ES2332882T3 - Control de crecimiento y reparacion de tejidos gastrointestinales por gastroquinas. - Google Patents
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Abstract
Una composición farmacéutica usada para el tratamiento de un trastorno gastrointestinal, comprendiendo dicha composición un péptido estimulador del crecimiento; estando seleccionado dicho péptido estimulador del crecimiento entre el grupo constituido por las secuencias de aminoácidos KKLQGKGPGGPPPK, LDALVKEKKLQGKGPGGPP PK, y LDALVKEKKLQGKGPGGPPPKGLMY.
Description
Control de crecimiento y reparación de tejidos
gastrointestinales por gastroquinas.
Se caracteriza un nuevo grupo de Proteínas de la
Mucosa del Antro Gástrico que son gastroquinas. Un miembro del
grupo de gastroquinas se denomina AMP-18, se
secuencian moléculas de ADN genómico y ADNc de
AMP-18 para el ser humano y el ratón, y se predicen
las secuencias proteicas a partir de las secuencias de nucleótidos.
La molécula de ADNc para AMP-18 de cerdo se
secuencia y se confirma por secuenciación parcial de la proteína
natural. La proteína AMP-18 y péptidos activos
derivados de su secuencia son factores de crecimiento celular.
Sorprendentemente, péptidos capaces de inhibir los efectos de la
proteína completa, también derivan de la secuencia proteica de
AMP-18. El control del crecimiento de tejidos
gastrointestinales de mamífero y su reparación está facilitado por
el uso de la proteína o péptidos, haciendo de la proteína y los
péptidos derivados candidatos para terapias.
Búsquedas de factores que afecten al tracto
gastrointestinal (GI) de mamíferos están motivadas por la necesidad
de agentes de diagnóstico y terapéuticos. Una proteína puede quedar
como parte de la capa de mucina, proporcionando protección mecánica
(por ejemplo, lubricante o estabilizador de gel) y química (por
ejemplo, contra el ácido estomacal, quizá ayudando a mantener el
gradiente de pH del moco y/o la barrera hidrófoba) a los tejidos
subyacentes. Se ha sugerido que la familia de péptidos trébol tiene
tales tareas citoprotectoras generales (véase Sands y Podolsky,
1996). Como alternativa, una actividad tipo citoquina podría ayudar
a restaurar los epitelios dañados. Una sugerencia de que los
péptidos trébol pueden actuar conjuntamente con otros factores para
mantener y reparar el epitelio, subraya adicionalmente la
complejidad de las interacciones que tienen lugar en el tracto
gastrointestinal (Podolsky, 1997). El mantenimiento de la integridad
del epitelio GI es esencial para el bienestar continuado de un
mamífero, y el cierre de heridas después de una lesión sucede
normalmente muy rápidamente (Lacy, 1988), seguido de la
proliferación y diferenciación poco después para restablecer la
integridad epitelial (Nursat y col., 1992). Por tanto, la
protección y la restitución son dos características críticas de un
tracto gastrointestinal sano, y pueden ser importantes en el entorno
extracelular relativamente riguroso del estómago.
Búsquedas de proteínas GI han encontrado algo de
éxito. Se describieron secuencias de ADN complementario (ADNc) a
ARN mensajeros (ARNm) aislados de células estomacales humanas y
porcinas en la University of Chicago Ph.D. tesis
"Characterization of a novel messenger RNA and immunochemical
detection of its protein from porcine gastric mucosa", diciembre
de 1987, por uno de los presentes inventores trabajando con los
otros inventores. Sin embargo, había varios errores de
secuenciación del ADNc que condujeron a cambios aminoacídicos
significativos a partir de la proteína AMP-18
descrita en este documento. La propia proteína se aisló y se
purificó solamente como un aspecto de la presente invención, y se
realizaron análisis funcionales para determinar su utilidad. Se
buscaban las secuencias de ácido nucleico.
El documento EP-A1 0 972 830
describe un procedimiento para detectar una célula cancerosa
caracterizado porque se detecta una producto de expresión de un gen
capaz de cambiar el nivel de expresión del mismo debido a la
canceración.
La invención se refiere a composiciones y usos
como se define en las reivindicaciones adjuntas.
Un producto génico denominado Proteína de la
Mucosa del Antro 18 ("AMP-18") es una
gastroquina. La proteína se descubrió en células de la mucosa del
antro estomacal por análisis de clones de ADNc obtenidos de seres
humanos, cerdos, y ratones. La proteína es un miembro de un grupo de
factores de crecimiento celular o citoquinas, más específicamente
gastroquinas. Las secuencias de ADNc de AMP-18
predicen una proteína de 185 aminoácidos de longitud tanto para el
cerdo como para el hombre. Las secuencias de nucleótidos también
predicen una secuencia señal N-terminal de 20
aminoácidos para proteínas secretadas. La escisión del péptido
N-terminal del precursor
(preAMP-18) se confirmó para la proteína de cerdo;
esta escisión produce una proteína secretada de 165 aminoácidos de
longitud y aproximadamente 18.000 Dalton (18 kD) de tamaño. También
se obtuvieron y secuenciaron las secuencias de ADN genómico humanas
y de ratón. Se aisló un ADN genómico humano en 4 fragmentos
solapantes de tamaños de 1,6 kb, 3 kb, 3,3 kb y 1,1 kb
respectivamente. La secuencia de ADN genómica de ratón se aisló en
un único clon BAC.
La gastroquina denominada proteína
AMP-18 se expresa a elevados niveles en células del
antro gástrico. La proteína es apenas detectable en el resto del
estómago o duodeno, y no se encontró, o se encontró en bajos
niveles, en otros tejidos corporales ensayados. El
AMP-18 se sintetiza en las células de la mucosa de
la superficie luminal, y se secreta junto con gránulos de
mucina.
Estudios en seres humanos confirman la
localización y expresión del péptido AMP-18 en
mucosa gástrica humana.
Composiciones de AMP-18 aislada
de tejido del antro de ratón y cerdo estimulan el crecimiento de
células epiteliales de estómago, intestinales, y renales
confluyentes en cultivo; también se ha demostrado que células
humanas, de mono, perro y rata responden. Este efecto mitogénico
(estimulación del crecimiento) se inhibe por antisueros específicos
(anticuerpos) contra AMP-18, que apoya la conclusión
de que AMP-18, o sus productos, por ejemplo
péptidos derivados de la proteína por aislamiento de segmentos de la
proteína o por síntesis, es un factor de crecimiento. De hecho,
ciertos péptidos sintéticos cuyas secuencias de aminoácidos
representan una región central de la proteína
AMP-18 también tienen una actividad de factor de
crecimiento. Los péptidos también aceleran la reparación de heridas
en ensayos de cultivo tisular, lo que indica un efecto estimulador
sobre la migración celular, el proceso que media la restitución de
lesiones de la mucosa estomacal. Por tanto, la proteína y sus
péptidos activos son motógenos. Inesperadamente, péptidos derivados
de sub-dominios de la molécula precursora pueden
inhibir el efecto mitogénico de péptidos sintéticos bioactivos y de
la proteína natural intacta presente en extractos estomacales.
Hay 3 actividades de las proteínas y péptidos
gastroquina de la presente invención. Las proteínas son motógenos
porque estimulan la migración de las células. Son mitógenos porque
estimulan la división celular. Funcionan como agentes
citoprotectores porque mantienen la integridad del epitelio (como se
muestra por la protección conferida sobre capas celulares
epiteliales eléctricamente resistentes en cultivo tisular tratado
con agentes dañinos tales como oxidantes o fármacos
anti-inflamatorios no esteroideos AINE).
La síntesis de AMP-18 está
confinada a las células epiteliales del revestimiento mucoso luminal
del antro gástrico de seres humanos y otros mamíferos. En el
interior de las células la proteína se co-localiza
con mucinas en gránulos de secreción, y parece secretarse en el
moco que cubre la membrana plasmática apical. La
AMP-18 humana recombinante en E. coli ejerce
su efecto mitogénico a una concentración un orden de magnitud
inferior que los péptidos promotores del crecimiento derivados del
centro de la proteína madura. El péptido 77-97, el
péptido mitogénico más potente, es específico de secuencia de
aminoácidos. Parece que los péptidos AMP son específicos de tipo
celular ya que no estimulan el crecimiento de fibroblastos o células
HeLa. Parece que la mitogénesis por péptidos AMP específicos está
mediada por un receptor de superficie celular porque ciertos
péptidos que no son mitógenos activos pueden inhibir de forma
competitiva, de una manera dependiente de la concentración, los
efectos estimuladores del crecimiento del péptido
58-99 y extractos celulares del antro. La
AMP-18 y sus péptidos derivados muestras diversos
efectos sobre las células epiteliales estomacales e intestinales lo
que sugiere que podrían desempeñar una tarea crítica en la
reparación después de una lesión de la mucosa gástrica. Estos
incluyen citoprotección, mitogénesis, restitución, y maduración de
la función de barrera después de una lesión mediada por un oxidante
y/o indometacina. Lo posibles mecanismos por los que
AMP-18 o sus derivados peptídicos median sus efectos
pleiotrópicos incluyen estimulación de la actividad tirosina
quinasa de proteínas, la prolongación de la expresión de la proteína
de choque por calor después de estrés celular, y la acumulación
potenciada de la proteína asociada a uniones fuertes
ZO-1 y ocludina. Ciertos de estos efectos
fisiológicos pueden suceder a concentraciones que son relativamente
bajas para rhAMP-18 (<50 nM) en comparación con
las concentraciones de otros mediadores peptídicos gástricos tales
como péptidos trébol o \alpha-defensina,
criptidina 3 (>100 \muM). Aparentemente la
AMP-18 inmunorreactiva se libera por células del
antro de ratón después de alimentación forzada con indometacina, y
por células del antro canino en cultivo primario expuesto a
forskolina, lo que sugiere que la proteína está sujeta a regulación.
Estos resultados suponen que la AMP-18 podría
desempeñar una tarea en procesos fisiológicos y patológicos tales
como curación de heridas en el epitelio de la mucosa gástrica in
vivo.
Se describe un grupo de proteínas estimuladoras
del crecimiento celular homólogas aisladas denominadas gastroquinas,
que se producen por las células epiteliales gástricas e incluyen
las secuencias de aminoácidos consenso
VKE(K/Q)KXXGKGPGG(P/A)PPK en las que XX
puede ser LQ o estar ausente. Una proteína aislada del grupo tiene
una secuencia de aminoácidos que se muestra en la Fig. 7. La
proteína presente en epitelios gástricos de cerdo en una forma
procesada que carece de los 20 aminoácidos que constituyen una
secuencia de péptido señal, tiene 165 aminoácidos y un peso
molecular estimado de aproximadamente 18 kD medido por
electroforesis en gel de poliacrilamida. Los péptidos señal se
escinden después de su paso a través del retículo endoplasmático
(RE). La proteína es capaz de secretarse. La secuencia de
aminoácidos mostrada en la Fig. 3 se dedujo a partir de una
secuencia de ADNc humana. Se muestra una realización de la proteína
con una secuencia de aminoácidos como en la Fig. 6, una secuencia
predicha a partir de ARN y ADN de ratón.
Un péptido estimulador del crecimiento
(bioactivo) puede obtenerse de una proteína del grupo de
gastroquinas. Se prefieren péptidos bioactivos en lugar de
proteínas para su uso porque son más pequeños, por consiguiente el
coste para sintetizarlos es más bajo que para la proteína
completa.
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Además, puede producirse un péptido modificado
por el siguiente procedimiento:
(a) eliminar los sitios de proteasa principales
en una secuencia de aminoácidos de un péptido no modificado por
sustitución o deleción de aminoácidos; y/o
(b) introducir en el aminoácido modificado
análogos aminoacídicos en el péptido no modificado.
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Un aspecto es un péptido estimulador del
crecimiento sintético, que tiene una secuencia de aminoácidos de
las posiciones 78 a 119 como se muestra en la Fig. 3.
Otro péptido tiene una secuencia de aminoácidos
de la posición 97 a la posición 117 como se muestra en la Fig.
3.
Otro péptido tiene una secuencia de aminoácidos
de la posición 97 a la posición 121 como se muestra en la Fig.
3.
Otro péptido tiene una secuencia de aminoácidos
de la posición 104 a la posición 117 como se muestra en la Fig.
3.
Una realización de un péptido bioactivo aislado
tiene una de las siguientes secuencias: KKLQGKGPGGPPPK
LDALVKEKKLQGKGPGGPPPK o LDALVKEKKLQGKGPGGPPPKGLMY. Una realización
de un inhibidor de una proteína del grupo de gastroquinas tiene la
secuencia de aminoácidos KKTCIVHKMKK o KKEVMPSIQSL
DALVKEKK (véase también la Tabla 1).
DALVKEKK (véase también la Tabla 1).
Se describe una composición farmacéutica que
incluye al menos un péptido estimulador del crecimiento.
Una composición farmacéutica para el tratamiento
de enfermedades asociadas con el crecimiento excesivo de los
epitelios gástricos, incluye un inhibidor de una proteína del grupo
de gastroquinas o de un péptido estimulador del crecimiento
derivado de las proteínas gastroquinas.
Una composición farmacéutica para el tratamiento
de enfermedades del colon y el intestino delgado incluye al menos
un péptido estimulador del crecimiento de la presente invención.
Ejemplos de dichas enfermedades incluyen colitis ulcerosa y
enfermedad de Crohn.
Se produjeron anticuerpos contra el producto
proteico AMP-18 codificado por el ADNc humano
expresado en bacterias en conejos; estos anticuerpos reaccionaban
con antígenos del antro de 18 kD de todas las especies de mamíferos
ensayadas (ser humano, cerdo, cabra, oveja, rata y ratón),
proporcionando un procedimiento útil para detectar gastroquinas. Un
anticuerpo contra una proteína del grupo reconoce un epítope dentro
de un péptido de la proteína que incluye una secuencia de
aminoácidos de la posición 78 a la posición 119 como en la Fig.
3.
Se describe una molécula de ADN genómico aislada
con la secuencia de nucleótidos de un ser humano como se muestra en
la Fig. 1 y una molécula de ADNc aislada que codifica una proteína
humana, con la secuencia de nucleótidos como se muestra en la Fig.
2.
Se describe una molécula de ADN aislada que
tiene la secuencia genómica encontrada en ADN derivado de un ratón,
como se muestra en la Fig. 4.
El ADN geonómico tiene valor porque incluye
elementos reguladores para la expresión gástrica de genes, por
consiguiente, los elementos reguladores pueden aislarse y usarse
para expresar otras secuencias génicas diferentes a gastroquinas en
tejido gástrico.
Un ratón con una deleción dirigida en una
secuencia de nucleótidos en el genoma de ratón que, cuando se
expresa sin la deleción, codifica una proteína del grupo de
gastroquinas.
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Se describe un procedimiento para preparar una
proteína gastroquina o un péptido derivado de una proteína
gastroquina. El procedimiento incluye:
(a) obtener una molécula de ADNc aislada con una
secuencia tal como la mostrada en la Fig. 2;
(b) colocar la molécula en un vector de
expresión de ADN recombinante;
(c) transfectar una célula huésped con el vector
de expresión de ADN recombinante;
(d) proporcionar condiciones ambientales que
permitan que la célula huésped transfectada produzca una proteína
codificada por la molécula de ADNc; y
(e) purificar la proteína a partir de la célula
huésped.
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Las células huésped en las que ha sido exitosa
la expresión incluyen baculovirus, que permiten proporcionar
grandes cantidades de gastroquinas para usos comerciales y de
investigación. Por ejemplo, se produjo la proteína
AMP-18 humana sin el péptido señal.
Una proteína humana recombinante
AMP-18 expresada en E. coli tiene la
secuencia de la Fig. 14, panel de la izquierda.
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Se describe un procedimiento para estimular el
crecimiento de células epiteliales en el tracto gastrointestinal de
mamíferos. El procedimiento incluye las etapas de:
(a) poner en contacto las células epiteliales
con una composición que comprende una proteína gastroquina o un
péptido derivado de una proteína del grupo; y
(b) proporcionar condiciones ambientales para
estimular el crecimiento de las células epiteliales.
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Un procedimiento para inhibir la actividad
estimuladora del crecimiento celular de una proteína del grupo
incluye las etapas de:
(a) poner en contacto la proteína con un
inhibidor; y
(b) proporcionar condiciones ambientales
adecuadas para la actividad estimuladora del crecimiento celular de
la proteína.
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El inhibidor puede ser un anticuerpo dirigido
hacia al menos un epítope de la proteína, por ejemplo un epítope
con una secuencia de aminoácidos de la posición 78 a la posición 119
de la secuencia de aminoácidos deducida de la Fig. 3 o un péptido
inhibidor tal como los de la Tabla 1.
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Un procedimiento para ensayar los efectos de
diferentes niveles de expresión de una proteína sobre epitelios del
tracto gastrointestinal de mamíferos, incluye las etapas de:
(a) obtener un ratón con una proteína
gastroquina inactiva o ausente;
(b) determinar los efectos de la ausencia de la
proteína en el ratón;
(c) administrar niveles crecientes de la
proteína al ratón; y
(d) correlacionar los cambios en los epitelios
del tracto gastrointestinal con los niveles de la proteína en los
epitelios.
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Se contemplan kits que usarán anticuerpos contra
gastroquinas para medir sus niveles por inmunología cuantitativa.
Los niveles pueden correlacionarse con patologías y efectos de
tratamiento.
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Un procedimiento para estimular la migración de
células epiteliales al tracto gastrointestinal de mamíferos,
incluye las etapas de:
(a) poner en contacto las células epiteliales
con una composición que comprende un péptido derivado de la
proteína; y
(b) proporcionar condiciones ambientales que
permitan la migración de las células epiteliales.
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Un procedimiento para la citoprotección de
células epiteliales dañadas en el tracto gastrointestinal de
mamíferos, incluye las siguientes etapas:
(a) poner en contacto las células epiteliales
dañadas con una composición que incluye una proteína del grupo de
gastroquinas o un péptido derivado de la proteína; y
(b) proporcionar condiciones ambientales que
permitan la reparación de las células epiteliales.
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Las células dañadas pueden formar una
úlcera.
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La Fig. 1 es una secuencia de nucleótidos
genómica humana de una pre-gastroquina; las
características de secuencia se determinaron a partir de ADNc y PCR
del ADN genómico humano amph-ge8.seq Longitud: 7995
promotor predicho: 1405; exón 1: 1436-1490; exón 2:
4292-4345; exón 3: 4434-4571; exón
4: 5668-5778; exón 5: 6709-6856;
exón 6: 7525-7770; sitio poliA: 7751.
La Fig. 2 es una secuencia de ADNc humano; el
clon de ADN se obtuvo por clonación de expresión diferencial de
bibliotecas de ADNc gástrico humano.
La Fig. 3 es una secuencia proteica de
preAMP-18 humana predicha a partir de un clon de
ADNc basado en Powell (1987) y revisado por los presentes
inventores; N-21 es el extremo N-terminal
esperado de la proteína madura.
La Fig. 4 es una secuencia de
preAMP-18 de ratón determinada a partir de
RT-PCR de ARNm y PCR de clones BAC de secuencias de
ADN genómico de ratón:
promotor predicho: 1874 sitio de inicio de la
transcripción experimental: 1906 sitio de inicio de la traducción:
1945 CDS 1: 1906-1956; CDS 2:
3532-3582; CDS 3: 3673-3813; CDS 4:
4595-4705; CDS 5: 5608-5749; CDS 6:
6445-6542; sitio poliA: 6636.
La Fig. 5 es una secuencia de ADNc de ratón para
preAMP-18.
La Fig. 6 es una secuencia de aminoácidos de
preAMP-18 de ratón; se realizó
RT-PCR sobre ARN aislado del antro del estómago de
ratón: Y-21 es el extremo N-terminal predicho
de la proteína madura; los espacios indicados por .. significan que
no hay nucleótidos ahí para alinearse con otras secuencias en la
Fig. 11.
La Fig. 7 es un ADNc que expresa
AMP-18 porcina.
La Fig. 8 es una secuencia proteica de
pre-gastroquina de cerdo
(pre-AMP-18) predicha a partir de un
clon de ADNc basada en Powell (1987) D-21 es el extremo
N-terminal de la proteína madura - confirmado por
secuenciación de la proteína aislada de estómago de cerdo.
La Fig. 9 es una comparación entre las
secuencias de aminoácidos de pre-gastroquina humana
frente a la de cerdo.
La Fig. 10 muestra una comparación de
alineamiento generada por ordenador de secuencias proteicas
predichas de ser humano, cerdo y ratón determinadas a partir de la
secuenciación de clones de ADNc para AMP-18 humana
y de cerdo, y por reacción en cadena de la polimerasa de ARN y ADN
de ratón usando cebadores oligonucleotídicos específicos de
preAMP-18; en cada caso los primeros 20 aminoácidos
constituyen el péptido señal, escindido después del paso a través
de la membrana del retículo endoplasmático.
La Fig. 11 muestra el efecto de extracto de la
mucosa del antro gástrico porcino, el péptido 77-97
de AMP humana, de la proteína madura (igual que el péptido
97-117 de la proteína precursora humana: Tabla 1) y
EGF sobre el crecimiento de células epiteliales gástricas; se
cultivaron células AGS en DMEM que contenía suero bovino fetal (5%)
en placas de 60 mm; se añadieron diferentes cantidades de extracto
de antro de cerdo, péptido 77-97 purificado por
HPLC, y/o EGF; cuatro días después las células se dispersaron y se
contaron con un hemocitómetro; el extracto del antro y los péptidos
estimularon cada uno el crecimiento celular de una manera
dependiente de la concentración; el gráfico de barras muestra que a
dosis de saturación, el péptido 77-97 (8 \mug/ml)
o EGF (50 ng/ml) era mitogénico; juntos eran aditivos lo que sugiere
que los dos mitógenos actúan usando diferentes receptores y/o vías
de señalización; anticuerpos anti-AMP inhibían el
extracto del antro pero no inhibían el péptido
77-97.
La Fig. 12 muestra la estructura de los genes de
preAMP-18 humana y de ratón; la cantidad de pares de
bases en los intrones se muestran encima de las barras; los exones
se indican E1-E6 y los intrones
I1-I5; hay diferencias minoritarias en la longitud
de los intrones.
La Fig. 13 muestra el Panel de la
izquierda. Secuencia de aminoácidos de AMP-18
humana recombinante expresada en E. coli. Obsérvese la marca
His6 dentro de un dominio de 12 aminoácidos en el extremo
N-terminal que ha remplazado el péptido señal
hidrófobo putativo. Panel de la derecha. Efecto de
rhAMP-18 y el péptido 77-97 de AMP
sobre el crecimiento de cultivos confluyentes de células
IEC-18. Aunque la estimulación máxima del
crecimiento es similar, la concentración mitad de la máxima
(K_{1/2}) para rhAMP-18 (\sim30 nM) es
aproximadamente un orden de magnitud inferior que para el péptido
(\sim300 nM).
La Fig. 14 muestra Panel de la izquierda.
Alineamiento de las fases de lectura abierta (ORF) derivadas de los
clones de ADNc para AMP-18 para las proteínas
precursoras de antro humano y de cerdo. La similitud era del 78,50%
y la identidad era del 75,27%. Se realizó análisis informático
usando los programas GAP y PEPTIDESTRUCTRE del Wisconsin Package
(GCG). Panel de la derecha. Modelo de la estructura
secundaria predicha para la ORF de preAMP humana. Llama la atención
el dominio N-terminal rico en asparagina, las cortas
regiones ricas en triptófano (W) y de
glicina-prolina (GP), y las posiciones conservadas
de los cuatro restos de cisteína (C). Se indican posibles hélices
anfipáticas.
La Fig. 15 muestra el efecto de extracto celular
de antro porcino, péptido 77-97, y EGF sobre el
crecimiento de células epiteliales intestinales. Se cultivaron
células IEC-6 en placas de 60 mm. El extracto
celular del antro (panel de la izquierda) y el péptido
77-97 (panel central) estimulaban cada uno el
crecimiento de una manera dependiente de la concentración. El
péptido 77-97 (1 \mug/ml) parecía más potente que
EGF (50 ng/ml) (panel de la derecha). Los valores son medias
\pm ET para 3 cultivos.
La Fig. 16 muestra el efecto del péptido
77-99 de AMP y EGF sobre el crecimiento y la
restitución de heridas por células epiteliales de antro humano.
Para medir el crecimiento (panel de la izquierda), se
sembraron células HAE en placas de 60 mm. Se añadieron péptido
77-97 (8 \mug/ml), o EGF (50 ng/ ml), o ambos al
medio y se contó la cantidad de células 4 días después. El péptido
77-97 y EGF estimulaban cada uno la proliferación,
y parecían ser aditivos. Los valores son medias \pm ET para 3
cultivos. Para medir la migración (panel de la derecha), se
cultivaron células en placas de 60 mm para preparar una monocapa
confluyente. El medio se aspiró y se remplazó con medio fresco que
contenía suero de ternera (CS) al 0,01%. La monocapa se hirió
mecánicamente raspando con una cuchilla. Se retiraron las células
desprendidas aspirando el medio, y se aclararon las células
restantes dos veces con medio fresco que contenía CS al 0,01%. Se
añadió medio fresco (5 ml) que contenía CS (0,01%) e insulina (100
U/l) a los cultivos heridos. Se añadieron péptido
77-97 (8 \mug/ml), EGF (50 ng/ml), o ambos a
cultivos duplicados. Se evaluó la migración a 24, 48 y 72 h después
de la herida midiendo la distancia (en mm) que habían migrado las
células desde el borde de la herida usando una retícula de lente de
microscopio (10 mm de longitud; marcas de 0,1 mm). Se midieron las
células migratorias en 12 sitios elegidos aleatoriamente a lo largo
de una extensión de 0,25 mm del borde de la herida a un aumento de
40 veces. Se midió la migración en 2 sitios diferentes para cada
una de 2 heridas diferentes hechas en cada cultivo. Los valores son
la distancia media que las células se movieron en el área despojada
desde el borde de 4 heridas diferentes en 2 cultivos \pm ET. Las
células expuestas al péptido 77-97 migraban más
desde el borde de la herida que las expuestas a vehículo a las 72
h. EGF también estimulaba el movimiento celular, y los dos agentes
actuando juntos potenciaban marcadamente la migración.
La Fig. 17 muestra el efecto del péptido
67-85 de AMP sobre el crecimiento de células
epiteliales intestinales estimuladas por péptido
58-99. Se prepararon cultivos confluyentes de
células IEC-18. Un día después, se aspiró el medio
y se remplazó con 5 ml de DMEM que contenía CS (0,5%) e insulina,
sin (control) o con péptido 58-99 mitogénico (8
\mug/ml). Se incubaron placas hermanas que recibieron 1 ml de
medio y diferentes cantidades de péptido 67-85 a 1
h a 38ºC en una incubadora de CO_{2}, y después se añadió un ml
adicional de medio a cada placa. Se añadió péptido
58-99 a 2 de las 4 placas hermanas a cada
concentración de péptido 67-85, y se contó la
cantidad de células. En ausencia de péptido 67-85,
la cantidad de células aumentó en un 290%, mientras que las células
expuestas a péptido 58-99 aumentaron en cantidad en
un 407%, y las células tratadas con EGF (50 ng/ml) aumentaron en un
402% (no mostrado) durante los siguientes 3 días. La estimulación
del crecimiento celular por el péptido 58-99
mitogénico se suprimió completamente por preincubación de las
células con 0,25 \mug/ml de péptido 67-85. Cuando
se añadía solo, el péptido 67-85 (0,25 a 8
\mug/ml) no era un mitógeno. Los valores para la cantidad de
células por cultivo se muestran con relación a la multiplicación de
las células expuestas al vehículo durante el mismo periodo.
La Fig. 18 muestra el efecto de antisuero de
conejo contra AMP-18 sobre el efecto mitogénico de
rhAMP-18 sobre células IEC-18
confluyentes. Cuando se preincubaba rhAMP-18 (50
nanomolar) durante 30 min. con antisuero (dilución 1:100
+Ab), la estimulación del crecimiento se reducía en \sim95%; el
suero preinmune no tenía efecto sobre el crecimiento celular. La
concentración la mitad de la máxima (K_{1/2}) para la estimulación
del crecimiento de esta rhAMP-18 recién purificada
es aproximadamente 5 nanomolar.
La Fig. 19 muestra el efecto de péptido
77-97 de AMP sobre la restitución de heridas en
células epiteliales de antro humano (HAE) e intestinales de rata
(IEC-18). Se hirieron mecánicamente cultivos en
monocapa confluyentes raspando con una cuchilla, y se midió la
distancia que las células migraban desde el borde de la herida
usando una retícula de lente de microscopia. Las células migraban
más en presencia de péptido AMP en cada momento puntual estudiado
(P<0,005).
La Fig. 20 muestra el efecto de péptido
77-97 de AMP sobre la maduración de la RTE. Se
cultivaron cultivos en monocapa de células MDCK sobre filtros de
policarbonato permeables (tamaño de poro de 0,4 \mum) (Transwell)
en DMEM que contenía FBS (2%) sin (control) o con péptido
77-97 (8 \mug/ml) durante 8 días. Se midió la RTE
medido 24 h después de sembrar las células, y a tiempos específicos
después usando un medido epitelial de
voltios-ohmios (EVOM, Millipore). Después de cada
medición, se cambió el medio que contenía FBS sin o con péptido
(0,48, y 144 h), y se añadió péptido 77-97 adicional
(8 \mug/ml) a las 30 y 72 h. A las 72 h, la RTE en cultivos que
recibieron péptido 77-97 era dos veces tan elevada
como en cultivos de control. Los valores son medias para 3
cultivos; la varianza es <10% de la media. La RTE se midió a
partir de 3 áreas diferentes sobre el filtro.
La Fig. 21 muestra el efecto de péptido
77-97 de AMP sobre la RTE en monocapas lesionadas
con el oxidante monocloramina o indometacina. Panel A:
Cuando se alcanzó una RTE estable (330 \Omega \cdot cm^{2})
en monocapas de células MDCK se cambió el medio a DMEM que contenía
FBS (0,2%), y péptido 77-97 (8 \mug/ml) o EGF (50
ng/ml). Después de 18 h, se añadió péptido 77-97 o
EGF a los pocillos especificados. Una hora después la monocloramina
(0,1 mM), como los otros agentes, se añadieron a los compartimentos
apical y basal del Transwell. Los cultivos lesionados con
monocloramina tratados con vehículo o EGF sostenían una pérdida de
\sim35-40% de la RTE 90 min. después de la
exposición a oxidante, mientras que la RTE de células lesionadas con
oxidante tratadas con péptido 77-97 era similar a
los cultivos de control no expuestos al oxidante. Paneles B,
C: Se cultivaron monocapas de subclones caco2/bbe (C2) sobre
filtros de policarbonato revestidos de colágeno hasta que se
alcanzó una RTE estable (225 \Omega \cdot cm^{2}). El medio
gastado se remplazó con medio fresco que contenía FBS (0,1%) solo o
con péptido 77-97 (8 \mug/ml). Después de 18 h, se
añadió monocloramina (0,3 mM, B) o indometacina (0,1 mM,
C) a ambos compartimentos del Transwell. A tiempo 0, los
cultivos recibieron vehículo (control), vehículo más oxidante o
indometacina, o péptido 77-97 y oxidante o
indometacina. La RTE de cultivos lesionados tratados con vehículo
disminuyó en \sim35% a 90 min., mientras que los cultivos
tratados con péptido disminuyeron en \sim10%. El péptido no
alteraba la RTE de células no lesionadas (no mostradas).
La Fig. 22 muestra el efecto de péptido
77-97 de AMP sobre la RTE después de lesión por DSS.
Se cultivaron monocapas de células C2 en DMEM que contenía FBS (5%)
y transferrina (10 \mug/ml) sobre filtros de policarbonato
revestidos de colágeno hasta que se alcanzaba una RTE estable (225
\Omega \cdot cm^{2}). A tiempo 0, las células se expusieron a
ausencia de DSS (control), o DSS (4%) en el compartimento superior
del Transwell. Se añadió péptido 77-97 de AMP (8
\mug/ml) a los compartimentos superior e inferior del Transwell 1
día antes de la adición de DSS a tiempo 0. La RTE de cultivos
lesionados con DSS tratados con vehículo disminuyó en \sim70% a
45 min., mientras que los cultivos tratados con péptido disminuyeron
en \sim10% a ese tiempo. El péptido no alteraba la RTE de células
no lesionadas. Los valores son medias para \geq6 cultivos.
La Fig. 23 muestra el efecto de péptido
77-97 de AMP sobre la ZO-1 y la
ocludina después de lesión oxidante de células C2. Esta
inmunotransferencia muestra que los niveles de proteína en la
fracción insoluble eran \simdos veces mayores después de la
exposición de las células a péptido AMP que al vehículo.
La Fig. 24 muestra el efecto de péptido AMP
sobre células C2. Los cultivos se expusieron al péptido durante
diferentes periodos de tiempo y se obtuvo la fracción insoluble. Las
proteínas se separaron, se sondearon las inmunotransferencias con
antisueros específicos, y se cuantificó la cantidad de cada proteína
usando densitometría láser.
La Fig. 25 muestra el efecto de
rhAMP-18 sobre la RTE de monocapas sometidas a
lesión oxidante. Se prepararon monocapas de células C2 confluyentes
sobre Transwells hasta que se estableció una RTE estable. Se
remplazó el medio con medio fresco que contenía FBS (0,1%) solo
(control), o con rhAMP-18 (100 nanomolar) o
péptido 77-97 (3,7 micromolar). Después de
18 h, se añadió monocloramina (0,3 mM) a ambos compartimentos del
Transwell, y los cultivos recibieron vehículo (control), vehículo
más oxidante, rhAMP-18 y oxidante, o péptido
77-97 y oxidante, después de lo cual se midió la
RTE.
La Fig. 26 muestra el efecto de
rhAMP-19 sobre los niveles de ZO-1 y
ocludina en células C2. Cultivos en monocapa se trataron con
rhAMP-19 (100 nanomolar) o el vehículo
durante 8 h. Después de la lisis celular, se preparó una fracción
insoluble (particulada) que representaba las membranas celulares y
la proteína TJ asociada al citoesqueleto y después se sometió a
inmunotransferencia. La cantidad de ZO-1 y ocludina
inmunorreactivas es aproximadamente dos veces mayor en células
tratadas con rhAMP-18 (+) que en células tratadas
con vehículo (1) como se estimó por densitometría láser de la misma
inmunotransferencia. Se documentó una carga proteica igual en cada
carril re-sondeando la transferencia con un
anticuerpo contra la proteína de choque por calor 73 que se expresa
de forma constitutiva por estas células.
La Fig. 27 muestra Panel de la izquierda.
Se dio a ratones (n=10) DSS al 3%, y se ensayaron diariamente las
deposiciones. Menos animales que se les dio péptido AMP (3 mg/kg de
peso corporal/día, s.c.) que vehículo dan deposición positiva a
hemocultivo. Panel de la derecha. Después de que los animales
recibieran DSS durante 4 días, se cambiaron a agua (día 0 en
la gráfica). Los ratones a los que se dio péptido AMP diariamente
perdieron menos peso que a los que se dio vehículo en el día 5
(P<0,04). El peso de animales tratados con péptido en los días 4
y 5 parecía aumentar; disminuyó en aquellos a los que se dio
vehículo.
Se detectó un productor génico, un miembro de un
grupo de gastroquinas, en la mucosa del antro gástrico de mamíferos
por una exploración diferencial de bibliotecas de ADNc obtenidas de
diferentes regiones del estómago de cerdo. La secuencia de ADNc
predecía una proteína de 185 aminoácidos que incluye una secuencia
líder de péptido señal. También se aisló un Adnc de una biblioteca
humana. La secuencia de aminoácidos predicha tenía una identidad
entre cerdo y ser humano del 76,3%. Las secuencias predecían un
péptido señal de 20 aminoácidos característico para proteínas
secretadas. La escisión del péptido señal N-terminal
se confirmó para la proteína de cerdo. Se crearon anticuerpos
contra el producto del ADNc humano expresado en bacterias en
conejos; estos anticuerpos reaccionaban con antígenos del antro de
18-20 kD de todas las especies de mamíferos ensayas
(cerdo, cabra, oveja, rata y ratón). De acuerdo con los niveles de
ARNm, la proteína AMP-18 se expresa a elevados
niveles solamente en el antro gástrico; es apenas detectable en el
resto del estómago o el duodeno, y no se detectaba en una
diversidad de otros tejidos ensayados. La AMP-18 se
sintetiza en las células mocosas de la superficie luminal;
microscopía inmune-electrónica localiza
AMP-18 en los gránulos de secreción de estas
células. Preparaciones de AMP-18 parcialmente
purificadas de tejido del antro de ratón y cerdo son mitogénicas
para células epiteliales confluyentes de estómago y riñón en
cultivo; este efecto se inhibe por los antisueros específicos, lo
que implica que AMP-18, o sus productos, es un
factor de crecimiento.
La AMP-18 se secreta
probablemente con el muco y funciona, quizá como derivados
peptídicos, dentro del gel mucoso para mantener la integridad
epitelial directamente, y posiblemente para actuar contra patógenos.
En vista de la actividad de factor de crecimiento observada sobre
líneas celulares epiteliales en cultivo, es probable que
AMP-18 o su(s) derivado(s)
peptídico(s) sirvan como un factor autocrino (y posible
paracrino) para el epitelio gástrico. La función de
AMP-18 puede no ser simplemente como un mitógeno,
sino que además puede actuar como factor de diferenciación
proporcionando las señales para el reabastecimiento de las células
de la superficie luminal maduras. La proteína AMP-18
o sus derivados probablemente son importantes para el mantenimiento
normal de la mucosa gástrica elevadamente dinámica, así como el
desempeño de una tarea crítica en la restitución del epitelio del
antro después de un daño. Esta proteína no se ha caracterizado
adicionalmente en ninguna publicación, sin embargo, se ha informado
de secuencias de ácido nucleico relacionadas como EST y como un gen
de longitud completa similar. Las limitaciones de los datos de EST
no pueden producir información sobre las secuencias de inicio, los
péptidos señal, o secuencias en la proteína responsables de la
bioactividad, como se describe en la presente invención. Se ha
informado de varios de estos EST para ADNc de estómago de mamífero,
pero también se ha informado de EST relacionados para bibliotecas de
páncreas y también útero preñado. Aunque la expresión del ARN de
AMP-18 en estos otros tejidos parece ser bajo (como
se indica para el páncreas por análisis de PCR), estos resultados
sugieren que este factor de crecimiento puede tener tareas en el
desarrollo y fisiológicas más amplias que las supuestas por los
elevados niveles específicos de expresión encontrados para el
estómago.
La proteína AMP-18 parece
expresarse en la superficie de las capas celulares del tracto
gastrointestinal (GI). Las células en expresión pueden estar
liberando factor de crecimiento almacenado cuando sea necesario - en
las criptas y hendiduras del tracto GI donde se necesita reparación
celular debido a un daño superficial.
La AMP-18 puede actuar sobre la
mucosa, las superficies apicales de las células epiteliales,
colaborando con prostaglandinas y otros factores de crecimiento que
funcionan mediante receptores de superficie celular basolaterales
sobre el lado serosal. La proteína o sus derivados probablemente son
importantes para el mantenimiento normal de la mucosa gástrica
altamente dinámica, contra el estrés mecánico y la elevada acidez
del estómago. La AMP-18 puede desempeñar una tarea
crítica en la reparación del epitelio del estómago después de un
daño por agentes tales como alcohol, fármacos
anti-inflamatorios no esteroideos (AINE), o
patógenos, en particular Helicobacter pylori, que infecta
predominantemente el antro y es un agente causante de úlceras
gástricas y posiblemente cánceres.
Un péptido sintético (42 aminoácidos, un
"oligómero de 42 unidades") que representa una región central
de la secuencia de aminoácidos de AMP-18 también
tiene actividad de factor de crecimiento, que se inhibe por
antisueros específicos; algunos péptidos más cortos relacionados
también tienen actividad estimuladora, aunque otros pueden inhibir
la actividad del oligómero de 42 unidades. Este resultado sugiere
que existe un receptor epitelial saturable para
AMP-18, y abre vías directas para analizar las
regiones bioactivas de la proteína e identificar el (los)
receptor(es) putativo(s). Como AMP-18
no se parece en estructura a ninguna citoquina o proteína
citoprotectora conocida (tal como los péptidos trébol), el análisis
de las interacciones de la proteína, y sus péptidos relacionados
activos e inhibidores, con células ofrece la oportunidad de revelar
nuevas interacciones moleculares implicadas en el control del
crecimiento celular.
Se estimuló el crecimiento de células
BSC-1 por extracto del antro porcino fraccionado en
gel; se cargó proteína del extracto porcino (250 \mug) en cada
uno de los 2 carriles y se sometieron a electroforesis en un gel de
poliacrilamida (12,5%); los 5 cortes delgados (2-3
mm) para cada área entre M_{r} 14 kDa y 21,5 kDa se
cortaron de los carriles experimentales. Cada par de cortes se puso
en un tubo de microfuga silanizado con 200 \mul de PBS estéril,
acetonitrilo al 3% y BSA al 1%, y se maceró; las proteínas se
eluyeron del gel durante 18 h a 22ºC con agitación vigorosa; las
muestras después de microcentrifugaron y se añadió una muestra de
un sobrenadante a un cultivo confluyente de células
BSC-1; se contó la cantidad de células 4 días
después; se observó estimulación de crecimiento máximo en cultivos
que habían recibido extractos eluidos de cortes de gel
correspondientes a M_{r} de \sim18 kDa; los antisueros
contra AMP-18 humana recombinante añadidos al medio
de cultivo inhibían completamente la estimulación del crecimiento
por la fracción de 18 kDa (+Ab); los valores son medias de 2
cultivos; el ET es menor del 10% de la media.
La actividad biológica (mitogénicas para células
epiteliales en el tracto gastrointestinal) de la
AMP-18 se localiza en la mitad
C-terminal de la proteína. La(s)
secuencia(s) epitópica(s) parece(n) estar
inmediatamente N-terminal(es) a la secuencia
mitogénica.
La actividad biológica que es un factor de
crecimiento, se muestra por un péptido que comprende al menos 42
aminoácidos de las posiciones 78 a 119 de la secuencia proteica de
longitud completa. Un anticuerpo contra esta región bloqueaba la
actividad mitogénica. Aunque un péptido que tiene una secuencia de
aminoácidos de 104 a 117 tenía actividad mitogénica, un anticuerpo
contra esta región no bloqueaba (inhibía) la actividad. Un péptido
con una secuencia de aminoácidos de las posiciones
97-117 tiene la misma actividad mitogénica que un
péptido con la secuencia de 42 aminoácidos, pero es menos caro de
producir como un péptido sintético.
El crecimiento de células epiteliales que se
estimuló por extracto celular de antro murino y porcino se bloqueó
por antisuero de conejo contra una proteína precursora de
AMP-18 humana recombinante completa; se prepararon
cultivos confluyentes de células BSC-1; se preparó
extracto celular de antro murino o porcino y se midió su
concentración de proteínas; se añadieron extractos celulares solos y
con diferentes diluciones del antisuero, o antisuero solo (dilución
1:100) al medio de cultivo, y 4 días después se contó la cantidad de
células. Se inhibió de forma máxima la estimulación del crecimiento
por gastroquinas del antro murino por el antisuero (93%) a una
dilución de 1:400, mientras que la estimulación por el extracto
proteico del antro porcino se inhibió totalmente a una dilución de
1:100. Los valores anotados eran medias para 3 cultivos; el error
típico de la media (ET) era menor del 10% de la media.
Los anticuerpos contra la proteína
AMP-18 tienen usos de diagnóstico para determinar
diferentes niveles de la proteína en el tracto gastrointestinal
in vivo. Probablemente se desarrollan úlceras si están
presentes niveles inferiores a los normales de proteína
AMP-18. Los valores normales se determinan por
tecnologías conocidas para los especialistas en la técnica, es
decir, obteniendo muestras representativas de personas a ensayar
(categorías de edad, sexo, estado clínico) y aplicando técnicas
convencionales de cuantificación de proteínas. Los efectos de la
aspirina e indometacina sobre los niveles de AMP-18
también son útiles para controlar los niveles nocivos de fármacos
que incluyen los fármacos anti-inflamatorios no
esteroideos (AINE). Líneas celulares de cáncer estomacal no
expresan las proteínas AMP-18 al menos por
procedimientos de detección descritos en este documento.
Se han clonado secuencias de ADN genómico de
AMP-18 para ser humano y ratón como un preludio al
análisis de los elementos reguladores génicos, que supuestamente
determinan las grandes diferencias en los niveles de expresión del
gen en tejidos en los que el gen puede ser activo. Se han aislado
secuencias flanqueantes cadena arriba y cadena abajo de ADN
genómico de ratón preparatorio para eliminación génica. Las
secuencias genómicas flanqueantes probablemente determinan los
niveles muy diferentes de expresión del gen en el estómago y otros
pocos tejidos en los que puede expresarse. Con la implicación de
diferentes elementos reguladores, podrían expresarse genes de
gastroquina con un factor de crecimiento en otros tejidos.
Como la proteína AMP-18 y
ciertos péptidos derivados de la misma pueden estimular el
crecimiento y la reparación de heridas por células epiteliales
estomacales e intestinales (así como renales) estás moléculas
gastroquina son candidatas para agentes terapéuticos para acelerar
la recuperación del tracto GI lesionado después de intervenciones
farmacológicas, radioterapia, o cirugía. Además, los anticuerpos
desarrollados contra gastroquinas pueden usarse en kits para medir
los niveles de proteína o péptido AMP-18 en tejido
sanguíneo en diversos estados patológicos. Estas nuevas moléculas
tienen gran potencial terapéutico en el tratamiento de úlceras
gástricas, y la enfermedad inflamatoria del intestino, mientras que
nuevos agentes que inhiben su función podrían mostrarse útiles en
el tratamiento de cánceres del tracto GI.
El estómago no es una localización favorable
para muchas bacterias, y aquellas que pueden sobrevivir a la acidez
no se establecen por sí mismas allí (Rotimi y col., 1990). Es
de interés, por lo tanto, que la región del antro es el sitio
favorecido para la unión, penetración y efectos citolíticos de
Helicobacter pylori, un agente que infecta una proporción
mayoritaria de la población humana (>60% en el intervalo de
setenta a ochenta años) y se ha asociado con gastritis, úlceras
gástricas y duodenales (Goodwin y col., 1986; Blaser, 1987)
y adenocarcinomas gástricos (Nomura y col., 1991; Parsonnet
y col., 1991). Por tanto, como factor de crecimiento de
células epiteliales, AMP-18 puede actuar mejorando
el daño causado por infiltración citolisis bacteriana. Dada la
conjunción de la expresión específica en el antro de
AMP-18 y el sitio preferido de unión de H.
pylori, es posible que las bacterias usen AMP-18
como factor trópico. H. pylori se une a células del antro
que tienen gránulos de mucina que contienen mucosa (Falk y
col., 1993; Baczako y col., 1995). Estos gránulos pueden
contener AMP-18. Se han encontrado péptidos
anti-microbianos en el estómago del anfibio
Xenopus laevis (Moore y col., 1991). Algunos dominios
de la estructura de AMP-18 se parecen a los de las
magaininas, y posiblemente AMP-18 interacciona con
bacterias entéricas.
Se usaron antisueros contra la proteína
AMP-18 humana para ayudar a la purificación de la
proteína de extractos de mucosa del antro de cerdo. Los
procedimientos de inmunoafinidad aplicados a extractos tisulares
totales no se han mostrado muy eficaces, pero usando
inmunotransferencias para controlar el fraccionamiento celular,
centrifugación en gradiente y electroforesis en gel se purificaron
cantidades suficientes del polipéptido de 18 kDa de cerdo para
confirmar por secuenciación que el extremo
N-terminal nativo es el predicho por escisión de 20
aminoácidos desde el extremo N-terminal de la ORF
precisamente en el sitio de alanina-aspartato
anticipado para la retirada del péptido señal. A pesar de la
abundancia de restos de asparagina en la proteína madura, ninguno
se ajusta a la característica de glicosilación del contexto
consenso. Regiones bastante extensas de la proteína pueden tener
propensión a formar hélices anfipáticas. Las últimas pueden
representar unidades dentro de la proteína que producen péptidos
bioactivos después del procesamiento. Usando dicroísmo circular se
induce fácilmente el péptido sintético que representa los
aminoácidos 126-143 en la secuencia de preAMP
humana (Fig. 3) para que se vuelva helicoide en concentraciones
moderadas de condiciones de trifluoroetanol usadas para evaluar la
propensión de hélices para algunos péptidos bioactivos, incluyendo
péptidos anti-microbianos del tipo magainina
(véase, por ejemplo, Park y col., 1997).
Se diseñó un ADNc que codifica
AMP-18 humana en el que se remplazó una secuencia de
péptido señal hidrófoba de 20 aminoácidos con un péptido de 12
aminoácidos N-terminal que incluía una extensión de
6 restos de histidina (Fig. 13, panel de la izquierda). Se predijo
que la expresión de esta secuencia de ADNc modificada producirá un
producto proteico de 177 aminoácidos (M_{r} 19, 653) que
podría purificarse fácilmente usando resina de
Ni-NTA para unirse a la marca His6. La secuencia de
ADNc que carece de la región que codifica el péptido señal
N-terminal (véase la Fig. 14) se amplificó por PCR
usando oligonucleótidos que proporcionaba enlazadores adecuados
para insertar el producto en el sitio BamH1 de una vector de
expresión QE30 (QIAGEN); se confirmó la secuencia del vector
recombinante. La AMP-18 humana recombinante (rh)
modificada con la marca His6 se expresó posteriormente en células
de E. coli. Para recolectarla, se lisaron las bacterias y
alícuotas de las fracciones soluble e insoluble se sometieron a
SDS-PAGE seguido de inmunotransferencia usando el
antisuero de conejo específico contra el precursor
rhAMP-18. Se detectó muy poco de la proteína
expresada en la fracción soluble del lisado.
Se empleó urea (6 M) para liberar las proteínas
de la fracción insoluble, solubilizar la rhAMP-18
que contiene la marca His6, y hacerla disponible para su unión a la
resina cargada con Ni^{2+} de la que se eluyó posteriormente con
un gradiente de imidazol (0 a 200 mM). La cantidad de
rhAMP-18 eluida se midió usando el ensayo de BCA, y
se confirmó la aparición de una única banda en el tamaño predicho de
19-20 kD por SDS-PAGE seguido de
inmunotransferencia. Para determinar si la rhAMP-18
eluida se renaturalizaba para asumir una estructura que fuera
mitogénica, se añadieron alícuotas del eluato (después de la
eliminación de urea e imidazol por diálisis) a cultivos de células
IEC-18 y se contó la cantidad de células 4 días
después. La Fig. 13 (panel de la derecha) indica que la proteína
recombinante estimula la proliferación celular al mismo grado máximo
que lo hace el péptido 77-97 de AMP mitogénico (o
extractos tisulares del antro solubles de cerdo mostrados en la Fig.
11), pero que lo hace a la concentración la mitad de la máxima un
orden de magnitud inferior que para el péptido
77-97. El péptido 77-97 de AMP se
refiere a la proteína madura; igual que el péptido
97-117 de la proteína precursora humana: Tabla 1.
Estas observaciones indican que está disponible la
AMP-18 humana recombinante biológicamente activa que
puede utilizarse en diversas situaciones clínicas. La potencia
mitogénica de rhAMP-18 está en el intervalo
nanomolar que se esperaría para un factor de crecimiento de células
gástricas nativo que participe en el mantenimiento y reparación del
estómago in vivo.
Para caracterizar la capacidad de células
gástricas e intestinales de responder a AMP-18, se
estudiaron células de adenocarcinoma gástrico AGS, cultivos
primarios de la mucosa del antro gástrico humano HAE transformados
con el antígeno T grande de SV40, células epiteliales del intestino
delgado diploides de rata de las líneas IEC-6 (Fig.
15) y IEC-18, células de carcinoma gástrico NCI
N-87, y células de adenocarcinoma gastroesofágico
SK-GT5; fibroblastos WI-38 humanos y
células HeLa sirvieron como líneas celulares de control no GI. La
mitogénesis se ensayó realizando recuentos celulares 3 a 4 días
después de exponer las células al agente de interés, tratando con
tripsina el cultivo para preparar células sencillas, y confirmando
esto mientras se cuentan en un hemocitómetro.
Los extractos del antro que contienen
AMP-18, péptido 77-97, o EGF
estimulaban cada uno el crecimiento de células AGS, y como se
esperaba, el antisuero de conejo contra la proteína precursora de
AMP-18 humana recombinante inhibía la actividad del
extracto del antro pero no del péptido 77-97 que
carece del epítope (Fig. 11). La estimulación del crecimiento por
el péptido 77-97 era aditiva con la de EGF. El
crecimiento de células AGS no se estimula por el péptido
77-97 mezclado o por el péptido
67-85, y el péptido 67-85 inhibe
completamente la estimulación del crecimiento por el péptido
58-99. Se usaron células HAE para ensayar si
AMP-18 puede ejercer un efecto sobre células
epiteliales que existen en el entorno local de su síntesis. Estas
células, proporcionadas por el Dr. Duane Smoot, Howard University
College of Medicine, no están completamente inmortalizadas y por lo
tanto tienen un número de pases limitado. La estimulación del
crecimiento de células HAE por el péptido 77-97 era
aparentemente aditivo con la de EGF (Fig. 16, panel de la
izquierda). El péptido AMP no solamente estimula el crecimiento
sino que también actuaba como un motógeno, provocando una migración
más rápida (restitución) de células en heridas por raspado hechas
en cultivos confluyentes. Esta potenciación de la restitución de
heridas también mostró elevada aditividad con EGF (Fig. 16 panel de
la derecha). Si hay sinergia o no, la aditividad observada apoya
que AMP-18 puede desempeñar una tarea importante en
el mantenimiento de un epitelio mucoso estomacal intacto, y en la
facilitación de su reparación después de una lesión. El crecimiento
de células IEC-6 diploides de rata también se
estimuló por extracto del antro, péptido 77-97, y
EGF, aunque el péptido parecía un mitógeno más potente que EGF
(Fig. 15). Se detectó una estimulación del crecimiento casi máxima
a una concentración de péptido AMP de 0,5 \mug/ml (0,23 \muM)
(Fig. 15, panel central), un valor mucho más bajo que la
concentración necesaria para péptidos trébol (1 \mug/\mul)
(\sim150 \muM) o la \alpha-defensina,
criptidina 3 (660 \mum/ml) (\sim140 \muM) para ejercer sus
efectos en cultivo. El efecto mitogénico máximo de
rhAMP-18 sobre células IEC-18 se ha
observado a 5 nanomolar (Fig. 18). El efecto mitogénico del péptido
77-97 se corroboró midiendo la incorporación de
[^{3}H]-timidina en el ADN de células
IEC-6 que se estimuló en un 68% (P<0,001) de
16.668 \pm 616 a 28.036 \pm 882 por el péptido. La estimulación
de heridas fue comparable a EGF, y aparentemente aditiva con ella.
El péptido 77-97 mezclado NO estimulaba el
crecimiento de células IEC-18 o células
BSC-1 a concentraciones de hasta 8 \mug/ml. El
crecimiento de células NCI N-87 gástricas y células
SK-GT5 gástricas también se estimuló por el péptido
77-97, el extracto del antro, o EGF de una manera
dependiente de la concentración. Antisuero contra
AMP-18 bloqueaba el efecto mitogénico del extracto
del antro, o EGF de una manera dependiente de la concentración.
Antisuero contra AMP-18 bloqueaba el efecto
mitogénico del extracto del antro sobre estas dos líneas de células
epiteliales gástricas, pero no los efectos proliferativos del
péptido 77-97 o EGF. Suero preinmune no tuvo efecto
sobre el crecimiento. Estos resultados sugieren que
AMP-18 y sus derivados peptídicos podrían funcionar
in vivo estimulando el crecimiento y la restitución durante
la reparación después de una lesión. El crecimiento de células
fibroblásticas (WI-38) o epidermoides (HeLa)
humanas a concentraciones de hasta S \mug/ml, lo que sugiere que
su efecto mitogénico es relativamente específico de células
epiteliales. El péptido 77-97 de AMP no estimula el
crecimiento.
Para obtener información adicional acerca de la
interacción entre péptidos AMP y su(s) sitio(s) de
unión sobre la superficie celular, se estudiaron células
IEC-18 de rata no transformadas. Aumentando
progresivamente la concentración del péptido 67-85
no mitogénico se bloquea la estimulación del crecimiento por el
péptido 58-99 si este oligómero de 42 unidades
mitogénico ejerce su efecto por un mecanismo mediado por receptor.
El péptido 58-99 estimulaba un aumento en la
cantidad de células del 407% en comparación con el 290% por el
vehículo en un ensayo de 3 días. Según se elevaba la concentración
de péptido 67-85 progresivamente hasta \sim0,1
\mug/ml, casi se suprimía el efecto estimulador del crecimiento
del péptido 58-99 (Fig. 17). Este resultado
sugiere que los dos péptidos compiten por el mismo sitio de
"receptor" superficial.
Estudios en curso revelan que antisuero de
conejo contra el precursor de AMP-18 reconoce
rhAMP-18 en inmunotransferencias. El antisuero
también bloquea el efecto mitogénico de extractos de tejido antral
porcino (Fig. 11) y el péptido 58-99 de AMP, e
inmunolocaliza AMP-18 en células de tejido antral
gástrico humano y murino. La Fig. 18 muestra que el antisuero
neutraliza el efecto mitogénico de rhAMP-18 en
cultivos confluyentes de células IEC-18, extendiendo
de este modo su utilidad para estudiar la proteína recombinante así
como la nativa.
Usando células epiteliales GI, los resultados
sugieren que el efecto citoprotector de rhAMP-18
puede estar mediado por su capacidad de facilitar la acumulación de
proteínas de uniones fuertes (TJ), y que es un potente mitógeno.
Los resultados también insinúan que el péptido 77-97
de AMP es un sustituto apropiado para rhAMP-18,
aunque el péptido requiere una concentración relativamente más
elevada para ejercer sus efectos fisiológicos (Fig. 13).
Para mejorar la producción de
rhAMP-18, se usa un cóctel inhibidor de proteasa
libre de EDTA, se añade lisozima para digerir los desechos
celulares de E. coli, y se eluye la proteína recombinante de
las perlas de Ni^{2+} con imidazol 1 M.
Los datos presentados en la Fig. 19 se
obtuvieron después de 24 a 48 h de exposición a péptido AMP, tiempos
anteriores puede detectarse un efecto mitogénico por un aumento en
la cantidad de células. Los resultados indican que el péptido AMP
estimula la restitución en células derivadas de adenocarcinoma
gástrico humano heridas por raspado de la línea HAE, y en células
intestinales de rata no transformadas de la línea
IEC-18. Por tanto, el péptido AMP estimula
rápidamente la restitución de células epiteliales gástricas e
intestinales en cultivo, y supuestamente podría acelerar el
recubrimiento de la mucosa gástrica lesionada in vivo.
Para obtener evidencias de que los efectos
fisiológicos de AMP-18 son específicos y están
mediados por receptor, se ensayó el péptido AMP para ver si induce
la fosforilación de tirosina en células epiteliales GI.
Se trataron células IEC-18 con
péptido 77-97 de AMP a una concentración que
previamente había mostrado estar en exceso de la requerida para una
estimulación máxima del crecimiento durante diferentes periodos de
tiempo de hasta 60 min. Las células después se lisaron, se extrajo
la proteína y se separó en geles de
SDS-poliacrilamida, se transfirió, y se sondeó la
transferencia con anticuerpo monoclonal
anti-fosfotirosina 4G10. La transferencia mostró
que la exposición de células a péptido AMP (8 \mug/ml) provoca la
fosforilación de tirosina de varias proteínas después de dos
minutos, incluyendo las que tienen masas moleculares de 42 y 55 kDa,
lo que sugiere una tarea para ERK1 y ERK2 activados en la
señalización de AMP-18. Hubo una disminución en el
grado de fosforilación de tirosina de varias de las proteínas
después de 5 min., y persistencia de otras durante hasta 60 min.
El péptido AMP y supuestamente
AMP-18 pueden señalizar sus efectos mitogénicos,
motogénicos, y citoprotectores mediante un receptor de superficie
celular, y posiblemente estimulan la fosforilación de tirosina de
proteínas celulares específicas.
El mantenimiento de la función de barrera es
esencial para prevenir la entrada de antígenos extraños y bacterias
desde la luz gástrica, y para otras funciones tales como el
transporte vectorial de electrolitos, agua y nutrientes. Actuando
en solitario o junto con otros agentes, AMP-18 puede
mediar el rápido retorno de la función de barrera después de una
lesión de la mucosa. Para determinar si el péptido
77-97 de AMP podría facilitar el desarrollo de la
función de barrera, y pudiera servir también como agente
citoprotector para prevenir la pérdida de función cuando
metabolitos de oxígeno reactivo, indometacina, o sulfato sódico de
dextrano (DSS), aumentan la permeabilidad de la mucosa y
comprometen la integridad celular necesitaba mantener las uniones
fuertes epiteliales. Se usaron líneas celulares que se sabe que
desarrollan valores relativamente elevados para la RTE como marcador
de uniones fuertes epiteliales. Inicialmente, el péptido
77-97 modula la maduración de la RTE en cultivos en
monocapa de células MDCK no transformadas bien caracterizadas. La
Fig. 20 muestra que la exposición al péptido aumenta la RTE en la
monocapa en 24 h, y a un grado mayor después de ello. Esta
observación sugiere que AMP-18 o el péptido AMP
podría acelerar la recuperación del epitelio GI después de una
lesión, y potenciar el desarrollo de la función de barrera.
Para determinar si el péptido AMP protege la
función de barrera en un modelo de cultivo tisular de lesión
oxidante de la mucosa, monocapas celulares se sometieron a lesión
por metabolitos de oxígeno reactivo usando monocloramina. Los
resultados de la Fig. 21 (panel A) indican que después de 60 min. de
exposición a monocloramina, las células MDCK tratadas con vehículo
o EGF muestran una pérdida sustancial de la RTE, mientras que la RTE
de cultivos tratados con péptido 77-97 es similar a
monocapas no lesionadas. Estos resultados son de interés
considerable porque sugieren que el péptido AMP pero no EGF es
citoprotector bajo esta serie de condiciones, mientras que se había
descubierto previamente que estas dos moléculas eran equivalentes y
mitógenos y motógenos aditivos para células epiteliales gástricas e
intestinales. El efecto citoprotector del péptido
77-97 también era evidente en células Caco2/bbe
(C2) derivadas de una línea de adenocarcinoma colónico humano en el
entorno de lesión oxidante (Fig. 22, panel B) o mediada por
indometacina (panel C).
Para evaluar la capacidad potencial del péptido
AMP para ejercer un efecto citoprotector en colitis in vivo,
se añadió una solución de sulfato sódico de dextrano (DSS) al medio
de cultivo de monocapas de células C2 usadas como modelo de
epitelio colónico. La lesión mediada por DSS de la función de
barrera se cuantificó midiendo la RTE en estos cultivos en
monocapa. La Fig. 22 indica que el DSS (4%) reducía la RTE hasta
\sim30% del valor de control después de 45 min., y que el péptido
AMP era citoprotector. Esta observación proporciona un fuerte
fundamento fisiológico para evaluar el péptido AMP como agente
terapéutico en el modelo murino de colitis mediada por DSS.
Para determinar si el péptido AMP podría
acelerar la recuperación de la RTE después de una lesión de las
células colónicas inducida por DSS, una característica funcional
muy codiciada de un agente diseñado para tratar la IBD, se
expusieron monocapas de células C2 a DSS (5%) durante 10 min. lo que
redujo la RTE hasta el 33 \pm 6% del valor de control. Se retiró
el DSS aspirando el medio y remplazándolo con medio fresco. Se
añadió péptido 77-97 de AMP (8 \mug/ml) o
vehículo al medio de cultivo, y se midió la RTE 18 h después. En
presencia del vehículo, la RTE aumentó del 33% al 66 \pm 7% del
valor de control, mientras que las células expuestas al péptido AMP
alcanzaron un valor del 112 \pm 4% del control. Los resultados
saludables en un modelo de cultivo tisular de colitis mediada por
DSS sugieren que el péptido AMP puede acelerar la recuperación de la
función de barrera en el epitelio colónico lesionado in
vivo.
La Fig. 21B muestra que el péptido
77-97 de AMP atenúa la caída en la resistencia
transepitelial eléctrica (RTE) en células Caco2/bbe (C2) después de
lesión oxidante. Para descubrir cómo el péptido ejerce su efecto
citoprotector, monocapas celulares C2 se trataron con péptido AMP, y
se indujo una lesión oxidante con monocloramina 18 horas después.
Se comprobaron los cambios en los niveles de proteínas de uniones
fuertes (TJ) específicas. Las células se lisaron, y se estudiaron
las proteínas de la fracción insoluble/particulada por
inmunotransferencia. La Fig. 23 muestra que hay más
ZO-1 y ocludina inmunorreactivas en células tratadas
con péptido AMP que en células tratadas con vehículo a tiempo 0, y
durante 60 minutos después de la lesión inducida por oxidante, lo
que sugiere que la mayor abundancia de estas proteínas TJ atenúa de
este modo la pérdida de la RTE en la monocapa y conserva su función
de barrera. Estas observaciones insinúan que el péptido AMP
potenciaba la acumulación de proteínas TJ durante las 18 horas
antes de que las células se sometieran a lesión oxidante. Se
estudiaron células no lesionadas y mostraron que el péptido AMP (o
rhAMP-18) aumentaba rápidamente la cantidad de
ZO-1 y ocludina inmunorreactiva en comparación con
células no tratadas (Fig. 24). Estos cambios parecen relativamente
específicos para ZO-1 y ocludina ya que no se
observaron para
otras proteínas TJ diversas (ZO-2, claudina-1, claudina-2, claudina-5), o la proteína de choque por calor (HSC) 73.
otras proteínas TJ diversas (ZO-2, claudina-1, claudina-2, claudina-5), o la proteína de choque por calor (HSC) 73.
Se preparó una cantidad suficiente de
rhAMP-18 purificada para ensayar si
rhAMP-18 era citoprotectora en comparación con el
péptido 77-87 de AMP que atenuaba la caída en la
resistencia transepitelial eléctrica (RTE) en células Caco2/bbe
(C2) después de lesión oxidante mediada por monocloramina (Fig.
21B). La Fig. 25 muestra que la exposición a monocloramina reduce
la RTE en \sim35% a 45 min., mientras que células
pre-tratadas con rhAMP-18 o péptido
77-97 mostraban una disminución solamente de
\sim10% en la RTE. La Fig. 26 indica que el tratamiento de
células C2 con rhAMP-18 durante 8 h aumenta la
cantidad de ZO-1 y ocludina inmunorreactivas en
comparación con células tratadas con vehículo. Estos resultados
sugieren que AMP-18 podría mediar su efecto
citoprotector potenciado la acumulación de proteínas TJ específicas
y de este modo conservar la función de barrera a lo largo del
tracto GI después de una lesión de la mucosa.
Para evaluar la eficacia terapéutica del péptido
AMP, se indujo colitis por DSS en ratones macho C57/BL6 dando a los
animales (de 12-15 g cada uno) DSS al 3%
(M_{r} 36-44 kDa) en el agua bebible. Se
hallaron evidencias de colitis (sangre en las deposiciones) tan
pronto como el día 1 (Fig. 27, panel de la izquierda), y en todos
los animales en el día 4. El péptido AMP, administrado diariamente
por inyección subcutánea (s.c.), retardaba la aparición de
deposiciones positivas a hemocultivo, y también reducía el grado de
pérdida de peso (Fig. 27, panel de la derecha). Estos hallazgos
positivos apoyan al péptido AMP como un agente terapéutico útil en
colitis y otras enfermedades que lesionan la superficie mucosa del
tracto GI.
La síntesis de AMP-18 está
confinada a las células epiteliales del revestimiento de la mucosa
luminal del antro gástrico de seres humanos y otros mamíferos.
Dentro de las células la proteína se co-localiza con
las mucinas en gránulos de secreción, y parece secretarse en el
moco superpuesto en la membrana plasmática apical. La
AMP-18 humana recombinante preparada en E.
coli ejerce su efecto mitogénico a una concentración un orden
de magnitud inferior que péptidos promotores del crecimiento
derivados del centro de la proteína madura. El péptido
77-97, el péptido mitogénico más potente, es
específico de secuencia de aminoácidos, y parece ser específico del
tipo celular ya que no estimula el crecimiento de fibroblastos o
células HeLa. La mitogénesis por péptidos AMP específicos parece
estar mediada por un receptor de superficie celular porque ciertos
péptidos que no son mitógenos activos pueden inhibir de forma
competitiva, de una manera dependiente de la concentración, los
efectos estimuladores del crecimiento del péptido
58-99 y extractos celulares del antro. La
AMP-18 y sus péptidos derivados muestran diversos
efectos sobre células epiteliales estomacales e intestinales lo que
sugiere que podrían desempeñar una tarea crítica en la reparación
después de una lesión de la mucosa gástrica. Estos incluyen
citoprotección, mitogénesis, restitución, y maduración de la función
de barrera después de una lesión mediada por oxidante, DSS, y/o
indometacina. Los posibles mecanismos por los que
AMP-18 o sus derivados peptídicos median sus
efectos pleiotrópicos incluyen la estimulación de la actividad
tirosina quinasa de proteínas, la prolongación de la expresión de
la proteína de choque por calor después de estrés celular, y/o la
acumulación potenciada de las proteínas asociadas a uniones fuertes
ZO-1 y ocludina. Ciertos de estos efectos
fisiológicos pueden suceder a concentraciones que son relativamente
bajas para rhAMP-18 (<50 nM) en comparación con
las concentraciones de otros mediadores peptídicos gástricos tales
como péptidos trébol o la \alpha-defensina,
criptidina 3 (>100 \muM). La AMP-18
inmunorreactiva se libera aparentemente por células del antro de
ratón después de alimentación forzada con indometacina, y por
células del antro canino en cultivo primario expuesto a forskolina,
lo que sugiere que la proteína está sometida a regulación. La
AMP-18 probablemente desempeña una tarea en
procesos fisiológicos y patológicos tales como la curación de
heridas en el epitelio de la mucosa gástrica in vivo. La
capacidad del péptido AMP de retardar la aparición de deposiciones
sanguinolentas en el modelo de ratón de colitis por DSS, y de
reducir el grado de pérdida de peso sugiere eficacia terapéutica en
diversas enfermedades que lesionan la mucosa del tracto GI
(enfermedad inflamatoria del intestino, úlcera gástrica, y
similares).
Se aislaron clones de ADNc para el péptido
gastrointestinal (GI) gastrina, que regula la secreción de ácido
gástrico así como el crecimiento de células mucosas y pancreáticas
(Yoo y col., 1982). A partir de estas exploraciones se
encontraron otros ARNm diversos expresados de forma relativamente
específica en el antro del estómago. La fase de lectura abierta
(ORF) en uno de estos ARN estaba altamente conservada entre el cerdo
y el hombre, y predecía una nueva proteína conservada de función no
inmediatamente evidente. Usando anticuerpos específicos, se
demostró que están presentes especies proteicas similares en el la
mucosa del antro del estómago de todos los mamíferos ensayados.
Existe especificidad tisular de la expresión de estas secuencias y
están aparentemente presentes de forma ubicua en la mucosa del
antro de especies de mamíferos.
El aislamiento de los clones de ADNc se predijo
en una expresión preferencial en la mucosa del antro del estómago y
esto se ha confirmado inicialmente por hibridación de transferencia
Northern de ARN de diversos tejidos sondeados con las secuencias de
ADNc y posteriormente por análisis de proteínas. Las transferencias
de Northern mostraron la especificidad de la expresión del ARNm
dentro del tracto gastrointestinal del cerdo. La expresión más
elevada de ARNm estaba en la mucosa del antro, cantidades variables
en la mucosa del cuerpo adyacente y niveles indetectables en el
fondo, esófago y duodeno. El tejido no mucoso del antro y el cuerpo
contenían poco ARN que reaccionaba con la sonda de ADNc.
La fase de lectura abiertas (ORF) de los clones
de ADNc humanos y de cerdo predicen proteínas de peso molecular
(PM) relativamente bajo muy similar, que no tienen homólogos
cercanos a proteínas conocidas en las bases de datos informatizadas
y por lo tanto dan poca indicación de la posible función. Como
procedimiento para estudiar el papel biológico de las presuntivas
proteínas, se expresaron las secuencias de ADNc completas en E.
coli, usando un vector que también codificaba una marca His6
N-terminal. Desafortunadamente, expresados en
bacterias los productos polipeptídicos son insolubles y no son
fácilmente susceptibles a estudios bioquímicos. Sin embargo, el
producto bacteriano del ADNc humano se separó en geles de dodecil
sulfato sódico (SDS) usado como inmunógeno en conejos para producir
antisueros. Los sueros se exploraron contra extractos proteicos de
tejido antral de varias especies de mamíferos. Este procedimiento
ha producido exitosamente varios antisueros de bajo fondo, de
elevado título capaces de reconocer tanto el inmunógeno como
proteínas de aproximadamente 18 kDa expresadas en el antro de los
mamíferos ensayados. La proteína expresada en bacterias migra más
lentamente porque contiene la secuencia del péptido señal así como
una marca His6. Los sueros preinmunes no mostraron reactividad
significativa a 18 kDa. La reactividad cruzada de los antisueros
creados contra la proteína expresada a partir del clon de ADNc
humano con proteínas de PM muy similar en extractos de antro de una
diversidad de mamíferos (cerdo, cabra, oveja, rata y ratón; la
última migra consecuentemente ligeramente más rápidamente en geles
de SDS) apoya el nivel de conservación de la secuencia de
aminoácidos predicha por comparación de las ORF de los ADNc humano
y de cerdo (véase la Fig. 10). En posteriores experimentos, se
produjo AMP-18 humana con un péptido señal en
bacterias.
Los sueros preinmunes dan reacciones
insignificativas en transferencias de Western de todos los extractos
tisulares, mientras que los dos sueros inmunes (a dilución hasta
1:50000) dan ambos bandas mayoritarias de 18-20 kDa
solamente, y solamente en extractos del antro del estómago, y a un
grado menor en los extractos del cuerpo adyacente. Los sueros se
crearon contra proteína expresada en bacterias de modo que no hay
posibilidad de otros inmunógenos exógenos de origen animal.
Como se determina por inmunotransferencias, la
especificidad de expresión al antro es incluso mayor que la que
sugerirían las transferencias de Northern, y la fuerza de la señal
de los extractos del antro implica una abundancia relativamente
elevada de la proteína, aunque no se hicieron estimaciones
cuantitativas. No se detectó antígeno significativo en tejidos no
estomacales ensayados.
La inmunohistoquímica mostró tinción
insignificativa de tejido antral por ambos sueros preinmunes,
mientras que ambos sueros inmunes tiñeron las células de la mucosa
superficial muy fuertemente a diluciones considerables. Los sueros
preinmunes no condujeron a inmunotinción con oro en el estudio de
microscopía inmunoelectrónica. La actividad de factor de
crecimiento de extractos del antro se inhibe por ambos sueros
inmunes, pero no por ambos sueros preinmunes. Finalmente, los
resultados con un péptido sintético, que tiene actividad de factor
de crecimiento, se inhibe por los sueros inmunes pero no los
preinmunes, y porta epítopes reconocidos por los sueros inmunes
pero no los preinmunes, confirman adicionalmente la especificidad de
estos reactivos.
Se sometió a electroforesis el ARN total, se
transfirió a una membrana y se hibridó con una sonda de ADNc de
AMP-18 de cerdo marcada. La fuente de la muestra de
ARN para cada carril era: 1. Duodeno distal; 2. Duodeno proximal;
3. Antro; 4. Cuerpo adyacente; 5. Fondo; 6. Esófago. Se cargaron
cantidades iguales de ARN. La señal del ARN del cuerpo adyacente
del antro era variable. Los marcadores de tamaño (nucleótidos) se
procesaron en el mismo gel para comparación.
Se disolvieron las proteínas tisulares completas
en tampón SDS, se sometieron a electroforesis, y se transfirieron a
membranas que se hicieron reaccionar con suero inmune (1:50000). Se
detectaron moléculas de anticuerpo unidas usando anticuerpo
anti-conejo marcado con peroxidasa. El suero
preinmune no daba tinción específica de transferencias paralelas a
dilución 1:200. Carriles: 1, 6, 13, 17 contenían marcadores. 2
Células HeLa. 3 Células TLT de ratón. 4 Proteína humana expresada +
células HELA. 7 Cuerpo de ratón. 8 Antro de ratón. 9 Duodeno de
ratón. 10 Intestino de ratón. 11 Hígado de ratón. 12 Proteína
humana expresada + células TLT. 14 Antro de ratón. 15 Cerebro de
ratón. 16 Riñón de ratón. 18 Antro de cerdo. 19 Antro de ratón.
Las inmunotransferencias de geles de acrilamida
de elevado porcentaje mostraron que los antisueros reconocían
epítopes en el péptido sintético 78-119. La reacción
del péptido 78-119 con los anticuerpos no era
inesperada porque se predijo que esta región de la secuencia se
exponía sobre la superficie de la proteína y era antigénica. Esto
no solamente confirma adicionalmente la creencia de que
AMP-18 o su precursor inmediato, es un factor de
crecimiento, para células epiteliales, sino que también proporciona
una base para el análisis de las regiones bioactivas (y
antigénicas) de AMP-18, y una herramienta para la
evaluación de la cantidad e identidad de receptores celulares. La
síntesis química de péptidos también hace que esté disponible una
fuente práctica y rápida de cantidades considerables de reactivos
puros "de tipo silvestre" y "mutantes" para estudios
celulares adicionales. El péptido sintético 78-119
aparentemente actúa por el mismo mecanismo que la proteína del
antro, porque sus efectos máximos no son aditivos.
Las secuencias de aminoácidos predichas para ser
humano y cerdo son idénticas al 76%. Los péptidos señal predichos
no están señalados; el extremo N-terminal de AMP de
cerdo nativa ha demostrado ser aspartato (Fig. 10).
Las ORF de los ADNc de ser humano y cerdo
predecían polipéptidos de estructura general similar (Fig. 10). Los
pesos moleculares predichos para las proteínas humana y de cerdo por
lo demás sin modificar eran 18,3 y 18,0 respectivamente; estos
valores están de acuerdo con la movilidad electroforética en SDS de
las proteínas del antro que reaccionan con los antisueros de la
presente invención.
Los antisueros se usaron para ayudar en la
purificación de la proteína de los extractos de la mucosa del antro
de cerdo. Los procedimientos de inmunoafinidad aplicados a extractos
tisulares totales no se han mostrado muy eficaces, pero usando
inmunotransferencias para controlar el fraccionamiento celular,
centrifugación en gradiente y electroforesis en gel se purificaron
cantidades suficientes del polipéptido de 18 kDa de cerdo para
confirmar por secuenciación que el extremo
N-terminal nativo es uno predicho por escisión de
aproximadamente 20 aminoácidos desde el extremo
N-terminal de la ORF precisamente en el sitio de
alanina-aspartato anticipado para la eliminación
del péptido señal. A pesar de la abundancia de restos de asparagina,
ninguno encaja en el contexto consenso para la glicosilación.
Regiones bastante extensas pueden tener tendencia a formar hélices
anfipáticas. Esto último puede representar unidades dentro de la
proteína o como péptidos después del procesamiento. Usando
dicroísmo circular se induce fácilmente que el péptido sintético que
representa los aminoácidos 126-143 en la secuencia
de preAMP human (Fig. 3) llegue a ser helicoide en concentraciones
moderadas de condiciones de trifuoroetanol usadas para evaluar la
tendencia helicoide para algunos péptidos bioactivos, incluyendo
péptidos anti-microbianos del tipo magainina (véase,
por ejemplo, Park y col., 1997).
Los antisueros contra AMP-18 han
demostrado ser excelentes sondas histoquímicas, que reaccionan
fuertemente con secciones de la región del antro de ratón pero no
con el fondo, el duodeno o el intestino, confirmando los resultados
de las inmunotransferencias. Los sueros preinmune dan reacciones
insignificantes incluso a una concentración mucho mayor. La
proteína AMP-18 parece concentrarse en células
epiteliales de la mucosa que revisten la luz del estómago, aunque
señales menores en células más profundas en el tejido y a lo largo
de las regiones de cripta superior sugieren que las células pueden
comenzar a expresar la proteína según migran hacia la capa luminal.
Un aumento mayor de las preparaciones histoquímicas indica solamente
una tinción citoplasmática general a este nivel de resolución; hay
algunos parches de tinción intensa que pueden ser el equivalente al
microscopio óptico de regiones de gránulos empaquetados de algunas
células de la superficie luminal observadas al microcopio
electrónico (ME). La localización de AMP-18 en la
mucosa de antro es por lo tanto muy diferente de aquellas células
que sintetizan gastrina que están profundas en la capa mucosa.
\vskip1.000000\baselineskip
Los trozos de tejido se fijaron en formaldehído
al 4% y se procesaron para impregnarlos en Unycril. Se hicieron
reaccionar secciones delgadas con antisueros de conejo
anti-AMP-18 humana (1:200); los
anticuerpos unidos se detectaron por Proteína-A
conjugada a oro coloidal de 10 nm. Las secciones que reaccionaron se
tiñeron con citrato de plomo antes de visualizarlas (20.000x). Las
partículas de oro son visibles sobre los gránulos de secreción
semi-translúcidos, que parecen mucho más
translúcidos aquí que en el procedimiento convencional de
glutaraldehído-osmio-epon (11.400x)
a causa de los requisitos para la inmunorreactividad. Se observó un
fondo insignificante en otras estructuras citoplasmáticas.
La estructura general de la proteína implica una
posible tarea secretora de modo que sería valiosa una localización
intracelular precisa. Esto requiere procedimientos de ME
inmunocitoquímica. Procedimientos de impregnación y tinción
convencionales revelan que, como se ha informado previamente por
muchos otros, la región del antro (por ejemplo, Johnson y McMinn,
1970) contiene células epiteliales de la mucosa que son muy ricas en
gránulos secretores. Los datos preliminares de
inmuno-ME muestran que los sueros inmunes usados a
dilución 1:200-1:800 reaccionan específicamente con
los gránulos de secreción. Los últimos parecen algo hinchados y
menos opacos a los electrones que en condiciones de fijación
convencionales y las diferencias en la densidad son más difíciles
de discernir, pero globalmente la estructura celular está bastante
bien conservados para tejido estomacal fijado e impregnado en las
condiciones menos rigurosas requeridas para conservar la
inmunorreactividad. A dilución 1:100, los sueros preinmunes
mostraban fondos insignificantes sin preferencia por los gránulos de
secreción.
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Una función de AMP-18 es que es
un factor de crecimiento al menos parcialmente responsable del
mantenimiento de un epitelio de la mucosa funcional en el antro
pilórico y posiblemente en otras partes del estómago. Inicialmente,
no estaban inmediatamente disponibles líneas de células epiteliales
del estómago, pero se usaron sistemas de células epiteliales
renales (Kartha y col., 1992; Aithal y col., 1994;
Lieske y col., 1994). Se usó un extracto celular de la
mucosa del antro fraccionado para estos experimentos. Usando
inmunotransferencia como sonda para seguir el fraccionamiento,
sobre la lisis de las células de la mucosa raspadas de antro de
cerdo o ratón, se recuperó el antígeno AMP-18 en la
fracción 35S en gradientes de densidad de sacarosa. Dichas
fracciones sobrenadantes de alta velocidad sirvieron como material
de partida para estudios sobre el crecimiento celular.
Inesperadamente, estos extractos estimulaban un aumento del 50% en
células epiteliales renales confluyentes de mono (células
BSC-1), pero no tenían efecto sobre células HeLa o
fibroblastos WI-38. La estimulación de células
BSC-1 era al menos tan eficaz como la observada con
diversos mitógenos polipeptídicos, incluyendo EGF,
IGF-I, aFGF, bFGF y vasopresina, ensayados a sus
concentraciones óptimas. Se observó una estimulación del
crecimiento comparable por los extractos del antro cuando se
evaluaba la síntesis de ADN midiendo la incorporación de
[^{3}H]-timidina en material insoluble en ácido.
La actividad biológica de los extractos del antro sobrevivió al
calor durante 5 minutos a 65ºC, y a diálisis usando una membrana con
punto de corte M_{r} de 10 kDa, que eliminaría la mayoría de los
oligopéptidos; este tratamiento elimina el 60-70%
del material polipeptídico, pero deja la AMP-18
ensayada por inmunotransferencias. De forma más importante, la
estimulación mitogénica de células BSC-1 por el
extracto del antro de ratón o de cerdo se inhibía cuando se añadía
cualquiera de los dos diferentes antisueros contra la
preAMP-18 humana recombinante (expresada en
bacterias) al medio de cultivo. Los sueros preinmunes (1:100 a
1:800) no tenían efecto sobre el crecimiento celular, ni alteraban
el efecto mitogénico de los extractos del antro. Estas
observaciones sugieren que la AMP-18 de células de
la mucosa gástrica funciona como un potente mitógeno para células
epiteliales renales, que no expresan normalmente esta
proteína.
proteína.
Para obtener evidencias adicionales de que la
actividad promotora del crecimiento en los extractos del antro
parcialmente fraccionados estaba mediada por la proteína
AMP-18, una alícuota del extracto de ratón se
sometió a electroforesis en gel de
SDS-poliacrilamida; el procedimiento usado
previamente para determinar la secuencia N-terminal
de la proteína natural. El gel se cortó en trozos de 2 mm y cada
trozo se extrajo con acetonitrilo al 3% en solución salina
tamponada con fosfato que contenía BSA al 1%. Los sobrenadantes del
extracto se ensayaron para la actividad mitogénica. Los resultados
indicaron que un trozo que contenía proteína en el intervalo de
16-19 kDa tenía actividad promotora del crecimiento.
De forma significativa, esta respuesta de crecimiento se bloqueaba
por los sueros inmunes pero no por los preinmunes. Tomados junto con
la velocidad relativamente baja de la proteína, estos hallazgos
proporcionan evidencias adicionales que apoyan la conclusión de que
AMP-18 es un mitógeno de células epiteliales y que
funciona como un monómero o posiblemente un dímero homotípico.
También implica que la estructura de la proteína es tal que puede
readquirir fácilmente una conformación nativa después de las
condiciones desnaturalizantes de la electroforesis en gel de
SDS.
Para evaluar la interacción de la actividad de
factor de crecimiento del antro con otras citoquinas, se ensayó su
actividad para determinar si era aditiva con EGF en cultivos de
células epiteliales. El EGF (50 ng/ml) añadido con extracto de
antro de ratón sin tratar (10 \mug/ml), o extracto de cerdo
dializado, calentado (10 \mug/ml) mostraba estimulación aditiva
de la mitogénesis; un aumento de hasta el 74% en la cantidad de
células por encima del nivel quiescente; la mayor estimulación
observada hasta ahora para cualquier factor usando el ensayo de
células BSC-1. Un ejemplo de esta aditividad se
muestra para un péptido AMP y EGF sobre células AGS en la Fig. 11.
Esta observación sugiere que AMP-18 y EGF inician la
proliferación actuando sobre diferentes receptores de superficie
celular. También implica que la actividad de factor de crecimiento
de AMP-18 puede colaborar normalmente con otros
factores autocrinos y paracrinos en el mantenimiento o restitución
del epitelio. En vista de los resultados con EGF, es probable que
AMP-18 se secrete en y actúe sobre la cara apical
(es decir, la cara luminal del estómago) de la capa de células
epiteliales mientras que otros factores (para los que EGF puede
servir como ejemplo) actúan desde la superficie basal.
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Las actividades de péptidos sintéticos de la
presente invención son inesperadas. Se sintetizaron péptidos
basados en la ORF de péptidos de clones de ADNc humano en la
University of Chicago Cancer Center Peptide Core Facility, que
comprueba la secuencia y los espectros de masas de los productos.
Los péptidos se purificaron adicionalmente por HPLC. Se analizaron
cinco oligopéptidos relativamente grandes (de aproximadamente 40
aminoácidos cada uno) que abarcan aproximadamente la longitud de la
proteína sin incluir el péptido señal. Un péptido de 42 aminoácidos
de longitud que abarca los aminoácidos lys-78 a
leu-119 de la secuencia de pre-AMP
(péptido 58-99 de la forma madurada de la proteína;
véase la Tabla 1), que incluye una hélice y un giro
glicina-prolina (GP) predichos, dio buena actividad
mitogénica. Esta respuesta se bloqueó por el antisuero específico,
pero no por los sueros preinmunes.
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Tabla
1
Un dominio mitogénico de 14 aminoácidos está en
negrita. *Los péptidos se identifican por su posición en la
secuencia de aminoácidos de la pre-gastroquina
(preAMP-18). NºAA; cantidad de aminoácidos en un
péptido. K_{1/2}; concentración para estimulación del crecimiento
la mitad de la máxima.
Péptidos inactivos solapantes pueden inhibir la
actividad de los péptidos mitogénicos: es decir, los péptidos
78-88 y 87-105 humanos bloquean la
actividad del péptido 78-119, y aunque el péptido
87-105 bloquea la actividad del péptido
104-117, el péptido 78-88 no. Los
péptidos 78-88 y 87-105 bloquean la
actividad de la proteína en extractos estomacales.
El hallazgo de que un péptido de 42 aminoácidos
que representa una región central de la nueva proteína celular de
la mucosa del antro AMP-18 tenía actividad
mitogénica similar en carácter a la de la proteína intacta en
extractos de antro de cerdo y ratón (Tabla 1), ha facilitado la
caracterización de la región bioactiva de la molécula. Un péptido
que incluye los aminoácidos en las posiciones
78-119, dio estimulación máxima similar del
crecimiento de la línea de células epiteliales BSC-1
a la dada por los extractos tisulares y se inhibía de forma similar
por varios antisueros diferentes creados en conejos contra la
proteína del antro completa expresada en bacterias. La actividad
mitogénica de varios péptidos de "deleción" sintéticos
relacionados con el péptido "78-119" se resume
en la Tabla 1. Las determinaciones de actividad de crecimiento se
han conseguido hasta ahora con la línea de células epiteliales
renales así como varias líneas gástricas e intestinales.
La secuencia de 42 aminoácidos original del
péptido 78-119 se rompió en tres segmentos unidos
por restos de lisina (K); del extremo N-terminal al
C-terminal estos son péptidos con aminoácidos en las
posiciones 78-88, 87-105 y
104-117. De estos solamente el péptido
104-117 tenía actividad mitogénica que da una meseta
similar de estimulación del crecimiento pero que requiere una
concentración molar más elevada que el péptido
"78-119" original; esto se refleja en el valor
de K_{1/2} mayor, que sugiere que el péptido de 14 aminoácidos
tiene un 30-40% de la actividad del péptido de 42
aminoácidos. Una conclusión de esto es que el péptido más pequeño
tiene menos afinidad de unión por el receptor celular, quizá debido
a una capacidad reducida de formar la conformación correcta, o como
alternativa debido a la pérdida de regiones de unión
complementarias. La última idea está apoyada por las observaciones
de que los péptidos "78-88" y
"87-105" pueden antagonizar la actividad del
péptido 78-119 de 42 unidades intacto; estos
péptidos también antagonizan la actividad de extractos del antro lo
que apoya adicionalmente la validez de péptidos sintéticos como un
medio para analizar la función biológica de la nueva proteína. Un
aspecto adicional de la invención es que el péptido
87-105, pero NO el 68-88,
antagoniza la actividad del péptido 104-117;
obsérvese que el péptido 87-105 solapa la secuencia
104-117 adyacente en dos restos.
Tomados en conjunto estos resultados sugieren un
modelo lineal relativamente simple para la región estimuladora del
crecimiento de AMP-18; a saber, hay un dominio de
unión extendido N-terminal (que se ha predicho que
es en gran parte helicoide, cuya rigidez relativa puede explicar la
organización lineal de las secuencias relevantes determinadas en
los estudios de crecimiento celular), seguido de una región rica en
glicina y prolina sin estructura predicha más allá de la
probabilidad de giros. Es esta última región la que contiene el
desencadenante de la estimulación del crecimiento. La especificidad
del antagonismo por los péptidos 78-88 y
87-105 puede basarse en si solapan o no los
péptidos 78-119 y 104-117 agonistas;
por ejemplo 78-88 solapa e inhibe
78-119, pero no solapa o inhibe
104-117. La especificidad de la competición por
estos péptidos tomada con la inactividad del péptido
78-119 mezclado, refuerza la conclusión de que
AMP-18 interacciona con componentes celulares
específicos. Se proporcionan evidencias adicionales de que la
región de unión al receptor se extiende de forma
N-terminal desde el péptido 104-117
por la actividad potenciada del péptido 97-117 que
contiene una extensión N-terminal de siete
aminoácidos de 104-117. Parece que un péptido con
una extensión de cuatro aminoácidos en la dirección
C-terminal (péptido 104-121) tiene
ligeramente menos actividad que el precursor
104-117, pero incluye una tirosina natural, que
hace posible el marcaje con yodo radiactivo, que permite la
determinación de la unión de péptidos relacionados con AMP a las
células, inicialmente por evaluación de la cantidad de sitios de
unión y posteriormente la detección de la(s)
proteína(s) receptora(s).
El péptido 97-107 se usó para la
mayoría de los ensayos a causa de su actividad (igual a la del
oligómero de 42 unidades) y su economía relativa (21 aminoácidos de
longitud). Sin embargo, una extensión C-terminal a
la tyr-121 da el active péptido más activo hasta
ahora, quizá porque estabiliza la estructura secundaria. Aunque
este péptido no corresponde a la actividad nanomolar de EGF, por
ejemplo, es mucho más potente que la informada para péptidos trébol
(Podolsky, 1997). Una estimación de la actividad de la proteína AMP
intacta es aproximadamente 1-10 nM.
(a) E. coli. Generalmente las
construcciones recombinantes se diseñan por reacciones en cadena de
la polimerasa usando oligonucleótidos sintéticos complementarios a
las regiones apropiadas de las secuencias de ADNc de longitud
completa dentro del vector PT/CEBP y se prolongan por sitios de
enzimas de restricción convenientes para posibilitar la fácil
inserción en los poli-enlazadores convencionales del
vector. Los experimentos iniciales con expresión de la ORF de AMP
en sistemas bacterianos empleaban un vector de expresión PT/CEBP,
que incluía una marca His6 N-terminal (Jeon y
col., 1994), pretendida para facilitar la purificación de la
proteína expresada en resina Ni-NTA (Qiagen). La
expresión del ADNc humano de longitud completa dentro de este vector
en el huésped BL21 (DE3)pLyS daba buenos rendimientos de
proteína insoluble, que después de electroforesis en condiciones
desnaturalizantes era adecuada para su uso como inmunógeno en
conejos para obtener anticuerpos específicos de elevado título,
pero que no ha sido útil para el análisis de la estructura nativa y
función de la proteína. Esta insolubilidad se debe muy
probablemente a la presencia de un extremo
N-terminal no natural, que tiene una marca His6
cadena arriba del péptido señal hidrófobo, en la proteína expresada.
También son útiles vectores de diseño que expresarán la ORF sin la
secuencia del péptido señal hidrófobo. Estos se construyen usando
vectores de expresión bacterianos con y sin marcas His N- o
C-terminales. La secuencia de AMP-18
humana que carece del péptido señal de 20 aminoácidos y que
contiene una marca His6 también se expresó en bacterias.
(b) Pichia pastoris. Entre los eucariotas
simples, la prometedora levadura P. pastoris está obteniendo
gran popularidad como sistema de expresión de elección para la
producción y secreción de proteínas recombinantes funcionales
(Romanos y col., 1992; Cregg y col., 1993). En este
sistema, la secreción de la proteína foránea puede utilizar su
propio péptido señal o la señal tipo alfa de acoplamiento de
levadura altamente compatible. Este organismo procesará
correctamente y secretará y al menos modificará parcialmente la
proteína AMP-18. Se desarrollan vectores para la
expresión constitutiva y regulada de genes foráneos en Pichia
(Sears y col., 1998). Además de un sitio de clonación
poli-enlazador, estos vectores contienen el promotor
constitutivo de elevada expresión de la
gliceraldehído-3-fosfato
deshidrogenasa (GAP) o la alcohol oxidasa regulada por metanol
(AOX1). El último es un promotor extremadamente riguroso que produce
producto insignificativo en condiciones de cultivo normales
mientras que da la mayor expresión de los vectores ensayados en
presencia de metanol, que representa como mucho el 30% de las
proteínas celulares. La ventaja que la levadura Pichia tiene
sobre las alternativas de mamífero e insecto es que se cultiva de
forma continua en medios libres de proteína, simplificando de este
modo la purificación de la proteína expresada y eliminando las
bioactividades extrañas que se originan en el suero o las células
huésped animales. Una construcción pIB4 (inducible por medio que
contiene metanol) contiene la secuencia de ADNc de
preAMP-18 humana completa.
(c) Baculovirus/Células de insecto. Un
sistema de expresión eucariota no de mamífero, frecuentemente
exitoso, alternativo es el que usa Baculovirus recombinantes, tales
como Autographa californica, en un sistema de cultivo de
células de insecto. Como con Pichia, está disponible un gran
repertorio de vectores prácticos en este sistema, que contienen
tanto glutatión S-transferasa (GST) como marcas His6
(Pharmingen). Se realizan transfecciones en células de
Spodoptera frugiperda (Sf); estas células pueden adaptarse
lentamente a medio libre de proteína para favorecer la purificación
de proteínas secretadas. Si no funciona un péptido señal endógeno
en estas células, la secreción de las proteínas foráneas también
puede forzarse usando vectores que contienen la señal de secreción
viral gp67 cadena arriba del sitio de clonación. Las proteínas
recombinantes pueden expresarse a niveles que varían del
0,1-50% de proteína celular total. Algunas
modificaciones proteicas pueden estar más favorecidas en este
sistema de células de insecto con relación a las levaduras, pero aún
no puede duplicar el sistema de mamífero. Parece que el sistema de
expresión de insecto sería algo más laborioso que Pichia, y
no sustituye completamente la expresión en células de mamífero. La
secuencia de AMP-18 humana que carece del péptido
señal de 20 aminoácidos y que contiene una marca His6 se expresó en
Baculovirus.
(d) Células de mamífero. Pueden tener
lugar modificaciones no detectables por análisis de
inmunotransferencia en células de mamífero que no se duplican en
células de otros eucariotas. Aunque no son tan prácticos como los
sistemas de procariotas y eucariotas simples, las células de
mamífero ahora se usan frecuentemente para expresión tanto
transitoria como continua de proteínas foráneas. Se han expresado y
secretado varios factores de crecimiento en cantidades
significativas usando estos sistemas.
El sistema de plásmido pcDNA3/células renales
humanas 293: pcDNA3 contiene un sitio de clonación
poli-enlazador flanqueado por el promotor fuerte
constitutivo de citomegalovirus (CMV) y una señal poliA de SV40
(Invitrogen). La experiencia de laboratorio es que pueden
conseguirse niveles de transfección transitoria del
60-90%. Para este fin, se realiza la amplificación
por PCR del clon de ADNc de preAMP humana con oligonucleótidos que
contienen el codón de inicio y el sitio de unión al ribosoma nativo
(secuencia Kozak) así como enlazadores de enzimas de restricción
adecuados para la correcta orientación en pcDNA3. Se identificaron
construcciones favorables en el ensayo transitorio usando el
potente antibiótico blasticidina S y un vector que contenía el gen
de resistencia, se pueden establecer líneas celulares
transfectantes de mamífero estables "en menos de una semana"
(Invitrogen). Los vectores disponibles también incluyen el promotor
constitutivo de CMV, un sitio de clonación
poli-enlazador, un epítope V5/marca His6 electivo y
la señal poli(A) de SV40 (PcDNA6/V5-His).
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Dado un sistema de expresión eficaz para la
producción de AMP-18 "de tipo silvestre", puede
crearse una serie de proteínas mutantes, que contienen deleciones o
sustituciones, que permitirá el análisis de los dominios
funcionales. Las hélices anfipáticas, los restos de cisteína (C)
conservados y los dobletes de aminoácidos básicos, que pueden ser
sitios de escisión, son dianas atractivas. Aunque no es tan simple
como un ensayo enzimático, el ensayo de mitogénesis es rutinario y
replicable, y posibilitaría caracterizar "mutantes" tan rápido
como se construyan. "Mutantes" negativos (o positivos)
dominantes serán tan significativos como mutaciones que muestra
pérdida simple de la función, porque estos implicarán interacciones
con otros factores incluyendo posibles receptores celulares.
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En el caso de algunas de las formas expresadas
de la gastroquina AMP-18, la proteína recombinante
contendrá marcas peptídicas que permitirán la rápida purificación
de la proteína soluble. La presencia de marcas, si no impiden de
forma grave las funciones normales de la proteína, también
permitirán el análisis de interacciones con otras macromoléculas
relevantes. Las marcas His6 permiten la purificación por la unión de
las proteínas recombinantes con perlas de resina
Ni-NTA (Janknecht y col., 1991; resina
Ni-NTA de Qiagen). La proteína marcada se une con
mayor afinidad que la mayoría de los complejos
antígeno-anticuerpo y puede lavarse rigurosamente
antes de que el complejo de quelación
Ni^{2+}-histidina se altere por el exceso de
imidazol para liberar la proteína purificada. Las proteínas
recombinantes marcadas con GST se purifican en
glutatión-agarosa, se lavan y después se eluyen con
glutatión reducido (Smith y Johnson, 1988). Como con todos los
sistemas de expresión propuestos, cada preparación proteica puede
ensayarse en la etapa más temprana posible para su actividad de
factor de crecimiento.
Se usan procedimientos de fraccionamiento
convencionales para conseguir la pureza deseada, particularmente en
el caso del aislamiento de la proteína natural de tejido. La mucosa
del antro de cerdo es un punto de partida preferido para lo último,
usando un protocolo inicial de centrifugación y tratamiento por
calor, seguido de una columna de exclusión de tamaño: BioGel P60 es
adecuada, dadas las evidencias de que existe la proteína de 18 kDa,
muy probablemente como un monómero en los extractos. El producto de
elución se carga en una matriz de inmunoafinidad creada por
entrecruzamiento de anticuerpos anti-AMP purificados
en HiTrap Proteína A con Sepharose 4B activada con CNBr
(Pharmacia). Puede ser útil una modificación adicional de la matriz
de inmnoafinidad, por extensión del enlazador a la matriz, que ha
demostrado ser útil en el pasado (Aithal y col., 1994), o
entrecruzando el anticuerpo con proteína A inmovilizada. Como la
proteína activa puede recuperarse por elución en gel de SDS, la
proteína activa también puede recuperarse de los complejos
antígeno-anticuerpo. Podría conseguirse
fraccionamiento adicional por una columna de cromatografía líquida
de alta resolución (HPLC) de fase inversa C8. Una etapa final es el
uso de la técnica de elución en gel de SDS con confirmación de la
identidad por secuenciación N-terminal. En todas
estas etapas la AMP-18 inmunodetectable y la
actividad de factor de crecimiento se fraccionarían juntas.
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La AMP-18 puede ser precursora
para uno o varios péptidos bioactivos. Los péptidos sintéticos
proporcionan una vía práctica para explorar la función de una
proteína; los péptidos pueden imitar aspectos de la función o
antagonizarlos. Si un péptido duplica o inhibe la actividad de la
proteína, entonces sugiere la identidad de dominios funcionales de
la proteína intacta, y también proporciona la posibilidad de
sintetizar sondas marcadas específicamente para explorar las
interacciones proteína-célula.
El hallazgo de que un péptido sintético de 42
aminoácidos, que representa una región central de la proteína
humana, es capaz de imitar la actividad de factor de crecimiento de
los extractos de mucosa del antro parcialmente fraccionados ha
proporcionado un atajo para el análisis de la función de
AMP-18. Este péptido (denominado péptido
58-99; los aminoácidos están en las posiciones
58-99 de la proteína madura después de la
eliminación del péptido señal) además de varios posibles sitios de
procesamiento proteico en pares de lisina, contiene una de las
regiones capaces de la formación de hélices prolongadas así como un
bucle de glicina-prolina. Una ventaja añadida de
este péptido es que contiene epítopes reconocidos por ambos
antisueros descritos en este documento. Algunos péptidos más
pequeños derivados de esta secuencia se sintetizaron para centrarse
en las regiones bioactivas. Inicialmente se estudiaron las
secuencias unidas por los restos de lisina porque pueden indicar
distintos dominios dentro de la estructura proteica, en virtud de
exponerse sobre la superficie de la proteína, como se evidencia por
la antigenicidad de esta región, y pueden ser sitios de escisión
in vivo para péptidos bioactivos. La región de
glicina-prolina es importante (véase la Tabla 1 que
ilustra los dominios bioactivos de AMP-18). Se sabe
que las secuencias de glicina-prolina están
implicadas en ligandos SH3 (dominio de homología src tipo 3)
(véase Cohen y col., 1995; Nguyen y col., 1998); como
los dominio SH están implicados en interacciones
proteína-proteína la región GP de
AMP-18 puede estar implicada en la interacción de
la proteína con un receptor de superficie celular. La secuencia
GPGGPPP exacta encontrada en AMP-18 no se ha
presentado para los dominios SH3 que actúan de forma intracelular,
de modo que existe la fascinante posibilidad de que represente un
nuevo dominio de interacción proteica para ligandos extracelulares.
Un oligómero de 21 unidades derivado de los aminoácidos en las
posiciones 97-117 de la secuencia madura tiene
actividad similar a la del oligómero de 42 unidades. Este péptido
más corto es útil para ensayos de crecimiento sobre diversas líneas
de células epiteliales. Este péptido no expresa el epítope
reconocido por los antisueros descritos en este documento.
Todos los péptidos derivados de
AMP-18 se sintetizaron por el Cancer Center Peptide
Core Facility de la University of Chicago, que también confirmó la
masa molecular y la secuencia de aminoácidos de los péptidos
purificados que se aíslan por HPLC. La actividad biológica del
péptido 78-119 no solamente proporciona la base para
buscar péptidos más pequeños con actividad mitogénica, sino que
permite encontrar rápidamente sustituciones de aminoácidos que
tengan efectos positivos o negativos. Se ensayaron péptidos
inactivos para su capacidad de bloquear la función de los péptidos
activos o AMP-18 intacta. La posible inclusión de
D-aminoácidos en los péptidos (en orden normal o
inverso) puede estabilizarlos contra la degradación permitiendo al
mismo tiempo la retención de la función biológica. Adicionalmente,
la capacidad de sintetizar péptidos activos posibilita marcadas que
facilitan estudios de la naturaleza, distribución tisular y cantidad
de receptores celulares. Dichas marcas incluyen restos de
His-6 biotina o tirosina yodada adjuntados a la
secuencia peptídica (varios de los péptidos bioactivos tienen una
tirosina de origen natural en el extremo
C-terminal).
Los péptidos sintéticos también permiten la
evaluación de la tarea de la estructura secundaria potencial sobre
la función. El hallazgo de que una extensión
C-terminal de 4 aminoácidos del péptido activo
97-117, que se ha predicho que promueve una hélice
similar a la encontrada para la secuencia de AMP-18
intacta, conduce a un péptido 97-121 más activo, es
interesante. La propensión helicoide de estos péptidos activos, por
ejemplo, el péptido 126-143, que se parece a un
péptido de magainina anti-microbiano, proporciona
información útil. Con respecto a péptidos
anti-microbianos, la función de la magaína en esta
clase está relacionada con su capacidad de formar hélices
anfipáticas (Boman, 1995). Los péptidos sintéticos que pueden estar
encerrados en la forma helicoide por puentes de lactama (Houston
y col., 1996) potenciaban la actividad biológica; ya existe
al menos un par de restos aminoacídicos ácido y básico apropiados
para la formación de lactama en regiones helicoides potenciales de
AMP-18.
Otro aspecto igual de significativo de los
estudios de péptidos es la disponibilidad potencial de péptidos
anti-AMP-18 específicos que
antagonicen sus funciones biológicas. Los estudios de cultivo
tisular muestran que sub-péptidos del péptido
78-119 promotor del crecimiento pueden antagonizar
la actividad del péptido intacto (véase la Tabla 1). Los péptidos
que pueden ocupar sitios de unión celular pero carecen de algún
resto esencial para la actividad pueden bloquear la acción de
AMP-18 y sus péptidos activos. Esto hace que esté
disponible otra serie de reactivos para el análisis de receptores
celulares y para evaluar las constantes de afinidad
receptor-ligando. La disponibilidad de antagonistas
peptídicos definidos es útil en estudios con animales completos, y
finalmente puede servir para regular la actividad de la proteína
natural en seres humanos.
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Se eligieron la línea de células epiteliales
renales de mono no transformadas BSC-1 y otras
líneas de células epiteliales para evaluar los efectos sobre el
crecimiento. En general, se eligieron condiciones para cada línea
de modo que las células crecieran hasta confluencia en placas de
plástico en medio de crecimiento suplementado con suero mínimo de
ternera (o fetal) para el crecimiento (Lieske y col., 1997);
las células BSC-1 llegan a ser confluyentes a
10^{6}/placa de 60 mm con suero de ternera al 1%. Al inicio del
ensayo de crecimiento se aspiró el medio sobre el cultivo
confluyente y se remplazó con medio fresco con suero mínimo para
mantener la viabilidad (0,01% para células BSC-1).
Se añadieron preparaciones de AMP-18 al medio de
cultivo y 4 días después se aclaró la monocapa celular, se
desprendió con tripsina, y se contaron las células usando un
hemocitómetro. La determinación de la capacidad de
AMP-18 de iniciar la síntesis de ADN se midió por la
incorporación de [^{3}H]-timidina (Toback, 1980);
para confirmar el ensayo de síntesis de ADN, se contaron
autorradiogramas de células niveladas (Kartha y Toback, 1985).
La proteína AMP-18 se expresa en
la mucosa del antro y a un grado menor en la mucosa del cuerpo
adyacente. Sin embargo, tanto los extractos del antro como los
péptidos sintéticos activos estimulan la proliferación de las
líneas de células epiteliales más simples. El principal criterio
usado, aparte de las células que pueden ser dianas naturales para
AMP-18 o sus péptidos, fue el de control del
crecimiento, particularmente la restricción de densidad celular.
Muchas líneas de estómago transformadas derivadas de pacientes con
cáncer humanos están disponibles en diversas fuentes, pero la
mayoría de éstas no muestran control del crecimiento. Por ejemplo,
un sub-línea celular de adenocarcinoma AGS gástrico
del Dr. Duane Smoot (Howard University College of Medicine) mostró
un grado mayor de inhibición del contacto, y respondió bien a
AMP-18 y sus péptidos derivados. Estas células no
sintetizan de forma natural AMP-18. Se observaron
respuestas similares con las células epiteliales intestinales IEC
de rata no transformadas (proporcionadas por el Dr. Mark Musch,
Dept. Medicine, University of Chicago); las últimas mostraron
excelentes características celulares epiteliales en cultivo (Quaroni
y col., 1979; Digass y col., 1998).
\vskip1.000000\baselineskip
La caracterización de los receptores celulares
diana de AMP-18 es intrigante a causa de la aparente
existencia de receptores en células que no se espera que nunca
contacten con esta proteína. Se realizaron ensayos de respuesta de
crecimiento inicial sobre líneas de células epiteliales derivadas de
riñón, que respondieron bien al factor estomacal. Se usaron líneas
de células gástricas, así como las células IEC-6 de
epitelio intestinal de rata no transformadas, para abordar los
receptores en células que probablemente son las verdaderas dianas
fisiológicas para el factor del antro. La especificidad para la
acción de esta proteína in vivo probablemente surge de la
naturaleza extremadamente específica de tejido de su expresión, en
lugar de la de su receptor. Es posible que la
AMP-18 pueda interaccionar con receptores
compartidos con otros factores de crecimiento. Sin embargo, el
estímulo del crecimiento aditivo de EGF y los extractos del antro
sugiere que la AMP-18 puede tener nuevos
receptores.
Pueden buscarse moléculas proteicas en membranas
celulares que interaccionen con AMP-18 de varios
modos diferentes. Se usan AMP-18 pura o péptidos
relacionados marcados, por ejemplo, con biotina o yodo radiactivo,
para estimar la cantidad de sitios saturables sobre la superficie
celular. Se usó el análisis de Scatchard de los valores de unión
para determinar la cantidad y afinidad de los receptores. Para
estudios cuantitativos, se mide la unión a concentraciones
crecientes de ligando AMP, y se identifican componentes no
específicos midiendo la unión en presencia de un exceso de factor
sin marcar. Los factores de crecimiento yodados se han entrecruzado
con receptores celulares posibilitando su identificación (Segarini
y col., 1987). Se incuban ligandos AMP marcados con células,
y se entrecruza el ligando marcado con los receptores por suberato
de disuccinimidilo. Las proteínas marcadas se resuelven por
SDS-PAGE, y se usa autorradiografía para visualizar
el complejo entrecruzado que permite una estimación del PM del (de
los) receptor(es). Los miméticos o antagonistas peptídicos
sintéticos permiten estudios de los receptores celulares, y sus
propiedades
se deducen de forma razonada antes de su futura identificación definitiva, supuestamente por técnicas de clonación.
se deducen de forma razonada antes de su futura identificación definitiva, supuestamente por técnicas de clonación.
Además de estudios de entrecruzamiento, se usan
anticuerpos, o AMP-18 o péptidos marcados con his6
para aislar proteínas celulares o mucosas que se unen a
AMP-18. Como un enfoque adicional, puede crearse una
matriz con afinidad por AMP-18 inmovilizada usando
Sepharose activada con CNBr. Como un comienzo simple al análisis de
la vía de transducción de señales mediada por cualquier receptor
celular, está disponible un ensayo para ensayar la actividad
tirosina quinasa de proteínas en aislados de afinidad (Yarden y
Ullrich, 1988; Schlessinger y Ullrich, 1992).
\vskip1.000000\baselineskip
La(s) forma(s)
molecular(es) funcional(es) de AMP-18
no es (son) conocida(s). Ciertamente, la de aproximadamente
18 kDa es la forma proteica que se acumula en las células de la
mucosa del antro, y no se detectan cantidades sustanciales de
polipéptidos de PM inferior con los antisueros, aunque reaccionan
con fragmentos de pepsina hasta aproximadamente 10 kDa y también
con el péptido 78-119 bioactivo (que tiene solamente
42 aminoácidos). Tener acceso a AMP-18 marcada o
señalada posibilita explorar la cuestión de si la proteína se
procesa en extractos de la mucosa del antro, o por las células
epiteliales que responden a la misma.
\vskip1.000000\baselineskip
Usando técnicas de PCR que emplean cebadores
basados en la secuencia del clon de ADNc humano, se obtuvieron
clones genómicos de preAMP-18 humana y de ratón. La
estructura de exones/intrones (Fig. 13) está completa. Los exones
de AMP de ratón son suficientemente similares a los del ser humano y
el cerdo para permitir que se ensamble una secuencia del gen de
ratón. Los genes humano y de ratón tienen estructuras muy similares,
siendo el gen de ratón ligeramente más pequeño. La ORF contenida en
los exones del gen de ratón predice una proteína que tiene una
identidad del 65% con las proteínas humana y de cerdo. Una secuencia
de 2 kb está cadena arriba del gen humano.
\vskip1.000000\baselineskip
A partir del mapa de ratón se diseña una
construcción de direccionamiento. La construcción preferiblemente
contiene: [5' - TK (un gen de timidina quinasa funcional) - aprox. 5
kb del extremo 5' del ADN de AMP-18 - el gen de la
neomicina fosfotransferasa (neo) bajo el control del promotor
de la fosfoglicerato quinasa (PGK) - aprox. 3 kb del extremo 3' del
gen - 3']. Se requiere una longitud considerable de homología de la
construcción con el gen de AMP-18 residente para un
direccionamiento eficaz. Aumentando la homología total de 1,7 a 6,8
kb se aumenta la eficacia del direccionamiento homólogo en el gen
hrpt aproximadamente 200 veces (Hasty y col., 1991).
Más allá de la longitud total, la eficacia aumenta solamente
ligeramente. Para facilitar la detección de integrantes homólogos
por una reacción de PCR, es útil tener el gen neo cerca de
un extremo del vector. Los transfectantes resultantes pueden
proporcionarse por PCR con dos cebadores, uno en el gen neo
y el otro en el locus AMP-18 justo fuera del vector
de direccionamiento. Se han obtenido regiones flanqueantes que se
extienden 4 kb 5' y 4,5 kb 3' del gen de ratón. A través de
recombinación homóloga, se remplazará la región codificante por el
gen neo para asegurar una eliminación completa del gen ya
clonado. Después de retirar por recorte la secuencia plasmídica, se
introducirá por transfección en casete de direccionamiento en
células ES y se obtendrán transfectantes estables por selección con
G418, un análogo de neomicina, y ganciclovir (Mansour y
col., 1988). Se usarán transferencias de Southern con la sonda
de la secuencia flanqueante para explorar recombinantes homólogos
dirigidos. Los clones de células ES correctamente dirigidos se
inyectarán en blastocitos de ratones C57BL/6.
Se reproduce la descendencia masculina obtenida
de madres suplentes que tienen al menos un 50% del pelo agutí
(células derivadas de células madre embrionarias (ES)) con ratones
C57BL/6. Los ratones F1 que son agutíes tiene el componente paterno
derivado de las células ES (agutí es dominante sobre negro). El 50%
de estos ratones debe tener el alelo preAMP-18
eliminado. Estos ratones hemicigóticos se controlan para cualquier
efecto de dosificación génica disminuida. Son preferibles ratones
knockout homocigóticos. Si la única función de
AMP-18 está en el estómago después del nacimiento,
entonces se esperan homocigóticos viables. Si no pueden obtenerse
estos, se indicaría un defecto letal para el feto, y se establecería
una fase fetal de aborto. Este resultado sugeriría una tarea no
prevista de la proteína en el desarrollo normal.
Los ratones AMP-18 knockout
homocigóticos son útiles para investigaciones de morfología y
función estomacal. Se espera que dichos ratones knockout muestren
si AMP-18 es esencial, y en qué fase del desarrollo
gastrointestinal es bioactiva. Es posible que los ratones
AMP-18 knockout hemicigóticos ya muestran un
fenotipo. Esto podría suceder si la dosificación reducida de la
proteína redujera o eliminara su función, o si la imprimación
parental o la expresión mono-alélica aleatoria
tiene una influencia significativa. Un intervalo de posibles
consecuencias de la eliminación de AMP-18 en
ratones incluye: i) ausencia de homocigóticos viables, lo que
implica una tarea en el desarrollo esencial no previsto; ii)
homocigóticos viables, pero con funciones gastrointestinales
obviamente alteradas; iii) sin fenotipo fuerte, es decir, la
proteína no es importante para el desarrollo y vida del ratón de
laboratorio. Si es apropiado, se persigue la generación de
AMP-18 en ratones con
sobre-expresión. Una proteína
AMP-18 truncada producida en los ratones podría
crear de forma potencial un fenotipo negativo dominante; el
conocimiento obtenido de los experimentos definirá adicionalmente
los dominios funcionales de la proteína.
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\vskip1.000000\baselineskip
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Claims (4)
1. Una composición farmacéutica usada para el
tratamiento de un trastorno gastrointestinal, comprendiendo dicha
composición un péptido estimulador del crecimiento; estando
seleccionado dicho péptido estimulador del crecimiento entre el
grupo constituido por las secuencias de aminoácidos KKLQGKGPGGPPPK,
LDALVKEKKLQGKGPGGPP
PK, y LDALVKEKKLQGKGPGGPPPKGLMY.
PK, y LDALVKEKKLQGKGPGGPPPKGLMY.
2. Uso de una composición que comprende una
proteína gastroquina que comprende una secuencia de aminoácidos
consenso seleccionada entre el grupo constituido por
VKE(K/Q)KXXGKGPGG(P/A)PPK,
VKE(K/Q)KLQGKGPGG(P/A)PPK y
VKE(KJQ)KGKGPGG(P/A)PPK, o un péptido
seleccionado entre el grupo constituido por las secuencias de
aminoácidos KKLQGKGPGGPPPK, LDALVKEKKLQGKGPGGPPPK, y
LDALVKEKKLQGKGPGGPPPKGL
MY para la preparación de un medicamento para el tratamiento de una lesión del tracto gastrointestinal de mamíferos, en la que tiene que estimularse la migración de células epiteliales.
MY para la preparación de un medicamento para el tratamiento de una lesión del tracto gastrointestinal de mamíferos, en la que tiene que estimularse la migración de células epiteliales.
3. Uso de una composición que comprende una
proteína gastroquina que comprende una secuencia de aminoácidos
consenso seleccionada entre el grupo constituido por
VKE(K/Q)KXXGKGPGG(P/A)PPK,
VKE(K/Q)KLQGKGPGG(P/A)PPK y
VKE(K/Q)KGKGPGG(P/A)PPK o un péptido
constituido por la secuencia de aminoácidos LDALV
KEKKLQGKGPGGPPPK, para la preparación de un medicamento para la citoprotección de células epiteliales dañadas en el tracto gastrointestinal de mamíferos en la que las células epiteliales dañadas tienen que ser células a poner en contacto con dicha composición.
KEKKLQGKGPGGPPPK, para la preparación de un medicamento para la citoprotección de células epiteliales dañadas en el tracto gastrointestinal de mamíferos en la que las células epiteliales dañadas tienen que ser células a poner en contacto con dicha composición.
4. El uso de la reivindicación 3, en el que las
células dañadas son una úlcera.
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