ES2337901T3 - Vacuna de subunidad contra infeccion por el virus respiratorio sincicial. - Google Patents
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Abstract
Uso de al menos un inmunógeno de la proteína G del virus respiratorio sincicial (VRS) que comprende la secuencia de aminoácidos expuesta en SEQ ID NO:2 o fragmento de la misma, en la preparación de un medicamento para el tratamiento o la prevención de una infección por VRS, en el que dicho al menos un inmunógeno de la proteína G tiene un epítope en la región que abarca desde el aminoácido 165 hasta el aminoácido 195 de SEQ ID NO:2 que provoca una respuesta inmunitaria protectora sin provocar una respuesta inmunopatológica o provocando una respuesta inmunopatológica reducida.
Description
Vacuna de subunidad contra infección por el
virus respiratorio sincicial.
La presente invención se refiere generalmente a
la prevención de una enfermedad infecciosa y, más específicamente,
a composiciones y al uso de las mismas que comprenden uno o más
inmunógenos de la proteína G del virus respiratorio sincicial y
fragmentos o variantes de los mismos que pueden provocar inmunidad
protectora sin provocar una respuesta inmunopatológica o con una
respuesta inmunopatológica reducida (por ejemplo, reduciendo la
patología pulmonar asociada).
El virus respiratorio sincicial (VRS) es la
causa más importante de infección del tracto respiratorio inferior
(bronquiolitis aguda y neumonía) en la infancia (Glezen y col.,
Amer. J. Dis. Child. 140:543, 1986; Holberg y col., Am. J.
Epidemiol. 133:1135, 1991; "Fields Virology", Fields, B. N. y
col. Raven Press, N. Y. (1996), particularmente, capítulo 44,
páginas 1313-1351 "Respiratory Syncytial Virus"
de Collins, P., McIntosh, K., y Chanock, R. M.). Prácticamente
todos los niños son infectados por el VRS a la edad de dos años y el
1-2% de todos los niños infectados requieren
hospitalización (Holberg y col.; Parrott y col., Am. J. Epidemiol.
98:289, 1973). Los brotes de muertes por infección por VRS y del
tracto respiratorio inferior en bebés y niños pequeños muestran una
fuerte correlación (Anderson y col., J. Infect. Dis. 161:640, 1990)
y las tasas de mortalidad entre los niños hospitalizados oscilan
entre el 0,1-1% en EE.UU. y Canadá (Holberg y col.;
Parrott y col.; Navas y col., J. Pediatr. 121:348, 1992; Law y
col., Pediatr. Infect. Dis. J. 12:659, 1993; Ruuskanen y Ogra,
Curr. Prob. Pediatr. 23:50,1993). Las consecuencias de la infección
por VRS durante la infancia varían de bronquiolitis o neumonía
hasta un riesgo elevado de asma infantil.
A pesar de los intensos esfuerzos que abarcan
las cuatro últimas décadas, la búsqueda de una vacuna segura y
eficaz contra el VRS sigue difícil de alcanzar. Las vacunas contra
el VRS iniciales, que incluían virus inactivados con formalina y
vivos atenuados (revisado en Murphy y col., Virus Res. 32:13, 1994),
demostraron ser decepcionantemente no protectoras y en realidad
condujeron a una enfermedad pulmonar más grave en los niños
vacunados que posteriormente adquirieron infección por VRS natural.
Las respuestas inmunopatológicas que especialmente implican la
infiltración de células inflamatorias pueden subyacer probablemente
a la lesión mediada por el VRS al tejido pulmonar. Los niños que
recibieron la vacuna contra el VRS inactivado con formalina
desarrollaron altos niveles de anticuerpos específicos de virus,
pero los anticuerpos tenían bajos niveles de actividad
neutralizante (Murphy y col., J. Clin. Microbiol. 24:197, 1986) y
dejaron de protegerse contra la infección por VRS (Kim y col., Am.
J. Epidemiol. 89:422, 1969; Kapikian y col., Am. J. Epidemiol.
89:405, 1969; Fulginiti y col., Am. J. Epidemiol. 89:435, 1969;
Chin y col., Virol. 1:1, 1969).
Esfuerzos más recientes para el desarrollo de
una vacuna contra el VRS se han centrado en procedimientos de
subunidades y recombinantes. El VRS tiene dos glucoproteínas de
superficie principales (designadas F y G) que se han examinado para
uso en posibles vacunas. La proteína F participa en la fusión de
membranas entre el virus y la célula diana (Walsh y Hruska, J.
Virol. 47:171, 1983), mientras que se cree que la proteína G media
en la unión del virus a un receptor celular (Levine y col., J. Gen.
Virol. 68:2521, 1987). Tantos la proteína F como la G del VRS
induce una fuerte inmunidad sérica y mucosa que son importantes para
la protección contra infección por VRS (Glezen y col., 1986;
Holberg y col.; Glezen y col., J. Pediatr. 98:708, 1981; Lamprecht
y col., J. Infect. Dis. 134:211, 1976; Hemming y col., Clin.
Microbiol. Rev. 8:22, 1995). Los estudios con ratones han
demostrado que el VRS inactivado con formalina y algunos
recombinantes de vacunas que codifican la proteína G indican una
respuesta inflamatoria pulmonar perjudicial en la que los
eosinófilos son un participante destacado (Connors y col., J Virol.
68:5321, 1994; Doherty, Trends Microbiol. 2:148, 1994; Waris y col.,
J. Virol. 70:2852, 1996; Graham y col., J. Immunol. 151:2032, 1993;
Beasley y col., Thorax 43:679, 1988; Openshaw y col., Int. Immunol.
4:493, 1992).
Los eosinófilos y la citocina
IL-5 atrayente de eosinófilos se consideran que son
una característica de la denominada respuesta inmunitaria de tipo 2
que ha fomentado la idea que la inmunización con el antígeno del
VRS tiene el potencial de desencadenar respuestas de tipo 2
dependientes de factores tales como la naturaleza de inmunógenos
virales específicos y su ruta de presentación (Openshaw y col.,
1992; Kakuk y col., J. Inject. Dis. 167:553, 1993; Openshaw y
O'Donnell, Thorax 49:101, 1994). Un trabajo reciente indica que una
parte de la región conservada de la proteína G del VRS participa en
la inmunidad protectora contra el VRS y en la generación de
respuestas inflamatorias, incluyendo la inducción de eosinofilia
(Sparer y col., J. Expt'l. Med 187:1921, 1998; Tebbey y col., J.
Expl'l. Med. 188:1967, 1998; Srikiatchachom y col., J. Virol.
73:6590, 1999; Varga y col., J. Immunol. 165:6487, 2000; Huang y
Anderson, Vaccine 21:2500, 2003).
Por tanto, existe la necesidad de identificar y
desarrollar composiciones terapéuticamente eficaces contra
infecciones por el VRS, particularmente aquellas composiciones que
puedan hacer de vacuna provocando inmunidad protectora sin
inflamación pulmonar perjudicial asociada o con inflamación pulmonar
perjudicial asociada reducida. Además, existe la necesidad de
formulaciones de vacunas que puedan variarse para proteger contra o
tratar la infección mediante diferentes subtipos y subgrupos
inmunogénicos del VRS. La presente invención cumple tales
necesidades y proporciona además otras ventajas relacionadas.
La presente invención proporciona el
descubrimiento de formulaciones terapéuticas de inmunógenos del
virus respiratorio sincicial (VRS), particularmente inmunógenos de
la proteína G útiles para provocar una respuesta inmunitaria
protectora sin provocar una respuesta inmunopatológica, o provocando
una reducida.
En un aspecto, la invención proporciona un
procedimiento para tratar o prevenir una infección por VRS que
comprende administrar a un sujeto en necesidad del mismo una
composición que comprende al menos un inmunógeno de la proteína G
del virus respiratorio sincicial o fragmento del mismo que comprende
la secuencia de aminoácidos expuesta en SEQ ID NO: 2 o fragmento de
la misma, en la que dicho inmunógeno de la proteína G tiene un
epítope en la región que abarca desde el aminoácido 165 hasta el
aminoácido 195 de SEQ ID NO: 2 que provoca una respuesta
inmunitaria protectora sin provocar una respuesta inmunopatológica,
o provocando una reducida, y un vehículo, diluyente o excipiente
farmacéuticamente aceptable a una dosis suficiente para provocar una
respuesta inmunitaria específica para uno o más inmunógenos de la
proteína G o fragmentos y variantes de los mismos. En una
realización específica, el inmunógeno de la proteína G comprende la
secuencia de aminoácidos de SEQ ID NOS:6. En todavía más
realizaciones, la invención proporciona un procedimiento en el que
la composición comprende además al menos un inmunógeno de la
proteína F o inmunógeno de la proteína M del virus respiratorio
sincicial, en el que los inmunógenos de la proteína F y la proteína
M tienen un epítope que provoca una respuesta inmunitaria
protectora sin provocar una respuesta inmunopatológica, o provocando
una reducida, o tiene al menos dos inmunógenos de la proteína
G.
En otra realización, cualquiera de los
inmunógenos de la proteína G anteriormente mencionados y fragmentos
o variantes de los mismos comprenden además una parte o resto
hidrófobo (por ejemplo, para hacer de ancla o pie en un entorno
lipídico tal como una membrana o proteosoma o liposoma),
particularmente cuando se formulan con un vehículo de
administración de adyuvante de proteosoma. En otras realizaciones,
el resto hidrófobo comprende una secuencia de aminoácidos o un
lípido. En ciertas realizaciones, el vehículo es un liposoma, y en
otras realizaciones el liposoma contiene lípidos de Deinococcus
radiodurans o
\alpha-galactosilfosfotidilglicerolalquilamina.
En otra realización, cualquiera de las composiciones anteriormente
mencionadas comprende además un adyuvante, tal como alumbre,
adyuvante de Freund o una formulación basada en proteosomas (por
ejemplo, un sistema de liberación de adyuvante de proteosoma).
Preferentemente, el adyuvante es adecuado para uso en seres humanos.
En otras realizaciones, el inmunógeno de la proteína G o fragmento
y variantes del mismo comprende además una segunda secuencia de
aminoácidos para formar una proteína de fusión, pudiendo ser la
segunda secuencia de aminoácidos una marca, una enzima o una
combinación de las mismas, tal como una polihistidina, tiorredoxina,
o ambas. En ciertas realizaciones, tales proteínas de fusión pueden
comprender adicionalmente un resto hidrófobo. En otras
realizaciones se proporciona cualquiera de los procedimientos
anteriormente mencionados para uso cuando la respuesta
inmunopatológica resultante de o asociada a la infección por VRS sea
eosinofilia (tal como eosinofilia pulmonar) o asma. En todavía más
realizaciones, la invención proporciona cualquiera de los
procedimientos anteriormente mencionados para uso cuando la
infección sea debida a un VRS del subgrupo A, subgrupo B, o tanto
del subgrupo A como del subgrupo B. En realizaciones relacionadas,
cualquiera de las composiciones desveladas puede administrarse en
cualquiera de los procedimientos anteriormente mencionados mediante
una vía seleccionada de enteral, parenteral, transdérmica,
transmucosa, nasal o inhalación.
En otro aspecto, la invención proporciona una
pluralidad de anticuerpos, células Th o ambos producidos mediante
un procedimiento según uno cualquiera de los procedimientos
anteriormente mencionados. En una realización se proporciona un
procedimiento para tratar o prevenir una infección por VRS que
comprende administrar a un sujeto en necesidad del mismo una
composición que comprende un vehículo farmacéuticamente aceptable o
un vehículo de administración de adyuvante de proteosoma, y una
pluralidad de anticuerpos como se acaba de describir.
En otro aspecto adicional se proporciona una
composición para uso en la preparación de un medicamento para el
tratamiento o la prevención de infección por VRS que comprende un
inmunógeno de la proteína G del virus respiratorio sincicial
formulado con un vehículo de administración de adyuvante de
proteosoma, en el que dicho inmunógeno de la proteína G o fragmento
del mismo comprende la secuencia de aminoácidos expuesta en SEQ ID
NO:2 o fragmento de la misma y en el que dicho inmunógeno de la
proteína G o fragmento del mismo tiene un epítope en la región que
abarca desde el aminoácido 165 hasta el aminoácido 195 de SEQ ID
NO:2 que provoca una respuesta inmunitaria protectora sin provocar
una respuesta inmunopatológica o con una respuesta inmunopatológica
reducida. En otras realizaciones, la composición incluye cualquiera
de los inmunógenos de la proteína G anteriormente mencionados y
fragmentos de los mismos, proteínas de fusión, fusiones
multivalentes, composiciones de mezcla o cualquier combinación de
los mismos y otros aditivos tales como un adyuvante. En algunas
realizaciones, el adyuvante es alumbre, proteosoma o protolina.
Estos y otros aspectos de la presente invención
serán evidentes con referencia a la siguiente descripción detallada
y dibujos adjuntos.
La Figura 1 muestra la inducción de anticuerpos
de suero en ratones inmunizados con proteínas
Trx-(poliHis)-G(128-229) de
tipo natural o mutantes en alumbre y su capacidad para reconocer
proteína G del VRS de tipo natural y el efecto de las mutaciones de
la proteína G en tal inducción. Se resolvieron extractos de células
HEp-2 infectadas por VRS mediante
SDS-PAGE, se transfirieron a membranas y se sondaron
con sueros reunidos de cada grupo de ratones (los ratones se
inmunizaron dos veces a intervalos de 14 días con PBS/alumbre, o
proteínas
Trx-(poliHis)-G(128-229) de
tipo natural o mutantes con adyuvante de alumbre). Se muestra una
inmunotransferencia de un gel de SDS-PAGE que
ilustra la especificidad de sueros de ratón (dilución 1:100) para la
proteína G del VRS.
Las Figuras 2A y 2B muestran cómo las variantes
de la proteína G afectan la inmunidad protectora (A) y la
infiltración eosinófila en fluidos broncoalveolares (B) en ratones
inmunizados expuestos al VRS. Los ratones se inmunizaron dos veces
subcutáneamente a intervalos de 14 días con PBS/alumbre o proteínas
Trx-G128-229 de tipo natural o
mutantes en alumbre, seguido por exposición al VRS. Los títulos de
VRS en homogeneizados pulmonares, además de eosinófilos de lavado
broncoalveolar (como % de células totales), se determinaron cuatro
días después de la exposición al VRS. Los resultados se muestran
como medias \pm DE.
Las Figuras 3A y 3B muestran la secuencia de
ácidos nucleicos (SEQ ID NO:1) y la secuencia de aminoácidos (SEQ
ID NO:2) de la proteína G de la cepa Long del grupo A del VRS. En
negrita se muestra una mutación a modo de ejemplo de un aminoácido
(N191A, desde el codón AAC hasta GCC) para generar un inmunógeno de
la proteína G de la invención cuyos fragmentos y variantes del
mismo pueden usarse como se describe en este documento.
Las Figuras 4A y 4B muestran autorradiogramas en
gel de poliacrilamida de ensayos de protección de ribonucleasa
(EPR) de ARNm de citocinas en tejido pulmonar. Los resultados
ilustran niveles relativos de ARNm de citocinas en pulmones de
ratones ensayados cuatro días después de la exposición al VRS que
han sido previamente inmunizados dos veces subcutáneamente a
intervalos de 14 días con PBS/alumbre solo, proteína
Trx-G128-229 de tipo natural con
adyuvante de alumbre o proteínas
Trx-G128-229 variantes. Los paneles
A y B muestran diferentes regiones del gel de poliacrilamida que se
expuso a la película radiográfica durante 3 días (A) o 1 hora
(B).
La Figura 5 muestra la detección por ELISA de
anticuerpos IgG de suero específicos de ratones BALB/c inmunizados
con proteínas de fusión
Trx-(poliHis)-G(128-229) de
tipo natural o mutantes solas, o con adyuvante con protolina o
alumbre. Los ratones se inmunizaron tres veces con una dosis de 6
\mug o 2 \mug de proteínas de fusión
Trx-(poliHis)-G(128-229). La
protolina sola o las proteínas de fusión formuladas con protolina se
administraron intranasalmente y el alumbre solo o las proteínas de
fusión formuladas con alumbre se administraron subcutáneamente. Las
muestras de suero se obtuvieron después de la segunda inmunización
(día 35) y dos semanas después de la tercera inmunización (día
62).
La Figura 6 muestra la detección por ELISA de
anticuerpos IgA de lavado broncoalveolar (BAL) específicos de
ratones BALB/c inmunizados con proteínas de fusión
Trx-(poliHis)-G(128-229) de
tipo natural o mutantes solas, o con adyuvante con protolina o
alumbre. Los ratones se inmunizaron tres veces con una dosis de 6
\mug o 2 \mug de proteínas de fusión
Trx-(poliHis)-G(128-229). La
protolina sola o las proteínas de fusión formuladas con protolina
se administraron intranasalmente, y el alumbre solo o las proteínas
de fusión formuladas con alumbre se administraron subcutáneamente.
Las muestras de BAL se recogieron en el día 62 (dos semanas después
de la tercera inmunización).
Como se expone anteriormente, la presente
invención proporciona composiciones y procedimientos para usar y
preparar inmunógeno de la proteína G del virus respiratorio
sincicial (VRS) para tratar o prevenir infección por el virus
respiratorio sincicial. Aunque la protección contra la reinfección
por el VRS (es decir, exposición) podría obtenerse con vacunas
previas constituidas por diversas formas y modos de inmunización de
la proteína G del VRS, esto se asoció frecuentemente a una
inflamación pulmonar no deseada y perjudicial caracterizada por
eosinofilia pronunciada. Además, la inmunización de sujetos
propensos a enfermedad por el VRS grave (por ejemplo, sujetos
humanos entre las edades de 2 y 7 meses de edad) puede ser difícil
debido a posibles efectos inmunosupresores de anticuerpos
neutralizantes del VRS de suero materno o debido a la inmadurez
inmunológica del sujeto. Por tanto, la presente invención se
refiere generalmente al sorprendente descubrimiento de que ciertos
fragmentos de la proteína G del VRS pueden modificarse para inducir
o provocar inmunidad protectora contra el VRS y no para inducir o
tener un nivel reducido de un acontecimiento inmunopatológico
concomitante que conduzca a, por ejemplo, inflamación pulmonar y
enfermedad agravada con la posterior infección por el VRS. En
particular, estos inmunógenos de la proteína G son útiles para
tratar o prevenir infecciones que implican VRS. Más abajo se trata
en más detalle inmunógenos de la proteína G o fragmentos y variantes
de los mismos adecuados para uso dentro de la presente invención,
además de composiciones representativas y usos terapéuticos.
En la presente descripción, cualquier intervalo
de concentración, intervalo de porcentaje, intervalo de razones o
intervalo de números enteros debe entenderse que incluye el valor de
cualquier número entero dentro del intervalo citado y, cuando sea
apropiado, fracciones del mismo (tales como un décimo y una
centésima de un número entero), a menos que se indique lo
contrario. Como se usa en este documento, "aproximadamente" o
"constituido esencialmente por" significa \pm 15%. El uso de
la alternativa (por ejemplo, "o") debe entenderse que significa
una, las dos o cualquier combinación de las mismas de las
alternativas. Además, debe entenderse que los compuestos
individuales, o grupos de compuestos, derivados de las diversas
combinaciones de las secuencias, estructuras y sustituyentes
descritos en este documento se desvelan mediante la presente
solicitud en la misma medida que si cada compuesto o grupo de
compuestos se expusiera individualmente. Por tanto, la selección de
secuencias, estructuras o sustituyentes particulares está dentro
del alcance de la presente invención.
La presente invención se refiere a composiciones
para uso en la preparación de un medicamento para el tratamiento o
la prevención de infección por VRS que comprenden inmunógenos del
polipéptido inmunogénico del VRS de la proteína G que comprenden la
secuencia de aminoácidos expuesta en SEQ ID NO:2 o fragmentos de la
misma en las que dicho al menos un inmunógeno de la proteína G o
fragmento del mismo tiene un epítope en la región que abarca desde
el aminoácido 165 hasta el aminoácido 195 de SEQ ID NO:2 que provoca
una respuesta inmunitaria protectora contra la infección por VRS
sin provocar una respuesta inmunopatológica o con una respuesta
inmunopatológica reducida. Los polipéptidos inmunogénicos de la
presente invención puede disponerse o combinarse en una forma
lineal, y cada inmunógeno puede o puede no repetirse, pudiendo
producirse la reiteración una vez o múltiples veces. Además, una
pluralidad de polipéptidos inmunogénicos del VRS diferentes (por
ejemplo, diferentes variantes de proteína G, proteína F o proteína
M y fragmentos o variantes de las mismas) puede seleccionarse y
mezclarse o combinarse en una composición de mezcla o fusionarse,
conjugarse o ligarse para proporcionar una vacuna multivalente para
uso en la provocación de una respuesta inmunitaria protectora sin
una respuesta inmunitaria asociada perjudicial.
Como se usa en este documento, "inmunógeno de
la proteína G" o "inmunógeno del VRS" se refiere a todos los
polipéptidos de longitud completa, y fragmentos de los mismos,
fusiones multivalentes, composiciones de mezcla, proteínas de
fusión o cualquier combinación de los mismos que puede provocar una
respuesta inmunitaria protectora contra la infección por VRS sin
provocar una respuesta inmunopatológica o con una respuesta
inmunopatológica reducida, como se describe en este documento.
La presente invención proporciona además
procedimientos para producir inmunógenos de polipéptidos del VRS
multivalentes sintéticos o recombinantes que incluyen proteínas de
fusión. Por ejemplo, las células huésped que contienen constructos
de expresión de ácidos nucleicos que codifican inmunógenos de la
proteína G pueden cultivarse para producir inmunógenos de la
proteína G recombinantes y fragmentos o variantes de los mismos.
También se contemplan procedimientos para tratar o prevenir
infecciones por VRS o provocar una respuesta inmunitaria usando
inmunógenos de la proteína G y fragmentos o variantes de los mismos
como se reivindica en este documento, o una combinación de
polipéptidos (incluyendo proteínas de fusión).
Como se usa en este documento, la frase
"respuesta inmunopatológica" se refiere a una afección o
enfermedad resultante de una reacción inmunitaria que puede o puede
no tener síntomas clínicos detectables. Respuestas
inmunopatológicas a modo de ejemplo incluyen hipersensibilidad o
asma. Otra respuesta inmunopatológica a modo de ejemplo puede ser
una inducción atípica de granulocitos en respuesta a citocinas de
tipo 2 tal como se encuentra en eosinofilia de sangre o eosinofilia
pulmonar que puede ser característica de un estado alérgico o una
infección microbiana (tal como una infección parasítica o una
infección por virus respiratorio sincicial).
A modo de antecedentes y no deseando ceñirse a
la teoría, el VRS tiene un genoma de ARN monocatenario no segmentado
de sentido negativo que codifica al menos 10 proteínas virales (G,
F, SH, M, M2, N, P, L, NS1 y NS2). El VRS tiene dos glucoproteínas
de superficie principales (designadas F y G) que también han sido
examinadas para uso en posibles vacunas. La proteína F participa en
la fusión de membranas entre el virus y la célula diana (Walsh y
Hruska, J. Virol. 47:171, 1983), mientras que se cree que la
proteína G media en la unión del virus a un receptor celular
(Levine y col., J. Gen. Virol. 68:2521, 1987). Tantos la proteína F
como la G del VRS induce una fuerte inmunidad sérica y mucosa que
son importantes para la protección contra la infección por VRS
(Glezen y col., 1986; Holberg y col.; Glezen y col., J. Pediatr.
98:708, 1981; Lamprecht y col., J. Infect. Dis. 134:211, 1976;
Hemming y col., Clin Microbiol. Rev. 8:22, 1995). Los estudios con
ratones han demostrado que el VRS inactivado con formalina y
algunos recombinantes de vacunas que codifican la proteína G indican
una respuesta inflamatoria pulmonar perjudicial en la que los
eosinófilos son un participante destacado (Connors y col., J.
Virol. 68:5321, 1994; Doherty, Trends Microbiol. 2:148, 1994; Waris
y col., J. Virol. 70:2852, 1996; Graham y col., J. Immunol.
151:2032, 1993; Beasley y col., Thorax 43:679, 1988; Openshaw y
col., Int. Immunol. 4:493, 1992). Un resultado sorprendente de la
presente invención es la identificación de un inmunógeno de la
proteína G (por ejemplo, una variante de proteína G de tipo natural;
una proteína G de tipo natural a modo de ejemplo se expone en SEQ
ID NO:4, que puede estar codificada por una secuencia de ácidos
nucleicos como se expone en SEQ ID NO:3) que provoca una respuesta
inmunitaria protectora sin provocar una respuesta inmunopatológica,
o provocando una reducida. El inmunógeno de la proteína G del virus
respiratorio sincicial o fragmento del mismo como se reivindica en
este documento que tiene un epítope que provoca una respuesta
inmunitaria protectora sin provocar una respuesta inmunopatológica,
o provocando una reducida, se usa para preparar composiciones
útiles para tratar o prevenir infecciones por VRS.
En una cierta realización, los inmunógenos de la
proteína G del VRS son un fragmento de SEQ ID NO:2 como se expone
en SEQ ID NOS:6.
Según la invención, el inmunógeno de la proteína
G como se exponen en SEQ ID NO:2 es una variante de la proteína G
de tipo natural que tiene una mutación puntual en la que un
aminoácido en la posición 191 (Asn) cambia a una Ala (véase la
Figura 3, en lo sucesivo también se denomina N191A de la proteína
G), y en una realización más preferida, una variante de inmunógeno
de la proteína G es un fragmento de la proteína G de longitud
completa como se expone en SEQ ID NO:2. Por ejemplo, un fragmento
de la proteína G tal puede incluir desde aproximadamente el
aminoácido 128 hasta aproximadamente el aminoácido 229, conteniendo
el fragmento la mutación N191A (SEQ ID NO:6).
La variante de inmunógeno de la proteína G
representativa reivindicada en este documento incluye una
sustitución Ala. Además, el inmunógeno variante de la presente
invención puede ser un resultado de modificaciones tales como por
ciertos sustituyentes químicos que incluyen glucosilación,
alquilación, etc. Cada una de las variantes de la presente
divulgación puede provocar preferentemente una respuesta inmunitaria
protectora contra el VRS sin provocar una respuesta
inmunopatológica o con una respuesta inmunopatológica reducida (por
ejemplo, eosinofilia).
Como se describe en este documento, los
fragmentos preferidos de la proteína G son inmunógenos que conservan
al menos un epítope que provoca una respuesta inmunitaria
protectora contra el VRS y provoca una respuesta inmunopatológica
reducida, o es incapaz de provocar una respuesta inmunopatológica.
En ciertas realizaciones, el fragmento de inmunógeno del mismo
tiene la mutación N191A en secuencias de aminoácidos que abarcan
desde aproximadamente el aminoácido 120 hasta aproximadamente el
aminoácido 300 de SEQ ID NO:2, preferentemente desde
aproximadamente el aminoácido 125 hasta aproximadamente el
aminoácido 250, más preferentemente desde aproximadamente el
aminoácido 150 hasta aproximadamente el aminoácido 225, y lo más
preferentemente desde aproximadamente el aminoácido 165 hasta
aproximadamente el aminoácido 195. En una realización, el fragmento
de inmunógeno de la proteína G incluye los aminoácidos 128 a 229 y
las mutaciones pueden encontrarse en el intervalo de
aproximadamente los aminoácidos 178 a aproximadamente 205 de la
proteína G.
Las comparaciones de secuencias pueden
realizarse usando cualquier programa de software estándar tal como
BLAST, tBLAST, pBLAST o MegAlign. Otros incluyen los proporcionados
en el juego informático de bioinformática Lasergene que se produce
por DNASTAR® (Madison, Wisconsin). Las referencias para los
algoritmos tales como ALIGN o BLAST pueden encontrarse en, por
ejemplo, Altschul, J. Mol Biol. 219:555-565, 1991; o
Henikoff y Henikoff, Proc. Natl. Acad Sci. USA
89:10915-10919, 1992. BLAST está disponible en la
página web del NCBI (www.ncbi.nlm.nih.govBLAST). Otros
procedimientos para comparar múltiples secuencias de nucleótidos o
aminoácidos determinando el alineamiento óptimo son muy conocidos
para aquellos expertos en la materia (véase, por ejemplo, Peruski y
Peruski, The Internet and the New Biology: Tools for Genomic and
Molecular Research (ASM Press, Inc. 1997); Wu y col. (eds.),
"Information and Superhighway and Computer Databases of Nucleic
Acids and Proteins," en Methods in Gene Biotechnology, páginas
123-151 (CRC Press, Inc. 1997); y Bishop (ed.),
Guide to Human Genome Computing, 2^{a} edición, Academic Press,
Inc., 1998).
Como se usa en este documento, la
"similitud" entre dos péptidos o polipéptidos se determina
generalmente comparando la secuencia de aminoácidos de un péptido o
polipéptido con la secuencia de aminoácidos y sustitutos de
aminoácidos conservados de la misma de un segundo péptido o
polipéptido. Los fragmentos o porciones de los inmunógenos de la
proteína G o variantes de los mismos de la presente descripción
pueden emplearse para producir los inmunógenos de la proteína G de
longitud completa correspondientes mediante síntesis de péptidos;
por tanto, los fragmentos pueden emplearse como productos
intermedios para producir los inmunógenos de la proteína G de
longitud completa. Similarmente, los fragmentos o porciones de los
ácidos nucleicos de la presente invención pueden usarse para
sintetizar ácidos nucleicos de longitud completa de la presente
divulgación.
Como se describe en este documento, los
inmunógenos de la proteína G y los fragmentos de los mismos de la
presente divulgación tienen un epítope que provoca una respuesta
inmunitaria protectora sin provocar una respuesta inmunopatológica
o con una respuesta inmunopatológica reducida. Los fragmentos pueden
identificarse usando ensayos in vivo e in vitro
conocidos en la técnica; tales como estudios de inmunización animal
(por ejemplo, usando un modelo de ratón o conejo) y análisis de
inmunotransferencia de Western, respectivamente, y combinaciones de
los mismos. Otros ejemplos incluyen ensayos de reducción en placas
para evaluar si los inmunógenos de la proteína G y los fragmentos o
variantes de los mismos de la presente descripción pueden provocar
una respuesta inmunitaria, particularmente una respuesta
inmunitaria protectora (neutralizante). Brevemente, un animal se
inmuniza con uno o más inmunógenos de la proteína G, o composición
de los mismos, mediante administración subcutánea, los sueros se
recogen de los animales inmunizados y entonces los sueros se prueban
para su capacidad para inhibir la infección por VRS de una monocapa
de cultivo celular (midiéndose la infección como el número de
placas que se forman; es decir, "orificios" en la monocapa que
se forman a partir del VRS que hace que lisen las células) (véase,
por ejemplo, el Ejemplo 8). Además, las respuestas inmunopatológicas
alteradas (reducidas o potenciadas) pueden identificarse
indirectamente mediante, por ejemplo, examen de los patrones de
expresión de citocinas en animales expuestos al VRS después de la
inmunización con inmunógenos de la proteína G de la invención. Por
ejemplo, los niveles de citocinas específicas pueden medirse en
tejidos de interés usando un ensayo de protección de ribonucleasa
(EPR) para deducir si una respuesta de tipo 1 o tipo 2 es frecuente
después de la inmunización con un inmunógeno de la proteína G de la
invención y posterior exposición al VRS (véase el Ejemplo 9). Estos
y otros ensayos conocidos en la técnica pueden usarse para
identificar inmunógenos de la proteína G y fragmentos o variantes
de los mismos que tienen un epítope que provoca una respuesta
inmunitaria protectora sin
provocar una respuesta inmunopatológica o con una respuesta inmunopatológica reducida, según la presente descripción.
provocar una respuesta inmunopatológica o con una respuesta inmunopatológica reducida, según la presente descripción.
Los polipéptidos de la proteína G del VRS,
fragmentos de los mismos y proteínas de fusión de los mismos, además
de ácidos nucleicos correspondientes de la presente invención, se
proporcionan preferentemente en una forma aislada, y en ciertas
realizaciones preferidas se purifican hasta homogeneidad. Como se
usa en este documento, el término "aislado" significa que el
material se elimina de su entorno original o natural. Por ejemplo,
una molécula de ácido nucleico o polipéptido que se produce
naturalmente presente en un animal vivo o célula no está aislado,
pero la misma molécula de ácido nucleico o polipéptido se aísla
cuando se separa de alguno o todos los materiales coexistentes en
el sistema natural. Las moléculas de ácidos nucleicos, por ejemplo,
podrían ser parte de un vector y/o tales ácidos nucleicos o
polipéptidos podrían ser parte de una composición y todavía
aislarse porque tal vector o composición no es parte de su entorno
natural.
La presente invención también se refiere a
inmunógenos de la proteína G del VRS y fragmentos o variantes de
los mismos producidos sintética o recombinantemente, y
preferentemente recombinantemente. Los componentes de polipéptidos
inmunogénicos de los inmunógenos pueden sintetizarse mediante
procedimientos químicos estándar que incluyen la síntesis mediante
un procedimiento automático. En general, los péptidos inmunogénicos
se sintetizan basándose en la estrategia de protección estándar de
Fmoc en fase sólida con HATU como agente de acoplamiento. El
péptido inmunogénico se escinde de la resina de fase sólida con
ácido trifluoroacético que contiene secuestrantes apropiados que
también desprotege los grupos funcionales de las cadenas laterales.
El péptido inmunogénico bruto se purifica adicionalmente usando
cromatografía de fase inversa preparativa. Pueden usarse otros
procedimientos de purificación tales como cromatografía de reparto,
filtración en gel, electroforesis en gel o cromatografía de
intercambio iónico. Pueden emplearse otras técnicas de síntesis
conocidas en la técnica para producir péptidos inmunogénicos
similares tales como la estrategia de protección de tBoc, el uso de
diferentes reactivos de acoplamiento y similares. Además, puede
usarse cualquier aminoácido que se produzca naturalmente o derivado
del mismo incluyendo D- o L-aminoácidos y
combinaciones de los mismos.
Como se describe en este documento, los
inmunógenos de la proteína G y fragmentos de los mismos de ciertas
realizaciones pueden ser recombinantes, expresándose un inmunógeno
deseado de la proteína G en un polinucleótido que está
operativamente ligado a una secuencia de control de la expresión
(por ejemplo, promotor) en un constructo de expresión de ácido
nucleico. Los inmunógenos de la proteína G recombinantes según la
invención comprenden una secuencia de aminoácidos de SEQ ID NO:2 o
sólo están constituidos por una secuencia de aminoácidos como se
expone en SEQ ID NO:2. Más preferentemente, un inmunógeno de la
proteína G recombinante comprende una secuencia de aminoácidos como
se expone en SEQ ID NOS:6.
"Ácido nucleico" o "molécula de ácido
nucleico" se refiere a cualquiera de ácido desoxirribonucleico
(ADN), ácido ribonucleico (ARN), oligonucleótidos, fragmentos
generados por la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) y
fragmentos generados por cualquiera de ligadura, escisión, acción de
endonucleasas y acción de exonucleasas. Los ácidos nucleicos pueden
estar compuestos por monómeros que son nucleótidos que se producen
naturalmente (tales como desoxirribonucleótidos y ribonucleótidos),
análogos de nucleótidos que se producen naturalmente (por ejemplo,
formas \alpha-enantioméricas de nucleótidos que se
producen naturalmente), o una combinación de ambos. Los nucleótidos
modificados pueden tener modificaciones en restos de azúcar y/o en
restos de bases de pirimidina o purina. Las modificaciones en los
azúcares incluyen, por ejemplo, sustitución de uno o más grupos
hidroxilo por halógenos, grupos alquilo, aminas y grupos azido, o
los azúcares pueden estar funcionalizados como éteres o ésteres.
Además, todo el resto de azúcar puede estar sustituido con
estructuras estérica y electrónicamente similares tales como
aza-azúcares y análogos de azúcares carbocíclicos.
Ejemplos de modificaciones en un resto de base incluyen purinas y
pirimidinas alquiladas, purinas o pirimidinas aciladas u otros
sustitutos heterocíclicos muy conocidos. Los monómeros de ácido
nucleico pueden ligarse mediante enlaces fosfodiéster o análogos de
tales enlaces. Los análogos de enlaces fosfodiéster incluyen
fosforotioato, fosforoditioato, fosforoselenoato,
fosforodiselenoato, fosforoanilotioato, fosforanilidato,
fosforamidato y similares. El término "ácido nucleico" también
incluye los denominados "ácidos nucleicos de péptido" que
comprenden bases de ácidos nucleicos que se producen naturalmente o
modificadas unidas a un esqueleto de poliamida. Los ácidos nucleicos
pueden ser tanto monocatenarios como bicatenarios.
Además, una "molécula de ácido nucleico
aislada" se refiere a una molécula de polinucleótido en forma de
un fragmento separado, o como un componente de un constructo de
ácido nucleico mayor que se ha separado de su célula fuente
(incluyendo el cromosoma en el que normalmente reside) al menos una
vez en una forma sustancialmente pura. Por ejemplo, una molécula de
ADN que codifica un polipéptido de VRS, péptido o variante del mismo
que se ha separado de una partícula de VRS o de una célula huésped
infectada con o que alberga el VRS es una molécula de ADN aislada.
Otro ejemplo de una molécula de ácido nucleico aislada es una
molécula de ácido nucleico químicamente sintetizada. Las moléculas
de ácidos nucleicos pueden estar constituidas por una amplia
variedad de nucleótidos que incluyen ADN, ADNc, ARN, análogos de
nucleótidos o alguna combinación de los mismos.
Una molécula de ácido nucleico aislada comprende
una secuencia que codifica un inmunógeno de la proteína G que tiene
una secuencia de aminoácidos que comprende o está constituida por
SEQ ID NO:2, o un fragmento de inmunógeno de la proteína G como se
reivindica en este documento.
En ciertos aspectos, los vectores y constructos
de ácidos nucleicos incluyen secuencias de ácidos nucleicos que
codifican el inmunógeno de la proteína G o fragmentos del mismo de
la presente invención. En otro aspecto se proporcionan células
huésped que están genéticamente manipuladas con tales vectores o
constructos, y para la producción y el uso en procedimientos para
tratar o prevenir una infección por VRS o provocar una respuesta
inmunitaria. Los polipéptidos de VRS y fragmentos de los mismos
pueden expresarse en células de mamífero, levadura, bacteria u
otras células bajo el control de secuencias de control de la
expresión apropiadas. Los sistemas de traducción sin células
también pueden emplearse para producir tales proteínas usando ARN
derivados de dichos constructos de expresión de ácidos nucleicos de
la presente invención. Los vectores de clonación y expresión
apropiados para uso con huéspedes procariotas y eucariotas se
describen, por ejemplo, por Sambrook y col., Molecular Cloning: A
Laboratory Manual, segunda edición, Cold Spring Harbor, NY, (1989),
y pueden incluir plásmidos, cósmidos, vectores lanzadera, vectores
virales y vectores que comprenden un origen cromosómico de
replicación como se desvela en este documento.
Ciertos constructos de expresión de ácidos
nucleicos comprenden una secuencia de control de la expresión ligada
operativamente a un polinucleótido que codifica un inmunógeno de la
proteína G o fragmento del mismo como se reivindica en este
documento.
En otras realizaciones, los constructos de
expresión de ácidos nucleicos descritos en este documento tienen un
promotor inducible que puede ser lac, tac, tro,
ara, trp, fago \lambda, fago T7 y promotor del fago
T5, y más preferentemente es una secuencia del control de la
expresión del promotor del fago T5/operador lac (plásmido pT5) como
se describe en la publicación de solicitud de patente de EE.UU. nº
2003/0143685. La "secuencia de control de la expresión" se
refiere a cualquier secuencia suficiente para permitir la expresión
de una proteína de interés en una célula huésped que incluye una o
más secuencias promotoras, secuencias potenciadoras, secuencias
operadoras (por ejemplo, lacO) y similares. En ciertas
realizaciones, el ácido nucleico que codifica el polipéptido del
VRS está en un plásmido, preferentemente en el plásmido pT5, y la
célula huésped es una bacteria, preferentemente Escherichia
coli.
Se ha mostrado que la inyección de mamíferos con
vehículos de administración de genes (por ejemplo, ADN desnudo) que
codifican antígenos de diversos patógenos da como resultado
respuestas inmunitarias protectoras (Ulmer y col., Science
259:1745-9, 1993; Bourne y col., J Infect. Dis
173:800-7, 1996; Hoffman y col., Vaccine
12:1529-33, 1994). Desde la descripción original de
la expresión in vivo de proteínas extrañas a partir de ADN
desnudo inyectado en tejido muscular (Wolff y col., Science
247:1465-8, 1990) ha habido varios avances en el
diseño y la administración de ADN para fines de vacunación.
Las vacunas contra el VRS descritas en este
documento son idealmente aptas para la administración mediante ADN
desnudo debido a que los anticuerpos establecen en última instancia
inmunidad protectora. Por ejemplo, dentro de una realización, las
secuencias de polinucleótidos que codifican un inmunógeno de la
proteína G o fragmento del mismo están ligadas en plásmidos que
están específicamente manipulados para la expresión de células de
mamíferos (véase, por ejemplo, Hartikka y col., Hum Gene Ther
7:1205-17, 1996, que contiene el elemento
promotor/potenciador del gen temprano del citomegalovirus, el
péptido señal del activador de plasminógeno de tejido humano y un
elemento terminador del gen de la hormona de crecimiento bovina).
Los polipéptidos del VRS pueden clonarse en un plásmido que se usa
para transfectar líneas celulares humanas para asegurar la expresión
de proteínas recombinantes. El plásmido puede propagarse en
bacterias tales como E. coli y purificarse en cantidades
suficientes para estudios de inmunización mediante centrifugación en
gradiente de cloruro de cesio. Animales tales como los ratones
pueden inmunizarse con, por ejemplo, 50 \mug de un plásmido
recombinante aislado en 50 \mul de solución salina
intramuscularmente (i.m.). Las inyecciones de refuerzo de la misma
dosis pueden administrarse adicionalmente a intervalos de tres y
seis semanas después de la inyección inicial.
Asimismo, también puede utilizarse una amplia
variedad de otros vehículos de administración de genes dentro del
contexto de la presente invención que incluyen virus,
retrotransposones y cósmidos. Ejemplos representativos incluyen
vector adenovirales (por ejemplo, los documentos WO 94/26914, WO
93/9191; Yei y col., Gene Therapy 1:192-200, 1994;
Kolls y col., PNAS 91(1):215-219, 1994;
Kass-Eisler y col., PNAS
90(24):11498-502, 1993; Guzman y col.,
Circulation 88(6):2838-48, 1993; Guzman y
col., Cir. Res. 73(6):1202-1207, 1993; Zabner
y col., Cell 75(2):207-216, 1993; Li y col.,
Hum Gene Ther. 4(4):403-409, 1993; Caillaud y
col., Eur. J. Neurosci. 5(10):1287-1291,
1993), vectores de tipo 1 adenoasociados
("AAV-1") o de tipo 2 adenoasociados
("AAV-2") (véase el documento WO 95/13365;
Flotte y col., PNAS 90(22):10613-10617,
1993), vectores de la hepatitis delta, virus delta vivos atenuados,
vectores vacunales y vectores virales de herpes (por ejemplo, la
patente de EE.UU. nº 5.288.641), además de vectores que se desvelan
dentro de la patente de EE.UU. nº 5.166.320. Otros vectores
representativos incluyen vectores retrovirales (por ejemplo,
documentos EP 0 415 731; WO 90/07936; WO 91/02805; WO 94/03622; WO
93/25698; WO 93/25234; la patente de EE.UU. nº 5.219.740; documentos
WO 93/11230; WO 93/10218). Los procedimientos de uso de tales
vectores en la terapia génica son muy conocidos en la técnica
(véase, por ejemplo, Larrick, J.W. y Burck, KL., Gene Therapy:
Application of Molecular Biology, Elsevier Science Publishing Co.,
Inc., New York, New York, 1991; y Kreigler, M., Gene Transfer and
Expression: A Laboratory Manual, W.H. Freeman y Company, New York,
1990).
Los vehículos de administración de genes pueden
introducirse en una célula huésped utilizando un vehículo o
mediante diversos procedimientos físicos. Ejemplos representativos
de tales procedimientos incluyen la transformación usando la
precipitación de fosfato de calcio (Dubensky y col., PNAS
81:7529-7533, 1984), microinyección directa de
tales moléculas de ácidos nucleicos en células diana intactas
(Acsadi y col., Nature 352:815-818, 1991) y
electroporación por la que las células suspensas en una disolución
conductora se someten a un campo eléctrico intenso con el fin de
polarizar transitoriamente la membrana, permitiendo la entrada de
las moléculas de ácidos nucleicos. Otros procedimientos incluyen el
uso de moléculas de ácidos nucleicos ligadas a un adenovirus
inactivo (Cotton y col., PNAS 89:6094, 1990), lipofección (Felgner
y col., Proc. Natl. Acad Sci. USA 84:7413-7417,
1989), bombardeo de microproyectiles (Williams y col., PNAS
88:2726-2730, 1991), compuestos policatiónicos
(tales como polilisina), ligandos específicos de receptores,
liposomas que atrapan las moléculas de ácidos nucleicos, fusión de
esferoplastos por la que la E. coli que contiene las
moléculas de ácidos nucleicos se deshacen de sus paredes celulares
exteriores y se fusionan a células animales usando polietilenglicol,
transducción viral (Cline y col., Pharmac. Ther. 29:69, 1985; y
Friedmann y col., Science 244:1275, 1989) y ligando de ADN (Wu y
col., J. de Biol. Chem. 264:16985-16987, 1989),
además de virus inactivados psoralenos tales como Sendai o
adenovirus.
El suero de un sujeto inmunizado con vehículos
de administración de genes que contienen inmunógenos del polipéptido
del VRS y fragmentos o variantes de los mismos, y fusiones de los
mismos, puede ensayarse para el título total de anticuerpos por
ELISA usando polipéptidos nativos del VRS como antígeno. Los
anticuerpos protectores del suero pueden ensayarse como se describe
en este documento o como se conoce en la técnica. La eficacia
protectora de las vacunas de polipéptidos del VRS de ADN puede
determinarse, por ejemplo, mediante ensayos de protección animal
directos (es decir, estudios de infección por exposición) usando un
serotipo de VRS que está representado en la composición farmacéutica
o vacuna (es decir, estudios de infección por exposición).
En ciertos aspectos, una secuencia de ácidos
nucleicos puede modificarse para codificar un inmunógeno del VRS o
variante funcional del mismo en la que los codones específicos de la
secuencia de ácidos nucleicos han sido cambiados por codones que
están favorecidos por un huésped particular y puede dar como
resultado la potenciación de niveles de expresión (véase, por
ejemplo, Haas y col., Curr. Biol. 6:315, 1996; Yang y col., Nucleic
Acids Res. 24:4592, 1996). Por ejemplo, ciertos codones de los
péptidos inmunogénicos pueden optimizarse sin cambiar la secuencia
primaria de los péptidos para una mejora de la expresión en
Escherichia coli. A modo de ilustración y no de limitación,
los codones de arginina (Arg) de AGG/AGA pueden cambiarse a los
codones de Arg de CGT/CGC. Similarmente, los codones de Arg de
AGG/AGA pueden optimizarse a codones de CGT/CGC. Como se conoce en
la técnica, los codones pueden optimizarse para un huésped en el
que los inmunógenos de la proteína G y los fragmentos o variantes
de los mismos van a expresarse, que incluyen bacterias, hongos,
células de insecto, células de plantas y células de mamífero.
Adicionalmente, los codones que codifican diferentes aminoácidos
también pueden cambiarse, en los que uno o más codones que
codifican diferentes aminoácidos pueden alterarse simultáneamente
ya que se adaptaría mejor a un huésped particular (por ejemplo,
pueden optimizarse todos los codones para arginina, glicina,
leucina y serina o cualquier combinación de los mismos).
También se proporcionan procedimientos para
producir los polipéptidos del VRS de la presente invención en los
que pueden usarse cualquiera de las moléculas de ácidos nucleicos y
células huésped descritas en este documento. En una realización
preferida, un procedimiento para producir un inmunógeno de la
proteína G y fragmentos del mismo (que tiene al menos un epítope
que provoca una respuesta inmunitaria protectora sin provocar una
respuesta inmunopatológica, o provocando una reducida) comprende
cultivar una célula huésped que contiene un vector de expresión de
ácido nucleico que comprende al menos una secuencia de control de la
expresión ligada operativamente a una molécula de ácido nucleico
que codifica un polipéptido de VRS tal como un inmunógeno de la
proteína G del VRS y fragmento del mismo como se reivindica en este
documento, en condiciones y durante un tiempo suficiente para la
expresión del polipéptido.
En ciertas realizaciones se contemplan vacunas
multivalentes. Por ejemplo, tales composiciones multivalentes
pueden comprender una combinación de dos o más inmunógenos de la
proteína G diferentes, o una combinación de uno o más inmunógenos
de la proteína G con uno o más inmunógenos del VRS diferentes (tales
como un inmunógeno de la proteína F o de la proteína M). La
combinación de antígenos puede formularse como una mezcla (es decir,
una mezcla de una pluralidad de inmunógenos diferentes), o la
combinación puede ser una pluralidad de inmunógenos diferentes
conjugados, ligados o fusionados juntos (químicamente o
recombinantemente). Además, los inmunógenos fusionados pueden tener
uno o más inmunógenos repetidos al menos una vez dentro de la
proteína de fusión multivalente, reiteración que puede producirse
en el extremo amino, el extremo carboxi, una posición interna de un
polipéptido de inmunógeno multivalente seleccionado, en múltiples
posiciones, o cualquier combinación de los mismos. Por ejemplo,
tales inmunógenos del VRS híbridos multivalentes pueden comprender
uno o más fragmentos de péptidos de la proteína G y uno o más
fragmentos de péptidos de una proteína F o proteína M del VRS, y
cualquier combinación de los mismos. En ciertas realizaciones,
tales composiciones de vacunas de inmunógenos del VRS híbridos
multivalentes pueden combinar epítopes inmunogénicos de diferentes
grupos antigénicos del VRS, por ejemplo, inmunógenos de los virus
del subgrupo A (por ejemplo, Long y A2) o virus del subgrupo B (por
ejemplo, CH-18537 y 8/60), o inmunógenos de ambos
virus de los subgrupos A y B (o cualquier otro subgrupo del VRS que
se encuentre para, por ejemplo, infectar a seres humanos).
En algunas realizaciones, los inmunógenos del
VRS pueden ligarse mediante, por ejemplo, al menos dos aminoácidos
codificados por una secuencia de ácidos nucleicos que es un sitio de
reconocimiento de enzimas de restricción, en los que los sitios de
restricción pueden ser cualquiera o más de BamHI,
ClaI, EcoRI, HindIII, KpnI, NcoI,
NheI, PmlI, PstI, SalI, XhoI y
similares. Los ligadores de aminoácidos adicionales también pueden
añadirse sintéticamente, como se conoce en la técnica y se describe
en este documento. Preferentemente, los aminoácidos adicionales no
crean ninguna identidad en la secuencia que engloba un estiramiento
de cinco aminoácidos de una proteína humana de manera que minimicen
la posibilidad de producir anticuerpos de reactividad cruzada
contra tejidos humanos. Además, los péptidos híbridos de la presente
invención pueden comprender adicionalmente al menos un aminoácido
del extremo carboxi adicional en el que el aminoácido adicional es
un aminoácido D o L. Puede añadirse cualquiera de los veinte
aminoácidos que se producen naturalmente o derivados de los mismos
tales como cisteína, histidina, leucina y ácido glutámico. Por
ejemplo, la adición de cisteína puede ser útil para unir (por
ejemplo, enzimáticamente o mediante reticulación química) otros
constituyentes tales como un lípido, una proteína portadora, una
marca, una enzima y similares.
Como se describe en este documento, la invención
también proporciona proteínas de fusión del inmunógeno del VRS que
comprenden un inmunógeno de la proteína G o fragmento del mismo
fusionado a una secuencia de polipéptidos funcional o no funcional
adicional que permite, por ejemplo, la detección, el aislamiento y
la purificación de las proteínas de fusión del polipéptido híbrido.
Por ejemplo, una secuencia de polipéptidos funcional adicional
puede ser una secuencia de marca que incluye proteínas de fusión que
en ciertas realizaciones pueden detectarse, aislarse o purificarse
mediante procedimientos de afinidad
proteína-proteína (por ejemplo,
receptor-ligando), afinidad por metales o afinidad
de carga. En ciertas otras realizaciones, las proteínas de fusión de
polipéptidos híbridos pueden detectarse mediante escisión de
proteasas específicas de una proteína de fusión que tiene una
secuencia que comprende una secuencia de reconocimientos de
proteasas de forma que los péptidos híbridos pueden separarse de la
secuencia de polipéptidos adicional. Además, los péptidos híbridos
pueden prepararse sintéticamente incluyendo aminoácidos
adicionales, una proteína portadora, una parte o resto hidrófobo
(por ejemplo, un lípido) o una secuencia de marca que puede
localizarse en el extremo amino, el extremo carboxi o en un sitio
interno (no extremo) de la proteína de fusión. En realizaciones
particularmente preferidas, por ejemplo, los inmunógenos del VRS
recombinantes se fusionan en el marco a una marca, marca que puede
ser una cualquiera de fosfatasa alcalina, tiorredoxina (Trx),
\beta-galactosidasa, hexahistidina (6xHis), marca
de epítope FLAG® (DYKDDDDK, SEQ ID NO:71), GST o similares, y
cualquier combinación de las mismas.
Las realizaciones preferidas incluyen proteínas
de fusión de polipéptidos híbridos que facilitan la detección de
afinidad y el aislamiento de los péptidos híbridos y pueden incluir,
por ejemplo, poli-His o los epítopes de péptidos
antigénicos definidos descritos en la patente de EE.UU. nº 5.011.912
y en Hopp y col., (1988 Bio/Technology 6:1204), o la marca de
epítope XPRESS^{TM} (DLYDDDDK, SEQ ID NO:72; Invitrogen, Carlsbad,
CA) o tiorredoxina. La secuencia de afinidad puede ser una marca de
hexa-histidina como se suministra por un vector. Por
ejemplo, un pBAD/His (Invitrogen), un vector pET (Invitrogen) o un
vector pQE (Qiagen, Valencia, CA) puede proporcionar una marca de
polihistidina para la purificación de la fusión de proteínas maduras
a partir de un huésped particular, tal como una bacteria, usando
una columna de afinidad de níquel. Alternativamente, la secuencia de
afinidad puede añadirse tanto sintéticamente como manipularse en
los cebadores usados para generar recombinantemente la secuencia de
ácidos nucleicos (por ejemplo, usando la reacción en cadena de la
polimerasa) que codifica un péptido inmunogénico de VRS.
Opcionalmente, cualquiera de los inmunógenos de la proteína G
anteriormente mencionados y fragmentos o variantes de los mismos, y
proteínas de fusión de los mismos, también pueden tener una parte
hidrófoba (ancla o pie) que está conjugada, ligada o fusionada
(químicamente o recombinantemente) al extremo amino o al extremo
carboxi. Los restos hidrófobos representativos incluyen una
secuencia de aminoácidos de al menos cinco aminoácidos tales como
MFLLAVFYGG (SEQ ID NO:35) o GGYFVALLF (SEQ ID NO:36) o un
lípido.
En ciertas realizaciones, los inmunógenos del
VRS se fusionan a una marca de tiorredoxina o de polihistidina que
están codificadas por una secuencia de ácidos nucleicos recombinante
que codifica una proteína de fusión tal. En realizaciones
preferidas, los fragmentos de inmunógeno de la proteína G del VRS se
fusionan a una marca de tiorredoxina o de polihistidina que están
codificadas por una secuencia de ácidos nucleicos como se expone en
SEQ ID NOS: 25. Secuencias de aminoácidos a modo de ejemplo de
fragmentos de inmunógeno de la proteína G del VRS fusionadas a una
marca de tiorredoxina o de polihistidina se exponen en SEQ ID NOS:
26. En realizaciones relacionadas se proporcionan secuencias de
ácidos nucleicos que codifican una proteína de fusión de inmunógeno
de la proteína G del VRS que comprende además una secuencia de
ácidos nucleicos que codifica un resto hidrófobo o pie ligado o
fusionado a la proteína de fusión del inmunógeno de G. Secuencias de
aminoácidos a modo de ejemplo de fragmentos de inmunógeno de la
proteína G del VRS fusionados a una marca de tiorredoxina o de
polihistidina, y que comprenden además una parte hidrófoba o pie se
exponen en SEQ ID NOS: 30 y 34. En realizaciones preferidas, el
resto hidrófobo es una secuencia de aminoácidos de MFLLAVFYGG (SEQ
ID NO:35) fusionada al extremo amino de la proteína de fusión o
GGYFVALLF (SEQ ID NO:36) fusionada al extremo carboxi de la
proteína de fusión.
Una proteína de fusión puede comprender un resto
hidrófobo fusionado al extremo amino o extremo carboxi de un
inmunógeno de la proteína G o fragmento del mismo. Alternativamente,
la proteína de fusión puede comprender una parte hidrófoba
fusionada a un ligador (por ejemplo, uno o más aminoácidos,
preferentemente dos o cuatro) que a su vez está fusionado al
extremo amino o extremo carboxi de un inmunógeno de la proteína G o
fragmento del mismo. En todavía otra realización, una proteína de
fusión puede comprender un resto hidrófobo fusionado a una o más
secuencias de aminoácidos (por ejemplo, una marca, tal como una
tiorredoxina o una polihistidina) que a su vez está fusionada al
extremo amino de un inmunógeno de la proteína G o fragmento del
mismo, o una proteína de fusión puede comprender una o más
secuencias de aminoácidos (por ejemplo, una marca, tal como una
tiorredoxina o una polihistidina) fusionadas al extremo amino de un
inmunógeno de la proteína G o fragmento del mismo que a su vez está
fusionado a una parte hidrófoba. Como será apreciado por aquellos
expertos en la materia, una proteína de fusión de la presente
divulgación puede construirse para contener uno o más inmunógenos
de la proteína G o fragmentos y variantes de los mismos, uno o más
ligadores, una o más secuencias de marcas de aminoácidos
adicionales, una o más partes hidrófobas, o cualquier combinación de
los mismos.
Esta descripción también se refiere a
composiciones farmacéuticas que contienen uno o más inmunógenos del
VRS que pueden usarse para provocar una respuesta inmunitaria sin la
respuesta inmunopatológica concomitante o al menos una respuesta
inmunopatológica reducida. Esta descripción se refiere además a
procedimientos para tratar y prevenir infecciones por VRS mediante
la administración a un sujeto de un inmunógeno de la proteína G o
fragmento y variantes del mismo, proteína de fusión, inmunógeno
multivalente, o una mezcla de tales inmunógenos a una dosis
suficiente para producir anticuerpos específicos para VRS, como se
describe en este documento. Los inmunógenos de la proteína G o
fragmentos y variantes de los mismos, o una mezcla de tales
inmunógenos, son preferentemente parte de una composición
farmacéuticamente aceptable cuando se usa en los procedimientos de
la presente invención.
A modo de antecedentes, la infección natural o
experimental de un animal o sujeto humano no parece provocar una
respuesta inmunitaria de CTL CD8^{+} que reconoce la proteína G,
mientras que a diferencia la proteína F no provoca una respuesta
inmunitaria de CTL CD8^{+}. Por consiguiente, se espera una vacuna
de antígeno del VRS compuesta por G más F de la presente
descripción para provocar tanto una respuesta inmunitaria protectora
de CD4^{+} como de CD8^{+} sin provocar una respuesta
linfocítica proliferativa inmunopatológica, o provocando una
reducida, siendo una respuesta tal perjudicial o de otro modo no
deseada. Además, el uso de componentes basados en la tecnología de
los proteosomas combinados con antígeno(s) del VRS puede
influir en un desplazamiento en la respuesta inmunitaria fomentada
para un antígeno del VRS de una respuesta predominantemente de tipo
2 hacia una respuesta de tipo 1 preferencial (como se determina por
los perfiles de citocinas conocidos por aquellos expertos en la
materia), y así eliminar o reducir de una manera estadísticamente
significativa una respuesta eosinófila no deseada, una respuesta de
IgE no deseada, o ambas, tras la inmunización con una vacuna o
composición farmacéutica de la presente descripción. Por ejemplo,
combinando uno o más epítopes inmunogénicos de CD8^{+} de clase I
del CHM de la proteína F del VRS con uno o más epítopes
inmunogénicos de clase II de CD4^{+} del CHM contenidos en la
proteína G del VRS.
Como se conoce en la técnica, el patrón de
expresión de citocinas y la activación de linfocitos CD4^{+} en el
momento de la primera exposición a un antígeno del VRS influye el
patrón de respuestas inmunitarias a exposiciones posteriores. Por
tanto, junto con la protección de enfermedad respiratoria y
eosinofilia, las composiciones inmunogénicas de la presente
solicitud pueden demostrar ser útiles en la protección contra el
asma infantil asociado a una infección por VRS. En una realización
preferida, por ejemplo, una vacuna de la presente invención puede
provocar una respuesta inmunitaria que protege de o modera de otra
forma las consecuencias patológicas de una infección por VRS,
mientras que al
mismo tiempo o destruye o disminuye de otra forma una posterior respuesta de anticuerpos IgE a alérgenos comunes.
mismo tiempo o destruye o disminuye de otra forma una posterior respuesta de anticuerpos IgE a alérgenos comunes.
En ciertas realizaciones, la invención
proporciona una composición que comprende un inmunógeno de G del
virus respiratorio sincicial o fragmento del mismo como se
reivindica en este documento formulado con un proteosoma o un
liposoma. Una realización es un inmunógeno de la proteína G que
comprende una secuencia de aminoácidos como se expone en SEQ ID
NO:2 o que está constituida por SEQ ID NO:2. En otras realizaciones
preferidas son inmunógenos de la proteína G que comprenden una
secuencia de aminoácidos seleccionada de SEQ ID NOS:6.
Preferentemente, los liposomas formulados para contener uno o más
inmunógenos del VRS comprenden además lípidos de Deinococcus
radiodurans o
\alpha-galactosilfosfotidilglicerolalquilamina. La
adición de tales lípidos a un liposoma puede potenciar la eficacia
de una composición de vacuna contra el VRS, aumentando la inmunidad
protectora y suprimiendo la eosinofilia perjudicial (véase, por
ejemplo, Huang y Anderson, Vaccine 20:1586, 2002).
Los inmunógenos del virus respiratorio sincicial
de la presente invención pueden incluir adicionalmente un resto
hidrófobo covalentemente unido. Un resto hidrófobo puede ser, por
ejemplo, una secuencia de aminoácidos o un lípido, como se desvela
en la patente de EE.UU. nº 5.726.292. En ciertas realizaciones, el
resto hidrófobo es una secuencia de aminoácidos de MFLLAVFYGG (SEQ
ID NO:35) fusionada al extremo amino de un inmunógeno o GGYFVALLF
(SEQ ID NO:36) fusionado al extremo carboxi de un inmunógeno. La
proteína G del VRS que se produce naturalmente contiene una
secuencia de aminoácidos transmembrana hidrófoba que puede hacer de
resto hidrófobo según la presente invención. En una realización,
una composición de VRS (por ejemplo, una composición de vacuna) de
la presente solicitud comprende un inmunógeno de la proteína G del
VRS o fragmento del mismo como se describe en este documento
formulado con un proteosoma o una protolina. Cuando se formula con
un proteosoma o una protolina, los inmunógenos de la proteína G
comprenden preferentemente además un resto hidrófobo que puede estar
compuesto por una secuencia de aminoácidos hidrófoba o un lípido
(como se usa en este documento, lípido se refiere a una
característica de solubilidad y, por tanto, incluye alquilos,
arilalquilos, arilos, ácidos grasos, glicéridos y éteres de
glicerilo, fosfolípidos, esfingolípidos, alcoholes de cadena larga,
esteroides, vitaminas y similares). En ciertas realizaciones, los
inmunógenos de la proteína G, con o sin un resto hidrófobo, pueden
contener adicionalmente una segunda secuencia de aminoácidos para
formar una fusión, siendo la segunda secuencia de aminoácidos una
marca, vehículo, enzima o una combinación de los mismos, como se
describe en este documento. Otra vacuna preferida contra el VRS de
la presente invención puede comprender un polipéptido del VRS no
infeccioso o fragmento del mismo que es sumamente inmunogénico y
que puede inmunoneutralizar el crecimiento del virus. En
realizaciones preferidas de la presente invención, una vacuna de
subunidad del VRS tal tiene efectos secundarios inmunopatológicos
reducidos o deseados (por ejemplo, eosinofilia o asma) en un sujeto
vacunado tal como un ser humano o animal.
La composición farmacéutica incluirá
preferentemente al menos uno de un vehículo, soporte, diluyente o
excipiente farmacéuticamente aceptable, además de uno o más
inmunógenos del VRS o proteína de fusión de los mismos y,
opcionalmente otros componentes. Por ejemplo, los vehículos
farmacéuticamente aceptables adecuados para uso con una composición
de un inmunógeno de la proteína G o proteína de fusión del mismo, o
mezcla de dos o más inmunógenos de la proteína G o proteínas de
fusión de los mismos, o mezcla de inmunógenos G, F y M o proteínas
de fusión de los mismos, pueden incluir, por ejemplo, un espesante,
un agente de tamponamiento, un disolvente, un humectante, un
conservante, un agente quelante, un adyuvante y similares, y
combinaciones de los mismos.
Adyuvantes a modo de ejemplo incluyen alumbre
(hidróxido de aluminio, REHYDRAGEL®), fosfato de aluminio, adyuvante
de proteosoma con LPS (protolina) o sin LPS (véanse, por ejemplo,
las patentes de EE.UU. nº 5.726.292 y 5.985.284 y las publicaciones
de solicitud de patente de EE.UU. nº 2001/0053368 y US
2003/0044425), virosomas, liposomas con y sin lípido A, Detox
(Ribi/Corixa), MF59 u otros adyuvantes de tipo emulsiones de aceite
y agua tales como nanoemulsiones (véase, por ejemplo, la patente de
EE.UU. nº 5.716.637) y emulsiones submicrométricas (véase, por
ejemplo, la patente de EE.UU. nº 5.961.970), y adyuvante de Freund
completo e incompleto. Los vehículos farmacéuticamente aceptables
para uso terapéutico son muy conocidos en la técnica farmacéutica y
como se describen en este documento y, por ejemplo, en Remington's
Pharmaceutical Sciences, Mack Publishing Co. (A.R Gennaro, ed.,
18^{a} edición, 1990) y en CRC Handbook of Food, Drug, and
Cosmetic Excipients, CRC Press LLC (S.C. Smolinski, ed., 1992).
En ciertas realizaciones, los inmunógenos de la
proteína G y fragmentos o variantes de los mismos (incluyendo
proteínas de fusión y composiciones multivalentes) se formulan con
proteosoma. Como se usa en este documento, "proteosoma" o
"Projuvant" se refiere a preparaciones de proteínas de membrana
externa (PME, también conocidas como porinas) de bacterias
gram-negativas tales como especies Neisseria
(véase, por ejemplo, Lowell y col., J. Exp. Med. 167:658, 1988;
Lowell y col., Science 240:800, 1988; Lynch y col., Biophys. J.
45:104, 1984; Lowell, en "New Generation Vaccines" 2ª ed.,
Marcel Dekker, Inc., New York, Basil, Hong Kong, página 193, 1997;
la patente de EE.UU. nº 5.726.292; la patente de EE.UU. nº
4.707.543), que son útiles como vehículo o un adyuvante para
inmunógenos tales como antígenos bacterianos o virales. Los
proteosomas son hidrófobos y seguros para uso humano y comparables
en tamaño a ciertos virus. Los proteosomos tienen la interesante
capacidad de autoensamblarse en vesículas o agrupaciones de PME
similares a vesículas de 20-800 nm, y de
incorporarse, coordinarse, asociarse (por ejemplo,
electrostáticamente o hidrófobamente) o cooperar de otro modo no
covalentemente con antígenos de proteína (Ag), particularmente
antígenos que tienen un resto hidrófobo. Cualquier procedimiento de
preparación que dé como resultado el componente de proteína de la
membrana exterior en forma vesicular o similar a vesículas, que
incluye estructuras membranosas multimoleculares o composiciones de
PME similares a glóbulos fundidos de una o más PME, se incluye
dentro de la definición de proteosoma. Los proteosomas pueden
prepararse, por ejemplo, como se describe en la técnica (véanse, por
ejemplo, las patentes de EE.UU. nº 5.726.292 ó 5.985.284).
En ciertas realizaciones, los inmunógenos de la
proteína G y fragmentos o variantes de los mismos (incluyendo
proteínas de fusión y composiciones multivalentes) se formulan con
protolina. Como se usa en este documento, "proteosoma:LPS" o
"protolina" (también conocida como
"IVX-908") se refiere a preparaciones de
Projuvant mezclado como se describe en este documento con al menos
un tipo de liposacárido para proporcionar una composición de
PME-LPS (que puede hacer de una composición
inmunoestimulante). Por tanto, el adyuvante de
PME-LPS puede estar constituido por dos de los
componentes básicos de protolina que incluyen (1) una preparación de
proteína de membrana externa de proteosomas (es decir, Projuvant)
preparada a partir de bacterias gram-negativas tales
como Neisseria meningitides, y (2) una preparación de uno o
más liposacáridos. También se contempla que los componentes de
protolina puedan ser o incluir lípidos, glicolípidos,
glucoproteínas, moléculas pequeñas o similares. La protolina puede
prepararse, por ejemplo, como se describe en la publicación de
solicitud de patente de EE.UU. nº 2003/0044425.
Projuvant se usa generalmente conjuntamente con
antígenos (que se producen naturalmente o modificados) que poseen
un resto hidrófobo o parte que se produce naturalmente, modificado o
complementario (también denominado en lo sucesivo un "pie" o
"ancla"). La protolina (que contiene LPS exógenamente añadido)
también puede usarse con un antígeno que no contiene un dominio de
pie hidrófobo y que puede ser de naturaleza ampliamente hidrófila.
La protolina puede mezclarse o combinarse con un antígeno que
contiene un pie hidrófobo, un antígeno que carece de un pie
hidrófobo, o con una combinación de antígenos que tienen y que no
tienen una parte hidrófoba o pie.
Como se usa en este documento,
"liposacárido" (tal como el usado en la preparación de
protolina) se refiere a lipopolisacárido o lipooligosacárido nativo
(aislado o preparado sintéticamente con una estructura nativa) o
modificado (también denominado conjuntamente en lo sucesivo
"LPS") derivado de bacterias gram-negativas
tales como Shigella flexneri o Plesiomonas
shigelloides, u otras bacterias gram-negativas
(incluyendo Alcaligenes, Bacteroides,
Bordetella, Borrellia, Brucella,
Campylobacrer, Chlamydia, Citrobacter,
Edwardsiella, Ehrlicha, Enterobacter,
Escherichia, Francisella, Fusobacterium,
Gardnerella, Hemophillus, Helicobacter,
Klebsiella, Legionella, Leptospira (incluyendo
Leptospira interrogans), Moraxella, Morganella,
Neiserria, Pasteurella, Proteus,
Providencia, otras Plesiomonas, Porphyromonas
(incluyendo Porphyromonas gingivalis), Prevotella,
Pseudomonas, Rickettsia, Salmonella,
Serratia, otras especies de Shigella,
Spirillum, Veillonello, Vibrio o
Yersinia). El liposacárido puede estar en una forma
desintoxicada (es decir, que tiene quitado el núcleo del lípido A)
o puede estar en una forma que no ha sido desintoxicada. En la
presente divulgación, el liposacárido no necesita estar
desintoxicado y preferentemente no está.
Los dos componentes de un adyuvante de
PME-LPS pueden formularse a relaciones iniciales
específicas para optimizar la interacción entre los componentes
dando como resultado la asociación estable y la formulación de los
componentes para uso en la preparación de una composición
inmunogénica de la invención. El procedimiento implica generalmente
la mezcla de componentes en una disolución de detergente
seleccionada (por ejemplo, Empigen® BB, Triton®
X-100 o Mega-10) y luego efectuar
la complejación de los componentes de PME y LPS mientras que se
reduce la cantidad de detergente hasta una concentración
predeterminada preferida mediante diálisis o, preferentemente
mediante metodologías de diafiltración/ultrafiltración. La mezcla,
la coprecipitación o la liofilización de los dos componentes
también pueden usarse para efectuar una asociación o formulación
adecuada y estable. En una realización preferida, una composición
inmunogénica comprende uno o más inmunógenos de la proteína G y un
adyuvante, en la que el adyuvante comprende un Projuvant (es decir,
proteosoma) y liposacárido.
En ciertas realizaciones, el contenido de
liposacárido final en peso como porcentaje de la proteína de
proteosoma total puede estar en un intervalo de aproximadamente el
1% a aproximadamente el 500%, más preferentemente en un intervalo
de aproximadamente el 10% a aproximadamente el 200%, o en un
intervalo de aproximadamente el 30% a aproximadamente el 150%. Otra
realización incluye un adyuvante en el que los proteosomas se
preparan a partir de Neisseria meningitides y el
liposacárido se prepara a partir de Shigella flexneri o
Plesiomonas shigelloides, y el contenido de liposacárido
final está entre el 50% y el 150% de la proteína de proteosoma
total en peso. En otra realización, los proteosomas se preparan con
contenido de lipooligosacárido endógeno (LOS) que oscila de
aproximadamente el 0,5% a aproximadamente el 5% de PME total. Otra
realización de la presente invención proporciona proteosomas con
liposacárido endógeno en un intervalo de aproximadamente el 12% a
aproximadamente el 25%, y en una realización preferida entre
aproximadamente el 15% y aproximadamente el 20% de PME total. La
presente divulgación también proporciona una composición que
contiene liposacárido derivado de cualquier especie de bacterias
gram-negativas que puede ser de las mismas especies
de bacterias gram-negativas que es la fuente de
proteosomas o es una especie bacteriana diferente.
En ciertas realizaciones, la relación de
proteosoma o protolina respecto a inmunógeno de la proteína G en la
composición inmunogénica es superior a 1:1, superior a 2:1, superior
a 3:1 o superior a 4:1. La relación puede ser de hasta 8:1 o
superior. En otras realizaciones, la relación de proteosoma o
protolina respecto al antígeno de coronavirus de la composición
inmunogénica oscila de aproximadamente 1:1 a aproximadamente 1:500,
preferentemente la relación es al menos 1:5, al menos 1:10, al menos
1:20, al menos 1:50 o al menos 1:100. Una ventaja de las relaciones
de protolina:inmunógeno de la proteína G que oscilan de 1:2 a 1:200
es que la cantidad de adyuvante basado en proteosoma puede
reducirse espectacularmente sin efecto significativo sobre la
capacidad de un inmunógeno de la proteína G para provocar una
respuesta inmunitaria.
Como se usa en este documento, "sal
farmacéuticamente aceptable" se refiere a sales de los compuestos
de la presente invención derivadas de la combinación de tales
compuestos y un ácido orgánico o inorgánico (sales de adición de
ácido) o una base orgánica o inorgánica (sales de adición de base).
Los compuestos de la presente invención pueden usarse tanto en
formas de base libre como de sal, considerándose ambas formas dentro
del alcance de la presente invención.
Además, la composición farmacéutica de la
presente invención puede incluir adicionalmente un diluyente o
excipiente tal como agua o solución salina tamponada con fosfato
(PBS). Preferentemente, un diluyente o excipiente es PBS con un
intervalo de concentración de fosfato final de aproximadamente 0,1
mM a aproximadamente 1 M, más preferentemente de aproximadamente
0,5 mM a aproximadamente 500 mM, incluso más preferentemente de
aproximadamente 1 mM a aproximadamente 50 mM, y lo más
preferentemente de aproximadamente 2,5 mM a aproximadamente 10 mM;
y los intervalos de concentración de sal finales de aproximadamente
100 mM a aproximadamente 200 mM y lo más preferentemente de
aproximadamente 125 mM a aproximadamente 175 mM. Preferentemente, la
concentración de PBS final es aproximadamente fosfato 5 mM y
aproximadamente sal 150 mM (tal como NaCl). En ciertas
realizaciones, las composiciones farmacéuticas de la presente
divulgación que comprenden cualquiera de los inmunógenos del VRS
descritos en este documento o mezclas de inmunógenos del VRS son
estériles.
Las composiciones pueden ser estériles tanto
preparándolas bajo un entorno aséptico como esterilizándolas
terminalmente usando procedimientos disponibles en la técnica.
Muchos productos farmacéuticos se preparan para ser estériles y
este criterio está definido por la USP XXII <1211>. La
esterilización en esta realización puede llevarse a cabo por varios
medios aceptados en la industria y enumerados en la USP XXII
<1211> que incluyen esterilización con gas, radiación
ionizante o filtración. La esterilización puede mantenerse por lo
que se llama el procesamiento aséptico también definido en la USP
XXII <1211>. Los gases aceptables usados para la
esterilización con gases incluyen óxido de etileno. Los tipos de
radiación aceptables usados para procedimientos de radiación
ionizante incluyen gamma, por ejemplo de una fuente de cobalto 60 y
haz de electrones. Una dosis típica de radiación gamma es 2,5 MRad.
Cuando sea apropiado, la filtración puede llevarse a cabo usando un
filtro con un tamaño de poro adecuado, por ejemplo 0,22 \mum, y de
un material adecuado, por ejemplo Teflon®. El término "USP" se
refiere a la Farmacopea de EE.UU. (véase www.usp.org; Rockville,
MD).
La presente descripción también se refiere a
procedimientos para tratar o prevenir infección por VRS que
comprenden administrar a un sujeto en necesidad del mismo una
composición que comprende al menos un inmunógeno de la proteína G
del virus respiratorio sincicial o fragmento del mismo como se
reivindica en este documento y vehículo, diluyente o excipiente
farmacéuticamente aceptable a una dosis suficiente para provocar una
respuesta inmunitaria específica para uno o más inmunógenos de la
proteína G o fragmento de los mismos. En ciertas realizaciones, una
infección es debida a un subgrupo A, subgrupo B, o ambos subgrupos A
y B del VRS. En ciertas realizaciones preferidas, los inmunógenos
de la proteína G usados en cualquiera de las composiciones y
procedimientos descritos en este documento tienen una secuencia de
aminoácidos como se expone en SEQ ID NOS:6.
La presente descripción también se refiere a
procedimientos para reducir el riesgo de una respuesta
inmunopatológica asociada a infección por VRS que comprende
administrar a un sujeto en necesidad del mismo una composición que
comprende al menos un inmunógeno de la proteína G del virus
respiratorio sincicial o fragmento del mismo como se reivindica en
este documento y vehículo, diluyente o excipiente farmacéuticamente
aceptable a una dosis suficiente para provocar una respuesta
inmunitaria específica para uno o más inmunógenos de la proteína G
o fragmento de los mismos. En ciertas realizaciones, una infección
es debida a un subgrupo A, subgrupo B, o ambos subgrupos A y B del
VRS. En ciertas realizaciones preferidas, los inmunógenos de la
proteína G usados en cualquiera de las composiciones y
procedimientos descritos en este documento tienen una secuencia de
aminoácidos como se expone en SEQ ID NOS:6.
Un sujeto adecuado para el tratamiento con una
formulación de inmunógeno del VRS puede identificarse mediante
indicadores de riesgo bien establecidos para el desarrollo de una
enfermedad o distintivos bien establecidos de una enfermedad
existente. Por ejemplo, indicadores de una infección incluyen
fiebre, pus, cultivos positivos para microorganismos, inflamación y
similares. Las infecciones que pueden tratarse o prevenirse con una
vacuna de inmunógeno del VRS de la presente invención incluyen las
producidas por o debidas al VRS, tanto la infección es primaria
como secundaria, oportunista o similares. Ejemplos del VRS incluyen
cualquier subtipo, cepa, variante antigénica y similares de estos
virus. Para fines preventivos, por ejemplo, ciertos factores de
riesgo conocidos para adquirir una infección por VRS incluyen
nacimiento prematuro, niños con enfermedad pulmonar crónica, niños
que van a guarderías infantiles, presencia de hermanos en edad
escolar en el hogar, exposición al humo pasivo en el hogar y
sujetos inmunocompetentes (adulto y niños).
Las composiciones farmacéuticas que contienen
uno o más inmunógenos del VRS de la presente descripción pueden
estar en cualquier forma que permita que la composición se
administre a un sujeto tal como un ser humano o animal. Por
ejemplo, pueden prepararse composiciones de inmunógeno de la
proteína G, de proteína de fusión y multivalentes de la presente
descripción y administrarse como una disolución líquida o prepararse
como una forma sólida (por ejemplo, liofilizada) que puede
administrarse en forma sólida, o resuspenderse en una disolución
conjuntamente con la administración. La composición de polipéptido
híbrido se formula de manera que permita que los principios activos
contenidos en ella estén biodisponibles con la administración de la
composición a un sujeto o paciente o biodisponibles mediante
liberación lenta. Las composiciones que se administrarán a un
sujeto o paciente toman la forma de una o más unidades de
dosificación en las que, por ejemplo, un comprimido puede ser una
unidad de dosificación única, y un recipiente de uno o más
compuestos de la invención en forma de aerosol puede contener una
pluralidad de unidades de dosificación. En ciertas realizaciones
preferidas, cualquiera de las composiciones farmacéuticas descritas
en este documento que comprenden un inmunógeno del VRS o mezcla de
inmunógenos de la invención están en un recipiente, preferentemente
en un recipiente estéril.
En una realización, la composición terapéutica
se administra nasalmente, pudiendo captar las células, tales como
las células localizadas en el tejido linfoide asociado nasal, una
composición de inmunógeno del VRS o de mezcla de esta divulgación.
Otras vías de administración típicas incluyen, sin limitación,
enteral, parenteral, transdérmica/transmucosa, nasal e inhalación.
El término "enteral" como se usa en este documento es una vía
de administración en la que la composición inmunogénica se absorbe
por el tracto gastrointestinal o la mucosa oral que incluye oral,
rectal y sublingual. El término "parenteral" como se usa en
este documento describes vías de administración que evitan el
tracto gastrointestinal que incluyen inyección intraarterial,
intradérmica, intramuscular, intranasal, intraocular,
intraperitoneal, intravenosa, subcutánea, submucosa e intravaginal
o técnicas de infusión. El término "transdérmica/transmucosa"
como se usa en este documento es una vía de administración en la
que la composición inmunogénica se administra por o mediante la
piel, que incluye tópica. Los términos "nasal" e
"inhalación" engloban técnicas de administración en las que una
composición inmunogénica se introduce en el árbol pulmonar que
incluye intrapulmonar o transpulmonar. Preferentemente, las
composiciones de la presente invención se administran
nasalmente.
En otra realización, las presentes composiciones
que comprenden al menos un inmunógeno de la proteína G del virus
respiratorio sincicial o fragmento del mismo como se define en este
documento pueden usarse en procedimientos profilácticos. Por
ejemplo, una composición de inmunógeno del VRS o de mezcla de la
invención puede administrarse a una madre durante la gestación para
prevenir una infección por VRS en la madre y para proporcionar
inmunidad pasiva al feto o recién nacido. Un procedimiento
profiláctico puede comprender administrar a un primer sujeto una
composición que comprende un inmunógeno del VRS y vehículo,
diluyente o excipiente farmacéuticamente aceptable, seguido por
administración a un segundo sujeto de una segunda composición que
comprende al menos un inmunógeno del virus respiratorio sincicial
en el que dicha primera composición comprende un inmunógeno del VRS
diferente al que se administra al segundo sujeto y la segunda
composición comprende al menos un inmunógeno de la proteína G del
virus respiratorio sincicial o fragmento del mismo como se define en
este documento y un vehículo, diluyente o excipiente
farmacéuticamente aceptable, en el que el inmunógeno de la proteína
G tiene un epítope que provoca una respuesta inmunitaria protectora
sin provocar una respuesta inmunopatológica, o provocando una
reducida. En ciertas realizaciones, los inmunógenos de la proteína
G para uso profiláctico pueden tener una secuencia de aminoácidos
como se expone en SEQ ID NOS:6.
Un primer sujeto representativo puede ser una
madre durante la gestación y un segundo sujeto representativo puede
ser el niño recién nacido de la madre. Cada composición se
proporciona a una dosis suficiente para provocar una respuesta
inmunitaria específica para uno o más inmunógenos del VRS (tales
como inmunógenos de la proteína G descritos en este documento). Por
ejemplo, sin desear ceñirse a la teoría, los inmunógenos de la
proteína G y las composiciones de los mismos pueden administrarse
sistémicamente (por ejemplo, intravenosamente) a la madre, lo que
produciría anticuerpos IgG similares a los anticuerpos que ya tiene
la madre debido a la exposición al VRS. Entonces, el niño recién
nacido puede inmunizarse por la mucosa (por ejemplo,
intranasalmente), lo que produciría anticuerpos IgA secretores - de
ahí que los inmunógenos de la proteína G administrados por la
mucosa no fueran detectados por los anticuerpos maternos sistémicos
(IgG) que heredó el niño debido a que los anticuerpos IgG no
estaban en la interfase mucosa. Es decir, los anticuerpos
maternamente heredados no afectarán adversamente la respuesta de
IgA provocada por la inmunización intranasal del niño. En ciertas
realizaciones, las composiciones administradas pueden prevenir una
infección debida a un subgrupo A, subgrupo B, o ambos subgrupos A y
B del VRS. Un sujeto adecuado para el tratamiento con una
formulación de inmunógeno del VRS puede identificarse por
indicadores de riesgo bien establecidos para el desarrollo de una
enfermedad o distintivos bien establecidos de una enfermedad
existente como se describe en este documento y se conoce en la
técnica. Las infecciones que pueden tratarse con un inmunógeno del
VRS de la presente invención incluyen las producidas por o debidas
al VRS, tanto si la infección es primaria como secundaria,
oportunista o similares. Ejemplos del VRS incluyen cualquier cepa,
subtipo, variante antigénica y similares de estos virus.
La divulgación proporciona una pluralidad de
anticuerpos producidos mediante el procedimiento para prevenir una
infección por VRS que comprende administrar a un sujeto una
composición de la presente invención a una dosis suficiente para
producir anticuerpos específicos para uno o más inmunógenos del VRS
en el que dicho inmunógeno de la proteína G tiene un epítope que
provoca una respuesta inmunitaria protectora sin provocar una
respuesta inmunopatológica, o provocando una reducida. En una
realización, los anticuerpos comprenden al menos una especie de
anticuerpos de un subgrupo A del VRS, o un subgrupo B del VRS, o de
ambos subgrupos A y B del VRS. En otra realización, un
procedimiento para tratar o prevenir una infección por VRS comprende
administrar a un sujeto una composición que comprende un vehículo
farmacéuticamente aceptable, con o sin un adyuvante, y una
pluralidad de anticuerpos de la presente invención.
En otro aspecto, los inmunógenos de la proteína
G del VRS y fragmentos, variantes de los mismos de la presente
invención se utilizan para producir anticuerpos específicos para al
menos un epítope presente en los inmunógenos de la proteína G y
fragmentos o variantes de los mismos proporcionados en este
documento. Por consiguiente, la presente invención también
proporciona tales anticuerpos. En realizaciones preferidas, los
anticuerpos se unen a epítopes protectores específicos presentes en
una proteína G del VRS. Dentro del contexto de la presente
invención, el término "anticuerpos" incluye anticuerpos
policlonales, anticuerpos monoespecíficos, anticuerpos
monoclonales, anticuerpos anti-idiotípicos,
fragmentos de los mismos tales como fragmentos F(ab')_{2}
y Fab, y anticuerpos recombinantemente o sintéticamente producidos.
Tales anticuerpos incorporan las regiones variables que permiten
que un anticuerpo monoclonal se una específicamente, que significa
que un anticuerpo puede unirse selectivamente a un péptido o
polipéptido de una proteína G del VRS del subtipo A o B.
"Específica para" se refiere a la capacidad de una proteína
(por ejemplo, un anticuerpo) para unirse selectivamente a un
polipéptido o péptido codificado por una molécula de ácido nucleico
que codifica una proteína G del VRS del subtipo A o B, o una
proteína G del VRS sintetizada del subtipo A o B, de esta invención.
Asociación o "unión" de un anticuerpo a un antígeno específico
implica generalmente interacciones electrostáticas, enlace de
hidrógeno, interacciones de Van der Waals e interacciones
hidrófobas. Uno cualquier de estos o cualquier combinación de los
mismos puede desempeñar una función en la unión entre un anticuerpo
y su antígeno. Un anticuerpo tal se asocia generalmente a un
antígeno, tal como un inmunógeno de la proteína G, con una constante
de afinidad (K_{a}) de al menos 10^{4}, preferentemente al
menos 10^{5}, más preferentemente al menos 10^{6}, todavía más
preferentemente al menos 10^{7} y lo más preferentemente al menos
10^{8}. Un experto en la materia puede determinar las constantes
de afinidad usando técnicas muy conocidas (véase Scatchard, Ann.
N.Y. Acad Sci. 51:660-672, 1949). Un experto en la
materia puede determinar fácilmente la afinidad de un anticuerpo
monoclonal o anticuerpo (véase Scatchard, Ann. N. Y. Acad. Sci.
51:660-672, 1949).
Además, el término "anticuerpo" como se usa
en este documento incluye anticuerpos que se producen naturalmente,
además de anticuerpos que no se producen naturalmente que incluyen,
por ejemplo, anticuerpos de cadena sencilla, anticuerpos
quiméricos, bifuncionales y humanizados, anticuerpos completamente
humanos, además de fragmentos de unión a antígeno de los mismos.
Tales anticuerpos que no se producen naturalmente pueden construirse
usando síntesis de péptidos en fase sólida, pueden producirse
recombinantemente o pueden obtenerse, por ejemplo, cribando
bibliotecas combinatorias constituidas por cadenas pesadas variables
y cadenas ligeras variables (Huse y col., Science
246:1275-1281 (1989)). Estos y otros procedimientos
de preparación de, por ejemplo, anticuerpos quiméricos,
humanizados, injertados en CDR, de cadena sencilla y bifuncionales
son muy conocidos en la técnica (Winter y Harris, Immunol. Today
14:243, 1993; Ward y col., Mature 341:544, 1989; Harlow y Lane,
Antibodies: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, New
York, 1992; Borrabeck, Antibody Engineering, 2ª ed., Oxford Univ.
Press, 1995; Hilyard y col., Protein Engineering: A practical
approach, IRL Press, 1992).
Los anticuerpos policlonales pueden ser
fácilmente generados por un experto en la materia a partir de una
variedad de animales de sangre caliente que incluyen caballos,
vacas, cabras, ovejas, perros, pollos, pavos, conejos, ratones o
ratas. Brevemente, el inmunógeno de la proteína G o fragmento del
mismo deseado, o mezclas de inmunógenos del VRS, o variantes de los
mismos, se administran para inmunizar un animal mediante inyecciones
parenterales, intraperitoneales, intramusculares, intraoculares o
subcutáneas. La inmunogenicidad del polipéptido híbrido de interés
puede aumentar mediante el uso de un adyuvante tal como alumbre y
adyuvante de Freund completo o incompleto. Tras varias
inmunizaciones de refuerzo durante un periodo de semanas se recogen
pequeñas muestras de suero y se prueban para la reactividad con el
inmunógeno deseado. Una vez el título del animal ha alcanzado una
meseta en términos de su reactividad respecto a un inmunógeno de la
proteína G de la invención, fácilmente podrán obtenerse mayores
cantidades de suero inmunológico policlonal bien mediante sangrados
semanales o mediante exangüe del animal.
Los inmunógenos del VRS de la presente invención
pueden identificarse fácilmente usando ensayos in vitro e
in vivo conocidos en la técnica y como se describen en este
documento. Los ensayos representativos se describen en los
ejemplos. Similarmente, están disponibles varios ensayos como se
describe en este documento para examinar la actividad de los
anticuerpos producidos por los inmunógenos del VRS de la presente
invención.
Los inmunógenos de la presente invención pueden
formularse con proteosomas a modo de interacciones no covalentes
para formar una composición de vacuna que pueda provocar una
respuesta inmunitaria protectora en un sujeto humano o animal
inmunizado. Los proteosomas de la presente solicitud son vehículos
de administración de adyuvante mucoso que comprenden proteínas de
membrana externa purificadas de, por ejemplo, Neisseria
meningitides de tipo 2 del grupo B. El uso de proteosomas para
la formulación de vacunas se ha revisado por Lowell, G. H., en
"New Generation Vaccines" 2ª ed., Marcel Dekker, Inc., New
York, Basil, Hong Kong (1997) páginas 193-206. Los
proteosomas de la presente invención pueden prepararse mediante
extracción de pasta bacteriana destruida en fenol con una
disolución de Empigen BB al 6% (EBB) (Albright and Wilson,
Whithaven, RU) en cloruro de calcio 1 M seguido por precipitación
con etanol, solubilización en EBB-Tris al
1%/solución salina de EDTA y luego precipitación con sulfato de
amonio. Los precipitados se resolubilizan en tampón de EBB al 1%, se
dializan y se guardan en EBB al 0,1% a -70ºC. Pueden usarse
procedimientos alternativos en la preparación de proteosomas, por
ejemplo, los proteosomas pueden prepararse omitiendo la etapa de
precipitación de sulfato de amonio para acortar el procedimiento.
La preparación de proteosomas se desvela en la publicación de
solicitud de patente de EE.UU. nº 2001/0053368 y en la patente de
EE.UU. nº 6.476.201 B1.
\vskip1.000000\baselineskip
Los inmunógenos de la presente invención pueden
combinarse no covalentemente con liposomas como una composición de
vacuna que puede provocar una respuesta inmunitaria protectora en un
sujeto humano o animal inmunizado. Los inmunógenos pueden
encapsularse con liposomas multilaminares según procedimientos
conocidos para aquellos expertos en la materia usando, por ejemplo,
un procedimiento de reconstitución acoplado a deshidratación (Kirby
y Gregoriadis, Biotechnology 2:979, 1984). Brevemente, los liposomas
se preparan mediante sonicación de dioleoilfosfatidilcolina
(DOPC/colesterol, Sigma Chemical Co., St. Louis, MO; 5:1, peso/peso)
a un concentración final de lípidos de 30 mg/ml en PBS o generando
liposomas usando lípidos de Deinococcus radiodurans o
(\alpha-galactosilfosfotidilglicerolalquilamina
como se describe en Huang y Anderson, Vaccine 20:1586, 2002, en
presencia o ausencia de antígeno. El liposoma, con o sin uno o más
inmunógenos, se liofiliza y se resuspende en agua estéril. El
inmunógeno que no se ha incorporado en liposomas puede eliminarse
mediante lavado repetido y centrifugación (por ejemplo,
microcentrifugación durante 1 min a 13.200 rpm) de los liposomas en
solución salina tamponada con fosfato (PBS). El contenido de
proteínas de liposomas lavados, con y sin inmunógeno, se determina,
por ejemplo, mediante SDS-PAGE cuantitativa teñida
con plata usando cantidades calibradas de patrones de proteínas
conocidos tales como albúmina de suero. El contenido de proteínas
de los liposomas se determina y se ajusta según se desee, por
ejemplo, el contenido de proteínas puede ajustarse a 0,3 mg por mg
de lípido (como liposomas) por ml.
En algunos casos, para evaluar el modo en el que
el antígeno de proteína interactúa con un liposoma, los liposomas
que contienen alícuotas de inmunógenos de la proteína G y fragmentos
de los mismos (tipo natural o mutante) pueden incubarse durante 1
hora a 37ºC en PBS con proteinasa K (GibcoBRL) a 1,0, 0,1 y 0,01
\mug/ml. Algunas incubaciones también pueden contener Triton
X-100 al 1% para romper liposomas, permitiéndose así
el acceso completo de la proteinasa K a las proteínas, proteínas de
fusión o fragmentos de polipéptidos de las mismas. Las incubaciones
terminan y las muestras se analizan por SDS-PAGE y
tinción con plata. Tales procedimientos pueden usarse para
determinar el grado de encapsulación de liposomas de la preparación
de inmunógenos (por ejemplo, una o más proteínas virales).
\vskip1.000000\baselineskip
Las secuencias de ácidos nucleicos que codifican
la proteína G del VRS (cepa Long) correspondientes a los
aminoácidos 128-229, además de, por ejemplo, las
secuencias 128-229 mutantes, se amplificaron a
partir de ARN viral mediante RT-PCR, y los
productos de PCR resultantes se clonaron en los sitios EcoRI y XhoI
de un plásmido de expresión bacteriana
pET-32-LIC (Novagen, Madison, WI).
La mutagénesis dirigida al sitio de la secuencia de proteínas
G128-229 del VRS se realizó según el protocolo de
mutagénesis dirigida al sitio de Stratagene QuikChange®.
Brevemente, la PCR se realizó en el ADN
pET-32-LIC-G
128-229 de molde (la secuencia
G128-229 se clonó en los sitios EcoRI y XhoI).
En estos experimentos, los pares de cebadores
diseñados para la mutagénesis fueron del siguiente modo:
CCTGCTGGGCTGCCTGCAAAAGAATACCAAACAAAAAACCAGG (SEQ
ID NO:37) y CCTGGTTTTTTG
TTTGGTATTCTTTTGCAGGCAGCCCAGC AGG (SEQ ID NO:38) (para la G128-229, I185A mutante);
TTTGGTATTCTTTTGCAGGCAGCCCAGC AGG (SEQ ID NO:38) (para la G128-229, I185A mutante);
CTGCTGGGCTATCGCCAAAAGAATACCAAACAAAAAACCAGG (SEQ
ID NO:39) y CCTGGTTTTTTG
TTTGGTATTCTTTTGGCGATAGCCCAGCAG (SEQ ID NO:40) (para la G128-229, C186A mutante);
TTTGGTATTCTTTTGGCGATAGCCCAGCAG (SEQ ID NO:40) (para la G128-229, C186A mutante);
CTGCTGGGCTATCTGCGCAAGAATACCAAACAAAAAACCAGG (SEQ
ID NO:41) y CCTGGTTTTTTG
TTTGGTATTCTTGCGCAGATAGCCCAGCAG (SEQ ID NO:42) (para la G128-229, K187A mutante);
TTTGGTATTCTTGCGCAGATAGCCCAGCAG (SEQ ID NO:42) (para la G128-229, K187A mutante);
CTGCTGGGCTATCTGCAAAGCAATACCAAACAAAAAACCAGG (SEQ
ID NO:43) y CCTGGTTTTTTG
TTTGGTATTGCTTTGCAGATAGCCCAGCAG (SEQ ID NO:44) (para la G128-229, R188A mutante);
TTTGGTATTGCTTTGCAGATAGCCCAGCAG (SEQ ID NO:44) (para la G128-229, R188A mutante);
CTGCTGGGCTATCTGCAAAAGAGCACCAAACAAAAAACCAGG (SEQ
ID NO:45) y CCTGGTTTTTT
GTTTGGTGCTCTTTTGCAGATAGCCCAGCAG (SEQ ID NO:46) (para la G128-229, I189A mutante);
GTTTGGTGCTCTTTTGCAGATAGCCCAGCAG (SEQ ID NO:46) (para la G128-229, I189A mutante);
CTGCTGGGCTATCTGCAAAAGAATAGCAAACAAAAAACCAGG (SEQ
ID NO:47) y CCTGGTTTTTTG
TTTGCTATTCTTTTGCAGATAGCCCAGCAG (SEQ ID NO:48) (para la G128-229, P190A mutante);
TTTGCTATTCTTTTGCAGATAGCCCAGCAG (SEQ ID NO:48) (para la G128-229, P190A mutante);
CTGCAAAAGAATACCAGCCAAAAAACCAGGAAAGAAAACCACC (SEQ
ID NO:49) y GGTGGTTTTCT
TTCCTGGTTTTTTGGCTGGTATTCTTTTGCAG (SEQ ID NO:50) (para la G128-229, N191A mutante);
TTCCTGGTTTTTTGGCTGGTATTCTTTTGCAG (SEQ ID NO:50) (para la G128-229, N191A mutante);
CTGGGCTATCTGCAAAAGAATACCAAACGCAAAACCAGGAAAG (SEQ
ID NO:51) y CTTTCCTGGTT
TTGCGTTTGGTATTCTTTTGCAGATAGCCCAG (SEQ ID NO:52) (para la G128-229, K 192A mutante);
TTGCGTTTGGTATTCTTTTGCAGATAGCCCAG (SEQ ID NO:52) (para la G128-229, K 192A mutante);
GCAAAAGAATACCAAACAAAGCACCAGGAAAGAAAACCACCAC (SEQ
ID NO:53) y GTGGTGGTTT
TCTTTCCTGGTGCTTTGTTTGGTATTCTTTTGC (SEQ ID NO:54) (para la G128-229, K193A mutante).
TCTTTCCTGGTGCTTTGTTTGGTATTCTTTTGC (SEQ ID NO:54) (para la G128-229, K193A mutante).
Las proteínas de fusión de tiorredoxina (Trx)
que contenían fragmentos de la proteína G del VRS de tipo natural,
y los mutantes anteriores, se prepararon como se describe en el
Ejemplo 4.
\vskip1.000000\baselineskip
Los inmunógenos de la proteína G del VRS pueden
prepararse como composiciones farmacéuticas mediante mezcla con un
vehículo, excipiente o diluyente farmacéuticamente aceptable. Por
ejemplo, las secuencias de la proteína G del VRS descritas en este
documento y codificadas por el ácido nucleico contenido en los
plásmidos pET-32-LIC modificados se
expresaron como proteínas de fusión de tiorredoxina (Trx) en células
BL21/DE3 de E. coli transformadas tras la inducción con
IPTG. Todas las proteínas de fusión de Trx se recuperaron de
sedimentos transformados de células mediante extracción con urea 8
M, seguido por purificación de afinidad usando TALON® (Clontech,
Palo Alto, CA) y diálisis contra PBS. Los polipéptidos
Trx-G128-229 purificados se
liberaron de la endotoxina contaminante mediante tratamiento con
perlas de polimixina B (BioRad, Mississauga, ON, Canadá). Los
detalles y las modificaciones de este procedimiento son muy
conocidos para aquellos expertos en la materia. Con el uso para
inmunización, los inmunógenos pueden combinarse adicionalmente o
mezclarse con un adyuvante, tal como alumbre o un adyuvante basado
en proteosoma.
\vskip1.000000\baselineskip
El VRS (cepa Long) se obtuvo de la Colección
americana de cultivos tipo y se propagó en células
HEp-2 cultivadas en medio esencial mínimo de Eagle
(MEM) que contenía penicilina G (100 U/ml) y sulfato de
estreptomicina (100 ug/ml) y complementado con 1% de suero (suero
bovino fetal/suero bovino, 1:3). Las células y los virus se
verificaron negativos para la contaminación por micoplasma mediante
el ensayo de PCR (Colección americana de cultivos tipo). Como se
describe en este ejemplo, los cultivos de monocapa confluentes de
células HEp-2 se inocularon con VRS (cepa Long) a
una multiplicidad de infección (MOI) de 1, se adsorbieron 90 min a
4ºC, se lavaron y se incubaron a 37ºC en medio
RPMI-1640 (Sigma, St. Louis, MO) complementado con
1% de suero bovino fetal (Sigma, St. Louis, MO). Los cultivos se
recogieron después de 24-30 h, momento en el que las
monocapas de células estaban casi completamente fusionadas; los
virus se desprendieron de las células mediante ruptura con una
espátula de teflón de mano (Gibco-BRL) y el residuo
celular se eliminó por microcentrifugación durante 5 min a 13.000 x
g. El sobrenadante se usó como fuente de virus para los estudios de
exposición de ratón (véase el Ejemplo 6).
\vskip1.000000\baselineskip
Todas las inmunizaciones se realizaron usando
ratones BALB/c (Charles River, Ste. Constance, QC, Canadá), que se
anestesiaron con ketamina (2,3 mg/ratón; Bimeda-MTC
Pharmaceuticals, Cambridge, ON, Canadá) y xilazina (0,5 mg/ratón;
Bayer, Toronto, ON, Canadá). Para los experimentos de
vacuna/exposición, grupos de siete a nueve ratones BALB/c
(6-8 semanas de edad) se inmunizaron dos veces
subcutáneamente, a intervalos de 14 días, con PBS/alumbre,
proteínas Trx-G 128-229 o
Trx-G 128-229 mutantes, en
PBS/alumbre (10 \mu de proteína en un volumen de 50 \mul).
Catorce días después de la segunda dosis, los ratones se expusieron
intranasalmente al VRS (2 x 10^{6} pfu en 50 \mul). Los ratones
se sacrificaron cuatro días después usando pentobarbital de sodio y
se ensayaron para los títulos virales pulmonares y la infiltración
de leucocitos en fluidos broncoalveolares según procedimientos muy
conocidos para una persona experta en la materia.
\newpage
Los análisis de inmunotransferencia demostraron
que los anticuerpos de suero fomentados frente a los aminoácidos
128-229 de la proteína G del VRS pudieron reconocer
específicamente la proteína G del VRS en ratones inmunizados con
proteínas Trx-G 128-229 de tipo
natural o mutante (Fig. 1). Los extractos de células
HEp-2 infectadas por el VRS se resolvieron por
SDS-PAGE y se transfirieron a membranas (por
ejemplo, membranas de difluoruro de polivinilideno (PVDF)). Las
membranas que contenían proteína transferida se bloquearon (para
prevenir interacciones no específicas) con 4% de leche desnatada y
0,5% de caseína (calidad Hammerstein) en TBST (NaCl al 0,8%,
Tween-20 al 0,1%, Tris 20 mM, pH 7,6) mediante
incubación durante la noche a temperatura ambiente. Entonces, las
membranas bloqueadas se incubaron con muestras de suero, se lavaron
con TBST, seguido por incubación de 1 hora con anticuerpo
anti-ratón de cabra conjugado a peroxidasa de rábano
picante (HRP) y entonces la señal se detectó usando diaminobencidina
(DAB; 1 mg/ml, NiCl2 al 0,03% y H2O2 al 0,1%, según procedimientos
conocidos en la técnica. Se observó una fuerte respuesta del
anticuerpo (IgG) específico de la proteína G con proteínas de tipo
natural y mutantes N191A. Se observó muy poca señal específica de
anticuerpos de la proteína G del VRS en sueros obtenidos a partir
de ratones inmunizados con proteínas de fusión de polipéptidos de G
del VRS mutantes I185A o K187A. El resto de las proteínas mutantes
Trx-G 128-229 indujeron niveles
intermedios de anticuerpos específicos de G del VRS (Fig. 1).
\vskip1.000000\baselineskip
En estos experimentos, los ratones se
inmunizaron (como se describe en el ejemplo 6) tanto con
Trx-G 128-229 de tipo natural como
con uno de cada uno de los 9 mutantes y luego se expusieron al VRS.
La inducción de eosinofilia se determinó según procedimientos
descritos en Mader y col. Vaccine 18:1110, 2000. Como se muestra en
la figura 2A, la Trx-G128-229 de
tipo natural y diversos mutantes individuales protegieron a los
ratones de la exposición al VRS a grados variables.
Comparativamente, la Trx-G128-229
mutada en N191A proporcionó mejor protección que los mutantes
P190A, R188A y I189A. Las proteínas mutantes
Trx-G128-229 restantes confirieron
niveles intermedios de protección. Además, comparativamente, los
mutantes R188A y N191A demostraron el mayor nivel de protección.
Este sorprendente resultado indica que una única mutación puntual en
una proteína G puede dar como resultado un polipéptido que puede
provocar una respuesta inmunitaria protectora concomitantemente a
una respuesta inmunopatológica más reducida (por ejemplo,
eosinofilia pulmonar).
\vskip1.000000\baselineskip
En estos experimentos se mezclaron alícuotas del
VRS pretitulado con muestras seriadamente diluidas de sueros de
ratones individuales y se incubaron durante 1 h a temperatura
ambiente. El suero de los ratones individuales se recogió 14 días
después de la segunda de las dos administraciones subcutáneas de un
inmunógeno en alumbre, como se describe en el Ejemplo 6. Los sueros
se ensayaron para anticuerpos neutralizantes del VRS mediante
ensayo de reducción en placas. Las mezclas se aplicaron por
duplicado a placas de 24 pocillos que contenían el
60-80% de monocapas confluentes de células
HEp-2, se adsorbieron durante 90 minutos a 4ºC,
seguido por el lavado y la incubación de las placas durante 40 h a
37ºC en 1 ml de medio RPMI complementado con 1% de suero bovino
fetal. Después de la incubación, las monocapas se fijaron con
formaldehído al 15% y se tiñeron con cristal violeta al 0,01% para
la visualización de placas virales. La reducción en placas se
calcula como el título de neutralización por reducción en
placas_{50} (PRNT_{50}), que es la dilución recíproca de sueros
requeridos para neutralizar el 50% de las placas del VRS sobre una
monocapa subconfluente de células HEp-2.
Los resultados de un ensayo de reducción en
placas del VRS se muestran en tabla 1. Los títulos de neutralización
del VRS en sueros de ratones inmunizados mostraron una fuerte
dependencia de las respuestas de anticuerpos neutralizadores con la
secuencia de aminoácidos dentro de la región 185-193
de la proteína Trx-G128-229 usada
para la inmunización (similares a los resultados de inmunización del
ejemplo 6).
Los niveles ARNm de citocinas en pulmones de
ratones inmunizados con diversas variantes de proteína G del VRS se
midieron usando un ensayo de protección de ribonucleasas que puede
ser un indicador de si resultará una respuesta eosinófila
perjudicial. Un lóbulo de cada pulmón de ratón se almacenó a -20ºC
en disolución RNAlater^{TM} (Qiagen, Mississauga, ON, Canadá) y
posteriormente se procesó para una extracción de ARN usando el
minikit RNeasy® (Qiagen, Mississauga, ON, Canadá). El ARN se
cuantificó y se sometió a ensayo de protección de ribonucleasas
(RPA) usando un kit de transcripción (BD-Pharmingen,
Mississauga, ON, Canadá) para sintetizar la sonda a partir de un
molde de citocina (MCK-1)
(BD-Pharmingen, Mississauga, ON, Canadá), se
radiomarcó usando \alpha-^{32}P [UTP] y se
siguió por hibridación y digestión con RNasa usando un kit RPAIII
kit (Ambion, Austin, TX). Las mezclas de reacción se resolvieron en
un gel de poliacrilamida al 5%-urea 8 M según las instrucciones del
fabricante seguido por secado y autorradiografía a -70ºC usando una
pantalla intensificadora.
Los resultados del RPA ilustraron diferencias
sorprendentes entre los ratones inmunizados con proteínas
Trx-G de tipo natural o mutantes y posteriormente
se expusieron al VRS (Figura 4). Como se muestra en la figura 4,
las citocinas de tipo Th2 más propensas a la regulación por
incremento fueron IL-4, IL-10,
IL-13 y, en un menor grado, IL-5.
Se encontró que las variantes de la proteína G K193A, P190A y I189A
provocaron respuestas espectaculares de IL-4,
IL-10 y IL-13. Las débiles
respuestas de IL-4, IL-10 y
IL-13 se observaron con otras variantes de la
proteína G tales como N192A, N191A, R188A, K187A y C186A. Los
resultados del presente estudio destacan la aparente importancia de
IL-13, que recientemente ha participado en el asma
(Grunig y col., Science 282: 2261, 1998), además de en la vacuna
contra la enfermedad inducida por el VRS (Johnson y Graham, J.
Virol. 73:8485, 1999). Altos niveles de IL-13 y
IL-10 guardan una buena correlación con altos
niveles de eosinofilia observada en ratones expuestos al VRS que
habían sido inmunizados con tipo natural o mutantes I189A, P190A,
K192A y K193A. A diferencia, los mutantes tales como N191A, K187A y
R188A eran pobres inductores de IL-13,
IL-10 y eosinofilia, a pesar de ser inductores
aceptables de IL-4.
En comparación, el prototipo de citocina Th1,
IFN-\gamma, fue elevado en todos los grupos de
ratones experimentales. A modo de ejemplo y sin desear ceñirse a la
teoría, esto puede reflejar la expresión de
IFN-\gamma de células NK, además de células Th1
(Trinchieri, Adv. Immunol. 47:187, 1989), la rápida inducción de
IFN-\gamma con la infección por VRS (Hussell y
Openshaw, J. Gen. Virol. 79: 2593, 1998) y/o la naturaleza
prevalente de la expresión de IFN-\gamma incluso
en procesos inmunitarios en los que parece que predomina una
respuesta de Th2 (Waris y col., J. Virol. 70:2852, 1996; Spender y
col., J. Gen. Virol. 79: 1751, 1998; Srikiatkhachorn y Braciale, J.
Virol. 71: 678, 1997).
\vskip1.000000\baselineskip
Pueden formularse partes de inmunógenos de
productos de la proteína G del VRS de reserva (por ejemplo, péptidos
de tipo natural o mutantes) con proteosomas usando, a modo de
ejemplo, procedimientos de diafiltración/ultrafiltración o usando
diálisis. Para cualquier procedimiento, el producto de la proteína G
del VRS se disuelve, por ejemplo, en una solución salina tamponada
que contiene el detergente deseado (por ejemplo, Empigen BB (EBB) al
1% o al 0,1%-2% de EBB u otro detergente adecuado dependiendo del
tipo de detergente usado) y luego se mezcla con proteosomas en
disolución de Empigen al 1% tamponada con solución salina (u otro
detergente apropiado a concentraciones apropiadas) a diversas
relaciones de proteosoma:G del VRS (peso/peso) que oscilan de 1:4 a
8:1, incluyendo 1:4, 1:1, 2:1, 4:1 y 8:1. Para eliminar Empigen, la
mezcla puede entonces someterse a la tecnología de
ultrafiltración/diafiltración o se dializa exhaustivamente a través
de una membrana de diálisis con, por ejemplo, un corte de peso
molecular de 10.000 (MWCO) o membranas funcionalmente similares con
intervalos de MWCO de 1.000-30.000 contra solución
salina tamponada durante 1-2 semanas a 4ºC
intercambiando al menos 500 partes de tampón cada día. En diversas
etapas pueden usarse ensayos inmunológicos tales como ELISA e
inmunodifusión radial simple (SRID) para medir la potencia. La
técnica de haloinmunodifusión se usa para determinar el contenido de
antígeno de G del VRS formulado con proteosomas a diversas
relaciones (para detalles sobre la preparación de proteosomas,
véase, por ejemplo, la publicación de solicitud de patente de
EE.UU. nº 2001/0053368).
Las vacunas multivalentes también pueden
prepararse haciendo vacunas de proteosomas monovalentes individuales
y luego combinándolas a las proporciones requeridas antes de la
formulación final y envasándolas. Las preparaciones multivalentes
también pueden formularse reuniendo antígenos de G del VRS
individuales en las proporciones deseadas y formulando la mezcla
con proteosomas. Las preparaciones de vacunas multivalentes pueden
contener uno o más inmunógenos de la proteína F del VRS y/o uno o
más inmunógenos de la proteína M en combinación con uno o más
inmunógenos de la proteína G del VRS. La composición de vacuna se
pasa entonces por filtros de membrana de 0,8 \mum de tamaño de
poro y se guarda a 4ºC antes de y durante las inmunizaciones.
Los inmunógenos de la proteína G del VRS (por
ejemplo, péptidos de tipo natural o mutantes en cualquiera de las
formas previas) también pueden formularse con diversas cantidades de
proteosoma-adyuvante de LPS como se desvela en, por
ejemplo, la patente de EE.UU. nº 6.476.201 B1, y se describe en este
documento.
\vskip1.000000\baselineskip
Los ratones se inmunizaron intranasalmente con
proteínas G del VRS de tipo natural (aminoácidos
128-229) o mutantes (N191A) formuladas con
protolina para determinar si se provocaron títulos sistémicos y
mucosos específicos del VRS. Los ratones BALB/c se inmunizaron tres
veces con una dosis de 6 \mug o 2 \mug de cualquiera de las
proteínas de fusión
Trx-(poliHis)-G(128-229)
solas, o con adyuvante con protolina o alumbre. La protolina sola o
las proteínas de fusión formuladas con protolina se administraron
intranasalmente, y el alumbre solo o las proteínas de fusión
formuladas con alumbre se administraron subcutáneamente. Se extrajo
sangre de la vena safena después de la segunda dosis (día 35) y el
suero se obtuvo mediante exangüe dos semanas después de la tercera
dosis (día 62). También se recogieron muestras de lavado
broncoalveolar (BAL) en el día 62.
Los títulos de IgG de suero específico de G del
VRS e IgA de BAL se determinaron por ELISA. El aumento de 10 en los
títulos de IgG de suero se observó en ratones inmunizados
intranasalmente con
Trx-(poliHis)-G(128-229)
formulada con protolina en comparación con ratones inmunizados con
Trx-(poliHis)-G(128-229)
sola, a las dosis de 6 y 2 \mug (Figura 5). No hubo diferencia
significativa en los títulos de IgG de suero entre los grupos
inmunizados intranasalmente con formulaciones de protolina o
subcutáneamente con formulaciones de alumbre. Se obtuvieron títulos
comparables tanto para G(128-229) de tipo
natural como la N191A de G(128-229) mutante
cuando se administraron con cualquier adyuvante. Los títulos de IgA
de BAL específico de G(128-229) del VRS
títulos fueron significativamente superiores en los grupos que
habían recibido los inmunógenos de G(128-229)
(tipo natural o mutante) formulados con protolina en comparación
con los grupos inmunizados con los inmunógenos solos (Figura 6). De
nuevo se obtuvieron títulos comparables para ambos inmunógenos de
G(128-229) de tipo natural y mutante. Como
era de esperar, no se detectó IgA en los grupos inmunizados
subcutáneamente con los inmunógenos de
G(128-229) formulados con alumbre. Estos
resultados indican que las vacunas de inmunógenos de
G(128-229) formulados con protolina (tipo
natural o mutante) son muy toleradas y son inmunogénicas cuando se
administran intranasalmente.
<110> Anderson, Robert
\hskip1cmHuang, Yan
\hskip1cmBurt, David
\vskip0.400000\baselineskip
<120> VACUNA DE SUBUNIDAD CONTRA INFECCIÓN
POR EL VIRUS RESPIRATORIO SINCICIAL
\vskip0.400000\baselineskip
<130> 484112.401
\vskip0.400000\baselineskip
<140> US
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
07-09-2004
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 72
\vskip0.400000\baselineskip
<170> FastSEQ para Windows versión 4.0
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 917
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Secuencia mutante del VRS
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<221> misc_feature
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<222> 9
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<223> n = A, T, C o G
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<400> 1
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<210> 2
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<211> 298
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Secuencia mutante del VRS
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<400> 2
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<212> ADN
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<213> Virus respiratorio sincicial
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<220>
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<221> misc_feature
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<222> 9
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<223> n = A, T, C o G
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<400> 3
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<211> 298
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<212> PRT
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<213> respiratorio sincicial
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<211> 306
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<213> Secuencia artificial
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<210> 13
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<213> Secuencia artificial
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<213> Secuencia artificial
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip0.400000\baselineskip
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
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<212> ADN
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<220>
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
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\vskip0.400000\baselineskip
<211> 306
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
\vskip1.000000\baselineskip
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<211> 102
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<212> PRT
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
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<212> ADN
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<220>
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\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<220>
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip0.400000\baselineskip
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<212> PRT
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<220>
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<211> 283
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<211> 852
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)...(852)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 33
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 283
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 34
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\vskip1.000000\baselineskip
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Anclaje hidrófobo
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 35
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
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<211> 9
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Anclaje hidrófobo
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\hskip1cm
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Cebador para la
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<211> 43
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
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<223> Cebador para la
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<212> ADN
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<220>
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<220>
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<212> ADN
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<211> 42
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para la
G128G128-229, K187A mutante
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<211> 42
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para la
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<211> 42
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para la
G128G128-229, R188A mutante
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<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para la
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill42
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 46
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para la
G128G128-229, I189A mutante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 46
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 47
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para la
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\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 47
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para la
G128G128-229, P190A mutante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 48
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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<210> 49
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para la
G128G128-229, N191A mutante
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 49
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\hfill43
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 50
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para la
G128G128-229, N191A mutante
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 50
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipggtggttttc tttcctggtt ttttggctgg tattcttttg cag
\hfill43
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 51
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Cebador para la
G128G128-229, K192A mutante
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<400> 51
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\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipctgggctatc tgcaaaagaa taccaaacgc aaaaccagga aag
\hfill43
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 52
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<211> 43
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Cebador para la
G128G128-229, K192A mutante
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<400> 52
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\hfill43
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<210> 53
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<211> 43
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Cebador para la
G128G128-229, K193A mutante
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<400> 53
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\hskip-.1em\dddseqskipgcaaaagaat accaaacaaa gcaccaggaa agaaaaccac cac
\hfill43
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<210> 54
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<211> 43
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Cebador para la
G128G128-229, K193A mutante
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<400> 54
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\hskip-.1em\dddseqskipgtggtggttt tctttcctgg tgctttgttt ggtattcttt tgc
\hfill43
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<210> 55
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<211> 306
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<400> 55
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<210> 56
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<211> 102
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
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<400> 56
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<210> 57
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<211> 306
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<400> 57
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<210> 58
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<211> 102
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<400> 58
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<210> 59
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<211> 306
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<400> 59
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<210> 60
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<211> 102
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<400> 60
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<211> 306
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
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<210> 62
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<211> 102
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<400> 62
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<210> 63
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<211> 306
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<213> Secuencia artificial
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<220>
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<223> Fragmento mutante del VRS
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<210> 67
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<212> ADN
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 67
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<210> 68
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<211> 102
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<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
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<400> 68
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<210> 69
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<211> 306
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 70
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<211> 102
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<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Fragmento mutante del VRS
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 70
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 71
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Marca de epítope
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 71
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 72
\vskip0.400000\baselineskip
<211>8
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Secuencia artificial
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Marca de epítope
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 72
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
Claims (38)
1. Uso de al menos un inmunógeno de la proteína
G del virus respiratorio sincicial (VRS) que comprende la secuencia
de aminoácidos expuesta en SEQ ID NO:2 o fragmento de la misma, en
la preparación de un medicamento para el tratamiento o la
prevención de una infección por VRS, en el que dicho al menos un
inmunógeno de la proteína G tiene un epítope en la región que
abarca desde el aminoácido 165 hasta el aminoácido 195 de SEQ ID
NO:2 que provoca una respuesta inmunitaria protectora sin provocar
una respuesta inmunopatológica o provocando una respuesta
inmunopatológica reducida.
2. El uso según la reivindicación 1, en el que
dicho inmunógeno de la proteína G comprende la secuencia de
aminoácidos de SEQ ID NO:6.
3. El uso según la reivindicación 1 ó 2, en el
que dicho inmunógeno de la proteína G comprende además un resto
hidrófobo.
4. El uso según la reivindicación 3, en el que
dicho resto hidrófobo comprende una secuencia de aminoácidos.
5. El uso según la reivindicación 3, en el que
dicha parte hidrófoba es un lípido.
6. El uso según la reivindicación 3, en el que
dicho resto hidrófobo está en el extremo amino o en el extremo
carboxi del inmunógeno de la proteína G.
7. El uso según la reivindicación 1, en el que
el medicamento comprende un liposoma.
8. El uso según la reivindicación 1, en el que
el medicamento comprende además un adyuvante.
9. El uso según la reivindicación 8, en el que
dicho adyuvante comprende un adyuvante seleccionado de alumbre,
fosfato de aluminio, proteosoma con o sin LPS, liposomas o un
adyuvante de tipo emulsión de aceite y agua.
10. El uso según la reivindicación 1, en el que
dicho medicamento comprende además al menos un inmunógeno de la
proteína F o inmunógeno de la proteína M del virus respiratorio
sincicial, en el que dicho inmunógeno de la proteína F y dicho
inmunógeno de la proteína M tiene cada uno un epítope que provoca
una respuesta inmunitaria protectora sin provocar una respuesta
inmunopatológica o provocando una respuesta inmunopatológica
reducida.
11. El uso según la reivindicación 1, en el que
dicho medicamento tiene al menos dos inmunógenos de la proteína
G.
12. El uso según la reivindicación, 1 ó 2, en el
que dicho inmunógeno de la proteína G o fragmento del mismo
comprende además una segunda secuencia de aminoácidos para formar
una proteína de fusión.
13. El uso según la reivindicación 12, en el que
dicha segunda secuencia de aminoácidos es una marca o una
enzima.
14. El uso según la reivindicación 12, en el que
dicha segunda secuencia de aminoácidos es tiorredoxina,
polihistidina, o una combinación de las mismas.
15. El uso según la reivindicación 12, en el que
dicha proteína de fusión comprende además un resto hidrófobo.
16. El uso según la reivindicación 15, en el que
dicho resto hidrófobo está en el extremo amino o en el extremo
carboxi de la proteína de fusión.
17. El uso según la reivindicación 14, en el que
dicha proteína de fusión comprende además un resto hidrófobo.
18. El uso según la reivindicación 1, en el que
dicha respuesta inmunopatológica es eosinofilia o asma.
19. El uso según la reivindicación 18, en el que
dicha eosinofilia es eosinofilia pulmonar.
20. El uso según la reivindicación 1, en el que
la infección se debe a un virus respiratorio sincicial del subgrupo
A o subgrupo B o es debida a un virus respiratorio sincicial tanto
del subgrupo A como del subgrupo B.
21. El uso según una cualquiera de las
reivindicaciones 1, 2, 8 ó 9, en el que la administración del
medicamento es adecuada para una administración mediante una vía
seleccionada del grupo que está constituido por administración
enteral, parenteral, transdérmica, transmucosa o nasal, o
inhalación.
22. El uso según una cualquiera de las
reivindicaciones 1, 2, 8 ó 9, en el que la administración del
medicamento es adecuada para administración nasal.
23. Una composición que comprende al menos un
inmunógeno de la proteína G del virus respiratorio sincicial (VRS)
que comprende la secuencia de aminoácidos expuesta en SEQ ID NO:2 o
fragmento de la misma para uso en la preparación de un medicamento
para el tratamiento o la prevención de una infección por VRS en la
que dicho al menos un inmunógeno de la proteína G o fragmento del
mismo tiene un epítope en la región que abarca desde el aminoácido
165 hasta el aminoácido 195 de SEQ ID NO:2 que provoca una respuesta
inmunitaria protectora sin provocar una respuesta inmunopatológica
o provocando una respuesta inmunopatológica reducida.
24. La composición según la reivindicación 23,
en la que dicho inmunógeno de la proteína G comprende la secuencia
de aminoácidos de SEQ ID NO:6.
25. La composición según la reivindicación 23,
en la que dicho inmunógeno de la proteína G comprende además un
resto hidrófobo.
26. La composición según la reivindicación 25,
en la que dicho resto hidrófobo comprende una secuencia de
aminoácidos.
27. La composición según la reivindicación 25,
en la que dicho resto hidrófobo es un lípido.
28. La composición según la reivindicación 25,
en la que dicho resto está en el extremo amino o en el extremo
carboxi del inmunógeno de la proteína G.
29. La composición según una cualquiera de la
reivindicación 23 a 25, en la que dicho inmunógeno de la proteína G
o fragmento del mismo comprende además una segunda secuencia de
aminoácidos para formar una proteína de fusión.
30. La composición según la reivindicación 29,
en la que dicha segunda secuencia de aminoácidos es una marca o una
enzima.
31. La composición según la reivindicación 30,
en la que dicha segunda secuencia de aminoácidos es tiorredoxina,
polihistidina, o una combinación de las mismas.
32. La composición según la reivindicación 29,
en la que dicha proteína de fusión comprende además un resto
hidrófobo.
33. La composición según la reivindicación 32,
en la que dicho resto hidrófobo está en el extremo amino o en el
extremo carboxi de la proteína de fusión.
34. Una preparación farmacéutica que comprende
una composición según cualquiera de las reivindicaciones 24 a
33.
35. La composición según una cualquiera de las
reivindicaciones 23-33, que comprende además un
adyuvante.
36. La composición según la reivindicación 35,
en la que el adyuvante comprende un adyuvante seleccionado de
alumbre, fosfato de aluminio, proteosoma con o sin LPS, liposomas o
un adyuvante de tipo emulsión de aceite y agua.
37. El uso según la reivindicación 10, en el que
el adyuvante comprende un liposoma con lípido A.
38. La composición según la reivindicación 37,
en la que el adyuvante comprende un liposoma con lípido A.
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