ES2331025T3 - Hexosilceramidas como adyuvantes y sus usos en composiciones farmaceuticas. - Google Patents
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Abstract
Conjugado de alfa-hexosilceramida (alfa-HexCer) según la fórmula (I) **(Ver fórmula)** en la que A es CH2 o CO; B representa R4, OR4, NHR4, PO3R4 o SO3R4; en los que R4 es un resto de conjugado que es un polímero tolerado fisiológicamente y soluble en agua; R1 y R2 pueden ser iguales o diferentes y son independientemente grupos alquenilo y/o alquilo C10-C30 lineales o ramificados; D representa CH2 o CH(OH); R3 representa hidrógeno u OH; R5 y R6 son sustituyentes en los que o bien R5 representa hidrógeno y R6 representa hidrógeno, OH, O-alquilo C1-C6, NH2, NHCO-alquilo C1-C6 o bien R6 es hidrógeno y R5 representa hidrógeno, OH, O-alquilo C1-C6, NH2, NHCO-alquilo C1-C6; R7 y R8 son sustituyentes en los que o bien R7 representa hidrógeno y R8 representa hidrógeno, OH, O-alquilo C1- C6, NH2, NHCO-alquilo C1-C6 o bien R8 es hidrógeno y R7 representa hidrógeno, OH, O-alquilo C1-C6, NH2, NHCOalquilo C1-C6; R9 y R10 son sustituyentes en los que o bien R9 representa hidrógeno y R10 representa hidrógeno, OH, O-alquilo C1-C6, NH2, NHCO-alquilo C1-C6 o bien R10 es hidrógeno y R9 representa hidrógeno, OH, O-alquilo C1-C6, NH2, NHCO-alquilo C1-C6; o sales o solvatos del mismo.
Description
Hexosilceramidas como adyuvantes y sus usos en
composiciones farmacéuticas.
La presente invención se refiere a nuevos
adyuvantes y a los usos en composiciones farmacéuticas, como en
vacunas. En particular, la presente invención proporciona nuevos
compuestos útiles como adyuvantes para la vacunación profiláctica
y/o terapéutica en el tratamiento de enfermedades infecciosas,
enfermedades inflamatorias, enfermedades autoinmunitarias, tumores,
alergias así como para el control de la fertilidad en poblaciones
humanas o animales. Los compuestos son particularmente útiles no
sólo como adyuvantes sistémicos, sino preferiblemente como
adyuvantes mucosales. Además, la invención se refiere a sus usos
como principios activos en composiciones farmacéuticas.
Las enfermedades infecciosas son la principal
causa de morbilidad y mortalidad, representando un tercio de las
muertes que se producen en el mundo cada año. Además, los agentes
infecciosos son directamente responsables de al menos el 15% de
nuevos cánceres, y también parecen estar implicados en la
fisiopatología de varias enfermedades crónicas (por ejemplo,
enfermedades inflamatorias, vasculares y degenerativas). Las
enfermedades infecciosas tradicionales son también sumamente caras
en cuanto a los costes sanitarios de los pacientes infectados y las
pérdidas de productividad en el trabajo.
Las principales estrategias usadas para prevenir
las enfermedades infecciosas son el tratamiento y la profilaxis. La
vacunación se ha convertido en la medida más rentable para prevenir
infecciones. Sin embargo, hay todavía muchas enfermedades para las
que todavía no están disponibles vacunas o las vacunas disponibles
no son completamente satisfactorias debido a su baja eficacia, alta
reactogenicidad, escasa estabilidad y/o alto coste. Por tanto, hay
todavía una urgente necesidad de vacunas tanto nuevas como
mejoradas.
A pesar del hecho de que se han usado
tradicionalmente vacunas para la profilaxis de enfermedades
infecciosas, hallazgos recientes sugieren que son también una
herramienta poderosa para la inmunoterapia de enfermedades
transmisibles (por ejemplo, hepatitis viral, infecciones por
Helicobacter pylori, infecciones por virus del herpes,
etc.). Además, pueden usarse vacunas para la inmunoterapia o
inmunoprofilaxis de enfermedades autoinmunitarias, enfermedades
inflamatorias, tumores, alergias y para el control de la fertilidad
en poblaciones humanas y/o animales. En particular, la última
aplicación parece requerir la producción de respuestas eficaces en
la mucosa al nivel de las vías respiratorias.
La mayoría de las enfermedades infecciosas o
bien están restringidas a las membranas mucosas o bien los agentes
etiológicos necesitan transitar por la mucosa durante las etapas
tempranas de la infección. Por tanto, es deseable obtener no sólo
una respuesta inmunitaria sistémica, sino también una respuesta
inmunitaria en la mucosa local como resultado de la vacunación,
bloqueando de ese modo tanto la infección (es decir, la
colonización) como el desarrollo de la enfermedad. Esto puede dar
como resultado una protección más eficaz frente a la infección,
facilitando también la erradicación de enfermedades para las que los
seres humanos son el único reservorio (es decir, bloqueando la
transmisión a huéspedes propensos). Las vacunas administradas por
vía parenteral estimulan principalmente respuestas sistémicas,
mientras que las vacunas administradas mediante una vía de la
mucosa imitan la respuesta inmunitaria producida por infecciones
naturales y pueden conducir a respuestas sistémicas y en la mucosa
eficaces. Debido a la aparente compartimentalización del sistema
inmunitario sistémico y de la mucosa, las vacunas administradas por
vía parenteral son menos eficaces en la protección frente a
patógenos de la mucosa (McGhee, J.R., Mestecky, J., Dertzbaugh,
M.T., Eldridge, J.H., Hirasawa, M. y Kiyono, H. (1992) The mucosal
immune system: from fundamental concepts to vaccine development.
Vaccine 10, 75-88). Por tanto, se requiere la
administración de inmunógenos a través de la vía de la mucosa para
lograr una protección completa. Sin embargo, la mayoría de las
vacunas disponibles se administran a través de la vía parenteral,
produciendo de ese modo una inmunidad sistémica en el individuo.
La administración de vacunas por medio de la vía
de la mucosa ofrece varias ventajas con respecto a la vacunación
parenteral. Estas ventajas incluyen una facilidad de administración,
la posibilidad de autoadministración (por ejemplo, mediante
aplicación intranasal, rectal u oral), la eliminación de la
posibilidad de infección cruzada no deseada debido al uso de agujas
infectadas o trabajo no estéril, tasas inferiores de efectos
secundarios, mayor aceptación por el público, mejor cumplimiento de
los protocolos de vacunación (es decir, aumento de la eficacia
global), logística de administración más sencilla y costes de
administración inferiores, siendo particularmente adecuada para
programas de inmunización en masa. Sin embargo, ha de tenerse en
cuenta la compartimentalización al nivel del sistema inmunitario de
la mucosa. De hecho, las respuestas inmunitarias que pueden
observarse tras la vacunación intranasal pueden no producirse
necesariamente tras la inmunización oral o intrarectal. Por
ejemplo, la vacunación oral puede no estimular respuestas eficaces
en los aparato genitourinario y/o vías respiratorias.
Desafortunadamente, la administración de
antígenos mediante la vía de la mucosa está asociada con un problema
importante, concretamente que los antígenos administrados mediante
esta vía son generalmente poco inmunogénicos. Este es el resultado
de diferentes mecanismos, tales como (i) eliminación acelerada de
antígenos mediante los mecanismos de aclaramiento del huésped no
específicos (por ejemplo, actividad ciliar, peristaltismo), (ii)
degradación de antígenos mediante enzimas locales, (iii) alteración
de antígenos y/o modificación estructural como resultado de un pH
extremo (por ejemplo, ácido en el estómago, alcalino en el
intestino), (iv) escasa penetración del antígeno a través de la
mucosa, (v) acceso limitado de los antígenos de la vacuna a células
presentadoras de antígenos y (vi) tolerancia periférica local.
Para superar estos problemas, se han usado
diferentes estrategias, tales como atrapamiento de antígenos o
asociación con partículas físicas o biológicas (por ejemplo
micropartículas, nanopartículas, fantasmas bacterianos), el uso de
virosomas o partículas similares a virus, el uso de liposomas o
ISCOMS, el uso de plantas transgénicas, la producción de antígenos
mediante portadores bacterianos o virales atenuados que actúan o
bien como vectores convencionales o bien como portadores para
vacunas de ácido nucleico y/o su administración con adyuvantes
mucosales. Sin embargo, a pesar del abundante conjunto de pruebas
experimentales generadas en estudios preclínicos durante los
últimos años, casi no se han transferido candidatos al canal de
desarrollo de vacunas.
El uso de adyuvantes óptimos desempeña un papel
crucial en la vacunación. Los antígenos administrados sin adyuvante
sólo median una respuesta inmunitaria adecuada pocas veces. Además,
no sólo importa la fuerza sino también la calidad de la respuesta
inmunitaria provocada. La estimulación de un patrón de inmunización
incorrecto puede conducir a reacciones inmunopatológicas y a una
exacerbación de los síntomas de la infección. En este contexto, el
adyuvante puede ayudar a que se produzca la respuesta inmunitaria
deseada. En otras palabras, un adyuvante puede modular la respuesta
inmunitaria o redirigir la respuesta inmunitaria para equilibrar la
respuesta inmunitaria en la dirección deseada.
Las sustancias denominadas "adyuvantes" son
aquéllas que se añaden y/o se formulan conjuntamente en una
inmunización frente al antígeno real (es decir, la sustancia que
provoca la respuesta inmunitaria deseada) con el fin de potenciar
la respuesta inmunitaria humoral y/o mediada por células ("Lexikon
der Biochemie und Molekularbiologie", 1. Band, Spektrum,
Akademischer Verlag 1995). Es decir, los adyuvantes son compuestos
que tienen propiedades de inmunopotenciación, en particular, cuando
se administran conjuntamente con antígenos. El uso de muchos
adyuvantes se basa únicamente en la experiencia, y el efecto no
puede ni explicarse ni predecirse de manera precisa. Los siguientes
grupos de adyuvantes se usan tradicionalmente en particular:
hidróxido de aluminio, emulsiones de aceites minerales, saponinas,
detergentes, compuestos de silicio, tiourea, endotoxinas de
bacterias Gram-negativas, exotoxinas de bacterias
Gram-positivas, bacterias vivas atenuadas o muertas
o partes de las mismas.
Se facilita una visión general de los sistemas
de administración y adyuvantes mucosales conocidos actualmente, por
ejemplo las partículas mencionadas anteriormente, ICOMS, liposomas y
partículas similares a virus, para vacunas a base de proteínas, ADN
y ARN en Vajdy et al., Immunol. Cell Biol., 2004, 82,
617-627. En el mismo se tratan los enfoques
actualmente disponibles en la inmunopotenciación de vacunas
mucosales.
Es decir, se han descrito diversos adyuvantes
mucosales que deben servir como alternativa para los adyuvantes
útiles para la administración sistémica, por ejemplo, véase Vajdy
et al., citado anteriormente. Estos adyuvantes mucosales
incluyen enterotoxina termolábil y mutantes detoxificados de la
misma. En particular, se han desarrollado mutantes genéticamente
detoxificados de enterotoxina termolábil de E. coli como
adyuvantes mucosales útiles. Además, se conoce la toxina del cólera
de Vibrio cholera como adyuvante útil para vacunación de la
mucosa. Además, se ha descrito la aplicación de dinucleótidos de CpG
no metilados. Se mostró que los CpG pueden desviar la respuesta
inmunitaria hacia una respuesta Th1 y pueden modular respuestas
inmunitarias preexistentes. Se describen también las saponinas como
sustancias inmunomoduladoras, predominantemente mediante la
inducción de citocinas específicas que entonces modulan y/o activan
la respuesta inmunitaria.
Además, como adyuvantes que pueden ser útiles en
la vacunación de la mucosa se han descrito los siguientes:
Se sabe que la molécula MALP-2 y
conjugados de bisaxciloxipropilcisteína de la misma, por ejemplo una
molécula de bispalmitoiloxipropilcisteína-PEG
representan potentes estimulantes para los macrófagos. Se demostró
anteriormente la utilidad de MALP-2 como adyuvante,
véanse por ejemplo los documentos WO2004/009125 y WO2003/
084568. En particular, se demostró que MALP-2 puede actuar como adyuvante mucosal eficaz que potencia la respuesta inmunitaria de la mucosa, por ejemplo fomentando una expresión potenciada de anticuerpos de IgA específicos de antígeno.
084568. En particular, se demostró que MALP-2 puede actuar como adyuvante mucosal eficaz que potencia la respuesta inmunitaria de la mucosa, por ejemplo fomentando una expresión potenciada de anticuerpos de IgA específicos de antígeno.
Además, se demostró que MALP-2
puede activar células dendríticas y células B, que desempeñan ambas
un papel importante en la inducción de una respuesta inmunitaria
humoral específica. Además, estudios preliminares demuestran que
una combinación de MALP-2 sintética y proteína tat
de VIH-1 biológicamente activa puede ser una vacuna
prometedora con el componente de MALP-2 como
adyuvante mucosal eficaz.
Desafortunadamente, la mayoría de los compuestos
descritos anteriormente que son útiles como adyuvantes mucosales no
son utilizables debido a su toxicidad intrínseca, por ejemplo,
transporte retrógrado hacia tejidos neuronales de toxinas y/o
toxoides bacterianos en los derivados tras vacunación nasal.
Por tanto, ninguno de estos adyuvantes mucosales
descritos anteriormente se han aprobado todavía, aunque,
actualmente, sólo dos adyuvantes sistémicos recibieron aprobación
para administrarse a seres humanos y, por tanto, se usan para la
preparación de vacunas humanas. Estos adyuvantes son Alum y MF59.
Sin embargo, no son eficaces como adyuvantes mucosales.
Ha habido una intensa investigación en los
últimos años para buscar adyuvantes novedosos, incluyendo aquellos
para la vía de administración en la mucosa. Sólo se han encontrado
unas pocas sustancias que pueden potenciar las respuestas de la
mucosa. Entre éstas, algunas actúan como portadores a los que los
antígenos deben unirse o fusionarse. Se han encontrado muy pocos
adyuvantes "verdaderos" que puedan emplearse universalmente que
se mezclen con los antígenos, tal como se explicó de manera
resumida anteriormente.
Normalmente, las membranas celulares están
compuestas, entre otros, por lípidos, como fosfolípidos. En líneas
generales, los fosfolípidos pueden dividirse en fosfoglicéridos y
esfingolípidos. La estructura principal de un esfingolípido es la
esfingosina. En todos los esfingolípidos, el grupo amino de la
esfingosina está acilado para formar una ceramida
(N-acilesfingosina). El grupo hidroxilo terminal
también está sustituido. Por tanto, dependiendo del sustituyente,
se forma una esfingomielina, un cerebrósido o un gangliósido. En
los cerebrósidos, una glucosa o galactosa está unida al grupo
hidroxilo terminal de la ceramida mientras que en gangliósidos un
oligosacárido está unido a la ceramida mediante un residuo de
glucosa.
La alfa-galactosilceramida
(alfa-Galcer) como ejemplo de
alfa-hexosilceramida (alfa-HexCer)
se aisló originalmente de la esponja marina Agelas
mauritianus (Morita M., et al, J. Med. Chem., 1995,
38(12), 2176-2187). En particular, el
compuesto Agelasphin-9b,
(2S,3S,4R)-1-O-(alfa-D-galactopiranosil)-16-metil-2-[N-((R)-2-hidroxitetracosanoil)-amino]-1,3,4-heptadecanetriol,
se describe como un potente agente antitumoral. Se sabe que
alfa-GalCer puede potenciar la inmunidad protectora
y presenta funciones inmunomoduladoras. Además, se describe en la
técnica que la administración in vivo de
alfa-GalCer conduce a una potente activación de
células NKT en ratones, iniciándose así la secreción de citocinas,
la regulación por incremento de receptores de la superficie y la
activación adicional de diversas células de la respuesta
inmunitaria innata y adaptativa. Adicionalmente, se especula que
alfa-GalCer tiene actividad terapéutica frente a
tumores, infecciones y enfermedades autoinmunitarias.
La alfa-galactosilceramida puede
unirse a la molécula CD1d presente en un subconjunto de linfocitos.
Tras la unión a CD1d, se demostró que alfa-GalCer
activaba células NKT murinas y humanas mediante el reconocimiento
por medio de receptores de antígenos expresados sobre dichas
células. Además, se demostró que el truncamiento casi completo de
la cadena de acilo de alfa-GalCer desde 24 hasta 2
carbonos no afecta significativamente a la respuesta de células NKT
de ratón. Por tanto, el resto glicosilo parece ser importante para
el reconocimiento de receptores de antígenos y CD1d/GalCer y es
probable que la modificación de dicho resto influya en la actividad
de activación y unión de alfa-GalCer.
Recientemente, se ha descrito que las
glicosilceramidas son útiles como adyuvantes para vacunas frente a
infecciones y cáncer, documento WO03/009812. En este documento, se
ha usado la administración subcutánea de
alfa-galactosilceramidas para demostrar la
potenciación y prolongación de respuestas de células T específicas
de malaria. Además, en el documento WO2004/028475 se muestra el uso
de análogos de glicosilceramida. Se describe que estos análogos
pueden inmunomodular la respuesta inmunitaria, es decir, pueden
activar o estimular la respuesta inmunitaria o, por otra parte,
pueden tener actividad inmunoinhibidora.
Sin embargo, el uso de
alfa-GalCer u otras glicosilceramidas está limitado
en vista de su estabilidad y su tolerancia hacia el individuo.
Además, la solubilidad de alfa-GalCer en disolventes
acuosos es escasa y la degradación debida a escisión enzimática se
produce rápidamente. Además, la excreción de estos compuestos es
rápida y, por tanto, es necesaria una dosificación superior de
dichos compuestos.
La PEGilación (es decir, la unión de
polietilenglicol a proteínas y fármacos) es una metodología de
próxima aparición para el desarrollo de fármacos y tiene el
potencial de revolucionar la medicina mejorando drásticamente las
propiedades farmacocinéticas y farmacodinámicas del fármaco
administrado [documentos WO 2004/009125; WO 99/52549; EP 510 356;
Parveen S, Sahoo SK. Clin Pharmacokinet 2006;
45(10):965-88.]. Desde hace varios años se
usa ya el polietilenglicol como marcador no absorbible [Isenberg JI,
Hogan DL, Koss MA, Selling JA. H, Gastroenterology 1986;
91(2):370-8], para el control de la
permeabilidad pasiva de la mucosa (evaluada con una sustancia PEG
200 de bajo peso molecular) [Ventura U, Ceriani T, Moggio R., Scand
J Gastroenterol Suppl 1984; 92:55-8] o como
marcador de peso molecular (es decir, PEG 4000,
FITC-dextran 10.000). Se demostró que el PEG
mostraba sólo irritación intranasal baja en seres humanos [documento
EP 0532546] y también se encontró baja toxicidad en conejos o en
ovejas tras 1 aplicación nasal repetida (tres veces al día) de PEG
puro. El uso de inmunonanopartículas pegiladas sintetizadas con
derivados de PEG bifuncionales mostró que estos componentes pueden
unir la nanopartícula con el AcM de direccionamiento [Olivier JC,
Huertas R, Lee HJ, Calon F, Pardridge WM., Pharm Res 2002;
19(8):1137-43].
Sin embargo, el uso de compuestos pegilados, tal
como el actual tratamiento convencional para el VHC, interferón
alfa pegilado en combinación con ribavirina, tiene sus limitaciones.
La eficacia limitada en pacientes con el genotipo 1 del virus de la
hepatitis C y el perfil de efectos secundarios necesitarán el
desarrollo de nuevos enfoques terapéuticos [Manns MP, Wedemeyer H,
Cornberg M, Gut, 2006; 55(9), 1350-9].
Además, la conjugación de un inmunomodulador con PEG no importa,
que el compuesto pegilado todavía puede actuar como adyuvante.
Estudios con derivados de Malp-2 pegilados
mostraron una disminución en la proliferación celular y también en
la secreción de título de IgG específico de antígeno en comparación
con Malp-2. Hasta ahora, no se ha demostrado que un
derivado pegilado de un compuesto químico activo pueda estimular y
activar una respuesta inmunitaria específica de antígeno por medio
de la vía de administración intranasal. El uso de los conjugados
según la presente invención, por ejemplo el nuevo compuesto
\alphaGalCerMPEG como adyuvante sistémico, pero también como
adyuvante mucosal, mostró que dichos conjugados pueden potenciar
respuestas inmunitarias específicas de antígeno sin efectos
secundarios adversos.
\global\parskip0.900000\baselineskip
Por tanto, hay todavía una necesidad en la
técnica de proporcionar nuevos compuestos útiles como adyuvantes,
particularmente como adyuvantes mucosales y/o como vacunas que
superen los inconvenientes mencionados anteriormente, en
particular, que tengan buena estabilidad y tolerancia en el
individuo mientras que son solubles en disolventes acuosos, están
protegidos frente a la degradación en el individuo y tienen buena
vida útil de almacenamiento. En particular, hay una necesidad de
adyuvantes mucosales que puedan producir una fuerte respuesta
inmunitaria que represente una respuesta inmunitaria equilibrada o
ajustada que implique tanto componentes humorales como celulares,
por tanto, que permita un tratamiento o una profilaxis eficaces de
diversas enfermedades y estados, específicamente de enfermedades
infecciosas o cáncer.
Por tanto, el objeto de la presente invención es
la provisión de adyuvantes mucosales que puedan producir y/o
potenciar y/o modular la respuesta inmunitaria (preexistente) en un
individuo o sujeto. En particular, la invención se basó en el
objeto de desarrollar una gama de adyuvantes novedosos, sumamente
activos, particularmente adyuvantes mucosales que no son tóxicos
para seres humanos y que pueden emplearse con una amplia variedad
de principios activos para ayudar en vacunas convencionales o
novedosas tales como, en particular, vacunas profilácticas o
terapéuticas, incluyendo vacunas de ADN y contra el cáncer.
Este problema técnico se resuelve mediante la
provisión de las realizaciones tal como se caracterizan en las
reivindicaciones.
La presente invención se refiere en general a la
provisión de nuevos conjugados tal como se representa en la fórmula
(I) o sales o solvatos de los mismos, útiles como adyuvantes,
preferiblemente como adyuvantes mucosales. Además, la presente
invención se refiere a nuevas composiciones farmacéuticas que
comprenden al menos uno de los conjugados según fórmula (I) tal
como se describe en el presente documento con portador(es)
farmacéuticamente aceptable(s), opcionalmente junto con
principios activos adicionales.
Es decir, la presente invención se refiere a la
provisión del uso de conjugados específicos útiles como adyuvantes
en la vacunación terapéutica o profiláctica. Dichos conjugados son
útiles como adyuvantes sistémicos y son particularmente útiles como
adyuvantes mucosales que se aplican a través de la mucosa del
individuo.
Tal como se usa en el presente documento, el
término "adyuvante" significa sustancias que se añaden y/o
formulan conjuntamente en una inmunización con el principio activo,
es decir, la sustancia que provoca la respuesta inmunitaria
deseada, con el fin de potenciar o producir o modular la respuesta
inmunitaria mediada por células (celular) y/o humoral frente al
antígeno activo. Preferiblemente, el adyuvante según la presente
invención también puede potenciar o producir la respuesta
inmunitaria innata.
El término "terapia" o "tratamiento"
se refiere a un proceso que pretende producir un cambio beneficioso
en el estado de un individuo como un mamífero, por ejemplo, un ser
humano, denominado a menudo paciente, o animal. Un cambio
beneficioso puede incluir, por ejemplo, uno o más de: restauración
de la función, reducción de síntomas, limitación o retardo de la
evolución de una enfermedad, un trastorno, o un estado o la
prevención, la limitación o el retardo del deterioro de un estado,
una enfermedad o un trastorno de un paciente. Tal tratamiento abarca
habitualmente la administración de un fármaco, entre otros.
Tal como se usa en el presente documento, la
expresión "sistema de administración" se refiere a un sistema
que es más inerte y tiene menos efectos inmunomoduladores que los
adyuvantes y que puede proteger y administrar la vacuna en el sitio
de interés a través del sitio de administración. En particular, el
sistema de administración permite una presentación más eficaz del
antígeno al sistema inmunitario. Ejemplos de sistemas de
administración son virus o par-
tículas similares a virus, ISCOM, nanopartículas, micropartículas, liposomas, virosomas y partículas similares a virus.
tículas similares a virus, ISCOM, nanopartículas, micropartículas, liposomas, virosomas y partículas similares a virus.
Tal como se usa en el presente documento, el
término "pegilado" se refiere a la conjugación de un resto de
compuesto con resto(s) de conjugado que contienen al menos
una unidad de polialquileno. En particular, el término pegilado se
refiere a la conjugación del resto de compuesto con un resto de
conjugado que tiene al menos una unidad de polietilenglicol.
Tal como se usa en el presente documento, el
término "mucosal" se refiere a una superficie de mucosa del
cuerpo tal como la mucosa nasal, oral, gastroentérica, rectal,
urinaria, conjuntiva, glandular, por ejemplo la glándula mamaria,
epitelial.
Tal como se usa en el presente documento, el
término "conjugado" se refiere compuestos que comprenden un
resto de conjugado y un resto de compuesto. La expresión "resto
de conjugado" se refiere a un sustituyente R_{4} de la fórmula
general (I). El resto de conjugado tiene como objetivo aumentar la
aplicabilidad del compuesto residual. En cambio, la expresión
"compuesto según la fórmula (I)" o "resto de compuesto" se
refiere a un compuesto de fórmula general (I) sin sustituyente
B.
\global\parskip1.000000\baselineskip
Tal como se usa en el presente documento, la
expresión "estructura antigénica" o "antígeno" se refiere
a una estructura que puede provocar una respuesta inmunitaria
celular o humoral. La estructura antigénica, también conocida como
epítopo, es parte del antígeno, que se presenta por el CMH o
moléculas similares al CMH. Además, el epítopo o la estructura
antigénica representa la parte de un antígeno reconocida por
anticuerpos dirigidos contra dicho antígeno.
Tal como se usa en el presente documento, la
expresión "modular una respuesta inmunitaria" se refiere a
cualquier cambio del presente estado de la respuesta inmunitaria.
La respuesta inmunitaria puede modularse en cuanto que la respuesta
está provocada o una respuesta inmunitaria preexistente está
potenciada, lo que puede incluir la disminución de aspectos
específicos de la respuesta inmunitaria, por ejemplo la respuesta
inmunitaria puede modularse cambiando la respuesta inmunitaria
desde una respuesta inmunitaria más humoral hasta más celular o
viceversa. Además, la respuesta inmunitaria puede modularse
cambiando o redireccionando la respuesta desde una respuesta Th1
hasta TH2 o Th3 o viceversa. Además, la modulación de la respuesta
inmunitaria puede abarcar la activación o potenciación de la
respuesta inmunitaria innata.
Tal como se usa en el presente documento, el
término "individuo" o "sujeto" que se usa en el presente
documento de manera intercambiable se refiere a un individuo o
sujeto que necesita un tratamiento o una profilaxis.
Preferiblemente, el sujeto o individuo es un vertebrado, incluso se
prefiere más un mamífero, se prefiere particularmente un ser
humano.
Tal como se usa en el presente documento, el
término "portador" se refiere a un diluyente, adyuvante,
excipiente o vehículo.
\vskip1.000000\baselineskip
Por tanto, según la primera realización, la
presente invención se refiere a un conjugado de
alfa-hexosilceramida (alfa-HexCer)
según la fórmula (I)
en la
que
A es CH_{2} o CO;
B representa R_{4}, OR_{4}, NHR_{4},
PO_{3}R_{4} o SO_{3}R_{4};
en los que R_{4} es un resto de conjugado, que
es un polímero tolerado fisiológicamente y soluble en agua;
R_{1} y R_{2} pueden ser iguales o
diferentes y son independientemente un grupo alquenilo y/o alquilo
C_{10}-C_{30} lineal o ramificado;
D representa CH_{2} o CH(OH);
R_{3} representa H u OH;
R_{5} y R_{6} son sustituyentes en los que o
bien R_{5} representa hidrógeno y R_{6} representa hidrógeno,
OH, O-alquilo C_{1}-C_{6},
NH_{2}, NHCO-alquilo
C_{1}-C_{6} o bien R_{6} es hidrógeno y
R_{5} representa hidrógeno, OH, O-alquilo
C_{1}-C_{6}, NH_{2},
NHCO-alquilo C_{1}-C_{6};
R_{7} y R_{8} son sustituyentes en los que o
bien R_{7} representa hidrógeno y R_{8} representa hidrógeno,
OH, O-alquilo C_{1}-C_{6},
NH_{2}, NHCO-alquilo
C_{1}-C_{6} o bien R_{8} es hidrógeno y
R_{7} representa hidrógeno, OH, O-alquilo
C_{1}-C_{6}, NH_{2},
NHCO-alquilo C_{1}-C_{6};
R_{9} y R_{10} son sustituyentes en los que
o bien R_{9} representa hidrógeno y R_{10} representa
hidrógeno, OH, O-alquilo
C_{1}-C_{6}, NH_{2},
NHCO-alquilo C_{1}-C_{6} o bien
R_{10} es hidrógeno y R_{9} representa hidrógeno, OH,
O-alquilo C_{1}-C_{6}, NH_{2},
NHCO-alquilo C_{1}-C_{6}; o
sales o solvatos del mismo.
\vskip1.000000\baselineskip
Preferiblemente, en la fórmula (I) R_{5},
R_{8} y R_{10} son cada uno un hidrógeno y R_{6} es
preferiblemente hidrógeno, OH, O-alquilo
C_{1}-C_{6}, NH_{2},
NHCO-alquilo C_{1}-C_{6},
R_{7} y R_{9} son cada uno OH, O-alquilo
C_{1}-C_{6}. Preferiblemente de manera
particular, R_{5}, R_{8} y R_{10} son hidrógeno y R_{6},
R_{7} y R_{9} son grupos hidroxilo.
R_{1} y R_{2} pueden ser idénticos o pueden
ser diferentes y son independientemente un grupo alquilo o grupo
alquenilo que tiene residuos de C_{9} a C_{29}. Preferiblemente,
R_{1} es de C_{19} a C_{29}, particularmente C_{24}, y
R_{2} es de C_{10} a C_{20}, particularmente C_{14}.
Como conjugado de fórmula (I), se prefieren
particularmente conjugados de
alfa-galactosilceramidas, es decir, en los que
R_{5}, R_{8} y R_{10} son un átomo de hidrógeno y R_{6},
R_{7} y R_{9} son un grupo hidroxilo, como
(2S,3S,4R)-1-(alfa-D-galactopiranosiloxi)-2-hexacosanoilamino-3,4-octadecanodiol.
Preferiblemente son conjugados de estas galactosilceramidas en los
que dicho conjugado tiene al menos una unidad de
polietilenglicol.
El resto de conjugado del conjugado según la
presente invención es un resto de conjugado covalentemente unido,
fisiológicamente tolerado, que es adecuado para convertir la
hexosilceramida en una forma más soluble en agua. El resto de
conjugado es un polímero soluble en agua, por ejemplo un dextrano,
un azúcar, una polivinilpirrolidona, un alginato, una pectina o
colágeno. El resto de conjugado se caracteriza porque proporciona
buena solubilidad en agua y no es inmunogénico.
\vskip1.000000\baselineskip
El resto de conjugado del conjugado de
hexosilceramida reivindicado en el presente documento es en una
realización preferida un resto de conjugado que contiene al menos
una unidad de polialquilenglicol de la fórmula:
X_{1}-[(CHR_{11})_{x}-O]_{n}-(Z)_{y}-
en la
que
X_{1} es hidrógeno o un hidrocarburo que puede
contener heteroátomo(s), por ejemplo grupo alcoxilo de
C_{1} a C_{6};
Z es un grupo de enlace divalente, tal como C=O
o CHR_{11};
R_{11} es independientemente uno cualquiera de
hidrógeno, OH, OR_{12} o CO-R_{13};
R_{12} es independientemente uno cualquiera de
hidrógeno o grupo alquilo C_{1}-C_{6};
R_{13} es independientemente uno cualquiera de
hidrógeno, OH, OR_{12} o NR_{14}R_{15};
R_{14} y R_{15} son independientemente uno
cualquiera de hidrógeno o hidrocarburo que puede contener
heteroátomo(s)
{}\hskip0.45cm y que puede formar un anillo;
{}\hskip0.45cm y que puede formar un anillo;
n es un número entero de 1 a 100;
x es independientemente un número entero de 1 a
10;
y es un número entero de 0 a 10.
\vskip1.000000\baselineskip
Preferiblemente, n es un número entero de 2 a
50, como de 2 a 10, en particular de 3 a 5.
x es preferiblemente un número entero de 2, 3 ó
4, en particular 2.
y es preferiblemente un número entero de 1 a 5,
en particular, de 1 a 3, en otra realización preferida, y es 0.
X_{1} es preferentemente OR_{16},
N(R_{16})_{2}, SR_{16} o COOR_{16}, en los que
cada R_{16} es individualmente hidrógeno, bencilo o grupo alquilo
C_{1}-C_{6}, preferiblemente un grupo alcoxilo
C_{1}-C_{6}, como un grupo metoxilo, etoxilo o
propoxilo.
R_{11} es preferiblemente un átomo de
hidrógeno.
\vskip1.000000\baselineskip
Por tanto, la unidad de polialquilenglicol
mencionada anteriormente puede contener preferiblemente subunidades
-[(CHR_{11})x-O]_{n} de
etilenglicol, propilenglicol o butilenglicol o combinaciones de los
mismos. La longitud de cadena de cada una de las unidades de
polialquilenglicol puede estar en el intervalo de 1 a 100
subunidades, preferiblemente, de 2 a 50 subunidades, como de 2 a 10
subunidades, particularmente en el intervalo de 3 a 5
subunidades.
De manera particularmente preferida R_{4} es
un residuo de metoxipolialquilenglicol-carbonilo en
el que el resto de alquileno es un resto de etileno o
propileno.
Por tanto, preferiblemente los conjugados están
en forma pegilada para aumentar la solubilidad en disolventes
hidrófilos y un entorno hidrófilo. Además, el resto de conjugado
permite proteger el resto de compuesto, es decir, el resto de
adyuvante mucosal activo, frente a la degradación enzimática, la
modificación estructural debida al cambio del pH, la eliminación
mecánica, etc. Por tanto, se aumenta principalmente la estabilidad
del compuesto. Otro efecto beneficioso de la conjugación es aumentar
el tiempo de retención en el individuo, por ejemplo, para retrasar
la excreción renal, mientras que se tolera bien, por ejemplo no
siendo inmunogénico, por dicho organismo.
De manera sorprendente, el conjugado mantiene su
actividad de unión a CD1d mientras que muestra una estabilidad
mejorada y una actividad superior. Los datos demuestran que incluso
una concentración 10 veces inferior del resto activo, concretamente
el resto de alfa-HexCer, de conjugados mantiene sus
actividades estimuladoras en comparación con el compuesto
alfa-HexCer puro. Además, se mejora la solubilidad
en agua del compuesto alfa-HexCer. Además, tal como
se muestra en los ejemplos, el conjugado según la presente
invención, como el alfaGalCerMPEG que es un conjugado en el que un
residuo de metil-PEG-CO está unido
al sustituyente R_{4}, ejerce propiedades de adyuvante más
fuertes que el compuesto original alfaGalCer que es un inductor
superior de respuestas TH_{2} y sIgA en sitios efectores de la
mucosa tanto remotos como locales.
Por último, la vida útil de almacenamiento del
compuesto alfa-HexCer aumentó tras la conjugación
con el polímero soluble en agua. Es decir, las capacidades
estimuladoras de alphGalCerMPEG sobre células inmunitarias se
mantuvieron intactas durante al menos dos meses tras la incubación
de una disolución madre (10 \mug/ml en agua estéril/Ampuwa) a o
bien 4ºC o bien 25ºC.
Específicamente, el resto de conjugado comprende
al menos dos cadenas que tienen unidades de polialquilenglicol. Es
decir, el conjugado puede ser un compuesto ramificado en el que cada
rama contiene una unidad de polialquilenglicol. Se prefieren
particularmente restos de conjugado en los que la unidad de
polialquilenglicol es una unidad de polietilenglicol,
polipropilenglicol o polibutilenglicol.
En una realización particularmente preferida, el
resto de conjugado es un resto ramificado en el que al menos dos
ramas contienen unidades de polietilenglicol que tienen de 3 a 5
subunidades de etilenglicol y un grupo metoxilo en el extremo libre
del grupo polietileno. En particular, el resto ramificado comprende
4 ó 6 ramas que tienen cada una 3 subunidades de etilenglicol y un
grupo metoxilo en el extremo libre del grupo polietileno.
En particular, el conjugado de
alfa-HexCer se caracteriza porque el R_{4} del
conjugado es PEG de 4 ramas
((S)-10-amino-6,9,13,16-tetraoxo-N,N',8,14-tetrakis(3,6,9,12-tetraoxatridec-1-il)-5,8,14,17-tetraazahenicosano-1,21-diami-
da), PEG de 6 ramas o PEG de 8 ramas, véase también http://ww.celares.com. Otros restos de conjugado adecuados que comprenden al menos una unidad de polietileno pueden obtenerse por ejemplo de Celares GmbH, Berlín, véase http://www.celares.com.
da), PEG de 6 ramas o PEG de 8 ramas, véase también http://ww.celares.com. Otros restos de conjugado adecuados que comprenden al menos una unidad de polietileno pueden obtenerse por ejemplo de Celares GmbH, Berlín, véase http://www.celares.com.
Los conjugados de fórmula (I) pueden estar en
forma de sales no tóxicas farmacéuticamente aceptables de los
mismos. Las sales de los conjugados de fórmula (I) incluyen sales de
adición de ácido, tales como sales con ácidos inorgánicos (por
ejemplo ácido clorhídrico, ácido sulfúrico, ácido nítrico y ácido
fosfórico) o con ácidos orgánicos (por ejemplo ácido acético, ácido
propiónico, ácido maleico, ácido oleico, ácido palmítico, ácido
cítrico, ácido succínico, ácido tartárico, ácido fumárico, ácido
glutámico, ácido pantoténico, ácido laurilsulfónico, ácido
metanosulfónico y ácido ftálico).
Los conjugados de fórmula (I) pueden estar en
forma de solvatos de los mismos (por ejemplo, hidratos).
La presente invención no se limita a los
compuestos y conjugados de alfa-hexosilceramidas,
sino que también abarca los compuestos y conjugados de
beta-hexosilceramida así como las sales y solvatos
de los mismos.
La síntesis de los conjugados puede realizarse
mediante métodos conocidos por el experto en la técnica. Por
ejemplo, un grupo hidroxilo puede convertirse en un residuo de
halógeno, por ejemplo Cl, Br, I y puede hacerse reaccionar este
residuo con conjugados modificados que tienen un grupo amino libre.
Por ejemplo, la síntesis de conjugados pegilados se describe en
Veronese F.M., Biomaterials 22 (2001), 405-417 y
Kodera Y., et al., Prog. Polim. Sci. (1998), 23,
1233-1271 que se incorporan al presente documento
como referencia.
Además, la síntesis de
alfa-glicosilceramidas y
alfa-galactosilceramidas se describe generalmente en
por ejemplo los documentos WO93/05055, WO94/02168, WO94/06020,
WO94/24142 y Morita M., et al., Bioorganic & Medical
Chemistry Letters, 1995, 5(7), 699-704 que se
incorporan todos al presente documento como referencia.
En una realización preferida, el/los
conjugados(s) según la fórmula (I) o las sales o los solvatos
del/de los mismo(s)
es/son útiles como adyuvante(s) mucosal(es), en particular, para administración intranasal, intra-NALT, oral, intrarrectal, en la conjuntiva, intravaginal, intratecal, intrabronquial, intrapulmonar o intrauretral, administración en los conductos lácteos o mediante inhalación.
es/son útiles como adyuvante(s) mucosal(es), en particular, para administración intranasal, intra-NALT, oral, intrarrectal, en la conjuntiva, intravaginal, intratecal, intrabronquial, intrapulmonar o intrauretral, administración en los conductos lácteos o mediante inhalación.
Se prefiere particularmente la administración
intranasal o la administración mediante inhalación usando
formulaciones de aerosol adecuadas. Se conocen en la técnica
formulaciones de aerosol útiles para la administración de
vacunas.
Los conjugados según la fórmula (I) o las sales
o los solvatos de los mismos son también adecuados como
adyuvante(s) sistémico(s). Por tanto, los adyuvantes
descritos en el presente documento también pueden aplicarse como
adyuvante(s) parenteral(es), en particular, en la
administración subcutánea, intravenosa, intradérmica, tópica o
intramuscular.
El adyuvante de la invención puede unirse
mediante todos los métodos conocidos por el experto al antígeno o
la molécula activa prevista para la vacunación, incorporarse junto
con la última en partículas físicas (por ejemplo micropartículas,
nanopartículas, liposomas, ISCOMS, polímeros) o biológicas
(bacterias, partes bacterianas) o virosomas o puede mezclarse con
el antígeno. Para la unión a portadores, también es posible
proporcionar moléculas de transporte o proteínas de transporte como
portadores.
El/los conjugado(s) según la fórmula (I)
o las sales o los solvatos del/de los mismo(s) se
presenta(n) preferiblemente en una preparación con el
componente de vacunación activo (por ejemplo el antígeno) que es
adecuada y está prevista para la administración intranasal,
intra-NALT (tejido linfoide asociado a la nariz), en
aerosol, oral, intrarrectal, en la conjuntiva, intravaginal,
intrauretral o para la administración en los conductos lácteos de
la mama. Particularmente, la preparación se proporciona en una
formulación adecuada para tomarse a través de las vías
respiratorias o el aparato digestivo. Alternativamente, el adyuvante
mucosal de la invención puede presentarse en un kit para su
administración conjunta con una vacuna mediante una de las vías
mencionadas anteriormente y puede adaptarse por tanto cuando se
apropiado. Es decir, la vacuna puede administrarse de manera
simultánea, secuencial o por separado con el componente de
vacunación activo.
En otra realización, la presente invención se
refiere a métodos de tratamiento de individuos aquejados de una
enfermedad o estado que puede tratarse mediante la modulación de la
respuesta inmunitaria que comprenden administrar a dicho individuo
una cantidad eficaz de una composición farmacéutica que comprende
los conjugados según la fórmula (I), las sales y los solvatos de
los mismos tal como se definen en el presente documento como
adyuvante, particularmente como adyuvantes mucosales junto con un
componente de vacunación activo, y, opcionalmente, un portador
farmacéuticamente aceptable.
Preferiblemente, el método se refiere al
tratamiento de individuos aquejados de una enfermedad infecciosa en
el que la enfermedad infecciosa se produce por un agente infeccioso
seleccionado de aquellos que provocan una enfermedad humana o
animal al nivel de las vías respiratorias, el tubo digestivo, el
aparato genitourinario, el sistema osteoarticular, la piel o la
mucosa.
Los conjugados o las sales o los solvatos de los
mismos tal como se definen en el presente documento son
particularmente útiles como adyuvantes mucosales para activar o
potenciar in vitro y/o in vivo la función de
presentación de antígenos de células presentadoras de antígeno para
una intervención terapéutica o profiláctica. Esto significa que los
adyuvantes pueden estimular macrófagos, pueden estimular o potenciar
la respuesta inmunitaria humoral, por ejemplo potenciar o estimular
la producción de anticuerpos. Además, los adyuvantes también pueden
potenciar o estimular la respuesta inmunitaria celular, por ejemplo
aumentando la proliferación de células T. Además, los conjugados de
fórmula (I) no sólo pueden activar o estimular componentes del
sistema inmunitario adaptativo sino también del sistema inmunitario
innato, como activar células NK o NKT. Además, es posible usar
el/los adyuvante(s) para la estimulación ex vivo en
cultivo celular, por ejemplo para la producción de células
dendríticas, etc. Estas células obtenidas mediante estimulación
ex vivo pueden usarse para la transferencia de células
autólogas en trasplante o como una vacuna a base de células frente a
enfermedades o estados, como las enfermedades y los estados
mencionados anteriormente, incluyendo cáncer, enfermedad
autoinmunitaria o alergias.
Por tanto, en el caso del uso de los conjugados
o las sales o los solvatos de los mismos tal como se definen en el
presente documento como adyuvantes, la composición farmacéutica
según la presente invención es preferiblemente una vacuna, que
comprende dichos compuestos o conjugados o sales o solvatos de los
mismos como adyuvante(s) farmacéuticamente
aceptable(s) junto con el componente de vacunación activo
(por ejemplo el antígeno) y, opcionalmente, un portador, diluyente,
conservante, adyuvante distinto del adyuvante según la presente
invención, inmunomodulador o excipiente farmacéuticamente
aceptable.
El componente de vacunación activo puede ser
cualquier componente adecuado para producir, potenciar o modular
una respuesta inmunitaria en un individuo. El componente de
vacunación activo es adecuado particularmente para la
administración intranasal, intra-NALT, oral,
intrarrectal, en la conjuntiva, intravaginal, en aerosol o
intrauretral, o la administración en los conductos lácteos de la
mama.
Por ejemplo, el componente de vacunación activo,
el principio activo de la composición farmacéutica, comprende al
menos uno o más antígenos diferentes en forma de péptidos,
proteínas, polisacáridos, glicolípidos o ADN que codifica para los
mismos o fantasmas bacterianos, virosomas o vacunas atenuadas.
Preferentemente, el/los antígeno(s) son
antígeno(s) tumoral(es) o antígeno(s)
derivado(s) de agentes infecciosos. Los agentes infecciosos
incluyen aquellos agentes que normalmente entran en el organismo del
individuo cruzando la membrana mucosa.
La composición farmacéutica que comprende
adyuvante(s) según la presente invención, un componente de
vacunación activo, opcionalmente un portador, diluyente,
conservante, adyuvante distinto del adyuvante según la presente
invención, inmunomodulador o excipiente adicionales, puede contener
adicionalmente componentes, como compuestos como una o más
moléculas antiinflamatorias, moléculas antiangiogénicas, moléculas
citotóxicas, moléculas inmunomoduladoras, preferiblemente
quimiocinas, citocinas, ligando CD40, moléculas coestimuladoras o
anticuerpos o mezclas de los mismos.
Sin embargo, los conjugados según la fórmula
(I), las sales y los solvatos de los mismos tal como se definen en
el presente documento para el uso como adyuvantes también pueden ser
un componente de una composición farmacéutica proporcionada en una
formulación adecuada para la administración parenteral, en
particular, en la administración subcutánea, intravenosa,
intradérmica o intramuscular.
Además, los conjugados según la presente
invención son útiles en la terapia tumoral incluyendo la generación
in vitro o el cebado in vitro de células autólogas
para la transferencia adoptiva de células en transplante y terapia
tumoral. Además, los adyuvantes son útiles para la inducción de
tolerancia cruzada frente a componentes microbianos, como
endotoxinas, para proteger frente al choque septicémico u otras
formas graves de enfermedades inducidas por componentes
microbianos.
Además, los propios conjugados tal como se
definen en el presente documento pueden presentar una actividad
farmacéutica, por ejemplo van a ser útiles en la profilaxis y el
tratamiento de diversas enfermedades y estados, como cáncer,
enfermedades infecciosas, choque septicémico, procesos inflamatorios
y crónicos, enfermedades autoinmunitarias, alergias, etc.
Por tanto, los conjugados según la fórmula (I) o
las sales o los solvatos de los mismos son también útiles para la
preparación de una composición farmacéutica para prevenir o tratar
enfermedades infecciosas, choque septicémico, cáncer, tumores,
enfermedades autoinmunitarias, alergias o procesos inflamatorios
crónicos o agudos.
Los conjugados según la presente invención y las
sales o los solvatos de los mismos, particularmente, los conjugados
pegilados, pueden usarse como principios activos en composiciones
farmacéuticas útiles para la prevención o el tratamiento de
enfermedades infecciosas, choque septicémico, tumores, enfermedades
autoinmunitarias, alergias o procesos inflamatorios crónicos o
agudos. En particular, los conjugados o las sales o los solvatos de
los mismos están contenidos en composiciones farmacéuticas útiles
para prevenir o tratar cáncer y/o tumores, tales como melanoma,
cáncer de próstata, de mama, colorrectal, de estómago, de garganta y
cuello, pancreático, de cuello uterino, de ovario, óseo, leucemia y
de pulmón; infecciones virales, tales como hepatitis B, hepatitis
C, virus de la inmunodeficiencia humana, Helicobacter pylori,
virus del herpes, etc.; infecciones bacterianas, tales como
tuberculosis, lepra y listeriosis, e infecciones parasitarias tales
como malaria.
Por tanto, en un aspecto adicional, la presente
invención se refiere a composiciones farmacéuticas que comprenden
conjugados según la fórmula (I) o sales o solvatos de los mismos, en
particular, conjugados que contienen al menos un resto de conjugado
que comprende una unidad de polialquilenglicol, tal como se define
en el presente documento o sales o solvatos de los mismos y,
opcionalmente, un portador farmacéuticamente aceptable. Tales
composiciones farmacéuticas comprenden una cantidad terapéuticamente
eficaz de los conjugados y, opcionalmente, un portador
farmacéuticamente aceptable. La composición farmacéutica puede
administrarse con un portador fisiológicamente aceptable a un
paciente, tal como se describe en el presente documento. En una
realización específica, la expresión "farmacéuticamente
aceptable" significa aprobado por una agencia reguladora u otra
farmacopea reconocida generalmente para su uso en animales, y más
particularmente en seres humanos. El término "portador" se
refiere se refiere a un diluyente, adyuvante, excipiente o vehículo
con el que se administra el compuesto terapéutico. Tales portadores
farmacéuticos pueden ser líquidos estériles, tales como agua y
aceites, incluyendo los de origen del petróleo, animal, vegetal o
sintético, tales como aceite de cacahuete, aceite de soja, aceite
mineral, aceite de sésamo y similares. El agua es un portador
preferido cuando la composición farmacéutica se administra por vía
intravenosa. También pueden emplearse disoluciones salinas y
disoluciones de glicerol y dextrosa acuosas como portadores
líquidos, particularmente para disoluciones inyectables. Los
excipientes farmacéuticos adecuados incluyen almidón, glucosa,
lactosa, sacarosa, gelatina, malta, arroz, harina, caliza, gel de
sílice, estearato de sodio, monoestearato de glicerol, talco,
cloruro de sodio, leche desnatada deshidratada, glicerol, propileno,
glicol, agua, etanol y similares. La composición, si se desea,
también puede contener cantidades minoritarias de agentes
humectantes o de emulsificación, o agentes de tamponamiento del pH.
Estas composiciones pueden tomar la forma de disoluciones,
suspensiones, emulsiones, comprimidos, píldoras, cápsulas, polvos,
formulaciones de liberación sostenida y similares. La composición
puede formularse como un supositorio, con portadores y aglutinantes
tradicionales tales como triglicéridos. La formulación oral puede
incluir portadores convencionales tales como calidades
farmacéuticas de manitol, lactosa, almidón, estearato de magnesio,
sacarina de sodio, celulosa, magnesio, carbonato, etc. Se describen
ejemplos de portadores farmacéuticos apropiados en "Remington's
Pharmaceutical Sciences" por E.W. Martin (18ª ed., Mack
Publishing Co., Easton, PA (1990)). Tales composiciones contendrán
una cantidad terapéuticamente eficaz de los conjugados anteriormente
mencionados según la fórmula (I), las sales o los solvatos de los
mismos, preferiblemente en forma purificada, junto con una cantidad
adecuada de portador de modo que proporcionen la forma para la
administración apropiada al paciente. La formulación debe adecuarse
al modo de administración.
Normalmente, el portador farmacéutica o
terapéuticamente aceptable es un medio portador que no interfiere
con la eficacia de la actividad biológica de los principios activos
y que no es tóxico para el huésped o el paciente.
\newpage
En realización preferida, la composición se
formula según procedimientos de rutina como una composición
farmacéutica adaptada para la administración intravenosa a seres
humanos. Normalmente, las composiciones para la administración
intravenosa son disoluciones en tampón acuoso isotónico estéril.
Cuando sea necesario, la composición también puede incluir un
agente de solubilización y un anestésico local tal como lidocaína
para calmar el dolor en el sitio de la inyección. Generalmente, los
componentes se suministran o bien por separado o bien mezclados
juntos en una forma farmacéutica unitaria, por ejemplo, como un
polvo liofilizado seco o un concentrado libre de agua en un
recipiente herméticamente sellado tal como una ampolla o un sobre
que indica la cantidad de agente activo. Cuando la composición va a
administrarse mediante infusión, puede dispensarse con una botella
de infusión que contiene solución salina o agua estéril de calidad
farmacéutica. Cuando la composición va a administrarse mediante
inyección, puede proporcionarse una ampolla de solución salina o
agua estéril para inyección de modo que los componentes pueden
mezclarse antes de la administración.
La composición farmacéutica para su uso en
relación con la invención puede formularse como formas de sal o
neutras. Las sales farmacéuticamente aceptables incluyen las
formadas con aniones tales como los derivados de ácidos
clorhídrico, fosfórico, acético, oxálico, tartárico, etc., y las
formadas con cationes tales como los derivados de sodio, potasio,
amonio, calcio, hidróxidos férricos, isopropilamina, trietilamina,
2-etilaminoetanol, histidina, procaína, etc.
"Cantidad terapéutica o farmacéuticamente
eficaz" tal como se aplica a las composiciones de la presente
invención se refiere a la cantidad de composición suficiente para
inducir un resultado biológico deseado. Ese resultado puede ser el
alivio de los signos, síntomas o causas de una enfermedad, o
cualquier otra alteración deseada de un sistema biológico. En la
presente invención, el resultado normalmente implicará un aumento en
las respuestas inmunológicas a la infección o una supresión de las
respuestas a procesos inflamatorios.
Opcionalmente, pueden emplearse ensayos in
vitro para ayudar a identificar intervalos de dosificación
óptimos. La dosis precisa que ha de emplearse en la formulación
también dependerá de la vía de administración y la gravedad de la
enfermedad o el trastorno, y debe decidirse según la opinión del
médico y las circunstancias de cada paciente. Pueden extrapolarse
dosis eficaces de curvas de dosis-respuesta
derivadas de sistemas de prueba de modelo animal o in vitro.
Preferiblemente, la composición farmacéutica se administra
directamente o en combinación con un adyuvante.
El término "administrado" significa la
administración de una dosis terapéuticamente eficaz de la
composición farmacéutica mencionada anteriormente que comprende los
conjugados según la fórmula (I), sales y solvatos de los mismos tal
como se definen en el presente documento a un individuo. Por
"cantidad terapéuticamente eficaz" se quiere decir una dosis
que produce los efectos por los que se administra. La dosis exacta
dependerá del fin del tratamiento, y se determinará por un experto
en la técnica usando técnicas conocidas. Tal como se sabe en la
técnica y se describió anteriormente, pueden ser necesarios ajustes
para la administración sistémica frente a la localizada, la edad,
el peso corporal, la salud general, el sexo, la dieta, el tiempo de
administración, la interacción farmacológica y la gravedad del
estado, y podrán determinarse con experimentación de rutina por los
expertos en la técnica.
Todavía en otra realización, la presente
invención se refiere a métodos de tratamiento de individuos que
padecen enfermedades infecciosas, choque septicémico, tumores,
enfermedades autoinmunitarias, alergias o procesos inflamatorios
crónicos o agudos que comprenden la etapa de administrar a dicho
individuo una cantidad eficaz de una composición farmacéutica que
comprende un conjugado según la fórmula (I) o sales o solvatos del
mismo como principio activo y, opcionalmente, un portador
farmacéuticamente aceptable. En particular, el método es útil para
prevenir o tratar cáncer y/o tumores, tales como, melanoma, cáncer
de próstata, de mama, colorrectal, de estómago, de garganta y
cuello, pancreático, de cuello uterino, de ovario, óseo, leucemia y
de pulmón; infecciones virales, tales como, hepatitis B, hepatitis
C, virus de la inmunodeficiencia humana, Helicobacter
pylori, virus del herpes, etc.; infecciones bacterianas, tales
como tuberculosis, lepra y listeriosis, y infecciones parasitarias
tales como malaria.
Además, la composición farmacéutica puede
contener adicionalmente componentes, por ejemplo compuestos como
una o más moléculas anti-inflamatorias, moléculas
anti-angiogénicas, moléculas citotóxicas, moléculas
inmunomoduladoras, preferiblemente quimiocinas, citocinas, ligando
de CD40, moléculas coestimuladoras o anticuerpos o mezclas del
mismo.
Además, la composición farmacéutica descrita en
el presente documento puede caracterizarse porque los componentes
de la composición farmacéutica están asociados y/o incorporados y/o
recubiertos en una partícula física, preferiblemente
micropartícula, nanopartícula, liposoma, ISCOM, copolímero y/o
partícula biológica, preferiblemente fantasmas bacterianos.
Los métodos son aplicables tanto a tratamiento
de seres humanos como aplicaciones veterinarias. Los compuestos
descritos en el presente documento que tienen la actividad
terapéutica deseada pueden administrarse en un portador
fisiológicamente aceptable a un paciente, tal como se describe en el
presente documento. Dependiendo de la manera de introducción, los
compuestos pueden formularse de una variedad de maneras tal como se
trata a continuación. La concentración de compuesto
terapéuticamente activo en la formulación puede varias desde
aproximadamente 0,1-100% en peso. Los agentes pueden
administrarse solos o en combinación con otros tratamientos.
La administración de la composición farmacéutica
puede realizarse de una variedad de maneras tal como se trató
anteriormente, incluyendo, pero sin limitarse a, por vía oral, por
vía subcutánea, por vía intravenosa, por vía
intra-arterial, por vía intranodal, por vía
intramedular, por vía intratecal, por vía intraventricular, por vía
intranasal, por vía conjuntival, por vía intrabronquial, por vía
transdérmica, por vía intrarrectal, por vía intraperitoneal, por
vía intramuscular, por vía intrapulmonar, por vía vaginal, por vía
rectal o por vía intraocular. En algunos casos, por ejemplo, en el
tratamiento de heridas e inflamación, el agente terapéuticamente
eficaz puede aplicarse directamente como una disolución secada por
pulverización.
El médico encargado y los factores clínicos
determinarán el régimen de dosificación. Una dosis típica puede
estar, por ejemplo, en el intervalo de 0,001 a 1000 \mug por kg de
peso corporal; sin embargo, están previstas dosis por debajo o por
encima de este intervalo a modo de ejemplo, considerando
especialmente los factores mencionados anteriormente.
Todavía en otro aspecto, la presente invención
se refiere al uso del/de los compuesto(s) o sales o solvatos
del/de los mismos tal como se define en el presente documento en un
preparación farmacéutica para controlar la fertilidad en
poblaciones humanas o animales.
Finalmente, la presente invención se refiere a
kits que comprenden el conjugado de hexosilceramida según la
presente invención o sales o solvatos del mismo. En particular, el
kit es útil para la preparación de composiciones farmacéuticas.
Opcionalmente, el kit contiene instrucciones para preparar la
composición farmacéutica.
En una realización preferida del mismo, el kit
contiene el compuesto o conjugado de hexosilceramida según la
presente invención o sales o solvatos del mismo como adyuvante y un
antígeno que comprende una estructura antigénica y, opcionalmente,
un portador, diluente, conservante, adyuvantes distintos de los
conjugados según la presente invención, inmunomoduladores o
excipiente farmacéuticamente aceptables e instrucciones para
preparar una vacuna.
Estas y otras realizaciones se dan a conocer y
están abarcadas en la descripción y ejemplos de la presente
invención. Puede recuperarse bibliografía adicional referente a uno
cualquiera de los métodos, usos y compuestos que van a emplearse
según la presente invención puede recuperarse de bibliotecas
públicas, usando por ejemplo dispositivos electrónicos. Por
ejemplo, puede utilizarse la base de datos pública "Medline"
que está disponible en Internet, por ejemplo en
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/PubMed/medline.html. El experto en la
técnica conoce bases de datos y direcciones adicionales, tales como
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/, http: //www.infobiogen.fr/,
http://www.tigr.org/, y también pueden obtenerse usando, por
ejemplo, http://www.google.de. Se facilita una visión general de la
información de patentes en biotecnología y un informe de las fuentes
relevantes de información de patentes útiles para la búsqueda
retrospectiva y para el conocimiento actual en Berks, TIBTECH 12
(1994), 352-364.
Figura 1: la figura 1 muestra un esquema para la
síntesis de alfaGalCerMPEG según la presente invención.
Figura 2: la figura 2 muestra la determinación
citométrica de diversas moléculas incluyendo moléculas
coestimuladoras en la superficie de células dendríticas murinas
tras estimulación con alfa-GalCer, alfaGalCerMPEG y
PEG solos.
Figura 3: la figura 3 proporciona una
comparación de expresión de anticuerpo de IgG específico de antígeno
\beta-Gal en suero de animales inmunizados. En
(A) se muestra los resultados de la administración intranasal
(i.n.). (B) proporciona los niveles séricos de expresión IgG
específico de antígeno tras la administración parenteral. Se
muestra una comparación de ratones inmunizados con
\beta-gal solo, \beta-gal +
alfaGalCer (10 \mug/dosis) y \beta-gal +
alfaGalCerMPEG (1 \mug/ml de resto activo/dosis).
Figura 4: la figura 4 muestra una comparación de
la expresión de IgA secretora específica de
\beta-Gal en la nariz, el pulmón y la vagina de
animales inmunizados.
Figura 5: la figura 5A y B ilustra la
estimulación de células de bazo con diversas cantidades de
alfaGalCerMPEG y alfa-GalCer y en diferentes puntos
de tiempo tras la administración i.n. (figura 5B).
Figura 6: la figura 6 demuestra que alfa
GalCerMPEG es un adyuvante eficaz para la estimulación de células
de bazo en vacunación i.n. y s.c..
Figura 7: la figura 7 muestra la expresión de
los isotipos de IgG que son específicos para el antígeno
\beta-gal en ratones tras la administración i.n.
y s.c. de \beta-gal,
\beta-gal/alfa-GalCer, y
\beta-gal/alfa-GalCerMPEG,
respectivamente.
Figura 8: la figura 8 ilustra la expresión y
secreción de citocinas Th1 y Th2 de células de bazo tras
reestimulación con el antígeno \beta-gal tras
vacunación i.n. previa con \beta-gal solo,
\beta-gal/alfa-GalCer y
\beta-gal/alfa-GalCerMPEG,
respectivamente.
Figura 9: la figura 9 ilustra la expresión y
secreción de citocinas Th1 y Th2 de células de bazo tras
reestimulación con el antígeno \beta-gal tras
vacunación s.c. previa con \beta-gal solo,
\beta-gal/alfa-GalCer y
\beta-gal/alfa-GalCerMPEG,
respectivamente.
Figura 10: la figura 10A y B demuestra la
capacidad de las células de bazo para secretar IFN\gamma y
IL-4, respectivamente, tras vacunación i.n. y s.c.
con \beta-gal solo,
\beta-gal/alfa-GalCer y
\beta-gal/alfa-GalCerMPEG,
respectivamente.
Figura 11: la figura 11 ilustra la estimulación
in vitro de la actividad lítica mediante alfaGalCerMPEG. Se
recuperaron células de bazo de ratones a los que se les inyectó
alfaGalCer (10 \mug), alfaGalCerMPEG (10 \mug) o CpG (100 Mg)
tras 48 h y se usaron como efectoras en un ensayo de liberación de
51Cr con dianas de células YAC-1. Los resultados se
expresan como el tanto por ciento de lisis y son el promedio por
triplicado.
Figura 12: la figura 12 demuestra el efecto de
la coadministración de alfaGalCerMPEG sobre respuestas de CTL
medidas mediante el ensayo VITAL (CTL in vivo).
La presente invención se describe adicionalmente
con referencia a las siguientes figuras y ejemplos no
limitativos.
- alfa-GalCer:
- alfa-galactosilceramida
- PEG:
- Polietilenglicol
- DCM:
- Diclorometano
- BPPcysPEG:
- 2,3-Bis(palmitoiloxi)-propil-L-cisteinilcarboxi-polietilenglicol
- DIC:
- Diisopropilcarbodiimida
- HexCer:
- Hexosilceramida
- MPEG:
- Metoxipolietilenglicol
- HOBt:
- Hidroxibenzotriazol
La síntesis del
alfa-GalCer-MPEG según la presente
invención se muestra en la figura 1. En resumen, se disolvieron 150
mg (75 \muMoles) de R-PEG-COOH (R
= metil abreviándose con M) en 2 ml de DCM anhidro y se añadieron
10,1 mg (75 \muMoles) de hidroxibenzotriazol (HOBt) y 12 \mul
(77 \muMoles) de diisopropilcarbodiimida (DIC). Tras 30 min. se
añadieron 56,4 mg (50 \muMoles) del compuesto 1 mostrado en la
figura 1, por ejemplo sintetizado mediante el método descrito en
Zhou, X-T., et al. organic letters, 2002,
4(8), 1267-1270, en 5 ml de diclorometano
anhidro (DCM) y se hicieron reaccionar mediante agitación en
ausencia de humedad durante aproximadamente 15 h a temperatura
ambiente. Tras la concentración hasta sequedad, se redisolvió el
residuo en pequeñas cantidades de cloroformo y se purificó por medio
de cromatografía en gel de sílice (20 x 1,5 cm) usando cloroformo y
cloroformo/metanol (95:5) como eluyentes. Tras la concentración de
la fracción que contenía el compuesto 2, se obtuvieron
aproximadamente 150 mg de compuesto 2 tal como se muestra en la
figura 1.
Se disolvieron aproximadamente 150 mg de
compuesto 2 obtenido anteriormente en 12 ml de una mezcla de acetato
de etilo/metanol (1:1) y se hidrogenó con hidrógeno usando 50 mg
paladio/carbón (10%) durante aproximadamente 9 h a 40ºC. Tras la
separación del catalizador y la filtración usando sílice y el lavado
con una mezcla de los disolventes mencionados anteriormente, se
concentró la fracción hasta sequedad y se obtuvieron aproximadamente
120 mg de compuesto 3 de la figura 1. Tras la purificación mediante
cromatografía en gel de sílice usando una mezcla de cloroformo y
metanol en razones de 95:5/90:10/85:15 y 80:20, respectivamente,
como eluyente, la evaporación del disolvente y la liofilización a
partir de agua se obtuvieron aproximadamente 100 mg de compuesto 3.
Se sometió a prueba la estructura del nuevo
alfa-GalCerMPEG soluble en agua (compuesto 3)
mediante ^{1}H y ^{13}C-RMN y espectro de
MALDI-EM (figura 1 D).
Protocolo experimental: se obtuvieron cultivos
de células dendríticas derivadas de médula ósea primarias de
ratones BALB/c tras la maduración in vitro de precursores en
presencia de GM-CSF recombinante (5 x 10^{4}
U/ml), según protocolos establecidos. Se estimularon células
dendríticas maduras con 10 ng/ml de lipopolisacárido (LPS) de E.
coli, 10 ng/ml de alfa-GalCer o alfaGalCerMPEG,
tras 12 h y 24 h, respectivamente, se analizó la estimulación de
células mediante citometría de flujo para evaluar la expresión de
marcadores de superficie que son relevantes para su capacidad de
presentación de antígenos.
Con el fin de identificar compuestos que pueden
tener potencial como adyuvantes para aplicaciones in vivo en
el campo de las vacunas, se estableció una primera exploración in
vitro basándose en el uso de cultivos primarios de células
dendríticas derivadas de médula ósea. Se seleccionaron células
dendríticas puesto que representan las células presentadoras de
antígenos más eficaces y desempeñan un papel clave en respuestas
inmunitarias primarias. De hecho, representan el único tipo de
célula que puede activar T células en reposo iniciando respuestas
inmunitarias primarias in vivo. Por tanto, se trataron
cultivos de células dendríticas con los compuestos del título
sometidos a prueba o LPS, que se usó como control positivo. En
intervalos de tiempo diferentes, se tomaron muestras, se tiñeron
con anticuerpos marcados con fluorescencia específicos para
marcadores celulares críticos para las capacidades de presentación
de antígenos de células dendríticas, y se analizaron mediante
citometría de flujo.
Los resultados obtenidos (figura 2) demostraron
que al contrario que el control, el grupo que recibió
alfa-GalCer, la expresión de CD40 y la molécula
coestimuladora CD86 y CD80 estaba regulada por incremento en las
células dendríticas tratadas con alfaGalCerMPEG. Además, se aumenta
la expresión de la molécula CD1d tras la estimulación con
alfaGal-CerMPEG.
Las moléculas coestimuladoras suministran
señales que, además de la presentación de los epítopos procesados
en el contexto de las moléculas del CMH de clase II, son esenciales
para la activación eficaz de T células. Se ha notificado
anteriormente que la capacidad de adyuvante de adyuvantes mucosales
bien establecidos, tales como toxina del cólera, implica la
regulación por incremento selectiva de la expresión de moléculas
coestimuladoras. Por tanto, estos resultados in vitro
sugieren fuertemente el alto potencial de alfaGalCerMPEG como
adyuvantes mucosales.
Protocolo experimental: se adquirieron ratones
BALB/c (H-2d) hembra de seis-ocho
semanas de edad de Harlan Winkelmann GmbH (Borchen, Alemania) y se
trataron según las directrices locales y de la Comunidad Europea.
Se inmunizaron grupos de 5 ratones cada uno en el día 1, 14 y 28 con
30 \mug de \beta-gal (Boehringer, Mannheim,
Alemania), solo o con 10 \mug de alfaGalCerMPEG. Para la
inmunización intranasal (i.n.), se aplicaron 10 \mul a cada
narina, mientras que para la inyección s.c. se resuspendió
\beta-gal con o sin alfaGalCerMPEG en un volumen
de 20 \mul de PBS por animal. Se recogieron muestras séricas en el
día 38 tras la inmunización y se almacenaron a -20ºC antes de la
determinación de anticuerpos específicos frente a
\beta-gal. Se recubrieron placas de ensayo de 96
pocillos de Nunc-Immuno MaxiSorp (Nunc, Roskilde,
Dinamarca) con 100 \mul de \beta-gal
(Boehringer, Mannheim, Alemania) a 5 \mug/ml en tampón carbonato
0,05 M (pH 9,6) por pocillo. Se añadieron diluciones de dos veces
en serie de sueros o lavados en PBS con BSA al 1% y Tween 20 al
0,05% (100 \mul/pocillo), y se incubaron las placas durante 16 h
a 37ºC. Tras el lavado, se añadió anticuerpo de cabra
anti-IgG de ratón específico de la cadena \gamma
biotinilado (Sigma Chemie, Deisenhofen, Alemania), y se incubaron
las placas durante 1 h adicional a 37ºC. Tras cuatro lavados, se
añadieron 100 \mul de estreptavidina conjugada con peroxidasa
(Pharmingen) a las células y se incubaron las placas a 37ºC durante
30 min. Tras cuatro lavados, se desarrollaron las reacciones con
ABTS en tampón citrato-fosfato 0,1 M (pH 4,35) que
contenía H_{2}O_{2} al 0,01%. Se expresaron los títulos de
punto final como el log2 recíproco de la última dilución, que
proporcionó una densidad óptica a 405 nm de 0,1 unidades por encima
de los valores de los controles negativos tras de 15 a 30 min. de
incubación.
En vista de los resultados in vitro
anteriores, se han realizado estudios in vivo adicionales. En
detalle, se determinaron las respuestas inmunitarias usando
alfaGalCerMPEG como adyuvante aplicado mediante las dos vías más
eficaces, concretamente s.c. e i.n. Por tanto, se evaluó la
capacidad de alfaGalCerMPEG para estimular respuestas inmunitarias
humorales eficaces, determinando los títulos séricos de anticuerpos
específicos frente a \beta-gal en ratones
vacunados.
Tal como se muestra en la figura 3A, la
administración i.n. de \beta-gal solo (30
\mug/dosis) dio como resultado la inducción de títulos de
anticuerpo muy bajos, incluso tras el segundo refuerzo (día 28). En
cambio, en presencia de alfaGalCerMPEG, la administración i.n. de
\beta-gal indujo títulos muy altos de IgG
específica en todos los ratones ya tras una dosis, y al final del
protocolo de inmunización, los títulos eran 32 veces superiores que
en los animales vacunados con \beta-Gal solo. La
vacunación por la vía parenteral (figura 3B) dio como resultado
títulos de IgG similares a la vacunación usando
\beta-Gal solo. La cinética y la eficacia global
del las respuestas de anticuerpo obtenidas usando de 5 a 10 \mug
de alfaGalCerMPEG por dosis eran similares a las observadas
administrando \beta-gal junto con BPPcysPEG (0,5
\mug de agente activo en ebullición por animal), que se sabe que
funciona bien como adyuvante mucosal. La reducción de la
dosificación hasta 1 \mug por animal dio como resultado en una
disminución de la respuesta inmunitaria de una manera dependiente
de la dosis.
Además, tal como puede observarse a partir de la
figura 3A y la figura 3B, la inducción de una respuesta inmunitaria
de IgG fuerte es independiente de la vía de administración. También
se observó una capacidad de adyuvante significativa cuando se
administró alfaGalCerMPEG mediante la vía s.c. (figura 3B).
Protocolo experimental: en el día 38, se
sacrificaron los ratones y se realizó el muestreo final. Se
obtuvieron lavados nasales, vaginales y pulmonares lavando con
chorro de agua los órganos con 1 ml de PBS complementado con EDTA
50 mM, BSA al 0,1% y PMSF 10 mM. Entonces se centrifugaron los
lavados para eliminar residuos (10 min. a 3000 x g), y se
almacenaron los fluidos sobrenadantes a -20ºC. Para determinar la
concentración de IgA total presente en los lavados pulmonares y
vaginales, se incubaron diluciones en serie de las muestras
correspondientes en placas de microtitulación que se recubrieron
previamente con anticuerpo de cabra anti-IgA de
ratón (Sigma Chemie), como anticuerpos de captura (100
\mul/pocillo). Se usaron diluciones en serie de IgA de ratón
purificada (Sigma Chemie) para generar una curva patrón.
Para investigar la capacidad de alfaGalCerMPEG
para estimular respuestas de la mucosa frente a antígenos
coadministrados mediante la vía i.n., se analizó la producción de
IgA específica de \beta-gal en pulmón (figura 4) a
partir de animales inmunizados, inmunizados según el protocolo
descrito en el ejemplo 3. Mientras que la inmunización i.n. con
\beta-gal solo dio como resultado una producción
débil de niveles detectable de IgA específica de
\beta-gal en, por ejemplo, lavados de pulmón, se
detectó un aumento significativo en los niveles de IgA específica
de antígeno en animales inmunizados con \beta-gal
y alfaGalCerMPEG (figura 4).
Los animales vacunados mediante la vía
parenteral revelaron que la coadministración de alfaGalCerMPEG da
como resultado la producción de anticuerpos de IgA específicos de
\beta-gal en el pulmón. Los niveles de IgA
específica de antígeno aumentaron significativamente en comparación
con el control (\beta-Gal solo) y el control
positivo (\beta-Gal coadministrado con BPPcysPEG),
véase la figura 4B).
Protocolo experimental: Se extirparon bazos de
ratones BALB/c (H-2d, Harlan Winkelmann) o CD1d-/-
(Jackson Laboratories) hembra de 6 semanas de edad y se agruparon
para el análisis de respuestas inmunitarias celulares. Se hicieron
crecer células en RPMI 1640 complementado con suero de ternero fetal
al 10%, 100 U/ml de penicilina, 50 \mug/ml de estreptomicina,
2-mercaptoetanol 5 x 10^{-5} M y
L-glutamina 1 mM (GIBCO BRL, Karlsruhe, Alemania) y
se mantuvieron a 37ºC en una atmósfera humidificada con el 5% de
CO_{2}. Se ajustaron las suspensiones celulares de bazo a 5 x
10^{6} células/ml en medio completo, se sembraron las células con
100 \mul por pocillo en una placa de microtitulación de 96
pocillos de fondo plano (Nunc) y se incubaron las placas durante 4
días. Se incubaron células de bazo no estimuladas en presencia de
diferentes concentraciones de los nuevos adyuvantes para analizar
la capacidad de estimulación in vitro de alfaGalCerMPEG. Se
investigaron respuestas inmunitarias mediadas por células T en el
día 38 midiendo la proliferación de células recuperadas de los bazos
tras reestimulación in vitro con
\beta-Gal. Se obtuvieron dichas células de bazo de
ratones vacunados (dichos ratones se inmunizaron tal como se
describió en el ejemplo 3) y se incubaron en presencia de diferentes
concentraciones del antígeno \beta-Gal soluble.
Se sometió a prueba cada concentración por triplicado. Durante las
18 h finales del cultivo, se añadió 1 \muCi de [3H]timidina
(Amersham International, Freiburg, Alemania) a cada pocillo.
Entonces se recogieron las células en filtros de papel (Filtermat A;
Wallac, Freiburg, Alemania) usando un colector de células (Inotech,
Wohlen, Suiza), y se determinó la cantidad de [3H]timidina
incorporada en el ADN de células en proliferación mediante un
contador de centelleo \beta (Wallac 1450,
Micro-Trilux). Los resultados se expresan como la
media aritmética de la captación de [3H]timidina en cpm.
Las células de bazo no estimuladas incubadas con
diferentes concentraciones de alfaGalCerMPEG mostraron una
estimulación aumentada en respuesta a una concentración potenciada
del nuevo compuesto (figura 5) en comparación con el control.
Además, las células de bazo incubadas con diferentes concentraciones
de alfaGalCer no mostraron aumento dependiente de la dosis en la
estimulación de células de bazo.
Treinta y ocho días tras la vacunación i.n. o
s.c., respectivamente, se purificaron células de bazo, se
reestimularon in vitro en presencia de diversas cantidades
de \beta-galactosidasa y se estimó su capacidad
proliferativa midiendo la incorporación de [3H]timidina en
su ADN usando un contador de centelleo \beta. Las células de bazo
de animales inmunizados mediante inyección s.c. de
\beta-gal solo, que se eligieron como control,
mostraron una respuesta proliferativa significativa en comparación
con el grupo no inmunizado (figura 6). Se observó un aumento
adicional en la proliferación en células de bazo de animales a los
que se les coadministró alfaGalCerMPEG y antígeno. Mientras que la
administración i.n. de \beta-gal solo falló en la
inducción de la proliferación celular detectable, la
coadministración de alfaGalCerMPEG desencadenó la inducción de una
respuesta proliferativa eficaz a cantidades aún bajas de antígeno
(véase la figura 6).
De importancia, se observó la respuesta
proliferativa de células T con células de bazo de ratones
inmunizados con alfaGal-CerMPEG y
\beta-gal administrados mediante la vía i.n. y
s.c., respectivamente (véase la figura 6A y B).
En todos los casos se observó un efecto
dependiente de la dosis cuando se aumentó la concentración de
\beta-gal en el experimento de reestimulación.
Por tanto, el uso del nuevo adyuvante alfaGalCerMPEG dio como
resultado un aumento estadísticamente significativo de la
proliferación de células T tras la administración i.n. y s.c. Estos
resultados demuestran que el alfaGalCerMPEG puede aumentar la
respuesta inmunitaria celular.
Protocolo experimental:
ELISA de isotipo: se recubrieron placas de
ensayo Nunc-Immuno MaxiSorp de 96 pocillos (Nunc,
Roskilde, Dinamarca) con 100 \mul de \beta-gal
(Boehringer, Mannheim, Alemania) a 5 \mug/ml en tampón carbonato
0,05 M (pH 9,6) por pocillo. Se añadieron diluciones de dos veces
en serie de sueros o lavados en PBS con BSA al 1% y Tween 20 al
0,05% (100 \mul/pocillo), y se incubaron la placas durante 2 h a
37ºC. Tras el lavado, se añadieron anticuerpos de rata
anti-IgG1 o IgG2a de ratón conjugados con biotina
(Pharmingen, Hamburg, Alemania) para determinar las subclases de
IgG. Se incubaron las placas durante una 1 h adicional a 37ºC. Tras
cuatro lavados, se añadieron 100 \mul de estreptavidina conjugada
con peroxidasa (Pharmingen) a las células y se incubaron las placas
a 37ºC durante 30 min. Tras cuatro lavados, se desarrollaron las
reacciones con ABTS en tampón citrato-fosfato 0,1 M
(pH 4,35) que contenía H_{2}O_{2} al 0,01%. Para determinar la
concentración de subclases de IgG en suero, se obtuvieron curvas
patrón recubriendo los pocillos con un anticuerpo de cabra
anti-IgG de ratón específico de isotipo, e incubando
entonces con anticuerpos IgG1 o IgG2 de ratón purificados (Dianova,
Hamburg, Alemania).
Se muestra el patrón de las diferentes subclases
de los isotipos de IgG específicos de antígeno
\beta-gal presentes en los sueros de ratones
vacunados en la figura 7. La figura 7A muestra los resultados para
la administración intranasal de \beta-Gal solo,
b-Gal y alfa-GalCer y
alfaGalCerMPEG. El protocolo de vacunación era idéntico al
protocolo descrito en el ejemplo 3. Tal como puede determinarse a
partir de la figura 7A, la cantidad de anticuerpos específicos de
antígeno del subtipo IgG1 (24 veces) aumentó fuertemente tras la
administración intranasal del antígeno usando alfaGalCerMPEG como
adyuvante mucosal. Además, también en el caso de la administración
sistémica, en este caso administración subcutánea, la expresión del
isotipo IgG1 aumentó fuertemente (4 veces), véase la figura 7B. Los
datos representan el título promedio de un grupo de 5 animales.
Por tanto, el uso de alfaGalCerMPEG permite
producir una fuerte respuesta de anticuerpos específica de antígeno.
Puede observarse el desencadenamiento no solamente tras la
administración intranasal sino también tras la administración
parenteral.
Para caracterizar el tipo de respuesta Th
estimulada tras la inmunización, se midió el contenido en
IFN-\gamma, IL-2,
IL-6, IL-10, MCP-1 y
TNF\alpha en sobrenadantes de células de bazo reestimuladas in
vitro (figuras 8 y 9) mediante la técnica Cytometric Bead
Array. Se recogieron sobrenadantes de cultivo de células en
proliferación en los días 2 y 4, y se almacenaron a -70ºC. Se
analizaron determinaciones de IFN-\gamma,
TNF\alpha, IL-2, IL-6,
IL-10 y MCP-1 mediante análisis de
Cytometric Bead Array usando el kit comercial de BectonDickinson,
según las instrucciones del fabricante. Se generó una curva patrón
para cada citocina usando las citocinas murinas recombinantes
correspondientes (Pharmingen). Se incubaron sondas a temperatura
ambiente durante 2 h adicionales. Se analizaron las sondas
posteriormente mediante citometría de flujo tal como se describió
en el protocolo de BD.
Tal como se muestra en la figura 8, se
secretaron de hecho IFNgamma y IL-2 por células de
bazo de ratones vacunados. De manera interesante, la concentración
de las citocinas Th1 secretadas por células recuperadas de ratones
vacunados por vía intranasal con alfaGaCerMPEG era
significativamente inferior a la observada en animales que
recibieron alfaGalCer. Esto sugiere la inducción de una respuesta de
tipo Th2 más fuertemente polarizada cuando se usó el derivado
pegilado de alfaGalCer. La secreción de las citocinas
proinflamatorias TNFalfa y IL-6 era similar usando
ambos compuestos. Sin embargo, se secretaron niveles
significativamente superiores de la citocina
anti-inflamatoria IL-10 por células
derivadas de ratones que recibieron alfaGalCerMPEG. Esto puede
sugerir que el derivado pegilado es farmacológicamente más aceptable
en comparación con el compuesto alfaGalCer no derivatizado.
La administración parenteral (s.c.) de
\beta-Gal con alfaGalCerMPEG o alfaGalCer
demuestra que la utilización de estos adyuvantes indujo una
secreción potenciada significativa de TNFalfa, IL-10
e IFNgamma. Al contrario de los animales vacunados con el derivado
de alfaGalCer original, los ratones vacunados con
beta-Gal coadministrada con alfaGalCerMPEG
mostraron niveles significativamente superiores de
IL-10 e IFNgamma y una disminución en la secreción
de MCP-1, tal como se muestra en la figura 9. Esto
sugiere que el derivado pegilado es farmacológicamente más activo
en comparación con el compuesto de alfaGalCer no derivatizado.
Protocolo experimental: se extirparon bazos de
ratones vacunados y se agruparon para el análisis de respuestas
inmunitarias celulares. El protocolo para vacunación era idéntico al
protocolo descrito en el ejemplo 3. Se hicieron crecer las células
en RPMI 1640 complementado con suero de ternero fetal al 10%, 100
U/ml de penicilina, 50 \mug/ml de estreptomicina,
2-mercaptoetanol 5 x 10^{-5} M y
L-glutamina 1 mM (GIBCO BRL, Karlsruhe, Alemania) y
se mantuvieron a 37ºC en una atmósfera humidificada con el 5% de
CO_{2}. Se ajustaron las suspensiones celulares de ganglios
linfáticos y bazos a 5 x 10^{6} células/ml en medio completo, se
sembraron las células con 100 \mul por pocillo en una placa de
microtitulación de 96 pocillos de fondo plano (Nunc) y se incubaron
las placas durante 24 h (IFNgamma) o 48 h (IL-2 y
IL-4) en ausencia o presencia de un péptido de
beta-Gal (TPHARIGL) que abarcaba un epítopo
peptídico restringido por el CMH de clase I (para IFNgamma) o la
proteína beta-Gal (para IL-2 y
IL-4), a una concentración de 10 \muM. Entonces,
se separaron las células y se procesaron las placas según las
instrucciones del fabricante. Se contaron los puntos coloreados con
un lector de C.T.L. Elispot y se analizaron usando el software de
análisis de imágenes ImmunoSpot v3.2.
Por tanto, para caracterizar adicionalmente las
respuestas de células T cooperadoras, se determinó el número de
células que secretaban IFNgamma, IL-2 y
IL-4 específicas de beta-Gal
presentes en bazos de ratones vacunados. Según los resultados
anteriores para isotipos de IgG, se detectaron altos números de
células que secretaban IL-4 en ratones que
recibieron alfaGalCerMPEG o alfaGalCer (figura 10). En cambio, el
número de células que secretaban IFNgamma e IL-2
aumentó hasta un grado significativo menor en respuesta a la
estimulación con péptido restringido por el CMH de clase I y la
proteína \beta-Gal, respectivamente.
Protocolo experimental: los ratones recibieron
10 \mug de alfaGalCer o alfaGalCerMPEG por vía s.c., mientras que
se inyectaron a los animales control por vía intraperitoneal 100
\mug de CpG. Tras 2 días, se sacrificaron y se usaron sus
esplenocitos como células efectoras en un ensayo de liberación de
51Cr convencional usando células YAC-1 como dianas
para las células NK.
Se lavaron las células efectoras y se ajustó su
concentración hasta 1x10^{6}/ml. En paralelo, se incubaron
células diana en medio RPMKI sin FCS que contenía 100 \muCi de
51Cr durante 2 h. Entonces, se lavaron exhaustivamente las células
diana con medio RPMI que contenía FCS y se incubaron conjuntamente
por triplicado con células efectoras a diferentes razones de célula
efectora:diana (E:D). Tras 4 h, Se centrifugaron las células y se
midió la radioactividad presente en los sobrenadantes mediante
recuento de centelleo. Se determinó la lisis máxima tras la lisis
con Tween X-100 al 5%, mientras que se midió la
lisis espontánea en sobrenadantes de células diana no tratadas. Se
expresan los resultados como el porcentaje de células lisadas, según
la fórmula: (muestra - lisis espontánea)/(lisis máxima - lisis
espontánea) x 100.
Para analizar la influencia in vivo de
\alphaGalCerMPEG sobre la actividad citotóxica de células NK, se
inyectaron a los ratones diferentes adyuvantes, es decir
\alphaGalCer, \alphaGalCerMPEG y CpG. Tras 2 días, se usaron
esplenocitos como células efectoras en un ensayo de liberación de
51Cr con células YAC-1, una diana bien conocida
para células NK. Tras estimulación in vivo usando la
\alphaGalCer hidrófoba (10 \mug) o el adyuvante CpG, se observó
un potencial citotóxico similar de esplenocitos frente a la línea
de células tumorales YAC-1 (el
37-36% y el 34-27% a razones de
célula efectora:diana de 100:1 y 50:1 respectivamente). Por otra
parte, cuando se usó \alphaGalCerMPEG (es decir, 10 \mug que
corresponden a 1 \mug de \alphaGalCer), las células de bazo
mediaron las lisis del 56 y el 46% de células YAC-1
a una razón de célula efectora con respecto a diana de 100:1 y
50:1, respectivamente (figura 11). También se evaluó la
citotoxicidad en poblaciones de células de bazo singénicas marcadas
con fluorescencia administradas mediante inyección i.v. en grupos de
ratones.
Protocolo experimental: se adquirieron ratones
C57Bl6 hembra de seis a ocho semanas de edad de Harlan Winkelmann
GmbH (Borchen, Alemania) y se trataron según las directrices locales
y de la Comunidad Europea. Se inmunizaron grupos de 5 ratones cada
uno en el día 1, 14 y 28 con 50 \mug de ovalbúmina (Sigma,
Alemania) solo o con 10 \mug de alfaGalCerMPEG o alfaGalCer. Para
inmunización intranasal, se aplicaron 10 ml a cada narina, mientras
que para la inyección s.c. se resuspendió ovoalbúmina (ova) con o
sin alfaGalCerMPEG o alfaGalCer en un volumen de 50 \mul de PBS
por animal. La determinación de la citotoxicidad mediada por
linfocitos in vivo siguió un protocolo descrito por Hermans
et al. (Herman, I.F., et al., 2004, The vital assay,
J Immunol Methods, 285, 25-40). Se drenaron los
glóbulos rojos de una suspensión de esplenocitos de ratones sin
tratar y se dividieron en dos porciones iguales. Se marcó las
preparación de células diana con una alta concentración (1 \muM)
de CFSE (Molecular Probes) y se pulsó durante 1 h a 37ºC con péptido
OVA dominante (aa 257-264) a una concentración de
15 \mug/ml. Se marcó la población control con una baja
concentración (0,1 \muM) de CFSE y se incubó adicionalmente
durante 1 h a 37ºC sin péptido. Se mezclaron números iguales de
cada población de células. Se transfirió de manera adoptiva una
cantidad total de 2 x 10^{7} células mediante inyección
intravenosa en los ratones inmunizados. Se analizaron células de los
bazos mediante citometría de flujo tras 16 h y 40 h, con el aparato
FACScalibur usando el software BD cell Quest Pro. Se distinguió la
lisis específica mediante la pérdida de la población de CFSE^{hi}
pulsada con péptido en comparación con la población CFSElo control.
Se usó la siguiente fórmula para calcular el porcentaje de lisis
específica: 100 - ({(% de CFSEhi en ratones inmunizados/% de CFSElo
en ratones inmunizados)/(% de CFSEhi en ratones control/% de CFSElo
en ratones control)] x 100). Se calculó la actividad citotóxica con
cualquier variabilidad en la proporción de células en las
diferentes poblaciones diana evaluadas en un grupo control no
inmunizado para ensayos de CTL. Tal como se muestra en la figura
12, con alfaGalCer hidrófoba (10 \mug), se observó un aumento de
6,4 veces (30%) del potencial citotóxico de esplenocitos con
respecto a esplenocitos recuperados de animales que recibieron el
antígeno OVA solo (5%). Sin embargo, cuando se usó alfaGalCerMPEG
(es decir, 10 \mug que corresponden a 1 \mug de
alfaGal-Cer) las células de bazo mediaron la lisis
de casi el 60% de las células diana recubiertas con péptido y
mostraron un aumento de 12 veces del potencial citotóxico con
respecto a esplenocitos recuperados de animales que recibieron el
antígeno solo (5%).
Claims (25)
1. Conjugado de
alfa-hexosilceramida (alfa-HexCer)
según la fórmula (I)
en la
que
A es CH_{2} o CO;
B representa R_{4}, OR_{4}, NHR_{4},
PO_{3}R_{4} o SO_{3}R_{4};
en los que R_{4} es un resto de conjugado que
es un polímero tolerado fisiológicamente y soluble en agua;
R_{1} y R_{2} pueden ser iguales o
diferentes y son independientemente grupos alquenilo y/o alquilo
C_{10}-C_{30} lineales o ramificados;
D representa CH_{2} o CH(OH);
R_{3} representa hidrógeno u OH; R_{5} y
R_{6} son sustituyentes en los que o bien R_{5} representa
hidrógeno y R_{6} representa hidrógeno, OH,
O-alquilo C_{1}-C_{6}, NH_{2},
NHCO-alquilo C_{1}-C_{6} o bien
R_{6} es hidrógeno y R_{5} representa hidrógeno, OH,
O-alquilo C_{1}-C_{6}, NH_{2},
NHCO-alquilo C_{1}-C_{6};
R_{7} y R_{8} son sustituyentes en los que o
bien R_{7} representa hidrógeno y R_{8} representa hidrógeno,
OH, O-alquilo C_{1}-C_{6},
NH_{2}, NHCO-alquilo
C_{1}-C_{6} o bien R_{8} es hidrógeno y
R_{7} representa hidrógeno, OH, O-alquilo
C_{1}-C_{6}, NH_{2},
NHCO-alquilo C_{1}-C_{6};
R_{9} y R_{10} son sustituyentes en los que
o bien R_{9} representa hidrógeno y R_{10} representa
hidrógeno, OH, O-alquilo
C_{1}-C_{6}, NH_{2},
NHCO-alquilo C_{1}-C_{6} o bien
R_{10} es hidrógeno y R_{9} representa hidrógeno, OH,
O-alquilo C_{1}-C_{6}, NH_{2},
NHCO-alquilo C_{1}-C_{6}; o
sales o solvatos del mismo.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Conjugado de alfa-HexCer
según la reivindicación 1, caracterizado porque R_{4}
contiene al menos una unidad de polialquilenglicol de fórmula:
X_{1}-[(CHR_{11})x-O]n-(Z)y-
en la
que
X_{1} es hidrógeno o un hidrocarburo que puede
contener heteroátomo(s);
Z es un grupo de enlace divalente, tal como C=O
o CHR_{11};
R_{11} es independientemente uno cualquiera de
hidrógeno, OH, OR_{12} o CO-R_{13};
R_{12} es independientemente uno cualquiera de
hidrógeno o grupo alquilo C_{1}-C_{6};
R_{13} es independientemente uno cualquiera de
hidrógeno, OH, OR_{12} o NR_{14}R_{15};
R_{14} y R_{15} son independientemente uno
cualquiera de hidrógeno o hidrocarburo que puede contener
heteroátomo(s) y que puede formar un anillo;
n es un número entero de 1 a 100;
x es independientemente un número entero de 1 a
10;
y es un número entero de 0 a 10.
3. Conjugado de alfa-HexCer
según la reivindicación 1 ó 2, caracterizado porque R_{4}
comprende al menos dos cadenas que tienen unidades de
polialquilenglicol.
4. Conjugado de alfa-HexCer
según la reivindicación 2 ó 3, caracterizado porque las
unidades de polialquilenglicol son unidades de polietileno,
unidades de polipropileno y/o unidades de polibutileno.
5. Conjugado de alfa-HexCer
según la reivindicación 1 a 4, caracterizado porque R_{4}
es un residuo de metoxipolietilenglicolcarbonilo.
6. Conjugado de alfa-HexCer
según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4,
caracterizado porque el R_{4} de conjugado es
(S)-10-amino-6,9,13,16-tetraoxo-N,N',8,14-tetrakis(3,6,9,12-tetraoxatridec-1-il)-5,8,14,17-tetraazahenicosano-1,21-diamida.
7. Conjugado de alfa-HexCer
según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores,
caracterizado porque R_{1} es un grupo alquilo
C_{19}-C_{29} y R_{3} es hidrógeno.
8. Conjugado de alfa-HexCer
según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores,
caracterizado porque R_{2} es un grupo alquilo
C_{10}-C_{20}.
9. Conjugado de alfa-HexCer
según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores,
caracterizado porque cada uno de R_{6}, R_{7} y R_{9}
es un grupo hidroxilo.
10. Conjugado de alfa-HexCer
según una cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el que
R_{1} es un grupo alquilo C_{24}, R_{2} es un grupo alquilo
C_{14}, R_{3} es hidrógeno y cada uno de R_{6}, R_{7} y
R_{9} es un grupo hidroxilo.
11. Composición farmacéutica que comprende un
conjugado de alfa-HexCer según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 10 y un portador, diluyente, conservante,
adyuvantes, inmunoduladores y/o excipiente farmacéuticamente
aceptables.
12. Uso de un conjugado de
alfa-HexCer según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 10 para la preparación de una composición
farmacéutica para prevenir o tratar enfermedades infecciosas, choque
septicémico, cáncer, tumores, enfermedades autoinmunitarias,
alergias, procesos inflamatorios crónicos o agudos, o para controlar
la fertilidad en poblaciones humanas o animales.
13. Uso según reivindicación 12, en el que la
enfermedad infecciosa se produce mediante un agente infeccioso
seleccionado entre aquellos que provocan una enfermedad infecciosa
humana o animal al nivel de las vías respiratorias, tubo digestivo,
aparato genitourinario, sistema osteoarticular, sistema
cardiovascular, sistema neuronal, piel o mucosa.
14. Uso del conjugado de
alfa-HexCer según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 10 para la preparación de una composición
farmacéutica para activar o potenciar in vitro y/o in
vivo la función de presentación de antígenos de células
presentadoras de antígenos para una intervención terapéutica o
profiláctica.
15. Uso del conjugado de
alfa-HexCer según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 10 para la preparación de una composición
farmacéutica para estimular macrófagos, células dendríticas, células
NK y NK/T y la producción de anticuerpos, o la preparación de
vacunas a base de células como inmunoestimulantes.
16. Composición farmacéutica que comprende un
conjugado de alfa-HexCer según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 10 como adyuvante, un principio
farmacéuticamente activo y un portador, diluyente, conservante,
adyuvantes distintos de los conjugados tal como se definieron en
una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10, inmunomoduladores o
excipiente farmacéuticamente aceptables.
17. Composición farmacéutica según la
reivindicación 16, caracterizada porque la composición
farmacéutica es una vacuna.
18. Composición farmacéutica según
reivindicación 16 ó 17, en la que el/los principio(s)
activo(s) comprende(n)
al menos uno o más antígenos en forma de péptidos, proteínas, polisacáridos, glicolípidos o ADN que codifica para los mismos o sistemas de administración de antígenos tales como virosomas, partículas físicas, preferiblemente micropartículas, nanopartículas, liposomas, ISCOM, copolímeros y/o partículas biológicas, preferiblemente fantasmas bacterianos, partículas similares a virus (VLP) PLP o vacunas atenuadas.
al menos uno o más antígenos en forma de péptidos, proteínas, polisacáridos, glicolípidos o ADN que codifica para los mismos o sistemas de administración de antígenos tales como virosomas, partículas físicas, preferiblemente micropartículas, nanopartículas, liposomas, ISCOM, copolímeros y/o partículas biológicas, preferiblemente fantasmas bacterianos, partículas similares a virus (VLP) PLP o vacunas atenuadas.
19. Composición farmacéutica según la
reivindicación 18, caracterizada porque los antígenos son
antígeno(s) tumoral(es) o antígeno(s)
derivado(s) de agentes infecciosos para su uso en la
prevención o el tratamiento de enfermedades infecciosas, choque
septicémico, cáncer, tumores, enfermedades autoinmunitarias,
alergias o procesos inflamatorios crónicos o agudos.
20. Composición farmacéutica según una
cualquiera de las reivindicaciones 16 a 19, que comprende además una
o más moléculas antiinflamatorias, moléculas antiangiogénicas,
moléculas citotóxicas, moléculas inmunomoduladoras, preferiblemente
quimiocinas, citocinas, ligando de CD40, moléculas coestimuladoras o
anticuerpos o mezclas de los mismos.
21. Composición farmacéutica según una
cualquiera de las reivindicaciones 16 a 20, proporcionada en una
formulación adecuada para administración en la mucosa, en
particular, para administración intranasal,
intra-NALT, oral, intrarrectal, intrapulmonar,
intrabronquial, intratecal, en la conjuntiva, intravaginal o
intrauretral, administración en los conductos lácteos de la mama o
mediante inhalación.
22. Composición farmacéutica según una
cualquiera de las reivindicaciones 16 a 20, proporcionada en una
formulación adecuada para administración parenteral, en particular,
en administración subcutánea, intravenosa, intradérmica o
intramuscular.
23. Composición farmacéutica según una
cualquiera de las reivindicaciones 16 a 22, como composición
combinada para uso simultáneo, separado o secuencial en la
prevención o el tratamiento de enfermedades infecciosas, cánceres,
tumores, enfermedades autoinmunitarias o alergias, o procesos
inflamatorios crónicos o agudos o para controlar la fertilidad en
poblaciones humanas o animales.
24. Conjugado de alfa-GalCer
según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10 como adyuvante
sistémico o mucosal.
25. Kit que comprende la hexosilceramida según
una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10 como adyuvante y una
estructura antigénica y, opcionalmente, un portador, diluyente,
conservante, adyuvantes distintos de los conjugados tal como se
definieron en una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10,
inmunomoduladores o excipiente farmacéuticamente aceptables.
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