ES2312181T3 - Procedimiento para producir eritritol cristalino de alta pureza. - Google Patents

Procedimiento para producir eritritol cristalino de alta pureza. Download PDF

Info

Publication number
ES2312181T3
ES2312181T3 ES98118768T ES98118768T ES2312181T3 ES 2312181 T3 ES2312181 T3 ES 2312181T3 ES 98118768 T ES98118768 T ES 98118768T ES 98118768 T ES98118768 T ES 98118768T ES 2312181 T3 ES2312181 T3 ES 2312181T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
erythritol
stage
separation
fraction
tower
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES98118768T
Other languages
English (en)
Inventor
Satoshi Mitsubishi Chemical Corp. Morioka
Takahiro c/o Mitsubishi Chemical Corp. Abe
Toshihiro c/o Mitsubishi Chem. Corporation Maeda
Arihiro c/o Nikken Chemicals Co. Ltd. Taki
Katsuhiko c/o Nikken Chemicals Co. Ltd. Sawada
Hiroaki c/o Nikken Chemicals Co. Ltd. Ishitsuka
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Mitsubishi Chemical Corp
Original Assignee
Mitsubishi Chemical Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Mitsubishi Chemical Corp filed Critical Mitsubishi Chemical Corp
Application granted granted Critical
Publication of ES2312181T3 publication Critical patent/ES2312181T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C29/00Preparation of compounds having hydroxy or O-metal groups bound to a carbon atom not belonging to a six-membered aromatic ring
    • C07C29/74Separation; Purification; Use of additives, e.g. for stabilisation
    • C07C29/76Separation; Purification; Use of additives, e.g. for stabilisation by physical treatment
    • C07C29/78Separation; Purification; Use of additives, e.g. for stabilisation by physical treatment by condensation or crystallisation
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/02Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
    • C12P7/04Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
    • C12P7/18Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic polyhydric
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; PREPARATION OR TREATMENT THEREOF
    • A23L27/00Spices; Flavouring agents or condiments; Artificial sweetening agents; Table salts; Dietetic salt substitutes; Preparation or treatment thereof
    • A23L27/30Artificial sweetening agents
    • A23L27/33Artificial sweetening agents containing sugars or derivatives
    • A23L27/34Sugar alcohols
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

SE EXPONE UN PROCESO PARA PRODUCIR UN CRISTAL DE ERITRITOL DE GRAN PUREZA, QUE COMPRENDE UN PASO DE CRISTALIZACION, QUE SOMETE A CRISTALIZACION UNA SOLUCION ACUOSA QUE CONTIENE ERITRITOL COMO SOLUCION EN BRUTO, CARACTERIZADO PORQUE UNA CONCENTRACION DE ERITRITOL DE LA CITADA SOLUCION ACUOSA QUE CONTIENE ERITRITOL SE AJUSTA A UN 30 - 60% EN PESO, AL COMIENZO DEL PASO DE LA CRISTALIZACION; DICHA SOLUCION ACUOSA QUE CONTIENE ERITRITOL SE ENFRIA A UNA VELOCIDAD DE ENFRIAMIENTO NO SUPERIOR A 20ºC/HORA; SE AÑADE UN CRISTAL DE SIEMBRA DE ERITRITOL A LA CITADA SOLUCION ACUOSA QUE CONTIENE ERITRITOL DURANTE EL ENFRIAMIENTO, Y LA SOLUCION SE ENFRIA A NO MAS DE 20ºC. EL CITADO PROCESO PARA LA OBTENCION DE UN CRISTAL DE ERITRITOL DE GRAN PUREZA, SEGUN LA PRESENTE INVENCION, TIENE UNA PUREZA AUN MAYOR Y PUEDE MEJORARSE EN CUANTO A LA FORMA DEL CRISTAL EN COMPARACION CON LOS OBTENIDOS POR PROCESOS CONVENCIONALES.

Description

Procedimiento para producir eritritol cristalino de alta pureza.
Antecedentes de la invención
La presente invención se refiere a un procedimiento para producir un eritritol cristalino de alta pureza.
Eritritol (es decir meso-eritritol) es útil no solamente como agente edulcorante sino también como producto intermedio de medicinas, productos químicos industriales o similares. El eritritol se puede producir industrialmente cultivando microorganismos que producen eritritol en un medio de cultivo acuoso bajo condiciones aeróbicas, por ejemplo, usando glucosa como materia prima.
La disolución de cultivo que contiene eritritol contiene diversas impurezas líquidas y sólidas. Más específicamente, la disolución de cultivo contiene, como impurezas líquidas, subproductos tales como glicerol. Adicionalmente, en el caso en que se use como materia prima glucosa purificada, obtenida por conversión enzimática de almidón en sacarosa, etc., la disolución de cultivo también contendrá, como impurezas líquidas, oligosacáridos tales como di- o más sacáridos contenidos inherentemente en la glucosa bruta purificada, productos de reacción de esos oligosacáridos, polisacáridos que tienen un enlace \beta-1,4 que están compuestos principalmente de glucosa, o similares. Además, la disolución de cultivo contiene, como impurezas sólidas, finas sustancias suspendidas además de los microbios.
Se puede producir eritritol cristalino de alta pureza sometiendo la disolución de cultivo anteriormente mencionada a un procedimiento que comprende sucesivamente una etapa de separación de los microbios, una etapa de separación cromatográfica y una etapa de cristalización. Como ejemplo de esos procedimientos, se conoce un procedimiento de separación y recuperación de eritritol de una disolución de cultivo que contiene eritritol según se describe en la publicación de patente japonesa (KOKOKU) Nº 7-34748(1995).
Al mismo tiempo, según se ha descrito anteriormente, dado que se usa eritritol principalmente como agente edulcorante, se prefiere que la pureza del eritritol producido sea lo más alta posible. Adicionalmente, desde el punto de vista de separar cristales de una papilla y prevenir la aglomeración del polvo fino que se produce debido a la inevitable fractura de productos cristalinos, se prefiere que los cristales producidos estén en forma de cristales sencillos que tengan un tamaño apropiado.
Además, en la etapa de separación de los microbios del procedimiento anteriormente mencionado, cuando es insuficiente la retirada de los microbios y de las sustancias finas suspendidas, no se pueden garantizar operaciones seguras de las etapas posteriores. Por ejemplo, la retirada insatisfactoria da como resultado no solamente la obstrucción de la columna de resina en la etapa de separación cromatográfica y el fallo del intercambiador al quemar y pegarse a la superficie de sus tubos o placas, sino también la rebaja de la pureza del eritritol producido. Por lo tanto, la etapa de separación de los microbios es extremadamente importante en un procedimiento a escala industrial para la producción de eritritol cristalino de alta pureza. Sin embargo, hasta ahora, la etapa de separación de los microbios en el procedimiento para producir eritritol no se ha estudiado con la suficiente amplitud. Por ejemplo, en los Ejemplos de la publicación de patente japonesa (KOKOKU) Nº 7-34748(1995), solamente se ha descrito que se use un separador centrífugo en la etapa de separación de los microbios.
El documento EP 0 525 659 A describe un procedimiento para preparar un eritritol cristalino, que comprende cristalizar un líquido que contiene eritritol obtenido por fermentación, en el que se controla la concentración de acetoína del líquido que contiene eritritol a 20 ppm en peso o menos.
Adicionalmente, en la producción a escala industrial de eritritol cristalino de alta pureza, también es importante que el procedimiento de producción del mismo se pueda llevar a cabo seguramente y establemente. Como una etapa del procedimiento que se ha de llevar a cabo establemente, se ejemplifica una etapa de separación de cristales que separa eritritol cristalino de una papilla que contiene eritritol cristalino recuperado de la etapa de cristalización. Esto es, en la etapa de separación de cristales, generalmente se ha usado un separador centrífugo. En este caso, cuando el eritritol cristalino que se obtiene por separación sólido-líquido se distribuye irregularmente en el separador centrífugo, no se puede garantizar la operación estable del separador centrífugo.
Todavía más, en la producción industrial de eritritol cristalino de alta pureza, también se ha demandado producir un eritritol cristalino tal que tenga no solamente una alta pureza sino que también esté exento de cualquier inclusión de polvo fino para evitar la aglomeración de productos cristalinos.
En vista de las circunstancias anteriormente mencionadas se ha logrado la presente invención, y que está constituida por un grupo de invenciones que se asocian unas con otras.
Resumen de la invención
Un objeto de la presente invención es proporcionar un procedimiento para producir eritritol cristalino de alta pureza que tiene una pureza aun más alta y está adicionalmente mejorado en forma cristalina en comparación con los producidos mediante procedimientos convencionales.
Para lograr el objetivo, en un primer aspecto de la presente invención, se proporciona un procedimiento para producir eritritol cristalino de alta pureza que comprende una etapa de cristalización que somete una disolución acuosa que contiene eritritol como disolución bruta a cristalización y una etapa de separación de cristales que separa eritritol cristalino de una papilla que contiene eritritol cristalino, que se obtiene en la etapa de cristalización, en el que
se ajusta la concentración de eritritol de dicha disolución acuosa que contiene eritritol de 30 a 60% en peso al comienzo de la etapa de cristalización;
se enfría dicha disolución acuosa que contiene eritritol a una velocidad de enfriamiento de no más de 20ºC/hora
se añaden cristales de semilla de eritritol a dicha disolución acuosa que contiene eritritol en el curso del enfriamiento; y
después de enfriar a no más de 20ºC, el eritritol cristalino producido se separa de dicha papilla,
que comprende adicionalmente una etapa de separación de los microbios que separa microbios de una disolución de cultivo que contiene eritritol como disolución bruta y una etapa de separación cromatográfica que somete una disolución purificada que se recupera de dicha etapa que separa los microbios a separación cromatográfica, seguida de dicha etapa de cristalización,
siendo dicha disolución acuosa que contiene eritritol que se ha de tratar en dicha etapa de cristalización una fracción de eritritol que se recupera de dicha etapa de separación cromatográfica, y
en el que dicha etapa de separación de los microbios se lleva a cabo mediante un procedimiento de filtración de flujo transversal que usa una membrana cerámica o una membrana orgánica, y la temperatura de dicha disolución que se ha de tratar en la etapa de separación de los microbios es de 50 a 90ºC.
Otro objeto de la presente invención es proporcionar un procedimiento para producir eritritol cristalino de alta pureza que comprende una etapa de cristalización que somete una disolución acuosa que contiene eritritol como disolución bruta a cristalización y una etapa de separación de cristales que separa eritritol cristalino de una papilla que contiene eritritol cristalino que se obtiene en la etapa de cristalización, en el que
se ajusta la concentración de eritritol de dicha disolución acuosa que contiene eritritol de 30 a 60% en peso al comienzo de la etapa de cristalización;
se enfría dicha disolución acuosa que contiene eritritol a una velocidad de enfriamiento de no más de 20ºC/hora
se añaden cristales de semilla de eritritol a dicha disolución acuosa que contiene eritritol en el curso del enfriamiento; y
después de enfriar a no más de 20ºC, el eritritol cristalino producido se separa de dicha papilla,
en el que dicha etapa de separación de cristales se lleva a cabo mediante separación centrífuga usando una fuerza centrífuga de 6,7 \cdot 10^{3} a 6,7 \cdot 10^{4} Pa, y el eritritol cristalino húmedo separado mediante dicha separación centrífuga se lava por pulverización con agua a una temperatura de no más de 20ºC, siendo la cantidad de agua usada en el lavado por pulverización 0,1 a 1 parte en peso referida a una parte en peso de dicho eritritol cristalino húmedo.
Breve descripción de los dibujos
La Fig. 1 es una vista esquemática conceptual que muestra una etapa de separación de los microbios preferida en un procedimiento según la presente invención;
La Fig. 2 es una vista esquemática conceptual que muestra el movimiento de los respectivos componentes en una etapa de separación cromatográfica preferida en un procedimiento según la presente invención;
La Fig. 3 es una vista esquemática conceptual que muestra una instalación utilizable en la etapa de separación cromatográfica preferida en un procedimiento según la presente invención;
La Fig. 4 es una vista explicativa que muestra un ejemplo de un separador centrífugo que se usa preferiblemente en la etapa de separación de cristales en un procedimiento según la presente invención; y
La Fig. 5 es una vista en sección ampliada que muestra partes esenciales del separador centrífugo que se muestra en la Fig. 4.
Descripción detallada de la invención
La presente invención se describe con detalle a continuación.
La disolución acuosa que contiene eritritol utilizada en la presente invención, no está particularmente restringida, aunque ejemplos típicos de esas disoluciones pueden incluir (1) una fracción de eritritol que se recupera de una etapa de separación cromatográfica en el procedimiento que comprende una etapa de separación de los microbios que retira los microbios de una disolución de cultivo que contiene eritritol como disolución bruta, la etapa de separación cromatográfica que somete una disolución purificada que se recupera de la etapa de separación de los microbios a separación cromatográfica, y una etapa de cristalización que somete la fracción de eritritol que se recupera de la etapa de separación cromatográfica a cristalización para producir eritritol cristalino, ó (2) un líquido madre de separación de cristales que se recupera de la etapa de cristalización del procedimiento anteriormente mencionado.
En primer lugar, se explica brevemente el procedimiento anteriormente mencionado. La disolución de cultivo que contiene eritritol se puede producir cultivando microorganismos que producen eritritol en un medio de cultivo acuoso bajo condiciones aeróbicas. El procedimiento de cultivo no está particularmente restringido, y se puede usar para ello cualquiera de los procedimientos conocidos.
Por ejemplo, como materiales de cultivo brutos, se pueden usar sacarosa cristalina, glucosa cristalina o glucosa purificada que se obtiene sometiendo almidón al procedimiento de conversión enzimática en sacarosa o similares. Incidentalmente, la glucosa purificada puede tener habitualmente un contenido de glucosa de 93 a 97%, en peso y el resto de la glucosa purificada puede estar compuesto de oligosacáridos tales como di-, tri- o más sacáridos.
Por otra parte, como microorganismos que producen eritritol, se pueden usar genus Aureobasidium (solicitud de patente japonesa abierta a consulta por el público (KOKAI) Nº 61-31091(1986)), Moniliella tomentosa var. pollinis (solicitud de patente japonesa abierta a consulta por el público (KOKAI) N^{os} 60-110295 a 110298(1985)), Trichosporonoides megachiliensis (solicitud de patente japonesa abierta a consulta por el público (KOKAI) Nº 63-196298(1988), nombre anterior: genus Aureobasidium), Trichosporanoides oedocephalis (solicitud de patente japonesa abierta a consulta por el público (KOKAI) Nº 9-252765 (1997)), Candida zeylanoides (ATCC15585), Torulopsis fomata (ATCC15586), etc., (solicitud de patente japonesa abierta a consulta por el público (KOKAI) Nº 49-118889(1974)), Candida lipolytica (USP Nº 3.756.917), genus Trigonopsis, genus Candida (publicación de patente japonesa (KOKOKU) Nº 47-41549(1972)), o similares.
Además, como sales inorgánicas que se usan en el medio de cultivo, se pueden ejemplificar KH_{2}PO_{4}, MgSO_{4}, CaCl_{2}, K_{2}SO_{4}, CaSO_{4}, FeSO_{4}, MnSO_{4}, ZnSO_{4}, (NH_{4})_{2}HPO_{4} o similares. Como fuentes de nitrógeno, se pueden ejemplificar (NH_{4})_{2}SO_{4}, CO(NH_{2})_{2}, NH_{4}Cl, NH_{4}NO_{3} o similares. Como fuentes de nutrientes, se pueden ejemplificar líquido de maíz macerado, alimento de semilla de soja, diversos aminoácidos, peptona, tiamina, extracto de levadura o similares.
El propio procedimiento anteriormente mencionado que comprende sucesivamente la etapa de separación de los microbios, la etapa de separación cromatográfica y la etapa de cristalización, ya es conocido básicamente, por ejemplo, según se describe en la publicación de patente japonesa (KOKOKU) Nº 7-34748(1995). El resumen del procedimiento es como sigue.
Esto es, la disolución purificada que se obtiene de la etapa de separación de los microbios, se somete a una etapa de concentración, preferiblemente después de una etapa de ablandamiento, y luego se alimenta a la etapa de separación cromatográfica. La fracción de eritritol que se recupera de la etapa de separación cromatográfica se somete también a una etapa de concentración, preferiblemente después de un tratamiento con carbón activado y/o tratamiento de desalación, y luego se alimenta a la etapa de cristalización y a la etapa de separación de cristales. Después de esto, el eritritol cristalino separado en la etapa de separación de cristales se somete sucesivamente a etapas de secado y tamizado para obtener un producto cristalino a alta pureza.
En la presente invención, según el descubrimiento de los inventores de la presente, se prefiere que la etapa de separación de los microbios se lleve a cabo mediante un procedimiento de filtración de flujo transversal usando una membrana cerámica o una membrana orgánica al tiempo que se mantiene la disolución que se ha de tratar a una temperatura de 50 a 90ºC. Las razones para ello son las siguientes.
(1)
En el caso en que la etapa de separación de los microbios se lleve a cabo mediante el procedimiento de filtración de flujo transversal, las impurezas sólidas se pueden retirar eficazmente y en alta proporción de la disolución de cultivo que contiene eritritol, y que contiene diversas impurezas líquidas y sólidas. Además, cuando la disolución purificada que se recupera de la etapa de separación de los microbios se concentra a fin de aumentar la eficacia de la separación cromatográfica, se puede prevenir notablemente la presencia del fenómeno de formación de espuma. Por consiguiente, llevando a cabo la etapa de separación de los microbios mediante el procedimiento de filtración de flujo transversal, usando una membrana cerámica o una membrana orgánica, llega a ser posible producir eritritol cristalino de alta pureza de manera industrialmente ventajosa.
(2)
Aun cuando se use el procedimiento de la filtración de flujo transversal, todavía es difícil retirar completamente las impurezas, de manera que la disolución purificada que se obtiene de la etapa de separación de los microbios todavía contiene diversas impurezas que sirven como fuentes de nutrientes para diversos gérmenes. Por esta razón, en el caso en que la disolución de cultivo que se ha de tratar en la etapa de separación de los microbios tenga una temperatura baja, se provoca el crecimiento de diversos gérmenes. Esto da como resultado no solamente la producción de eritritol cristalino de baja calidad que es desfavorable cuando se usa como edulcorantes o medicinas, sino también, por ejemplo, la obstrucción de la columna de resina en la etapa de separación cromatográfica o el fallo del intercambiador de calor al quemar y pegarse a la superficie de sus tubos o placas. Por lo tanto, en conformidad con la presente invención la disolución de cultivo que se ha de tratar se mantiene a no menos de 50ºC durante la etapa de separación de los microbios a fin de prevenir el crecimiento de diversos gérmenes. Incidentalmente, cuando la temperatura de la disolución de cultivo que se ha de tratar es más de 90ºC, surge un inconveniente tal que la disolución de cultivo que se ha de tratar experimenta un abrupto aumento en el grado de coloración de la misma.
\vskip1.000000\baselineskip
La estructura de la membrana cerámica (membrana porosa) no está particularmente restringida. La membrana cerámica puede tener indistintamente una estructura de capa sencilla o una estructura de dos capas que tenga una capa de partícula fina y una capa de soporte. En el caso de la estructura de dos capas, la capa de partícula fina puede tener un diámetro de poro medio habitualmente de 0,1 a 1 \mum, preferiblemente de 0,1 a 0,5 \mum. Como materiales de la membrana cerámica se pueden ejemplificar sílice, alúmina, sílice-alúmina, mullita, zirconia, carbón, cordierita, carburo de silicio o similares. La estructura de la membrana orgánica no está particularmente restringida. Sin embargo, se requiere que la membrana orgánica esté hecha de un material capaz de mostrar una resistencia al calor suficiente a una temperatura de 50 a 90ºC según se describe más adelante. Como materiales de membrana orgánica de este tipo, se pueden ejemplificar poliolefinas, sulfonas de poliéter o similares.
En el procedimiento de filtración de flujo transversal, se puede usar una instalación tal que comprenda un depósito de circulación, una bomba, un elemento de separación provisto en el mismo de una membrana filtrante y un reservorio de filtrado. Esos elementos cooperan para constituir un recorrido de circulación para la disolución de cultivo que se ha de tratar. Preferiblemente, se dispone un intercambiador de calor en medio del recorrido de circulación.
El procedimiento de filtración de flujo transversal es principalmente un procedimiento de filtración en el que se hace que fluya el líquido que se ha de filtrar sobre una superficie de un filtro de membrana en la dirección paralela a la misma, filtrando de este modo el líquido al tiempo que se minimiza la deposición de una capa de torta filtrante sobre el filtro de membrana por la fuerza de cizalladura del flujo paralelo. Por consiguiente, el líquido que se ha de filtrar (disolución bruta) se alimenta desde un extremo del recorrido de circulación rodeado por el filtro de membrana y se filtra al tiempo que fluye a través del mismo. Se descarga el filtrado por filtro de membrana en la dirección perpendicular al recorrido de circulación mientras un líquido concentrado en microbios se descarga por el otro extremo del recorrido de circulación.
La filtración de flujo transversal se puede llevar a cabo en una operación por lotes. En la presente invención, el procedimiento de filtración de flujo transversal comprende una serie de operaciones que incluyen (A) concentración de los microbios y filtración, (B) filtración con adición de agua, (C) concentración de microbios y filtración adicionales, (D) lavado con agua y (E) regeneración. Especialmente, en la realización preferida de la presente invención, se pueden llevar a cabo la concentración y la filtración adicionales (C).
La concentración de microbios y filtración (A) se pueden llevar a cabo como sigue. En la etapa de separación de los microbios (aparato de filtración de flujo transversal) según se muestra en la Fig. 1, después de que se ha alimentado a un depósito de circulación 1 una cantidad predeterminada de una disolución de cultivo que contiene eritritol, se hace funcionar una bomba 2 para iniciar la circulación de una disolución de cultivo haciéndola pasar por una membrana filtrante 3 y un intercambiador de calor 6 y haciéndola volver al depósito de circulación 1. La disolución purificada (filtrado) que ha pasado por la membrana filtrante 3, se recibe en un reservorio de filtrado 5. Cuando la concentración de microbios en la disolución de cultivo circulada alcanza un valor predeterminado, se terminan la concentración de microbios y la filtración. Incidentalmente, la disolución de cultivo que contiene eritritol se puede calentar hasta el intervalo de temperatura anteriormente mencionado, si es necesario, antes de su alimentación al depósito de circulación 1, o la disolución de cultivo que se circula se puede mantener dentro del intervalo de temperatura usando el intercambiador de calor 6 (esas condiciones de calentamiento o temperatura también se pueden aplicar comúnmente a la filtración con adición de agua (B) y a la concentración y filtración adicionales (C) que se describen más adelante).
En la filtración con adición de agua (B), se puede llevar a cabo la misma operación de circulación que se ha descrito anteriormente añadiendo continuamente agua a la disolución concentrada en el depósito de circulación 1 al tiempo que se mantiene un nivel constante de disolución concentrada. La disolución purificada (filtrado) que se ha hecho pasar por la membrana filtrante 3 se recibe en el reservorio de filtrado 5. Incidentalmente, el agua que se ha de añadir se puede calentar hasta el intervalo de temperatura anteriormente mencionado, si se requiere, antes de su alimentación al depósito de circulación 1.
La concentración y filtración adicionales (C) se pueden llevar a cabo para lograr el denominado exprimido. En esta operación, después de que se detiene la adición de agua al depósito 1 (en la filtración con adición de agua (B)), se repite la misma operación de circulación según se ha descrito anteriormente. La disolución purificada (filtrado) que se ha hecho pasar por la membrana filtrante 3, se recibe en el reservorio de filtrado 5.
El lavado con agua (D) y la regeneración (E) se pueden llevar a cabo mediante procedimientos ordinarios. Como regeneradores, se pueden usar, por ejemplo, una disolución acuosa que contenga aproximadamente 0,5% en peso de NaOH y aproximadamente 0,2% en peso de NaClO. Las operaciones (D) y (E) se pueden llevar a cabo a una temperatura habitualmente de aproximadamente 50 a aproximadamente 70ºC.
Las anteriormente mencionadas concentración de microbios y filtración (A), filtración con adición de agua (B) y concentración y filtración adicionales (C) se pueden llevar a cabo habitualmente bajo unas condiciones tales que la velocidad del flujo de recirculación sea de 1 a 10 m/s y la diferencia de presión a través de la membrana sea de 0,1 a 10 kg/cm^{2}. En la concentración de microbios y filtración (A) y en la filtración con adición de agua (B), el caudal de la disolución que penetra por la membrana filtrante puede ser habitualmente de 100 a 200 litros/m^{2}-hora. En la concentración y filtración adicionales (C) el caudal de la disolución que penetra por la membrana filtrante se disminuye gradualmente. En la presente invención, se prefiere que cuando el caudal de penetración alcanza aproximadamente 50 litros/m^{2}-hora, se detiene la concentración y filtración adicionales, y se inician el lavado con agua (D) y la regeneración (E). Esto es, según el descubrimiento de los inventores de la presente, en el caso en que la disolución de cultivo que contiene eritritol se someta excesivamente a la concentración y filtración adicionales por fuera del intervalo anteriormente especificado, la obstrucción de la membrana filtrante 3 tiende a acelerarse abruptamente, afectando de este modo adversamente a la operación que sucede a la etapa de separación de los microbios.
En la presente invención, el pH de la disolución de cultivo que contiene eritritol que se ha de tratar en la etapa de separación de los microbios anterior, se ajusta preferiblemente de 3,5 a 5,5. Específicamente, cuando el pH de la disolución de cultivo que contiene eritritol que se obtiene de la etapa de cultivo precedente se controla en el intervalo cerca del punto isoeléctrico de la misma, las proteínas en la disolución de cultivo se precipitan en flóculos, facilitando adicionalmente de este modo la retirada de las proteínas. El pH de la disolución de cultivo se puede ajustar usando, por ejemplo, una disolución acuosa que contenga un álcali apropiado tal como hidróxido sódico o similar.
La etapa de ablandamiento se lleva a cabo a fin de mantener una buena eficacia de separación en la siguiente etapa de separación cromatográfica. Como resinas de intercambio iónico, se pueden ejemplificar resinas de intercambio catiónico fuertemente ácidas de tipo ácido sulfónico o resinas de intercambio catiónico débilmente ácidas de tipo ácido carboxílico, de las que ambas se usan en forma de tipo Na. La disolución purificada se hace pasar por una torre o columna rellena de resina para sustituir iones Ca o iones Mg en la misma con iones Na, retirando de este modo los iones Ca o Mg de la misma. Las resinas de intercambio catiónico que se han convertido de tipo Na a tipos Ca y/o Mg, se pueden regenerar para convertir de nuevo esas resinas a tipo Na, y usarse repetidamente. En el caso de las resinas de tipo ácido sulfónico, se pueden regenerar las resinas usando una disolución acuosa de NaCl. En el caso de las resinas de tipo ácido carboxílico, se pueden convertir en primer lugar las resinas en resinas de tipo H usando ácidos fuertes tales como HCl o H_{2}SO_{4}, y regenerarlas luego a resinas de tipo Na usando una disolución acuosa de NaOH. Entre esos procedimientos, se prefiere el procedimiento que usa resinas de intercambio catiónico débilmente ácidas de tipo ácido carboxílico (tipo Na).
En la presente invención, según el descubrimiento de los inventores de la presente, se prefiere que la etapa de ablandamiento anterior se lleve a cabo al tiempo que se mantiene la temperatura de la disolución purificada de 50 a 90ºC. Las razones para ello son como sigue.
La disolución purificada que se obtiene de la etapa de separación de los microbios, todavía contiene diversas impurezas que sirven como fuentes de nutrientes para diversos gérmenes, dando como resultado el crecimiento de diversos gérmenes. Por consiguiente, si se inhibe el crecimiento de diversos gérmenes en una amplitud suficiente en un momento inicial del procedimiento, se puede prevenir eficazmente no solamente la inclusión de impurezas en el eritritol cristalino sino también la presencia de otros inconvenientes, por ejemplo, el atasco de la columna de resina en el etapa de separación cromatográfica o fallo del intercambiador de calor al quemar y pegarse a la superficie de sus tubos o placas, de modo que llega a ser posible producir eritritol cristalino de alta pureza de manera industrialmente ventajosa.
La disolución purificada que se ha de tratar en la etapa de ablandamiento, se puede mantener a una temperatura de 50 a 90ºC por un medio de calentamiento dispuesto en la anteriormente mencionada torre o columna rellena de resina, o por el precalentamiento de la disolución purificada antes de la alimentación a la etapa de ablandamiento. Cuando la temperatura de la disolución purificada es menos de 50ºC, no se puede prevenir suficientemente la inclusión de diversos gérmenes en la disolución purificada ni el crecimiento de diversos gérmenes. Por otra parte, cuando la temperatura de la disolución purificada es más de 90ºC, surgen inconvenientes tales como coloración de la disolución de cultivo tratada o deterioro de la resina usada.
La etapa de concentración que se lleva a cabo antes de la etapa de separación cromatográfica, apunta a aumentar la eficacia de la separación cromatográfica. La disolución de cultivo purificada se concentra hasta que el contenido de sólidos disueltos en la misma alcanza habitualmente del 30 al 70% en peso, preferiblemente del 35 al 45% en peso.
Incidentalmente, en general, como concentradores que se usan para concentrar una disolución acuosa que contiene sustancias orgánicas, se conocen, por ejemplo, un evaporador del tipo de doble pared que se calienta mediante vapor que fluye por la pared exterior del recipiente, un evaporador del tipo de circulación forzada provisto de una bomba de circulación para aumentar el caudal del fluido que se hace pasar por el conducto calefactor, un evaporador del tipo de película ascendente o descendente perteneciente a un evaporador vertical de tubo largo, o similares.
\newpage
El concentrador que se usa en la etapa de concentración, no está particularmente restringido siempre que se use cualquiera de los sistemas de calentamiento anteriormente mencionados. Según el descubrimiento de los inventores de la presente, se prefieren los evaporadores de tipo de circulación forzada o evaporadores de tipo película, y son más preferidos los evaporadores de tipo película. En general, entre ellos son todavía más preferidos los evaporadores de tipo de película descendente. Las razones para ello son como sigue.
Dado que la disolución purificada que se obtiene de la etapa de separación de los microbios contiene diversas impurezas según se ha descrito anteriormente, la disolución tiende a contener componentes coloreados, especialmente aquellos que se producen por reacción de Mailard entre glucosa y aminoácido. La producción de componentes coloreados de este tipo se fomenta con el tiempo de calentamiento. Asimismo, dado que la disolución de cultivo contiene proteínas solubles, se produce un fenómeno de formación de espuma tras la concentración, de modo que no es necesariamente fácil llevar a cabo una concentración estable de la disolución purificada. En tal caso, generalmente es difícil satisfacer las condiciones de transferencia de calor para que inhiban la presencia del fenómeno de formación de espuma, especialmente tras la concentración, usando el evaporador de doble pared. Por otra parte, los evaporadores de tipo de circulación forzada o los evaporadores de tipo película pueden prevenir la presencia del fenómeno de formación de espuma tras la concentración sobre un amplio intervalo de condiciones de transferencia de calor.
El evaporador de tipo de película descendente anteriormente mencionado está dividido en una sección de evaporador y una sección de formación de película descendente desde el punto de vista de la estructura funcional del mismo. La sección de formación de película descendente puede ser o bien (1) de tipo placa o (2) de tipo carcasa y tubo. En la etapa de concentración, la presión de operación es preferiblemente 9,3 a 40 kPa, y la temperatura del fluido es preferiblemente 45 a 80ºC. Cuando la presión de operación es menos de 9,3 kPa, tiende a generarse formación violenta de espuma, provocando de este modo una pérdida debida al arrastre e incapacitación adicional de la operación estable del evaporador. Además, la operación a baja presión tiende a hacer que disminuya la temperatura del fluido, de modo que se podría provocar la contaminación por diversos gérmenes. Por otra parte, cuando la presión de operación es más de 40 kPa, la temperatura del fluido aumenta de modo que hay tendencia a que se fomente desventajosamente la coloración de la disolución.
La etapa de separación cromatográfica comprende hacer pasar la disolución purificada por una torre de separación rellena de resinas de intercambio catiónico fuertemente ácidas de tipo metal alcalino o de tipo amonio, que eluyen componentes absorbidos en las resinas con agua para descargar un efluente que contiene los componentes eluidos, y que separan una fracción compuesta principalmente de eritritol del efluente. La fracción obtenida que se compone principalmente de eritritol puede contener habitualmente eritritol en una cantidad de 3 a 30% en peso.
En la etapa de separación cromatográfica anteriormente mencionada (en la torre de separación), los respectivos componentes absorbidos en las resinas de intercambio catiónico como agente de separación se pueden eluir de la siguiente manera. Esto es, después de las sales, se eluyen en primer lugar componentes coloreados y polisacáridos de alto peso molecular (que se denominarán en adelante meramente como "primeras impurezas"), se eluyen luego oligosacáridos tales como di- o más sacáridos y subproductos distintos de glicerol (que se denominarán en adelante meramente como "segundas impurezas") y finalmente se eluyen eritritol y glicerol (véase publicación de patente japonesa (KOKOKU) Nº 7-34748(1995)). Por consiguiente, en la etapa de separación cromatográfica, después de que se eluyen las impurezas primeras y segundas, (que se denominarán en adelante meramente como "impurezas"), se eluye luego la fracción de eritritol (compuesta de eritritol y glicerol) y se recupera. A continuación, la fracción recuperada se somete a tratamiento de cristalización, obteniendo de este modo eritritol cristalino de alta pureza.
Al mismo tiempo, en general, es difícil separar completamente la fracción de eritritol y la fracción de impurezas una de la otra. Por lo tanto, después de que se retira la fracción de eritritol eluida junto con la fracción de impureza (que se denominarán en adelante meramente como "fracción solapada"), se recupera la fracción de eritritol exenta de impurezas.
Sin embargo, la cantidad de fracción solapada se aumenta cuando la pureza de la fracción de eritritol recuperada llega a ser más alta, de modo que se rebaja el porcentaje de recuperación del eritritol cristalino de alta pureza deseado.
En conformidad con la presente invención, se adopta preferiblemente la siguiente etapa de separación cromatográfica mejorada a fin de obtener eritritol cristalino de alta pureza en un porcentaje de recuperación alto y reducir la carga aplicada a la etapa de concentración después de la etapa de separación cromatográfica.
Esto es, en el procedimiento según la presente invención, las siguientes operaciones de la separación cromatográfica se llevan a cabo preferiblemente usando una torre de separación rellena con resinas de intercambio catiónico fuertemente ácidas de tipo metal alcalino o de tipo amonio:
(1)
Alimentar una cantidad predeterminada de disolución purificada a lo alto de la torre de separación.
(2)
Circular agua retirada del fondo de la torre de separación a lo alto de la misma, desarrollando de este modo los respectivos componentes absorbidos por las resinas y moviendo las fracciones de impurezas hacia la zona del fondo de la torre de separación.
\newpage
(3)
Alimentar agua a lo alto de la torre de separación, retirando de este modo la fracción de impureza del fondo de la torre de separación.
(4)
Retirar la fracción solapada compuesta de la fracción de eritritol y las fracciones de impurezas del fondo de la torre de separación y circular la fracción solapada a lo alto de la torre de separación, moviendo de este modo la fracción de eritritol hacia la zona del fondo de la torre de separación.
(5)
Alimentar agua a la torre de separación en una porción apropiada en la que no existe fracción solapada, retirando y recuperando de este modo la fracción de eritritol del fondo de la torre de separación.
En la etapa de separación cromatográfica anteriormente mencionada, se puede usar la torre de separación rellena con resinas de intercambio catiónico fuertemente ácidas de tipo metal alcalino o de tipo amonio. Una torre de separación de este tipo se hace rellenando una papilla acuosa de resinas en una columna. La cantidad de resinas que se rellenan (longitud de la torre de separación) se puede determinar apropiadamente de tal manera que la torre de separación tenga la buena capacidad de separación que se requiere para tratar la disolución. La torre de separación puede tener preferiblemente una estructura dividida que está compuesta de múltiples secciones según se muestra en la Fig. 3 y se describe con detalle más adelante, desde el punto de vista de operatividad de la misma, aunque las que tienen una estructura integrada también son utilizables.
La separación cromatográfica se puede llevar a cabo según las siguientes operaciones que se ilustran en la Fig. 2. Incidentalmente, la Fig. 2 muestra operaciones después de una operación final (quinta operación) de la etapa de separación cromatográfica previa. Además, las operaciones respectivas que se muestran en la Fig. 2 se representan con respecto al estado inmediatamente después de la terminación de cada operación.
(1)
Una cantidad predeterminada de la disolución purificada (F) se alimenta a lo alto de una torre de separación (la primera operación de la Fig. 2), retirando de este modo eritritol residual (P) que queda en una cuarta torre después de la operación final (quinta operación de la Fig. 2) de la etapa de separación cromatográfica previa.
(2)
Se retira agua del fondo de la torre de separación y se circula a lo alto de la misma, desarrollando de este modo los respectivos componentes absorbidos en las resinas y moviendo la fracción de impureza hacia la zona del fondo de la torre de separación (la segunda operación de la Fig. 2). Tras llevar a cabo esta operación, la torre de separación se mantiene en estado de sistema cerrado, y se circula agua como eluyente por la torre de separación mediante la operación de una bomba. Específicamente, el agua en la zona del fondo de la torre de separación se circula sucesivamente a lo alto de la misma, desarrollando de este modo los respectivos componentes absorbidos en las resinas y moviendo la fracción de impureza hacia la zona del fondo de la torre de separación.
La segunda operación de la Fig. 2 muestra un estado tal que la fracción de eritritol (a) se transfiere desde la segunda torre a la tercera torre, la primera fracción de impureza (c) se transfiere a la cuarta torre, y la segunda fracción que contiene impureza (b) se mueve a una posición entre la fracción de eritritol (a) y la primera fracción de impureza (c). Incidentalmente, después de alcanzar el estado anterior, el agua que se retira del fondo de la torre de separación contiene impurezas y, por lo tanto, ya no es utilizable más como eluyente.
(3)
Se alimenta agua (W) a lo alto de la torre de separación, retirando de este modo la fracción de impureza (R) del fondo de la torre de separación (la tercera operación de la Fig. 2). La fracción de impureza retirada se trata apropiadamente. La tercera operación de la Fig. 2 muestra un estado tal que la fracción de impureza se retira del fondo de la torre de separación. La expresión "fracción de impureza" en la presente invención, significa una fracción tal que contiene impurezas pero que está sustancialmente exenta de fracción de eritritol, y, por lo tanto, no incluye la fracción solapada (L) (véase la Fig. 2) compuesta de ambas, fracción de eritritol y fracción de impureza. La fracción solapada (L) se trata en la siguiente cuarta operación.
(4)
La fracción solapada (fracción "L" en la Fig. 2) compuesta de fracción de eritritol y fracción de impureza se retira del fondo de la torre de separación y se circula a lo alto de la misma, moviendo de este modo la fracción de eritritol hacia la zona del fondo de la torre de separación. Tras llevar a cabo esta operación, la torre de separación se mantiene en el estado de un sistema cerrado, y la fracción solapada (L) se retira del fondo de la torre de separación y se circula a lo alto de la misma mediante la operación de una bomba.
(5)
Se alimenta agua (W) a la torre de separación en una posición apropiada en la que no existe fracción solapada, retirando y recuperando de este modo la fracción de eritritol del fondo de la torre de separación. La quinta operación de la Fig. 2 muestra un estado tal que se alimenta agua a lo alto de la segunda torre y la mayor parte de la fracción de eritritol (a) se retira del fondo de la torre de separación. El eritritol residual que queda en la cuarta torre se puede recuperar llevando a cabo la primera operación de la siguiente etapa de separación cromatográfica en la que la disolución purificada (F) se alimenta de nuevo a lo alto de la torre de separación. Adicionalmente, el eritritol contenido en la fracción transferida (circulada) a lo alto de la torre de separación en la cuarta operación anterior, se separa y se recupera de la fracción de impureza junto con eritritol en la disolución purificada (F).
La primera característica de la separación cromatográfica anteriormente mencionada reside en que después de que la fracción de impureza que está sustancialmente exenta de la fracción de eritritol (a) se retira del fondo de la torre de separación, la fracción solapada compuesta de la fracción de impureza y la fracción de eritritol (a) (que habitualmente se retira sucesivamente y se trata apropiadamente a fin de potenciar la pureza de eritritol) se transfieren (se circulan) a lo alto de la torre de separación, aumentando de este modo el porcentaje de recuperación de eritritol sin disminuir la pureza del mismo.
Asimismo, la segunda característica de la separación cromatográfica anteriormente mencionada reside en que la cantidad de agua que se alimenta a la torre de separación desde fuera del sistema está limitada al nivel más bajo posible, reduciendo de este modo la carga aplicada a la etapa de concentración sucesiva que se describe con detalle más adelante. Por lo tanto, en la etapa de separación cromatográfica, (1) se usa agua en la torre de separación como eluyente (la segunda operación); (2) según se describe anteriormente, la fracción solapada compuesta de la fracción de impureza y la fracción de eritritol, se transfiere (se circula) a lo alto de la torre de separación, transfiriendo de este modo la fracción de eritritol hacia la zona del fondo de la torre de separación (la cuarta operación); y (3) se reduce la cantidad de agua que se alimenta a la torre de separación en la quinta operación, haciendo de este modo que una parte de la fracción de eritritol permanezca en la torre de separación, y se retira y se recupera la fracción de eritritol residual de la torre de separación cuando la disolución purificada se alimenta nuevamente a la misma en la siguiente etapa de separación cromatográfica (quinta operación).
Se puede llevar a cabo la etapa de tratamiento con carbón activado y/o la etapa de desalación a fin de retirar componentes coloreados, componentes de olor, sales y similares de la disolución de cultivo. El orden de estas etapas se puede seleccionar opcionalmente. El carbón activado que se usa puede estar en cualquier forma, es decir, indistintamente en forma de polvo o partículas. En la etapa de desalación, se puede usar una columna de intercambio de cationes, una columna de intercambio de aniones y una torre de lecho mixto que contiene ambas resinas de intercambio de cationes y aniones.
Se puede llevar a cabo la etapa de concentración inmediatamente antes de la etapa de cristalización a fin de potenciar la eficacia de la sucesiva etapa de cristalización. La etapa de cristalización se puede continuar hasta que el contenido de sólidos disueltos en la disolución alcance habitualmente 30 a 70% en peso, preferiblemente 40 a 60% en peso. En una etapa de concentración de este tipo, se usan preferiblemente el mismo evaporador y condiciones operativas que las de la etapa de concentración antes de la etapa de separación cromatográfica, por las mismas razones que se han descrito anteriormente.
En la presente invención, como disoluciones acuosas que contienen eritritol (disoluciones brutas que se han de cristalizar), se pueden usar (1) la fracción de eritritol que se recupera de la etapa de separación cromatográfica del procedimiento anteriormente mencionado, (2) el líquido madre de cristalización que se recupera de la etapa de separación de cristales del procedimiento anteriormente mencionado, o similares.
En la etapa de cristalización del procedimiento según la presente invención, la concentración de eritritol en la disolución bruta que se ha de tratar se ajusta de 30 a 60% en peso al comienzo de la cristalización; la disolución se enfría a una velocidad de enfriamiento de no más de 20ºC/hora; se añaden cristales de semilla de eritritol a la disolución bruta en el curso del enfriamiento para la cristalización; y después se enfría la disolución a una temperatura de no más de 20ºC, y luego se separa el eritritol cristalino de la papilla resultante que contiene eritritol cristalino.
En la etapa de cristalización del procedimiento según la presente invención, se prefiere que después de que la temperatura de la disolución alcanza 70 a 60ºC en el curso del enfriamiento, se reduce la velocidad de enfriamiento de la disolución, específicamente a no más de 10ºC/hora, y la disolución se enfría adicionalmente hasta una temperatura de no más de 20ºC, preferiblemente no más de 15ºC. Adicionalmente, en conformidad con la presente invención, se prefiere que en un momento en que la temperatura de la disolución acuosa que contiene eritritol en el depósito de cristalización es más baja que la temperatura a la que se satura la solubilidad del eritritol y la diferencia entre esas temperaturas es no más de 15ºC, se añaden cristales de semilla de eritritol a la disolución acuosa que contiene eritritol en el depósito de cristalización. Más preferiblemente, los cristales de semilla de eritritol se añaden en el momento en que la temperatura de la disolución acuosa que contiene eritritol en el depósito de cristalización es de 1 a 5ºC más baja que la temperatura a la que se satura la solubilidad del eritritol. La cantidad de cristales de semilla que se añaden no está particularmente restringida, pero preferiblemente es no más de 0,1% en peso, más preferiblemente 0,001 a 0,05% en peso referido al peso de eritritol que se cristaliza en el depósito de cristalización.
El aparato que se usa en la etapa de separación de cristales no está particularmente restringido. Sin embargo, según el descubrimiento de los inventores de la presente, se prefiere usar un separador centrífugo que tenga una estructura tal que la papilla que se ha de tratar se disperse en la dirección de una circunferencia de una superficie filtrante y luego se haga incidir contra la superficie filtrante. Las razones para ello son como sigue.
En el caso en que se use el separador centrífugo de tipo cesta más típico, la papilla que contiene eritritol cristalino que se suministra desde una boquilla de conducto sencillo se divide en fases sólida y líquida antes de que la papilla se distribuya sobre la superficie filtrante entera, dando como resultado una distribución irregular del eritritol cristalino en el separador centrífugo y que falle la operación del aparato. Esos problemas se pueden evitar usando el separador centrífugo que tiene la estructura anteriormente mencionada.
El separador centrífugo que se muestra en la Fig. 4 está constituido esencialmente por un elemento filtrante rotatorio de forma cilíndrica que se amplia gradualmente de diámetro a lo largo de la dirección axial del mismo, un tornillo que tiene un contorno aproximadamente conformado con la periferia interior del elemento filtrante y dispuesto coaxialmente dentro del elemento filtrante y un conducto de alimentación de papilla montado hacia el lado de diámetro pequeño del elemento filtrante.
Más específicamente, el separador centrífugo que se muestra en la Fig. 4 comprende como componentes principales, una cesta 11 y un tornillo 12 soportados ambos sobre un árbol de transmisión 10, una envoltura 13 que se dispone rodeando la periferia exterior de la cesta 11, y un conducto de alimentación de papilla 14 insertado en el tornillo 12. El árbol de transmisión 10 tiene una estructura de eje doble concéntrico. El eje exterior del árbol de transmisión 10 es arrastrado por un motor 16 por una cinta en V 15, y un eje interior del árbol de transmisión 10 es arrastrado por un reductor de velocidad síncrono 17 a una velocidad de rotación más baja que la del eje exterior. Como resultado, la cesta 11 montada sobre el eje exterior se hace rotar a una velocidad más alta que el tornillo 12 montado sobre el eje interior.
Según se muestra en la Fig. 5, el cesto 11 tiene una forma tronco cónica con diámetro ensanchado hacia su extremo, y está provisto de una pared periférica del mismo con un gran número de agujeros 18 que permiten que la disolución se separe para pasar a través de los mismos. Adicionalmente, se dispone una tela metálica 19 para recoger componentes sólidos sobre la superficie periférica interior del cesto 11. El tornillo 12 tiene un contorno tal que se conforma aproximadamente con la superficie periférica interior del cesto 11, y está provisto en el mismo de un espacio de recepción de la papilla definido por una superficie lateral interior inclinada del mismo con diámetro ensanchado hacia la porción del casquillo (base) del mismo. Sobre una pared del lado del casquillo del tornillo 12, se proporciona una pluralidad de orificios 20 por los que se dispersa la papilla. El tornillo 12 también está provisto de una superficie periférica exterior del mismo con paletas helicoidales. El cesto 11 y la tela metálica 19 constituyen el elemento filtrante del separador centrífugo.
La papilla que se recibe en el reservorio 21 que se muestra en la Fig. 4 se alimenta por el conducto de alimentación de papilla 14 hacia el extremo 10a del árbol de transmisión 10, y se introduce en un espacio interior (es decir, el espacio que recibe la papilla) del tornillo 12. En este momento, la papilla se dispersa a lo largo de la superficie periférica interior inclinada del tornillo 12 por la rotación del tornillo 12, según se muestra en la Fig. 5. Como resultado, se permite que la papilla pase por los respectivos orificios 20, se dispersa en la dirección de la circunferencia de la tela metálica 19 se hace girar a alta velocidad junto con el cesto 11, y se hace incidir contra la tela metálica 19. La dispersión de la papilla en la dirección de la circunferencia de la tela metálica 19 también se acelera por la incidencia de la papilla contra el extremo 10a del árbol de transmisión 10. Más específicamente, la papilla se dispersa en la dirección de la circunferencia de la tela metálica 19 por la incidencia contra el extremo 10a, y se permite que pase por los orificios 20 y que incida contra la tela metálica 19 por la acción de la fuerza centrífuga. Adicionalmente, la papilla suministrada sobre la tela metálica 19 es obligada a fluir hacia el extremo de la tela metálica 19 por la acción tanto de la forma inclinada de la misma, es decir, una forma tal que el diámetro se ensancha hacia el extremo, como por la su fuerza de rotación. El movimiento deslizante de la papilla hacia el extremo de la tela metálica 19, también se acelera por la acción rascadora de las paletas helicoidales, acción que está provocada por la diferencia entre las velocidades de rotación de las paletas helicoidales.
El eritritol cristalino así separado se pulveriza y se lava con agua que se alimenta por un conducto de alimentación de agua de lavado 22 y luego por los pequeños agujeros 24 formados a través de la pared periférica del tornillo 12. Después de esto, el eritritol cristalino se descarga por el tornillo 12 desde el extremo del diámetro mayor del cesto 11 al exterior del sistema. Por otra parte, un filtrado separado del eritritol cristalino y el agua de lavado residual se hacen fluir por los agujeros 18 a la envoltura 13, y se descarga luego por el conducto de drenaje 23 al exterior del sistema.
Usando el separador centrífugo que tiene la estructura anteriormente mencionada, llega a ser posible filtrar la papilla al tiempo que se dispersa la papilla en la dirección de la circunferencia de la superficie filtrante. Por consiguiente, se puede prevenir que la papilla que contiene eritritol cristalino se divida en fases sólida y líquida antes de que la papilla se distribuya sobre la superficie filtrante entera, de modo que es posible llevar a cabo suavemente la separación centrífuga de la papilla sin distribución irregular del eritritol cristalino.
En el separador centrífugo que se muestra en las Figs. 4 y 5, la dispersión de la papilla en la dirección de la circunferencia de la superficie filtrante y la incidencia de la papilla contra la superficie filtrante, se pueden lograr usando ambos efectos, (a) el efecto de la superficie de la pared interior inclinada del tornillo 12 y (b) el efecto de la incidencia de la papilla contra el extremo 10a del árbol de transmisión 10, en combinación con la acción de la fuerza centrífuga. Sin embargo, se puede lograr la condición similar usando indistintamente (a) o (b). Alternativamente, también se pueden adoptar unos medios tales que se ajusta un elemento con forma de anillo que tiene un gran número de orificios o una boquilla rotatoria al extremo del conducto de alimentación de la papilla que se inserta en el lado de diámetro más pequeño, y la papilla se dispersa por los orificios del elemento en forma de anillo o por la boquilla rotatoria en la dirección de la circunferencia de la superficie filtrante, e incide contra la superficie filtrante.
Los separadores centrífugos que tienen una estructura de este tipo en que la papilla se dispersa en la dirección de la circunferencia de la superficie filtrante y luego incide contra la superficie filtrante, están fácilmente disponibles comercialmente, por ejemplo, "CONTAVEX" o "PUSHER" (nombre comercial, fabricado por SUMITOMO HEAVY MACHINERY INDUSTRY CO., LTD.).
Al mismo tiempo, la etapa de separación de cristales se puede llevar a cabo habitualmente a una fuerza centrífuga tan alta como sea posible a fin de reducir el contenido de agua del cristal obtenido. Sin embargo, según el descubrimiento de los inventores de la presente, dado que el eritritol tiene una dureza relativamente grande, la operación con una fuerza centrífuga excesiva puede dar como resultado la fractura del eritritol cristalino debido a la incidencia contra la superficie de la pared interior del separador centrífugo. Por esta razón, en conformidad con la presente invención, se prefiere que después de la etapa de separación de cristales que se lleve a cabo bajo una fuerza centrífuga de 50 a 500 G habitualmente, el eritritol cristalino obtenido se lave por pulverización con agua que se usa en una cantidad de 0,1 a 1 parte en peso referida a una parte en peso de eritritol cristalino y se mantenga a una temperatura de 5 a 20ºC.
Cuando la fuerza centrífuga es menos de 50 G, el contenido de agua del eritritol cristalino obtenido puede llegar a ser demasiado grande, dando como resultado no solamente un aumento de la carga en la posterior etapa de secado, sino también el deterioro de la calidad del producto cristalino obtenido debido a la retirada insuficiente del líquido madre del mismo. Por otra parte, cuando la fuerza centrífuga es más de 500 G, el eritritol cristalino se puede fracturar tras la incidencia contra la superficie de la pared interior del separador centrífugo. Por consiguiente, la fuerza centrífuga que se usa en la etapa de separación de cristales es preferiblemente de 100 a 300 G.
La cantidad y temperatura del agua de lavado que se usa para el lavado por pulverización se puede determinar de modo que se pueda lograr un efecto de lavado suficiente sin pérdida por disolución de eritritol cristalino incluso cuando se use la fuerza centrífuga relativamente pequeña anteriormente mencionada. Específicamente, cuando la cantidad de agua de lavado que se usa es menos de 0,1 parte en peso referida a una parte en peso de eritritol cristalino, el efecto de lavado puede ser insatisfactorio, fracasando de este modo en obtener eritritol cristalino de alta pureza. Por otra parte, cuando la cantidad de agua de lavado que se usa es más de 1 parte en peso o cuando la temperatura del agua de lavado es más de 20ºC, la pérdida por disolución de eritritol cristalino puede llegar a ser grande, haciendo de este modo que el procedimiento se vuelva antieconómico. La cantidad de agua de lavado que se usa es preferiblemente 0,2 a 0,5 partes en peso referidas a una parte en peso del eritritol cristalino, y la temperatura del agua de lavado es preferiblemente 10 a 20ºC.
La etapa de secado del procedimiento según la presente invención, se lleva a cabo a fin de retirar agua del eritritol cristalino que se recupera de la etapa de cristalización precedente. En la etapa de secado, habitualmente, se puede usar adecuadamente un secador del tipo de lecho fluidizado. Adicionalmente, se lleva a cabo la etapa de tamizado a fin retirar las partículas de tamaño grande del eritritol cristalino. En la etapa de tamizado, se puede usar adecuadamente un dispositivo de tamices vibradores que tienen un tamaño de malla habitualmente de 1,000 o 1,190 mm.
Ejemplos
La presente invención se describirá ahora con más detalle con referencia a los siguientes ejemplos, pero la presente invención no se restringe a estos ejemplos y son posibles diversas modificaciones dentro del alcance de la invención.
Ejemplo 1
Se añadió Moniliella tomentosa var. pollinis a un medio de cultivo (disolución de cultivo) que contenía anhídrido de glucosa cristalino de 300 g/litro (calculada como glucosa) y extractos de levadura de 10 g/litro. Se sometió el medio de cultivo a cultivo con agitación a 35ºC durante 48 horas, obteniendo de este modo un medio de cultivo de semilla (A). Se añadieron 1,2 litros del medio de cultivo de semilla (A) obtenido a 600 litros de un medio de cultivo que contenía anhídrido de glucosa cristalino de 300 g/litro (calculada como glucosa) y líquido de maíz macerado de 37 g/litro. Se llevó a cabo el cultivo a 35ºC y 1,0 kg/cm^{2}G durante 48 horas mientras se pasó aire a través del mismo a un caudal de alimentación de 300 litros/min y agitando a 300 rpm., obteniendo de este modo un medio de cultivo de semilla (B). A continuación, se añadieron 600 litros del medio de cultivo de semilla (B) obtenido a 30 m^{3} de un medio de cultivo que contenía anhídrido de glucosa cristalino de 400 g/litro (calculada como glucosa) y líquido de maíz macerado de 15 g/litro. Se llevó a cabo el cultivo a 35ºC y 1,0 kg/cm^{2}G durante 90 horas mientras se pasó aire a través del mismo a un caudal de alimentación de 15 m^{3}/min y agitando a 100 rpm., y se detuvo el cultivo cuando se determinó que la glucosa se había consumido completamente. Inmediatamente después de someterse a esterilización por calor, el medio de cultivo se trató mediante el procedimiento de filtración de flujo transversal usando una membrana cerámica, separando de este modo los microbios del mismo bajo las siguientes condiciones.
Esto es, en primer lugar, como procedimiento de concentración de microbios y separación, una disolución de cultivo que contiene eritritol calentada a aproximadamente 70ºC se alimentó al depósito de circulación 1 que se usa en la etapa de separación de los microbios (es decir, en el aparato de filtración de flujo transversal según se muestra en la Fig. 1), y después de esto se hizo funcionar la bomba 2 para iniciar la circulación de la disolución de cultivo por lo que la disolución se hizo pasar por la membrana filtrante 3 y el intercambiador de calor 6 y se hizo volver al depósito de circulación 1. La disolución purificada (filtrado) que se hizo pasar por la membrana filtrante 3 se recibió en un reservorio de filtrado 5. En el procedimiento anterior, la temperatura y la velocidad de flujo de la disolución de cultivo circulada se ajustaron a aproximadamente 70ºC y 5 m/s, respectivamente, y la diferencia de presión a través de la membrana se ajustó a 1 kg/cm^{2}. Como resultado, el caudal medio de penetración de disolución fue de 130 litros/m^{2}-hora.
A continuación, como procedimiento de filtración con adición de agua, cuando la cantidad de disolución purificada en el reservorio de filtrado 5 alcanzó 24 m^{3}, se alimentó continuamente agua a 6 m^{3} de la disolución concentrada en el depósito de circulación 1 mientras se mantenía un nivel constante de la disolución concentrada. Mientras se alimentaba continuamente agua al depósito de circulación 1, se llevó a cabo la circulación de la misma manera que se describe anteriormente, y la disolución purificada (filtrado) se recibió en el reservorio de filtrado 5. Incidentalmente, el agua que se había de alimentar se precalentó a aproximadamente 70ºC antes de alimentarla al depósito de circulación 1, si fuera necesario. La cantidad total de agua alimentada fue 18 m^{3}, y la cantidad total de la disolución purificada (filtrado) recibida en el reservorio de filtrado 5 fue 18 m^{3}.
A continuación, como procedimiento de concentración y filtración adicionales, se continuó la circulación de la disolución de cultivo de la misma manera que se describe anteriormente incluso después de detener la alimentación de agua, recibiendo de este modo la disolución purificada (filtrado) en el reservorio de filtrado 5. Cuando el caudal de penetración se redujo a aproximadamente 50 litros/m^{2}-hora, se detuvo el procedimiento de concentración y filtración adicionales, y se lavó el aparato de filtración de flujo transversal con agua y se regeneró para la sucesiva etapa de separación de los microbios. La cantidad total de disolución purificada (filtrado) recibida en el reservorio de filtrado 5 en el procedimiento de concentración y filtración adicionales fue 2 m^{3}.
La cantidad total de disoluciones purificadas (filtrados) obtenidas en los procedimientos respectivos anteriormente mencionados fue 44 m^{3}, y la disolución purificada contenía 121 g/litro de eritritol y 0,3 g/litro de glicerol.
A continuación, 44 m^{3} de la disolución purificada obtenida se hicieron pasar por una torre rellena con resinas de intercambio catiónico débilmente ácidas de tipo ácido carboxílico de tipo Na (nombre comercial: DIAION WK-20 producidas por MITSUBISHI CHEMICAL CORP.) para sustituir componentes duros tales como Ca y Mg con iones Na. En este momento, la temperatura de la disolución purificada se mantuvo a 70ºC.
A continuación, se concentró la disolución purificada hasta que el contenido de sólidos disueltos en la misma alcanzó 40% en peso (concentración primaria). Como evaporador, se usó un evaporador de cuádruple efecto provisto de carcasa y tubo en una sección de formación de película descendente del mismo. La presión de operación se ajustó de 9,9 a 29,3 kPa, y la temperatura del fluido se ajustó de 46 a 70ºC. En este momento, no se observó fenómeno de formación de espuma cuando se concentró la disolución bajo presión reducida, y se pudo llevar a cabo la concentración de modo estable.
A continuación, 1,44 m^{3} de la disolución concentrada obtenida mantenida a 70ºC, se alimentaron a lo alto de una torre de separación que tenía un tamaño de 2.000 mm (diámetro) x 7.000 mm (altura) y rellena con resinas de tipo Na de resinas de intercambio catiónico fuertemente ácidas de tipo ácido divinilbenceno poliestireno sulfónico reticulado (nombre comercial: DIAION UBK-550, producidas por MITSUBISHI CHEMICAL CORP.). La temperatura de la torre de separación se mantuvo a 70ºC, y la disolución concentrada se alimentó a un caudal de 11,6 m^{3}/hora.
Sucesivamente, se alimentó agua a lo alto de la torre de separación al mismo caudal que el de la disolución concentrada, y el efluente de la torre de separación se dividió en dos fracciones, fracciones frontal y posterior, fijando un límite entre ellas en una posición en la que el volumen del lecho de efluente es 0,54. Las cantidades de fracciones frontal y posterior fueron 4,8 m^{3} y 3,4 m^{3}, respectivamente. Se recuperaron eritritol y glicerol como fracción posterior. La operación anterior se repitió 10 veces, obteniendo de este modo 34 m^{3} de la fracción posterior en total. La fracción posterior obtenida tenía una composición tal que la concentración de eritritol fue 96,5 g/litro, la concentración de glicerol fue 0,2 g/litro y la concentración de las otras sustancias fue 2,0 g/litro.
A continuación, la fracción posterior se trató sucesivamente haciéndola pasar por una torre rellena con resinas de intercambio catiónico fuertemente ácidas de tipo H (nombre comercial: DIAION SK 1B, producidas por MITSUBISHI CHEMICAL CORP.), una torre rellena con resinas de intercambio aniónico débilmente básicas de tipo OH (nombre comercial: DIAION WA30, producidas por MITSUBISHI CHEMICAL CORP.), y una torre de lecho mixto rellena con ambas resinas de intercambio catiónico fuertemente ácidas de tipo H y resinas de intercambio aniónico débilmente básicas de tipo OH anteriormente mencionadas (nombre comercial: DIAION PA408, producidas por MITSUBISHI CHEMICAL CORP.). Incidentalmente, la fracción posterior se mezcló preliminarmente con 8 m^{3} del líquido madre de cristalización que contenía agua de lavado descargado de la etapa de separación de cristales (separador centrífugo) según se describe con detalle más adelante, antes de alimentar a la torre rellena con las resinas de intercambio catiónico fuertemente ácidas de tipo H. Al reciclar el líquido madre de cristalización previamente mezclado con la fracción, es posible recuperar el eritritol contenido en el mismo. La disolución así tratada se mezcló luego con 3,4 kg de carbón activado en polvo, y la mezcla se agitó durante 30 minutos y se filtró para retirar el carbón activado de la misma, obteniendo de este modo un filtrado.
El filtrado así obtenido se concentró a 70ºC bajo presión reducida hasta que el contenido de sólidos disueltos en la misma alcanzó 53% en peso (concentración de eritritol: 48,0% en peso) (concentración secundaria). Como evaporador, se usó un evaporador de cuádruple efecto provisto de carcasa y tubo en una sección de formación de película descendente. La presión de operación se ajustó de 9,9 a 29,3 kPa, y la temperatura del fluido fue de 46 a 70ºC. En la etapa de concentración, no se observó fenómeno de formación de espuma cuando se concentró la disolución bajo presión reducida, y se pudo llevar a cabo la concentración de modo estable.
A continuación, la disolución concentrada que tenía una temperatura de 70ºC se enfrió gradualmente a 15ºC a una velocidad de enfriamiento de 7,5ºC/hora. Cuando la temperatura de la disolución concentrada alcanzó 42ºC (diferencia de la temperatura de saturación (45ºC): -3ºC) en el curso del enfriamiento, se añadieron 380 g de cristales de semilla de eritritol (porcentaje en peso referido al eritritol cristalino obtenido: 0,01% en peso) a la disolución concentrada para que crezca eritritol cristalino, obteniendo de este modo una papilla que contiene eritritol cristalino.
Usando un separador centrífugo (nombre comercial: "CONTAVEX", fabricado por SUMITOMO HEAVY MACHINERY INDUSTRY CO., LTD.), se centrifugó la papilla obtenida que contenía eritritol cristalino al tiempo que se aplicó una fuerza de 167 G sobre la misma y al tiempo que se lavó con agua que se mantenía a 15ºC en una cantidad de 0,2 partes en peso referidas a una parte en peso de eritritol cristalino húmedo, separando de este modo el eritritol cristalino de la papilla. Más específicamente, la papilla que contenía eritritol cristalino se dispersó en la dirección de la circunferencia de la superficie filtrante y luego se hizo incidir contra la superficie filtrante, filtrando de este modo el eritritol cristalino al tiempo que se lavó por pulverización con agua. Como resultado, se obtuvieron 3,5 toneladas de eritritol cristalino. El eritritol cristalino obtenido tuvo una pureza de 99,9% y un contenido de agua de 2,47% en peso. El líquido madre de cristalización que contenía agua de lavado se circuló a un depósito y se almacenó temporalmente en el mismo para recuperar posteriormente eritritol del mismo. Después de esto, se secó el eritritol cristalino obtenido.
Se midió el tamaño medio de partícula del eritritol cristalino obtenido, y se determinó que era 750 \mum. Como resultado de comparar el tamaño medio de partícula medido con el de antes de someterlo a la separación centrífuga
(750 \mum), se confirmó que no se había generado fractura de cristales. El eritritol cristalino obtenido tuvo principalmente una estructura de cristales sencillos.
Se midieron las respectivas disoluciones purificadas que se recuperaron de la etapa de separación de los microbios, la etapa de ablandamiento, la etapa de concentración antes de la separación cromatográfica (concentración primaria) y la etapa de concentración inmediatamente antes de la etapa de cristalización (concentración secundaria), para determinar las absorbancias de las mismas. Los resultados se muestran en la Tabla 1. Incidentalmente, la medición de absorbancias se llevó a cabo mediante un espectrofotómetro "UVIDEC-340" (fabricado por NIHON BUNKO CO., LTD.) usando una celdilla de cuarzo de 1 cm y una longitud de onda de 720 nm ó 420 nm.
Las disoluciones purificadas que se recuperaron de la etapa de separación de los microbios y la etapa de ablandamiento se sometieron a una prueba de cultivo. Los resultados se muestran en la Tabla 1. Incidentalmente, en la prueba de cultivo, se colocó una disolución de prueba muestreada bajo condiciones estériles en una incubadora que se mantuvo a 25ºC, y se dejó en reposo durante un día y una noche. Se observó visualmente la disolución de prueba para determinar el crecimiento de diversos gérmenes en la disolución de prueba.
Adicionalmente, también se midieron el contenido de agua del eritritol cristalino y la eficacia de lavado. Los resultados se muestran en la Tabla 2. Incidentalmente, en la Tabla 2, se midieron los contenidos de azúcares y azúcares-alcoholes mediante cromatografía líquida de alto rendimiento, y las partes en peso en cantidad de agua de lavado significan partes en peso referidas a una parte en peso de eritritol cristalino húmedo.
Ejemplo de referencia 1
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que se usó un separador centrífugo en lugar del aparato de filtración de flujo transversal y la separación de los microbios se llevó a cabo al tiempo que se aplicó una fuerza centrífuga de 8.000 G a la disolución de cultivo, obteniendo de este modo eritritol cristalino. Un material sobrenadante que se recuperó de la etapa de separación de los microbios (separador centrífugo) se sometió a una medición de absorbancia y una prueba de cultivo de la misma manera que en el Ejemplo 1. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Ejemplo de referencia 2
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que la temperatura de la etapa de separación de los microbios se cambió de 70ºC a 25ºC, obteniendo de este modo eritritol cristalino. Un material sobrenadante que se recuperó de la etapa de separación de los microbios (separador centrífugo) se sometió a una medición de absorbancia y una prueba de cultivo de la misma manera que en el Ejemplo 1. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Ejemplo de referencia 3
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que la temperatura de la etapa de ablandamiento se cambió de 70ºC a 25ºC, obteniendo de este modo eritritol cristalino. En este caso se aumentó gradualmente la pérdida de presión de la bomba de alimentación para alimentar la disolución de cultivo que se ha de tratar, a la torre rellena de resina que se usa en la etapa de ablandamiento. Se confirmó que el aumento en la pérdida de presión de la bomba estaba provocado por la contaminación bacteriana de la disolución de cultivo. Una disolución purificada que se recuperó de la etapa de ablandamiento se sometió a una medición de absorbancia y una prueba de cultivo de la misma manera que en el Ejemplo 1. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Ejemplo de referencia 4
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que la temperatura de la etapa de ablandamiento se cambió de 70ºC a 45ºC, obteniendo de este modo eritritol cristalino. Una disolución purificada que se recuperó de la etapa de ablandamiento se sometió a una medición de absorbancia y una prueba de cultivo de la misma manera que en el Ejemplo 1. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Ejemplo de referencia 5
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que la temperatura de la etapa de ablandamiento se cambió de 70ºC a 95ºC, obteniendo de este modo eritritol cristalino. Una disolución purificada que se recuperó de la etapa de ablandamiento se sometió a una medición de absorbancia y una prueba de cultivo de la misma manera que en el Ejemplo 1. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Ejemplo de referencia 6
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que la etapa de concentración antes de la separación cromatográfica (concentración primaria) y la etapa de concentración inmediatamente antes de la etapa de cristalización (concentración secundaria) se llevaron a cabo a una presión de operación de 4,0 kPa y una temperatura de fluido de 30ºC, obteniendo de este modo eritritol cristalino. En estas dos etapas de concentración, se observaron fenómenos violentos de formación de espuma. Una disolución purificada que se recuperó de cada etapa de concentración se sometió a una medición de absorbancia de la misma manera que en el Ejemplo 1. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Ejemplo de referencia 7
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que la etapa de concentración antes de la separación cromatográfica (concentración primaria) y la etapa de concentración inmediatamente antes de la etapa de cristalización (concentración secundaria) se llevaron a cabo a una presión de operación de 80,0 kPa y una temperatura de fluido de 93ºC, obteniendo de este modo eritritol cristalino. Aunque no se observaron fenómenos de formación de espuma en ninguna de estas etapas de concentración, la disolución después de cada etapa de concentración estuvo notablemente más coloreada en comparación con la del Ejemplo 1. Una disolución purificada que se recuperó de cada etapa de concentración se sometió a una medición de absorbancia de la misma manera que en el Ejemplo 1. Los resultados se muestran en la Tabla 1.
Ejemplo 2 a 3 y ejemplos de referencia 8 a 11
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que las condiciones usadas en la etapa de separación de cristales se cambiaron a las que se muestran en la Tabla 2, obteniendo de este modo eritritol cristalino. Los resultados de las mediciones de contenido de agua y eficacia de lavado de los cristales obtenidos, etc., se muestran en la Tabla 2.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 1
1
TABLA 1 (continuación)
2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 2
3
\newpage
Tabla 2 (continuación)
4
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 4
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que el procedimiento de la etapa de separación cromatográfica se cambió como sigue, obteniendo de este modo eritritol cristalino.
Esto es, la etapa de cultivo, la etapa de separación de los microbios, la etapa de ablandamiento y la etapa de concentración (concentración primaria) se llevaron a cabo de la misma manera que en el Ejemplo 1. Después de esto, la etapa de separación cromatográfica según se muestra en la Fig. 3, es decir la etapa que usa la torre de separación que comprende cuatro torres conectadas en serie teniendo cada una un tamaño de 2.000 mm (diámetro) x 1.750 mm (altura) que estaba rellena con 22 m^{3} de resinas de intercambio catiónico fuertemente ácidas de tipo ácido divinilbenceno poliestireno sulfónico reticulado de tipo Na (nombre comercial: DIAION UBK-550, producidas por MITSUBISHI CHEMICAL CORP.), se llevó a cabo de la siguiente manera.
En primer lugar la disolución concentrada anteriormente mencionada, que se mantuvo a 70ºC, se alimentó a lo alto de la torre de separación. La temperatura de la torre de separación se mantuvo a 70ºC, y la velocidad de alimentación de la disolución concentrada se ajustó a 11,9 m^{3}/hora. La disolución concentrada se dividió en cinco fracciones, y se hizo pasar sucesivamente por la torre de separación en las siguientes cinco momentos para reciclar la fracción solapada compuesta de una fracción de impureza y una fracción de eritritol.
Primera operación
Se abrieron las válvulas 81 y 84, y 1,5 m^{3} de disolución concentrada almacenados en un depósito 75 se alimentaron a lo alto de la primera torre 71 haciendo funcionar una bomba 91, recuperando de este modo 1,5 m^{3} de una fracción de producto (1) compuesta principalmente de eritritol del fondo de la cuarta torre 74. Incidentalmente, la fracción de producto así obtenida fue una fracción tal que contenía los componentes eluidos de la resina moviendo la disolución residual en la torre hacia la zona del fondo de la misma cuando se llevó a cabo la primera operación después de la quinta operación del ciclo precedente. Después de la terminación de la primera operación, se cerraron las válvulas 81 y 84 (la operación de cierre de válvulas se realizó de modo similar después de la terminación de cada una de las operaciones subsiguientes).
Segunda operación
Se abrieron las válvulas 87 y 82, y se hizo funcionar una bomba 92 para retirar 6,4 m^{3} de agua del fondo de la cuarta torre 74 y circular el agua retirada a lo alto de la primera torre 71.
Tercera operación
Se abrieron las válvulas 82 y 86, y se hizo funcionar la bomba 92 para alimentar 5,0 m^{3} de agua en un depósito 76 a lo alto de la primera torre 71 y retirar 5,0 m^{3} de una fracción de residuo del fondo de la cuarta torre 74. La fracción de residuo contenía diversas sales, componentes coloreados e impurezas.
Cuarta operación
1,0 m^{3} de la fracción solapada que contenía la fracción de eritritol y la fracción de impureza se retiró del fondo de la cuarta torre 74 y se circuló a lo alto de la primera torre 71.
Quinta operación
Se abrieron las válvulas 83 y 85, y se hizo funcionar la bomba 92 para alimentar 3,5 m^{3} de agua en el depósito 76 a lo alto de la segunda torre 72 y recuperar 3,5 m^{3} de una fracción de producto (2) compuesta principalmente de eritritol del fondo de la cuarta torre 74. La cantidad total de fracciones de producto (1) y (2) fue 5,0 m^{3}.
Se repitieron 7 veces como un ciclo las series de operaciones primera a quinta anteriormente mencionadas en las que la quinta operación del ciclo precedente se continúa con la primera operación del ciclo sucesivo, obteniendo de este modo 35,0 m^{3} de la fracción compuesta principalmente de eritritol. La fracción de eritritol obtenida tenía una composición tal que la concentración de eritritol fue 97,2 g/litro, la concentración de glicerol fue 0,2 g/litro y la concentración de las otras sustancias fue 1,1 g/litro.
A continuación, el efluente que se recuperó de la etapa de separación cromatográfica anterior se trató haciéndolo pasar sucesivamente por la torre rellena con resinas de intercambio catiónico fuertemente ácidas de tipo H, la torre rellena con resinas de intercambio aniónico débilmente básicas de tipo OH y la torre de lecho mixto rellena con ambas resinas de intercambio catiónico fuertemente ácidas de tipo H y resinas de intercambio aniónico fuertemente básicas de tipo OH anteriormente mencionadas, de la misma manera que en el Ejemplo 1.
Adicionalmente, el efluente se sometió sucesivamente a la etapa de concentración (concentración secundaria), la etapa de cristalización y la etapa de separación de cristales, de la misma manera que en el Ejemplo 1, obteniendo de este modo 3,5 toneladas de eritritol cristalino. El eritritol cristalino obtenido tuvo una pureza de 99,9% y un contenido de agua de 2,47% en peso. Se recuperó el líquido madre de cristalización que contenía el agua de lavado y se almacenó temporalmente en el depósito para recuperar eritritol del mismo.
Después de esto, se secó el eritritol cristalino obtenido y se midió para determinar el tamaño medio de partícula del mismo. Como resultado de la medición el tamaño medio de partícula fue 750 \mum. Comparando el tamaño medio de partícula medido con el de antes de la separación centrífuga, se confirmó que no se había generado fractura del eritritol cristalino. El eritritol cristalino obtenido tuvo principalmente una estructura de cristales sencillos.
En las operaciones anteriormente mencionadas, la fracción de eritritol que se recuperó de la etapa de separación cromatográfica se midió con respecto al porcentaje de recuperación, porcentaje de retirada de impureza, porcentaje de decoloración y porcentaje de desalación de eritritol. Los resultados se muestran en la Tabla 3. Incidentalmente, el porcentaje de recuperación y el porcentaje de retirada de impureza de eritritol se calcularon a partir de valores medidos por cromatografía líquida de alta resolución. Asimismo, el porcentaje de decoloración y el porcentaje de desalación de eritritol se calcularon a partir de valores obtenidos por mediciones de absorbancia (A420) y conductividad eléctrica del mismo.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 5
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 4 excepto que el cultivo se llevó a cabo de la siguiente manera, obteniendo de este modo eritritol cristalino de alta pureza.
Esto es, usando cepa de Trichosporonoides megachiliensis SN-G42 como microorganismos productores de eritritol, el medio de cultivo de semilla (B) se obtuvo de la misma que en el Ejemplo 4. Después de esto, se añadieron 600 litros del medio de cultivo de semilla (B) obtenido a una disolución de cultivo que contenía glucosa purificada de 400 g/litro (calculada como glucosa) y líquido de maíz macerado de 8 g/litro, y se llevó a cabo el cultivo a 35ºC y 1,0 kg/cm^{2}G durante 90 horas mientras se pasó aire a través del mismo a un caudal de alimentación de 15 m^{3}/min y agitando a 120 rpm. La cantidad de efluente que se recuperó de la etapa de separación cromatográfica (fracción compuesta principalmente de eritritol) fue 35,0 m^{3}. El efluente tuvo una composición tal que la concentración de eritritol fue 97,2 g/litro, la concentración de glicerol fue 0,2 g/litro y la concentración de sustancias desconocidas fue 1,1 g/litro.
El efluente se sometió a las respectivas etapas de la misma manera que en el Ejemplo 4, obteniendo de este modo 3,5 toneladas de eritritol cristalino de tenían una pureza de 99,9%. La fracción de eritritol que se recuperó de la etapa de separación cromatográfica se midió con respecto al porcentaje de recuperación, porcentaje de retirada de impureza, porcentaje de decoloración y porcentaje de desalación de eritritol de la misma manera que en el Ejemplo 4. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
Ejemplo de referencia 12
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 4 excepto que las operaciones de la etapa de separación cromatográfica del Ejemplo 4 se cambiaron como sigue, obteniendo de este modo eritritol cristalino. Esto es, la fracción solapada que contenía ambas, fracción de eritritol y fracción de impureza, no se circuló a lo alto de la primera torre, sino que se descargó junto con la fracción de residuo llevando a cabo la separación cromatográfica siguiente que incluye una serie de operaciones de la primera a la cuarta como un ciclo. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
\vskip1.000000\baselineskip
Primera operación: Igual que la primera operación del Ejemplo 4
Se abrieron las válvulas 81 y 84, y 1,5 m^{3} de disolución concentrada almacenados en el depósito 75 se alimentaron a lo alto de la primera torre 71 haciendo funcionar una bomba 91, recuperando de este modo 1,5 m^{3} de la fracción de producto (1) compuesta principalmente de eritritol del fondo de la cuarta torre 74. Incidentalmente, la fracción de producto así obtenida fue una fracción tal que contenía los componentes eluidos de la resina moviendo la disolución residual en la torre hacia la zona del fondo de la misma cuando se llevó a cabo la primera operación después de la cuarta operación del ciclo precedente.
\vskip1.000000\baselineskip
Segunda operación: Igual que la segunda operación del Ejemplo 4
Se abrieron las válvulas 82 y 87, y se hizo funcionar la bomba 92 para retirar 6,4 m^{3} de agua del fondo de la cuarta torre 74 y circular el agua retirada a lo alto de la primera torre 71.
\vskip1.000000\baselineskip
Tercera operación: Igual que la tercera operación del Ejemplo 4 excepto que se cambió la cantidad de agua alimentada
Se abrieron las válvulas 82 y 86, y se hizo funcionar la bomba 92 para alimentar 6,0 m^{3} de agua en el depósito 76 a lo alto de la primera torre 71 y retirar 6,0 m^{3} de una fracción de residuo del fondo de la cuarta torre 74. La fracción de residuo contenía diversas sales, componentes coloreados e impurezas.
\vskip1.000000\baselineskip
Cuarta operación: Correspondiente a la quinta operación del Ejemplo 4
Se abrieron las válvulas 83 y 85, y se hizo funcionar la bomba 92 para alimentar 3,5 m^{3} de agua a lo alto de la segunda torre 72 y recuperar 3,5 m^{3} de la fracción de producto (2) compuesta principalmente de eritritol del fondo de la cuarta torre 74. La cantidad total de fracciones de producto (1) y (2) recuperadas fue 5,0 m^{3}.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo de referencia 13
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 4 excepto que las operaciones de la etapa de separación cromatográfica del Ejemplo 4 se cambiaron como sigue, obteniendo de este modo eritritol cristalino. Esto es, la fracción solapada que contenía ambas, fracción de eritritol y fracción de impureza, no se circuló a lo alto de la primera torre, sino que se recuperó junto con la fracción de producto llevando a cabo la separación cromatográfica siguiente que incluye una serie de operaciones de la primera a la cuarta como un ciclo. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
\vskip1.000000\baselineskip
Primera operación: Igual que la primera operación del Ejemplo 4
Se abrieron las válvulas 84 y 82, y 1,5 m^{3} de la disolución concentrada almacenados en el depósito 75 se alimentaron a lo alto de la primera torre 71 haciendo funcionar la bomba 91, recuperando de este modo 1,5 m^{3} de la fracción de producto (1) compuesta principalmente de eritritol del fondo de la cuarta torre 74. Incidentalmente, la fracción de producto así obtenida fue una fracción tal que contenía los componentes eluidos de la resina moviendo la disolución residual en la torre hacia la zona del fondo de la misma cuando se llevó a cabo la primera operación después de la cuarta operación del ciclo precedente.
\vskip1.000000\baselineskip
Segunda operación: Igual que la segunda operación del Ejemplo 4
Se abrieron las válvulas 82 y 87, y se hizo funcionar la bomba 92 para retirar 6,4 m^{3} de agua del fondo de la cuarta torre 74 y circular el agua retirada a lo alto de la primera torre 71.
\vskip1.000000\baselineskip
Tercera operación: Igual que la tercera operación del Ejemplo 4
Se abrieron las válvulas 82 y 86, y se hizo funcionar la bomba 92 para alimentar 5,0 m^{3} de agua en el depósito 76 a lo alto de la primera torre 71 y retirar 5,0 m^{3} de una fracción de residuo del fondo de la cuarta torre 74. La fracción de residuo contenía diversas sales, componentes coloreados e impurezas.
Cuarta operación: Casi igual que la quinta operación del Ejemplo 4 excepto que se cambió la cantidad de agua alimentada
Se abrieron las válvulas 83 y 85, y se hizo funcionar la bomba 92 para alimentar 4,5 m^{3} de agua en el depósito 76 a lo alto de la segunda torre 72 y recuperar 4,5 m^{3} de la fracción de producto (2) compuesta principalmente de eritritol del fondo de la cuarta torre 74. La cantidad total de fracciones de producto (1) y (2) recuperadas fue 6,0 m^{3}.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo de referencia 14
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 4 excepto que las operaciones de la etapa de separación cromatográfica del Ejemplo 4 se cambiaron como sigue, obteniendo de este modo eritritol cristalino. Esto es, la fracción solapada que contenía ambas, fracción de eritritol y fracción de impureza, no se circuló a lo alto de la primera torre, sino que una parte de la fracción solapada se recuperó junto con la fracción de producto y la parte restante de la misma se descargó junto con la fracción de residuo llevando a cabo la separación cromatográfica siguiente que incluye una serie de operaciones de la primera a la cuarta como un ciclo. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
Primera operación: Igual que la primera operación del Ejemplo 4
Se abrieron las válvulas 84 y 82, y 1,5 m^{3} de la disolución concentrada almacenados en el depósito 75 se alimentaron a lo alto de la primera torre 71 haciendo funcionar la bomba 91, recuperando de este modo 1,5 m^{3} de la fracción de producto (1) compuesta principalmente de eritritol del fondo de la cuarta torre 74. Incidentalmente, la fracción de producto así obtenida fue una fracción tal que contenía los componentes eluidos de la resina moviendo la disolución residual en la torre hacia la zona del fondo de la misma cuando se llevó a cabo la primera operación después de la cuarta operación del ciclo precedente.
Segunda operación: Igual que la segunda operación del Ejemplo 4
Se abrieron las válvulas 82 y 87, y se hizo funcionar la bomba 92 para retirar 6,4 m^{3} de agua del fondo de la cuarta torre 74 y circular el agua retirada a lo alto de la primera torre 71.
Tercera operación: Igual que la tercera operación del Ejemplo 4 excepto que se cambió la cantidad de agua alimentada
Se abrieron las válvulas 82 y 86, y se hizo funcionar la bomba 92 para alimentar 5,5 m^{3} de agua en el depósito 76 a lo alto de la primera torre 71 y retirar 5,5 m^{3} de una fracción de residuo del fondo de la cuarta torre 74. La fracción de residuo contenía diversas sales, componentes coloreados e impurezas.
Cuarta operación: Casi igual que la quinta operación del Ejemplo 4 excepto que se cambió la cantidad de agua alimentada
Se abrieron las válvulas 83 y 85, y se hizo funcionar la bomba 92 para alimentar 4,0 m^{3} de agua en el depósito 76 a lo alto de la segunda torre 72 y recuperar 4,0 m^{3} de la fracción de producto (2) compuesta principalmente de eritritol del fondo de la cuarta torre 74. La cantidad total de fracciones de producto (1) y (2) recuperadas fue 5,5 m^{3}.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 3
5
TABLA 3 (continuación)
6
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 6
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que cuando la temperatura de la disolución concentrada en la etapa de cristalización alcanzó 44ºC (diferencia de la temperatura de saturación (45ºC): -1ºC) en el curso del enfriamiento, se añadieron 640 g de cristales de semilla de eritritol (porcentaje en peso referido al eritritol cristalino obtenido: 0,02% en peso) a la disolución concentrada, obteniendo de este modo eritritol cristalino. Se confirmó que el tamaño medio de partícula y la forma del eritritol cristalino obtenido eran iguales que los del Ejemplo 1.
Ejemplo de referencia 15
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que la velocidad de enfriamiento usada para enfriar gradualmente la disolución de concentración a 15ºC, se cambió a 25,0ºC/hora, obteniendo de este modo eritritol cristalino. Se confirmó que el tamaño medio de partícula del eritritol cristalino obtenido era igual que el del Ejemplo 1, aunque el eritritol cristalino estaba presente en la forma de cristales coagulados.
Ejemplo de referencia 16
Se llevó a cabo el mismo procedimiento que se define en el Ejemplo 1 excepto que se usó un separador centrífugo de tipo de cesto vertical y la papilla que contenía eritritol cristalino se alimentó al mismo por una boquilla de conducto sencillo, obteniendo de este modo eritritol cristalino. La fuerza centrífuga usada fue 167 G. En este Ejemplo de referencia, la papilla que contenía eritritol cristalino que se alimentó por la boquilla de conducto sencillo se dividió en fases líquida y sólida antes de ser distribuida por la superficie filtrante entera, dando como resultado una distribución irregular de la papilla en el separador centrífugo y falló el funcionamiento del aparato.

Claims (11)

1. Un procedimiento para producir eritritol cristalino de alta pureza que comprende una etapa de cristalización que somete una disolución acuosa que contiene eritritol como disolución bruta a cristalización y una etapa de separación de cristales que separa eritritol cristalino de una papilla que contiene eritritol cristalino, obtenido en la etapa de cristalización, en el que
se ajusta la concentración de eritritol de dicha disolución acuosa que contiene eritritol de 30 a 60% en peso al comienzo de la etapa de cristalización;
se enfría dicha disolución acuosa que contiene eritritol a una velocidad de enfriamiento de no más de 20ºC/hora;
se añaden cristales de semilla de eritritol a dicha disolución acuosa que contiene eritritol en el curso del enfriamiento; y
después de enfriar a no más de 20ºC, el eritritol cristalino producido se separa de dicha papilla,
que comprende adicionalmente una etapa de separación de los microbios que separa microbios de una disolución de cultivo que contiene eritritol como disolución bruta y una etapa de separación cromatográfica que somete una disolución purificada que se recupera de dicha etapa de separación de los microbios a separación cromatográfica seguida de dicha etapa de cristalización,
siendo dicha disolución acuosa que contiene eritritol que se ha de tratar en dicha etapa de cristalización una fracción de eritritol que se recupera de dicha etapa de separación cromatográfica, y
en el que dicha etapa de separación de los microbios se lleva a cabo mediante un procedimiento de filtración de flujo transversal que usa una membrana cerámica o una membrana orgánica, y la temperatura de dicha disolución que se ha de tratar en la etapa de separación de los microbios es de 50 a 90ºC.
2. Un procedimiento para producir eritritol cristalino de alta pureza que comprende una etapa de cristalización que somete una disolución acuosa que contiene eritritol como disolución bruta a cristalización y una etapa de separación de cristales que separa eritritol cristalino de una papilla que contiene eritritol cristalino que se obtiene en la etapa de cristalización, en el que
se ajusta la concentración de eritritol de dicha disolución acuosa que contiene eritritol de 30 a 60% en peso al comienzo de la etapa de cristalización;
se enfría dicha disolución acuosa que contiene eritritol a una velocidad de enfriamiento de no más de 20ºC/hora;
se añaden cristales de semilla de eritritol a dicha disolución acuosa que contiene eritritol en el curso del enfriamiento; y
después de enfriar a no más de 20ºC, el eritritol cristalino producido se separa de dicha papilla,
en el que dicha etapa de separación de cristales se lleva a cabo mediante separación centrífuga usando una fuerza centrífuga de 6,7 \cdot 10^{3} a 6,7 \cdot 10^{4} Pa, y el eritritol cristalino húmedo separado mediante dicha separación centrífuga se lava por pulverización con agua a una temperatura de no más de 20ºC, siendo la cantidad de agua usada en el lavado por pulverización 0,1 a 1 parte en peso referida a una parte en peso de dicho eritritol cristalino húmedo.
3. Un procedimiento según la reivindicación 1, que comprende adicionalmente una etapa de ablandamiento que trata dicha disolución purificada con una resina de intercambio iónico al tiempo que se mantiene la temperatura de dicha disolución purificada de 50 a 90ºC, llevándose a cabo dicha etapa de ablandamiento entre la etapa de separación de los microbios y dicha etapa de separación cromatográfica.
4. Un procedimiento según la reivindicación 3, en el que dicha resina de intercambio iónico que se usa en dicha etapa de ablandamiento es una resina de intercambio catiónico fuertemente ácida de tipo ácido sulfónico de tipo Na o una resina de intercambio catiónico débilmente ácida de tipo ácido carboxílico de tipo Na.
5. Un procedimiento según la reivindicación 1, que comprende adicionalmente una etapa de concentración a una presión de operación 9,3 \cdot 10^{3} a 4,0 \cdot 10^{4} kPa, y a una temperatura de fluido de 45 a 80ºC,
llevándose a cabo dicha etapa de concentración (1) entre dicha etapa de separación de los microbios y dicha etapa de separación cromatográfica o (2) entre dicha etapa de separación cromatográfica y dicha etapa de cristalización.
6. Un procedimiento según la reivindicación 5, en el que dicha etapa de concentración se lleva a cabo mediante calentamiento por vapor del tipo película delgada o del tipo de circulación forzada.
7. Un procedimiento según la reivindicación 1, en el que dicha etapa de separación cromatográfica se lleva a cabo mediante una torre de separación rellena con resina de intercambio catiónico fuertemente ácida de tipo de metal alcalino o de tipo de amonio que se usa en dicha etapa de separación cromatográfica, y que comprende las etapas de:
(1)
alimentar una cantidad predeterminada de dicha disolución purificada a lo alto de dicha torre de separación;
(2)
circular agua retirada del fondo de dicha torre de separación a lo alto de la misma, desarrollando de este modo los componentes absorbidos por dicha resina y moviendo la fracción de impureza hacia la zona del fondo de dicha torre de separación;
(3)
alimentar agua a lo alto de dicha torre de separación para retirar dicha fracción de impureza del fondo de dicha torre de separación;
(4)
retirar una fracción solapada que contiene ambas, fracción de impureza y fracción de eritritol, del fondo de dicha torre de separación y circular dicha fracción solapada a lo alto de dicha torre de separación, moviendo de este modo dicha fracción de impureza hacia la zona del fondo de dicha torre de separación; y
(5)
alimentar agua a dicha torre de separación en una posición en la que no está presente fracción solapada, retirando de este modo del fondo de dicha torre de separación y recuperando dicha fracción de eritritol.
8. Un procedimiento según la reivindicación 1, en el que dicha disolución acuosa que contiene eritritol es un líquido madre de cristalización que se recupera de dicha etapa de cristalización.
9. Un procedimiento según la reivindicación 1, en el que se añaden cristales de semilla de eritritol a dicha disolución acuosa que contiene eritritol en un depósito de cristalización en dicha etapa de cristalización, a una temperatura que es más baja que la temperatura a la que se satura la solubilidad de dicha disolución, y siendo la diferencia entre ambas temperaturas no más de 15ºC.
10. Un procedimiento según la reivindicación 9, en el que la cantidad que se añade de dichos cristales de semilla de eritritol es no más de 0,1% en peso referida al peso de eritritol cristalizado en dicho depósito de cristalización.
11. Un procedimiento según la reivindicación 1, en el que se usa en dicha etapa de separación de cristales, un separador centrífugo en el que se dispersa una papilla en la dirección de la circunferencia de la superficie filtrante y se hace incidir contra la superficie filtrante.
ES98118768T 1997-10-07 1998-10-05 Procedimiento para producir eritritol cristalino de alta pureza. Expired - Lifetime ES2312181T3 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP9-290281 1997-10-07
JP29028197A JP4151089B2 (ja) 1997-10-07 1997-10-07 高純度エリスリトール結晶の製造方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2312181T3 true ES2312181T3 (es) 2009-02-16

Family

ID=17754125

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES98118768T Expired - Lifetime ES2312181T3 (es) 1997-10-07 1998-10-05 Procedimiento para producir eritritol cristalino de alta pureza.

Country Status (7)

Country Link
US (1) US6030820A (es)
EP (1) EP0908523B1 (es)
JP (1) JP4151089B2 (es)
KR (1) KR100566523B1 (es)
DE (1) DE69839792D1 (es)
ES (1) ES2312181T3 (es)
PT (1) PT908523E (es)

Families Citing this family (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6489469B1 (en) * 1999-03-30 2002-12-03 Nikken Chemicals Co., Ltd. Method for storing or transporting erythritol solution
US20020127667A1 (en) * 1999-08-11 2002-09-12 Cerestar B.V. Process for producing and recovering erythritol from culture medium containing the same
GB9929128D0 (en) * 1999-12-10 2000-02-02 Cerestar Holding Bv Process for producing and recovering Erythritol from culture medium containing the same
WO2007005299A1 (en) * 2005-06-30 2007-01-11 Cargill, Incorporated A process for producing erythritol
US9133554B2 (en) 2006-02-08 2015-09-15 Dynamic Food Ingredients Corporation Methods for the electrolytic production of erythritol
AT504230B1 (de) * 2006-10-03 2008-06-15 Jungbunzlauer Austria Ag Verfahren zur herstellung von erythrit
BRPI0912194A2 (pt) * 2008-05-09 2015-07-28 Cargill Inc Adoçante, método para a preparação e adoçante e aplicações do mesmo
WO2011127130A1 (en) * 2010-04-09 2011-10-13 Water Technologies Corporation Apparatus for photoionization of an analyte in an eluent of a chromatography column
EP2436772A1 (en) * 2010-09-30 2012-04-04 Annikki GmbH Method for the production of erythritol
AU2014293577B2 (en) 2013-07-24 2017-12-07 Heartland Consumer Products, Llc Partial melt co-crystallization compositions
HK1254978A1 (zh) 2015-03-03 2019-08-02 哈特兰德消费品有限责任公司 含萊鮑迪甙d的甜味劑組合物
BR112017024772A2 (pt) 2015-05-20 2018-07-31 Cargill Inc composição de adoçante e bebida
CN105861570B (zh) * 2016-04-19 2019-05-03 齐鲁工业大学 一种无臭赤藓糖醇的生产方法
CN113286922A (zh) * 2019-01-17 2021-08-20 松下知识产权经营株式会社 洗衣机和洗衣机的控制方法
CN113912475B (zh) * 2020-07-08 2023-02-28 山东福洋生物科技股份有限公司 一种赤藓糖醇晶体的制备方法
CN116178109B (zh) * 2021-11-26 2025-08-22 吉林中粮生化有限公司 赤藓糖醇结晶的方法
CN114410488B (zh) * 2021-12-15 2024-12-24 新疆阜丰生物科技有限公司 一种发酵提取赤藓糖醇的方法
CN115385776B (zh) * 2022-08-08 2023-09-26 天津大学 一种赤藓糖醇晶体及其制备方法和应用
CN116875640B (zh) * 2023-09-04 2023-12-19 诸城东晓生物科技有限公司 一种节能降耗生产赤藓糖醇的方法

Family Cites Families (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3284419A (en) * 1961-03-23 1966-11-08 Shell Oil Co Poly
US3756917A (en) * 1971-11-12 1973-09-04 Pfizer Fermentation process for the production of erythritol
JPS5121072B2 (es) * 1973-03-27 1976-06-30
JPS6055162B2 (ja) * 1977-05-26 1985-12-04 参松工業株式会社 カラムクロマト分離法
US4482761A (en) * 1982-09-13 1984-11-13 Union Carbide Corporation Bulk separation of inositol and sorbitol by selective adsorption on zeolitic molecular sieves
JPS6013758A (ja) * 1983-07-04 1985-01-24 Ajinomoto Co Inc トリプトフアンの精製法
GB8322750D0 (en) * 1983-08-24 1983-09-28 Cpc International Inc Production of polyols
JPS6131091A (ja) * 1984-07-25 1986-02-13 Norin Suisansyo Shokuhin Sogo Kenkyusho 発酵によるポリオ−ル類の製造方法
US4939091A (en) * 1986-09-09 1990-07-03 Director Of National Food Research Institute, Ministry Of Agriculture, Forestry And Fisheries Novel auerobasidium sp. microorganisms, method for obtaining the same and method for preparing erythritol with the same
JPS63196298A (ja) * 1987-02-06 1988-08-15 Natl Food Res Inst 新規微生物
DE68911158T2 (de) * 1988-02-02 1994-05-19 Mitsubishi Chem Ind Verfahren zur Abtrennung und Gewinnung von Erythrit aus einem dieses enthaltenden Kulturmedium.
JPH0734750B2 (ja) * 1988-02-22 1995-04-19 三菱化学株式会社 エリスリトールの分離・回収方法
JP3096503B2 (ja) * 1991-10-08 2000-10-10 三菱化学株式会社 エリスリトール結晶の製造方法
EP0525659B1 (en) * 1991-07-26 1997-04-02 Mitsubishi Chemical Corporation Process for preparing erythritol crystals
JP3088786B2 (ja) * 1991-07-26 2000-09-18 三菱化学株式会社 エリスリトールの晶析法
JPH0735348B2 (ja) * 1991-07-30 1995-04-19 日研化学株式会社 エリスリトール結晶の乾燥法
JPH05137585A (ja) * 1991-11-21 1993-06-01 Mitsubishi Kasei Corp エリスリトール連続培養法
JPH08192077A (ja) * 1995-01-12 1996-07-30 Mitsui Petrochem Ind Ltd 遠心分離機
JP3423842B2 (ja) * 1996-01-19 2003-07-07 日研化学株式会社 変異株及び該変異株又は親株を用いるエリスリトールの製造方法

Also Published As

Publication number Publication date
EP0908523A3 (en) 1999-05-19
EP0908523A2 (en) 1999-04-14
PT908523E (pt) 2008-11-03
KR19990036888A (ko) 1999-05-25
US6030820A (en) 2000-02-29
KR100566523B1 (ko) 2006-11-30
JP4151089B2 (ja) 2008-09-17
EP0908523B1 (en) 2008-07-30
DE69839792D1 (de) 2008-09-11
JPH11103879A (ja) 1999-04-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2312181T3 (es) Procedimiento para producir eritritol cristalino de alta pureza.
FI103119B (fi) Menetelmä ramnoosin valmistamiseksi ramnolipideistä
ES2792507T3 (es) Procedimiento optimizado de extracción de ácido ferúlico con pretratamiento
CN112250722B (zh) 一种乳糖醇晶体的生产工艺
JP7447104B2 (ja) 結晶性2’-フコシルラクトースを得る方法
FI101980B (fi) Kiteytysmenetelmä
JP2007529505A (ja) 塩素化スクロース製造の改良された方法
CN111362860B (zh) 一种从发酵液中提取色氨酸的方法
CN107698607B (zh) 酶法合成氨苄西林结晶母液中有效成分的综合回收方法
ES2430165T3 (es) Procedimiento para extraer, como mínimo, un constituyente de una solución
JP4103172B2 (ja) 高純度エリスリトール結晶の製造方法
JP4103171B2 (ja) 高純度エリスリトール結晶の製造方法
JP4200556B2 (ja) 高純度エリスリトール結晶の製造方法
JP4151090B2 (ja) 高純度エリスリトール結晶の製造方法
JP4200555B2 (ja) 高純度エリスリトール結晶の製造方法
JP4103158B2 (ja) 高純度エリスリトール結晶の製造方法
RU2114173C1 (ru) Способ получения кристаллического тилозина
US5550227A (en) Method for the preparation of rhamnose monohydrate from rhamnolipids
JP3776160B2 (ja) D−パントテン酸カルシウムの製造法
CN119930403B (zh) 一种赤藓糖醇结晶后废母液的回收利用方法
RU2041885C1 (ru) Способ получения порошка натриевой соли дезоксирибонуклеиновой кислоты из молок рыб
JP4103167B2 (ja) 高純度エリスリトール結晶の製造方法
JP2003061700A (ja) 砂糖精製方法及びその設備
JPH11103883A (ja) 高純度エリスリトール結晶の製造方法
MX2007005906A (es) Elaboracion de azucar refinada a traves de proceso.