ES2333660T3 - Metodo de diagnostico molecular y tratamiento de la demencia con cuerpos de lewy. - Google Patents
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Abstract
Método de diagnóstico in vitro para la demencia de cuerpos de Lewy (DLB) en pacientes con sospecha clínica de inicio de demencia, caracterizado porque comprende analizar una muestra obtenida de un paciente para determinar el nivel de expresión del gen Ubiquitina C-terminal hidrolasa L-1 (UCHL-1), donde los niveles de expresión reducidos de UCH-L1 en comparación con controles es diagnóstico de DLB.
Description
Método de diagnostico molecular y tratamiento de
la demencia con cuerpos de Lewy.
La presente invención se refiere a un método de
diagnóstico molecular y de tratamiento de la enfermedad conocida
como demencia de cuerpos de Lewy, tanto en su forma pura como en su
forma común, que puede ser utilizado como criterio de diagnóstico
de dichas demencias así como en la prevención y tratamiento de las
mismas.
En las sociedades desarrolladas el
envejecimiento de la población está produciendo un incremento del
número de pacientes afectados de demencia. La mayoría de estos
individuos padecerán la más común de entre ellas: la enfermedad de
Alzheimer (AD); pero existen toda una gama de demencias de orígenes
muy diversos. Entre ellas destaca por su frecuencia la demencia con
cuerpos de Lewy (DLB). La DLB designa un síndrome
clínico-patológico de demencia asociado con la
presencia cortical y subcortical de cuerpos de Lewy en diferentes
grados, entre ellos podemos mencionar enfermedad por cuerpos de
Lewy difusos, demencia senil tipo cuerpos de Lewy y también
variante con cuerpos de Lewy de la enfermedad de Alzheimer. La
clasificación clínico-patológica de esta disfunción,
a la que se ha dado en llamar demencia con cuerpos de Lewy (DLB)
(McKeith IG, Galasko D, Kosaka K, et al. Consensus
guidelines for the clinical and pathological diagnosis of Dementia
with Lewy bodies (DLB): report on the Consortium on DLB
International Workshop.Neurology 1996; 47:
1113-24.2000; 54: 1050-8) recoge
también algunos rasgos que son comunes con las características de
la AD y de la enfermedad de Parkinson (PD). En su conjunto, los
datos clínicos de la enfermedad pueden sugerir el diagnóstico de
enfermedad de cuerpo de Lewy difusa, si bien no existen pruebas
diagnósticas definitivas para tal diagnóstico. EI examen
neuropatológico es actualmente la única forma de diagnóstico al
demostrar las alteraciones patognomónicas por sus características,
localización y distribución propias de la enfermedad.
Los criterios neurológicos de diagnóstico
atienden a los síntomas o signos nucleares. Así, en la valoración
de la Demencia con Cuerpos de Lewy se consideran deficiencias
atencionales, ejecutivas y visuoespaciales frecuentemente más
severas; memoria a corto plazo relativamente mejor que en AD. En la
valoración de Cognición fluctuante se evalúa un curso temporal
variable de niveles alterados de atención y conciencia y el hecho de
no observase el síndrome crepuscular. Otro síntoma clave es la
presencia de alucinaciones visuales. Típicamente estas incluyen
sujetos animados con un grado variable de penetración. En DLB, los
signos extrapiramidales espontáneos son: rigidez, bradiquinesia y
anormalidad en la marcha; el temblor en reposo es infrecuente. La
presencia de fluctuaciones clínicas de un día a otro o de una
semana a otra, especialmente al inicio, son aspectos que apoyan el
diagnóstico de DLB. Un aspecto que podría mejorar la sensibilidad
diagnóstica es la determinación de criterios para definir el umbral
y la escala de los rasgos nucleares de los signos motores
extra-piramidales y de las alucinaciones visuales.
Otra limitación de los criterios actuales es el hecho de que las
características sugestivas para el diagnóstico no se incluyen
explícitamente en el algoritmo utilizado para determinar la
naturaleza posible o probable de la DLB. Para conseguir una mayor
precisión en el diagnóstico de la DLB, sería necesario acometer
investigaciones sobre la utilidad de los rasgos sugestivos para el
diagnóstico diferencial y la posible contribución de los trastornos
del sueño (Kaufer DI. Dementia and Lewy bodies Rev Neurol. 2003 Jul
16-31;37(2):127-30.
Review.).
Desde el punto de vista histopatológico, los
signos diferenciales para un diagnóstico de DLB es la presencia de
cuerpos de Lewy en el cortex y el tronco del encéfalo, aunque en
ocasiones se detectan presencia de neuritas de Lewy, placas seniles
corticales, signos de taupatía o cambios espongiformes (K.A.
Jellinger, Morphological substrates of mental dysfunction in Lewy
body disease. An update. J Neurol Transm Suppl 59 (2000), pp.
185-21). Como se ha mencionado, las características
de las lesiones (cuerpos y neuritas de Lewy), su localización (en
neuronas procesos neuronales) y su distribución (difusa en el tranco
del encéfalo, amígdala, núcleo basal de Meynert y corteza cerebral)
son específicos de la enfermedad.
Pirim et al. (1998) Int. J. Neuro. Res.
95:33-42 muestra que los anticuerpos contra la
hidrolasa de ubiquitina carboxiterminal muestra reactividad con
cuerpos de Lewy cortical junto con las neuronas y las neuritas
bulbosas de cerebros con la enfermedad de Alzheimer y con la
enfermedad de cuerpos de Lewy.
Lowe et al. (1990) J. Path.
161:153-60 demostró que la hidrolasa de ubiquitina
c-terminal puede ser detectada en distintas formas
de cuerpos de inclusión, incluyendo los cuerpos de Lewy
corticales.
Nishikawa et al. (2003) Biochem. Biophys
Res. Comm. 304:176-83 examina la cinética de las
enzimas salvajes y las variantes I93M y S18Y de
UCH-L1 con la finalidad de intentar descifrar una
potencial relación junto con la enfermedad de Parkinson.
Un estudio reciente señala una incidencia
clínica de DLB de 26/100.000 casos anuales, con una tasa máxima
para el intervalo de edad 80-84 años de 68,6/100.000
casos anuales. Esto implica una tasa menor frente a la AD, que en
un trabajo previo fue de 93/100.000 casos anuales pero mayor que la
demencia fronto-temporal (FTD), que se estimó en
14/100.000 casos anuales. El mismo estudio detecta una predominancia
masculina de la DLB descrita en la literatura, con un porcentaje de
varones con DLB respecto a AD que fue de 63,2% frente a 23,1%. En
este estudio deben considerarse diversas limitaciones metodológicas
ya que se trata de un estudio con una muestra hospitalaria de
pacientes no representativos de la población general. Además, debe
tenerse en cuenta que la sensibilidad insuficiente de los criterios
clínicos actuales puede producir la infraestimación de las tasas
reales, lo cual hace suponer que la incidencia en la población
general es ligeramente superior. (S. López-Pousa,
J. Garre-Olmo, A. Turon-Estrada, E.
Gelada-Batlle, M. Lozano-Gallego,
M. Hernández-Ferrándiz, V. Morante- Munoz, J.
Peralta-Rodríguez, M.M. Cruz-Reina
Incidencia clínica de la demencia por cuerpos de Lewy. REV NEUROL
2003; 36 (8): 715-720).
La etiología de la enfermedad es desconocida y
los mecanismos moleculares de su progresión también. No obstante,
la característica histopatológica fundamental de esta enfermedad, la
acumulación de cuerpos de Lewy han empezado por aportar algunas de
las primeras pistas o indicaciones. Los cuerpos de Lewy son
depósitos proteicos compuestos básicamente de depósitos proteicos
insolubles cuyos componentes principales son la
\alpha-sinucleina, la ubiquitina y la presencia
de proteínas ubiquitinadas. Todos ellos son componentes de un
sistema subcelular llamado Sistema UPS
(Ubiquitina-proteasoma) que es responsable de la
degradación fisiológica de proteínas citoplasmáticas que son
defectuosas o se encuentran en exceso (Herschko A, Ciechanover A
(1998) The ubiquitin system. Annu Rev Biochem 67:
425-479). El malfuncionamiento de este sistema ha
sido asociado como una de las causas implicadas en el origen o
desarrollo de ciertas enfermedades
neuro-degenerativas como AD, PD, la enfermedad de
Huntington (HD) o la esclerosis amiotrófica lateral (ALS)
(Petrucelli L & Dawson TM. Mechanism of neurodegenerative
disease: role of the ubiquitin proteasome system. Ann Med.
2004;36(4):315-20). (Tran PB, Miller RJ.
Aggregates in neurodegenerative disease: crowds and power? Trends
Neurosci. 1999 May;22(5): 194-7).
WO 9950300 A1 describe un método de diagnóstico
de sinucleopatías en pacientes, que comprende detectar sinucleínas
seleccionadas en una muestra biológica obtenida de un paciente.
También describe un método para el tratamiento de sinucleopátías en
pacientes que sufren desórdenes neurodegenerativos, que comprende
modular la producción de seleccionadas y/o la formación de
inclusiones filamentosas intracitoplasmáticas glioales y neuronales
de sinucleínas seleccionadas en estos pacientes.
Uno de los elementos de este Sistema UPS
(Ubiquitina-proteasoma) responsable de la
degradación fisiológica de proteínas citoplasmáticas que son
defectuosas es la UCHL-1 (Ubiquitina
C-terminal hidrolasa -1), una
tiol-proteasa responsable de hidrolizar los enlaces
peptídicos de los complejos proteicos unidos a la glicina
carboxiterminal de la ubiquitina que conllevan a la destrucción
regulada de proteínas sobrantes en el citoplasma celular y
liberando ubiquitina que queda así disponible para unirse a nuevas
proteínas que deben eliminarse. La correlación entre la UCHL1 y el
parkinsonismo ya había sido puesta de manifiesto con la detección de
una mutación en una familia alemana con un historial de PD, esta
mutación tiene características dominantes (Leroy E, Boyer R,
Auburger G, Leube B, Ulm G, Mezey E, Harta G, Brownstein MJ,
Jonnalagada S, Chernova T, Dehejia A, Lavedan C, Gasser T,
Steinbach PJ, Wilkinson KD, Polymeropoulos MH (1998) The ubiquitin
pathway in Parkinson's disease. Nature 395:
451-452). También se había observado que en ratones
defectivos para UCHL1 los niveles neuronales de ubiquitina in
vivo eran menores de lo normal y que en sistemas de líneas
celulares la sobrexpresión de UCHL1 producía un incremento en los
niveles de ubiquitina libre. (Osaka H, Wang YL, Takada K, Takizawa
S, Setsuie R, Li H, Sato Y, Nishikawa K, Sun YJ, Sakurai M, Harada
T, Hara Y, Kimura l, Chiba S, Namikawa K, Kiyama H, Noda M, Aoki S,
Wada K (2003) Ubiquitin carboxy-terminal hydrolase
L1 binds to and stabilizes monoubiquitin in neuron. Hum Mol Genet
12: 1945-1958). También se ha demostrado que la
UCHL1 colocaliza con otras proteínas del sistema UPS como proteínas
ubiquitiladas, HSP70, gamma-tubulina y, en menor
medida, el proteasoma 20S y la chaperona BiP (Ardley HC, Scott GB,
Rose SA, Tan NG, Robinson PA. UCH-L1 aggresome
formation in response to proteasome impairment indicates a role in
inclusion formation in Parkinson's disease. J Neurochem. 2004
Jul;90(2):379-91). Recientemente, también se
han descrito alteraciones en el estado oxidativo de UCHL1 en AD y
PD esporádicas (Choi J, Levey Al, Weintraub ST, Rees HD, Gearing M,
Chin LS, Li L (2004) Oxidative modifications and
down-regulation of ubiquitin
carboxyl-terminal hydrolase L1 associated with
idiopatic Parkinson's and Alzheimer's disease. J Biol Chem 279:
13256-13264.).
A pesar de que las rutas de degradación y
homeostasis proteica subcelular como el sistema UPS y las diferentes
proteínas intervinientes en el mismo han sido propuestas como
actores centrales en el desarrollo de algunas enfermedades ya
mencionadas en los párrafos anteriores, como PD o AD, que comparten
algunos síntomas con la DLB, lo cierto es que se sigue sin conocer
las causas y los mecanismos de evolución de esta demencia que es la
segunda más frecuente tras el Alzheimer.
Las posibilidades terapéuticas que se ofrecen a
los pacientes de DLB son desgraciadamente muy limitadas, a menudo
se resumen en tratamiento sintomático para controlar los síntoma
psiquiátricos y parkinsonianos. Sin embargo, a menudo la medicación
antiparkinsoniana que produce mejoras en el temblor y en la pérdida
de movilidad produce empeoramientos agudos y notables, en algunos
casos fatales, de los síntomas alucinatorios y del cuadro
psicótico. De la misma forma el tratamiento neuroléptico prescrito
para los síntomas psiquiátricos produce un empeoramiento notable
del cuadro motor. Dependiendo del cuadro que presenta el paciente,
inhibidores de acetilcolinesterasa, agonistas de dopamina,
benzodiazepinas de vida corta y media y antidepresivos pueden ser
de ayuda limitada. (Rampello L, Cerasa S, Alvano A, Butta V V,
Raffaele R, Vecchio l, Cavallaro T, Cimino E, lncognito T,
Nicoletti F. Dementia with Lewy bodies: a review. Arch Gerontol
Geriatr. 2004
Jul-Aug;39(1):1-14).
Por lo tanto, existe una necesidad en el estado
del arte de identificar nuevos genes y/o mutaciones responsables
y/o indicadores de la demencia de cuerpos de Lewy.
La identificación de este/estos genes permitiría
un diagnóstico molecular selectivo y respecto a otras demencias y
permitiría incluirlo/s en la práctica clínica habitual.
Al mismo tiempo produciría un ahorro enorme de
costes sanitarios y sociales asociados a este tipo de demencias
terriblemente incapacitadoras.
También permitiría la adopción de nuevos
criterios pronósticos y de orientación terapéutica en los casos
positivos ya que permitiría adaptar terapias más severas y
personalizadas a aquellos casos en los que el carácter parkinsoniano
del enfermo quedara establecido.
Finalmente la identificación de este/estos genes
y de los posibles compuestos que alteran su expresión retardando o
deteniendo la progresión de la enfermedad permitiría no solo un
diagnóstico molecular selectivo y respecto a otras demencias sino
que permitiría el diseñoo de terapias selectivas destinadas a
inactivar estos genes.
La presente invención se refiere a un método de
diagnóstico in vitro para la demencia de cuerpos de Lewy
(DLB) en pacientes con sospecha clínica de inicio de demencia,
caracterizado porque comprende analizar una muestra obtenida de un
paciente para determinar el nivel de expresión del gen Ubiquitina
C-terminal hidrolasa L-1
(UCHL-1), donde los niveles de expresión reducidos
de UCH-L1 o de actividad enzimática en comparación
con controles es diagnóstico de DLB.
En particular, dicha muestra puede ser ARN o
proteína y puede aislarse a partir de células obtenidas por biopsia
o cualquier otro método de extracción de tejido nervioso o cualquier
otro método de extracción de cualquier otro tejido a partir de
fluidos biológicos como líquido cefalorraquídeo, suero u orina.
El método de diagnóstico de la presente
invención comprende adicionalmente una detección mediante una
amplificación por PCR, SDA o cualquier otro método de amplificación
de DNA que permita una estimación cuantitativa de los niveles de
trascrito de UCH-L1.
Optativamente, la detección se puede llevar a
cabo mediante biochips de DNA realizados con oligonucleótidos
depositados por cualquier mecanismo, por biochips de DNA realizados
con oligonucleótidos sintetizados in situ mediante
fotolitografía o por cualquier otro mecanismo.
También la detección se puede llevar a cabo
mediante una detección por análisis de cantidad de proteína presente
realizado mediante Western-blot, análisis mediante
"protein-chip" utilizando anticuerpos
específicos contra UCH-L1 o mediante perfiles
proteicos realizados por espectrometría de masas o por cualquier
otro mecanismo que permita una estimación cuantitativa de los
niveles de proteína UCH-L1.
Optativamente, la detección se puede llevar a
cabo mediante análisis directo o indirecto de las actividad
enzimáticas de UCH-L1 in vitro o in
vivo, entendiendo como tales la actividad hidrolítica de los
ésteres y amidas de ubiquitina como la actividad
ubiquitil-ligasa.
También la detección se puede llevar a cabo
mediante una detección donde la muestra analizada y cuantificada es
la proteína codificada por dicho gen o fragmentos de la misma.
Optativamente, la detección se puede llevar a
cabo mediante análisis directo o indirecto del producto de la
actividad ligasa de la UCH-L1, es decir, de la
presencia de formas dimerizadas o polimerizadas de
poliubiquitinina.
Por otra parte, la presente invención tiene
también por objetivo adicional proporcionar un método de análisis
de compuestos para identificar agentes terapéuticos basados en su
capacidad de potenciar los niveles de la enzima
UCH-L1 para detener o revertir la progresión de este
tipo de demencias. Estos compuestos pueden ser promotores
específicos de la trascripción del gen UCH-L1 o
inhibidores específicos de la degradación de la proteína codificada
por el gen UCH-L1.
Asimismo, es objeto de la presente invención el
uso de compuestos para incrementar o acelerar la actividad
hidrolítica de la enzima UCH-L1 para detener o
revertir la progresión de este tipo de demencias. Estos compuestos
pueden afectar la velocidad máxima o la afinidad de la
UCH-L1 frente a los esteres a o amidas de
peptidilubiquitina.
La invención también se refiere a un vector de
expresión quecomprende un gen que codifica la forma S18Y de
UCH-L1 para su uso en detener o revertir la
progresión de la demencia con cuerpos de Lewy.
Por otra parte, la presente invención describe
un método de análisis de compuestos de potencialidad terapéutica en
demencia de cuerpos de Lewy, basado en el análisis de la variación
de la actividad hidrolítica de UCH-L1 en sistemas
in vitro como cultivos celulares u otros.
También se describe un método de análisis de
compuestos de potencialidad terapéutica en demencia de cuerpos de
Lewy basado en el análisis de la variación de la actividad
ubiquitil-ligasa de UCH-L1 en
sistemas in vitro como cultivos celulares u otros.
\newpage
La presente invención está basada en el
descubrimiento realizado a partir de análisis genómicos en DNA chips
con oligonucleótidos diseñados de forma específica para representar
627 genes de especial interés realizados sobre corteza cerebral de
que en una cohorte de pacientes afectos de Demencia de cuerpos de
Lewy (DLB) tanto en su forma pura como en la forma denominada
común, que manifiesta además algunos síntomas concomitantes de
enfermedad de Alzheimer. En estos casos los niveles de ARNm del gen
UCHL-1 se encontraban disminuidos respecto a los
controles y respecto a una cohorte de pacientes afectos de
enfermedad de Alzheimer (AD) y de Parkinson (PD). Este dato fue
corroborado por técnicas independientes como la cuantificación de
ARNm mediante PCR en tiempo real. La significación de este descenso
en los niveles de mARN fue además comprobada en relación a los
procesos generales y específicos de degradación que sufren las
diferentes especies de ARNm en los tejidos
post-mortem. Experimentos en los que la misma
muestra post-mortem era procesada y el ARN obtenido
tras haber estado el tejido a temperatura ambiente durante
diferentes tiempos mostraban que los niveles de
UCH-L1 permanecían constantes comprados con los de
transcritos constitutivos o poco variables como el de la
\beta-actina.
También se comprobó que los niveles de proteína,
analizados mediante experimento de Western-Blot
empleando anticuerpos específicos
anti-UCH-L1, se encontraban asimismo
disminuidos en la corteza cerebral en la DLB, pero no en la PD.
Estas disminuciones de los niveles de ARNm y de
proteína UCHL-1 eran estadísticamente significativas
comparadas con los controles con unos niveles de significación de
0.99 para la forma pura de la DLB y 0.95 para la forma común.
La demencia de cuerpos de Lewy (DLB) es la
segunda demencia más común después de la enfermedad de Alzheimer
(AD). Histopatológicamente se caracteriza por una acumulación de
cuerpos hialinos (los cuerpos o acumulos de Lewy) en ciertos
núcleos del tracto cerebral, medula espinal y ganglios autónomos. En
PD también se producen cuerpos de Lewy y ambas (PD y DLB) son
consideradas \alpha-sinucleopatías por el acumulo
de esta proteína en los cuerpos de Lewy. Aunque DLB tiene un cierto
solapamiento sintomático con PD, ambas enfermedades presentan
cuadros neurológicos muy diferenciados y la afectación cerebral es
también distinta. Así por ejemplo, DLB presenta afectación cortical
que es inexistente en PD y un cuadro neurológico alucinatorio
inexistente en PD, el tratamiento sintomático
anti-PD en enfermos de DLB complica de forma muy
grave el cuadro neurológico de estos pacientes. Existe un consenso
clínico y neurológico bien establecido de que ambas son enfermedades
claramente diferentes.
UCH-L1 es una enzima implicada
en los mecanismos del Sistema UPS (Ubiquitinaproteasoma) responsable
de la degradación fisiológica de proteínas citoplasmáticas que son
defectuosas, mutantes o están en exceso. UCH-L1 es
una tiol-proteasa responsable de hidrolizar los
enlaces peptídicos de los complejos proteicos unidos a la glicina
carboxiterminal de la ubiquitina que conllevan a la destrucción
regulada de proteínas sobrantes en el citoplasma celular y
liberando ubiquitina que queda así disponible para unirse a nuevas
proteína que deben eliminarse.
En PD, una enfermedad que comparte algunos
síntomas con DBL, pero que contrariamente a esta no muestra nunca
afectación cortical, ya se había notado la posible importancia de
estos mecanismos de regulación de las proteínas sobrantes en el
citoplasma celular en el desarrollo de la enfermedad ya que la
parkina una proteína que interacciona con la ubiquitina está mutada
en ciertos casos de PD hereditario (McNaught KS, Olanow CW (2003)
Proteolytic stress: a unifying concept for the etiopathogenesis of
Parkinson's disease. Ann Neurol 53: S73-84). También
UCH-L1 se ligó a PD al descubrirse que existe una
mutación puntual (l93M) que, con un cierto grade de dominancia,
confiere susceptibilidad de producir la enfermedad (Leroy E, Boyer
R, Auburger G, Leube B, Ulm G, Mezey E, Harta G, Brownstein MJ,
Jonnalagada S, Chernova T, Dehejia A, Lavedan C, Gasser T, Steinbach
PJ, Wilkinson KD, Polymeropoulos MH (1998) The ubiquitin pathway in
Parkinson's disease. Nature 395: 451-452); y en un
estudio colaborativo donde se analizaron los 11 estudios realizados
hasta la fecha en 1970 casos de PD y 2224 controles no
relacionados, se determinó que existía una asociación inversa
estadísticamente significativa entre el alelo S18Y y la enfermedad
de Parkinson (odds ratio (OR) de 0.84 (95% intervalo de confianza
[Cl], 0.73-0.95) y homozigotos para la variante
alélica (Y/Y vs S/S más Y/S) tenían un OR de 0.71 (95% CI,
0.57-0.88) lo que confirmaba UCH-L1
como un gen de susceptibilidad para el PD. (Maraganore, D. M.;
Lesnick, T. G.; Elbaz, A.; Chartier-Harlin,
M.-C.;Gasser, T.; Kruger, R.; Hattori, N.; Mellick, G. D.;
Quattrone, A.; Satoh, J.; Toda, T.; Wang, J.; loannidis, J. P. A.;
de Andrade, M.; Rocca, W. A.; UCHL1 Global Genetics Consortium:
UCHL1 is a Parkinson's disease susceptibility gene. Ann. Neurol.
55: 512-521, 2004). También recientemente se ha
descrito una disminución de los niveles de UCH-L1 y
la presencia de ciertas modificaciones oxidativas en Alzheimer y
Parkinson idiopático (Choi J, Levey AI, Weintraub ST, Rees HD,
Gearing M, Chin LS, Li L (2004) Oxidative modifications and
down-regulation of ubiquitin
carboxyl-terminal hydrolase L1 associated with
idiopatic Parkinson's and Alzheimer's disease. J Biol Chem 279:
13256-13264).
No obstante, la posible conexión entre los
niveles de UCH-L1 y la Demencia de cuerpos de Lewy
no había sido descrita hasta la fecha. Por lo tanto, la presente
descripción demuestra una clara correlación entre los niveles de
ARNm y de proteína UCH-L1 de la corteza cerebral en
los enfermos de DLB respecto a los controles. Además los
experimentos de la descripción muestran con claridad como la
reducción de los niveles proteicos de UCH-L1 en
pacientes afectos de DLB no muestran decrementos concomitantes de
otras proteínas claves del complejo
ubiquitina-proteasoma como las subunidades 20SX,
20SY, complejo 19S y la subunidad 11S\alpha del activador PA28.
Esto indica un papel específico y selectivo de la represión de los
niveles de UCH-L1 en el cuadro patológico de la DLB
en la corteza cerebral.
\newpage
Actualmente, los enfermos con sospecha de DLB
son básicamente analizados neurológicamente, el deterioro mental
progresivo es detectado por síntomas tempranos como dificultades en
solucionar problemas y dificultades visuales y espaciales, así como
fluctuaciones en la función cognitiva y la aparición de
alucinaciones bien definidas. Posteriormente, la aparición de
signos motores constituyen las características centrales para un
diagnóstico discriminatorio de DLB frente a otras demencias
(McKeith IG, Galasko D, Kosaka K, Perry EK, Dickson DW, Hansen LA,
Salmon DP, Lowe J, Mirra SS, Byrne EJ, Lennox G, Quinn NP, Edwardson
JA, Ince PG, Bergeron C, Burns A, Miller BL, Lovestone S, Collerton
D, Jansen EN, Ballard C, de Vos RA, Wilcock GK, Jellinger KA, Perry
RH (1996) Consensus guidelines for the clinical and pathologic
diagnosis of dementia with Lewy bodies (DLB): Report of the
consortium on DLB inteARNtional workshop. Neurology 47:
1113-1124 y McKeith IG, Ballard CG, Perry RH, Ince
PG, O'Brien JT, Neill D, Lowery K, Jaros E, Barber R, Thompson P,
Swann A, Fairbairn AF, Perry EK. Prospective validation of
consensus criteria for the diagnosis of dementia with Lewy bodies.
Neurology. 2000 Mar 14;54(5):1050-8). Un
diagnóstico inequívoco temprano permitiría disponer de un margen
terapéutico que reduzca o detenga el avance de la enfermedad.
De acuerdo con el método de diagnóstico de la
presente descripción el análisis de DLB quedaría de la siguiente
forma: un paciente que tiene un cuadro de sospecha de inicio de
demencia y con una apreciación clínica-familiar no
definitiva sería diagnosticado por una microbiopsia y una
cuantificación de los niveles de UCH-L1.
En efecto, el conocimiento de las actividades
enzimáticas de UCH-L1, la actividad hidrolasa que
libera la ubiquitina (Larsen CN, Krantz BA, Wilkinson KD. Substrate
specificity of de-ubiquitinating enzymes: ubiquitin
C-terminal hydrolases. Biochemistry. 1998; 37:
3358-68. y Larsen CN, Price JS, Wilkinson KD.
Substrate binding and catalysis by ubiquitin
C-terminal hydrolases: identification of two active
site residues. Biochemistry. 1996; 35: 6735-44) y
la actividad ubiquitil-ligasa (Liu Y, Fallon L,
Lashuel HA, Liu Z, Lansbury PT (2002) The UCH-L1
gene encodes two opposing enzymatic activities that affect
\alpha-synuclein degradation and Parkinson's
disease susceptibility. Cell 111: 209-218) permite
diseñar métodos de análisis de compuestos y permite comprobar la
eficacia de moléculas que interfieran las actividades de
UCH-L1 en la dirección deseada.
La terapia anti-DLB comienza por
determinar la presencia de niveles disminuidos de
UCH-L1 en tejido nervioso o en CSF o en fluidos
periféricos. En ratones defectivos de UCH-L1 se ha
observado un decremento de la ubiquitina libre en neuronas y en
ratón transgénico sobrexpresando UCHL-1 y en
sistemas de cultivos celulares la sobrexpresión de
UCH-L1 implica un incremento de los niveles de
ubiquitina, (Osaka H, Wang YL, Takada K, Takizawa S, Setsuie R, Li
H, Sato Y, Nishikawa K, Sun YJ, Sakurai M, Harada T, Hara Y, Kimura
I, Chiba S, Namikawa K, Kiyama H, Noda M, Aoki S, Wada K (2003)
Ubiquitin carboxy-terminal hydrolase L1 binds to and
stabilizes monoubiquitin in neuron. Hum Mol Genet 12:
1945-1958.). Además, la colocalización de
\alpha-sinucleina y ubiquitina en los cuerpos de
Lewy y en las neuritas de Lewy (McNaught KS, Olanow CW (2003)
Proteolytic stress: a unifying concept for the etiopathogenesis of
Parkinson's disease. Ann Neurol 53: S73-84.;
McNaught KS, Mytilineou C, Jnobaptiste R, Yabut J, Shashidharan P,
Jennert P, Olanow CW (2002b) Impairment of the
ubiquitin-proteasome system causes dopaminergic
cell death and inclusion body formation in ventral mesencephalic
cultures. J Neurochem 81: 301-306) así como
nuestras de que otros componentes importantes del complejo UPS no se
encuentran disminuidas en el cuadro de DLB debido de forma
principal a una disminución de la actividad UCH-L1
hacen que sea una hipótesis muy verosímil que el sistema
ubiquitina-proteasoma esté implicado en la
patogénesis de PD y de DLB.
Por lo tanto, el establecimiento de la clara
correlación entre los niveles de UCH-L1 y la
enfermedad DLB permite considerar de forma novedosa la aplicación
de tecnologías y de compuestos, bien para el incremento de los
niveles de enzima activo, bien de la inactivación de la actividad
ubiquitil-ligasasa o bien para la activación de la
actividad hidrolasa. Esta aplicación de tecnologías y/o compuestos
activos pueden suponer la contención y/o regresión de la enfermedad
ya que producen el incremento de la ubiquitina libre disponible en
el pool citoplasmático celular y por tanto permite a las neuronas
catabolizar correctamente las proteínas que deben ser eliminadas
causando la disminución en la concentración de
\alpha-sinucleína y otras proteínas que son los
responsables de los cuerpos de Lewy.
Un ejemplo de aproximación de sobrexpresión de
UCH-L1 sería la inserción de un casette codificante
para la forma S18Y de UCH-L1 que tiene una
capacidad ubiquitil-ligasa reducida en un vector de
expresión adenoviral, retroviral o de otro tipo. Este tipo de
vector podría ser introducido mediante transplante en células madre
nerviosas (neural steam cell) de procedencia embrionaria o adulta
(derivadas de la zona subventricular u otra) portadoras del vector
de expresión. Una aproximación similar podría ser el trasplante de
células madre codificantes para un factor de transcripción que
exalte la transcripción del gen UCH-L1endógeno.
Recientemente se ha demostrado que un factor de transcripción:
B.Myb, que se identificó por su similaridad con
v-Myb un oncogen de retrovirus de pollo y que
modula la transición G1/s del ciclo celular (N. Nomura, M.
Takahashi, M. Matsui et al., Isolation of human cdna clones
of myb-related genes, a-myb and
b-myb. Nucleic Acids Res. 16 (1988), pp.
11075-11089 published erratum appears in Nucleic
Acids Res. 1989 February 11;17(3):1282), es capaz estimular
la expresión de UCHL1 tanto in vitro como in vivo en
pulmón de rata (Long EM, Long MA, Tsirigotis M, Gray DA. Stimulation
of the murine Uchl1 gene promoter by the B-Myb
transcription factor._Lung Cancer. 2003
Oct;42(1):9-21.)
Otro ejemplo en esta línea podría introducir
versiones mutadas de la UCHL-1 con la actividad
hidrolítica exaltada.
Un ejemplo demostrativo de este efecto puede
postularse con líneas celulares neuronales del mesencéfalo ventral
de rata donde la inhibición de UCHL-1 produce
agregados de \alpha-sinucleina y la sobrexpresión
produce incremento en la cantidad de ubiquitina libre.
Otro ejemplo experimental es el obtenido en la
línea celular de neuroblastoma SHS5Y donde tratamientos con
5-100 microM de MPP+, el metabolito activo de MPTP,
induce apoptosis en las células SH-SY5Y en los 4
días siguientes a tratamiento y además en este proceso reproducen
la sobrexpresión de \alpha-sinucleína que forman
los agregados de Lewy propios de la DLB
(Gomez-Santos C, Ferrer I, Reiriz J, Vinals F,
Barrachina M, Ambrosio S. MPP+ increases
alpha-synuclein expression and
ERK/MAP-kinase phosphorylation in human
neuroblastoma SH-SY5Y cells. Brain Res. 2002 May
10;935 (1-2):32-9.).
Una pequeña parte de las demencias puede además
tener un carácter familiar, tal como se ha descrito en el caso de
PD donde una mutación en UCH-L1 (la mutación alemana
193M) provoca un decremento de la actividad hidrolítica de un 50%
(Lansbury PT, Brice A (2002) Genetics of Parkinson's disease and
biochemical studies of implicated gene products. Curr Opin Genet
Dev 13: 299-306.). También algunos de los subtipos
de DLB parece que podrían presentar un cierto grado de dominancia
autosómica (Harding AJ, Das A, Kril JJ, Brooks WS, Duffy D, Halliday
GM. Identification of families with cortical Lewy body disease. Am
J Med Genet. 2004 Jul 1;128B(1):118-22). La
mutación de UCH-L1 I93M tiene también una cierta
dominancia si bien la penetrancia de la misma no es absoluta, lo
que ha llevado a postular fenómenos de compensación alélica en trans
(Liu Y, Fallon L, Lashuel HA, Liu Z, Lansbury PT (2002) The
UCH-L1 gene encodes two opposing enzymatic
activities that affect \alpha-synuclein
degradation and Parkinson's disease susceptibility. Cell 111:
209-218).
En este contexto, tienen sentido aproximaciones
de inhibiciones químicas o inmunológicas que se han probado con
cierto éxito en otros campos terapéuticos como el oncológico, donde
hay ejemplos como la beta-catenina en el cáncer
colorrectal y con BCR-ABL en leucemia mieloide
crónica. Estas observaciones sugieren que ciertos oncogenes podrían
ser susceptibles de una disrupción provocando la caída del fenotipo
tumoral o permitiendo la eficacia del tratamiento estándar
combinado. De entre los mecanismos de disrupción génica disponibles,
la interferencia por ARNs de pequeño tamaño (ARNi) es una de las
aproximaciones más prometedoras, inicialmente descubierto en
petunias (Napoli C, Lemieux C, and Jorgensen R. (1990) Introduction
of a chalcone synthase gene into Petunia results in reversible
co-suppression of homologous genes in trans. Plant
Cell 2: 279-289) su mecanismo molecular de acción
ha sido descrito (Hammond SM, Caudy AA, Hannon GJ. (2001)
Post-transcriptional Gene Silencing by
Double-stranded ARN. Nature Rev Gen 2:
110-119) y ha suscitado una gran expectativa en sus
aplicaciones antitumorales (Kittler R, Buchholz F.ARN interference:
gene silencing in the fast lane. Semin Cancer Biol. 2003
Aug;13(4):259-65; Deveraux QL,
Aza-Blanc P, Wagner KW, Bauerschlag D, Cooke MP,
Hampton GM. Exposing oncogenic dependencies for cancer drug target
discovery and validation using ARNi. Semin Cancer Biol. 2003
Aug;13(4):293-300; Bedford JS, Liber HL
Applications of ARN interference for studies in DNA damage
processing, genome stability, mutagenesis, and cancer. Semin Cancer
Biol. 2003 Aug;13(4):301-8). De forma
similar, una aproximación antisentido podría reducir el nivel de
mensajero producido por el alelo I93M u otro que confiera un
decremento de la actividad hidrolítica.
En la tabla siguiente se describen como ejemplo
algunas de las dianas posibles en el cDNA para reducir la expresión
de respectivamente UGH-L1 I93M o de un alelo de
UCH-L1 que no contiene la mutación I93M.
También se contempla como parte de la presente
descripción el uso de sistemas in vitro para realizar
análisis de compuestos terapéuticos y/o composiciones farmacéuticas
que puedan remediar el daño neuronal producido por los agregados de
Lewy. Líneas celulares de tipo líneas de neuroblastoma SHS5Y donde
tratamientos con 5-100 microM de MPP+, el
metabolito activo de MPTP, inducen apoptosis en las células
SH-SY5Y y además en este proceso reproducen la
sobrexpresión de \alpha-sinucleina que forman los
agregados de Lewy propios de la DLB (Gomez-Santos
C, Ferrer I, Reiriz J, Vinals F, Barrachina M, Ambrosio S. MPP+
increases alpha-synuclein expression and
ERK/MAP-kinase phosphorylation in human
neuroblastoma SH-SY5Y cells. Brain Res. 2002 May
10;935 (1-2):32-9). En estas líneas
celulares se pueden comprobar la eficacia de los compuestos
monitorizando los niveles de UCH-L1, su actividades
enzimáticas, los depósitos de \alpha-sinucleina y
la propia apoptosis de las células. Estos compuestos terapéuticos
y/o composiciones farmacéuticas pueden unirse a la proteína
UCH-L1 e inhibir de forma no competitiva la
actividad ubiquitil-ligasa y restaurar la capacidad
de liberación de ubiquitina normal de la misma. De forma
alternativa, estos compuestos terapéuticos y/o composiciones
farmacéuticas pueden modificar la expresión de vías de señalización
celular provocadas por la sobre-acumulación de
proteínas como consecuencia de una alteración del Sistema UPS.
Figura 1: A) Representación gráfica de la
amplificación de UCH-L1 mediante diluciones seriadas
de ARN procedente de área cortical de cerebro de 8 humanos. La
línea horizontal representa el umbral ajustado manualmente en la
fase exponencial. La intensidad de la fluorescencia se incrementa
con los ciclos de PCR. EI número de ciclos a partir del cual la
intensidad de fluorescencia excede la línea umbral es definido como
el valor umbral CT en el cual se basa la cuantificación. B) Curves
estándar representativas para la \beta-actina y la
UCH-L1 construidas a partir de diferentes
concentraciones de ARN procedente de cerebro control humano. Los
valores CT (eje y) vs log de las diferentes concentraciones de ARN
de muestras control (eje x) muestran una correlación linear
inversa.
Figura 2: Niveles de expresión relativa del gen
UCH-L1 en el córtex frontal de controles (C, n=6),
Enfermedad de Parkinson (PO, n=6), Enfermedad de cuerpos de Lewy
difusa, Demencia con cuerpos de Lewy, forma pura (DLBp, n=7) y
forma común (DLBc, n=6). (A) Niveles de ARNm de
UCH-L1 (promedio \pm SEM) normalizados con la
\beta-actina. B) Niveles proteicos de
UCH-L1 (dos bandas de aproximadamente 25 KDa),
detectados por Western Blot en los homogeneizados totales de córtex
frontal (area 8). La \beta-actina (45 kDa) se
detecta como control de carga proteica. La imagen es representativa
de todas las muestras estudiadas e indicadas en la Tabla I. C)
Análisis densitométrico de los niveles proteicos de
UCH-L1 (promedio \pm SEM) con el programa TotalLab
v2.01. Los valores proteicos de UCH-L1 fueron
normalizados con los de la \beta-actina. Los
valores encontrados son estadísticamente significativos con
*p<0.05 y **p<0.01 comparando con las muestras control (ANOVA
con el test post-hoc LSD).
Figura 3: Estabilidad
post-mortem de los niveles proteicos de
UCH-L1 (dos bandas de 25 kDa aproximadamente)
detectados por Western blot en homogeneizados totales de córtex
frontal de una muestra individual (con 3 h de
post-mortem). Las muestras se congelaron en
nitrógeno líquido directamente (0 h) o dejadas a temperatura
ambiente durante 3, 6 o 22 h y entonces congeladas en nitrógeno
líquido. La imagen no muestra una degradación aparente de
UCH-L1 hasta las 22 h.
Figura 4: Niveles proteicos de
UCH-L1 detectados por Western blot en suero de
individuos control. La imagen muestra una banda específica
correspondiente con el peso molecular aparente de
UCH-L1.
Figura 5: Niveles proteicos de las subunidades
del proteosoma en el córtex frontal de controles (C, n=6),
Enfermedad de Parkinson (PD, n=6), Enfermedad de cuerpos de Lewy
difusa, Demencia con cuerpos de Lewy, forma pura (DLBp, n=7) y
forma común (DLBc, n=6): subunidades \beta del complejo 20S, 20SX
y 20SY, complejo 19S y el activador 11S\alpha. La
\beta-actina es detectada para controlar la carga
proteica en el gel. La imagen es representativa de todas las
muestras indicadas en la Tabla I. Análisis densitométrico de los
niveles proteicos de las subunidades del proteosoma (promedio \pm
SEM) usando el programa TotalLab v2.01. Los valores proteicos de
UCH-L1 fueron normalizados con los de la
\beta-actina. No se detectan diferencias
estadísticamente significativas entre los casos control y
patológicos.
Figura 6: Valores de temperatura de hibridación
y de hibridación cruzada de oligonucleótidos diseñados
específicamente para amplificar el alelo específico 193M de
UCH-L1 comparado con los valores de los oligos que
son complementarios del alelo normal o salvaje. Tm: temperatura de
hibridación del oligo específico para gen UCH-L1
193M con su oligo complementario. Tm cross: temperatura de
hibridación del oligo específico para gen UCH-L1
193M con el oligo complementario para el del gen
UCH-L1 salvaje. Delta Tm: Tm-Tm
cross.
A continuación se describe una realización
preferente, aunque no limitativa, de la invención.
En la siguiente tabla se resumen los casos
estudiados con los datos neuropatológicos de la presente serie:
Enfermedad de Parkinson (PD), Demencia con cuerpos de Lewy en forma
pura (DLBp) y en forma común (DLBc), y controles M: hombre, F:
mujer. NFT: ovillos neurofibrilares (neurofibrillary tangle).
Estadios Braak indica los cambios de enfermedad de
Alzheimer(AD) asociados con DDLB descritos por (Braak H,
Braak E (1999) Temporal sequence of Alzheimer's disease related
pathology. In: Cerebral cortex, vol 14, Neurodegenerative and
age-related changes in structure and function of
cerebral cortex (Peters A, Morrison JH, eds), pp
475-512. New York, Boston, Dordrecht, London,
Moscow: Kluwer Academic/Plenum Publishers).
Con el correspondiente permiso ético de los
pacientes se obtuvieron las muestras de ARN y de proteína de las
muestras, como se describe a continuación.
\newpage
Obtención de ARN de las muestras de área 8
cortical de los diferentes pacientes y controles. La obtención
del ARNm se realizó en dos pasos. Se obtuvo el ARN total utilizando
el reactivo TRizol (Life Technologies) y a continuación se obtuvo
ARNm sin ARN de transferencia ni los ARN ribosomales 5S y 5.8S
utilizando el kit RNeasy Protect Mini Kit (Qiagen). El tejido
cerebral humano congelado se homogenizó directamente en 1 ml del
reactivo TRizol por 100 mg de tejido, y el ARN total se extrajo
siguiendo el protocolo indicado por la casa comercial. Este ARN
total purificado se resuspendió en 100 \mul de agua libre de
ARNsas, y la purificación del ARNm se obtuvo siguiendo las
especificaciones indicadas en el RNeasy Protect Mini Kit con
modificaciones menores; el tratamiento con DNasa I no se realizó ya
que el ADN genómico fue eliminado durante la extracción con el
reactivo TRizol. La concentración de cada muestra se obtuvo con las
mediciones realizadas a una absorbancia de 260 nm, y la integridad
del ARN se confirmó realizando una electroforesis con geles de
agarosa-formaldehído.
DNA arrays Para los análisis
transcriptómicos, las muestras de ARN se analizaron adicionalmente
empleando el Agilent 2100 BioAnalyzer que calcula el tamaño de
fragmentos y la concentración de la muestra así como el ratio entre
los picos de los ARN 16S y 28S. Todas las muestras se marcaron
mediante el Kit MessageAmp ARN de Ambion, la primera cadena de la
síntesis de cDNA se cebó utilizando cebadores oligodT. Las muestras
de aARN marcadas se analizaron en oligo DNA-chips
representando 627 genes de específico interés, cada uno de ellos
representado por dos veces cinco oligos dispuestos al azar en la
superficie del DNA-chip. Los oligos se sintetizaron
utilizando un instrumento Geniom I benchtop DNAchip synthesis de la
firma FEBIT una plataforma de microarray que integra todas
las funciones en un unico instrumento (Baum M, Bielau S, Rittner N,
Schmid K, Eggelbusch K, Dahms M, Schlauersbach A, Tahedl H, Beier
M, Guimil R, Scheffler M, Hermann C, Funk JM, Wixmerten A, Rebscher
H, Honig M, Andreae C, Buchner D, Moschel E, Glathe A, Jager. E,
Thom M, Greil A, Bestvater F, Obermeier F, Burgmaier J, Thome K,
Weichert S, Hein S, Binnewies T, Foitzik V, Muller M, Stahler CF,
Stahler PF. Validation of a novel, fully integrated and flexible
microarray benchtop facility for gene expression profiling. Nucleic
Acids Res 2003;31:e151). Los datos crudos se normalizaron siguiendo
el método no-linear de Lowess (Workman C, Jensen
LJ, Jarmer H, Berka R, Gautier L, Nielser HB, Saxild HH, Nielsen C,
Brunak S, Knudsen S. A new non-linear normalization
method for reducing variability in DNA microarray experiments.
Genome Biol 2002;3:9).
En estos experimentos sesestableció un limite de
exclusión (cut-off) de 0.75 veces el nivel de
expresión (fold change) para genes reprimidos un de 1.5 para
genes sobrexpresados en DBL respecto a controles. Obtuvimos 1 gen
sobrexpresado y 16 reprimidos, de ellos varios estaban implicados en
la ruta de degradación UPS y de forma relevante el UCHL1. Para
confirmar esta variación se procedió a utilizar técnicas
complementarias.
Síntesis del cDNA y PCR Taqman Por cada
10 \mul de reacción de transcripción reversa, 200 ng de ARN
humano (en 3.85 \mul de agua) se mezclaron con 2.5 \muM del
cebador oligodT, tampón 1x RT TaqMan, 5.5 mM MgCl2, 500 \muM de
cada dATP, dTTP, dCTP y dGTP, 0.08 U inhibidor de ARNsas y 0.31 U de
la transcriptasa reversa MultiScribe (Applied Biosystems). Las
reacciones se realizaron a 25ºC durante 10 minutos para maximizar
la unión cebador-molde de ARN, seguido por una
temperatura de 48ºC durante 30 minutos, y una incubación a 95ºC
durante 5 minutos para desactivar la transcriptasa reversa. Se
realizaron reacciones paralelas en ausencia de la transcriptasa
reversa MultiScribe para asegurar la ausencia de ADN genómico
contaminante. La sonda TaqMan (Applied Biosystems) se anilla a una
de las cadenas del molde de ADN entre los cebadores directo e
inverso de PCR. Contiene un fluoróforo, el cual es hidrolizado por
la Taq polimerasa durante la fase exponencial, siendo la
fluorescencia originada proporcional a la cantidad de producto
acumulado generado en la reacción de PCR. Tanto los cebadores como
las sondas específicas para los genes humanos UCH-L1
y \beta-actina fueron comprados como
Assays-on-Demand a Applied
Biosystems. La \beta-actina humana fue utilizada
como control endógeno.
Los ensayos de PCR TaqMan para el
UCH-L1 y el control endógeno
\beta-actina fueron realizados por triplicado
sobre muestras de cDNA en placas ópticas de 96 pocillos utilizando
el termociclador ABI Prism 7700 Sequence Detection system (PE
Applied Biosystems). La placa se tapó con tiras ópticas (Applied
Biosystems). Por cada 20 \mul de reacción TaqMan, 9 \mul de
cDNA (diluído 1/50, lo que corresponde aproximadamente a cDNA
obtenido a partir de 4 ng de ARN) fue mezclado con 1 \mul de
sonda TaqMan 20X y 10 \mul de 2X TaqMan Universal PCR Master Mix
(Applied Biosystems). Ensayos paralelos fueron realizados para cada
muestra con los cebadores y la sonda de la
\beta-actina para normalizar. La reacción se
realizó siguiendo los parámetros que a continuación se indican:
50ºC durante 2 minutos, 95ºC durante 10 minutos, y 40 ciclos a 95ºC
durante 15 segundos, 60ºC durante 1 minuto. La curvas estándar para
UCHL-1 y la \beta-actina se
prepararon utilizando diluciones seriadas de ARN convertido a cDNA
de cerebro humano control. Por último, todos los datos de la PCR
TaqMan fueron capturados con el programa Sequence Detector Software
(SDS version 1.9; Applied Biosystems).
Electroforesis y Western blotting. Para
comprobar que los niveles de proteína de UCH-L1 se
encontraban disminuidos, muestras de córtex frontal congelado (100
mg) se homogeneizaron directamente en 1 ml de tampón de lisis (20
mM Hepes, 10 mM KCI, 1.5 mM MgCl2, 1 mM EDTA, 1 mM EGTA, 1 mM DDT, 2
mM PMSF, 1 \mug/ml aprotinina, leupeptina y pepstatina) y
posteriormente se sonicó. Los lisados fueron centrifugados a 5,000
rpm durante 10 minutos a 4ºC y la concentración proteica se
determinó con el método de BCA (Pierce). 50 \mug de proteína
total fue hervida a 95ºC durante 3 minutos y cargada en geles de
SDS-poliacrilamida con tampón
Tris-glicina. Las proteínas fueron separadas en el
gel utilizando el sistema mini-protean
(Bio-Rad) y transferidas a membranas de
nitrocelulosa (Bio-Rad) con una cámara de
transferencia Trans-Blot SD Semi-Dry
Transfer Cell (Bio-Rad) durante 45 minutos a 40 mA.
Las membranas de nitrocelulosa fueron bloqueadas con Tween 20 TBS
(TBST) conteniendo un 5% de leche desnatada durante 30 minutos. A
continuación, fueron incubadas a 4ºC durante toda la noche con el
anticuerpo primario correspondiente preparado en tampón TBST
conteniendo un 3% de BSA. Los anticuerpos utilizados fueron:
anti-UCH-L1 (AB5937, Chemicon),
anti-UCH-L1
(MCA-2084, Serotec),
anti-\beta-actina (clone
AC-74, Sigma), antiproteosomA 19S 1\beta
(PA1-973, Affinity BioReagents),
anti-activador del proteosoma 11S\alpha
(PA1-960, Affinity BioReagents),
anti-proteosoma 20SX (PA1-977,
Affinity BioReagents) and anti-proteosoma 20SY
(PA1-978, Affinity BioReagents). Todos los
anticuerpos se utilizaron a una dilución de 1:500. Después de la
incubación con el anticuerpo primario, las membranas fueron lavadas
tres veces con el tampón TBST durante 5 minutos a temperatura
ambiente, y entonces se incubaron con el anticuerpo secundario
correspondiente, IgG marcada con peroxidasa (Dako) a una dilución
1:1,000 (1:5,000 para la \beta-actina) durante 1
h a temperatura ambiente. A continuación, las membranas se lavaron
cuatro veces durante 5 minutos cada lavado, con el tampón TBST a
temperatura ambiente y reveladas con el kit quimioluminiscente ECL
Western blotting system (Amersham/Pharmacia) seguido de la
superposición de las membranas con una película autoradiográfica
(Hyperfilm ECL, Amersham). La cuantificación de los niveles de
UCH-L1 se puede realizar en tejido periférico como
suero o líquido cefalorraquídeo. Tal como se muestra en la figura 4
se pueden detectar los niveles endógenos de UCHL1 en estos fluidos
biológicos.
Análisis cuantitativo de los datos. La
cuantificación densitométrica de las bandas del Western Blot se
realizó con el programa TotalLab v2.01. Para los análisis
estadísticos se utilizó el programa Statgraphics Plus v5.
Claims (13)
1. Método de diagnóstico in vitro para la
demencia de cuerpos de Lewy (DLB) en pacientes con sospecha clínica
de inicio de demencia, caracterizado porque comprende
analizar una muestra obtenida de un paciente para determinar el
nivel de expresión del gen Ubiquitina C-terminal
hidrolasa L-1 (UCHL-1), donde los
niveles de expresión reducidos de UCH-L1 en
comparación con controles es diagnóstico de DLB.
2. El método de diagnóstico in vitro
según la reivindicación 1, caracterizado porque la muestra a
analizar es ARN o proteína.
3. El método de diagnóstico in vitro
según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 2, caracterizado
porque la muestra analizada y cuantificada es la proteína
codificada por el gen UCH-L1.
4. El método de diagnóstico in vitro
según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado
porque la muestra es aislada de células de tejido nervioso
obtenidas por biopsia o cualquier otro método de extracción.
5. El método de diagnóstico in vitro
según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado
porque la muestra es aislada de células neuroendocrinas periféricas
obtenidas por biopsia o cualquier otro método de extracción.
6. El método de diagnóstico in vitro
según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, caracterizado
porque la muestra es aislada a partir de fluidos biológicos como
líquido cefalorraquídeo, suero u orina.
7. El método de diagnóstico in vitro
según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, caracterizado
porque se realiza una detección mediante una amplificación por PCR,
SDA o cualquier otro método de amplificación de cDNA que permita
una estimación cuantitativa de los niveles de transcripto de
UCH-L1.
8. El método de diagnóstico in vitro
según cualquiera de las reivindicación 1 a 6, caracterizado
porque se lleva a cabo una detección por biochips de DNA realizados
con oligonucleótidos depositados por cualquier mecanismo.
9. El método de diagnóstico in vitro
según cualquiera de las reivindicación 1 a 6, caracterizado
porque se lleva a cabo una detección por biochips de DNA realizados
con oligonucleótidos sintetizados in situ mediante
fotolitografía o por cualquier otro mecanismo.
10. El método de diagnóstico in vitro
según cualquiera de las reivindicación 1 a 6, caracterizado
porque se lleva a cabo una detección por análisis de cantidad de
proteína presente realizado mediante Western-blot,
análisis mediante "protein-chip" utilizando
anticuerpos específicos contra UCH-L1 o mediante
perfiles proteicos realizados por espectrometría de masas o por
cualquier otro mecanismo que permita una estimación cuantitativa de
los niveles de proteína UCH-L1.
11. Vector de expresión que comprende un gen que
codifica la forma S18Y de UCH-L1 para el uso en
detener o revertir la progresión de demencia de cuerpos de Lewy que
producen un incremento de los niveles de la enzima
UCH-L1.
12. Método de análisis de compuestos para
identificar agentes terapéuticos basados en su aptitud para
incrementar los niveles de UCH-L1 para detener o
revertir la progresión de demencia de cuerpos de Lewy.
13. El método de la reivindicación 12, donde los
compuestos son promotores específicos de la transcripción del gen
de UCH-L1.
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