehead RH. y colaboradores 1984 J National Cancer Institute
73:643-648), YMB-1 (Yamane M. y
colaboradores 1984 Hiroshima J Med Sci 33:715-720),
VHB (Vandewalle B. y colaboradores 1987 J Cancer Res Clin Oncol
1113: 550-558), IBEP-1,
IBEP-2 y IBEP-3 (Siwek B. y
colaboradores 1998 Int J Cancer 76:677-683),
BrCa-MZ-01 y
BrCa-MZ-02 (Mobus VJ. y
colaboradores 1998 Int J Cancer 77:415-423). Parte
de nuestro conocimiento en la regulación de la hormona del
crecimiento de la célula se ha deducido de los experimentos
realizados utilizando estas líneas. Alrededor de veinte líneas de
célula que no expresan los receptores de la hormona están
disponibles y se han utilizado en otro tipo de experimentos. Aunque
la información inicial valiosa pueda ser reunida de los estudios
in vitro, ya que el cáncer ocurre en el contexto de una
interacción compleja con su ambiente circundante: los tejidos
vecinos, el sistema inmunológico, las hormonas, y los factores
ambientales, existe una tendencia para estudiar los
xeno-injertos en los ratones
inmuno-suprimidos (Clarke R. 1996 Breast Cancer Res
and Treat 39: 69-86) o los ratones transgénicos o
Knock-out (Amundaddottir LT y colaboradores 1996
Breast Cancer Res and Treat 39: 119-135). El
problema principal es que la mayoría de las líneas de célula no son
metastáticas, al menos que sean transfectadas con los factores de
crecimiento diferentes, y también los altos costos de los ratones
inmuno-suprimidos. En los ratones hay unos pocos
modelos que se han utilizado para estudiar la regulación de la
hormona en el crecimiento del tumor, entre los cuales está el modelo
de los ratones MXT y el GR. El primero es un tumor mamario que se
mantiene por transplante singeneico y expresa los altos niveles de
ER y PR (Kiss R. y colaboradores 1989 Cancer Res
49:2945-2951) y el último es una cepa de ratones que
desarrolla tumores dependientes del embarazo (Sluyser M. y Van Nie
R. 1974 Cancer Res 34:3253-3257). No se han
desarrollado líneas de célula aún de los tumores de los ratones que
mantienen la expresión del receptor esteroide excepto para un tumor
inducido en los ratones transgénicos c-erbB2 (Sacco
MG y colaboradores 1998 Breast Cancer Res and Treat
47:171-180).
Los inventores han desarrollado un modelo
experimental en el cual los adenocarcinomas mamarios (PD)
dependientes de progestina, metastáticos ductales están inducidos
por la administración continua de MPA a las ratas hembras BALB/c;
estos tumores expresan altos niveles de ER y PR (Lanari C. y
colaboradores 1986 Cancer Letters 33: 215-223.
Molinolo AA. y colaboradores 1987 JNCl 79:
1341-1350), y se mantienen por pasajes seriales
singeneicos en los ratones tratados con MPA. Por el transplante en
los ratones no tratados, los inventores han sido capaces de generar
líneas de tumor (PI) independientes de progestina que retienen la
expresión de ER y PR. Por los estudios in vitro, que
utilizan cultivos primarios y secundarios de una de estas líneas de
tumor PD (C4-HO), los inventores pudieron demostrar
que MPA estimula directamente la proliferación de la célula y que
las antiprogestinas inhiben el crecimiento de la célula aún en
concentraciones muy bajas (Dran G. y colaboradores 1995 Breast
Cancer Res y Treat. 35: 173-186).
Más temprano en la caracterización del modelo
experimental, con el objetivo estudiar aún más ciertos aspectos de
la respuesta hormonal, los inventores desarrollaron una técnica para
obtener los cultivos epiteliales purificados o primarios
fibroblásticos de estos tumores (Dran G. y colaboradores 1995 Breast
Cancer Res y Treat. 35: 173-186). Aunque los
cultivos primarios estén, es una herramienta excelente para estudiar
el efecto directo de las hormonas en la proliferación de la célula,
el enfoque es consumidor de tiempo; muchos controles diferentes
necesitan ser corridos en paralelo para poder evitar la
heterogeneidad inherente de cada cultivo primario, y estandardizar
las conclusiones.
Vencer estos defectos, en el establecimiento de
la caracterización de los diferentes isoformos de PR expresado por
los tumores, los inventores decidieron procurar desarrollar las
líneas de células continuas en las que los parámetros diferentes
con respecto a la dependencia de la hormona podrían ser estudiados.
Los inventores pudieron desarrollar cuatro líneas de células
derivadas de un tumor de PD y de un tumor de PI. Esta es la primera
descripción de las líneas de células de adenocarcinoma mamario de
ratones obtenida en los animales no transgénicos que expresan los
receptores de estrógeno y progesterona.
Los inventores proporcionaron un línea de célula
para filtrar hormonas y moléculas relacionadas.
La técnica anterior relevante incluye a
Montecchia MF y colaboradores,"Progesterone receptor involvement,
in independent tumor growth in MPA-induced murine
mammary adenocarcinomas", J Steroid Biochem Mol Biol. 1999 Enero;
68(1-2): 11-21; PMID:
10215033.
De acuerdo con la invención presente, se
proporcionan las líneas de célula y los métodos para filtrar las
hormonas.
Según un primer aspecto de la invención
presente, se proporciona una línea de célula MC4-L2
de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico, que tiene el
número de Acceso de ATCC PTA-892, la línea de célula
obtenida sub-clonando la línea de célula
MC4-L1 que deriva de un tumor de ratón dependiente
de progestina CC4-HD.
Un objeto adicional de la invención es el de
proporcionar un sistema de cultivo de célula que facilitará el
filtrado e identificación de agentes que pueden ser clínicamente
importantes en el tratamiento del cáncer. Este sistema de línea de
la célula encontrará también utilidad en la identificación de los
compuestos que tienen el valor terapéutico para otras enfermedades
tales como los desórdenes endocrinos y en otra terapia del
reemplazo de la hormona. Se proporciona un sistema de línea de
célula para identificar, detectar o cuantificar las sustancias
sospechadas de unir los receptores de estrógeno y progesterona.
El sistema de cultivo de la célula de la
invención presente será útil como una herramienta de investigación
y facilitará la elucidación de la acción mecanicista de sustancias
novedosas que unen a los receptores de estrógeno y progesterona.
Así, según un segundo aspecto de la invención
presente, se proporciona un sistema de línea de célula para probar
la actividad de la hormona, los compuestos
anti-hormona, farmacológicos y los agentes
ambientales en donde el sistema comprende por lo menos una línea de
célula MC4-L2 de la invención presente.
Preferiblemente, el sistema de línea de célula
además comprende una o más de las líneas de células escogidas del
grupo que consiste en:
i) una línea de célula MC4-L1 de
adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico, que deriva de un
tumor de ratón CC4-HD dependiente de progestina, en
donde la línea de célula expresa los receptores de progesterona y se
deposita con el ATCC como número de Acceso
PTA-889;
ii) una línea de célula MC4-L3
de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico, que deriva de un
tumor de ratón CC4-HD dependiente de progestina,
donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y
progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso
PTA-891;
iii) una línea de célula MC7 -L1 de
adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico que deriva de un
tumor de ratón C7-HI independiente de progetina, en
donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y
progesterona y es depositada con el ATCC como número de Acceso
PTA-890.
Se proporciona también de acuerdo con la
presente invención un método in vitro para probar la
actividad de la hormona, los compuestos
anti-hormona, farmacológicos o agentes ambientales,
comprendiendo los pasos de cultivar un línea de célula, en donde la
línea de célula comprende la línea de célula MC4-L2
de la invención presente.
Preferiblemente, la línea de célula comprende
además una o más de las líneas de células escogidas del grupo que
consiste de:
i) una línea de célula de las líneas de célula
MC7-L1 de adenocarcinoma mamario de ratón no
transgénico que deriva de un tumor de ratón C7-HI
independiente de progestina en donde la línea de célula expresa los
receptores de estrógeno y progesterona y se deposita con el ATCC
como número de Acceso PTA-890;
ii) una línea de célula MC4-L3
de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico que deriva de un
tumor de ratón CC4-HD dependiente de progestina, en
donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y
progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso
PTA-891;
iii) un línea de célula de las líneas de célula
MC4-L1 de adenocarcinoma mamario de ratón no
transgénico, que deriva de un tumor de ratón CC4-HD
dependiente de progestina, en donde la línea de célula expresa los
receptores de estrógeno y progesterona y se deposita con el ATCC
como número de Acceso PTA-889.
La línea de células y los métodos de la
invención presente proporcionaron un sistema para el análisis de
las hormonas y las moléculas relacionadas sin la necesidad de
cultivos de tejido primario.
También proporcionado de acuerdo con la presente
invención se encuentra un equipo de prueba para determinar el
efecto de la hormona, los compuestos anti- hormona, farmacológicos y
los agentes ambientales, en donde el equipo comprende una alícuota
de la línea de célula MC4-L2 de la invención
presente y los medios para evaluar la proliferación de la línea de
célula.
Preferiblemente, el equipo comprende aún más una
alícuota de cada una una o más líneas de células escogidas del grupo
que consiste:
i) un línea de célula MC4-L1 de
adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico que deriva de un
tumor de ratón CC4-HD independiente de progestina
en donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y
progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso
PTA-890;
ii) una línea de célula MC4-L3de
adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico que deriva de un
tumor de ratón CC4-HD dependiente de progestina, en
donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y
progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso
PTA-891;
iii) una línea de célula MC7-L1
de las líneas de célula de adenocarcinoma mamario de ratón no
transgénico, que deriva de un tumor de ratón CC4-HI
independiente de progestina, en donde la línea de célula expresa los
receptores de estrógeno y progesterona y se deposita con el ATCC
como número de Acceso PTA-889.
Como se describe en la presente, el término
"agentes que pueden ser clínicamente relevantes en el tratamiento
del cáncer" comprende los compuestos o las moléculas que elicitan
una respuesta proliferativa para la unión de los receptores de
progesterona o estrógeno, tal como el acetato de medroxiprogesterona
o R5020, dietildilbestrol.
Como se describe en la presente,
"anti-hormona" comprende las moléculas o los
compuestos que actúan para inhibir la actividad proliferativa de
los compuestos arriba mencionados, por ejemplo la milepristona, ZK o
tamoxifen, raloxifen.
Como se describe en la presente, la línea de
célula'' comprende las células que derivaron inicialmente de un
tumor. Tales células tienen el crecimiento indefinido en el cultivo;
a diferencia de los cultivos primarios, que pueden ser mantenidos
solamente por un espacio de tiempo finito. Además, tales células
pueden formar preferiblemente los tumores después de que sean
inyectados en los animales singeneicos.
De acuerdo con la invención "Cáncer"
incluye los cánceres, en particular, el cáncer mamario.
Como se describe en la presente,
"proliferación celular" significa un aumento en el número de
células analizado por cualquier método conocido en el arte, por
ejemplo, la toma de la timidina ^{3}H, el ensayo de MTT, el ensayo
de MTS, relativo a un control sin tratamiento.
Como se describe en la presente, "el
crecimiento del tumor" incluye un aumento en el tamaño del tumor
y "el retroceso del tumor" incluye una reducción en la masa del
tumor.
Como se describe en la presente, "la línea de
tumor" incluye los tumores que expresan los niveles altos de ER
y PR, y se mantienen a través de los pasajes de serie singéneicos en
los ratones tratados con MPA o en los ratones no tratados.
Como se describe en la presente, RU es
mifepristona o RU38486; ZK es onapristona o ZK 98299.
La Figura 1 ilustra el efecto de MPA en la
proliferación de la línea de célula MC4-L1. El
índice de la toma de ^{3}H Timidina representa la proporción entre
el cpm del grupo experimental contra el grupo de control. Se muestra
el valor medio de los experimentos 3-15.
La Figura 2 ilustra el efecto del estradiol
(E_{2}) en la proliferación de la línea de célula
MC4-L1. El índice de la toma de la ^{3}H Timidina
representa la proporción entre el cpm del grupo experimental contra
el grupo de control. Se muestra el valor medio de los experimentos
3-15.
La Figura 3 ilustra el efecto de la
miefepristona en la proliferación de la línea de célula
MC4-L1. El índice de la toma de la ^{3}H Timidina
representa la proporción entre el cpm del grupo experimental contra
el grupo de control. Se muestra el valor medio de los experimentos
3-15.
La Figura 4 ilustra el efecto de ZK en la
proliferación de la línea de célula MC4-L1. El
índice de la toma de la ^{3}H Timidina representa la proporción
entre el cpm del grupo experimental contra el grupo de control. Se
muestra el valor medio de los experimentos 3-15.
La Figura 5 ilustra el efecto de TGF\beta1
(ng/ml) en la proliferación de la línea de célula
MC4-L1. El índice de la toma de la ^{3}H Timidina
representa la proporción entre el cpm del grupo experimental contra
el grupo de control. Se muestra el valor medio de los experimentos
3-15.
La Figura 6 ilustra el efecto de ICI en la
proliferación de la línea de célula MC4-L1. El
índice de la toma de la ^{3}H Timidina representa la proporción
entre el cpm del grupo experimental contra el grupo de control. Se
muestra el valor medio de los experimentos 3-15.
La Figura 7 ilustra el efecto de MPA en la
proliferación de la línea de célula MC4-L2. El
índice de la toma de la ^{3}H Timidina representa la proporción
entre el cpm del grupo experimental contra el grupo de control. Se
muestra el valor medio de los experimentos 3-15.
La Figura 8 ilustra el efecto de estradiol
(E_{2}) en la proliferación de la línea de célula
MC4-L2. El índice de la toma de la ^{3}H Timidina
representa la proporción entre el cpm del grupo experimental contra
el grupo de control. Se muestra el valor medio de los experimentos
3-15.
La Figura 9 ilustra el efecto de RU en la
proliferación de la línea de célula MC4-L2. El
índice de la toma de la ^{3}H Timidina representa la proporción
entre el cpm del grupo experimental contra el grupo de control. Se
muestra el valor medio de los experimentos 3-15.
La Figura 10 ilustra el efecto de ZK en la
proliferación de la línea de célula MC4-L2. El
índice de la toma de la ^{3}H Timidina representa la proporción
entre el cpm del grupo experimental contra el grupo de control. Se
muestra el valor medio de los experimentos.
La Figura 11 ilustra el efecto de ICI en la
proliferación de la línea de célula MC4-L2. El
índice de la toma de la ^{3}H Timidina representa la proporción
entre el cpm del grupo experimental contra el grupo de control. Se
muestra el valor medio de los experimentos 3-15.
La Figura 12 ilustra el efecto de TGF\beta 1
en la proliferación de la línea de célula MC4-L2. El
índice de la toma de la ^{3}H Timidina representa la proporción
entre el cpm del grupo experimental contra el grupo de control. Se
muestra el valor medio de los experimentos 3-15.
La Figura 13 ilustra el efecto de MPA en la
proliferación de la línea de célula MC7-L1. El
índice de la toma de la ^{3}H Timidina representa la proporción
entre el cpm del grupo experimental contra el grupo de control. Se
muestra el valor medio de los experimentos 3-15.
La Figura 14 ilustra el efecto del estradiol
(E_{2}) en la proliferación de la línea de célula
MC7-L1. El índice de la toma de la ^{3}H Timidina
representa la proporción entre el cpm del grupo experimental contra
el grupo de control. Se muestra el valor medio de los experimentos
3-15.
La Figura 15 ilustra el efecto de RU en la
proliferación de la línea de célula MC7-L1. El
índice de la toma de la ^{3}H- timidina representa la proporción
entre el cpm del grupo experimental contra el grupo de control. Se
muestra el valor medio de los experimentos 3-15.
La Figura 16 ilustra el efecto de ICI en la
proliferación de la línea de célula MC7-L1. El
índice de la toma de la ^{3}H- timidina representa la proporción
entre el cpm del grupo experimental contra el grupo de control. Se
muestra el valor medio de los experimentos 3-15.
La Figura 17 ilustra el tamaño del tumor
(mm^{2}) de la línea de célula MC4-L1 inoculada sc
en los ratones hembras BALB/c tratados o no con depósito sc MPA de
40 mg contralateral a la inoculación del tumor.
La Figura 18 ilustra el efecto de RU, E_{2} y
ZK en el tamaño del tumor (mm^{2}). Los ratones que sufren de los
tumores MC4-L1, de alrededor de 50 mm^{2} fueron
tratados diariamente con ZK (10 mg/Kg peso) o RU (6,4 mg/Kg peso) o
implantado con pastillas de moldeo silástica de 5 mg E_{2}.
La Figura 19 ilustra el efecto de RU en el
tamaño del tumor (mm^{2}). Los ratones que sufren tumores
MC4-L2 de alrededor de 50 mm^{2} fueron tratados
diariamente con RU (6,4 mg/kg).
La Figura 20 ilustra el efecto de RU, E2 y ZK en
el tamaño del tumor (mm^{2}). Los ratones que soportan los tumores
MC4-L3 de alrededor de 50 mm^{2} fueron tratados
diariamente con ZK (10 mg/Kg) o RU (6,4 mg/Kg) o implantados con 5
mg de pastillas de moldeo silástica E_{2}.
La invención se refiere a la generación de las
líneas de célula de adenocarcinoma mamario de los ratones que
expresan los receptores de estrógeno y progesterona como una
herramienta para estudiar el efecto de las hormonas, los compuestos
farmacológicos y los agentes ambientales. La presente invención
también se refiere a los métodos in vitro e in vivo
para probar las hormonas u otras moléculas relacionadas para la
proliferación de las células o la proliferación del tumor.
Los tejidos usados para establecer la línea de
células se obtuvieron de los adenocarcinomas
(CC4-HD) inducidos por MPA ductales dependientes de
progesterona: en el pasaje 60 se mantuvieron por el transplante
singeneico en los ratones tratados con MPA y también se obtuvo un
tumor PI (C7-HI) de un ratón tratado con MPA que se
mantuvo para el transplante singeneico en los ratones no tratados
hembras (Lanari y colaboradores, 1986; Molinolo y colaboradores,
1987). La diferencia principal entre ambas líneas de tumor puede
observarse en la Tabla 1. Los CC4-HD se originaron
del cultivo primario de C4-HD transplantados sc en
un ratón tratado con MPA.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
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El cultivo primario fue un cultivo enriquecido
epitelial. El medio es DMEM/F12 sin Fenol Rojo. Diez días después
de sembrar, las células llegaron a ser vacuidadas y algunas de ellas
empezaron a separarse; los fibroblastos que eran muy escasos en el
comienzo aumentaron en proporción. Durante los próximos
2-3 meses la presencia de células gigantescas
multi-nucleadas fue la característica más
visible.
Algunas fuentes fueron subcultivadas desde las
fuentes grandes a las fuentes más pequeñas. Las células que no se
unían durante la primera hora fueron transferidas a otra fuente, y
las células que no se unían en esta segunda fuente durante dos
horas fueron transferidas a otra fuente. Esto fue realizado para
quitar los fibroblastos. Curiosamente, las líneas de células
surgieron de los clusters epiteliales presentes en estas
poblaciones de célula de conexión rápida. Cinco o seis subcultivos
fueron realizados durante 3-4 meses, y en cada
subcultivo menos células fueron cosechadas. De 2 cultivos primarios
diferentes realizados de las líneas de tumor
CC4-HD, 3 líneas de células fueron desarrolladas,
una de ellas, MC4-L2, es un sublínea derivada de
MC4-L1. Un pequeño grupo de células del pasaje 7
MC4-L1 quedó conectada después de la tripsinización;
con el tiempo, estas células empezaron a crecer con un modelo
completamente diferente que aquel de las células parentales.
Un fenómeno semejante ocurrió con
MC7-L1. Las colonias de células gigantes pudieron
ser vistas también pero en este caso hubo una clase diferentes de
células inter-mezcladas con las células gigantes
"tipo fibroblastos" y la línea de célula surgió de las fuentes
donde el aspecto morfológico general fue de escasas células
epiteliales inter-mezcladas con una masa de células
tipo fibroblasto.
En resumen, 3 líneas surgieron de
CC4-HD y una de C7-HI.
Varias pruebas fueron usadas para caracterizar
las líneas de células resultantes. El origen de las cuatro líneas
de células fue evaluado por la inmunocitoquímica de los filamentos
intermedios y el manchado de la citoqueratina; y la expresión de
los receptores de la hormona por los ensayos inmuncitoquímicos y
bioquímicos.
Los medios y los componentes de los medios están
fácilmente disponibles y pueden ser obtenidos, por ejemplo de los
proveedores comerciales. Tales proveedores comerciales incluyen,
pero no están limitados a Gibco BRL (Gaitherberg, MD), Sigma
Bioscience (St. Louis, MO.), Gen S.A. (Buenos Aires) y otros
proveedores que fabrican los productos semejantes.
Las líneas de células de tumor pueden ser
usadas, por ejemplo, para controlar las hormonas y las moléculas
relacionadas tanto in vitro como in vivo.
La MC4-L1 fue la primera línea
obtenida de un tumor parental CC4-HD que presenta un
modelo PD del crecimiento del tumor. Las células varían en medida y
tienen forma epitelial, poligonal, típica. Las células gigantescas
están siempre presentes aún después de 70 subcultivos. La
MC4-L2 se originó en una de las fuentes del pasaje
del subcultivo octavo de MC4-L1. Después de la
tripsinización, las pocas células que permanecieron sin
desconectarse fueron dejadas con el medio como un back up en el
caso de contaminación. Después de un mes sin cambios del medio,
surgió una población morfológicamente diferente de célula. Estas
células con forma de eje, ahora nombradas como
MC4-L2, crecen como células aisladas, pero van
eventualmente a mancomunarse en acumulación cuando el cultivo está
sobre crecido. La NC4-L3 surgió de un cultivo
primario diferente realizado dos semanas después de uno que
originara dos líneas previas. Aunque su morfología se parezca a
aquella de MC4-L1, las células son más homogéneas en
la medida.
El MC7-L1 surgió de una línea de
tumor diferente in vivo, con un modelo PI del crecimiento del
tumor como el explicado previamente. Estas células son semejantes a
las células NC4-L2, con la morfología de la forma de
eje, aún más alargada que MC4-L2, y crecen también
como células únicas.
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Cuando estas células fueron inoculadas en los
ratones hembras BALB/c dieron origen a los carcinomas metastáticos.
La NC4-L1 origina carcinomas de infiltración ductal
con diferenciación cribiforme tubular. Las células proliferantes
chatas o poligonales muestran un núcleo pálido con una cromatina
floja y uno o dos núcleos pequeños. Las figuras mitóticas y
apoptóticas se detectan frecuentemente. La necrosis se encuentra
frecuentemente en el centro de las masas del tumor. El estroma es
escaso, denso y bien vascularizado. La metástasis pulmonar fue
discernida tres meses después de la inoculación del tumor,
invadiendo y destruyendo el tejido normal pulmonar.
Un cuadro completamente diferente es observado
con MC4-L2. Estas células ocasionan tumores
sarcomatoides que revelan la invasión local y la metástasis del
nódulo linfático y del pulmón. Se encuentran a menudo, células
fusiformes que infiltran el tejido muscular. Aunque ellas están bien
vascularizadas, el estroma es escaso y los grupos de células tipo
mastocito se encuentran en forma frecuente. Las células de
proliferación atípica muestran un núcleo gigante o son
multinucleadas. El foco de las células tipo epiteliales puede verse.
El manchado de citoqueratina confirmó su origen epitelial.
La NC4-L3 no mostró los signos
de la diferenciación glandular. La proliferación de las células
revela los núcleos ovoides con uno o con ningún nucléolo y
citoplasmas pálidos de tamaño variables. El estroma es abundante,
flojo, y fibroblástico. Las áreas de necrosis y trombosis pueden ser
observadas también.
El crecimiento de MC7-L1 in
vivo se parece a un carcinoma indiferenciado, con las células
poligonales que muestran citoplasmas eosinofílicos y densos,
ordenados en masas sólidas sin diferenciación estructural. Se
observaron células multinucleadas que muestran núcleos
hipercromaticos u ovoides atípicos. Un índice alto mitótico (más
grande que 20/ espacio 40 x) fue registrado. Estos tumores infiltran
también los tejidos vecinos y ocasionan metástasis lejanas. Las
metástasis pulmonares muestran una apariencia más epiteloide que el
tumor primario.
Todas las líneas de células, inclusive
MC4-L2 y MC7-L1 que mostraron una
morfología tipo fibroblastica, mostraron un manchado positivo
cuando reaccionaron con los anticuerpos de anticitoqueratina.
La morfología epitelial fue valorada también en
los tumores. Las cuatro líneas de células ocasionaron los tumores
que fueron positivos para la citoqueratinas. Otra vez puede
advertirse que MC4-L2 ocasionó tumores
sarcomatoides, tumores que son positivos para las citoqueratinas,
confirmando su origen epitelial.
Las líneas de célula de tumor de la invención
presente demuestran el manchado de citoqueratina sobre el manchado
histoquímico que usa un anticuerpo dirigido contra la citoqueratina.
Por consiguiente, la presente invención proporciona las líneas de
células preferidas incluyendo MC4L1, MC4-L2,
MC4-L3 y MC7-L1.
ER y PR fueron detectadas por los métodos
inmunocitoquímicos y bioquímicos. Todas las líneas de célula
mostraron un manchado nuclear intenso confirmado utilizando los
métodos bioquímicos por los puntos de saturación únicos.
Resultados similares se obtuvieron cuando se
estudiaron los tumores. Tanto los tumores primarios y sus
metástasis muestran el manchado nuclear intenso para ER y PR.
Las NC4-L1,
MC4-L2 y MC4-L3 mostraron un
manchado c-erbB2 intenso. Estos resultados están de
acuerdo con los resultados previos que muestran la amplificación de
c-erbB2 en la línea del tumor C4-HD
parental (Balaña, MI y colaboradores 1999 Oncogene 18:
6370-6379).
Las células NC4-L1 y las células
NC4-L3 muestran una adhesión fuerte al plástico,
desde que toma más de 10 minutos la separación después del
tratamiento de tripsina. Por contraste, las NC4-L2 y
MC7-L1 se separan fácilmente sólo unos pocos
segundos después del tratamiento de tripsina o aún sin solución
enzimática, simplemente sacudiendo.
En una realización de la invención la respuesta
de las células a una progestina: MPA, un estrógeno: E_{2}, 2
antiprogestinas: RU, ZK, un antiestrógeno: ICI y TGF\beta1 fueron
estudiados usando el actual protocolo. Estos métodos son bien
conocidos por aquellas personas de habilidad común en el arte.
En pasajes tempranos un efecto estimulatorio de
MPA, RU y E2 se observó para la MC4-L1. En los
pasajes posteriores el efecto estimulatorio de MPA fue sólo
evidente (P<0,05) con concentraciones de uM de MPA (Figura 1).
En los pasajes tempranos (antes del número de pasaje 16) la célula
E2 estimuló la proliferación mientras que en los pasajes
posteriores no se detectó ningún efecto importante (Figura 2). RU
tuvo un efecto agonista en los pasajes tempranos y en los pasajes
tardíos fue similar a aquel de MPA (Figura 3).
ZK estimuló también la proliferación de la
célula a concentraciones \muM (Figura 4).
ICI y TGF\beta1 se ensayaron sólo usando los
pasajes posteriores. TGF\beta1 mostró una inhibición
significativa del crecimiento de la célula (Figura 5) mientras que
ICI no tuvo efecto o ejerció ocasionalmente un efecto proliferativo
(Figura 6).
En esta línea un efecto significativo
estimulatorio fue observado con la oscilación de la concentración
de MPA desde 0,1 nM a acerca de 10 nM (Figura 7). E_{2} estimuló
la proliferación de la célula en concentraciones que oscilan desde
cerca de 0,1 nM a cerca de 10 nM (Figura 8).
RU no indujo ningún cambio (Figura 9) y ZK en
algunos experimentos mostró un efecto inhibitorio cuando se usó en
concentraciones de cerca de 0,1 a cerca de 1 \muM (Figura 10). ICI
fue inhibitorio en las concentraciones de \muM (Figura 11) y
TGF\beta1 mostró un efecto inhibitorio semejante como el observado
usando la línea de célula MC4-L1 (Figura 12).
Ningún efecto regulatorio de hormonas ni anti
hormonas usadas se observaron en las condiciones experimentales en
las que las otras línea de células mostraron los efectos
informados.
Esta fue la línea más interesante considerando
la respuesta de la hormona in vitro. MPA estimula
apreciablemente el crecimiento de la célula usando alrededor de 1 nM
a cerca de concentraciones de 1 \muM (Figura 13). E_{2} también
estimuló la proliferación de la célula a 100 nM hasta 1 \muM pero
los valores más altos fueron preferentemente obtenidos alrededor de
las concentraciones de 1 nM (Figura 14). RU ejerció también un
efecto estimulatorio, que fue importante en concentraciones de cerca
de 0,1 a cerca de 1 \muM (Figura 15). Por otro lado, ZK no
modificó la toma de timidina. ICI ejerció un efecto inhibitorio en
concentraciones de cerca de 0,1 a acerca de 1 \muM (Figura 16) y
TGF\beta1 no tuvo ningún efecto.
En resumen, las líneas de célula de forma de eje
MC4-L2 y MC7-L1 fueron aquellas que
mostraron la respuesta mayor proliferativa a ambos MPA como a
E_{2}, y la respuesta inhibitoria a ICI, fue luego más sensible.
Por otro lado, MC4L2 es sensible a
TGF\beta1-mientras MC7-L1 no es
sensible. Esta es la diferencia más significativa encontrada entre
ambas líneas. Las líneas de célula de forma poligonal fueron menos
sensibles a todas las hormonas y anti hormonas en las mismas
condiciones experimentales aunque ambas líneas de células
(LMC4-1 y MC4-L3) fueron inhibidas
con TGF\beta1.
Para los fines de la presente invención la
proliferación de las líneas de células puede ser interpretada y
medida por la toma de las líneas de células de los nucleótidos
modificados, tales como y no limitados a
^{3}H-timidina, ^{125}IUDR (iododeoxiuridinea);
y tinturas tales como bromuro de
3-(4,5-dimetiltiazol-2-ilo)-2,5-difeniltetrazolium
(MTT) que mancha las células vivas.
La MC4-L1 fue inoculada en los
animales tratados con MPA y los animales no tratados. Como se
muestra en la Figura 17, el mismo modelo de crecimiento que se
observó en la línea de tumor parental se observó aquí. Cuando se
inoculó un subcultivo posterior (subcultivo 70), los tumores
crecieron con un modelo similar en los animales tratados y los
animales no tratados, aunque en el próximo pasaje el crecimiento
estuvo favorecido en los animales tratados con MPA, y en el tercer
pasaje, los tumores fueron otra vez dependientes de MPA. Un modelo
de PI de crecimiento se observó con las líneas de
NC4-L2 y MC7-L1, mientras un modelo
de PD caracterizó la línea MC4-L3.
Los animales que soportan los tumores
MC4-L1, que crecen muy lentamente debido a la
ausencia de MPA, fueron tratados con E2, RU y ZK como se menciona
en el ejemplo 8. Solamente los animales tratados con ZK mostraron el
retroceso del tumor (Figura 18).
En MC4-L2, una completa
regresión fue observada en animales tratados con RU (Figura 19). El
retroceso completo fue observado en la línea de tumor
MC4-L3 usando cualquiera de los tres agentes RU, ZK
o E2. Como se puede observar en la Figura 20, la línea del tumor
MC7-L1 no fue inhibida por RU, ni tampoco por ZK, ni
por E_{2}.
En resumen, las células con forma de eje
(MC4-L2 y MC7-L1), cuando se
transplantaron en los ratones singeneicos, ocasionaron los tumores
PI, mientras las líneas de células poligonales (LMC4- 1 y
MC4-L3) ocasionaron los tumores PD. Las células con
forma de eje respondieron en forma diferente al tratamiento de la
hormona; mientras la MC4-L2 fue inhibida por RU,
MC7-L1 fue resistente a todos los tratamientos.
Además, las células poligonales mostraron un modelo diferente de
respuesta: mientras MC4-L1 retrocedió solo con el
tratamiento de ZK, las células MC4-L3 retrocedieron
con ZK, RU y E_{2}.
Una persona experta en la técnica también está
enterada de los medios para monitorear una respuesta terapéutica
sobre la administración de la hormona o las moléculas relacionadas.
En particular, la respuesta terapéutica puede ser calculada por el
monitoreo parcial o completo de la regresión del tumor y/o la
cantidad de metastasis y/o supervivencia. La atenuación del
crecimiento del tumor o el retroceso del tumor en respuesta al
tratamiento puede ser monitoreada usando varios puntos terminales
conocidos por aquellas personas expertas en la técnica, incluyendo,
por ejemplo, la masa o la medida del tumor, la reducción/prevención
de la metástasis o la prolongación de la supervivencia. Estos
métodos descriptos no están por ningún medio todos incluidos, y
otros métodos para adecuarse a la aplicación específica serán
evidentes para la persona de conocimiento común en la técnica.
El número modal de cada línea se muestra en la
Tabla 2. Estos fueron evaluados en los pasajes 18-22
de cada línea de célula. MC4-L2 muestra dos números
modales. Los marcadores citogenéticos semejantes han sido detectados
en todas las líneas y están siendo caracterizados.
Los inventores han desarrollado cuatro
diferentes líneas de células mamarias de ratón originadas en dos
diferentes líneas de tumor in vivo que expresan ER y PR.
Estas son las primeras líneas de células de adenocarcinoma mamario
de ratón expresan ER y PR y son sensibles a la hormona, excluyendo
las líneas originadas en los ratones transgénicos (Sacco MG y
colaboradores 1998 Breast Cancer Res y Trat.
47:171-180).
Tres entre cuatro líneas derivadas de la misma
línea de tumor in vivo y dos entre tres del mismo cultivo
primario. Estas líneas han sido descritas independientemente porque
tienen propiedades diferentes con respecto a la morfología, la
dependencia de la hormona y el análisis cariotípico. Dos líneas
tienen la morfología poligonal (LMC4- 1 y MC4-L3) y
las otras dos son células con forma de eje (MC4-L2 y
MC7-L1). Un modelo diferente de invasión y
metástasis fue observado asociado a estos tipos de morfología. Esto
puede hacer que las líneas sean útiles para evaluar la relación
entre la sensibilidad de la hormona, la invasión y las
metástasis.
Las líneas formadas poligonales mostraron un
modelo de crecimiento sensible a MPA cuando se inocularon en los
ratones singeneicos, mientras que las células con forma de eje
crecieron en forma similar en los ratones tratados o sin
tratamiento. El efecto contrario fue observado en los estudios in
vitro. Las células con forma de eje fueron estimuladas con MPA
y con E_{2}; en las células poligonales el efecto estimulatorio
fue encontrado sólo en los pasajes tempranos.
El tratamiento con antiprogestina in
vitro produjo resultados inesperados: RU actuó como un agonista
en altas concentraciones (de acerca de 100 nM a acerca de 1 \muM),
en los experimentos donde MPA fue proliferativa mientras ZK no tuvo
efectos ni fue ligeramente inhibitoria en altas concentraciones (1
\muM). El ICI antiestrógeno fue inhibitorio en las líneas de
células con forma de eje en las concentraciones de \muM.
El tratamiento in vivo con
antiprogestinas dio respuestas diferentes a aquellas obtenidas en
los estudios in vitro: una diferencia entre
MC7-L1 y MC4-L2 fue evidente:
mientras MC7-L1 fue insensible a RU, ZK y E_{2}.
MC4-L2 fue inhibida por RU. Los tumores
MC4-L1 retrocedieron sólo con ZK mientras en RU
MC4-L3, ZK y E_{2} indujeron el retroceso del
tumor. TGF\beta1 indujo inhibición en todas las líneas de células
menos en MC7-L1.
Todos estos datos referentes a la receptividad
de hormona indican que este panel de líneas de células son
particularmente interesantes para estudiar la acción de la hormona y
así evaluar el papel de los compuestos farmacológicos nuevos, o
para probar la presencia de xeno-estrógenos y otros
agentes ambientales. Todas las líneas comparten la misma propiedad:
su origen semejante y la presencia de tanto los receptores de
estrógeno como de progesterona. A pesar de esto, cada una tiene
características individuales que pueden considerarlas apropiadas
para diferentes líneas de investigación.
La acción de las hormonas esteroides ha sido
simplificada demasiado durante muchos años. En los últimos años,
los efectos no clásicos diferentes de las hormonas está siendo
considerado y estos efectos incluyen, por ejemplo, acciones en el
nivel de la membrana. El hecho de que en los estudios in
vitro las antiprogestinas puedan actuar como agonistas en vez
de ser antagonistas, y que los efectos contrarios se obtienen cuando
se administra in vivo, esto hace de este panel de líneas de
célula una herramienta excelente para estudiar los efectos in
vivo de las hormonas contra los efectos in vitros. Esta
es una de las mejores ventajas de este panel de líneas de células.
Los experimentos in vivo pueden ser fácilmente llevados a
cabo. Generalmente, las líneas de células humanas deben ser
inoculadas en los animales inmuno-deficientes para
evitar el rechazo. Esta es la mejor aproximación a la situación
clínica aunque hay diferencias obvias entre esta situación
experimental y la inoculación de las células de la presente
invención en los ratones singeneicos.
Esta invención es adicionalmente ilustrada por
los ejemplos siguientes, que no deben ser interpretados de ninguna
manera como que imponen limitaciones sobre el alcance de los mismos.
Por el contrario se debe entender claramente que se debe tener el
recurso para varias otras realizaciones, modificaciones y
equivalentes de las mismas, que luego de leer la descripción del
presente, se le pueden sugerir a aquellos expertos en la técnica
sin alejarse del espíritu de la presente invención y/o del alance de
las reivindicaciones del apéndice.
Los tumores fueron quitados asépticamente,
fueron picados y fueron lavados con DMEM/F12 (medio de Tagle
modificado de Dulbecco: F12 de Ham, 1:1, sin fenol rojo, 100 U/ml de
penicilina y 100 \mug/ml de estreptomicina). El tejido fue
suspendido en 5 ml de solución enzimática (Tripsina: 2,5 mg/ml,
albúmina: 5 mg/ml y colagenasa Tipo II 850 U/ml en fosfato salino
amortiguado (PBS) y se incubaron a 37ºC por 20 min., bajo batido
continuo. La fase líquida de la suspensión entonces fue quitada y
el tejido no digerido se incubó por unos 20 min. adicionales, con
solución nueva enzimática. La acción de la enzima fue detenida
agregando medio de lavado (WM) (DM EM/F12 +5% de FCS (Gen S.A.
Buenos Aires). Las células epiteliales y las células fibroblásticas
fueron separadas por una modificación de la técnica de
sedimentación descripta previamente (Dran y colaboradores, 1995).
Brevemente, la suspensión de la célula obtenida fue resuspendida en
15 ml de medio de fibroblasto (FM) (DM EM/F12 + 10% de calor
desactivado FCS) y se permitió sedimentar durante 20 min. Los 5 ml
superiores, correspondientes a la fracción fibroblástica, se
sembraron en frascos y se permitió que las células se unieran
durante 1-2 horas después de que el medio que
contenía las células no unidas se quitara y se reemplazara por FM
nuevo. Las células sedimentadas corresponden a la fracción
epitelial enriquecida, que fue resuspendida otra vez en 15 ml de WM
y permitió que sedimente durante otros 20 minutos. Los 15 ml
superiores se descartaron y este procedimiento se repitió 10 veces
más o menos hasta que los fibroblastos fueron detectados en el
superviviente. Las células fueron plaqueadas en frascos de cultivo
con medio epitelial (EM (DMEM/F12 + 5% chFCS) y se permitió que se
unieran durante 24-48 horas. El medio fue luego
quitado y reemplazado por medio nuevo conteniendo
10-8 M MPA. El medio fue cambiado durante
2-3 días. En la confluencia, o cuando los clusters
de la célula parecieron superpoblados las células fueron separadas
con 0,25% de tripsina, se lavaron y se resuspendieron en EM fresco.
La suspensión resultante fue usada en diferentes ensayos.
El tejido usado para establecer las líneas de
células se obtuvo del tumor inducido por MPA, un carcinoma PD
(CC4-HD) en el pasaje 60, mantenido por transplante
singeneico en los ratones tratados con MPA y un tumor PI
(C7-HI) se mantuvo por el transplante singeneico en
los ratones hembras no tratados.
Los cultivos enriquecidos epiteliales que crecen
en la presentencia de DMEM/7F12 (Sigma Chemicals Co, S. Louis MO) y
5% de chFCS (Gen S.A. Buenos Aires) y 10 nM MPA (Sigma Chemical Co,
St. Louis MO) ahora se hicieron crecer en el mismo medio con el
agregado del 10% de FCS (Life Technologies, Inc, Grand Island, NY),
glutamina 2 mM (Life Technologies), insulina bovina (2 \mug/ml)
(Life Technologies, Inc, Grand Island, Grand Island, NY) penicilina
100 U/ml estreptomicina 100 \mug/ml Amfotericina B (Life
Technologies, Inc Grand Island, NY) Tiroxina (10 nM) (Sigma
Chemical Co, St. Louis MO), cortisol (0,3 \muM)(Sigma Chemical Co,
St. Louis MO), transferrin (10 ng/Ml) (Sigma Chemical Co, St. Louis
MO) y 10 nM MPA (Sigma Chemical Co, St. Louis MO). Después de 10
días del sembrado, las células se volvieron vacuidadas y algunas de
ellas comenzaron a separarse; los fibroblastos, que fueron muy
escasos al comienzo, aumentaron en proporción.
Algunas fuentes fueron subcultivadas de las
fuentes grandes a las más pequeñas. Esto significa de una fuente de
una placa de 6 fuentes a una fuente de una placa de 24 fuentes. Las
células que no se unieron para la primera hora fueron luego
transferidas a otra fuente, y las células que no se conectaron en
esta segunda fuente durante dos horas fueron luego transferidas a
otra fuente. Esto fue realizado para quitar los fibroblastos.
Curiosamente, las líneas de células se levantaron de los clusters
epiteliales presentes en estas poblaciones de célula rápidamente
conectadas. Cinco o seis sub cultivos se llevaron a cabo durante
3-4 meses, y en cada sub-cultivo
menos células fueron cosechadas. De 2 diferentes cultivos primarios
llevados a cabo en las líneas del tumor CC4-HD, 3
líneas de células se desarrollaron, una de ellas
MC4-L2 es una sub-línea derivada de
MC4-L1. Un pequeño grupo de células del pasaje 7 de
MC4-L1 permaneció conectado después de la
tripsinización, y con el tiempo estas células comenzaron a crecer
con modelos completamente diferentes que aquel de las células
parentales.
Un fenómeno semejante fue observado con
MC7-L1. Las colonias de células gigantescas pueden
también ser vistas pero en este caso, existe una clase diferente de
células, entremezcladas con las células tipo fibroblásticas
gigantes y la línea de célula surgieron de las fuentes donde el
aspecto general morfológico fue de células epiteliales escasas
inter-mezcladas con una masa de células tipo
fibroblastos.
Las líneas de células han sido por más de 27
meses y mantienen las mismas características.
El duplicado del tiempo de las líneas de células
se determinó por el plaqueado de las células en placas de 6 fuentes
a 20.000 células/fuente y contando fuentes duplicadas a las 9 am y a
las 5 pm durante una semana. Duplicar los tiempos fue calculado de
las fases log de las curvas del crecimiento.
Las líneas de célula fueron crecidas en
deslizadores de cámara de 8 fuentes. Los deslizadores fueron
preparados para manchar enjuagando tres veces en PBS, fijando
durante 45 min. en formalina amortiguada al 15% y secando hasta
usarlo. El tejido del tumor fue fijado en formalina amortiguada por
ER, PR y c-erbB2, o por etanol para citoqueratinas
en dilución 1:1000 y embebida en parafina por métodos estándar. Las
secciones de 4 \mum fueron cortadas y manchadas con H&E por
los métodos estándar. El inmuno-manchado por la
citoqueratina fue llevado a cabo utilizando anticuerpo policlonal
de conejo Z0622 (Dako Corp., Carpinteria, CA). Los anticuerpos de
conejo policlonales ER (1:50 en tejidos y 1:100 deslizador de
cámara) y PR (1:100 en el tejido y 1: 200 deslizador de cámara)
fueron obtenidos de Santa Cruz Biotechnology Inc, Santa Cruz CA y el
anticuerpo monoclonal PR (1: 250 deslizador de cámara) fue obtenido
de Neomarkers. El manchado se visualizó usando el sistema
inmunoperoxidasa Vectastin Elite ABC (Vector Laboratories,
Burlingame, CA) y equipo de sustrato 3,3' de peroxidasa
diaminobenzidina (Vector Laboratories Burlingame CA). Las células
fueron contra manchadas con tintura hematoxilin débil. El anticuerpo
primario fue reemplazado con suero de conejo normal para controles
negativos.
\vskip1.000000\baselineskip
Las células fueron tripsinizadas y resuspendidas
en un exceso de 10 dobleces de medio de cultivo y 10% FCS. Después
de que las células de la centrifugación fueran resuspendidas en el
medio libre de suero y las células 10^{6} fueron inyectadas sc en
un volumen final de 0,1 ml usando una aguja de calibre 21 en el
flanco inguinal derecho de los ratones BALB/c que habían sido
inoculados cintralateralmente con depósito de MPA de 40 mg (Dador
Laboratories, Buenos Aires). Los ratones fueron examinados cada tres
días por el desarrollo de tumores palpables. A fines del
experimento se mataron los animales y los tumores se extirparon. Se
realizaron autopsias completas para discernir la presencia de
metástasis. El cuidado animal fue de acuerdo con las pautas
institucionales.
\vskip1.000000\baselineskip
Las células semi confluentes fueron expuestas a
1 \mug/ml colcemid durante 2 hs a 37ºC, y entonces se separaron
con tripsina. El tratamiento hipotónico se llevó a cabo en cloruro
de potasio 0,075 M durante 10 minutos y se fijaron las células con
ácido acético metanol-glacial de 3:1. Los
deslizadores fueron manchados con 3% de Giemsa para el examen
morfológico y el conteo de los cromosomas. El agrupamiento G fue
llevado a cabo calentando a 60ºC durante toda la noche y manchando
con tintura Wright nuevamente diluida en fosfato amortiguado 1:3, pH
6,8.
\vskip1.000000\baselineskip
La presencia de ER y PR fue evaluada por
inmunocitoquímica tal como se describió anteriormente, y por la
unión de ligando usando toda la técnica de la célula en los puntos
de saturación única (Dran y colaboradores, 1995 supra).
\vskip1.000000\baselineskip
Se evaluaron las respuestas de diferentes líneas
de células a MPA, E_{2}, RU, ZK o TGF\beta1.
La ingesta de ^{3}H-timidina:
en una microplaca de 96 fuentes, se sembraron 0,1 ml/fuente de una
suspensión de célula en EM a una concentración de 10^{5} cel/ml.
Después de la fijación (24 hs), las células fueran incubadas
durante 72 hs con las soluciones experimentales a ser probadas, La
mitad de los medios se cambió cada 24 horas. Las células fueron
incubadas con 0,4 \muCi de timidina
^{3}H-timidina (actividad específica: 20 Ci/mmol)
durante 24 horas, tripsinizadas y cosechadas en un cosechador de
célula. Se contaron los filtros en un contador de centelleo
líquido. Se llevaron a cabo los ensayos en octuplicados y el medio
y la desviación estándar fueron calculados para cada solución
probada, La diferencia entre los controles y los grupos
experimentales fue analizada por ANOVA seguido por la prueba de
Dunnet entre los grupos.
Las células de diferentes líneas fueron
inoculadas en los ratones hembras BALB/c tratados o no con MPA como
se describió previamente. Si los tumores crecían en forma similar en
los animales tratados y en los animales no tratados, los tumores
que crecían en los ratones no tratados se utilizaron para el pasaje
siguiente. Los tumores fueron trasplantados por trocar sc en el
flanco inguinal derecho de los ratones BALB/c hembras de dos meses
de vida, Los tratamientos hormonales se iniciaron cuando los tumores
alcanzaron alrededor de 50 mm^{2}. RU (6,5 mg/kg peso corporal) y
ZK (10 mg/kg peso corporal) fueron inoculados diariamente con
inyecciones sc. Se administró E_{2} como pastillas de moldeo
silasticas de 5 mg implantadas sc. El crecimiento del tumor se midió
cada 2-3 días.
Varias modificaciones de la invención además de
aquellas mostradas y descriptas en el presente serán evidentes para
aquellas personas expertas en la técnica de la descripción que
antecede. Tales modificaciones se intentan también que caigan
dentro del alcance de las reivindicaciones del apéndice.
Claims (7)
1. Una línea de célula MC4-L2
de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico, que tiene el
número de Acceso de ATCC PTA-892, la línea de célula
para ser obtenida subclonando la línea de célula
MC4-L1 que deriva de un tumor de ratón
CC4-HD dependiente de progestina.
2. Un sistema de línea de célula para probar la
actividad de las hormonas, los compuestos antihormonas,
farmacológicos y los agentes ambientales, en donde el sistema
comprende por lo menos las líneas de células de la Reivindicación
1.
3. El sistema de línea de célula de la
Reivindicación 2, donde el sistema comprende una o más de las líneas
de células escogidas del grupo que consiste en:
- i)
- una línea de célula de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico MC4-L1, que deriva de un tumor de ratón CC4-HD dependiente de progestina, en donde la línea de célula expresa los receptores de progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso PTA-889;
- ii)
- una línea de célula MC4-L3 de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico, que deriva de un tumor de ratón CC4-HD dependiente de progestina, donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso PTA-891;
- iii)
- una línea de célula MC7-L1 de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico que deriva de un tumor de ratón C7-HI independiente de progestina, en donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y progesterona y es depositada con el ATCC como número de Acceso PTA-890.
4. Un método in vitro para probar la
actividad de la hormona, los compuestos
anti-hormona, farmacológicos o los agentes
ambientales, que comprende los pasos de cultivar un línea de célula,
en donde la línea de célula comprende la línea de célula de la
Reivindicación 1.
5. El método in vitro de la
reivindicación 4, en donde la línea de célula comprende una o más de
las líneas de células escogidas del grupo que consiste de:
- i)
- una línea de célula de las líneas de célula MC7-L1 de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico que deriva de un tumor de ratón C7-HI independiente de progetina en donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso PTA-890;
- ii)
- una línea de célula MC4-L3 de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico que deriva de un tumor de ratón CC4-HD dependiente de progestina, en donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso PTA-891;
- iii)
- una línea de célula de las líneas de célula MC4-L1 de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico, que deriva de un tumor de ratón CC4-HD dependiente de progestina, en donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso PTA-889.
6. Un equipo de prueba para determinar el
efecto de la hormona, los compuestos anti-hormona,
farmacológicos y los agentes ambientales, en donde el equipo
comprende una alícuota de la línea de célula de la reivindicación 1
y los medios para evaluar la proliferación de la línea de
célula.
7. El equipo de prueba de la reivindicación 6,
en donde el equipo comprende una alícuota de cada una o más de las
líneas de células escogidas del grupo que consiste de:
- i)
- un línea de célula MC4-L1 de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico que deriva de un tumor de ratón CC4-HD independiente de progestina en donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso PTA-890;
- ii)
- una línea de célula MC4-L3 de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico que deriva de un tumor de ratón CC4-HD dependiente de progestina, en donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso PTA-891;
- iii)
- una línea de célula de las líneas de célula MC7-L1 de adenocarcinoma mamario de ratón no transgénico, que deriva de un tumor de ratón CC4-HI independiente de progestina, en donde la línea de célula expresa los receptores de estrógeno y progesterona y se deposita con el ATCC como número de Acceso PTA-889.
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