ES2346043T3 - Identificacion de las regiones rd1 y rd5 asociadas con la virulencia que permite el desarrollo de vacunas mejoradas de m. bovis bcg y m. microti. - Google Patents

Identificacion de las regiones rd1 y rd5 asociadas con la virulencia que permite el desarrollo de vacunas mejoradas de m. bovis bcg y m. microti. Download PDF

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Abstract

Cepa de M. bovis BCG::RD1 que tiene integrado el fragmento RD1-2F9 (∼32 kb) según se clona en el cósmido aquí denominado como RD1-2F9 contenido en la cepa de E. coli depositada en el CNCM con el número de acceso 1-2831.

Description

Identificación de las regiones RD1 y RD5 asociadas con la virulencia que permite el desarrollo de vacunas mejoradas de M. bovis BCG y M. microti.
Desde hace tiempo se buscan las regiones asociadas con la virulencia en Mycobacterium. La presente descripción se refiere a la identificación de dos regiones genómicas que se muestra que están asociadas con un fenotipo virulento en Mycobacteria, y particularmente en M. tuberculosis y en M. leprae.
Las dos regiones son conocidas como RD1 y RD5, como se describe en Molecular Microbiology (1999), vol. 32, páginas 643 a 655 (Gordon S.V. et al.). Estas dos regiones, o al menos una de ellas, están ausentes en las cepas de vacunas de M. bovis BCG y en cepas de M. microti implicadas y usadas como vacunas vivas en los años
1960.
Otras aplicaciones que están relacionadas con la presente descripción se refieren al uso de todas o parte de dichas regiones para detectar cepas virulentas de Mycobacteria y particularmente M. tuberculosis en seres humanos y animales. La RD1 y RD5 son consideradas como marcadores de la virulencia en la presente invención.
Las micobacterias recombinantes, y particularmente M. bovis BGG, después de la modificación de su genoma mediante introducción de toda o parte de la región RD1 y/o de la región RD5 en dicho genoma, se pueden usar para el sistema inmunitario de pacientes afectados con un cáncer, como por ejemplo un cáncer de vejiga.
La presente invención se refiere a una cepa de M. bovis BCG en la que dicha cepa tiene integrado el fragmento RD1-2F9 (\sim32 kb) que cubre la región del genoma AL123456 de M. tuberculosis desde 4.337 kb a 4.369 kb responsable de la inmunogenicidad mejorada frente a los bacilos de la tuberculosis. Esta cepa se denominará como la cepa de M. bobis BCG::RD1, y es útil como una nueva vacuna mejorada para la prevención de infecciones de tuberculosis, y para tratar cáncer de vejiga superficial.
Mycobacterium bovis BCG (bacilo Calmette-Guérin) se ha usado desde 1921 para prevenir la tuberculosis, aunque tiene una eficacia limitada frente a la enfermedad pulmonar de adulto en áreas muy endémicas. Mycobacterium microti, otro miembro del complejo de Mycobacterium tuberculosis, se describió originalmente como el agente infeccioso de una enfermedad similar a la tuberculosis en topillos (Microtus agrestis) en los años 1930 (Wells, A. Q. 1937. Tuberculosis in wild voles. Lancet 1221 y Wells, A. Q. 1946. The murine type of tubercle bacillus. Medical Research council special report series 259:1-42.). Hasta hace poco, se pensaba que las cepas de M. microti eran patógenas sólo para topillos, pero no para seres humanos, e incluso algunas se usaron como una vacuna viva. De hecho, el bacilo del topillo demostró ser seguro y eficaz previniendo la tuberculosis clínica en un ensayo que implicó aproximadamente 10.000 adolescentes en el Reino Unido en los años 1950 (Hart; P. D. a.; e I. Sutherland. 1977. BCG y vole bacillus vaccines in the prevention of tuberculosis in adolescence and early adult life. British Medical Journal 2: 293-295). Sobre la misma fecha, se administró con éxito otra cepa, OV166, a medio millón de neonatos en Praga, antigua Checoslovaquia, sin ninguna complicación grave (Sula, L., e I. Radkovsky. 1976. Protective effects of M. microti vaccine against tuberculosis. J. Hyg. Epid. Microbiol. Immunol. 20:1-6). Desde entonces, la vacunación con M. microti se ha descontinuado debido a que no era más eficaz que la vacuna de BCG empleada frecuentemente. Como resultado, son necesarias vacunas mejoradas para prevenir y tratar la tuberculosis.
El problema para intentar mejorar esta vacuna viva es que el mecanismo molecular tanto de la atenuación como de la inmunogenicidad de BCG todavía sigue sin comprenderse bien. Estudios genómicos comparativos de los seis miembros del complejo de M. tuberculosis han identificado más de 140 genes, cuya presencia es facultativa, que pueden conferir diferencias en fenotipo, intervalo de hospedantes y virulencia. Con relación al genoma de la cepa paradigmática, M. tuberculosis H37Rv (S. T Cole, et al., Nature 393, 537 (1998)), muchos de estos genes se producen en regiones cromosómicas que han sido suprimidas de ciertas especies (RD1-16, RvD1-5), M. A. Behr, et al., Science 284; 1520 (1999); R. Brosch, et al., Infection Immun. 66, 2221 (1998); S. V. Gordon, et al., Molec Microbiol 32, 643 (1999); H. Salamon, et al, Genome Res 10; 2044 (2000), G. G. Mahairas et al, J. Bacteriol. 178, 1274 (1996) y R. Brosch, et al., Proc Natl Acad Sci USA 99, 3684 (2002).
En relación con la invención y basándose en su distribución entre bacilos de la tuberculosis y su potencial para codificar funciones de la virulencia, se le dio la máxima prioridad a RD1, RD3-5, RD7 y RD9 (Fig. 1A, B) para el análisis genómico funcional usando "informaciones genéticas insertadas" ("knock-ins") de M. bovis BCG para evaluar su contribución potencial al proceso de atenuación. Los clones que abarcan estas regiones RD se seleccionaron a partir de una librería de M. tuberculosis H37Rv ordenada de cósmidos lanzadera integrantes (S. T. Cole; et al., Nature 393, 537 (1998) y W. R. Bange, et al, Tuber. Lung Dis. 79, 171 (1999)), y se electroporaron individualmente en BCG Pasteur, donde se insertaron de forma estable en el sitio attB (M. H. Lee, et al, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 88, 3111 (1991)).
Se ha descubierto que sólo la reintroducción de RD1 condujo a una alteración fenotípica profunda. Sorprendentemente, la "información genética insertada" ("knock-in") de BCG::RD1 creció de forma más vigorosa que los controles de BCG en ratones inmunodeficientes, induciendo esplenomegalia extendida y formación de granuloma.
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RD1 está restringida a las cepas avirulentas M. bovis BCG y M. microti. Aunque los puntos finales no son idénticos, las supresiones han eliminado de ambas cepas de vacunas un conjunto de seis genes (Rv3871-Rv3876) que son parte del locus ESAT-6 (Fig. 1A (S. T. Cole, et al., Nature 393, 537 (1998) y F. Tekaia, et al., Tubercle Lung Disease 79, 329 (1999)).
Entre los productos perdidos se encuentran miembros de las familias de proteínas PE (Rv3872), PPE (Rv3873), y ESAT-6 (Rv3874, Rv3875) micobacterianas. A pesar de carecer de señales de secreción obvias, ESAT-6 (Rv3875) y la proteína relacionada CFP-10 (Rv3874) son componentes abundantes del filtrado de cultivo a corto plazo, actuando como antígenos de células T inmunodominantes que inducen potentes respuestas de Th1 (F. Tekaia, et al., Tubercle Lung Disease 79, 329 (1999); A. L. Sorensen, et al, Infect. Immun. 63, 1710 (1995) y R. Colangelli, et al., Infect. Immun. 68, 990 (2000)).
En resumen, se ha descubierto que la restauración de RD1 en M. bovis BCG conduce a un aumento de la persistencia en ratones inmunocompetentes. La cepa de M. bovis BCG::RD1 induce respuestas inmunitarias específicas de la RD1 del tipo Th1, tiene una inmunogenicidad potenciada y confiere una protección mejor que M. bovis BCG sola en el modelo de tuberculosis de ratón. La vacuna de M. bovis BCG::RD1 es significativamente más virulenta que M. bovis BCG en ratones inmunodeficientes, pero considerablemente menos virulenta que M. tuberculosis.
Además, se muestra que M. microti carece de una parte diferente pero solapante de la región RD1 (RD1^{mic}) con respecto a M. bovis BCG, y los resultados indican que la reintroducción de RD1 confiere un aumento de la virulencia de BCG::RD1 en ratones inmunodeficientes. Las raras cepas de M. microti que están asociadas con la enfermedad humana contienen una región denominada RD5^{mic}, mientras que aquellas de los topillos no la tienen.
La vacuna de M. bovis BCG se podría mejorar reintroduciendo otros genes que codifican miembros de la familia de ESAT-6 que se han perdido, principalmente los encontrados en los loci de RD8 y RD5 de M. tuberculosis. Estas regiones también codifican antígenos de células T adicionales.
M. bovis BCG::RD1 se podría mejorar reintroduciendo los loci de RD8 y RD5 de M. tuberculosis.
La vacuna de M. bovis BCG se podría mejorar sobreexpresando los genes contenidos en las regiones RD1, RD5 y RD8.
En consecuencia, estas nuevas cepas, que muestran una mayor persistencia e inmunogenicidad potenciada, representan una vacuna mejorada para prevenir la tuberculosis y tratar el cáncer de vejiga.
Además, la mayor persistencia de estas cepas recombinantes es una ventaja para la presentación de otros antígenos, por ejemplo del VIH en seres humanos, y a fin de inducir respuestas inmunitarias de protección. Aquellas cepas mejoradas también se pueden usar en medicina veterinaria, por ejemplo para prevenir la tuberculosis bovina.
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Descripción
Por lo tanto, la presente invención está dirigida a una cepa de M. bovis BCG en la que dicha cepa tiene integrado el fragmento RD1-2F9 (\sim 32 kb) que cubre la región del genoma AL123456 de M. tuberculosis desde 4.337 kb hasta 4.369 kb responsable de la inmunogenicidad potenciada frente a los bacilos de la tuberculosis. Esta cepa se denominará como la cepa M. bovis BCG::RD1.
Esta región comprende los genes Rv3871, Rv3872 (SEC ID nº 2, PE micobacteriana), Rv3873 (SEC ID nº 3, PPE), Rv3874 (SEC ID nº 4, CFP-10), Rv3875 (SEC ID nº 5, ESAT-6), y Rv3876.
Estos genes se pueden mutar (supresión, inserción o modificación de bases) para mantener la inmunogenicidad mejorada, a la vez que se disminuye la virulencia de las cepas. Usando un procedimiento habitual, el experto en la materia puede seleccionar las cepas de M. bovis BCG::RD1 o M. microti::RD1, en las que se ha integrado un gen mutado, mostrando inmunogenicidad mejorada y menor virulencia.
Se ha mostrado en este caso que la introducción de la región RD1 hace que las cepas de vacunas induzcan una respuesta inmunitaria más eficaz frente a una exposición con M. tuberculosis. Sin embargo, esta primera generación de constructos puede ser seguida por otras generaciones de constructos ajustadas de forma más fina ya que la cepa de vacuna de BCG::RD1 complementada también mostró un fenotipo más virulento en ratones gravemente inmunodeprimidos (SCID). Por lo tanto, los constructos de BCG RD1+ se pueden modificar para que sean aplicables como cepas de vacunas, a la vez que son seguros para individuos inmunodeprimidos.
Con esta perspectiva, el experto en la materia puede adaptar la cepa de BCG::RD1 mediante la concepción de cepas de vacunas de BCG que sólo tienen partes de los genes que codifican ESAT-6 o CFP-10 en un vector de expresión micobacteriano (por ejemplo pSM81) bajo el control de un promotor, más particularmente un promotor de hsp60. Por ejemplo, al menos una porción del gen esat-6 que codifica péptidos de 20-mer inmunógenos de ESAT-6 activos como epítopos de células T (Mustafa AS, Oftung F, Amoudy HA, Madi NM, Abal AT, Shaban F, Rosen Krands I, y Andersen P. (2000) Multiple epitopes from the Mycobacterium tuberculosis ESAT-6 antigen are recognized by antigen-specific human T cell lines. Clin Infect Dis. 30 Supl 3:S201-5, los péptidos P1 a P8 se incorporan aquí en la descripción) se podría clonar en este vector y electroporar en BCG, dando como resultado una cepa de BCG que produce estos epítopos.
Como alternativa los genes que codifican ESAT-6 y CFP-10 (por ejemplo en el plásmido RD1-AP34 y/o RD1-2F9) se podrían alterar mediante mutagénesis dirigida (usando por ejemplo el kit de mutagénesis dirigida al sitio QuikChange de Stratagen) en una forma en la que la mayoría de los péptidos inmunógenos de ESAT-6 permanezcan intactos, pero que se pierda la funcionalidad biológica de ESAT-6.
Este enfoque podría dar como resultado una vacuna de BCG más protectora, sin incrementar la virulencia del constructo de BCG recombinante.
Por lo tanto, la descripción también está dirigida a un método para preparar y seleccionar la cepa de M. bovis BCG, que comprende una etapa que consiste en modificar la cepa de M. bovis BCG::RD1 como se define anteriormente mediante inserción, supresión o mutación en la región RD1 integrada, más particularmente en el gen de esat-6 o CFP-10, conduciendo dicho método a cepas que son menos virulentas para individuos inmunodeprimidos. Juntos, estos métodos permitirían explicar qué provoca el efecto que se observa con la cepa de BCG::RD1 (dando la presencia de epítopos de células T adicionales de ESAT-6 y CFP10 como resultado una inmunogenicidad incrementada), o, si el efecto está provocado por una mejor aptitud de los clones de BCG::RD1 recombinantes, dando como resultado un tiempo de exposición más prolongado del sistema inmunitario a la vacuna, o mediante un efecto combinatorio de ambos factores.
En una forma de realización preferida, la invención se refiere a las cepas de M. bovis BCG::RD1, que tienen integradas un cósmido denominado aquí como RD1-2F9 contenido en las cepas de E. coli depositadas el 2 de abril de 2002 en el CNCM (Institut Pasteur, 25, rue du Docteur Roux, 75724 París cedex 15, Francia) con el número de acceso I-2831. El RD1-2F9 es un cósmido que comprende una porción del genoma de Mycobacterium tuberculosis H37Rv que abarca la región RD1 y el gen de resistencia a higromicina. El RD1-AP34 es un cósmido que comprende una porción del ADN de Mycobacterium tuberculosis que contiene dos genes que codifican ESAT-6 y CFP-10, así como un gen que confiere resistencia a canamicina.
El constructo RD1-AP34 contiene un fragmento de 3909 pb del genoma de M. tuberculosis H37Rv de la región 4350459 pb a 4354367 pb clonado en un vector integrante pKint (SEC ID nº 1). El número de acceso del segmento 160 del genoma de M. tuberculosis H37Rv que contiene esta región es AL022120.
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SEC ID nº 1:
1
2
3
100
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La secuencia del fragmento RD1-2F9 (\sim 32 kb) cubre la región del genoma AL123456 de M. tuberculosis desde 4337 kb hasta 4369 kb, y también contiene la secuencia descrita anteriormente.
Tal cepa satisface el objetivo de la invención, el cual es proporcionar una vacuna mejorada contra la tuberculosis o un agente profiláctico o terapéutico basado en M. bovis BCG para estos fines.
La cepa M. bovis BCG::RD1 descrita anteriormente es una vacuna contra la tuberculosis mejor que M. bovis BCG. Esta cepa también se puede mejorar reintroduciendo otros genes encontrados en los loci RD8 y RD5 de M. tuberculosis. Estas regiones codifican antígenos de células T adicionales. Como se ha indicado, la sobreexpresión de los genes contenidos en las regiones RD1, RD5 y RD8 por medio de promotores exógenos está englobada por la invención.
En una segunda forma de realización, la invención se refiere a un cósmido o un plásmido que comprende el fragmento RD1-2F9 (\sim 32 kb), que cubre la región del genoma AL123456 de M. tuberculosis desde 4.337 kb hasta 4.369 kb, comprendiendo dicha región los genes Rv3871, Rv3872 (PE micobacteriana), Rv3873 (PPE), Pv3874 (CFP-10), Rv3875 (ESAT-6), y Rv3876. La invención también se refiere al uso de estos cósmidos o plásmidos para transformar cepas de M. bovis BCG. Como se ha indicado anteriormente, estos cósmidos o plásmidos pueden comprender un gen mutado seleccionado de Rv3871 a RV3876, siendo dicho gen mutado responsable de la inmunogenicidad mejorada y virulencia reducida.
En otra forma de realización, la invención comprende una composición farmacéutica que comprende una cepa como se representa anteriormente y un vehículo farmacéuticamente aceptable.
Además de las cepas, estas composiciones farmacéuticas pueden contener vehículos farmacéuticamente aceptables que comprenden excipientes y auxiliares que facilitan el procesamiento de la vacuna viva en preparaciones que se pueden usar farmacéuticamente. Otros detalles sobre técnicas para la formulación y administración se pueden encontrar en la última edición de Remington's Pharmaceutical Sciences (Maack Publising Co., Easton, Pa.).
Preferentemente, tal composición es adecuada para la administración oral, intravenosa o subcutánea.
La determinación de la dosis eficaz está perfectamente dentro de la capacidad de los expertos en la materia. Una dosis terapéuticamente eficaz se refiere a aquella cantidad de ingrediente activo, es decir, el número de cepas administradas, que mejora los síntomas o afección. La eficacia terapéutica y la toxicidad se pueden determinar mediante procedimientos farmacéuticos estándar en animales experimentales, por ejemplo ED50 (la dosis terapéuticamente eficaz en el 50% de la población) y LD50 (la dosis letal para el 50% de la población). La relación de dosis de efectos tóxicos a terapéuticos es el índice terapéutico, y se puede expresar como la relación LD50/ED50. Se prefieren composiciones farmacéuticas que muestren grandes índices terapéuticos. Por supuesto, la ED50 se ha de modular según el mamífero a tratar o vacunar. A este respecto, la invención contempla una composición adecuada para la administración a seres humanos así como una composición veterinaria.
La descripción también está dirigida a una vacuna que comprende una cepa de M. bovis BCG::RD1 como se representa anteriormente y un vehículo adecuado. Esta vacuna es especialmente útil para prevenir la tuberculosis. También se puede usar para tratar el cáncer de vejiga.
La descripción también se refiere a un producto que comprende una cepa como se representa anteriormente y al menos una proteína seleccionada de ESAT-6 y CFP-10 o un epítopo derivado de la misma, para un uso separado, simultáneo o secuencial para tratar tuberculosis.
En todavía otra forma de realización, la descripción se refiere al uso de una cepa de M. bovis BCG::RD1 como se representa anteriormente para prevenir o tratar la tuberculosis.
También se refiere al uso de una cepa de M. bovis BCG::RD1 como un adyuvante/inmunomodulador poderoso usado en el tratamiento de cáncer de vejiga superficial.
La invención se detalla adicionalmente a continuación y se ilustrará con las siguientes figuras.
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Leyendas de las figuras
Figura 1: M. bovis BCG y M. microti tienen una supresión cromosómica, RD1, que abarca el locus cfp10-esat6 .
(A)
Mapa de la región de cfp10-esat6 que muestra los seis marcos de lectura posibles y las predicciones del gen de H37Rv de M. tuberculosis. Este mapa también está disponible en: (http://genolist.pasteur.fr/fubercuList/).
Las regiones suprimidas se muestran para BCG (rojo) y M. microti (azul) con sus coordenadas del genoma H37Rv respectivas, y la extensión del locus de ESAT-6 conservado (F. Tekaia, et al., Tubercle Lung Disease 79, 329 (1999)), se indica por la barra gris.
(B)
Tabla que muestra las características de regiones suprimidas seleccionadas para el análisis de complementación. Se muestran los factores de virulencia potencial y sus funciones putativas interrumpidas por cada supresión. Las coordenadas son para el genoma de H37Rv de M. tuberculosis.
(C)
Clones usados para complementar BCG. Clones individuales que abarcan las regiones RD1 (RD1-I106 y RD1-2F9) se seleccionaron de una librería genómica de M. tuberculosis ordenada (R.B. sin publicar) en pYUB412 (S. T. Cole, et al., Nature 393, 537 (1998) y W. R. Bange, F. M. Collins, W. R. Jacobs, Jr., Tuber. Lung Dis. 79, 171 (1999)) y se electroporaron en cepas de M. bovis BCG, o M. microti. Transformantes resistentes a higromicina se verificaron usando PCR específica para los genes correspondientes. pAP35 se derivó de RD1-2F9 mediante escisión de un fragmento AflII. pAP34 se construyó subclonando un fragmento EcoRI-XbaI en el vector integrante pKINT. Los extremos de cada fragmento están relacionados con la supresión de BCG RD1 (caja sombreada) con líneas en negro, y las coordinadas de H37Rv para los otros extremos de los fragmentos se dan en kilobases.
(D)
Análisis de inmunotransferencia, usando un anticuerpo monoclonal anti-ESAT-6, de extractos proteicos de célula completa a partir de cultivos en fase logarítmica de H37Rv (S. T. Cole, et al., Nature 393, 537 (1998)), BCG::pYUB412 (M. A. Behr, et al., Science 284, 1520 (1999)), BCG::RD1-I106 (R. Brosch, et al., Infection Immun. 66, 2221 (1998)), BCG::RD1-2F9 (S. V. Gordon, et al., Molec Microbiol 32, 643 (1999)), M. bovis (H. Salamon et al, Genome Res 10, 2044 (2000)), Mycobacterium smegmatis (G. G. Mahairas, et al, J. Bacteriol. 178, 1274 (1996)), M. smegmatis::pYUB412, y M. smegmatis::RD1-2F9 (R. Brosch, et al., Proc Natl Acad Sci USA 99, 3684 (2002)).
Figura 2: La complementación de BCG Pasteur con la región RD1 altera la morfología de la colonia y conduce a la acumulación de Rv3873 y ESAT-6 en la pared celular.
(A)
Diluciones en serie de cultivos de 3 semanas de BCG::pYUB412, BCG::I106 o BCG::RD1-2F9 que se hicieron crecer en placas de agar Middle-brook 7H10. El cuadrado blanco muestra el área de la placa aumentada en la imagen a la derecha.
(B)
Imagen con el microscopio de luz a un aumento de cincuenta veces de las colonias de BCG::pYUB412 y BCG::RD1-2F9. Se añadieron adyacentemente 5 \mul gotas de suspensiones bacterianas de cada cepa sobre placas 7H10 y se obtuvo la imagen después de 10 días de crecimiento, iluminando las colonias a través del agar.
(C)
Análisis de inmunotransferencia de diferentes fracciones celulares de H37Rv obtenidas a partir de http://www.cvmbs.colostate.edu/microbiology/tb/ResearchMA.html usando un anticuerpo anti-ESAT-6 o
(D)
suero de conejo anti-Rv3873 (PPE). H37Rv y BCG significan extractos de células completas procedentes de las bacterias respectivas, y Cyt, Mem y CW corresponden a las fracciones citosólica, membranaria y de pared celular de M. tuberculosis H37Rv.
Figura 3: La complementación de BCG Pasteur con la región RD1 incrementa la persistencia bacteriana y la patogenicidad en ratones.
(A)
Bacterias en el bazo y pulmones de ratones BALB/c tras la infección intravenosa (i.v.) vía la vena de la cola lateral con 10^{6} unidades formadoras de colonias (cfu) de M tuberculosis H37Rv (rojo) o 10^{7} cfu de BCG::pYUB412 (amarillo) o BCG::RD1-I106 (verde).
(B)
Persistencia bacteriana en el bazo y pulmones de ratones C57BL/6 tras la infección i.v. con 10^{5} cfu de BCG::pYUB412 (amarillo), BCG::RD1-I106 (verde) o BCG::RD1-2F9 (azul).
(C)
Multiplicación bacteriana tras la infección i.v. con 10^{6} cfu de BCG::pYUB412 (amarillo) y BCG::RD1-2F9 (azul) en ratones con inmunodeficiencia combinada grave (SCID). Para A, B, y C, cada punto de tiempo es la media de 3 a 4 ratones, y las barras de error representan desviaciones estándar.
\newpage
(D)
Bazos de ratones SCID tres semanas después de la infección i.v. con 10^{6} cfu de BCG::pYUB412, BCG::RD1-2F9 o BCG::I301 (una "información genética insertada" de RD3, Fig. 1B). La escala está en cm.
Figura 4: La inmunización de ratones con BCG::RD1 genera respuestas importantes de células T específicas de ESAT-6 y una protección potenciada frente a una exposición con M. tuberculosis .
(A)
Respuesta proliferativa de esplenocitos de ratones C57BL/6 inmunizados subcutáneamente (s.c.) con 106 CFU de BCG::pYUB412 (cuadrados en blanco) o BCG::RD1-2F9 (cuadrados oscuros) frente a la estimulación in vitro con diversas concentraciones de péptidos sintéticos a partir de una proteína de cápside de tipo 1 de poliovirus VP1, ESAT-6 o Ag85A (K. Huygen, et al., Infect. Immun. 62, 363 (1994), L. Brandt, J. Immunol. 157, 3527 (1996) y C. Leclerc et al, J. Virol. 65, 711 (1991)).
(B)
Proliferación de esplenocitos de ratones inmunizados con BCG::RD1-2F9 en ausencia o presencia de 10 \mug/ml de péptido ESAT-6 1-20, con o sin 1 \mug/ml de anticuerpo monoclonal anti-CD4 (GK1.5) o anti-CD8 (H35-17-2). Los resultados se expresan como media y desviación estándar de incorporación de ^{3}H-timidina a partir de pocillos duplicados.
(C)
Concentración de IFN-\gamma en sobrenadantes de cultivos de esplenocitos de ratones C57BL/6 estimulados durante 72 h con péptidos o PPD tras la inmunización s.c. o i.v. con BCG::pYUB412 (rojo y amarillo) o BCG::RD1-2F9 (verde y azul). Los ratones se inocularon con 10^{6} (amarillo y verde) o 10^{7} (rojo y azul) cfu. Los niveles de IFN-\gamma se cuantificaron usando un ELISA de sándwich (límite de detección de 500 pg/ml) con los mAbs R4-6A2 y XMG1.2 conjugado con biotina. Los resultados se expresan como la media y desviación estándar de pocillos de cultivo duplicados.
(D)
Recuentos bacterianos en el bazo y pulmones de ratones BALB/C vacunados y no vacunados 2 meses después de una exposición i.v. con M. tuberculosis H37Rv. Los ratones se expusieron 2 meses tras la inoculación i.v. con 10^{6} cfu de BCG::pYUB412 o BCG::RD1-2F9. Se colocaron en placas homogenados de órganos para la enumeración bacteriana en medio 7H11, con o sin higromicina, para diferenciar M. tuberculosis de colonias residuales de BCG. Los resultados se expresan como la media y desviación estándar de 4 a 5 ratones, y los niveles de significancia se derivaron usando la prueba de la suma de rangos de Wilcoxon.
Figura 5: Mapa BAC de la cepa OV254 de Mycobacterium microti (denominado MiXXX), superpuesto sobre los mapas BAC de M. tuberculosis H37Rv (denominado RvXXX) y M. bovis AF2122/97 (denominado MbXXX). Las barras de escala indican la posición en el genoma de M. tuberculosis.
Figura 6: Diferencia en la región 4340-4360 kb entre la supresión en BCG RD1^{bcg} (A) y en M. microti RD1^{mic} (C) con relación a M. tuberculosis H37Rv (B).
Figura 7: Diferencia en la región 3121-3127 kb entre M. tuberculosis H37Rv (A) y M. microti OV254 (B). Las cajas en gris representan las repeticiones directas (DR), las negras representan las secuencias espaciadoras numeradas únicas. * Secuencia espaciadora idéntica a la del espaciador 58 dado a conocer por van Embden et al. (42). Obsérvese que los espaciadores 33-36 y 20-22 no se muestran debido a que H37Rv carece de estos espaciadores.
Figura 8: A) Perfiles de PFGE de AseI de diversas cepas de M. microti; hibridación con B) sonda esat-6 radiomarcada; C) sonda de la región que flanquea a RD1^{mic}; D) sonda plcA. 1. M. bovis AF2122/97, 2. M. canetti, 3. M. bovis BCG Pasteur, 4. M. tuberculosis H37Rv, 5. M. microti OV254, 6. M. microti Myc 94-2272, 7. M. microti B3 tipo ratón, 8. M. microti B4 tipo ratón , 9. M. microti B2 tipo llama, 10. M. microti B1 tipo llama, 11. M. microti ATCC 35782. M: Marcador de PFGE de bajo rango (NEB).
Figura 9: Productos de PCR obtenidos a partir de diversas cepas de M. microti usando cebadores que flanquean la región RD1^{mic}, para amplificar el antígeno de ESAT-6, que flanquean la región MiD2. 1. M. microti B1 tipo llama, 2. M. microti B4 tipo ratón, 3. M. microti B3 tipo ratón, 4. M. microti B2 tipo llama, 5. M. microti ATCC 35782, 6. M. microti OV254, 7. M. microti Myc 94-2272, 8. M. tuberculosis H37Rv.
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Ejemplo 1 Preparación y evaluación de cepas de M. bovis BCG::RD1 como una vacuna para tratar o prevenir tuberculosis
Como se ha mencionado anteriormente, se ha encontrado que la complementación con RD1 se logró mediante un cambio en el aspecto colonial ya que las cepas de "información genética insertada" de BCG Pasteur desarrollaron un morfotipo sorprendentemente diferente (Fig. 2A). Las cepas complementadas con RD1 adoptaron una morfología que se extiende, menos rugosa, que es característica de M. bovis, y esto fue más manifiesto cuando las colonias se inspeccionaron mediante microscopio de luz (Fig. 2B). Se muestran los mapas de los clones usados (Fig. 1C). Estos cambios se observaron tras la complementación con todos los constructos de RD1 (Fig. 1C) y al complementar M. microti (datos no mostrados). Pertinentemente, Calmette y Guérin (A. Calmette, La vaccination preventive contre la tuberculose. (Masson et al., París, 1927)) observaron un cambio en la morfología de la colonia durante su paso inicial de M. bovis, y nuestros experimentos demuestran ahora que este cambio, que corresponde a la pérdida de RD1, contribuyó directamente a atenuar esta cepa virulenta. Se sabe que la integridad de la pared celular es un determinante clave de la virulencia para M. tuberculosis (C. E. Barry, Trends Microbiol 9, 237 (2001)), y se ha demostrado que los cambios tanto en los lípidos (M. S. Glickman, J. S. Cox, W. R. Jacobs, Jr., Mol Cell 5, 717 (2000)) como en las proteínas (F. X. Berthet, et al., Science 282, 759 (1998)) de la pared celular alteran la morfología de la colonia y disminuyen la persistencia en modelos de animales.
Para determinar qué genes estaban implicados en estos cambios morfológicos, se usaron anticuerpos que reconocen tres proteínas de RD1 (Rv3873, CFP10 y ESAT-6) en análisis de fraccionamiento inmunocitológico y subcelular. Cuando las diferentes fracciones celulares procedentes de M. tuberculosis se inmunotransfirieron, las tres proteínas se localizaron en la fracción de la pared celular (Fig. 2C), aunque también se detectaron cantidades significativas de Rv3873, una proteína de PPE, en las fracciones membranaria y citosólica (Fig. 2D). Usando tinción con inmuno-oro y microscopía electrónica, se confirmó la presencia de ESAT-6 en la cubierta de M. tuberculosis, pero no se pudo detectar ninguna alteración en la ultraestructura capsular (datos no mostrados). Previamente, CFP-10 y ESAT-6 se han considerado como proteínas segregadas (F. X. Berthet et al, Microbiology 144, 3195 (1998)), pero nuestros resultados sugieren que sus funciones biológicas están enlazadas directamente con la pared celular.
Los cambios en la morfología colonial van acompañados a menudo por una virulencia bacteriana alterada. La evaluación inicial del crecimiento de diferentes "informaciones genéticas insertadas" de BCG::RD1 en ratones C57BL/6 o BALB/c tras la infección intravenosa reveló que la complementación no restauró los niveles de virulencia hasta aquellos de la cepa de referencia M. tuberculosis H37Rv (Fig. 3A). En experimentos a un plazo más largo, se detectaron diferencias modestas pero significativas en la persistencia de las "informaciones genéticas insertadas" de BCG::RD1 en comparación con los controles de BCG. Tras la infección intravenosa de ratones C57BL/6, sólo las "informaciones genéticas insertadas" de RD1 todavía eran detectables en los pulmones tras 106 días (Fig. 3B). Esta diferencia en virulencia entre los recombinantes de RD1 y el control del vector de BCG fue más pronunciada en ratones con inmunodeficiencia combinada severa (SCID) (Fig. 3C). La "información genética insertada" de BCG::RD1 fue notablemente más virulenta, según se evidencia mediante la tasa de crecimiento en pulmones y bazo y también por un grado aumentado de esplenomegalia (Fig. 3D). El examen citológico reveló numerosos bacilos, infiltración celular importante y formación de granuloma. Estos incrementos en la virulencia tras la complementación con la región RD1 demuestran que la pérdida de este locus genómico contribuyó a la atenuación de BCG.
La incapacidad para restaurar la total virulencia a BCG Pasteur no fue debida a inestabilidad de nuestros constructos ni a la cepa usada (datos no mostrados). Se obtuvieron resultados esencialmente idénticos al complementar BCG Rusia, una cepa que se hizo pasar menos veces que BCG Pasteur y que se presupone, por lo tanto, que está más próxima al ancestro original (M. A. Behr, et al., Science 284, 1520 (1999)). Esto indica que la atenuación de BCG fue un proceso polimutacional y la pérdida de virulencia residual para los animales se documentó a finales de los años 1920 (T. Oettinger, et al, Tuber Lung Dis 79, 243 (1999)). Usando la misma estrategia experimental, también se ensayaron los efectos de la complementación con RD3-5, RD7 y RD9 (S. T. Cole, et al., Nature 393, 537 (1998); M. A. Behr, et al., Science 284, 1520 (1999); R. Brosch, et al., Infection Immun. 66, 2221 (1998) y S. V. Gordon et al., Molec Microbiol 32, 643 (1999)) que codifican factores de virulencia putativos (Fig. 1B). La reintroducción de estas regiones, que no están restringidas a cepas avirulentas, no afectó a la virulencia en ratones inmunocompetentes. Aunque es posible que los efectos de la supresión actúen sinérgicamente, parece más plausible que estén implicados otros mecanismos atenuantes.
Puesto que RD1 codifica al menos dos antígenos de células T potentes (R. Colangelli, et al., Infect. Immun. 68, 990 (2000), M. Harboe, et al., Infect. Immun. 66, 717 (1998) y R. L. V. SkjØt, et al., Infect. Immun. 68, 214 (2000)), se investigó si su restauración indujo respuestas inmunitarias frente a estos antígenos o incluso mejoró la capacidad protectora de BCG. Tres semanas tras la inoculación intravenosa o subcutánea con BCG::RD1 o controles de BCG, se observó una proliferación similar de esplenocitos frente a un péptido Ag85A (una proteína de BCG antigénica) (K. Huygen, et al., Infect. Immun. 62, 363 (1994)), pero no frente a un péptido vírico de control (Fig. 4A). Además, BCG::RD1 generó potentes respuestas de células T CD4^{+} frente al péptido de ESAT-6, como se muestra mediante la proliferación de esplenocitos (Fig. 4A, B) y la fuerte producción de IFN-\gamma (Fig. 4C). Por el contrario, el control de BCG::pYUB412 no estimuló respuestas de células T específicas para ESAT-6, indicando así que éstas estaban mediadas por el locus de RD1. Por lo tanto, ESAT-6 es muy inmunógena en ratones en el contexto de BCG recombinante.
Cuando se usa como una vacuna subunitaria, ESAT-6 provoca respuestas de células T e induce niveles de protección más débiles que pero parecidos a los de BCG (L. Brandt et al, Infect. Immun. 68, 791 (2000)). Se llevaron a cabo experimentos de exposición para determinar si la inducción de respuestas inmunitarias frente a antígenos codificados por BCG::RD1, tales como ESAT-6, podría mejorar la protección frente a una infección con M. tuberculosis. Grupos de ratones inoculados con BCG::pYUB412 o BCG::RD1 se infectaron subsiguientemente de forma intravenosa con M. tuberculosis H37Rv. Estos experimentos mostraron que la inmunización con la "información genética insertada" de BCG::RD1 inhibió el crecimiento de M. tuberculosis tanto en ratones BALB/c (Fig. 4D) como C57BL/6 cuando se compara con la inoculación con BCG sola.
Aunque los incrementos en la protección inducida por BCG::RD1 y el control de BCG son modestos, demuestran convincentemente que se han desarrollado diferencias genéticas entre la vacuna viva y el patógeno que han debilitado la capacidad protectora de BCG. Por lo tanto, este estudio define la base genética de un compromiso que ha ocurrido, durante el proceso de atenuación, entre la pérdida de virulencia y la protección reducida (M. A. Behr, P. M. Small, Nature 389, 133 (1997)). Las BCG recombinantes presentadas aquí pueden no ser apropiadas en su forma actual como candidatos de vacunas debido a la incertidumbre sobre su seguridad. Sin embargo, la estrategia de reintroducir, o incluso sobreproducir (M. A. Horwitz et al, Proc Natl Acad Sci U S A 97, 13853 (2000)), los antígenos inmunodominantes perdidos de M. tuberculosis en BCG se podría combinar con una mutación atenuante inmunoneutra para crear una vacuna más eficaz contra la tuberculosis.
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Ejemplo 2 La genómica comparativa a base de BAC identifica Mycobacterium microti como un mutante de supresión de ESAT-6 natural
Se buscó cualquier diferencia genética entre aislados humanos y de topillos que pudiese explicar su diferente grado de virulencia y preferencia por el hospedante, y qué hace que los aislados de topillos sean perjudiciales para seres humanos. A este respecto, se emplearon métodos de genómica comparativa en relación con la presente invención para identificar diferencias principales que puedan existir entre la cepa de referencia OV254 de M. microti y las cepas completamente secuenciadas de M. tuberculosis H37Rv (10) o M. bovis AF2122/97 (14). Se construyó una librería ordenada de cromosoma artificial bacteriano (BAC) de M. microti OV254 y se llevó a cabo una comparación individual de BAC a BAC de un conjunto mínimo de estos clones con los clones de BAC procedentes de librerías previamente construidas de M. tuberculosis H37Rv y M. bovis AF2122/97.
Se detectaron diez regiones en M. microti que fueron diferentes de las regiones genómicas correspondientes en M. tuberculosis y M. bovis. Para investigar si estas regiones estaban asociadas con la capacidad de las cepas de M. microti para infectar seres humanos, se estudió su organización genética en 8 cepas de M. microti adicionales, incluyendo aquellas aisladas recientemente de pacientes con tuberculosis pulmonar. Este análisis identificó algunas regiones que estaban específicamente ausentes de todas las cepas de M. microti ensayadas, pero que estaban presentes en todos los otros miembros del complejo de M. tuberculosis, y otras regiones que sólo estaban ausentes de los aislados de topillo de M. microti.
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2.1 Materiales y métodos
Cepas bacterianas y plásmidos. M. microti OV254 que se aisló originalmente de topillos en el Reino Unido en los años 1930 fue suministrado amablemente por MJ Colston (45). Se incluyó ADN procedente de M. microti OV216 y OV183 en un conjunto de cepas usadas durante un estudio multicentro (26). M. microti Myc 94-2272 se aisló en 1988 a partir del fluido de perfusión de un paciente de diálisis de 41 años de edad (43) y fue proporcionada amablemente por L. M. Parsons. M. microti 35782 fue adquirida a partir de la American Type Culture Collection (denominación TMC 1608 (M.P. Prague)). M. microti B1 tipo llama, B2 tipo llama, B3 tipo ratón y B4 tipo ratón se obtuvieron a partir de la colección del National Reference Center for Mycobacteria, Forschungszentrum Borstel, Alemania. La cepa AF2122/97 de M. bovis, espoligotipo 9, fue responsable de una epidemia de manada en Devon en el Reino Unido, y se ha aislado de lesiones tanto en ganado vacuno como en tejones. Típicamente, las micobacterias se hicieron crecer en medio líquido Middlebrook 7H9 (Difco) que contiene 10% de ácido oleico-dextrosa-catalasa (Difco), 0,2% de ácido pirúvico y 0,05% de Tween 80.
Construcción de la librería, preparación de ADN de BAC, y reacciones de secuenciación. La preparación de ADN genómico embebido en agarosa a partir de la cepa OV254 de M microti, H37Rv de M. tuberculosis, BCG de M. bovis se llevó a cabo como se describe en Brosch et al. (5). La librería de M. microti se construyó mediante ligación de fragmentos HindIII parcialmente digeridos (50-125 kb) en pBeloBAC11. A partir de los 10.000 clones que se obtuvieron, se recogieron 2.000 en placas de 96 pocillos y se almacenaron a -80ºC. Las preparaciones plasmídicas de clones recombinantes para reacciones de secuenciación se obtuvieron reuniendo ocho copias de placas de 96 pocillos, conteniendo cada pocillo un cultivo durante toda la noche en 250 \mul de medio 2YT con 12,5 \mug.ml^{-1} de cloranfenicol. Después de 5 minutos de centrifugación a 3000 rpm, los peletes bacterianos se resuspendieron en 25 \mul de disolución A (25 mM de Tris, pH 8,0, 50 mM de glucosa y 10 mM de EDTA), las células se lisaron añadiendo 25 \mul de tampón B (NaOH 0,2 M, SDS 0,2%). Después se añadieron 20 \mul de acetato de sodio 3 M frío, pH 4,8, y se mantuvo en hielo durante 30 minutos. Tras la centrifugación a 3000 rpm durante 30 minutos, los sobrenadantes reunidos (140 \mul) se transfirieron a nuevas placas. Se añadieron 130 \mul de isopropanol, y después de 30 minutos en hielo el ADN se peletizó mediante centrifugación a 3500 rpm durante 15 minutos. El sobrenadante se desechó, y el pelete se resuspendió en 50 \mul de una disolución ARNasa A 10 \mug/ml (en Tris 10 mM pH 7,5/EDTA 10 mM) y se incubó a 64ºC durante 15 minutos. Tras la precipitación (2,5 \mul de acetato de sodio 3 M, pH 7, y 200 \mul de etanol absoluto), los peletes se enjuagaron con 200 \mul de etanol al 70%, se secaron al aire y finalmente se suspendieron en 20 \mul de tampón de TE.
Se llevaron a cabo reacciones de secuenciación terminal con un kit de secuenciación de ciclo terminador Taq DyeDeoxy Terminator (Applied Biosystems) usando una mezcla de 13 \mul de una disolución de ADN, 2 \mul de cebador (2 \muM) (SP6-BAC1, AGTTAGCTCACTCATTAGGCA (SEC ID nº 7), o T7-BAC1, GGATGTGCTGCAAGGCGATTA (SEC ID nº 8)), 2,5 \mul de Big Dye y 2,5 \mul de un tampón 5X (50 mM de MgCl_{2,} 50 mM de Tris). La ciclación térmica se llevó a cabo en un amplificador PTC-100 (MJ Inc.) con una etapa de desnaturalización inicial de 60 s a 95ºC, seguido de 90 ciclos de 15 s a 95ºC, 15 s a 56ºC, 4 min. a 60ºC. El ADN se precipitó entonces con 80 \mul de etanol al 76% y se centrifugó a 3000 rpm durante 30 minutos. Después de desechar el sobrenadante, el ADN se enjuagó finalmente con 80 \mul de etanol al 70% y se resuspendió en tampones apropiados dependiendo del tipo de secuenciador automatizado usado (ABI 377 o ABI 3700). Los datos de secuencias se transfirieron a estaciones de trabajo digitales y se evitaron usando el software TED del paquete Staden (37). Las secuencias editadas se compararon frente a la base de datos de M. tuberculosis H37Rv (http://genolist.pasteur.fr/TubercuList/), el servidor BLAST de M. bovis (\underbar{http://www.sanger.ac.uk/Projects/M\_bovis/blast\_server.shtml}), y las bases de datos domésticas, para determinar las posiciones relativas de las secuencias finales de M. microti OV254 BAC.
Preparación de ADN de BAC a partir de recombinantes y comparación de los perfiles de digestión de BAC. El ADN para la digestión se preparó como se describe previamente (4). Se digirió ADN (1 \mug) con HindIII (Boehringer) y los productos de restricción se separaron mediante electroforesis en gel de campo pulsado (PFGE) en un sistema Biorad CHEF-DR III usando un gel de agarosa al 1% (p/v) y un pulso de 3,5 s durante 17 h a 6 V.cm^{-1}. Como patrones de tamaño, se usaron marcadores de PFGE de bajo rango (NEB). Los tamaños de los insertos se estimaron tras teñir con bromuro de etidio y visualizar con luz UV. Se hicieron diferentes comparaciones con clones que solapan procedentes de las librerías de M. microti OV254, M. bovis AF2122/97, y M. tuberculosis H37Rv pBeloBAC11.
Análisis de PCR para determinar la presencia de genes en diferentes cepas de M. microti . Las reacciones contenían 5 \mul de tampón de PCR 10X (100 mM de \beta-mercaptoetanol, 600 mM de Tris-HCl, pH 8,8, 20 mM de MgCl_{2}, 170 mM de (NH_{4})_{2}SO4, 20 mM de mezcla nucleotídica dNTP), 2,5 \mul de cada cebador a 2 \muM, 10 ng de ADN molde, 10% de DMSO y 0,5 unidades de Taq polimerasa, en un volumen final de 12,5 \mul. La ciclación térmica se llevó a cabo en un amplificador PTC-100 (MJ Inc.) con una etapa de desnaturalización inicial de 60 s a 95ºC, seguido de 35 ciclos de 45 s a 95ºC, 1 min. a 60ºC y 2 min. a 72ºC.
Análisis de RFLP. De forma breve, tarugos en agarosa de ADN genómico preparado como se describe previamente (5) se digirieron con AseI, DraI o XbaI (NEB), después se sometieron a electroforesis en gel de agarosa al 1%, y finalmente se transfirieron a membranas de nitrocelulosa Hybond-C extra (Amersham). Se amplificaron diferentes sondas mediante PCR a partir de la cepa OV254 de M. microti o H37Rv de M. tuberculosis usando cebadores para:
esat-6 (esat-6F GTCACGTCCATTCATTCCCT (SEC ID nº 9);
esat-6R ATCCCAGTGACGTTGCCTT) (SEC ID nº 10),
la región de flanqueo de RD1^{mic} (4340, 209F GCAGTGCAAAGGTGCAGATA (SEC ID nº 11); 4354, 701R GATTGAGACACTTGCCACGA (SEC ID nº 12)), o
plcA (plcA.int.F CAAGTTGGGTCTGGTCGAAT (SEC ID nº 13); plcA.int.R GCTACCCAAGGTCTCCTGGT (SEC ID nº 14)). Los productos de la amplificación se radiomarcaron usando el kit Stratagene Prime-It II (Stratagene). Las hibridaciones se llevaron a cabo a 65ºC en una disolución que contiene NaCl 0,8 M, EDTA pH 8, 5 mM, fosfato de sodio 50 mM pH 8, 2% de SDS, 1X de reactivo de Denhardt y 100 \mug/ml de ADN de esperma de salmón (Genaxis). Las membranas se expusieron a pantallas de formación de fosfoimágenes, y las imágenes se digitalizaron usando un aparato formador de fosfoimágenes STORM.
Números de acceso de las secuencias de ADN. Las secuencias nucleotídicas que flanquean MiD1, MiD2, MiD3, así como la secuencia de unión de RD1^{mic}, se han depositado en la base de datos de EMBL. Los números de acceso son AJ345005, AJ345006, AJ315556 y AJ315557, respectivamente.
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2.2 Resultados
Establecimiento de una librería de BAC ordenada completa de M. microti OV254. La electroporación de pBeloBAC11 que contiene digestiones parciales de HindIII de ADN de M. microti OV254 en Escherichia coli DH10B produjo aproximadamente 10.000 clones recombinantes, a partir de los cuales se aislaron 2.000 y se almacenaron en placas de 96 pocillos. Usando la secuencia completa del genoma de M. tuberculosis H37Rv como armazón, la secuenciación terminal de 384 clones de M. microti BAC escogidos al azar permitió seleccionar suficientes clones para cubrir casi todo el cromosoma de 4,4 Mb. Unos pocos clones raros que abarcaron regiones que no fueron cubiertas por este enfoque se identificaron mediante detección sistemática por PCR de conjuntos como se describe previamente (4). Esto dio como resultado un conjunto mínimo de 50 BAC, que cubre alrededor de 99,9% del genoma de M. microti OV254, cuyas posiciones relativas frente a M. tuberculosis H37Rv se muestran en la Figura 5. El tamaño de los insertos osciló entre 50 y 125 kb, y los clones recombinantes fueron estables. Comparada con otras librerías de BAC a partir de bacilos de la tuberculosis (4, 13), la librería de BAC de M. microti OV254 contenía clones que fueron generalmente mayores que los obtenidos previamente, lo que facilitó el enfoque de genómica comparativa, descrito más abajo.
Identificación de supresiones de ADN en M. microti OV254 con relación a M. tuberculosis H37Rv mediante genómica comparativa. El conjunto solapante mínimo de 50 clones de BAC, junto con la disponibilidad de otras tres librerías de BAC ordenadas procedentes de M. tuberculosis H37Rv, M. bovis BCG Pasteur 1173P2 (5, 13) y M. bovis AF2122/97 (14) permitió llevar a cabo la comparación directa de BAC a BAC de clones que abarcan las mismas regiones genómicas. Diferencias de tamaño de fragmentos de restricción de HindIII separados mediante PFGE a partir de los BAC de M. microti OV254, con relación a los fragmentos de restricción de los clones de BAC de M. bovis y/o M. tuberculosis, identificaron loci que difirieron entre las cepas ensayadas. Fueron fácilmente detectables variaciones de tamaños de al menos 2 kb, y se identificaron 10 regiones suprimidas, distribuidas uniformemente alrededor del genoma, y que contienen más de 60 marcos de lectura abiertos (ORF). Estas regiones representan alrededor de 60 kb que están ausentes de la cepa de OV254 de M. microti en comparación con H37Rv de M. tuberculosis. En primer lugar, se encontró que phiRv2 (RD11), uno de los dos profagos de M. tuberculosis H37Rv, estaba presente en M. microti OV254, mientras que phiRv1, también denominado como RD3 (29), estaba ausente. En segundo lugar, se encontró que M. microti carece de cuatro de las regiones genómicas que también estaban ausentes en M. bovis BCG. De hecho, estas cuatro regiones de diferencia denominadas RD7, RD8, RD9 y RD10 están ausentes de todos los miembros del complejo de M. tuberculosis con la excepción de M. tuberculosis y M. canettii, y parece que se han perdido de una cepa progenitora común de M. africanum, M. microti y M. bovis (3). Como tal, los resultados obtenidos con las comparaciones individuales BAC a BAC muestran que M. microti es parte de esta estirpe no M. tuberculosis de los bacilos de la tuberculosis, y esta suposición se confirmó adicionalmente secuenciando las regiones de unión de RD7-RD10 en M. microti OV254. Las secuencias obtenidas fueron idénticas a las de las cepas de M. africanum, M. bovis y M. bovis BCG. Aparte de estas cuatro regiones conservadas de diferencia, y phiRv1 (RD3), M. microti OV254 no mostró ninguna otra RD con regiones de unión idénticas a M. bovis BCG Pasteur, que pierde al menos 17 RD con relación a M. tuberculosis H37Rv (1, 13, 35). Sin embargo, se identificaron otras cinco regiones perdidas del genoma de M. microti OV254 con relación a M. tuberculosis H37Rv (RD1^{mic}, RD5^{mic}, MiD1, MiD2, MiD3). Tales regiones son específicas para la cepa OV254 o para las cepas de M. microti en general. De forma interesante, dos de estas regiones, RD1^{mic}, RD5^{mic}, solapan parcialmente las RD de la M. bovis BCG.
Los antígenos ESAT-6 y CFP-10 están ausentes de M. microti . Uno de los hallazgos más interesantes de la comparación de BAC a BAC fue una nueva supresión en la región genómica próxima al origen de replicación (figura 5). La PCR detallada y el análisis de secuencias de esta región en M. microti OV254 mostró que faltaba un segmento de 14 kb (equivalente a M. tuberculosis H37Rv de 4340,4 a 4354,5 kb) que solapó parcialmente RD1^{bcg} ausente de M. bovis BCG. De forma más precisa, los ORF Rv3864 y Rv3876 están truncados en M. microti OV254 y los ORF Rv3865 a Rv3875 están ausentes (figura 6). Esta observación es particularmente interesante ya que el análisis genómico comparativo previo identificó RD1^{bcg} como la única región de RD que está ausente específicamente de todas las subcepas de BCG, pero que está presente en todos los otros miembros del complejo de M. tuberculosis (1, 4, 13, 29, 35). Como se muestra en la Figura 6, en M. microti OV254 la supresión de RD1^{mic} es responsable de la pérdida de una gran porción de la región central de la familia ESAT-6 conservada (40), incluyendo los genes que codifican los antígenos de células T principales ESAT-6 y CFP-10 (2, 15). El hecho de que protocolos de identificación de supresión previos emplearan secuencias de cebadores que se diseñaron para la porción de la mano derecha de la región de RD1^{bcg} (es decir, gen Rv3878) (6, 39) explica por qué la supresión de RD1^{mic} no se detectó antes mediante estas investigaciones. La Figura 6 muestra que RD1^{mic} no afecta a los genes Rv3877, Rv3878 y Rv3879 que son parte de la supresión de RD1^{bcg}.
Supresión de los genes de fosfolipasa C en M. microti OV254. RD5^{mic}, la otra región ausente de M. microti OV254, que solapó parcialmente una región RD de BCG, se reveló mediante comparación del clon de BAC Mi18A5 con BAC Rv143 (figura 5). El análisis mediante PCR y la secuenciación de la región de unión reveló que RD5^{mic} fue más pequeño que la supresión de RD5 en BCG (Tabla 1 y 2 más abajo).
TABLA 1 Descripción de la función putativa de los ORF suprimidos y truncados en M. microti OV254
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TABLA 2 Secuencia en la unión de las regiones suprimidas en M. microti OV254
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De hecho, M. microti OV254 carece de los genes plcA, plcB, plcC y de dos genes codificantes de la proteína PPE-específicos (Rv2352, Rv2353). Esto se confirmó por la ausencia de una banda clara en una transferencia Southern de ADN genómico digerido mediante AseI a partir de M. microti OV254 hibridado con una sonda de plcA. Sin embargo, los genes Rv2346c y Rv2347c, miembros de la familia de esat-6, y Rv2348c, que faltan en las cepas de M. bovis y BCG (3) todavía están presentes en M. microti OV254. La presencia de un elemento IS6110 en este segmento sugiere que la recombinación entre dos elementos IS6110 podría haber estado implicada en la pérdida de RD5^{mic}, y esto está apoyado por el hallazgo de que la copia que queda de IS6110 no muestra una repetición directa de 3 pares de bases en la cepa OV254 (Tabla 2).
La falta de MiD1 proporciona una pista genómica para el espoligotipo característico de M. microti OV254. MiD1 comprende los tres ORF Rv2816, Rv2817 y Rv2818 que codifican proteínas putativas cuyas funciones todavía no se conocen, y ha aparecido en la región de repetición directa (DR), un locus polimórfico en los genomas de los bacilos de la tuberculosis que contiene un racimo de repeticiones directas de 36 pb, separadas por secuencias espaciadoras únicas de 36 a 41 pb (17), (figura 7). La presencia o ausencia de 43 secuencias espaciadoras únicas que intercalan las secuencias de DR es la base del oligotipado del espaciador, un método de tipaje poderoso para cepas procedentes del complejo de M. tuberculosis (23). Los aislados de M. microti muestran un espoligotipo característico con un racimo de DR inusualmente pequeño, debido a la presencia de sólo espaciadores 37 y 38 (43). En M. microti OV254, la ausencia de los espaciadores 1 a 36, que están presentes en muchas otras cepas del complejo de M. tuberculosis, parece resultar de una supresión de 636 pb de la región de DR mediada por IS6110. La amplificación y el análisis de restricción mediante PvuII de un fragmento de 2,8 kb obtenido con cebadores localizados en los genes que flanquean la región DR (Rv2813c y Rv2819) mostró que sólo hay una copia de IS6110 que queda en esta región (figura 7). Este elemento IS6110 se inserta en el ORF Rv2819 en la posición 3.119.932 con relación al genoma de M. tuberculosis H37Rv. Al igual que para otros elementos de IS6110 que resultan de la recombinación homóloga entre dos copias (7), no se encontraron repeticiones directas de 3 pares de bases para esta copia de IS6110 en la región DR. Con respecto a la ausencia de los espaciadores 39-43 (figura 7), se encontró que M. microti mostró una organización de este locus ligeramente diferente que las cepas de M. bovis, que también carecen característicamente de los espaciadores 39-43. En M. microti OV254, se encontró un espaciador extra de 36 pb que no estaba presente en M. bovis ni en M. tuberculosis H37Rv. La secuencia de este espaciador específico fue idéntica a la del espaciador 58 dado a conocer por van Embden y colegas (42). En su estudio de la región DR en muchas cepas procedentes del complejo de M. tuberculosis, este espaciador se encontró sólo en la cepa NLA000016240 de M. microti (AF189828) y en algunas cepas de M. tuberculosis ancestrales (3, 42). Al igual que MiD1, muy probablemente MiD2 resulta de una supresión de dos genes (Rv3188, Rv3189) que codifican proteínas putativas cuya función es desconocida (Tabla 2 más arriba y Tabla 3 a continuación).
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TABLA 3 Presencia de las regiones RD y MiD en diferentes cepas de M. microti
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Ausencia de algunos miembros de la familia PPE en M. microti . MiD3 se identificó mediante la ausencia de dos sitios HindIII en BAC Mi4B9 que existen en las posiciones 3749 kb y 3754 kb en el cromosoma de M. tuberculosis H37Rv. Mediante PCR y análisis de secuencias, se determinó que MiD3 corresponde a una supresión de 12 kb que ha truncado o eliminado cinco genes ortólogos a Rv3345c-Rv3349c. Rv3347c codifica una proteína de 3157 aminoácidos que pertenece a la familia PPE, y Rv3346c codifica una proteína conservada que también está presente en M. leprae. La función de estas dos proteínas putativas es desconocida, mientras que Rv3348 y Rv3349 son parte de un elemento de inserción (Tabla 1). Actualmente, las consecuencias de las supresiones de MiD3 para la biología de M. microti sigue siendo totalmente desconocida.
ADN extra en M. microti OV254 con relación a M. tuberculosis H37Rv. M. microti OV254 posee las seis regiones RvD1 a RvD5 y TBDI que están ausentes de la cepa secuenciada M. tuberculosis H37Rv, pero que se ha demostrado que están presentes en otros miembros del complejo de M. tuberculosis como M. canettii, M. africanum, M. bovis, y M. bovis BCG (3, 7, 13). En M. tuberculosis H37Rv, cuatro de estas regiones (RvD2-5) contienen una copia de IS6110 que no está flanqueada por una repetición directa, sugiriendo que la recombinación de dos elementos de IS6110 estaba implicada en la supresión de las regiones genómicas que intervienen (7). En consecuencia, parece plausible que estas regiones se suprimieron del genoma de M. tuberculosis H37Rv en vez de ser adquiridas específicamente por M. microti. Además, también se han encontrado otras tres pequeñas inserciones, y son debidas a la presencia de un elemento IS6110 en una localización diferente de aquella en M. tuberculosis H37Rv y M. bovis AF2122/97. De hecho, el análisis de RFLP mediante PvuII de M. microti OV254 revela 13 elementos IS6110 (datos no mostrados).
Diversidad genómica de las cepas de M. microti . A fin de obtener una foto más global de la organización genética del taxón M. microti, se evaluó la presencia o ausencia de las regiones variables encontradas en la cepa OV254 en otras ocho cepas de M. microti. Estas cepas que se aislaron de seres humanos y topillos se han designado como M. microti principalmente en base a su espoligotipo específico (26, 32, 43), y se pueden dividir adicionalmente en subgrupos según el hospedante, tales como topillos, llama y seres humanos (Tabla 3). Como se señala en la introducción, M. microti se encuentra raramente en seres humanos, a diferencia de M. tuberculosis. Así, la disponibilidad de 9 cepas procedentes de fuentes variables para la caracterización genética es una fuente excepcional. Entre ellas estaba una cepa (Myc 94-2272) procedente de un individuo gravemente inmunocomprometido (43), y cuatro cepas se aislaron de seres humanos positivos a VIH o negativos a VIH con espoligotipos típicos de aislados de llama y de ratón. Para una cepa, ATCC 35872/M.P. Praga, no se pudo identificar con certeza el hospedante original a partir del cual se aisló la cepa, ni si esta cepa corresponde a M. microti OV166, que se recibió por Dr. Sula de Dr. Wells y se usó después para el programa de vacunación en Praga en los años 1960 (38).
En primer lugar, interesaba saber si estas nueve cepas designadas como M. microti en base a sus espoligotipos también se asemejan entre sí por otros criterios de tipaje molecular. Puesto que RFLP de AND cromosómico separado mediante el gel en campo pulsado representa probablemente la estrategia de tipaje molecular más exacta para aislados bacterianos, se determinaron los perfiles de AseI de las cepas de M. microti disponibles, y se encontró que los perfiles se asemejaban entre sí estrechamente pero diferían significativamente de los patrones de macrorrestricción de las cepas de M. tuberculosis, M. bovis y M bovis BCG usadas como controles. Sin embargo, como se representa en la Figura 8A, los patrones no fueron idénticos entre sí, y cada cepa de M. microti mostró diferencias sutiles, sugiriendo que no estaban epidemiológicamente relacionadas. Se hizo una observación similar con otras enzimas de restricción de corte raras, como DraI o XbaI (datos no mostrados).
Características comunes y divergentes de las cepas de M. microti . Se usaron dos estrategias para ensayar la presencia o ausencia de regiones variables en estas cepas para las cuales no se tienen librerías BAC ordenadas. En primer lugar, se emplearon PCR usando cebadores internos y de flanqueo de las regiones variables, y se amplificaron los productos de amplificación de las regiones de unión. En segundo lugar, se obtuvieron sondas procedentes de la porción interna de las regiones variables ausentes de M. microti OV254 mediante amplificación de ADN de M. tuberculosis H37Rv usando cebadores específicos. La hibridación con estas sondas radiomarcadas se llevó a cabo sobre transferencias procedentes de digestiones de restricción mediante AseI separadas mediante PFGE de las cepas de M. microti. Además, se confirmaron los hallazgos obtenidos mediante estas dos técnicas usando un macrochip enfocado, que contiene alguno de los genes identificados hasta la fecha en regiones variables de los bacilos de la tuberculosis (datos no mostrados).
Esto condujo al hallazgo de que la supresión de RD1^{mic} es específica para todas las cepas de M. microti ensayadas.
De hecho, ninguna de las digestiones de ADN de M. microti se hibridó con la sonda de esat-6 radiomarcada (Fig. 8B), sino con la región de flanqueo de RD1^{mic} (Fig. 8C). Además, la amplificación mediante PCR usando cebadores que flanquean la región de RD1^{mic} (Tabla 2) produjo fragmentos del mismo tamaño para cepas de M. microti, mientras que no se obtuvieron productos para las cepas de M. tuberculosis, M. bovis y M. bovis BCG (Fig. 9). Además, la secuencia de la región de unión se encontró idéntica entre las cepas, lo que confirma que la organización genómica del locus de RD1^{mic} fue la misma en todas las cepas de M. microti ensayadas (Tabla 3). Esto demuestra claramente que M. microti carece de la región central de la familia ESAT-6 conservada que abarcan en otros miembros del complejo de M. tuberculosis desde Rv3864 a Rv3876 y, como tal, representa un taxón de mutantes de supresión de ESAT-6/CFP-10 de origen natural.
Al igual que RD1^{mic}, se encontró que MiD3 estaba ausente en las nueve cepas de M. microti ensayadas, y por lo tanto parece que es un marcador genético específico que está restringido en las cepas de M. microti (Tabla 3). Sin embargo, la amplificación mediante PCR mostró que RD5^{mic} está ausente sólo en los aislados OV254, OV216 y OV183 de topillos, pero está presente en las cepas de M. microti aisladas de ser humano y de otros orígenes (Tabla 3). Esto se confirmó por la presencia de bandas individuales pero de tamaños diferentes en una transferencia Southern hibridada con una sonda plcA para todas las cepas de M. microti ensayadas, excepto OV254 (Fig. 8D). De forma interesante, la presencia o ausencia de RD5^{mic} se correlaciona con la similitud de los perfiles de RFLP de IS6110. Los perfiles de las tres cepas de M. microti aisladas de topillos en Reino Unido difirieron considerablemente de los patrones de RFLP de IS6110 de aislados humanos (43). Tomados en conjunto, estos resultados subrayan la implicación propuesta de la supresión mediada por IS6110 de la región RD5, y sugieren además que RD5 puede estar implicada en el potencial variable de las cepas de M. microti para provocar una enfermedad en seres humanos. De forma similar, se encontró que MiD1 estaba ausente sólo de los aislados OV254, OV216 y OV183 de topillos, que presentan el mismo espoligotipo (43), confirmando las observaciones de que MiD1 confiere el espoligotipo particular de un grupo de cepas de M. microti aisladas de topillo. Por el contrario, el análisis mediante PCR reveló que MiD1 está sólo parcialmente suprimido de las cepas B3 y B4 caracterizadas ambas por el espoligotipo de ratón y el aislado humano M. microti Myc 94-2272 (Tabla 3). Para la cepa ATCC 35782, no se observó la supresión de la región de MiD1. Estos hallazgos se correlacionan con los espoligotipos descritos de los diferentes estados, puesto que las cepas que tuvieron regiones MiD1 intactas o parcialmente suprimidas tuvieron más espaciadores presentes que los aislados de topillos que sólo mostraron los espaciadores 37 y 38.
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2.3 Comentarios y discusión
Se han buscado variaciones genómicas importantes, debidas a sucesos de inserción-supresión, entre el patógeno del topillo, M. microti, y el patógeno del ser humano, M. tuberculosis. La genómica comparativa a base de BAC condujo a la identificación de 10 regiones ausentes del genoma del bacilo del topillo M. microti OV254 y varias inserciones debidas a IS6110. Siete de estas regiones de supresión también estaban ausentes de otras ocho cepas de M. microti, aisladas de topillos o de seres humanos, y dan cuenta de más de 60 kb de ADN genómico. De estas regiones, RD1^{mic} es de particular interés, debido a que se ha encontrado que la ausencia de parte de esta región está restringida hasta la fecha a las cepas de la vacuna de BCG. Puesto que M. microti se describió originalmente como no patógena para seres humanos, se propone aquí que los genes de RD1 están implicados en la patogenicidad para seres humanos. Esto está reforzado por el hecho de que RD1^{bcg} (29) tiene ORF putativos perdidos que pertenecen al racimo de genes de esat-6, incluyendo los genes que codifican ESAT-6 y CFP-10 (Fig. 6) (40). Se ha demostrado que ambos polipéptidos actúan como estimuladores potentes del sistema inmunitario y son antígenos reconocidos durante las etapas tempranas de infección (8, 12, 20, 34). Además, la importancia biológica de esta región RD1 para micobacterias está subrayada por el hecho de que también está conservada en M. leprae, en la que los genes ML0047-ML0056 muestran similitudes elevadas en su secuencia y organización de operones frente a los genes en la región central de esat-6 de los bacilos de la tuberculosis (11). A pesar del decaimiento génico radical observado en M. leprae, el operón de esat-6 aparentemente ha conservado su funcionalidad en este organismo.
Sin embargo, la supresión de RD1 puede no ser la única razón por la que el bacilo del topillo está atenuado para seres humanos. De hecho, sigue no estando claro por qué ciertas cepas de M. microti incluidas en el presente estudio, que muestran exactamente la misma supresión de RD1^{mic} que los aislados de topillos, se han encontrado como agentes causales de la tuberculosis humana. Puesto que los casos de M. microti humanos son extremadamente raros, la explicación más plausible para este fenómeno sería que las personas infectadas fuesen particularmente susceptibles a las infecciones micobacterianas en general. Esto podría haber sido debido a una inmunodeficiencia (32, 43) o una predisposición genética rara del hospedante tal como modificación del receptor de interferón gamma o de IL-12 (22).
Además, el hallazgo de que los aislados de M. microti humanos difirieron de los aislados de topillos por la presencia de la región RD5^{mic} también puede tener un impacto sobre el potencial incrementado de los aislados de M. microti humanos para provocar la enfermedad. De forma intrigante, BCG y el bacilo de los topillos carecen de porciones solapantes de esta región cromosómica que engloba tres (plcA, plcB, plcC) de los cuatro genes que codifican fosfolipasa C (PLC) en M. tuberculosis. La PLC se ha reconocido como un factor de virulencia importante en numerosas bacterias, incluyendo Clostridium perfringens, Listeria monocytogenes y Pseudomonas aeruginosa, en las que desempeña un papel en la extensión célula a célula de bacterias, supervivencia intracelular, y citolisis (36, 41). Hasta la fecha, el papel exacto de PLC para los bacilos de la tuberculosis sigue siendo incierto. plcA codifica el antígeno mtp40 que se ha demostrado previamente que está ausente de siete aislados de topillo e hyrax ensayados (28). Se ha dado a conocer (21, 47) la actividad de fosfolipasa C en M. tuberculosis, M. microti y M. bovis, pero no en M. bovis BCG. Sin embargo, las actividades de PLC y esfingomielinasa se han encontrado asociadas con las especies micobacterianas más virulentas (21). Los niveles de actividad de fosfolipasa C detectados en M. bovis fueron mucho menores que aquellos observados en M. tuberculosis, consistente con la pérdida de plcABC. Es probable que plcD sea responsable de la actividad de fosfolipasa C residual en cepas que carecen de RD5, tal como M. bovis y M. microti OV254. De hecho, el gen de plcD está localizado en la región RvD2 que está presente en algunos pero no en todos los bacilos de la tuberculosis (13, 18). Los genes que codifican la fosfolipasa se han reconocido como puntos calientes para la integración de IS6110 y parece que las regiones RD5 y RvD2 sufren procesos de supresión independientes más frecuentemente que cualquier otra región genómica (44). De este modo, la virulencia de algunas cepas de M. microti puede ser debida a una combinación de genes que codifican fosfolipasa C funcionales (7, 25, 26, 29).
Otro detalle intrigante revelado por este estudio es que entre los genes suprimidos siete codifican miembros de la familia PPE de proteínas ricas en Gly, Ala, Asn. Un vistazo más concienzudo de las secuencias de estos genes mostró que en algunos casos fueron proteínas pequeñas con secuencias únicas, como por ejemplo Rv3873, localizada en la región de RD1^{mic}, o Rv2352c y Rv2353c localizadas en la región de RD5^{mic}. Otras, como Rv3347c, localizadas en la región de MiD3, codifican una proteína PPE mucho más grande (3157 aa). En este caso, un gen vecino (Rv3345c), que pertenece a otra familia multigénica, la familia PE-PGRS, se vio parcialmente afectado por la supresión de MiD3. Mientras que la función de las proteínas PE/PPE actualmente es desconocida, su abundancia predicha en el proteoma de M. tuberculosis sugiere que pueden desempeñar un papel importante en el ciclo vital de los bacilos de la tuberculosis. De hecho, recientemente se demostró que algunas de ellas estaban implicadas en la patogenicidad de las cepas de M. tuberculosis (9). La complementación de tales regiones genómicas en M. microti OV254 debería permitirnos llevar a cabo estudios proteómicos y de virulencia en animales a fin de comprender el papel de tales ORF en la patogénesis.
En conclusión, este estudio ha demostrado que M. microti, un taxón originalmente nombrado después de su hospedante principal Microtus agrestis, el topillo común, representa un grupo relativamente homogéneo de bacilos de la tuberculosis. Aunque todas las cepas ensayadas mostraron patrones de macrorrestricción de PFGE únicos que difirieron ligeramente entre sí, se han identificado supresiones que fueron comunes para todos los aislados de M. microti (RD7-RD10, MiD3, RD1^{mic}). La naturaleza conservada de estas supresiones sugiere que estas cepas derivan de un precursor común que ha perdido estas regiones, y su pérdida puede dar cuenta de algunas de las propiedades fenotípicas comunes observadas de M. microti, como el crecimiento muy lento sobre medios sólidos y la formación de colonias minúsculas. Este hallazgo es consistente con los resultados de un estudio reciente que mostró que las cepas de M. microti poseen una mutación particular en el gen gyrB (31).
De particular interés, algunos de estos rasgos comunes (por ejemplo las regiones de flanqueo de RD1^{mic}, o MiD3) se podrían explotar para un ensayo de identificación mediante PCR de fácil realización, similar al propuesto para un intervalo de bacilos de la tuberculosis (33). Este ensayo permite la identificación unívoca y rápida de aislados de M. microti a fin de obtener una mejor estimación de la tasa global de infecciones por M. microti en seres humanos y en otras especies de mamíferos.
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Listado de secuencias provisional
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Claims (4)

1. Cepa de M. bovis BCG::RD1 que tiene integrado el fragmento RD1-2F9 (\sim32 kb) según se clona en el cósmido aquí denominado como RD1-2F9 contenido en la cepa de E. coli depositada en el CNCM con el número de acceso 1-2831.
2. Uso de un cósmido denominado en el presente documento RD1-2F9 contenido en la cepa de E. coli depositado en el CNCM con el número de acceso 1-2831 para transformar M. bovis BCG.
3. Composición farmacéutica que comprende una cepa según la reivindicación 1 y un vehículo farmacéuticamente aceptable.
4. Composición farmacéutica según la reivindicación 3, que contiene vehículos adecuados farmacéuticamente aceptables que comprenden excipientes y auxiliares que facilitan el procesamiento de la vacuna viva en preparaciones que se pueden usar farmacéuticamente.
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