ES2310037T3 - Metodo y dispositivo para separar magneticamente particulas seleccionadas, en particular, celulas biologicas. - Google Patents

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Abstract

Método para separar magnéticamente partículas objetivo de un tipo seleccionado a partir de una muestra con el fin de obtener una concentración de partículas objetivo de la muestra o un empobrecimiento de la muestra en cuanto a partículas objetivo, el cual está compuesto por los siguientes pasos: la obtención (en un contenedor 10) de una mezcla de muestra de dichas partículas magnéticas con una afinidad selectiva para marcar magnéticamente dichas partículas objetivo; la introducción de un líquido tampón a través de un tubo (12) que incluye una entrada que puede conectarse a una fuente de líquido tampón (11), y una salida para el líquido tampón; después de introducir un flujo de dicho líquido tampón a través de dicho tubo (12), la introducción de la mezcla de muestra en el líquido tampón que fluye a través de dicho tubo de tal manera que el líquido tampón forme un portador líquido continuo para dicha mezcla de muestra cuando ambos se introducen a través de dicho tubo; y la aplicación de un campo magnético a través de dicho tubo (12) en una estación de magnetización (13) para conseguir que las partículas marcadas magnéticamente mencionadas se separen y queden retenidas en el líquido tampón dentro del tubo de la estación de magnetización; caracterizado por el hecho de que dicho tubo (12) en la zona de la estación de magnetización (13) posee una forma alargada en zigzag formando varios tramos (12a-12f) paralelos interconectados; y por el hecho de que dicho campo magnético se genera mediante imanes (33, 35) montados sobre elementos centrales magnetizables que definen un circuito magnético cerrado que incluye un primer entrehierro entre los imanes y un segundo entrehierro entre los elementos centrales magnetizables, pasando el citado tubo a través de los dos entrehierros, y por el hecho de que se prevé un circuito magnético cerrado para cada tramo (12a-12g) del tubo de alimentación.

Description

Método y dispositivo para separar magnéticamente partículas seleccionadas, en particular, células biológicas.
El presente invento hace referencia a un método y a un dispositivo para separar magnéticamente partículas de un tipo determinado (en adelante, denominadas "partículas objetivo") a partir de una muestra según las reivindicaciones 1 y 13 respectivamente.
El invento resulta especialmente útil para separar magnéticamente células biológicas de un tipo seleccionado, por ejemplo, un tipo seleccionado de linfocitos presentes en una muestra de sangre y, por tanto, en adelante el invento se describirá teniendo en cuenta dichas aplicaciones.
Existe bibliografía que describe un gran número de aplicaciones relacionadas con la separación magnética de células biológicas, como es el caso de la patente estadounidense 4.710.472 y las muchas publicaciones que se citan en dicho documento. En muchas de estas aplicaciones no sólo es preciso separar uno o varios tipos de células (en adelante, denominadas "células objetivo"), sino también mantener la calidad de las membranas celulares de las células objetivo y/o de las células no objetivo. Por consiguiente, en un proceso de selección positiva, las células objetivo se separan de una muestra para su examen o se utilizan en investigación o con finalidades diagnósticas o clínicas; mientras que en un proceso de empobrecimiento, se empobrecen las células objetivo de la muestra para examinar o utilizar las células no objetivo. La separación de las células objetivo de las células no objetivo y la conservación de las membranas de ambos tipos de células son aspectos fundamentales en las investigaciones actuales sobre poblaciones de linfocitos y su función en la detección prematura del cáncer.
Una técnica que se emplea en la actualidad para separar células biológicas utiliza las Columnas de Separación MiniMACS (Miltenyi Biotec GmbH). Esta técnica se sirve de microesferas paramagnéticas extremadamente pequeñas, de unos 50 nm de diámetro, es decir, aproximadamente un millón de veces más pequeñas en volumen que las células eucatióticas en comparación con el tamaño de un virus. Dichas microesferas magnéticas se fabrican con afinidades selectivas para determinadas células, es decir, las células objetivo, de tal modo que marcan magnéticamente las células objetivo. La muestra se introduce en una columna de separación magnética provista de un cuerpo magnético permeable a los líquidos, por ejemplo, malla o lana de acero, y se aplica un campo magnético a través de la columna de tal forma que las células marcadas magnéticamente quedan retenidas en el cuerpo magnético permeable al líquido, mientras que las células no marcadas pasan a través de la columna. Sin embargo, en este proceso conocido, se descubrió que las membranas de las células quedaban muy dañadas por culpa del cuerpo magnético permeable a los líquidos, lo cual reducía la efectividad de la técnica para la investigación o finalidades clínicas.
La patente US-A-4.738.733 hace referencia a un separador de partículas magnetizables que consiste en una unidad de aplicación para la aplicación y el transporte de la muestra y el tampón, una unidad separadora de plástico o vidrio para la extracción de las partículas magnetizables y una unidad recolectora. La unidad separadora está provista de uno o varios electroimanes que, gracias a su fuerza magnética, son capaces de retener las partículas magnetizables en la unidad separadora.
La patente US-A-5.711.871 hace referencia a dispositivos de separación magnética mejorados destinados a procedimientos de separación magnética. Los dispositivos de separación mejorados contienen matrices que proporcionan poros o canales uniformes que reducen la cantidad de aire y de sustancias no objetivo que se quedan atrapados, disminuyendo la pérdida de sustancias objetivo mediante disrupción mecánica. Las células objetivo, procedentes de varios sistemas y órganos, u otras células biológicas objetivo se marcan junto con un elemento de unión específico adecuado, y se aíslan utilizando el dispositivo y los métodos del presente documento. En su forma más sencilla, el sistema de separación de células del presente documento posee dos componentes principales: un separador magnético y un reactivo separador de células. Un tipo de dispositivo de separación más complejo consta de pasajes para líquidos, contenedores de recolección y almacenamiento y una columna de separación. El conjunto de circuitos del líquido puede realizarse con válvulas integradas, o bien las válvulas pueden aplicarse externamente a los conductos del líquido.
La patente US-A-4.904.391 describe un sistema mejorado para extraer células de médula ósea en el cual las células se unen con anticuerpos monoclonales conjugados con partículas magnéticas, dicho sistema comprende una cámara provista de entradas y salidas para dejar pasar por la cámara una muestra líquida que contenga médula ósea y anticuerpos magnéticos conjugados unidos a las células, así como una fuente de campo magnético asociada a la cámara; donde la mejora comprende un campo magnético no uniforme con una pendiente ascendente desde la entrada a la salida.
El método de separación magnética de partículas objetivo se define en la reivindicación 1 del presente invento. El dispositivo para separar magnéticamente partículas objetivo se define en la reivindicación 13 del presente invento.
Es un objetivo del presente invento proporcionar un método para separar magnéticamente partículas objetivo de un tipo seleccionado a partir de una muestra de tal manera que afecte en menor grado a las membranas que la técnica conocida mencionada. Otro de los objetivos del presente invento consiste en proporcionar un dispositivo para separar magnéticamente partículas objetivo de conformidad con el método novedoso.
\newpage
Según uno de los aspectos del presente invento, se proporciona un método para separar magnéticamente partículas objetivo de un tipo seleccionado a partir de una muestra con el fin de crear una concentración de partículas objetivo en la muestra o empobrecer la muestra de partículas objetivo, el cual está compuesto de los siguientes pasos: crear una mezcla de muestra con partículas magnéticas con una afinidad selectiva para marcar las partículas objetivo; añadir un líquido tampón a través de un tubo que cuenta con una entrada que puede conectarse a una fuente de líquido tampón y una salida para dicho líquido tampón; introducir la mezcla de muestra en el líquido tampón de tal manera que dicho líquido tampón forme un portador líquido continuo para la mezcla de muestra a medida que ambas sustancias se introducen en el tubo; y aplicar un campo magnético a través del tubo en una estación de magnetización ubicada en su interior para hacer que las partículas objetivo marcadas magnéticamente se separen y queden retenidas en el líquido tampón dentro del tubo en la estación de magnetización. Dicho método resulta especialmente útil en caso de un proceso de empobrecimiento, en el que se empobrece la muestra de partículas objetivo para realizar un examen diagnóstico, una investigación, o bien con finalidades clínicas.
Según otras características enumeradas en las formas de realización preferentes aquí descritas, las partículas objetivo marcadas magnéticamente de la mezcla de muestra, que se separan y quedan retenidas en el líquido tampón en la estación de magnetización del tubo, a continuación se extraen del tubo al dejar de introducir mezcla de muestra en el líquido tampón y de aplicar el campo magnético a través del tubo, mientras se añade líquido tampón por el tubo para eliminar las partículas objetivo marcadas magnéticamente con el líquido tampón. Este método es especialmente útil en un proceso de selección positiva, donde las partículas objetivo deben separarse para utilizarse en exámenes diagnósticos, investigaciones, o bien con finalidades clínicas.
Según otro aspecto del presente invento, se proporciona un dispositivo para separar magnéticamente partículas objetivo de un tipo seleccionado a partir de una muestra con el fin de crear una concentración de partículas objetivo en la muestra o de empobrecer la muestra en lo que respecta a partículas objetivo, el cual comprende: un tubo para introducir un líquido tampón procedente de un suministro de líquido tampón desde un extremo de entrada del tubo hacia un extremo de salida del tubo; un orificio de entrada para introducir en el tubo líquido tampón y una mezcla de muestra con partículas magnéticas con una afinidad selectiva para marcar magnéticamente las partículas objetivo, de tal manera que el líquido tampón forme un portador líquido continuo para las partículas objetivo marcadas magnéticamente a medida que se introduce el líquido tampón por el tubo; medios para crear un campo magnético a través del tubo en una estación de magnetización ubicada en su interior para conseguir que las partículas objetivo marcadas magnéticamente se separen y queden retenidas en el líquido tampón dentro del tubo en la estación de magnetización; y un contenedor situado en el extremo de salida del tubo para recoger el líquido tampón y la muestra empobrecida de partículas objetivo. En los casos en los que el dispositivo deba usarse en un proceso de selección positiva, éste comprenderá asimismo un segundo contenedor que puede ubicarse en el extremo de salida del tubo en lugar del contenedor mencionado anteriormente; además, la aplicación del campo magnético y la introducción de la mezcla en el líquido tampón se suspenden para hacer que el líquido tampón introducido por el tubo elimine las partículas objetivo marcadas magnéticamente y las deposite en el segundo contenedor.
Se ha descubierto que dicho método y dicho dispositivo posibilitan la separación de tipos seleccionados de partículas, (partículas objetivo), concretamente, células biológicas (células objetivo), sin provocar daños no deseados ni a las partículas objetivo ni a las partículas no objetivo. Por tanto, el líquido tampón, que forma un portador líquido continuo tanto para las partículas objetivo como para las partículas no objetivo, crea un volumen líquido constante que protege físicamente las dos clases de partículas (o células) durante las dos fases del proceso, minimizando así los daños causados a los dos tipos de partículas durante las dos fases.
Si bien el método y el dispositivo del presente invento son especialmente útiles para separar tipos seleccionados de células biológicas, el método y el dispositivo también pueden utilizarse para separar otras clases de partículas, por ejemplo, determinadas proteínas. Asimismo, aunque el método y el dispositivo descritos emplean preferentemente las microesferas magnéticas disponibles en el mercado, se valorará que otras partículas magnéticas con una afinidad selectiva con las partículas objetivo puedan emplearse para marcar magnéticamente las partículas objetivo.
En la descripción que viene a continuación se incluyen otras características y ventajas del invento.
Breve descripción de los dibujos
Para comprender mejor el invento, se hará referencia a los dibujos adjuntos, a saber:
La figura 1 muestra esquemáticamente los elementos básicos de una realización del dispositivo;
La figura 2 muestra esquemáticamente un sistema que incluye un dispositivo similar al de la figura 1 y los principales controles del mismo;
La figura 3 muestra los elementos básicos de una segunda forma de realización de un dispositivo construido según el presente invento;
La figura 4 muestra una vista en sección transversal por la línea 4-4 de la figura 3;
La figura 5 muestra una vista en sección transversal por la línea 5-5 de la figura 4;
La figura 6 muestra una vista tridimensional detallada de los soportes para imán y sus imanes correspondientes a un lado de la estación de magnetización del dispositivo según las figuras de la 3 a la 5; y
La figura 7 muestra otro dispositivo construido según el presente invento.
El dispositivo mostrado en la figura 1 es especialmente útil para separar magnéticamente determinados tipos de células objetivo, como linfocitos, glóbulos rojos y/o macrófagos de una muestra de sangre. El dispositivo mostrado comprende un contenedor de muestra 10 que contiene la muestra de sangre. Antes o después de introducir la muestra de sangre en el contenedor 10, se mezcla con las partículas magnéticas, preferentemente con las microesferas magnéticas disponibles en el mercado, con una afinidad selectiva para marcar magnéticamente las células objetivo de la muestra de sangre en el contenedor 10. El dispositivo incluye asimismo otro contenedor 11 que sirve para suministrar el líquido tampón que se utilizará en el proceso de separación magnética. El líquido tampón del contenedor 11 puede ser cualquier tipo de líquido tampón disponible en el mercado, como solución salina normal 1, PBS o similar.
El dispositivo mostrado en la figura 1 también incluye un tubo de alimentación 12 para hacer pasar el líquido tampón desde el contenedor de tampón 11 a través de una estación de magnetización 13 hasta un contenedor de recogida 14. En la forma de realización de la figura 1, la introducción de líquido tampón a través del tubo de alimentación 12 se realiza por gravedad y en vacío. Para ello, los dos contenedores de suministro 10 y 11 están colocados por encima del contenedor de recogida 14; y el contenedor de recogida 14 incluye un tubo de vacío 15 que se comunica por un extremo con el interior del contenedor de recogida y, por el extremo opuesto, con una fuente de vacío 16.
La muestra de sangre del contenedor de muestra 10 incluye células objetivo marcadas magnéticamente y células no objetivo. La muestra de sangre se introduce a través de la línea 17 por un orificio de entrada 12a al tubo de alimentación 12 en un punto por encima de la estación de magnetización 13. Sin embargo, antes de introducir la muestra en el tubo de alimentación 12, se llena dicho tubo de alimentación con líquido tampón desgasificado del contenedor 1, creando así un caudal predeterminado. Preferentemente, el caudal es menor a una gota por segundo; un caudal preferente sería entre 6 y 8 gotas por minuto. Es posible preestablecer el caudal controlando la fuente de vacío 16, o bien controlando una o varias válvulas del modo que se describirá con más detalle en referencia a la figura 2.
De este modo, el líquido tampón del contenedor 11 funciona como portador líquido continuo de las células objetivo marcadas magnéticamente y de las células no objetivo presentes en la muestra de sangre que se ha introducido desde el contenedor 10 a través del orificio de entrada 12a, a medida que tanto el líquido tampón como la mezcla -que incluye las células objetivo y las células no objetivo-, fluyen a través del tubo de alimentación 12 por la estación de magnetización 13. Los imanes 18 de la estación de magnetización 13 crean un campo magnético a través del tubo de alimentación 12 que es suficiente para separar y retener las células objetivo marcadas magnéticamente dentro del líquido tampón en la estación de magnetización 13 a medida que el líquido tampón, con las células no magnetizadas y otros constituyentes de la muestra de sangre, desemboca por el extremo de salida del tubo de alimentación 12 en el contenedor de recogida 14. El contenedor de recogida 14 recibe el líquido tampón junto con las células no objetivo de la muestra de sangre, ya que las células objetivo de la muestra de sangre marcadas magnéticamente (incluidas las partículas magnéticas mezcladas) permanecen en estasis debido al flujo magnético producido por los imanes 18 en la estación de magnetización 13.
El contenido del contenedor de recogida 14 es el resultado de un proceso de empobrecimiento ejecutado en la muestra original, puesto que dicho contenido incluye todos los elementos originales de la muestra salvo las células objetivo marcadas magnéticamente (y las partículas magnéticas añadidas a la muestra original en el contenedor 10) que se separan y quedan retenidas en la estación de magnetización 13. De este modo, el contenido del contenedor 14 puede examinarse o utilizarse con finalidades diagnósticas, clínicas o de investigación de la misma manera que se utilizan los resultados de cualquier otro proceso de empobrecimiento al que se somete la muestra original.
Si también se desea someter la muestra original a un proceso de selección positiva (es decir, para utilizar las células objetivo separadas con finalidades diagnósticas, clínicas y de investigación), dicho proceso puede llevarse a cabo de la siguiente manera: (a) continuar alimentando con líquido tampón el tubo 12; (b) suspender el suministro de mezcla procedente del contenedor de muestra 10 y la aplicación del campo magnético en la estación de magnetización 13; y (c) sustituir el contenedor de recogida 14 con otro contenedor de recogida (no se muestra) para recoger las células objetivo que el líquido tampón elimina al pasar por el tubo de alimentación 12. Generalmente, sería preferente que, tras suspender la introducción de muestra del contenedor de muestra 10, se retrasase brevemente la interrupción del campo magnético en la estación de magnetización 13 y el intercambio de los dos contenedores, para dar tiempo a que el líquido tampón aclare las partículas objetivo marcadas magnéticamente que se encuentran situadas en la estación de magnetización 13 antes de que dichas partículas se arrastren al segundo contenedor de recogida.
Los imanes 18 de la estación de magnetización 13 pueden ser imanes permanentes que puedan extraerse físicamente o retirarse de la estación de magnetización al eliminar las células objetivo marcadas magnéticamente. De manera alternativa, estos imanes 18 pueden ser electroimanes que reciban electricidad a través de conectores 19 (figura 2) durante la fase de separación magnética y dejen de recibirla durante la fase de eliminación.
Se observará que el líquido tampón suministrado desde el contenedor de líquido tampón 11 proporciona un volumen de fluido constante y continuo y de este modo forma un portador líquido continuo para todos los constituyentes de la mezcla de muestra suministrada desde el contenedor de muestra 10. Esto es así durante la fase inicial de empobrecimiento, en la que la muestra original empobrecida de células objetivo se recoge en el contenedor 14; así como en la fase de selección positiva, en la que las células objetivo, que se separan y quedan retenidas en la estación de magnetización 13, son arrastradas por el líquido tampón hasta otro contenedor de recogida. De este modo, el líquido tampón protege tanto las células objetivo como las células no objetivo durante las dos fases del proceso de separación para así disminuir considerablemente la posibilidad de dañar o romper las membranas celulares en comparación con el proceso convencional con MiniMACS descrito anteriormente. Asimismo, y tal como se describirá más adelante, el método ilustrado en la figura 1 puede automatizarse muy fácilmente y conseguir una mayor capacidad de producción y una mejora de la eficiencia en el proceso de separación.
A continuación se expone un ejemplo de utilización del dispositivo y el método descritos con respecto a la figura 1 para separar magnéticamente células objetivo seleccionadas a partir de una muestra de sangre: se obtuvo una muestra de linfocitos a partir de sangre normal y sana utilizando un gradiente de Ficoll normal. Dicha muestra se dividió en dos grupos: el grupo de control y el experimental. Se añadieron microesferas magnéticas CD19 comercializadas (suministradas por Miltenyi Biotec GmbH) a los linfocitos experimentales con el fin de marcar únicamente las células B de la muestra. Tras realizar el marcaje con microesferas CD19, las células se aclararon dos veces con PBS.
El dispositivo de separación se preparó rellenando y aclarando el tubo de alimentación 12 con tampón desgasificado procedente del depósito del tampón. Durante la separación, el sistema se mantiene lleno de tampón desgasificado.
La mezcla de linfocitos marcada se introdujo en el sistema mediante una jeringa de 1 ml (sin pistón) provista de una aguja de 0,4x13 insertada en un punto superpuesto del sistema de tubos. El sistema de vacío mantuvo un caudal constante de 6 gotas por minuto. Después de que toda la mezcla marcada hubiera entrado en el sistema, se retiró la aguja y se dejó funcionar el sistema hasta que otros 400 \mul de tampón atravesaron el sistema de separación. Seguidamente, se detuvo el flujo. Se retiró el tubo de recogida, se marcó con la letra "A" y se sustituyó por un segundo tubo.
Se interrumpió el campo magnético, se restableció el flujo y se aclaró la línea con 500 \mul de líquido tampón. Se detuvo el flujo de nuevo y se retiró el segundo tubo, marcándolo con la letra "B".
Las células del grupo de control y los tubos "A" y "B" se examinaron a doble ciego con un microscopio óptico para comprobar el estado de la membrana y hacer el recuento celular mediante un hemocitómetro.
No se observaron cambios en cuanto a la calidad celular entre la muestra de control y la muestra experimental. Generalmente, las células B comprenden entre un 8 y un 11% de la población total de linfocitos. Los resultados de esta separación generaron un 8,8% de células B, lo cual demuestra la capacidad de aislar una población específica sin afectar a la calidad celular.
Al utilizar microesferas CD19 (Miltenyi Biotec GmbH) para marcar los linfocitos B, se esperaba obtener una cosecha de aproximadamente un 10% de la población total de linfocitos. Los resultados reales, según observación mediante el microscopio óptico, Cellscan y FACS, fueron los siguientes:
1. Se produjo una cosecha que oscilaba entre un 8,8% y un 11,1%. El análisis con FACS de dichas células revelaba un 97% de población pura de las células deseadas.
2. La calidad de la membrana no resultó afectada por el proceso. Dicha observación se verificó mediante el microscopio óptico y un examen Cell Scan.
3. Se esperaba que las poblaciones de linfocitos no marcadas (células no objetivo) contuviesen aproximadamente un 95% de linfocitos T y comprendiesen aproximadamente un 90% de la población total de linfocitos. El análisis FACS de estas células reveló una media de un 93% de poblaciones puras de linfocitos T. La observación al microscopio confirmó que dichos linfocitos T comprendían una media de un 90% de la población total de linfocitos.
En el ejemplo descrito anteriormente, el campo magnético se generaba mediante imanes permanentes de neodimio; el sistema de tubos estaba compuesto por tubos de infusión de 0,80 mm, y el líquido tampón poseía la siguiente composición: 0,15 ml EDTA (ácido etilendiaminotetraacético); 1,10 ml BSA 796 (albúmina sérica bovina); 13,75 ml PBS (solución salina tampón fosfatada sin calcio ni magnesio); produciendo un total de 15,00 ml de tampón.
La figura 2 muestra esquemáticamente el sistema básico de la figura 1 pero provisto de los controles principales para automatizar el funcionamiento del sistema.
Así pues, el sistema mostrado en la figura 2 incluye un controlador por microprocesador, designado en general con el número 20, para controlar el funcionamiento del sistema. Las entradas al controlador 20 comprenden un selector de flujo 21 para preestablecer el caudal de alimentación de líquido tampón del contenedor de tampón 11; un sensor de burbujas de aire 22 para detectar la presencia de burbujas de aire en el tubo de alimentación del tampón 12, y un sensor de burbujas de aire 23 para detectar la presencia de burbujas de aire en el tubo de alimentación de la muestra 17. Estos sensores protegen la integridad del nivel constante de fluido cerrando el flujo de fluido (el sensor 22 cierra la válvula 27 y el sensor 23, la válvula 28) si se detecta una burbuja de aire. El controlador 20 también incluye una entrada procedente de un sensor de caudal 29 para detectar el caudal que entra en el contenedor 14.
El controlador 20, controla a su vez los electroimanes 18 en la estación de magnetización 13 a través de la línea 24 conectada a sus respectivos conectores 19, la fuente de vacío 16 a través de la línea 25 y/o una válvula de vacío 26, el caudal de alimentación del líquido tampón a través de la válvula 27 de la línea de alimentación 12, y el caudal de alimentación de muestra a través de la válvula 28 de la línea de muestra 17.
Las figuras de la 3 a la 6 muestran una forma de realización preferente de la unidad magnética de la estación de magnetización 13 según el presente invento con el fin de permitir que la estación de magnetización ocupe un tramo considerablemente más largo del líquido tampón que transporta la muestra, aumentando así la producción y/o la eficiencia del proceso de separación total. Así pues, mientras que en el dispositivo mostrado en las figuras 1 y 2, la estación de magnetización 13 ocupa una extensión rectilínea del tubo de alimentación 12, en la figura 3 la estación de magnetización, designada en dicha figura con el número 30, está estructurada de tal modo que ocupa una extensión alargada y en zigzag del tubo de alimentación 12.
Como se muestra en concreto en la figura 4, la estación de magnetización 30 incluye una placa de montaje trasera 31 y una placa de montaje delantera 32 unidas por los pasadores 32a presentes en la placa 32 que encajan por fricción en los postes de apertura 31a de la placa 31. La placa de montaje trasera 31 sirve de base para varios imanes permanentes 33, cada uno de los cuales está sustentado por un elemento central magnetizable 34; y de manera similar, la placa de montaje delantera 32 sirve de base para varios imanes permanentes 35, cada uno de los cuales está sustentado por un elemento central magnetizable 36.
Los imanes permanentes 33 y 35 están alineados entre sí y los elementos centrales magnetizables 34 y 36 están a su vez alineados entre sí, de tal manera que definen dos circuitos magnéticos cerrados, uno con los entrehierros AG_{1}, AG_{2} y el otro con los entrehierros AG_{1}, AG_{3}, cada tramo del tubo de alimentación 12 atraviesa los tres entrehierros de AG_{1} a AG_{3}, de tal modo que el campo magnético producido por los imanes permanentes es efectivo en un tramo considerable del tubo de alimentación.
La placa de montaje trasera 31 posee montaje móvil sobre un par de balancines 37, 38. Cada balancín incluye un montaje basculante 37a, 38a sobre la parte trasera de la placa de montaje 31 y otro montaje basculante 37b, 38b sobre una abrazadera 39, 40 deslizable sobre los pasadores 41, 42 que se proyectan desde una superficie de apoyo 42. La abrazadera 39 es deslizable sobre el pasador superior 41, y la abrazadera 40 es deslizable sobre el pasador inferior 42 fijado a la superficie de apoyo 43 bajo el pasador 41. Las dos abrazaderas 39, 40 están desviadas hacia fuera por muelles de espiral 44, 45 sobre sus pasadores correspondientes 41, 43.
Tal como se muestra en la figura 5, la placa trasera 31 está provista de tres postes de apertura 31a en su extremo superior y tres postes similares en su extremo inferior, escalonados respecto a los postes del extremo superior. Los pasadores 32a de la placa de montaje delantera 32 están dispuestos de tal manera que se alojen en los postes de apertura 31a de la placa 31. De este modo, cuando se extrae la placa delantera 32, el tubo de alimentación 12 puede enrollarse alrededor de los postes superiores e inferiores 31a de la placa trasera 31 en zigzag (figura 5) de forma que se crean tramos de dirección descendente y tramos de dirección ascendente 12a-g. El último tramo de dirección descendente 12g está conectado al contenedor de recogida 14 de la figura 3.
Como se muestra en la figura 6, se prevé un imán 33 para cada tramo 12a-12g del tubo de alimentación. Como el ejemplo expuesto muestra siete de dichos tramos, la figura 6 representa siete imanes 33 y sus respectivos elementos centrales 34. En este caso, habrá el número correspondiente de imanes 35 y de elementos centrales 36 sustentados por la placa delantera 32, estando los imanes 35 de la placa delantera alineados con los imanes 33 de la placa trasera. Tal como se ha mencionado anteriormente, cada par de imanes y de elementos centrales definen tres entrehierros (AG_{1}-AG_{3}, figura 4) para cada tramo 12a-12g del tubo de alimentación, de modo que el campo magnético de la estación de magnetización actúa sobre una extensión considerable del tubo de alimentación. Los pasadores 32a de la placa delantera 32, con el mismo número y disposición que los postes 32a para que se alojen en dichos postes al acoplar la placa delantera 35 con la placa trasera 31, están diseñados para que encajen por fricción cuando los pasadores se alojan en los postes. Los postes 31 también están diseñados para definir un espacio, indicado como 46 (figura 4), entre los imanes 33, 35 apoyados en las dos placas 31, 33 para alojar el tramo correspondiente 12a-12g del tubo de alimentación 12.Después de aplicar el tubo de alimentación en zigzag sobre los postes de apertura 31a de la placa trasera 31, la placa delantera 32 se coloca introduciendo los pasadores 32a por los postes 31a. Cuando los pasadores 32a se alojan en los postes 31a, los pasadores engranan con las abrazaderas 39, 40, empujándolas hacia la superficie fija 43 contra los muelles 44, 45. La placa trasera 31 se desplaza por medio de balancines 37, 38 hacia la placa delantera 37 para apresar firmemente los respectivos tramos del tubo de alimentación 12 entre dos grupos de imanes
33, 35.
La figura 7 muestra un dispositivo similar al de la figura 3, salvo que el dispositivo de la figura 7 está provisto adicionalmente de una cámara de mezcla 100 en el orificio de entrada 112a del tubo de alimentación 112 para premezclar la mezcla de muestra aplicada a través del tubo de entrada 110, y el líquido tampón aplicado a través de la entrada 111, antes de introducirlo, a través del tubo 112, a la estación de magnetización 130. El dispositivo de la figura 7 también está provisto de una bomba 132, por ejemplo una bomba peristáltica, en el extremo de salida del tubo 112 para controlar la alimentación del líquido del mismo hacia el contenedor de recogida (14, figura 3).
En todas las realizaciones descritas anteriormente, el campo magnético puede controlarse según la aplicación concreta para generar una intensidad de campo predeterminada. Para ello, el entrehierro magnético puede modificarse al utilizar imanes permanentes; y cuando se usa electroimanes, puede variarse la corriente, por ejemplo, a través del microprocesador 20 de la figura 2.
Aunque el invento se ha descrito hasta ahora en referencia a células objetivo seleccionadas de una muestra de sangre, cabe destacar que el invento podría utilizarse también para muchas otras aplicaciones de selección de otras partículas objetivo de un cuerpo, por ejemplo proteínas seleccionadas u otros tipos de partículas. Asimismo, aunque se prefiere la utilización de microesferas magnéticas, se observará que también es posible emplear otras partículas magnéticas en el proceso. Además, pueden incluirse otros sensores, por ejemplo, para la radioactividad, la conductividad, etc. Resultarán evidentes muchas otras variaciones, modificaciones y aplicaciones del presente invento.

Claims (26)

1. Método para separar magnéticamente partículas objetivo de un tipo seleccionado a partir de una muestra con el fin de obtener una concentración de partículas objetivo de la muestra o un empobrecimiento de la muestra en cuanto a partículas objetivo, el cual está compuesto por los siguientes pasos: la obtención (en un contenedor 10) de una mezcla de muestra de dichas partículas magnéticas con una afinidad selectiva para marcar magnéticamente dichas partículas objetivo; la introducción de un líquido tampón a través de un tubo (12) que incluye una entrada que puede conectarse a una fuente de líquido tampón (11), y una salida para el líquido tampón; después de introducir un flujo de dicho líquido tampón a través de dicho tubo (12), la introducción de la mezcla de muestra en el líquido tampón que fluye a través de dicho tubo de tal manera que el líquido tampón forme un portador líquido continuo para dicha mezcla de muestra cuando ambos se introducen a través de dicho tubo; y la aplicación de un campo magnético a través de dicho tubo (12) en una estación de magnetización (13) para conseguir que las partículas marcadas magnéticamente mencionadas se separen y queden retenidas en el líquido tampón dentro del tubo de la estación de magnetización; caracterizado por el hecho de que dicho tubo (12) en la zona de la estación de magnetización (13) posee una forma alargada en zigzag formando varios tramos (12a-12f) paralelos interconectados; y por el hecho de que dicho campo magnético se genera mediante imanes (33, 35) montados sobre elementos centrales magnetizables que definen un circuito magnético cerrado que incluye un primer entrehierro entre los imanes y un segundo entrehierro entre los elementos centrales magnetizables, pasando el citado tubo a través de los dos entrehierros, y por el hecho de que se prevé un circuito magnético cerrado para cada tramo (12a-12g) del tubo de alimentación.
2. Método según la reivindicación 1, caracterizado por el hecho de que los elementos centrales magnetizables mencionados también definen un tercer entrehierro por el que también pasa el tubo citado.
3. Método según la reivindicación 1, caracterizado por el hecho de que el citado campo magnético (13) se genera mediante imanes permanentes (33, 35) montados sobre elementos centrales magnetizables (34, 36) que definen un circuito magnético cerrado, estando los imanes permanentes (33, 35) alineados entre sí y los elementos centrales (34, 36), a su vez, alineados entre sí, de tal modo que describen dos circuitos magnéticos cerrados, uno que incluye el primer entrehierro (AG_{2}) y un tercer entrehierro (AG_{1}) y el otro que incluye el segundo entrehierro (AG_{3}) y el tercer entrehierro (AG_{1}), para cada tramo (12a-12g) del tubo de alimentación.
4. Método según la reivindicación 1, 2 o 3, caracterizado por el hecho de que la mezcla de muestra se introduce en el mencionado líquido tampón por un punto (12a) situado entre el extremo de entrada del tubo (12) y la estación de magnetización (13).
5. Método según la reivindicación 1, 2 o 3, caracterizado por el hecho de que las partículas objetivo que están marcadas magnéticamente por las partículas magnéticas presentes en la mezcla de muestra y que quedan separadas y retenidas en el líquido tampón del tubo (12) de la estación de magnetización (13), a continuación se extraen del tubo, suspendiendo así la introducción de dicha mezcla de muestra en el líquido tampón y la aplicación del campo magnético a través del tubo, mientras se hace pasar líquido tampón a través del tubo (12) para eliminar las partículas objetivo marcadas magnéticamente con el líquido tampón.
6. Método según la reivindicación 1, 2 o 3, caracterizado por el hecho de que el líquido tampón y la mezcla de muestra se hacen pasar por el tubo hasta un contenedor de recogida (14) por la fuerza de la gravedad.
7. Método según la reivindicación 6, caracterizado por el hecho de que se aplica vacío (16) a dicho contenedor de recogida (12) para controlar la alimentación del líquido tampón y mezcla de muestra en dicho contenedor de recogida.
8. Método según la reivindicación 6, caracterizado por el hecho de que se aplica presión positiva al tubo para controlar el suministro de líquido tampón y mezcla de muestra en el contenedor de recogida.
9. Método según la reivindicación 1, 2 o 3, caracterizado por el hecho de que las partículas objetivo son células biológicas seleccionadas presentes en dicha muestra.
10. Método según la reivindicación 9, caracterizado por el hecho de que la muestra es una muestra de sangre y las células objetivo son un tipo seleccionado de linfocitos presentes en dicha muestra de sangre.
11. Método según la reivindicación 1, 2 o 3 caracterizado por el hecho de que las partículas magnéticas mezcladas con la muestra tienen forma de microesferas magnéticas.
12. Método según la reivindicación 1, 2 o 3 caracterizado por el hecho de que el campo magnético se controla para generar una intensidad de campo predeterminada.
13. Dispositivo para separar magnéticamente partículas objetivo de un tipo seleccionado a partir de una muestra con el fin de obtener una concentración de partículas objetivo presentes en la muestra, o un empobrecimiento de dichas partículas objetivo de la muestra, compuesto por: una fuente de suministro de líquido tampón (11); un tubo (12) para la introducción de líquido tampón desde la fuente de líquido tampón por un extremo de entrada (12a) del tubo hasta un extremo de salida del tubo; un contenedor de muestra (10) que contiene una mezcla de dicha muestra y partículas magnéticas con una afinidad selectiva que marcan magnéticamente las partículas objetivas; un tubo de alimentación (17) que conecta el contenedor (10) al extremo de entrada (12a) del tubo (12) para poder hacer pasar la mezcla por el tubo tras generarse un flujo de líquido tampón en el mismo, de tal forma que el líquido tampón forme un portador líquido continuo para las partículas objetivo marcadas magnéticamente de la mezcla introducida por el tubo; medios para generar un campo magnético (18) a través del tubo de la estación de magnetización (13); y un contenedor (14) ubicado en el extremo de salida del tubo para recoger el líquido y la muestra desprovista de las partículas objetivo; caracterizado por el hecho de que el tubo (12) de la estación de magnetización (13) posee una configuración alargada en zigzag formando varios tramos (12a-12f) paralelos interconectados, y por el hecho de que el campo magnético se genera mediante imanes (33, 35) montados sobre elementos centrales magnetizables que describen un circuito magnético cerrado que incluye un primer entrehierro entre los imanes y un segundo entrehierro entre los elementos centrales magnetizables, pasando el tubo a través de los dos entrehierros, y por el hecho de que existe un circuito magnético cerrado para cada tramo (12a-12g) del tubo de alimentación.
14. Dispositivo según la reivindicación 13 caracterizado por el hecho de que los elementos centrales magnetizables también describen un tercer entrehierro por el que también pasa el tubo.
15. Dispositivo según la reivindicación 13 caracterizado por el hecho de que el campo magnético (13) se genera mediante imanes permanentes (33, 35) montados sobre elementos centrales magnetizables (34, 36) que definen un circuito magnético cerrado, donde los imanes permanentes (33, 35) están alineados entre sí y los elementos centrales magnetizables (34, 36) están a su vez alineados entre sí, de tal modo que describen dos circuitos magnéticos cerrados, uno que incluye el primer (AG_{2}) y el tercer entrehierro (AG_{1}), y el otro que incluye el segundo (AG_{3}) y el tercer entrehierro (AG_{1}) para cada tramo (12a-12g) del tubo de alimentación.
16. Dispositivo según la reivindicación 13, 14 o 15 caracterizado por el hecho de que el tubo (12) incluye una primera conexión que conecta el suministro de líquido tampón (11) al extremo de entrada del tubo, y una segunda conexión (12a) para introducir la mezcla de muestra en el líquido tampón en un punto situado entre el extremo de entrada del tubo y la estación de magnetización (13).
17. Dispositivo según la reivindicación 13 o 14 caracterizado por el hecho de que el contenedor (14) está situado por debajo del extremo de entrada del tubo de tal modo que el líquido tampón y la mezcla de muestra se hacen pasar por el tubo hasta el contenedor por la fuerza de la gravedad.
18. Dispositivo según la reivindicación 17 caracterizado por el hecho de que el contenedor (14) se conecta a una fuente de succión (16) para controlar la alimentación de líquido tampón y mezcla de muestra por el tubo.
19. Dispositivo según la reivindicación 17 caracterizado por el hecho de que el tubo (112) comprende una bomba positiva (132) para controlar la alimentación de líquido tampón y mezcla de muestra por el tubo.
20. Dispositivo según la reivindicación 13, 14 o 15 caracterizado por comprender un segundo contenedor que se coloca en el extremo de salida del tubo (12) en lugar del contenedor mencionado en primer lugar; y por el hecho de que tanto la aplicación del campo magnético como la introducción de mezcla de muestra en el líquido tampón se suspenden para hacer que el líquido tampón que se introduce en el tubo elimine las partículas objetivo marcadas magnéticamente hacia el segundo contenedor.
21. Dispositivo según la reivindicación 13, 14 o 15 caracterizado por comprender un sensor de burbujas de aire (22) para detectar la presencia de aire en el interior del líquido tampón introducido en el tubo, un sensor de burbujas de aire (23) para detectar la presencia de aire en la mezcla de muestra introducida en el tubo y un controlador (20) controlado por dichos sensores para interrumpir el flujo del tampón o de la muestra al detectarse burbujas de aire.
22. Dispositivo según la reivindicación 13, 14 o 15 caracterizado por el hecho de que el campo magnético (13) se genera mediante imanes (33, 35) montados sobre elementos centrales magnetizables (34, 36) que definen un circuito magnético cerrado que incluye un primer entrehierro AG_{1} entre los imanes y un segundo entrehierro AG_{2} entre los elementos centrales magnetizables; atravesando el tubo (12) ambos entrehierros.
23. Dispositivo según la reivindicación 22 caracterizado por el hecho de que los elementos centrales magnetizables también describen un tercer entrehierro AG_{3} por el que también pasa el tubo (12).
24. Dispositivo según la reivindicación 13, 14 o 15 caracterizado por el hecho de que los medios de generación de campo magnético (13) incluyen imanes permanentes que pueden separarse físicamente de la proximidad del tubo para suspender la aplicación del campo magnético a través del tubo en la estación de magnetización.
25. Dispositivo según la reivindicación 13, 14 o 15 caracterizado por el hecho de que los medios de generación de campos magnéticos incluyen un electroimán (18, 19) que puede desenergizarse para interrumpir la aplicación del campo magnético a través del tubo en la estación de magnetización.
26. Dispositivo según la reivindicación 13, 14 o 15 caracterizado por un sistema de control (20) para controlar el campo magnético y generar una intensidad de campo predeterminada.
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Families Citing this family (44)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1162444A4 (en) * 1999-01-18 2007-02-21 Prec System Science Co Ltd CONCENTRATION DEVICE USING MAGNETIC PARTICLES AND METHOD THEREOF
US6635181B2 (en) 2001-03-13 2003-10-21 The Board Of Governors For Higher Education, State Of Rhode Island And Providence Plantations Continuous, hybrid field-gradient device for magnetic colloid based separations
DE10127068A1 (de) * 2001-05-23 2002-11-28 Bio Medical Apherese Systeme G Vorrichtung und Verfahren zum Inkubieren und Wiederabtrennen von Magnetteilchen in und von flüssige biologische Dispersionen
US20030095897A1 (en) * 2001-08-31 2003-05-22 Grate Jay W. Flow-controlled magnetic particle manipulation
WO2003086637A1 (en) 2002-04-12 2003-10-23 Instrumentation Laboratory Company Immunoassay probe
US7060225B2 (en) * 2003-03-20 2006-06-13 Northeastern Ohio Universities College Of Medicine Self-contained assay device for rapid detection of biohazardous agents
FI20040159A0 (fi) * 2003-10-20 2004-02-02 Bio Mobile Oy Magneettinen siirtomenetelmä, mikropartikkelien siirtolaite, ja reaktioyksikkö
US8211386B2 (en) 2004-06-08 2012-07-03 Biokit, S.A. Tapered cuvette and method of collecting magnetic particles
US7403125B2 (en) * 2005-05-06 2008-07-22 Accuri Cytometers, Inc. Flow cytometry system with bubble detection
JP2008543326A (ja) * 2005-06-20 2008-12-04 ヨン−ホ キム, 細胞分離装置及びその方法
US7996188B2 (en) 2005-08-22 2011-08-09 Accuri Cytometers, Inc. User interface for a flow cytometer system
US8303894B2 (en) 2005-10-13 2012-11-06 Accuri Cytometers, Inc. Detection and fluidic system of a flow cytometer
US7776268B2 (en) * 2005-10-13 2010-08-17 Accuri Cytometers, Inc. User interface for a fluidic system of a flow cytometer
US8017402B2 (en) 2006-03-08 2011-09-13 Accuri Cytometers, Inc. Fluidic system for a flow cytometer
US7857005B2 (en) * 2005-12-07 2010-12-28 Accuri Cytometers, Inc. Pulsation attenuator for a fluidic system
WO2007081161A1 (en) * 2006-01-11 2007-07-19 Korea Institute Of Science And Technology An apparatus and method for separating biological particles using difference between gravity and magnetic force
US7780916B2 (en) 2006-03-08 2010-08-24 Accuri Cytometers, Inc. Flow cytometer system with unclogging feature
US8283177B2 (en) * 2006-03-08 2012-10-09 Accuri Cytometers, Inc. Fluidic system with washing capabilities for a flow cytometer
US7981661B2 (en) * 2006-04-17 2011-07-19 Accuri Cytometers, Inc. Flow cytometer system with sheath and waste fluid measurement
US8715573B2 (en) * 2006-10-13 2014-05-06 Accuri Cytometers, Inc. Fluidic system for a flow cytometer with temporal processing
WO2008048027A1 (en) * 2006-10-16 2008-04-24 Cellbio Co., Ltd Apparatus and method for magnetically separating biolgical materials from mixture
US8445286B2 (en) 2006-11-07 2013-05-21 Accuri Cytometers, Inc. Flow cell for a flow cytometer system
US7739060B2 (en) * 2006-12-22 2010-06-15 Accuri Cytometers, Inc. Detection system and user interface for a flow cytometer system
US8432541B2 (en) * 2007-12-17 2013-04-30 Accuri Cytometers, Inc. Optical system for a flow cytometer with an interrogation zone
US7947492B2 (en) * 2008-08-20 2011-05-24 Northeastern Ohio Universities College Of Medicine Device improving the detection of a ligand
JP2010207133A (ja) 2009-03-10 2010-09-24 Sony Corp 細胞分離方法
US8507279B2 (en) 2009-06-02 2013-08-13 Accuri Cytometers, Inc. System and method of verification of a prepared sample for a flow cytometer
US20110061471A1 (en) * 2009-06-02 2011-03-17 Rich Collin A System and method of verification of a sample for a flow cytometer
BR112012018166A2 (pt) * 2010-01-21 2015-09-15 Biocep Ltd separação magnética de células raras.
US8779387B2 (en) 2010-02-23 2014-07-15 Accuri Cytometers, Inc. Method and system for detecting fluorochromes in a flow cytometer
US9551600B2 (en) 2010-06-14 2017-01-24 Accuri Cytometers, Inc. System and method for creating a flow cytometer network
EP2633284B1 (en) 2010-10-25 2021-08-25 Accuri Cytometers, Inc. Systems and user interface for collecting a data set in a flow cytometer
US8528427B2 (en) 2010-10-29 2013-09-10 Becton, Dickinson And Company Dual feedback vacuum fluidics for a flow-type particle analyzer
EP2795289B1 (en) * 2011-12-21 2022-08-31 Becton Dickinson and Company Flow cytometric systems for sterile separation of magnetically labeled sample components
US9517474B2 (en) 2012-05-18 2016-12-13 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Devices and methods for separating particles
CN103773682B (zh) * 2014-01-23 2015-09-30 张利峰 细胞磁分选系统、分选装置和处理设备
US20150284862A1 (en) * 2014-04-07 2015-10-08 John Staley Brookshire Continuous Flow Process for Producing Storable Consumable Magnascent Iodine
CN103949341A (zh) * 2014-04-29 2014-07-30 东南大学 一种全自动生物样本处理装置
SG10202003075UA (en) * 2015-06-05 2020-05-28 Novartis Ag Flow-through paramagnetic particle-based cell separation and paramagnetic particle removal
US10676719B2 (en) 2015-07-31 2020-06-09 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Devices and methods for separating particles
US10189029B2 (en) * 2016-06-30 2019-01-29 United Arab Emirates University Magnetic particle separator
SG11201901233SA (en) 2016-10-31 2019-03-28 Amgen Inc Purification systems and methods
WO2019194417A1 (ko) * 2018-04-04 2019-10-10 광주과학기술원 미생물 농축 소자
CN116183336A (zh) * 2022-03-07 2023-05-30 传鸣(宁波)化学科技有限公司 微生物染色方法和装置

Family Cites Families (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE3522365A1 (de) * 1985-06-22 1987-01-02 Bayer Ag Trenngeraet fuer magnetische partikel aus fluessiger phase
US4710472A (en) * 1985-09-25 1987-12-01 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Magnetic separation device
US4904391A (en) * 1985-10-09 1990-02-27 Freeman Richard B Method and apparatus for removal of cells from bone marrow
US5536475A (en) * 1988-10-11 1996-07-16 Baxter International Inc. Apparatus for magnetic cell separation
CA1335181C (en) * 1988-10-11 1995-04-11 R. Alan Hardwick System for selective cell separation from cell concentrate
EP0697916B1 (en) * 1994-03-14 2002-06-05 Nexell Therapeutics Inc. Method and apparatus for semi-automated cell separation
US5705059A (en) * 1995-02-27 1998-01-06 Miltenyi; Stefan Magnetic separation apparatus

Also Published As

Publication number Publication date
MXPA00011129A (es) 2002-08-06
DE69938968D1 (de) 2008-08-07
JP4713735B2 (ja) 2011-06-29
DK1093393T3 (da) 2008-10-06
US20030062314A1 (en) 2003-04-03
IL124514A0 (en) 1998-12-06
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WO1999059694A1 (en) 1999-11-25
BR9911023B1 (pt) 2009-12-01
IL124514A (en) 2002-02-10
CA2333299C (en) 2007-09-18
HK1037151A1 (en) 2002-02-01
EP1093393A1 (en) 2001-04-25
EP1093393A4 (en) 2002-09-11
JP2002515319A (ja) 2002-05-28
CA2333299A1 (en) 1999-11-25
US6482328B1 (en) 2002-11-19
AU3845299A (en) 1999-12-06

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