ES2337492T3 - Formulaciones y formas de uso de la vacuna capsomero de virus de papiloma. - Google Patents

Formulaciones y formas de uso de la vacuna capsomero de virus de papiloma. Download PDF

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Abstract

Una formulación antigénica que comprende un capsómero de virus de papiloma humano para usar como una vacuna, estando dicho capsómero compuesto de una proteína de fusión compuesta de proteína L1 de virus de papiloma humano, residuos de amino ácido adyacentes de una segunda proteína, donde la segunda proteína es un antígeno de tumor humano, un antígeno viral o antígeno bacterial, provocando dicha formulación una respuesta inmune la cual neutraliza los viriones del virus de papiloma humano donde dicho capsómero es obtenido por separación de partículas tipo virus.

Description

Formulaciones y formas de uso de la vacuna capsómero de virus de papiloma.
Campo de la invención
La presente invención se relaciona con formulaciones de vacunas que comprenden proteínas del virus del papiloma, como proteínas de fusión, proteínas truncadas, o proteínas de fusión truncadas. La invención adicionalmente abarca métodos para producir capsómeros de las formulaciones, como también métodos profilácticos y terapéuticos para su uso.
Antecedentes
Infecciones con ciertas cepas de alto riesgo de virus genital de papiloma en humanos (VPH) -por ejemplo. VPH 16, 18, o 45- se cree que son el principal factor de riesgo para la formación de tumores malignos del tracto anogenital. De las posibles malignidades, el carcinoma cervical es, con mucho, el más frecuente: de acuerdo a un estimado por la Organización Mundial de la Salud (OMS), casi 500.000 nuevos casos de la enfermedad ocurren anualmente. Por la frecuencia con la cual ocurre esta patología, la conexión entre infección con VPH y carcinoma cervical ha sido extensivamente examinada, llevando a numerosas generalizaciones.
Por ejemplo, se conocen lesiones precursoras de neoplasia intraepitelial cervical (NIC) por ser causadas por infecciones con el virus del papiloma [Crum, New Eng. J. Med. 310.880-883 (1984)]. ADN de los genomas de ciertos tipos de VPH, incluyendo por ejemplo, cepas 16, 18, 33, 35, y 45, han sido detectados en mas de 95% de las biopsias de tumor de pacientes con esta enfermedad, como también en líneas celulares primarias cultivadas de los tumores. Se ha encontrado que aproximadamente 50 a 70% de las células tumorales NIC incluyen ADN derivado solo de VPH 16.
Los productos de proteínas de los genes tempranos de VPH 16 y VPH 18 E6 y E7 han sido detectados en líneas celulares de carcinoma cervical como también en queratinocitos humanos transformados in vitro [Wettstein, et al., en PAPILLOMA VIRUSES AND HUMAN CANCER, Pfister (Ed.),CRC Press: Boca Raton, FL 1990 pp 155-179] y un porcentaje significativo de pacientes con carcinoma cervical tienen anticuerpos anti-E6 o anti-E7. Se ha mostrado que las proteínas E6 y E7 participan en inducción de síntesis de ADN celular en células humanas, transformación de queratinocitos humanos y otros tipos de células, y formación de tumores en ratones transgénicos [Arbelt, et al., J. Virol. , 68:4358-4364 (1994): Auewarakul, et al., Mol. Cell. Biol. 14:8250-8258 (1994); Barbosa. et al., J. Virol. 65:292-298 (1991); Kaur, et al., J. Gen. Virol. 70:1261-1266 (1989): Schlegel, et al., EMBO J., 7:3181-3187 (1988)]. La expresión constitutiva de las proteínas E6/E7 parece ser necesaria para mantener la condición transformada de tumores VPH-positivos.
A pesar de la capacidad de algunas cepas VPH para inducir fenotipos neoplásicos in vivo e in vitro, todavía otros tipos de VPH causan verrugas genitales benignas tales como Condylomata acuminata y son solo raramente asociados con tumores malignos [Ikenberg. In Gross, et al., (eds.) GENITAL PAPILLOMAVIRUS INFECTIONS. Springer Verlag: Berlin, pp., 87-112]. Cepas de bajo riesgo de este tipo incluyen, por ejemplo, VPH 6 y 11.
Más a menudo, los virus del papiloma genital humano son transmitidos entre humanos durante el coito, lo cual en muchos casos, conlleva a la infección persistente en la membrana mucosa anogenital. Mientras esta observación sugiere que la infección primaria induce una respuesta inmune inadecuada o que el virus ha desarrollado la habilidad de evadir la vigilancia inmune, otras observaciones sugieren que el sistema inmune está activo durante la manifestación primaria como también durante la progresión maligna de infecciones del virus del papiloma [Altmann et al. en VIRUSES AND CANCER, Minson et al., (eds.) Cambridge University Press, (1994) pp. 71-80].
Por ejemplo, la manifestación clínica de la infección primaria con virus de papiloma de conejo o bovino puede ser prevenida con vacunación con extractos de verrugas o proteínas estructurales virales [Altmann, et al., supra; Campo, Curr. Top. En Microbiol and Immunol. 186:255-266 (1994); Yindle and Frazer, Curr. Top. En Microbiol. and Immunol. 186;217-253 (1994)]. Roedores previamente vacunados con recombinantes vaccinia que codifican proteínas tempranas VPH 16 E6 o E7, o con péptidos E6 o E7 sintéticos, son de la misma forma protegidos de la formación de tumores después de la inoculación de células transformadas autólogas VPH 16 [Altman, et al., supra; Campo, et al., supra; Yindle and Frazer, et al. supra]. La regresión de las verrugas puede ser inducida por la transferencia de linfocitos de animales regresores seguida de infección por virus de papiloma animal. Finalmente, en pacientes inmunosuprimidos, tales como, por ejemplo, receptores de transplantes de órganos o individuos infectados con VIH, la incidencia de verrugas genitales, NIC, y cáncer anogenital es elevada.
DE4435907A y Virology 234, 1997, páginas 93-111 revela varios métodos para producir partículas tipo virus VPH. W09531476A revela el uso de un polipéptido sintético durante la preparación de una proteína de fusión L1 recombinante.
Hasta la fecha, no se han descrito vacunas de VPH que comprendan el virus del papiloma humano proteína L1 tardía en la forma de capsómeros que sean adecuados para propósitos profilácticos y terapéuticos. Ya que la proteína L1 no está presente en lesiones genitales malignas, la vacunación con la proteína L1 no tiene ningún potencial terapéutico para estos pacientes. La construcción de proteínas quiméricas, que comprende residuos de amino ácidos de la proteína L1 y, por ejemplo proteína E6 o E7, lo que da lugar a capsómeros quiméricos, combina funciones profilácticas y terapéuticas de una vacuna. Un método para producción de alto nivel de capsómeros quiméricos sería por lo tanto particularmente deseable, en vista de las posibles ventajas ofrecidas por tal vacuna para intervención profiláctica y terapéutica.
Por lo tanto existe una necesidad en la técnica para proveer formulaciones de vacunas que puedan prevenir o tratar infección con VPH. Métodos para producir formulaciones de vacuna que superen los problemas conocidos en la técnica por ser asociados con la expresión y purificación de la proteína VPH recombinante sería manifiestamente útil para tratar la población de individuos ya infectados con VPH como también sería útil para inmunizar la población de individuos susceptibles a la infección con VPH.
Resumen de la invención
La presente invención provee formulaciones terapéuticas y profilácticas de la vacuna que comprenden capsómeros de papiloma humano quiméricos. La invención también provee métodos terapéuticos para tratar pacientes infectados con VPH como también métodos profilácticos para prevenir la infección por VPH en un individuo susceptible. Métodos para la producción y purificación de capsómeros y proteínas de la invención también son contemplados.
En un aspecto de la invención, se consideran las vacunaciones profilácticas para la prevención de la infección con VPH las cuales incorporan las proteínas estructurales L1 y L2 del virus del papiloma. El desarrollo de una vacuna de este tipo enfrenta obstáculos significativos porque los virus del papiloma no pueden ser propagados a titulaciones adecuadas en cultivos celulares u otros sistemas experimentales para proveer las proteínas virales en suficiente cantidad para una producción económica de la vacuna. Además, metodologías recombinantes para expresar las proteínas no son siempre sencillas y usualmente resultan en un bajo rendimiento de proteína. Recientemente han sido descritas partículas tipo-virus (VLPs), similares en conformación a estructuras cápsidas virales, las cuales son formadas en células Sf-9 de insecto en la expresión de proteínas virales L1 y L2 (o L1 por sí sola) usando vaccinia recombinante o baculovirus. La purificación de los VLPs puede ser lograda muy simplemente por medio de centrifugación en CsCl o gradientes de sacarosa [Kimbauer, et al., Proc. Natl. Acad. Sci. (USA), 99:12180-12814 (1992): Kirnbaurer, et al., J. Virol. 67:6929-6936 (1994); Proso, et al., J. Virol. 6714:1936-1944 (1992): Sasagawa, et al., Virology 2016:126-195 (1995): Volpers, et al., J. Virol. 69: 3258-3264 (1995); Zhou, et al., J. Gen. Virol. 74:762-769 (1993): Zhou, et al., Virology 185:251-257 (1991)].WO93/02184 describe un método en el cual partículas tipo virus de papiloma (VLPs) son usadas para aplicaciones diagnósticas o como una vacuna contra infecciones causadas por el virus del papiloma. WO 94/00152 describe la producción de proteína recombinante de L1 la cual imita el epítopo neutralizante conformacional en viriones de papiloma humanos y animales.
En otro aspecto de la invención, las vacunaciones terapéuticas son provistas para aliviar complicaciones de, por ejemplo, carcinoma cervical o lesiones precursoras resultando de infección con virus del papiloma, y por lo tanto representan una alternativa a la intervención profiláctica. Vacunaciones de este tipo pueden comprender proteínas tempranas de papiloma, principalmente E6 o E7, las cuales son expresadas en las células infectadas persistentemente. Se asume que, siguiendo la administración de una vacunación de este tipo, células-T citotóxicas pueden ser activadas contra células infectadas persistentemente en lesiones genitales. La aplicación PCT de patente WO 93/20844 revela que la proteína temprana E7 y fragmentos antigénicos de la misma del virus de papiloma de VPH o VPB son terapéuticamente efectivos en la regresión, pero no en la prevención, de tumores de virus de papiloma en mamíferos. Mientras que proteínas VPH tempranas han sido producidas por expresión recombinante en E. coli o tipos celulares eucarióticos apropiados, la purificación de las proteínas recombinantes se ha probado difícil debido a la baja solubilidad inherente y procedimientos de purificación complejos los cuales generalmente requieren una combinación de pasos, incluyendo cromatografía de intercambio de iones, filtración en gel y cromatografía de afinidad.
De acuerdo a la presente invención, formulaciones de vacunas que comprenden capsómeros de virus del papiloma están provistas las cuales comprenden (i) una primera proteína que es una proteína viral intacta expresada como una proteína de fusión comprendida en parte de residuos de amino ácidos de una segunda proteína; donde la segunda proteína es un antígeno tumoral humano, un antígeno viral o un antígeno bacterial, dicha formulación provocando una respuesta inmune la cual neutraliza viriones del virus de papiloma humano donde dicho capsómero es obtenido por separación de o desensamblaje de partículas tipo virus. De acuerdo a la invención, formulaciones de la vacuna están provistas comprendiendo capsómeros de virus de papiloma bovino (VPB) y virus de papiloma humano. Capsómeros de virus de papiloma bovino preferidos comprenden proteínas de virus de papiloma bovino tipo 1. Capsómeros de virus de papiloma humano preferidos comprenden proteínas de cualquiera de las cepas de virus de papiloma humano VPH6, VPH11, VPH16, VPH18, VPH33, VPH35, y VPH45. Las formulaciones de la vacuna más preferidas comprenden capsómeros que comprenden proteínas de VPH16.
En un aspecto, formulaciones de vacuna capsómero de la invención comprenden una primera proteína viral intacta expresada como una proteína de fusión con residuos de amino ácido adicionales de una segunda proteína. Proteínas virales intactas preferidas son las proteínas estructurales virales de papiloma L1 y L2. Capsómeros compuestos de fusiones de proteína viral intacta pueden ser producidos usando las proteínas L1 y L2 juntas o la proteína L1 solamente. Capsómeros preferidos están hechos completamente de proteínas de fusión L1, la secuencia de amino ácido la cual es expuesta en SEQ ID NO: 2 y codificada por la secuencia de polinucleótido de SEQ ID NO: 1. Amino ácidos de la segunda proteína pueden ser derivados de numerosas fuentes (incluyendo residuos de amino ácido de la primera proteína) siempre y cuando la adición de los residuos de amino ácido de la segunda proteína a la primera proteína permita la formación de capsómeros. Preferiblemente, la adición de los residuos de amino ácido de la segunda proteína inhibe la habilidad de la proteína viral intacta de formar estructuras de partícula tipo virus; más preferiblemente, los residuos de amino ácido de la segunda proteína promueven la formación de capsómeros. En una modalidad de la invención, la segunda proteína puede ser cualquier antígeno tumoral humano, antígeno viral, o antígeno bacterial el cual es importante en la estimulación de una respuesta inmune en estados de enfermedades neoplásicas o infecciosas. En una modalidad preferida, la segunda proteína es también una proteína de virus de papiloma. También es preferido que la segunda proteína sea el producto de la expresión del gen temprano del virus de papiloma. También es preferido, sin embargo, que la segunda proteína sea seleccionada del grupo de E1, E2, E3, E4, E5. E6, y E7 - productos tempranos de genes codificados en el genoma de las cepas de virus de papiloma VPH6, VPH11, VPH18, VPH33, VPH35, o VPH 45. Es más preferido que la segunda proteína sea codificada por el VPH16 gen E7, el marco de lectura abierto el cual es dispuesto en SEQ ID NO: 3. Capsómeros ensamblados de subunidades de proteína de fusión son referidos de aquí en adelante como capsómeros quiméricos. En una modalidad, la formulación de la vacuna de la invención es compuesta de capsómeros quiméricos donde residuos de amino ácidos de la proteína L1 forman aproximadamente 50 a 99% del total de residuos de amino ácidos de proteína de fusión. En otra modalidad, residuos de amino ácido L1 forman aproximadamente 60 a 90% del total de los residuos de amino ácido de la proteína de fusión; en una modalidad particularmente preferida, amino ácidos L1 comprenden aproximadamente 80% de los residuos de amino ácido de proteína de fusión.
En otro aspecto de la invención el cual es el tema de la aplicación de patente EP 98950930.2, formulaciones de vacuna de capsómero son provistas que son compuestas de proteínas virales truncadas teniendo una supresión de uno o más residuos de amino ácidos necesarios para la formación de una partícula tipo virus. Es preferido que la supresión de amino ácido no inhiba la formación de capsómeros por la proteína truncada, y es más preferido que la supresión favorezca la formación del capsómero. Formulaciones de vacunas preferidas de este tipo incluyen capsómeros compuestos de L1 truncada con o sin proteínas virales L2. Capsómeros particularmente preferidos están compuestos de proteínas truncadas L1. Proteínas truncadas contempladas por la invención incluyen aquellas que tienen uno o más residuos de amino ácidos borrados del terminal carboxi de la proteína, o uno o más residuos de amino ácidos borrados del terminal amino de la proteína, o uno o más residuos de amino ácido borrado de una región interna (es decir, no de cualquiera de los terminales) de la proteína. Formulaciones de la vacuna de capsómero preferidas están compuestas de proteínas truncadas en el terminal carboxi. En formulaciones que incluyen la proteína L1 derivada de VPH 16, es preferido que se borren desde 1 a 34 residuos de amino ácido carboxi terminal. Supresiones relativamente más cortas también son contempladas las cuales ofrecen la ventaja de menor modificación de las propiedades antigénicas de las proteínas L1 y los capsómeros formados del mismo. Es más preferido, sin embargo, que 34 residuos de amino ácidos sean borrados de la secuencia L1, correspondiendo a amino ácidos 472 a 505 en VPH16 expuesto en SEQ ID NO: 2, y codificado por la secuencia de polinucleótido correspondiente a los nucleótidos 1414 a 1516 en la secuencia de codificación L1 VPH16 expuesta en SEQ ID NO: 1.
Cuando una formulación de vacuna de capsómero es hecha de proteínas que portan una supresión interna, es preferido que la secuencia de amino ácido borrada comprenda la región de localización nuclear de la proteína. En la proteína L1 de VPH16, la señal de localización nuclear es encontrada desde aproximadamente el residuo de amino ácido 499 a aproximadamente el residuo de amino ácido 505. Siguiendo la expresión de las proteínas L1 donde el NLS ha sido borrado, el montaje de las estructuras de capsómero ocurre en el citoplasma de la célula huésped. Consiguientemente, la purificación de los capsómeros es posible desde el citoplasma en vez de desde el núcleo donde proteínas intactas L1 se ensamblan en capsómeros. Capsómeros que resultan del montaje de proteínas truncadas donde secuencias de amino ácido adicionales no remplazan las secuencias de proteína borradas son necesariamente no quiméricas en naturaleza.
Formulaciones de vacuna de capsómero también son provistas lo cual es el tema de la aplicación de patente EP 98950930.2 comprendiendo proteína viral truncada expresada como una proteína de fusión adyacente a residuos de amino ácidos de una segunda proteína. Proteínas virales truncadas preferidas de la invención son las proteínas virales de papiloma estructural L1 y L2. Capsómeros compuestos de fusiones de proteína viral truncada pueden ser producidas usando componentes de proteína L1 y L2. Capsómeros compuestos de fusiones de proteína viral truncada pueden ser producidas usando componentes de proteínas L1 y L2 juntos o solo la proteína L1. Capsómeros preferidos son aquellos compuestos de residuos de amino ácido de proteína L1. Componentes de proteína viral truncada de las proteínas de fusión incluyen aquellas que tienen uno o más residuos de amino ácido borrados del terminal carboxi de la proteína, o uno o más residuos de amino ácido borrados del terminal amino de la proteína, o uno o más residuos de amino ácido borrados de una región interna (es decir, no de ninguno de los terminales) de la proteína. Formulaciones preferidas de la vacuna de capsómero están compuestas de proteínas truncadas en el terminal carboxi. En esas formulaciones incluyendo la proteína L1 derivada de VPH16, es preferido que desde 1 a 34 residuos de amino ácido carboxi terminal sean borrados. Supresiones relativamente más cortas también son contempladas que ofrecen la ventaja de menor modificación de las propiedades antigénicas del componente de la proteína L1 de la proteína de fusión y los capsómeros formados del mismo. Es más preferido, sin embargo, que 34 residuos de amino ácido sean borrados desde la secuencia L1, correspondiendo a los amino ácidos 472 a 505 en VPH16 presentado en SEQ ID NO: 2, y codificado por la secuencia de polinucleótido que corresponde a nucleótidos 1414 a 1516 en la secuencia de codificación de VPH16 humano L1 presentada en SEQ ID NO: 1. Cuando la formulación de la vacuna es compuesta de capsómeros formados por proteínas que portan una supresión interna, es preferido que la secuencia de amino ácido borrada comprenda la región de localización nuclear, o secuencia, de la proteína.
Amino ácidos de la segunda proteína pueden ser derivados de numerosas fuentes siempre y cuando la adición de los residuos de amino ácido de la segunda proteína a la primera proteína permita la formación de capsómeros. Preferiblemente, la adición de los residuos de amino ácido de la segunda proteína promueve o favorece la formación de capsómeros. Residuos de amino ácido de la segunda proteína pueden ser derivados de numerosas fuentes, incluyendo residuos de amino ácido de la primera proteína. En una modalidad preferida, la segunda proteína es también una proteína del virus de papiloma. También es preferido que la segunda proteína sea el producto de expresión del gen temprano del virus del papiloma. Es más preferido, sin embargo, que la segunda proteína sea seleccionada del grupo de productos del gen temprano que codificando por genes E1, E2, E3, E4, E5, E6, y E7 del virus de papiloma. En una modalidad, la formulación de la vacuna de la invención es compuesta de capsómeros quiméricos donde los residuos de amino ácido de la proteína L1 forman aproximadamente 50 a 99% del total de los residuos de amino ácido de la proteína de fusión. En otra modalidad, residuos de amino ácido L1 forman aproximadamente 60 a 90% del total de residuos de amino ácido de proteína de fusión; en una modalidad particularmente preferida, amino ácidos L1 comprenden aproximadamente 80% de los residuos de amino ácido de proteína de fusión.
En una modalidad preferida de la invención, proteínas de las formulaciones de la vacuna son producidas por metodologías recombinantes, pero en formulaciones que comprenden proteína viral intacta, las proteínas pueden ser aisladas de las fuentes naturales. Proteínas intactas aisladas de fuentes naturales pueden ser modificadas in vitro para incluir residuos de amino ácido adicionales para proveer una proteína de fusión de la invención usando técnicas de modificación covalente bien conocidas y practicadas rutinariamente en la técnica. Similarmente, en formulaciones que comprenden proteínas virales truncadas, las proteínas pueden ser aisladas de fuentes naturales como proteínas intactas e hidrolizadas in vitro usando hidrólisis química o digestión enzimática con cualquiera de un numero de proteasas sitio-específicas o generales, la proteína truncada subsecuentemente modificada para incluir residuos de amino ácido adicionales como descrito arriba para proveer una proteína de fusión truncada de la invención, la cual es el tema de la aplicación de patente EP 98950930.2.
En la producción de capsómeros, técnicas de biología molecular recombinante pueden ser utilizadas para producir ADN que codifique la proteína intacta deseada, la proteína truncada, o la proteína de fusión truncada. Metodologías recombinantes requeridas para producir un ADN que codifique una proteína deseada son bien conocidas y rutinariamente practicadas en la técnica. Manuales de laboratorio, por ejemplo Sambrook, et al., (eds.). MOLECULAR CLONING: A LABORATORY MANUAL. Cold Spring Harbor Press: Cold Spring Harbor, NY (1989) y Ausebel et al., (eds.). PROTOCOLS IN MOLECULAR BIOLOGY, John Wiley&Sons. Inc. (1994-1997), describen en detalle técnicas necesarias para realizar las manipulaciones de ADN requeridas. Para la producción a gran escala de capsómeros quiméricos, la expresión protéica puede ser realizada usando vectores virales o eucarióticos. Vectores preferibles incluyen cualquiera de los vectores de expresión procarióticos bien conocidos, baculovirus recombinantes, vectores COS célula específicos, recombinantes de vaccinia, o construcciones de expresión levadura específicas. Cuando proteínas recombinantes son usadas para proveer capsómeros de la invención, las proteínas pueden ser primero aisladas de la célula huésped de su expresión y a partir de entonces incubadas bajo condiciones que permiten auto montaje para proveer capsómeros. Alternativamente, las proteínas pueden ser expresadas bajo condiciones donde los capsómeros son formados en la célula huésped.
La invención también contempla procesos para la producción de capsómeros de las formulaciones de la vacuna. En un método, las proteínas L1 son expresadas de ADN que codifica seis histidinas adicionales en el terminal carboxi de la secuencia codificadora de la proteína L1. Proteínas L1 expresadas con histidinas adicionales (proteínas His L1) son mas preferiblemente expresadas en E. coli y las proteínas His L1 pueden ser purificadas usando cromatografía de afinidad de níquel. Proteínas His L1en lisado de célula son suspendidas en un amortiguador de desnaturalización, por ejemplo, 6M hidrocloruro de guanidina o un amortiguador de capacidad desnaturalizante equivalente, y después sometido a cromatografía de níquel. Proteína eluida del paso de cromatografía de níquel es renaturalizada, por ejemplo en 150 mM NaCl, 1mM CaCl_{2}, 0.01% Triton-X 100, 10 mM HEPES (-2 hidroxietil piperazina-N'-2 etano ácido sulfónico), pH 7.4. De acuerdo a un método preferido de la invención, el montaje de capsómeros toma lugar después de diálisis de las proteínas purificadas, preferiblemente después de diálisis contra 150 mM NaCl, 25 mM Ca^{2+}, 10% DMSO (dimetil sulfóxido, 0.1% Triton-X 100, 10 mM Tris [tris-(hidroximetil) amino-metano] ácido acético con un pH de valor 5.0.
La formación de capsómeros puede ser monitoreada por microscopía electrónica, y, en casos donde los capsómeros están compuestos de proteínas de fusión, la presencia de varios componentes de proteína en el capsómero ensamblado puede ser confirmada por análisis de Western blot usando antisuero especifico.
De acuerdo a la presente invención, formulaciones de vacunas se proveen para uso en tratamiento terapéutico de individuos infectados con VPH. El uso de formulaciones de vacunas también provee para tratamiento profiláctico de individuos susceptibles a infección con VPH. Mientras que individuos infectados pueden ser fácilmente identificados usando técnicas de diagnóstico estándar, individuos susceptibles pueden ser identificados, por ejemplo, como aquellos involucrados en relaciones sexuales con un individuo infectado. Sin embargo, debido a la alta frecuencia de infección por VPH, todas las personas activas sexualmente son susceptibles a la infección con el virus de papiloma.
La administración de una formulación de vacuna puede incluir uno o más componentes adicionales tales como vehículos farmacéuticamente aceptables, diluyentes, adyuvantes, y/o amortiguadores. Las vacunas pueden ser administradas una única vez o múltiples veces. La formulación de la vacuna de la invención puede ser administrada por varias vías incluyendo, por ejemplo, administración oral, intravenosa, intramuscular, nasal, rectal, transdérmica, vaginal, subcutánea e intraperitoneal.
Formulaciones de la vacuna de la invención ofrecen numerosas ventajas cuando son comparadas a preparaciones convencionales de vacunas. Como parte de una vacunación terapéutica, los capsómeros pueden promover la eliminación de células persistentemente infectadas en, por ejemplo, pacientes con NIC o carcinoma cervical. Adicionalmente, vacunaciones terapéuticas de este tipo también pueden servir un propósito profiláctico protegiendo pacientes con lesiones NIC de una re-infección. Como una ventaja adicional, los capsómeros pueden escapar neutralización por anticuerpos anticápsidos pre existentes y por lo tanto poseen una vida media de circulación más larga comparado con partículas quiméricas tipo virus.
Formulaciones de vacunas que comprenden capsómeros quiméricos pueden proveer la ventaja adicional de antigenicidad aumentada de ambos componentes de proteína de la proteína de fusión de la cual se forma el capsómero. Por ejemplo, en un VLP, componentes de proteína del capsómero subyacente puede ser enterrada en la estructura global como un resultado de posicionamiento internalizado dentro del mismo VLP. Similarmente, epítopos de los componentes de proteína pueden ser obstruidos estéricamente como un resultado de contacto capsómero-a-capsómero, y por lo tanto inaccesible para provocar una respuesta inmune. Resultados preliminares usando proteínas de fusión L1/E7 para producir VLPs respaldan esta posición en la que ninguna respuesta de anticuerpos fue detectada contra el componente E7. Esta observación es consistente con previos resultados los cuales indican que la región terminal carboxi de L1 forma estructuras de brazo interpentaméricas que permiten el ensamblaje de capsómeros en cápsidos [Garcia, et al., J. Virol. 71:2988-2995 (1997)]. Presumiblemente en una estructura quimérica de capsómero, ambos componentes de la proteína de la subestructura de la proteína de fusión son accesibles para provocar una respuesta inmune. Vacunas de capsómero podrían por lo tanto ofrecer la ventaja adicional de antigenicidad aumentada contra cualquier componente de proteína, incluyendo, por ejemplo, epítopos neutralizantes de proteínas de otros virus, expresadas como una fusión con secuencias de amino ácido L1.
Descripción detallada de la invención
La presente invención es ilustrada por los siguientes ejemplos. El Ejemplo 1 describe la construcción de vectores de expresión para producir proteínas de fusión, o quiméricas, o virales. El Ejemplo 2 se relaciona a la generación de baculovirus recombinantes para la expresión de proteínas virales. El Ejemplo 3 trata la purificación de capsómeros. El Ejemplo 4 describe un protocolo de inmunización para la producción de antisuero y anticuerpos monoclonales. El Ejemplo 5 provee un ELISA péptido para cuantificar la formación de capsómeros. El Ejemplo 6 describe un ELISA de captura de antígenos para cuantificar la formación de capsómeros. El Ejemplo 7 provee un ensayo de hemoaglutinina para ensayar para la inducción de anticuerpos neutralizantes.
Ejemplo 1 Construcción de Genes Quiméricos L1
El ADN que codifica el marco de lectura abierta VPH 16 L1 fue eliminado del plásmido 16-114/k-L1/L2-pSynxtVI- [Kirnbauer et al., J. Virol. 67:6929-6936 (1994)] usando BglII y el fragmento resultante subclonado en pUC 19 (New England, Biolabs, Beverly, MA) previamente linealizado en el único sitio de restricción BamHI. Dos construcciones de expresión básica fueron primero generadas para permitir inserción subsecuente de ADN para permitir expresión de la proteína de fusión. Una construcción codificada VPH 16 L1\Delta310 teniendo una supresión de nueve amino ácidos: se conocía que la región borrada mostraba homología de bajo nivel con todas las otras proteínas L1 del virus de papiloma. La segunda construcción, VPH 16 L1 \DeltaC. codificaba una proteína con una supresión de 34 amino ácidos de los residuos del terminal carboxi L1. Otras construcciones incluyen un sitio de restricción EcoRV en la posición de la supresión para inserción facilitada de ADN que codifica otras secuencias de proteína. La adición del sitio EcoRV codifica dos amino ácidos de proteína no-L1, aspartato e isoleucina.
A. Generación de una construcción de expresión VPH 16 L1\Delta310
Dos cebadores (SEQ ID NOs: 5 y 6) fueron diseñados para amplificar el vector pUC19 y la secuencia codificadora completa VPH 16 L1, excepto nucleótidos 916 hasta 942 en la SEQ ID NO: 1. Los cebadores fueron sintetizados para producir también un sitio de restricción único EcoRV (subrayado en las SEQ ID Nos: 5 y 6) en los terminales del producto de amplificación.
1
El producto PCR resultante fue digerido con EcoRV para proveer terminaciones complementarias y el producto de digestión circularizado por ligación. El ADN ligado fue transformado en E. coli usando técnicas estándar y plásmidos de colonias resultantes fueron exploradas para la presencia de un sitio de restricción EcoRV. Un clon designado VPH 16 L1 \Delta310 fue identificado como teniendo la supresión apropiada de veintisiete nucleótidos y ésta construcción fue usada para insertar fragmentos de ADN que codifican otras proteínas VPH 16 en el sitio EcoRV como se discute abajo.
B. Generación de construcciones de expresión VPH 16 L1 \DeltaC
Dos cebadores (SEQ ID NOs: 7 y 8) fueron diseñados complementariamente para el marco de lectura abierta VPH 16 L1 tal que los cebadores colindaran uno con otro para permitir amplificación en direcciones contrarias sobre la plantilla de ADN que comprende las secuencias VPH 16 L1 en pUC19 descrito arriba.
2
Cada cebador introdujo un sitio de restricción EcoRV en el terminal del producto de amplificación. En el cebador corriente abajo (SEQ ID NO: 8), el sitio EcoRV fue seguido por un codón de parada TAA translacional posicionado de forma que el producto de amplificación, en la ligación de los extremos de EcoRV para circularizar, incluiría la supresión de los 34 amino ácidos del terminal carboxi. Se realizó PCR para amplificar el marco parcial de lectura abierto L1 y el vector completo. El producto de amplificación fue roto con EcoRV, circularizado con ADN T4 ligasa, y transformado en células \alpha DH5 E. coli. Plásmidos de clones viables fueron analizados para la presencia de un sitio EcoRV el cual linearizara el plásmido. Una construcción positiva designada pUCHPv16L1\DeltaC fue identificada y usada para insertar ADN de otras proteínas VPH 16 usando el sitio EcoRV.
C. Inserción de fragmentos de ADN en VPH 16 L1 \Delta310 y VPH 16 L1 \DeltaC
Fragmentos de ADN de VPH 16 E7 que codifican amino ácidos 1-50, 1-60, 1-98, 25-75, 40-98, 50-98 en SEQ ID NO: 4 fueron amplificados usando cebadores que introducían sitios de restricción terminal 5'EcoRV para facilitar la inserción del fragmento en cualquiera de las secuencias modificadas VPH 16 L1 \Delta310 y VPH 16 L1 \DeltaC. En varias de las reacciones de amplificación, el cebador E7.1 (SEQ ID NO: 9) fue usado en combinación con el cebador E7.2 (SEQ ID NO: 10) para generar un fragmento de ADN que codifica amino ácidos E7 1-50: con el cebador E7.3 (SEQ ID NO: 11) para generar un fragmento de ADN que codifica amino ácidos E7 1-60: o con el cebador E7.4 (SEQ ID NO: 12) para generar un fragmento de ADN que codifica amino ácidos E7 1-98. En otras reacciones de amplificación, pares de cebadores E7.5 (SEQ ID NO: 13) y E7.6 (SEQ ID NO: 14) fueron usados para amplificar un fragmento de ADN codificando amino ácidos E7 25-75: E7.7 (SEQ ID NO: 15) y E7.4 (SEQ ID NO: 12) fueron usados para amplificar un fragmento de ADN codificando amino ácidos E7 40-98; y E7.8 (SEQ ID NO: 16) y E7.4 (SEQ ID NO: 12) fueron usados para amplificar un fragmento de ADN codificando amino ácidos E7 50-98.
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Similarmente, nucleótidos del ADN que codifica la proteína matriz de influenza (SEQ ID NO: 17) fue amplificado usando el par de cebadores presentado en SEQ ID NOs: 19 y 20. Ambos cebadores introdujeron un sitio de restricción EcoRV en el producto de amplificación.
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Productos PCR de cada una de las reacciones de amplificación fueron cortados con EcoRV e insertadas en el sitio EcoRV de cualquiera de las secuencias VPH 16 L1 \Delta310 y VPH 16 L1 \DeltaC previamente linearizadas con la misma enzima. Para lograr determinar la orientación de las inserciones en plásmidos que codifican amino ácidos E7 25-75 y 50-98 y plásmido incluyendo proteína de matriz de influenza, se utilizó digestión ClaI, tomando ventaja de un sitio de restricción que esta superpuesto con el sitio de restricción recién creado EcoRV (GATATCGAT) e incluido en el cebador corriente arriba. Para las tres construcciones de expresión incluyendo la metionina de iniciación de VPH 16 E7, la orientación de la inserción fue determinada utilizando un sitio de restricción Ns/I dentro de la región codificadora E7.
Una vez que las construcciones de expresión con inserciones apropiadas fueron identificadas, la región de codificación de la proteína para L1 y para amino ácidos insertados fue eliminado como una unidad usando enzimas de restricción XbaI y SmaI y el ADN aislado ligado al plásmido pVL 1393 (Invitrogen) para generar baculovirus recombinantes.
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D. Eliminación de Sitios de Restricción EcoRV en Construcciones de Expresión
La secuencia VPH 16 L1 \DeltaC incluye ADN del sitio EcoRV que resulta en la translación de amino ácidos no encontrados normalmente en polipéptidos L1 tipo salvaje. Por lo tanto, una serie de construcciones de expresión fue diseñada en la cual el sitio EcoRV artificial fue eliminado. La secuencia L1 para éstas series de construcciones de expresión fue designado VPH 16L1\DeltaC*.
Para generar una construcción de expresión que contiene la secuencia VPH 16L1\DeltaC*, dos reacciones PCR fueron realizadas para amplificar dos fragmentos superpuestos de pUC-VPH16L1\DeltaC codificando amino ácidos E7 1-50. Los fragmentos de ADN resultantes fueron superpuestos en la posición del límite L1/E7 pero no contenía los dos sitios de restricción EcoRV. El fragmento 1 fue generado usando cebadores P1 (SEQ ID NO: 21) y P2 (SEQ ID NO: 22) y el fragmento 2 usando cebadores P3 (SEQ ID NO: 23) y P4 (SEQ ID NO: 24).
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Después de las dos primeras reacciones de amplificación, los dos productos purificados fueron usados como plantillas en otra reacción PCR usando solamente los cebadores P1 y P4. El producto amplificado resultante fue digerido con enzimas EcoNI y HindIII insertado en la construcción de expresión VPH 16L1\DeltaC descrito arriba seguido de digestión con las mismas enzimas. La construcción de expresión resultante se diferenciaba de la construcción original VPH16L\DeltaC con ADN codificando amino ácidos L1 y E7 1-50 por pérdida de los dos sitios de restricción internos EcoRV. El primer sitio EcoRV fue reemplazado por ADN codificando alanina nativa L1 y amino ácidos de glicina en esta posición y la segunda fue remplazada por una señal de parada translacional. En adición, la construcción de expresión, designada VPH 16 L1\DeltaC* E7 1-52, contenía los primeros 52 amino ácidos de VPH 16 E7 como resultado de usar el cebador P4 que también codifica residuos de amino ácidos E7 histidina en la posición 51 y tirosina en la posición 52. VPH 16 L1\DeltaC* E7 1-52 fue entonces usado para generar construcciones de expresión VPH 16 L1\DeltaC adicionales posteriormente incluyendo ADN que codifica amino ácidos E7 1-55 usando el cebador P1 (SEQ ID NO: 21) en combinación con el cebador P5 (SEQ ID NO: 25), amino ácidos E7 1-60 con el par de cebadores P1 y P6 (SEQ ID NO: 26), y amino ácidos E7 1-65 con el par de cebadores P1 y P7 (SEQ ID NO: 27). Las secuencias de ADN codificadoras de amino ácido adicionales en los productos de amplificación surgieron del diseño de los cebadores para incluir nucleótidos adicionales para los amino ácidos deseados.
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Similarmente, VPH 16 L1\DeltaC* E7 1-70 fue generado usando la plantilla de ADN que codifica VPH 16 L1\DeltaC* E7 1-66 y el par de cebadores P1 y P8 (SEQ ID NO: 28).
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Siguiendo cada reacción PCR, los productos de amplificación fueron digeridos con EcoNI y HindIII e insertados en VPH16L1\DeltaC previamente digerido con las mismas enzimas. Secuencias de cada una de las construcciones fueron determinadas usando un instrumento de secuenciamiento Applied Biosystems Prism 377 con dideoxinucleótidos de terminación de cadena fluorescente [Prober et al., Science 238:336-341 (1987)].
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Ejemplo 2 Generación de Baculovirus Recombinante
Células Spodoptera frugiperda (Sf9) fueron cultivadas en cultivos de suspensión o monocapa a 27º en medio TNMFH (Sigma) suplementado con 10% de suero fetal de becerro y 2 mM de glutamina. Para la construcción de baculovirus recombinante basado en VPH 16 L1, células Sf9 fueron transfectadas con 10 \mug de plásmido de transferencia junto con 2 \mug de ADN Baculo-Gold linearizado (PharMingen, San Diego, CA). Virus recombinante fueron purificados de acuerdo al protocolo sugerido por el fabricante.
Para probar la expresión de proteína VPH 16 L1, 10^{5} células Sf9 fueron infectadas con baculovirus recombinante a una multiplicidad de infección (m.o.i) de 5 a 10. Después de incubación por tres a cuatro días a 28ºC, se extrajo el medio y las células fueron lavadas con PBS. Las células fueron lisadas en amortiguador SDS de muestra y analizadas por SDS-PAGE y Western blotting usando anticuerpos anti-VPH16 L1 y anti-VPH16 E7.
Para poder determinar cuáles de las construcciones de expresión de proteína L1 quimérica producirían preferencialmente capsómeros, extractos de células transfectadas fueron sometidos a centrifugación de gradiente. Las fracciones obtenidas del gradiente fueron analizadas para el contenido de proteína L1 por Western blotting y para formación VLP por microscopía electrónica. Los resultados son mostrados en la Tabla 1.
La proteína VPH L1 intacta, como también la expresión de productos VPH 16 L1\Delta310 y VPH 16 L1\DeltaC. Se mostró que cada uno producía capsómeros y partículas tipo virus en iguales proporciones. Cuando las secuencias de codificación E7 fueron insertadas en el vector VPH 16 L1 \Delta310, sólo proteínas de fusión incluyendo amino ácidos E7 1a 50 producidos dieron lugar a formación detectable de capsómeros.
Cuando el ADN que codifica E7 fue insertado en el vector VPH 16 L1\DeltaC, se encontró que todas las proteínas de fusión producen capsómeros; proteínas quiméricas incluyendo residuos de amino ácido E7 40-98 produjeron el nivel más alto de estructuras exclusivamente de capsómero. Proteínas quiméricas incluyendo amino ácidos E7 1-98 y 25-75 ambos produjeron predominantemente capsómeros, aunque también se observó formación de partículas tipo virus. La proteína quimérica incluyendo amino ácidos 1-60 resultó en niveles casi iguales de producción de capsómeros y partículas tipo virus.
Cuando secuencias E7 fueron insertadas en el vector VPH 16 L1\Delta*C, se mostró que todas las proteínas de fusión producían capsómeros. La inserción de ADN que codifica para residuos E7 1-52, 1-55, y 1-60 produjeron el nivel más alto de capsómeros, pero se observaron niveles iguales de producción de partículas tipo virus. Mientras la inserción de ADN que codifique ADN E7 para residuos 1-65, 1-70, 25-75, 40-98, y 1-98 resultó en niveles de cápsido comparativamente más bajos o indetectables, capsómeros fueron producidos en altas cantidades.
TABLA 1 Capacidad de Formacion de Capsómero y Capsido de Proteínas Quiméricas VPH L1
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Ejemplo 3 Purificación de Capsómeros
Células Trichopulsia ni (TN) High Five fueron cultivadas a una densidad de aproximadamente 2 x 10^{6} células/ml en medio libre de suero Ex-Cell 405 (JRH Biosciences). Aproximadamente 2 x 10^{8} células fueron peletizadas por centrifugación a 1000 x g por 15 minutos, resuspendido en 20 ml de medio, e infectado con baculovirus recombinante a m.o.i de 2 a 5 por 1 hora a temperatura ambiente. Después de la adición de 200 ml de medio, las células fueron sembradas sobre placa e incubadas por 3 a 4 días a 27ºC. Seguido de la incubación, las células fueron recolectadas, peletizadas, y resuspendidas en 10 ml de amortiguador de extracción.
Los siguientes pasos fueron realizados a 4ºC. Las células fueron sonicadas por 45 segundos a 60 vatios y el lisado de células resultante fue centrifugado a 10.000 rpm en un rotor Sorval SS34. El sobrenadante fue removido y retenido mientras que el peletizado fue resuspendido en 6 ml de amortiguador de extracción, sonicado por 3 segundos adicionales a 60 vatios, y nuevamente centrifugado. Los dos sobrenadantes fueron combinados, puestos en capas sobre un gradiente de dos pasos que contiene 14 ml de 40% sacarosa sobre 8 ml de solución CsCl (4.6 g CsCl por 8 ml en amortiguador de extracción), y centrifugado en un rotor Sorval AH629 de contenedor oscilante por 2 horas a 27,000 rpm a 10ºC. La región de interfase entre la CsCl y la sacarosa junto con la capa completa CsCl fueron recolectados en tubos Quickseal de 13.4 ml (Beckman) y se agrego amortiguador de extracción para ajustar el volumen a 13.4 ml. Se centrifugaron las muestras toda la noche a 50.000 rpm a 20ºC en un rotor Beckman 70 TI. Los gradientes fueron fraccionados (1 ml por fracción) perforando tubos arriba y en el fondo con una aguja de calibre 21. Las fracciones de cada tubo fueron recolectadas y 2.5 \mul de cada fracción fueron analizados por un 10% gel SDS-poliacrilamida y Western blotting usando un anticuerpo anti-VPH16 L1.
Partículas tipo virus y capsómeros fueron separados de las fracciones identificadas arriba por sedimentación en 10 a 50% gradientes de sacarosa. Fracciones pico de gradientes CsCl fueron reunidas y dializadas por 2 horas contra 5 mM HEPES (pH 7.5). La mitad del dializado fue usado para producir capsómero por desensamblaje de VLPs intactos durante la noche agregando EDTA (concentración final 50 mM), EGTA (50 mM), DTT (30 mM). NaCl (100 mM), y Tris/HCl, pH 8.0, (10 mM). Como control, solo se agregó NaCl y Tris/HCl a la otra mitad.
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Para el análisis de capsómeros producidos de VLPs desensamblados, EDTA, EGTA, y DTT (concentración final 5 mM cada uno) fueron agregados a los protectores de sacarosa los cuales fueron centrifugados a 250,000 x g por 2 a 4 horas a 4ºC. Las fracciones fueron recolectadas perforando tubos desde el fondo. Una dilución de 1:10 de cada fracción fue entonces analizada por captura de antígeno ELISA.
Ejemplo 4 Protocolo de Inmunización para la Producción de Antisuero Policlonal y Anticuerpos Monoclonales
Ratones calvos/c son inmunizados subcutáneamente tres veces, cada cuatro semanas con aproximadamente 60 \mug de capsómeros quiméricos de VPH mezclados 1:1 con Adyuvante de Freund completo o incompleto en un volumen total de 100 \mug. Seis semanas después de la tercera inmunización, los ratones son sacrificados y se recolecta sangre por punción cardíaca.
Ejemplo 5 ELISA Péptido para Cuantificar la Formación de Capsómeros
Placas de microtítulo (Dynatech) son cubiertas toda la noche con 50 \mul de péptido E701 [Muller et al., 1982] a una concentración de 10 \mug/ml en PBS. Los pozos son cubiertos por 2 horas a 37ºC con 100 \mul de amortiguador que contiene 5% de BSA y 0.05% Tween 20 en PBS y lavados tres veces con PBS que contiene 0.05% Tween 20. Después de la tercera lavada. 50 \mul de suero diluido 1:5000 en BSA/Tween 20/PBS es agregado a cada pozo y se incuba por 1 hora. Se lavan las placas nuevamente como antes y 50 \mul de conjugado de peroxidasa de cabra-anti-ratón es agregado a una dilución de 1:5000. Después de 1 hora, se lavan las placas y se manchan usando sustrato ABTS (0.2 mg/ml, 2.2'-Azino-bis(ácido 3-etilbenziazolina-\beta-sulfónico en 0.1 M amortiguador Na-Acetato-Fosfato (pH 4.2) con 4 \mul 30% H_{2}O_{2} por 10 ml). La extinción es medida después de 1 hora a 490 nm en un lector de placa automático Dynatech.
Ejemplo 6 Captura de Antígeno ELISA para Cuantificar la Formación de Capsómero
Para permitir cuantificación relativa de partículas tipo virus y capsómeros en fracciones de gradientes CsCl, se utilizó una captura de antígeno ELISA. Placas de microtítulo fueron cubiertas toda la noche con 50 \mul/pozo de una dilución de 1:500 (concentración final de 2 \mug por ml, en PBS) con una proteína A anticuerpo monoclonal de ratón purificado de proteína A inmuno específico para VPH 16 L1 (anticuerpos 25/C, MM07 y Ritti 1 fueron obtenidos de ratones inmunizados con VPH 16 VLPs). Se bloquearon placas con 5% leche/PBS por 1 hora y 50 \mul de fracciones de gradientes CsCl fueron agregados por 1 hora a 37ºC usando una dilución de 1:300 (en 5% leche/PBS). Después de tres lavadas con PBS/0.05% Tween 20, 50 \mul de un antisuero de conejo policlonal (dilución 1:3000 en leche/PBS), cultivado contra VPH 16 VLPs fue agregado y se incubaron placas a 37º por 1 hora. Las placas fueron lavadas nuevamente y posteriormente incubadas con 50 \mul de conjugado de peroxidasa de cabra-anti-conejo (Sigma) diluido 1:5000 en PBS conteniendo 5% de leche por 1 hora. Después del lavado final, las placas fueron teñidas con sustrato ABTS por 30 minutos y la extinción fue medida a 490 nm en un lector de placa automático Dynatech. Como control negativo, el ensayo también incluyó pozos cubiertos solamente con PBS.
Para probar anticuerpos monoclonales para especificidad de capsómero, los VLPs con EDTA/DTT para desensamblar partículas. Preparaciones de partícula tratadas fueron ensayadas en un ELISA antígeno-captura y las lecturas fueron comparadas a controles no tratados. Para el desensamblaje, 40 \mul de VLPs fueron incubados toda la noche a 4ºC en 500 \mul de amortiguador de disrupción conteniendo 30 mM DTT. 50 mM usados en el ELISA de captura de arriba en una dilución 1:20-1:40.
Ejemplo 7 Ensayo de Inhibición de Hemaglutinina
Para poder determinar la extensión a la cual vacunas de capsómero quiméricas provocan producción de anticuerpos neutralizantes, se realiza un ensayo de inhibición de hemaglutinación como se describe brevemente abajo. Este ensayo es basado en previas observaciones que partículas tipo virus son capaces de hemoaglutinar células rojas sanguíneas.
Los ratones son inmunizados con cualquiera de las vacunas de capsómero quiméricas y suero es recolectado como descrito arriba en el Ejemplo 4. Como controles positivos, partículas tipo virus VPH16 L1 (VLPs) PV1 bovino (VPB) L1 VLPs son ensayados en paralelo con una preparación de capsómero quimérico. Para establecer una línea base positiva, el VPH16 o VPB1 VLPs son primero incubados con o sin suero recolectado de ratones inmunizados después de lo cual se agregan células sanguíneas rojas. La extensión a la cual la preincubación con suero de ratón inhibe la hemoaglutinación de células rojas sanguíneas es una indicación de la capacidad de neutralización de suero de ratón. Los experimentos son entonces repetidos usando capsómeros quiméricos para poder determinar el efecto neutralizante del suero de ratón en la vacuna. Un protocolo breve para el ensayo de inhibición de hemoaglutinación es descrito abajo.
Cien microlitros de heparina (1000 usp unidades/ml) son agregadas a 1 ml de sangre de ratón fresca. Células sanguíneas rojas son lavadas tres veces con PBS seguido de centrifugación y resuspensión en un volumen de 10 ml. Después, los eritrocitos son resuspendidos en 0.5 ml de PBS y almacenados a 4ºC por hasta tres días. Para el ensayo de hemoaglutinina 70 \mul de la suspensión son usados por pozo en una placa de 96 pozos.
Alicuotas de capsómero quimérico de gradientes CsCl son dializados por una hora contra 10 mM Hepes (pH7.5) y 100 \mul de diluciones dobles en serie en PBS son agregadas a eritrocitos de ratón en placas de microtítulo de 96 pozos de fondo redondo las cuales son posteriormente incubadas por 3-16 horas a 4ºC. Para la inhibición de hemoaglutinación, los capsómeros son incubados con diluciones de anticuerpos en PBS por 60 minutos a temperatura ambiente y después son agregadas a los eritrocitos. El nivel de hemoaglutinación de eritrocitos, y por lo tanto la presencia de anticuerpos neutralizantes, es determinada por métodos estándar.
En resultados preliminares, suero de ratón generado contra capsómeros quiméricos comprendiendo proteína
VPH16L1\DeltaC en asociación con residuos de amino ácido E7 1-98 se observó que inhibe la hemoaglutinación por VPH16 VLPs, pero no por VPB VLPs. El suero de ratón fue por lo tanto positivo para la neutralización de anticuerpos contra los VLPs humanos y ésta neutralización diferencial fue más probablemente el resultado de especificidad de anticuerpos por epítopos contra los cuales los anticuerpos fueron cultivados.
Numerosas modificaciones y variaciones en la invención son expuestas en los ejemplos ilustrativos de arriba y se espera que le ocurran a aquellos diestros en la técnica. Consiguientemente solo tales limitaciones como aparecen en las reivindicaciones anexas deben ser ubicadas en la invención.
(1) INFORMACIÓN GENERAL:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
APLICANTE:
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TÍTULO DE LA INVENCIÓN: Formulaciones de Vacuna de Capsómero de Virus de Papiloma y Métodos de Uso
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
NÚMERO DE SECUENCIAS: 27
\vskip0.800000\baselineskip
(iv)
DIRECCION DE CORRESPONDENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
DESTINATARIO: Marshall, O'Toole, Gerstein, Murray & Borun
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
CALLE: 233 South Wacker Drive, 6300 Sears Tower
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CIUDAD: Chicago
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
ESTADO: Illinois
\vskip0.500000\baselineskip
(E)
PAIS: Estados Unidos de América
\vskip0.500000\baselineskip
(F)
APARTADO POSTAL: 60606-6402
\vskip0.800000\baselineskip
(v)
FORMULARIO LEÍBLE POR COMPUTADORA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
TIPO DE MEDIO: Disco floppy
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
COMPUTADOR: IBM PC compatible
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
SOFTWARE: PatetIn Release #1.0, Versión #1.30
\vskip0.800000\baselineskip
(vi)
DATOS DE APLICACIÓN ACTUAL:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
NÚMERO DE APLICACIÓN:
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
FECHA DE ARCHIVO:
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CLASIFICACIÓN:
\vskip0.800000\baselineskip
(vii)
INFORMACIÓN DEL ABOGADO/AGENTE:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
NOMBRE: Williams Jr., Joseph A.
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
NÚMERO DE REGISTRO: 38,659
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
NÚMERO DE REFERENCIA/EXPEDIENTE: 27013/34028
\vskip0.800000\baselineskip
(ix)
INFORMACIÓN DE TELECOMUNICACIÓN:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
TELÉFONO: 312-474-6300
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TELEFAX: 312-474-0448
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:1:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 1518 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN (genómico)
\vskip0.800000\baselineskip
(ix)
CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
LOCALIZACIÓN: 1..1518
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:1:
11
12
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:2:
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 506 amino ácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: amino ácido
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:2:
13
14
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:3:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 297 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(ix)
CARACTERÍSTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
LOCALIZACIÓN: 1..297
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:3:
\vskip1.000000\baselineskip
15
16
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:4:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 98 amino ácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: amino ácido
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:4:
17
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:5:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 34 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:5:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
CCCCGATATC GCCTTTAATG TATAAATCGT CTGG
\hfill
34
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:6:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 35 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:6:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
CCCCGATATC TCAAATTATT TTCCTACACC TAGTG
\hfill
35
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:7:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 40 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:7:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
AAAGATATCT TGTAGTAAAA ATTTGCGTCC TAAAGGAAAC
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:8:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 44 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:8:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
AAAGATATCT AATCTACCTC TACAACTGCT AAACGCAAAA AACG
\hfill
44
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:9:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 35 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:9:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
AAAAGATATC ATGCATGGAG ATACACCTAC ATTGC
\hfill
35
\newpage
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:10:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 34 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:10:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TTTTGATATC GGCTCTGTCC GGTTCTGCTT GTCC
\hfill
34
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:11:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 44 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:11:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TTTTGATATC CTTGCAACAA AAGGTTACAA TATTGTAATG GGCC
\hfill
44
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:12:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 35 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:12:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
AAAAGATATC TGGTTTCTGA GAACAGATGG GGCAC
\hfill
35
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:13:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 38 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:13:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TTTTGATATC GATTATGAGC AATTAAATGA CAGCTCAG
\hfill
38
\newpage
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:14:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 35 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(E)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(F)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(G)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:14:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TTTTGATATC GTCTACGTGT GTGCTTTGTA CGCAC
\hfill
35
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:15:
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 39 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:15:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TTTATCGATA TCGGTCCAGC TGGACAAGCA GAACCGGAC
\hfill
39
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:16:
\vskip0.800000\baselineskip
(iii)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 39 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:16:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TTTTGATATC GATGCCCATT ACAATATTGT AACCTTTTG
\hfill
39
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:17:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 294 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(ix)
CARACTERISTICA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
NOMBRE/CLAVE: CDS
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
LOCALIZACION: 1..294
\newpage
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:17:
\vskip1.000000\baselineskip
18
19
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:18:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 97 amino ácidos
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TIPO: amino ácido
\vskip0.500000\baselineskip
(E)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:18:
\vskip1.000000\baselineskip
20
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:19:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 40 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:19:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TTTTGATATC GATATGGAAT GGCTAAAGAC AAGACCAATC
\hfill
40
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:20:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 35 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:20:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
TTTTGATATC GTTGTTTGGA TCCCCATTCC CATTG
\hfill
35
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:21:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 24 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:21:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
GTTATGACAT ACATACATTC TATG
\hfill
24
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:22:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 35 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:22:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
CCATGCATTC CTGCTTGTAG TAAAAATTTG CGTCC
\hfill
35
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:23:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 29 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:23:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
CTACAAGCAG GAATGCATGG AGATACACC
\hfill
29
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:24:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 36 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:24:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
CATCTGAAGC TTAGTAATGG GCTCTGTCCG GTTCTG
\hfill
36
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:25:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 38 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:25:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
CATCTGAAGC TTATCAATAT TGTAATGGGC TCTGTCCG
\hfill
38
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:26:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 54 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:26:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
CATCTGAAGC TTACTTGCAA CAAAAGGTTA CAATATTGTA ATGGGCTCTG TCCG
\hfill
54
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:27:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 69 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:27:
21
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN PARA SEQ ID NO:28:
\vskip0.800000\baselineskip
(i)
CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA:
\vskip0.500000\baselineskip
(A)
LONGITUD: 47 pares de base
\vskip0.500000\baselineskip
(B)
TIPO: ácido nucleico
\vskip0.500000\baselineskip
(C)
CADENAS: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
(D)
TOPOLOGÍA: linear
\vskip0.800000\baselineskip
(ii)
TIPO DE MOLÉCULA: ADN
\vskip0.800000\baselineskip
(xi)
DESCRIPCIÓN DE SECUENCIA: SEQ ID NO:28:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskip
CATCTGAAGC TTATTGTACG CACAACCGAA GCGTAGAGTC ACACTTG
\hfill
47

Claims (9)

1. Una formulación antigénica que comprende un capsómero de virus de papiloma humano para usar como una vacuna, estando dicho capsómero compuesto de una proteína de fusión compuesta de proteína L1 de virus de papiloma humano, residuos de amino ácido adyacentes de una segunda proteína, donde la segunda proteína es un antígeno de tumor humano, un antígeno viral o antígeno bacterial, provocando dicha formulación una respuesta inmune la cual neutraliza los viriones del virus de papiloma humano donde dicho capsómero es obtenido por separación de partículas tipo virus.
2. Una formulación antigénica que comprende un capsómero de virus de papiloma humano para ser usado como una vacuna, estando dicho capsómero compuesto de una proteína de fusión compuesta de proteína L1 de virus de papiloma humano, residuos de amino ácido adyacentes de una segunda proteína, donde la segunda proteína es un antígeno de tumor humano, un antígeno viral o antígeno bacterial, provocando dicha formulación una respuesta inmune la cual neutraliza los viriones del virus de papiloma humano donde dicho capsómero es obtenido por el desensamblaje de partículas tipo virus.
3. La formulación antigénica de acuerdo con la reivindicación 1 o 2 donde la proteína L1 es codificada en el genoma de un virus de papiloma humano seleccionado del grupo que consiste de VPH6, VPH11, VPH16, VPH18, VPH33, VPH35, y VPH45.
4. La formulación antigénica de acuerdo con la reivindicación 3 donde el virus de papiloma es VPH16.
5. La formulación antigénica de acuerdo con la reivindicación 1 o 2 donde los residuos de amino ácido de la segunda proteína son derivados de una proteína VPH.
6. La formulación antigénica de acuerdo con la reivindicación 5 donde la proteína VPH es una proteína VPH temprana.
7. La formulación antigénica de acuerdo con la reivindicación 6 donde la proteína VPH temprana es seleccionada de un grupo que consiste de E1, E2, E3, E4, E5, E6, y E7.
8. El uso de la formulación de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7 en la producción de una composición farmacéutica para el tratamiento de infección con VPH y enfermedades relacionadas a éste.
9. El uso de la formulación de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7 en la producción de una composición farmacéutica para la prevención de infección con VPH y enfermedades relacionadas a éste.
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