ES2346591T3 - Moduladores de la actividad del receptor de quimiocina, formas cristalinas y procedimientos. - Google Patents
Moduladores de la actividad del receptor de quimiocina, formas cristalinas y procedimientos.Info
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Abstract
Un compuesto, N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo.
Description
Moduladores de la actividad del receptor de
quimiocina, formas cristalinas y procedimientos.
La presente invención proporciona
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)
quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-il)ciclohexil)acetamida o una sal farmacéuticamente aceptable de la misma, que tiene una combinación inesperada de características farmacológicas deseables. También se proporcionan las formas cristalinas de la presente invención. Las composiciones farmacéuticas que contienen las mismas y las mismas para su uso como agentes para el tratamiento de enfermedades inflamatorias, alérgicas, autoinmunes, metabólicas, cáncer y/o enfermedades cardiovasculares también es un objetivo de la presente invención.
quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-il)ciclohexil)acetamida o una sal farmacéuticamente aceptable de la misma, que tiene una combinación inesperada de características farmacológicas deseables. También se proporcionan las formas cristalinas de la presente invención. Las composiciones farmacéuticas que contienen las mismas y las mismas para su uso como agentes para el tratamiento de enfermedades inflamatorias, alérgicas, autoinmunes, metabólicas, cáncer y/o enfermedades cardiovasculares también es un objetivo de la presente invención.
Las quimiocinas son citoquinas quimiotácticas,
de peso molecular 6-15 kDa, que se liberan mediante
una gran variedad de células para atraer y activar, entre otros
tipos celulares, macrófagos, linfocitos T y B, eosinófilos,
basófilos y neutrófilos (revisado en: Charo y Rasonhoff, New Eng. J.
Med. 2006, 354, 610-621; Luster, New Eng. J. Med.
1998, 338, 436-445 y Rollins, Blood 1997, 90,
909-928). Hay dos clases principales de quimiocinas.
CXC y CC, dependiendo de si las dos primeras cisteínas en la
secuencia de aminoácidos están separadas mediante un único
aminoácido (CXC) o son adyacentes (CC). Las quimiocinas CXC, tales
como interleucina-8 (IL-8), la
proteína activadora de neutrófilos-2
(NAP-2) y la proteína de actividad estimuladora del
crecimiento de melanomas (MGSA) son quimiotácticos primariamente
para neutrófilos y linfocitos T, mientras que las quimiocinas CC,
tales como RANTES, MIP-1\alpha,
MIP-1\beta, las proteínas quimiotácticas de
monocitos (MCP-1, MCP-2,
MCP-3, MCP-4 y
MCP-5) y las eotaxinas (-1 y -2) son quimiotácticas
para, entre otros tipos celulares, macrófagos, linfocitos T,
eosinófilos, células dendríticas, y basófilos. También existen las
quimiocinas linfotactina-1,
linfotactina-2 (ambas quimiocinas C) y fractalquina
(una quimiocina CX_{3}C) que no se clasifican en ninguna de las
subfamilias de quimiocinas principales.
Las quimiocinas se unen a receptores específicos
de la superficie celular que pertenecen a la familia de proteínas
de siete dominios transmembrana acopladas a proteínas G (revisado
en: Horuk, Trends Pharm. Sci. 1994, 15, 159-165)
que se denominan "receptores de quimiocinas". En la unión a sus
ligandos afines, los receptores de quimiocina transducen una señal
intracelular aunque las proteínas G triméricas asociadas, que
producen, entre otras respuestas, un rápido aumento en la
concentración de calcio intracelular, cambios en la forma celular,
expresión aumentada de moléculas de adhesión celular, desgranulación
y promoción de la migración celular. Hay al menos diez receptores
de quimiocinas humanos que se unen o responden a las quimiocinas CC
con los siguientes patrones de características (revisado en Zlotnik
y Oshie Immunity 2000, 12, 121): CCR-1 (o
"CKR-1" o
"CC-CKR-1")
[MIP-1\alpha, MCP-3,
MCP-4, RANTES] (Ben-Barruch, y col.,
Cell 1993, 72, 415-425, y Luster, New Eng. J. Med,
1998, 338, 436-445); CCR-2A y
CCR-2B (o
"CKR-2A7"/"CKR-2B" o
"CC-CKR-2A7"
"CC-CKR-2B")
[MCP-1, MCP-2,
MCP-3, MCP-4, MCP-5]
(Charo. y col., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1994, 91,
2752-2756, y Luster, New Eng. J. Med. 1998, 338,
436-445); CCR-3 (o
"CKR-3" o
"CC-CKR-3")
[eotaxina-1, eotaxina-2, RANTES,
MCP-3, MCP-4] (Combadiere, y col.,
J. Biol. Chem. 1995, 270, 16491-16494, y Luster, New
Eng. J. Med. 1998, 338, 436-445);
CCR-4 (o "CKR-4" o
"CC-CKR-4") [TARC, MDC] (Power,
y col., J. Biol. Chem. 1995, 270,19495-19500, y
Luster, New Eng. J. Med. 1998, 338, 436-445);
CCR-5 (o "CKR-5" o
"CC-CKR-5")
[MIP-1\alpha, RANTES.
MIP-1\beta] (Sanson, y col., Biochemistry 1996,
35, 3362-3367); CCR-6 (o
"CKR-6" o
"CC-CKR-6") [LARC] (Baba, y
col., J. Biol. Chem. 1997, 272, 14893-14898);
CCR-7 (o "CKR-7" o
"CC-CKR-7") [ELC] (Yoshie y
col., J. Leukoc. Biol. 1997, 62, 634-644);
CCR-8
(o "CKR-8" o "CC-CKR-8") [1-309] (Napolitano y col, J. Immunol, 1996, 157, 2759-2763); CCR-10 (o "CKR-10" o "CC-CKR-10") [MCP-1, MCP-3] (Bonini, y col., DNA y Cell Biol. 1997, 16, 1249-1256); y CCR-11 [MCP-1, MCP-2, y MCP-4] (Schweickert, y col., J. Biol. Chem. 2000, 275, 90550).
(o "CKR-8" o "CC-CKR-8") [1-309] (Napolitano y col, J. Immunol, 1996, 157, 2759-2763); CCR-10 (o "CKR-10" o "CC-CKR-10") [MCP-1, MCP-3] (Bonini, y col., DNA y Cell Biol. 1997, 16, 1249-1256); y CCR-11 [MCP-1, MCP-2, y MCP-4] (Schweickert, y col., J. Biol. Chem. 2000, 275, 90550).
Además de los receptores de quimiocinas de
mamíferos, los citomegalovirus de mamíferos, los herpesvirus y los
poxvirus han mostrado que expresan, en células infectadas, proteínas
con las propiedades de unión de los receptores de quimiocinas
(revisado en: Wells y Schwartz, Curr. Opin. Biotech. 1997, 8,
741-748). Las quimiocinas CC humanas, tales como
RANTES y MCP-3, pueden producir movilización rápida
del calcio mediante estos receptores codificados viralmente. La
expresión de receptores puede ser permisiva para la infección
teniendo en cuenta la subversión de la supervivencia y la respuesta
normal del sistema inmune frente a la infección. Adicionalmente,
los receptores de quimiocinas humanos, tales como CXCR4, CCR2, CCR3,
CCR5 y CCR8, pueden actuar como correceptores para la infección de
células de mamíferos mediante microbios como con, por ejemplo, los
virus de la inmunodeficiencia humana (VIH).
Las quimiocinas y sus receptores afines se han
implicado como mediadores importantes de los trastornos y
enfermedades inflamatorios, infecciosos e inmunorreguladores,
incluyendo el asma y las enfermedades alérgicas; así como
patologías autoinmunes tales como artritis reumatoide y esclerosis
múltiple y enfermedades metabólicas, tales como ateroesclerosis y
diabetes (revisado en: Charo y Rasonhoff, New Eng. J. Med. 2006,
354, 610-621; Z. Gao y W. A. Metz, Chem. Rev. 2003,
103, 3733; P. H. Carter, Current Opinion in Chemical Biology, 2002,
6, 510; Trivedi, y col., Ann. Reports Med. Chem. 2000, 35, 191;
Sanders y Tarby, Drug Disc. Today 1999, 4, 80; Premack y Schall,
Nature Medicine 1996,2,1174). Por ejemplo, la quimiocina
quimioatractante de monocitos 1 (MCP-1) y su
Receptor 2 de Quimiocina CC (CCR-2) desempeñan una
función esencial en la atracción de leucocitos a sitios de
inflamación y en la posterior activación de estas células. Cuando la
quimiocina MCP-1 se une a CCR-2,
esto induce un rápido aumento en la concentración de calcio
intracelular, expresión aumentada de moléculas de adhesión celular
y la promoción de la migración de leucocitos. La demostración de la
importancia de la interacción
MCP-1/CCR-2 se ha proporcionado
mediante experimentos con ratones modificados genéticamente. Los
ratones MCP-1 -/- fueron incapaces de reclutar
monocitos en sitios de inflamación después de varios tipos
diferentes de desafíos inmunes (Bao Lu, y col., J. Exp. Med. 1998,
187, 601). De la misma manera, los ratones CCR-2-/
no fueron capaces de reclutar monocitos o producir
interferón-\gamma cuando se les expuso a varios
agentes exógenos; además, los leucocitos de ratones nulos para
CCR-2 no migraron en respuesta a
MCP-1 (Landin Boring, y col., J. Clin.
Invest. 1997, 100, 2552), por tanto demostraron la
especificidad de la interacción
MCP-1/CCR-2. Otros dos grupos
tuvieron resultados equivalentes indicados de manera independiente
con diferentes cepas de ratones CCR-2 -/- (William
A. Kuziel, y col., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1997, 94, 12053, y
Takao Kurihara, y col., J. Exp. Med. 1997, 186, 1757). La
viabilidad y generalmente la salud normal de animales
MCP-1 -/- y CCR-2 -/- es digna de
mención, ya que la alteración de la interacción
MCP-1/CCR2 no induce la crisis fisiológica. En
conjunto, estos datos conducen a la conclusión de que las moléculas
que bloquean las acciones de MCP-1/CCR2 serían
útiles en el tratamiento de varios trastornos inflamatorios y
autoinmunes (revisado en: M. Feria y F.
Diaz-Gonzalez, Exp. Opin. Ther. Patents 2006, 16,
49; y J. Dawson. W. Miltz, y C. Wiessner, C. Exp. Opin. Ther.
Targets 2003, 7, 35). Esta hipótesis no se ha validado en varios
modelos de enfermedad animales diferentes, como se divulga
posteriormente.
Se sabe que MCP-1 está
sobreregulado en pacientes con artritis reumatoide (Alisa Koch, y
col., J. Clin. Invest. 1992, 90, 772 - 779). Además, varios
estudios preclínicos han demostrado en valor terapéutico potencial
del antagonismo de la interacción MCP-1/CCR2 en el
tratamiento de la artritis reumatoide. Una vacuna de ADN que
codifica MCP-1 se mostró recientemente que mejoraba
la artritis crónica inducida por poliadyuvantes en ratas (Sawsan
Youssef, y col., J. Clin. Invest. 2000, 106, 361). De la misma
manera, los síntomas de la enfermedad se podrían controlar mediante
la administración directa de anticuerpos para MCP-1
para ratas con artritis inducida por colágeno (Hiroomi Ogata, y
col., J. Pathol. 1997, 182, 106) o artritis inducida por la pared
celular de estreptococos (Ralph C. Schimmer, y col., J. Immunol.
1998, 160, 1466). Quizás lo más significativo, un péptido
antagonista de MCP-1, MCP-1
(9-76), mostró tanto prevenir el comienzo de la
enfermedad como reducir los síntomas de la enfermedad (dependiendo
del tiempo de administración) en el modelo de ratón
MRL-lpr de artritis (Jiang-Hong
Gong, y col., J. Exp. Med. 1997,186,131). Además se ha demostrado
que la administración de pequeñas moléculas antagonistas de CCR2
redujo la puntuación clínica en modelos de roedores de artritis (C.
M. Brodmerkel, y col., J. Immunol. 2005, 175, 5370 y M. Xia, y col.,
Solicitud de Patente de Estados Unidos 0069123, 2006). La
administración de un anticuerpo anti-CCR2 tiene
efectos variables en CIA murina, dependiendo del tiempo de
administración (H. Bruhl, y col., J. Immunol. 2004, 172, 890).
Estudios recientes con ratones CCR2 -/- han sugerido que la
eliminación de CCR2 puede exacerbar los modelos de artritis de
roedores en circunstancias experimentales específicas (M. P.
Quinones, y col., J. Clin. Invest. 2004, 113, 856; M. P. Quinones, y
col., J. Mol. Med. 2006, 84, 503).
Se sabe que MCP-1 está
sobreregulado en lesiones ateroscleróticas, y se ha mostrado que los
niveles circulantes de MCP-1 se reducen a través
del tratamiento con agentes terapéuticos (Abdolreza
Rezaie-Majd, y col., Arterioscler. Thromb. Vase.
Biol. 2002, 22, 1194 -1199). Varios estudios claves han demostrado
el valor terapéutico potencial de los antagonistas de la
interacción MCP-1/CCR2 en el tratamiento de la
ateroesclerosis. Por ejemplo, cuando los ratones
MCP-1 -/- se cruzan con ratones deficientes en el
receptor de LDL se observó una reducción del 83% en la deposición
aórtica de lípidos (Long Gu, y col., Mol. Cell 1998, 2, 275). De
manera similar, cuando MCP-1 se eliminó
genéticamente de ratones que ya sobreexpresaban la apolipoproteína B
humana, los ratones resultantes estaban protegidos frente a la
formación de la lesión aterosclerótica en relación con ratones de
control MCP-1 +/+ apoB (Jennifa Gosling, y col., J
Clin. Invest. 1999, 103, 773). De la misma manera, cuando los
ratones CCR-2 -/- se cruzan con ratones
apolipoproteína E -/-, se observó un descenso significativo en la
incidencia de lesiones ateroscleróticas (Landin Boring, y col.,
Nature 1998, 394, 894; T. C. Dawson, y col., Atherosclerosis 1999,
143, 205). Finalmente, cuando se administra a ratones
apolipoproteína E -/- un gen que codifica un péptido antagonista de
CCR2, entonces el tamaño de lesión se disminuye y la estabilidad de
la placa aumenta (W. Ni, y col., Circulation 2001, 103, 2096 -
2101). El trasplante de médula ósea de ratones CCR2 -/- en ratones
ApoE3-Leiden inhibió la aterogénesis temprana (J.
Guo, y col., Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2003, 23, 447), pero
tuvo efectos mínimos en las lesiones avanzadas (J. Guo, y col.,
Arterioscler. Thromb. Vase. Biol. 2005, 25, 1014).
Los pacientes con diabetes mellitus de tipo 2
típicamente exhiben resistencia a la insulina como una de las
características distintivas de la enfermedad. La resistencia a la
insulina también se asocia con el agrupamiento de anormalidades
conocidas como el "síndrome metabólico" o "síndrome X",
que incluye obesidad, aterosclerosis, hipertensión y dislipidemia
(revisado en: Eckel, y col., Lancet 2005, 365, 1415). Se reconoce
ampliamente que la inflamación desempeña una función en la
exacerbación del proceso de enfermedad en diabetes de tipo 2 y las
patologías del "síndrome X" (revisado en: Chen, Pharmacological
Research 2006, 53, 469; Neels y Olefsky, J. Clin. Invest. 2006,
116, 33; Danadona y Aljada, Am J Cardiol. 2002 90,
27G-33G; Pickup y Crook, Diabetologia 1998, 41,
1241). Se reconoce que MCP-1 desempeña una función
en la resistencia a la insulina inducida por obesidad. En cultivo,
los preadipocitos humanos expresaron constitutivamente
MCP-1 (Gerhardt, Mol. Cell. Endocrinology 2001,
175, 81). El CCR2 se expresa en los adipocitos; la adición de
MCP-1 a los adipocitos diferenciados in vitro
disminuye el consumo de glucosa estimulado por insulina y la
expresión de varios genes adipogénicos (LpL, adipsina,
GLU-4), aP2, el receptor adrenérgico \beta3 y
PPAR\gamma (P. Sartipy y D. Loskutoff, Proc. Natl. Acad. Sci USA
1999, 96, 6902). Los pacientes con diabetes de tipo 2 tuvieron
mayores niveles de MCP-1 circulante que los
controles no diabéticos (S. Nomura, y col., Clin. Exp. Immunol.
2000, 121, 437) y la liberación de MCP-1 del tejido
adiposo se podría reducir mediante el tratamiento con terapias
antidiabéticas tales como metformina o tiazolidinedionas (J. M.
Bruun, y col., J. Clin. Endocrinol. Metab. 2005, 90, 2282). De la
misma manera, MCP-1 también se sobreexpresó en
modelos experimentales murinos de obesidad y lo produjo de manera
primaria el tejido adiposo (Sartipy y Loskutoff, Proc. Natl. Acad.
Sci. USA 2003, 100, 7265). En ratones obesos, la expresión de
MCP-1 tanto precedió como ocurrió concurrentemente
con el comienzo de las resistencias a la insulina (H. Xu, y col.,
J. Clin. Invest. 2003, 112, 1821). Otro estudio mostró que la
expresión de MCP-1 se correlacionaba positivamente
con la masa corporal en el tejido adiposo perigonadal de ratones
(Weisberg, y col., J. Clin. Invest. 2003, 112, 1796). Coherente con
estos datos, el desarrollo de la resistencia a insulina en ratones
db/db mejoró mediante la eliminación genética de MCP-
1 o mediante la expresión inducida por genes de un péptido negativo
dominante (H. Kanda, y col., J. Clin. Invest. 2006, 116, 1494). La
lógica inversa también se podría demostrar: la sobreexpresión de
MCP-1 en el tejido adiposo promovió la resistencia
a insulina (N. Kamei, y col., J. Biol. Chem. 2006, 281, 26602).
También ha aparecido un resultado conflictivo que muestra que la
eliminación genética de MCP-1 no afecta a la
resistencia a insulina en el ratón db/db (F. Y. Chow,
y col., Diabetologia 2007, 50, 471). Coherente con el dato de
MCP-1, los estudios directos con CCR2 (el receptor
de MCP-1) han mostrado que desempeña una función en
la formación de obesidad y en la resistencia a insulina inducida
por obesidad. El mantenimiento de una dieta rica en grasas aumentó
los números de monocitos inflamatorios CCR2^{+} circulantes tanto
en ratones de tipo silvestre (C. L. Tsou, y col., J. Clin. Invest.
2007, 117, 902) como en ratones ApoE^{-/-} (F. Tacke, y col., J.
Clin. Invest. 2007, 117, 185). La eliminación genética de CCR2
redujo los números de los macrófagos activados en tejido adiposo
murino (C. N. Lumeng, y col., Diabetes 2007, 56, 16), pero no
afectó a la población de macrófagos adiposos M2 que se cree que
mantienen el estado "delgado" (C. N. Lumeng, y col., J. Clin.
Invest. 2007,117,175). La eliminación genética de CCR2 redujo la
obesidad inducida por la dieta y mejoró la sensibilidad a insulina
en el modelo de obesidad inducida por la dieta (S. P. Weisberg, y
col., J. Clin. Invest. 2006, 116, 115; P Cornelius, RP Gladue, RS
Sebastian, patente Nº WO 2006/013427 A2), 2006), dependiendo de las
condiciones experimentales (A. Chen, y col., Obes. Res. 2005, 13,
1311). La administración de pequeñas moléculas antagonistas de CCR2
también mejoró la sensibilidad a insulina en este mismo modelo (S.
P. Weisberg, y col., J. Clin. Invest. 2006, 116, 115).
Dos estudios describieron la importante función
de CCR2 en la inflamación vascular inducida por hipertensión,
remodelación e hipertrofia (E Bush y col., Hypertension 2000, 36,
360; M Ishibashi, y col., Circ. Res. 2004, 94,
1203).
1203).
Se sabe que MCP-1 está
sobreregulado en la esclerosis múltiple humana, y ha mostrado que la
terapia eficaz con interferón \beta-1b reduce la
expresión de MCP-1 en las células mononucleares de
sangre periférica, lo que sugiere que MCP-1
desempeña una función en el progreso de la enfermedad (Carla
larlori, y col., J. Neuroimmunol. 2002,123,170 -179). Otros
estudios han demostrado el valor terapéutico potencial del
antagonismo de la interacción
MCP-1/CCR-2 en el tratamiento de la
esclerosis múltiple; todos estos estudios se han demostrado en
encefalomielitis autoinmune experimental (EAE), el modelo animal
convencional para la esclerosis múltiple. La administración de
anticuerpos para MCP-1 para animales con EAE
disminuyó significativamente la recaída de la enfermedad (K. J.
Kennedy, y col., J. Neuroimmunol. 1998, 92, 98). Además, dos
informes han mostrado que los ratones CCR-2-/- son
resistentes a EAE (B. T. Fife, y col., J. Exp. Med. 2000,192,899; L.
Izikson, y col., J. Exp. Med. 2000,192,1075). Un informe posterior
extendió estas observaciones iniciales examinando los efectos de la
eliminación de CCR2 en ratones de diferentes cepas (S. Gaupp, y
col., Am. J. Pathol. 2003, 162, 139). Notablemente, la
administración de pequeñas moléculas antagonistas de CCR2 también
mitigó el progreso de la enfermedad en ratones C57BL/6 (C. M.
Brodmerkel, y col., J. Immunol. 2005, 175, 5370).
Se sabe que MCP-1 está
sobreregulado en pacientes que desarrollan el síndrome de la
bronquiolitis obliterante después del trasplante de pulmón (Martine
Reynaud-Gaubert, y col., J. of Heart y Lung
Transplant., 2002, 21, 721-730; John Belperio, y
col., J. Clin. Invest. 2001, 108, 547-556). En un
modelo murino del síndrome de la bronquiolitis obliterante, la
administración de un anticuerpo frente a MCP-1
condujo a la atenuación de la obliteración de las vías
respiratorias; de la misma manera, los ratones CCR2 -/- fueron
resistentes a la obliteración de las vías respiratorias en este
mismo modelo (John Belperio, y col., J. Clin. Invest. 2001, 108,
547-556). Estos datos sugieren que el antagonismo de
MCP-1/CCR2 puede ser beneficioso en el tratamiento
del rechazo de órganos después del trasplante. Además, los estudios
han mostrado que la alteración del eje MCP-1/CCR2
fue capaz de prolongar la supervivencia del trasplante de isletas (I
Lee y col., J. Immunol 2003, 171, 6929; R Abdi y col., J Immunol
2004,172, 767). En modelos de injerto en ratas, CCR2 y
MCP-1 mostraron que estaban aumentados en injertos
que desarrollan vasculopatía de injerto (K Horiguchi y col., J Heart
Lung Transplant. 2002, 21, 1090). En otro estudio, la terapia
génica anti-MCP-1 atenuó la
vasculopatía de injerto (A Saiura y col., Artherioscler Thromb Vase
Biol 2004, 24, 1886). Un estudio describió la inhibición de
formación neointimal de injerto venoso mediante el bloqueo de
MCP-1 (H Tatewaki y col., J Vasc Surg. 2007, 45,
1236).
Otros estudios han demostrado el valor
terapéutico potencial del antagonismo de la interacción
MCP-1/CCR2 en el tratamiento del asma. El secuestro
de MCP-1 con un anticuerpo neutralizante en ratones
expuestos a ovoalbúmina dio como resultado una disminución notable
en la hiperresponsibidad e inflamación bronquial
(Jose-Angel Gonzalo, y col., J. Exp. Med.
1998,188,157). Esto probó que era posible reducir la inflamación de
las vías respiratorias alérgica en ratones expuestos a huevos de
Schistosoma mansoni a través de la administración de
anticuerpos contra MCP-1 (Nicholas W. Lukacs, y
col., J. Immunol. 1997, 158, 4398). Coherente con esto, los ratones
MCP-1 -/- presentaron una respuesta reducida a la
exposición a huevos de Schistosoma mansoni (Bao Lu, y col.,
J. Exp. Med. 1998, 187, 601).
Otros estudios han demostrado que valor
terapéutico potencial del antagonismo de la interacción
MCP-1/CCR2 en el tratamiento de la enfermedad
renal. La administración de anticuerpos contra MCP-1
en un modelo murino de glomerulonefritis dio como resultado una
disminución notable de la formación de la media luna glomerular y
la deposición del colágeno de tipo I (Clare M. Lloyd, y col., J.
Exp. Med. 1997, 185, 1371). Además, los ratones
MCP-1 -/- con nefritis por suero nefrotóxico
inducida mostraron un daño tubular significativamente menor que sus
equivalentes MCP-1+/+ (Gregory H. Tesch. y col., J.
Clin. Invest. 1999, 103, 73).
Varios estudios han demostrado el valor
terapéutico potencial del antagonismo de la interacción
MCP-1/CCR2 en el tratamiento del lupus sistémico
eritematoso. Los ratones CCR2 -/- exhibieron supervivencia
prolongada y enfermedad renal reducida en relación con sus
equivalentes TS en un modelo murino de lupus sistémico eritematoso
(G. Perez de Lema, y col., J. Am. Soc. Neph. 2005, 16, 3592). Estos
datos son coherentes con la actividad modificadora de la enfermedad
encontrada en estudios recientes en la eliminación genética de
MCP-1 (S. Shimizu, y col., Rheumatology (Oxford)
2004, 43, 1121; Gregory H. Tesch, y col., J. Exp. Med. 1999, 190,
1813) o la administración de un péptido antagonista de CCR2 (H.
Hasegawa, y col., Arthritis & Rheumatism 2003, 48, 2555) en
modelos de roedores de
lupus.
lupus.
Un aumento notable de 30 veces en linfocitos de
la lámina propia CCR2+ se observó en los intestinos delgados de
pacientes de Crohn en relación con íleos no enfermos (S. J. Connor,
y col., Gut 2004, 53, 1287). También cabe destacar, que había una
expansión en el subconjunto de monocitos
CCR2^{+}/CD14^{+}/CD56^{+} circulantes en pacientes con
enfermedad de Crohn activa en relación con los controles. Varios
estudios de roedores han demostrado el valor terapéutico potencial
del antagonismo de la interacción MCP-1/CCR2 en el
tratamiento de la enfermedad de Crohn/colitis. Se protegieron los
ratones CCR-2^{-/-} de los efectos de la colitis
inducida por sulfato de dextrano sódico (Pietro G. Andres, y col.,
J. Immunol. 2000, 164, 6303). La administración de pequeñas
moléculas antagonistas de CCR2, CCR5 y CXCR3 (afinidades de unión
murinas = 24, 236 y 369 nM, respectivamente) también protegidas
frente a la colitis inducida por sulfato de dextrano sódico (H.
Tokuyama, y col., Int. Immunol. 2005, 17, 1023). Finalmente, los
ratones MCP-1 -/- mostraron daño colónico
sustancialmente reducido (tanto macroscópico como histológico) en
un modelo de colitis inducida por haptenos (W. I. Khan, y col.,
Ant. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 2006, 291, G803).
Dos informes describieron la sobreexpresión de
MCP-1 en las células epiteliales intestinales y la
mucosa de intestino de pacientes con enfermedad inflamatoria del
intestino (H. C. Reinecker, y col., Gastroenterology 1995, 108, 40,
y Michael C. Grimm, y col., J. Leukoc. Biol. 1996, 59, 804).
Un estudio describió la asociación del
polimorfismo de promotores en el gen MCP-1 con
esclerodermia (esclerosis sistémica) (S Karrery col., J Invest
Dermatol. 2005,124, 92). En modelos relacionados de fibrosis de
tejidos, la inhibición del eje CCR2/MCP-1 redujo la
fibrosis en la piel (T Yamamoto y K Nishioka, J Invest Dermatol
2003, 121, 510; AM Ferreira y col., J Invest Dermatol. 2006, 126,
1900), pulmón (T Okuma y col., J Pathol. 2004, 204, 594; M
Gharaee-Kermani y col., Cytokine 2003, 24, 266),
riñón (K Kitagawa y col., Am J Patho/. 2004, 165, 237; T Wada y
col., J Am Soc Nephrol 2004, 15, 940), corazón (S Hayashidani y
col., Circulation 2003,108, 2134) e hígado (S Tsuruta y col., Int J
Mol Med. 2004,14, 837).
Un estudio ha demostrado el valor terapéutico
potencial del antagonismo de la interacción
MCP-1/CCR2 en el tratamiento de la alveolitis.
Cuando las ratas con daño pulmonar de los complejos inmunes de IgA
se trataron por vía intravenosa con anticuerpos desarrollados
contra MCP-1 de rata (JE), los síntomas de la
alveolitis se aliviaron parcialmente (Michael L. Jones, y col., J.
Immunol. 1992, 149, 2147).
Varios estudios han mostrado el valor
terapéutico potencial del antagonismo de la interacción
MCP-1/CCR2 en el tratamiento contra el cáncer
(revisado en: M. J. Craig y R. D. Loberg, Cancer Metastasis Rev.
2006, 25, 611; I. Conti y B. Rollins, Seminars in Cancer Biology.
2004, 14, 149; R. Giles y R. D. Loberg, Curr. Cancer Drug Targets
2006, 6, 659). Cuando los ratones inmunodeficientes que portaban
células de carcinoma de mama humano se trataron con un anticuerpo
anti-MCP-1, se observaron la
inhibición de la micrometástasis de pulmón e incrementos de la
supervivencia (Rosalba Salcedo, y col., Blood 2000, 96,
34-40). Usando especimenes clínicos de tumores
humanos, la expresión de CCR2 se asoció con la progresión del cáncer
de próstata (Y. Lu. y col., J. Cell. Biochem. 2007, 101, 676).
In vitro, se ha mostrado que la expresión de
MCP-1 media el crecimiento e invasión celular del
cáncer de próstata (Y. Lu, y col., Prostate 2006, 66, 1311); además,
el MCP-1 expresado por células cancerosas
prostáticas indujo progenitores de médula ósea humana para la
resorción ósea (Y. Lu, y col., Cancer Res. 2007, 67, 3646).
Múltiples estudios han descrito el valor
terapéutico potencial del antagonismo de la interacción
MCP-1/CCR2 en el tratamiento de la reestenosis. En
seres humanos, los niveles de MCP-1 se relacionan
directamente con el riesgo de reestenosis (F. Cipollone. y col.,
Arterioscler. Thromb. Vase. Biol. 2001, 21, 327). Los ratones
deficientes en CCR2 o en MCP-1 mostraron reducciones
en el área íntima y en el porcentaje de íntima/media (en relación
con camadas silvestres) después de daño arterial (Merce Roque, y
col., Arterioscler. Thromb. Vase. Biol. 2002, 22, 554; A. Schober,
y col., Circ. Res. 2004, 95, 1125; W. J. Kim, y col., Biochem
Biophys Res Commun. 2003, 310, 936). En ratones, la transfección de
un inhibidor negativo dominante de MCP-1 en el
músculo esquelético (K. Egashira, y col., Circ. Res. 2002, 90,1167)
también redujo la hiperplasia intimal después de un daño arterial.
El bloqueo de CCR2 usando un anticuerpo neutralizante redujo la
hiperplasia neointimal después de la colocación de endoprótesis
vasculares en primates (C. Horvath, y col., Circ. Res. 2002, 90,
488).
Dos informes divulgan la sobreexpresión de ratas
MCP-1 con trauma cerebral inducido (J. S. King, y
col., J. Neuroimmunol. 1994, 56, 127, y Joan W. Berman, y col., J.
Immunol. 1996, 156, 3017). Además, los estudios han mostrado que
tanto los ratones CCR2 -/- (O. B. Dimitrijevic, y col., Stroke 2007,
38, 1345) como los
\hbox{MCP-1 -/-} (P.
M. Hughes, y col., J. Cereb. Blood Flow Metab. 2002, 22, 308) están
protegidos parcialmente del daño por isquemia/reperfusión.
Se sabe que los monocitos/macrófagos desempeñan
una función importante en el desarrollo del dolor neuropático (Liu
T, van Rooijen N, Tracey DJ, Pain 2000, 86,
25). Coherente con este concepto, una función potencial para CCR2
en el tratamiento de tanto el dolor inflamatorio como el neuropático
se ha descrito recientemente. Los ratones CCR2 -/- mostraron
respuestas alteradas al dolor inflamatorio en relación con sus
equivalentes TS, incluyendo el comportamiento de dolor reducido
después de la inyección intraplantar de formalina y la alodinia
mecánica ligeramente reducida después de la inyección intraplantar
de CFA (C. Abbadie, y col., Proc. Natl. Acad. Sci., USA 2003, 100,
7947). Además, los ratones CCR2 -/- no presentaron alodinia mecánica
significativa después del daño en el nervio ciático. De la misma
manera, una pequeña molécula antagonista de CCR2 redujo la alodinia
mecánica al \sim80% de los niveles previos al daño después de la
administración oral (C. Abbadie, J. A. Lindia, y H. Wang, documento
WO PCT 110376, 2004).
Un estudio describió la función crítica de
MCP-1 en la cardiomiopatía isquémica (N. G.
Frangogiannis, y col., Circulation 2007, 115, 584). Otros estudio
describió la atenuación del fallo cardiaco experimental después de
la inhibición de MCP-1 (S Hayashidani y col.,
Circulation 2003, 108, 2134).
Otros estudios han proporcionado pruebas de que
MCP-1 se sobreexpresa en varios estados de
enfermedad que no se mencionan anteriormente. Estos informes
proporcionan pruebas correlativas de que los antagonistas de
MCP-1 podrían ser terapias útiles para tales
enfermedades. Otro estudio ha demostrado la sobreexpresión de
MCP-1 en aloinjertos cardiacos en roedores, lo que
sugiere una función para MCP-1 en la patogénesis de
la arteriosclerosis del trasplante (Mary E. Russell, y col., Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 1993, 90, 6086). Se ha destacado la
sobreexpresión de MCP-1 en las células endoteliales
pulmonares de pacientes con fibrosis pulmonar idiopática (Harry N.
Antoniades, y col., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1992, 89, 5371). De
manera similar, la sobreexpresión de MCP-1 se ha
sido destacado en la piel de pacientes con psoriasis (M. Deleuran, y
col., J. Dermatol. Sci. 1996, 13, 228 y R. Gillitzer, y col., J.
Invest. Dermatol. 1993, 101, 127); los hallazgos correlativos con
predominancia de células CCR2+ también se han notificado (C.
Vestergaard. y col., Acta Derm. Venerol. 2004, 84, 353).
Finalmente, un informe reciente ha mostrado que
MCP-1 se sobreexpresa en los cerebros y fluido
cerebroespinal de pacientes con demencia asociada al
VIH-1 (Alfredo Garzino-Demo,
documento Nº WO 99/46991).
Además, se ha mostrado que el polimorfismo de
CCR2 está asociado con la sarcoidosis al menos un subconjunto de
pacientes (P. Spagnolo, y col., Am JRespir Crit Care Med. 2003, 168,
1162).
También debe destacarse que se ha implicado a
CCR-2 como un correceptor para algunas cepas de VIH
(B. J. Doranz, y col., Cell 1996, 85, 1149). También se ha
determinado que el uso de CCR-2 como un correceptor
de VIH puede relacionarse con el progreso de la enfermedad (Ruth I.
Connor, y col., J. Exp. Med 1997, 185, 621). Este hallazgo es
coherente con el hallazgo reciente de que la presencia de un mutante
de CCR-2, CCR2-641, se relaciona
positivamente con el comienzo tardío de VIH en la población humana
(Michael W. Smith, y col., Science 1997, 277, 959). Aunque no se ha
implicado a MCP-1 en estos procedimientos, puede ser
que los antagonistas de MCP-1 que actúan mediante
la unión a CCR-2 puedan tener efectos terapéuticos
beneficiosos en el retraso del progreso de la enfermedad a SIDA en
pacientes infectados por VIH.
Debe destacarse que CCR2 también es el receptor
para las quimiocinas humanas MCP-2,
MCP-3 y MCP-4 (Luster, New Eng. J.
Med. 1998, 338, 436-445). Puesto que los nuevos
compuestos de fórmula (I) descritos en este documento antagonizan
con MCP-1 uniéndose al receptor
CCR-2, puede ser que estos compuestos de fórmula (I)
también sean antagonistas eficaces de las acciones de
MCP-2, MCP-3 y MCP-4
mediados por CCR-2. Por consiguiente, cuando se
hace referencia en este documento a "antagonismo de
MCP-1", debe asumirse que es equivalente a
"antagonistas de la estimulación por quimiocinas de
CCR-2".
Por consiguiente, los compuestos que modulan la
actividad de las quimiocinas podrían demostrar una amplia gama de
utilidades en el tratamiento de enfermedades inflamatorias,
alérgicas, autoinmunes, metabólicas, cancerosas y/o
cardiovasculares. La Publicación de la Solicitud de Patente de
Estados Unidos WO2005021500 A1 (incorporada en este documento por
referencia y asignada al presente solicitante) divulga compuestos
que modulan la actividad de MCP-1,
MCP-2, MCP-3 y MCP-4
mediante CCR2. La referencia también divulga distintos
procedimientos para preparar estos compuestos incluyendo síntesis
multietapa que incluye la introducción y la posterior retirada de
grupos protectores.
Se desea encontrar nuevos compuestos con
características farmacológicas mejoradas comparados con los
moduladores de quimiocinas conocidos. Por ejemplo, se desea
encontrar nuevos compuestos con la actividad inhibidora de
CCR-2 y selectividad para CCR-2
mejoradas frente a otros receptores acoplados a proteína G (es decir
el receptor 5HT2A). También se desea encontrar compuestos con
características ventajosas y mejoradas en una o más de las
siguientes categorías:
- (a)
- propiedades farmacéuticas (es decir solubilidad, permeabilidad, posibilidad de formulaciones de liberación sostenida);
- (b)
- requerimientos de dosificación (por ejemplo, dosis bajas y/o dosificación una vez por día);
- (c)
- factores que disminuyan las características pico a valle de la concentración sanguínea (es decir la eliminación y/o volumen de distribución);
- (d)
- factores que aumentan la concentración de fármaco activo en el receptor (es decir unión de proteínas, volumen de distribución);
- (e)
- Factores que disminuyen el inconveniente de las interacciones clínicas fármaco-fármaco (inhibición de la enzima del citocromo P450 o inducción, tales como inhibición de CYP 2D6, véase G. K. Dresser, J. D. Spence. D. G. Bailey, Clin. Pharmacokinet. 2000, 38, 41-57, que se incorpora en este documento por referencia);
- (f)
- factores que disminuyen el potencial para los efectos secundarios adversos (por ejemplo la selectividad farmacológica más allá de los receptores acoplados a proteínas G, la reactividad potencial química o metabólica, la penetración limitada del SNC, la selectividad del canal iónico). Es especialmente deseable encontrar compuestos que tienen una combinación deseable de las características farmacológicas anteriormente mencionadas.
\vskip1.000000\baselineskip
La presente invención proporciona un antagonista
nuevo o un agonista parcial/antagonista parcial de la actividad del
receptor de MCP-1:
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
o una sal farmacéuticamente aceptable de la misma, que tiene una
combinación no esperada de características farmacológicas
deseables. Las formas cristalinas de la presente invención también
se proporcionan. Las composiciones farmacéuticas que contienen las
mismas o las mismas para su uso como agentes para el tratamiento de
enfermedades inflamatorias, alérgicas, autoinmunes, metabólicas,
cancerosas y/o cardiovasculares son también un objetivo de la
presente invención.
La presente divulgación también proporciona el
uso de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
o una sal farmacéuticamente aceptable de la misma para la
fabricación de un medicamento para el tratamiento de las
enfermedades inflamatorias, alérgicas, autoinmunes, metabólicas,
cancerosas y/o enfermedades cardiovasculares.
\vskip1.000000\baselineskip
La Figura 1 divulga los patrones de polvo
experimentales y simulados de
N-((1R,2S,SR)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
sal del ácido di-bencenosulfónico Forma
N-1.
La Figura 2 divulga los patrones de polvo
experimentales y simulados de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre Forma N-2.
La Figura 3 divulga los patrones de polvo
experimentales y simulados de N-((1
R,2S,SR)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre (mono-etanolato) Forma
E-1.
La Figura 4 divulga los patrones de polvo
experimentales y simulados de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
sal de HCl (tetrahidrato) Forma H4-1.
La Figura 5 divulga los patrones de polvo
experimentales y simulados de
N-((1R,2S,SR)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre Forma A-1 (solvato
mono-acetona).
La Figura 6 divulga los patrones de polvo
experimentales y simulados de
N-((1R,2S,SR)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre (solvato mono-diclorometano) Forma
DC-1.
La Figura 7 divulga los patrones de polvo
experimentales y simulados de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre (solvato monoacetonitrilo) Forma
AN-3.
La Figura 8 divulga el análisis por calorimetría
diferencial de barrido del
N-((1R,2S,SR)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
sal di-besilato Forma
N-1.
N-1.
La Figura 9 divulga el análisis
termogravimétrico de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
sal di-besilato Forma N-1.
\newpage
La Figura 10 divulga el análisis por
calorimetría diferencial de barrido de N-((1
R,2S,SR)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre Forma
N-2.
N-2.
La Figura 11 divulga el análisis
termogravimétrico de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre Forma N-2.
La Figura 12 divulga la isoterma de absorción de
humedad de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre Forma N-2.
La Figura 13 divulga una estructura de cristal
de rayos X de
(1R,3R,4S)-3-acetamido-4-((S)-3-(benciloxicarbonila-
mino)-2-oxopirrolidin-1-il)ciclohexilcarbamato de terc-butilo.
mino)-2-oxopirrolidin-1-il)ciclohexilcarbamato de terc-butilo.
Figura 14. Modelo de peritonitis por TG de 4R
horas en ratones hCCR2 Kl: Ejemplo 1 de la inhibición de la
infiltración de monocitos/macrófagos en la cavidad peritoneal
(recuento celular diferencial).
Figura 15. Modelo de peritonitis por TG de 48
horas en ratones hCCR2 KI: Ejemplo 1 de la inhibición de la
infiltración de monocitos/macrófagos en la cavidad peritoneal
(análisis FACS).
Figura 16. EAE en ratones hCCR2 Kl: puntuación
clínica del tratamiento del Ejemplo 1.
\vskip1.000000\baselineskip
La presente invención proporciona un nuevo
antagonista o un agonista parcial/antagonista parcial de la
actividad del receptor de MCP-1:
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
o una sal farmacéuticamente aceptable de la misma, que tiene una
combinación inesperada de características farmacológicas deseables.
Las formas cristalinas de la presente invención también se
proporcionan. Las composiciones farmacéuticas que contienen las
mismas y las mismas para su uso como agentes para el tratamiento de
enfermedades inflamatorias, alérgicas, autoinmunes, metabólicas,
cancerosas y/o enfermedades cardiovasculares también son un objetivo
de la presente invención.
La
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
demuestra de manera inesperada una combinación deseable de
características farmacológicas incluyendo un grado
sorprendentemente alto de biodisponibilidad oral en combinación con
indicaciones de que es altamente eficaz y tiene excelentes
criterios de seguridad.
Los moduladores conocidos de receptores CCR2,
tales como aquellos descritos en la publicación de patente
WO2005021500 A1 publicada el 10 de marzo, 2005 (Patente de Estados
Unidos Nº 7.163.937, emitida el 16 de enero, 2007, asignada al
presente Solicitante) que demuestran un grado adecuado de
permeabilidad de membrana (un factor crítico para la
biodisponibilidad oral), no son suficientemente eficaces, como se
mide mediante su capacidad de unión a CCR2 (una medida de eficacia)
y/o su carencia de criterios adecuados de seguridad como se indica
mediante la selectividad de canales iónicos como se mide mediante
los estudios de canales iónicos hERG y Na+.
Por el contrario, como se ilustra mediante los
datos presentados en el presente documento en la sección denominada
"Características Farmacológicas Comparativas", posteriormente,
la molécula relativamente polar,
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
demuestra un grado sorprendentemente alto de permeabilidad de
membrana y a pesar de todo todavía mantiene la potente capacidad de
unión a CCR2 junto con la excelente selectividad de los canales
iónicos.
Por consiguiente, la presente invención
proporciona un nuevo modulador de quimiocinas que tiene
características farmacológicas mejoradas y que se espera que sea
útil en el tratamiento de las enfermedades inflamatorias,
alérgicas, autoinmunes, metabólicas, cancerosas y
cardiovasculares.
\vskip1.000000\baselineskip
En una realización, la descripción se refiere a
N-((1R,2S,SR)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(tri-
fluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida y sales farmacéuticamente aceptables de la misma.
fluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida y sales farmacéuticamente aceptables de la misma.
Otra realización es una forma cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluoro-
metil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre.
metil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre.
Otra realización es una forma cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluoro-
metil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre, comprendiendo dicha forma cristalina la Forma N-2.
metil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre, comprendiendo dicha forma cristalina la Forma N-2.
Otra realización es la Forma N-2
caracterizada por (o que tiene) parámetros de celdilla unitaria
sustancialmente iguales a los siguientes:
Dimensiones celulares:
- a = 11,8427(3)
- b = 18,1503(7)
- c = 12,7923(4)
- \alpha = 90
- \beta = 105,362(2)
- \gamma = 90
Grupo espaciador P2_{1}
Moléculas/celdilla unitaria 2
en la que dicho cristal está a una temperatura
de aproximadamente +22ºC (TA).
Otra realización es la Forma N-2
caracterizada por (o que tiene) un patrón de difracción de rayos X
en polvo que comprende tres o más de los valores 2\theta
(CuK\alpha \lambda = 1,541 \ring{A}) seleccionados entre 7,2,
8,7, 9,7, 12,5, 12,8, 13,3, 16,0, 16,6, 18,2 y 18,8 a una
temperatura de aproximadamente 22ºC.
Otra realización es la Forma N-2
caracterizada por (o que tiene) un patrón de difracción de rayos X
en polvo que además comprende cuatro o más de los valores 2\theta
(CuK\alpha \lambda = 1,541 \ring{A}) seleccionados entre el
grupo constituido por 7,2, 8,7, 9,7, 12,5, 12,8, 13,3, 16,0, 16,6,
18,2 y 18,8 a una temperatura de aproximadamente 22ºC.
Otra realización es la Forma N-2
caracterizada por (o que tiene) unas coordenadas atómicas
fraccionarias sustancialmente como se enumera en la Tabla 7.
Otra realización es la Forma N-2
caracterizada por (o que tiene) un patón de difracción de rayos X en
polvo sustancialmente de acuerdo con la Figura 2.
Otra realización es una forma cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(tri-fluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
sal del ácido di-bencenosulfónico, que comprende la
Forma N-1, caracterizada por los parámetros de
celdilla unitaria que se encuentran en la Tabla 1; 3 ó 4 o más de
los valores 2\theta (CuK\alpha \lambda = 1,541 \ring{A})
seleccionados de la Tabla 10; coordenadas atómicas fraccionarias
sustancialmente como se enumeran en la Tabla 2 y/o un patrón de
difracción de rayos X en polvo sustancialmente de acuerdo con la
Figura 1.
Otra realización es una forma cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluoro-
metil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre, que comprende la Forma E-1 (mono-etanolato), caracterizada por los parámetros de celdilla unitaria que se encuentran en la Tabla 1; 3 ó 4 o más de los valores 2\theta (CuK\alpha \lambda = 1,541 \ring{A}) seleccionados de la Tabla 10; coordenadas atómicas fraccionarias sustancialmente como se enumeran en la Tabla 5, y/o un patrón de difracción de rayos X en polvo sustancialmente de acuerdo con la Figura 3.
metil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre, que comprende la Forma E-1 (mono-etanolato), caracterizada por los parámetros de celdilla unitaria que se encuentran en la Tabla 1; 3 ó 4 o más de los valores 2\theta (CuK\alpha \lambda = 1,541 \ring{A}) seleccionados de la Tabla 10; coordenadas atómicas fraccionarias sustancialmente como se enumeran en la Tabla 5, y/o un patrón de difracción de rayos X en polvo sustancialmente de acuerdo con la Figura 3.
Otra realización es una forma cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(tri-fluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
sal HCl, que comprende la Forma H4-1
(tetrahidrato), caracterizada por los parámetros de celdilla
unitaria que se encuentran en la Tabla 1; 3 ó 4 o más de los valores
2\theta (CuK\alpha \lambda = 1,541 \ring{A}) seleccionados
de la Tabla 10; coordenadas atómicas fraccionarias sustancialmente
como se enumeran en la Tabla 9 y/o un patrón de difracción de rayos
X en polvo de acuerdo con la Figura 4.
Otra realización son patrones de la forma
cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre, que comprende la Forma A-1 (disolvente
mono-acetona), caracterizada por los parámetros de
celdilla unitaria que se encuentran en la Tabla 1; 3 ó 4 o más de
los valores 2\theta (CuK\alpha \lambda = 1,541 \ring{A})
seleccionados de la Tabla 10; coordenadas atómicas fraccionarias
sustancialmente como se enumeran en la Tabla 6 y/o un patrón de
difracción de rayos X en polvo sustancialmente de acuerdo con la
Figura 5.
Otra realización es una forma cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(tri-fluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre, que comprende la Forma DC-1 (disolvente
mono-diclorometano), caracterizada por los
parámetros de celdilla unitaria que se encuentran en la Tabla 1; 3
ó 4 o más de los valores 2\theta (CuK\alpha \lambda = 1,541
\ring{A}) seleccionados de la Tabla 10; coordenadas atómicas
fraccionarias sustancialmente como se enumeran en la Tabla 3 y/o un
patrón de difracción de rayos X en polvo sustancialmente de acuerdo
con la Figura 6.
Otra realización es una forma cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(tri-fluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre que comprende la Forma AN-3 (disolvente
mono-acetonitrilo), caracterizada por los parámetros
de celdilla unitaria que se encuentran en la Tabla 1; 3 ó 4 o más
de los valores 2\theta (CuK\alpha \lambda = 1,541 \ring{A})
seleccionados de la Tabla 10; coordenadas atómicas fraccionarias
como se enumeran en la Tabla 8 y/o un patrón de difracción de rayos
X en polvo sustancialmente de acuerdo con la Figura 7.
Otra realización es una forma cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(tri-fluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre que comprende la Forma THOO-1
(disolvente mono-tetrahidrofurano), caracterizada
por los parámetros de celdilla unitaria que se encuentran en la
Tabla 1; 3 ó 4 o más de los valores 2\theta (CuK\alpha \lambda
= 1,541 \ring{A}) seleccionados de la Tabla 10; y/o coordenadas
atómicas fraccionarias sustancialmente como se enumera en la Tabla
4.
Otra realización es una composición
farmacéutica, que comprende un vehículo farmacéuticamente aceptable
y un compuesto de los Ejemplos.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto de los Ejemplos para su uso
en el tratamiento de trastornos seleccionados de la diabetes,
obesidad, síndrome metabólico, accidente cerebrovascular, dolor
neuropático, cardiomiopatía isquémica, psoriasis, hipertensión,
esclerodermia, osteoartritis, aneurisma, fiebre, enfermedad
cardiovascular, enfermedad de Crohn, fallo cardiaco congestivo,
enfermedades autoinmunes, infección por VIH, demencia asociada al
VIH, psoriasis, fibrosis pulmonar idiopática, arteriosclerosis del
trasplante, trauma cerebral inducido físicamente o químicamente,
enfermedad inflamatoria del intestino, alveolitis, colitis, lupus
sistémico eritematoso, nefritis por suero neurotóxico,
glomerulonefritis, asma, esclerosis múltiple, ateroesclerosis,
vasculitis, placas vulnerables, artritis reumatoide, reestenosis,
hiperplasia neointimal venosa, hiperplasia neointimal de inserción
de diá-
lisis, hiperplasia intimal de derivación arteriovenosa, trasplante de órganos, nefropatía crónica de aloinjertos y cáncer.
lisis, hiperplasia intimal de derivación arteriovenosa, trasplante de órganos, nefropatía crónica de aloinjertos y cáncer.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto de los Ejemplos para su uso
en el tratamiento de trastornos seleccionados de diabetes,
obesidad, enfermedad de Crohn, psoriasis, fibrosis pulmonar
idiopática, arteriosclerosis del trasplante, trauma cerebral
inducido físicamente o químicamente, enfermedad inflamatoria del
intestino, alveolitis, colitis, lupus sistémico eritematoso,
nefritis por suero nefrotóxico, glomerulonefritis, asma, esclerosis
múltiple, ateroesclerosis y artritis reumatoide, reestenosis,
trasplante de órganos y cáncer.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto de los Ejemplos para su uso
en el tratamiento de trastornos seleccionados de diabetes,
obesidad, enfermedad de Crohn, lupus sistémico eritematoso,
glomerulonefritis, esclerosis múltiple, ateroesclerosis, reestenosis
y trasplante de órganos.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto de los Ejemplos para su uso
en el tratamiento de trastornos seleccionados de esclerosis
múltiple, ateroesclerosis, enfermedad de Crohn y diabetes.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto de los Ejemplos para su uso
en el tratamiento de trastornos seleccionados de reestenosis,
trasplante de órganos y cáncer.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto de los Ejemplos para su uso
en el tratamiento de la diabetes.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto de los Ejemplos para su uso
en el tratamiento de la enfermedad de Crohn.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto de los Ejemplos para su uso
en el tratamiento de la esclerosis múltiple.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto de los Ejemplos para su uso
en el tratamiento de la ateroesclerosis.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto de los Ejemplos para su uso
en el tratamiento de la reestenosis.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto del Ejemplo 1 para su uso en
el tratamiento del trasplante de órganos.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto del Ejemplo 1 para su uso en
el tratamiento contra el cáncer.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto del Ejemplo 1 para su uso en
el tratamiento del cáncer, en el que el cáncer se selecciona del
cáncer de mama, cáncer hepático, cáncer prostático y melanoma.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto del Ejemplo 1 para su uso en
el tratamiento de enfermedades inflamatorias, alérgicas,
autoinmunes, metabólicas, cancerosas y/o enfermedades
cardiovasculares.
Otra realización es una cantidad
terapéuticamente eficaz de un compuesto del Ejemplo 1 para su uso en
el tratamiento de enfermedades que están parcialmente mediadas por
CCR-2.
Otra realización es un compuesto del Ejemplo 1
en la preparación de un medicamento para el tratamiento de la
diabetes, obesidad, síndrome metabólico, accidente cerebrovascular,
dolor neuropático, cardiomiopatía isquémica, psoriasis,
hipertensión, esclerodermia, osteoartritis, aneurisma, fiebre,
enfermedad cardiovascular, enfermedad de Crohn, fallo cardiaco
congestivo, enfermedades autoinmunes, infección por VIH, demencia
asociada al VIH, psoriasis, fibrosis pulmonar idiopática,
arteriosclerosis del trasplante, trauma cerebral inducido
físicamente o químicamente, enfermedad inflamatoria del intestino,
alveolitis, colitis, lupus sistémico eritematoso, nefritis por suero
nefrotóxico, glomerulonefritis, asma, esclerosis múltiple,
ateroesclerosis, vasculitis, placas vulnerables, artritis
reumatoide, reestenosis, hiperplasia neointimal venosa, hiperplasia
neointimal de inserción de diálisis, hiperplasia intimal de
derivación arteriovenosa, trasplante de órganos, nefropatía crónica
de aloinjerto y cáncer.
Otra realización es un compuesto de los Ejemplos
para su uso en la terapia.
La invención puede estar contenida en otras
formas específicas sin alejarse del espíritu o los atributos
esenciales de la misma. La presente invención también abarca todas
las combinaciones de aspectos alternativos y realizaciones de la
invención indicados en este documento. Se entiende que cualquiera y
todas las realizaciones pueden tomarse junto con cualquier otra
realización para describir realizaciones adicionales de la presente
invención. Además, se pretende que cualquier elemento de una
realización se combine con cualquier y con todos los otros elementos
a partir de cualquiera de la realizaciones para describir
realizaciones adicionales.
\vskip1.000000\baselineskip
Las siguientes son definiciones de términos
usados en esta memoria descriptiva y en las reivindicaciones
adjuntas. La definición inicial proporcionada para un grupo o
término en este documento, se aplica a ese grupo o término a través
de la memoria descriptiva y reivindicaciones, individualmente o como
parte de otro grupo, a no ser que se especifique lo contrario.
La expresión "farmacéuticamente aceptable"
se emplea en este documento para referirse a aquellos compuestos,
materiales, composiciones y/o formas farmacéuticas que están, dentro
del ámbito del buen juicio médico, adecuados para su uso en
contacto con los tejidos de los seres humanos y animales sin
excesiva toxicidad, irritación, respuesta alérgica u otros
problemas o complicaciones, correspondientes a un porcentaje de
beneficio/riesgo razonable.
Como se usa en el presente documento, "sales
farmacéuticamente aceptables" se refiere a derivados de los
compuestos descritos en los que el compuesto parental se modifica
mediante la preparación de sales ácidas o básicas de la misma. Los
ejemplos de sales farmacéuticamente aceptables incluyen, pero no se
limitan a, sales ácidas minerales u orgánicas de residuos básicos
tales como aminas; sales alcalinas o sales orgánicas de residuos
ácidos tales como ácidos carboxílicos; y similares. Las sales
farmacéuticamente aceptables incluyen las sales no tóxicas
convencionales o las sales de amonio cuaternario del compuesto
parental formado, por ejemplo, a partir de ácidos no tóxicos
inorgánicos u orgánicos. Por ejemplo, tales sales convencionales no
tóxicas incluyen aquellas derivadas de ácidos inorgánicos tales
como clorhídricos, benceno sulfónicos, bromhídricos, sulfúricos,
sulfámicos, fosfóricos, nítricos y similares y la sales preparadas
de ácidos orgánicos tales como acético, propiónico, succínico,
glicólico, esteárico, láctico, málico, tartárico, cítrico,
ascórbico, pamoico, maleico, hidroximaleico, fenilacético,
glutámico, benzoico, salicílico, sulfanílico,
2-acetoxibenzoico, fumárico, toluenosulfónico,
metanosulfónico, etano disulfónico, oxálico, isetiónico, y
similares.
Las sales farmacéuticamente aceptables de la
presente invención se pueden sintetizar a partir del compuesto
parental que contiene un resto básico o ácido mediante
procedimientos químicos convencionales. Generalmente, tales sales
se pueden preparar haciendo reaccionar las formas ácidas o básicas
libres de estos compuestos con una cantidad estequiométrica de la
base apropiada o el ácido en agua o un disolvente inorgánico o en
una mezcla de los dos; generalmente, un medio no acuoso como éter,
etil acetato, etanol, isopropanol o acetonitrilo se prefieren. Las
listas de sales adecuadas se encuentran en Remington's
Pharmaceutical Sciences, ed. 17ª, Mack Publishing Company, Easton,
PA, 1985, pág. 1418, cuya descripción se incorpora en este documento
por referencia.
"Compuesto estable" y "estructura
estable" pretenden indicar un compuesto que es suficientemente
resistente para sobrevivir al aislamiento a un grado útil de pureza
de una mezcla de reacción y a la formulación en un agente
terapéutico eficaz. La presente invención pretende contener
compuestos estables.
"Cantidad terapéuticamente efectiva"
pretende incluir una cantidad de un compuesto de la presente
invención sola o una cantidad de la combinación de compuestos
reivindicada o una cantidad de un compuesto de la presente
invención en combinación con otros principios activos eficaces para
inhibir MCP-1 o eficaces para tratar o prevenir
trastornos como se analiza en este documento.
Como se usa en el presente documento,
"tratar" o "tratamiento" cubre un tratamiento de un estado
de enfermedad en un mamífero, particularmente en un ser humano e
incluye: (a) la prevención de el estado de enfermedad de producirse
en un mamífero, en particular, cuando dicho mamífero está
predispuesto al estado de enfermedad pero todavía no se ha
diagnosticado que la tiene; (b) la inhibición del estado de
enfermedad, es decir, la detención de su desarrollo y/o (c) el
alivio del estado de la enfermedad, es decir, produciendo la
regresión del estado de enfermedad.
Los nombres que se usan en la presente memoria
para denominar una forma específica, por ejemplo,
"N-2", no deben considerarse limitantes con
respecto a otra sustancia cualquiera que posea características
física y químicas similares o idénticas, sino más bien debe
entenderse que estas denominaciones son meros identificadores que
deben interpretarse de acuerdo con la caracterización de la
información también presentada en este documento.
La presente invención proporciona formas
cristalinas de la base libre de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
como un material nuevo, en particular, en una forma
farmacéuticamente aceptable. En ciertas realizaciones preferidas,
las formas cristalinas de las sales están en forma pura
sustancialmente. Las realizaciones preferentes de las sales se
divulgan en los Ejemplos como en la forma N-1 de la
sal del ácido dibencenosulfónico y la forma H4-1 de
la sal de HCl.
Como se usa en el presente documento,
"polimorfo" se refiere a formas cristalinas que tienen la misma
composición química pero distintas configuraciones espaciales de
las moléculas, átomos y/o iones que forman el cristal.
Como se usa en el presente documento,
"solvato" se refiere a una forma cristalina de una molécula,
átomo y/o iones que además contienen moléculas de un disolvente o
disolventes incorporadas en la estructura cristalina. Las moléculas
de disolvente pueden estar presentes en el solvato en una
configuración regular y/o en una configuración no ordenada. El
solvato puede comprender una cantidad estequiométrica o no
estequiométrica de las moléculas de disolvente. Por ejemplo, un
solvato con una cantidad no estequiométrica de moléculas de
disolvente puede ser el resultado de la pérdida parcial de
disolvente del solvato.
Como se usa en el presente documento,
"amorfo" se refiere a una forma sólida de una molécula, átomo
y/o iones que no es cristalina. Un sólido amorfo no presenta un
patrón de difracción de rayos X definitivo.
Como se usa en el presente documento,
"sustancialmente pura", cuando se usa en referencia a una forma
cristalina, significa un compuesto que tiene una pureza mayor del
90% en peso, incluyendo mayor de 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98
y 99% en peso, y también incluye igual a aproximadamente el 100% en
peso del Compuesto I, basado en el peso del compuesto. El material
restante comprende otra/s forma/s del compuesto y/o las impurezas de
la reacción y/o las impurezas del procesamiento que surgen de su
preparación. Por ejemplo, una forma cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre o sal, puede considerarse sustancialmente pura en que
tiene una pureza mayor del 90% en peso, como se mide por medios que
se conocen en este momento y son generalmente aceptados en la
técnica, en la que el menos de 10% restante de material en peso
comprende otra/s forma/s de N-((1 R, 2S,
5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre o sal, y/o impurezas de la reacción y/o impurezas del
procesamiento.
Las muestras de las formas cristalinas pueden
proporcionarse con homogeneidad de fases sustancialmente pura, lo
que indica la presencia de una cantidad dominante de una única forma
cristalina y opcionalmente cantidades menores de una o más de otras
formas cristalinas. La presencia de más de una forma cristalina en
una muestra puede determinarse mediante técnicas tales como la
difracción de rayos X en polvo(PXRD) o la espectroscopía de
resonancia magnética nuclear de estado sólido (SSNMR). Por ejemplo,
la presencia de picos extra en la comparación con un patrón de PXRD
medido experimentalmente con un patrón de PXRD estimulado puede
indicar más de una forma cristalina en la muestra. El PXRD
estimulado puede calcularse a partir de un único dato de rayos X por
cristal. Véase Smith, D. K., "A FORTRAN Program for Calculating
X-Ray Powder Diffraction Patterns", Lawrence
Radiation Laboratory, Livermore, California,
UCRL-7196 (Abril 1963).
Preferiblemente, la forma cristalina tiene una
homogeneidad de fases sustancialmente pura como se indica mediante
menos del 10%, preferiblemente menos del 5% y más preferiblemente
menos del 2% del área de pico total en el patrón de PXRD medido
experimentalmente que surge de los picos extras que están ausentes
en el patrón PXRD estimulado. Más preferiblemente es una forma
cristalina que tiene una homogeneidad de fases sustancialmente pura
con menos del 1% del área de pico total en el patrón de PXRD medido
experimentalmente que surge de los picos extras que están ausentes
en el patrón PXRD estimulado.
Los procedimientos para la preparación de las
formas cristalinas se conocen en la técnica. Las formas cristalinas
se pueden preparar por una variedad de procedimientos, incluyendo
por ejemplo, la cristalización o recristalización de un disolvente
adecuado, la sublimación, el desarrollo a partir de un material
fundido, la transformación al estado sólido a partir de otra fase,
la cristalización de un fluido supercrítico y la pulverización por
chorro. Las técnicas para la cristalización o recristalización de
formas cristalinas a partir de una mezcla de disolventes incluyen,
por ejemplo, la evaporación del disolvente, la disminución de la
temperatura de la mezcla de disolventes, la colocación de la mezcla
de disolventes supersaturada de la molécula y/o sal en cristales
seminales, el secado por congelación de la mezcla de disolventes y
la adición de antidisolventes (contradisolventes) a la mezcla de
disolventes.
Las formas se pueden caracterizar y distinguir
usando una única difracción de rayos X por cristales, que está
basada en mediciones celdillas unitarias de un monocristal de una
forma a una temperatura analítica fijada. Una descripción detallada
de las celdillas unitarias se proporciona en Stout & Jensen,
X-Ray Structure Determination: A Practical Guide,
Macmillan Co., Nueva York (1968), Capítulo 3, que se incorpora en
este documento por referencia. Como alternativa, la única
configuración de átomos en la relación espacial dentro de la red
cristalina se puede caracterizar de acuerdo con las coordenadas
atómicas fraccionales. Otros medios de caracterizar la estructura
cristalina son mediante el análisis de la difracción de rayos X en
polvo en el que el perfil de difracción experimental u observado se
compara con un perfil estimulado que representa el material en polvo
puro, ambos ejecutados en la misma temperatura analítica y las
medidas para la forma sujeto caracterizadas como series de valores
de 2\theta.
Otros medios de caracterizar la forma se pueden
usar, tales como la resonancia magnética nuclear de estado sólido
(SSNMR), la calorimetría de exploración diferencial y el análisis
termogravimétrico. Estos parámetros también se pueden usar en
combinación para caracterizar la forma sujeto.
La expresión "pérdida de peso
insignificante", como se emplea en este documento, como se
caracteriza mediante TGA se indica la presencia de una forma de
cristal pura (no solvatada).
La expresión "% de consumo de agua
insignificante", como se emplea en este documento, como se
caracteriza mediante la isoterma de sorción de humedad indica que
la forma ensayada no es higroscópica.
En una realización de la invención, una forma
cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre o sal, se proporciona en una forma sustancialmente pura.
Esta forma cristalina puede emplearse en composiciones
farmacéuticas que pueden incluir opcionalmente uno o más de otros
componentes seleccionados, por ejemplo, del grupo constituido por
excipientes, transportadores y uno de otros ingredientes
farmacéuticamente activos o entidades químicas activas de
diferentes estructuras moleculares.
Preferiblemente, la forma cristalina tiene una
homogeneidad de fases sustancialmente pura como se indica mediante
menos del 10%, preferiblemente menos del 5%, y más preferiblemente
menos del 2% del área de pico total en el patrón de PXRD medido
experimentalmente que surge de los picos extras que están ausentes
en el patrón PXRD estimulado. Más preferiblemente es una forma
cristalina que tiene una homogeneidad de fases sustancialmente pura
con menos del 1% del área de pico total en el patrón de PXRD medido
experimentalmente que surge de los picos extras que están ausentes
en el patrón PXRD estimulado.
En otra realización, se proporciona una
composición que está constituida esencialmente de las formas
cristalinas de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre o sal. La composición de esta realización puede
comprender al menos el 90% en peso de la forma, que se basa en su
peso en la composición.
La presencia de impurezas de la reacción y/o
impurezas del procesamiento puede determinarse mediante técnicas
analíticas que se conocen en la técnica, tales como, por ejemplo,
cromatografía, espectroscopía de resonancia magnética nuclear,
espectroscopia de masas o espectroscopia infrarroja.
Las formas cristalinas se pueden preparar
mediante una variedad de procedimientos, incluyendo por ejemplo, la
cristalización o recristalización a partir de un disolvente
adecuado, la sublimación, el desarrollo a partir de un material
fundido, la transformación al estado sólido a partir de otra fase,
la cristalización a partir de un fluido supercrítico y la
pulverización por chorro. Las técnicas para la cristalización o
recristalización de formas cristalinas a partir de una mezcla de
disolventes incluyen, por ejemplo, la evaporación del disolvente,
la disminución de la temperatura de la mezcla de disolventes, la
colocación de una mezcla de disolvente supersaturada de la molécula
y/o sal en cristales seminales, el secado por congelación de la
mezcla de disolventes y la adición de antidisolventes
(contradisolventes) a la mezcla de disolventes. Las técnicas de
cristalización de alto rendimiento pueden emplearse para preparar
formas cristalinas incluyendo polimorfos.
Los cristales de fármacos, incluyendo
polimorfos, procedimientos de preparación y caracterización de los
cristales de los fármacos se analizan en
Solid-State Chemistry of Drugs, S. R. Byrn. R. R.
Pfeiffer y J. G. Stowell, 2ª Edición, SSCI, West Lafayette, Indiana
(1999).
Para las técnicas de cristalización que emplean
disolventes, la elección de disolvente o disolventes depende
típicamente de uno o más factores, tales como la solubilidad de los
compuestos, la técnica de cristalización y la presión de vapor del
disolvente. Se pueden emplear las combinaciones de disolvente; por
ejemplo, el compuesto puede solubilizarse en un primer disolvente
para proporcionar una solución, seguido de la adición de un
antidisolvente para disminuir la solubilidad del compuesto en la
solución y para proporcionar la formación de cristales. Un
"antidisolvente" es un disolvente en el que el compuesto tiene
baja solubilidad. Los disolventes adecuados para preparar cristales
incluyen disolventes polares y no polares.
En un procedimiento para preparar cristales,
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-((-(tri-
fluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre o sal, se suspende y/o se agita en un disolvente adecuado para proporcionar una suspensión, que se puede calentar para promover la disolución. El término "suspensión", como se usa en este documento, significa una solución saturada, que también puede contener una cantidad adicional del sólido para proporcionar una mezcla heterogénea a una temperatura dada. Los disolventes adecuados en este sentido incluyen, por ejemplo, disolventes polares apróticos y disolventes polares próticos y mezclas de dos o más de estos, como se divulga en este documento.
fluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre o sal, se suspende y/o se agita en un disolvente adecuado para proporcionar una suspensión, que se puede calentar para promover la disolución. El término "suspensión", como se usa en este documento, significa una solución saturada, que también puede contener una cantidad adicional del sólido para proporcionar una mezcla heterogénea a una temperatura dada. Los disolventes adecuados en este sentido incluyen, por ejemplo, disolventes polares apróticos y disolventes polares próticos y mezclas de dos o más de estos, como se divulga en este documento.
Los cristales seminales se pueden añadir a
cualquier mezcla de cristalización para promover la cristalización.
Como será evidente para el especialista en la técnica, la siembra se
usa como un medio de controlar el crecimiento de una forma
cristalina particular o como un medio de controlar la distribución
del tamaño de partícula del producto cristalino. Por consiguiente,
el cálculo de la cantidad de semillas necesario depende del tamaño
de semilla disponible y el tamaño deseado de una partícula media de
producto como se divulga, por ejemplo, en "Programmed cooling of
batch crystallizes", J. W. Mullin y J. Nyvlt, Chemical
Engineering Science (1971)26: 369-377. En
general, las semillas de pequeño tamaño se necesitan para controla
de manera eficaz el crecimiento de los cristales en el lote. Las
semillas de pequeño tamaño se pueden generar mediante el tamizado,
la molienda o la micronización de cristales más grandes o mediante
microcristalización de soluciones. Se debe tener cuidado de que la
molienda o el micronizado de cristales no de cómo resultado ningún
cambio en la cristalinidad de la forma cristalina deseada (es
decir, cambio al amorfo polimorfo o a otro polimorfo).
Una mezcla enfriada puede filtrarse al vacío, y
los sólidos aislados pueden lavarse con un disolvente adecuado, tal
como disolvente de recristalización frío, y secarse en una purga de
nitrógeno para proporcionar la forma cristalina deseada. Los
sólidos aislados pueden analizarse con una técnica espectroscópica o
analítica adecuada, tal como RMNES, DSC, PXRD o similar, en una
cantidad de más de aproximadamente el 70% en peso de rendimiento
aislado, pero preferiblemente más del 90% en peso basándose en el
peso de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre o sal, empleada originalmente en el procedimiento de
cristalización. El producto puede co-molerse o
pasarse a través de un tamiz de malla para desaglomerar el producto,
si es necesario.
Pueden prepararse formas cristalinas
directamente a partir del medio de reacción de la etapa de proceso
final preparando
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre o sal. Esto puede conseguirse, por ejemplo, empleando en
la etapa de proceso final un disolvente o mezcla de disolventes a
partir de la cual puede cristalizarse el compuesto. Como
alternativa, las formas cristalinas pueden obtenerse por técnicas
de destilación o de adición de disolvente. Los disolventes adecuados
para este propósito incluyen cualquiera de los disolventes
descritos en este documento, incluyendo disolventes próticos
polares, tales como alcoholes, y disolventes apróticos polares,
tales como cetonas.
A modo de directriz general, la mezcla de
reacción puede filtrarse para retirar cualquier impureza indeseada,
sales inorgánicas, y similares, seguido de lavado con un disolvente
de reacción o cristalización. La solución resultante puede
concentrarse para retirar el exceso de disolvente o constituyentes
gaseosos. Si se emplea destilación, la última cantidad de destilado
recogido puede variar, dependiendo de factores de proceso
incluyendo, por ejemplo, tamaño del recipiente, capacidad de
agitación, y similares. A modo de directriz general, la solución de
reacción puede destilarse a aproximadamente 1/10 del volumen
original antes de que se realice el reemplazo del disolvente.
Pueden tomarse muestras de la reacción y ensayarse para determinar
el grado de reacción y el % en peso de producto de acuerdo con
técnicas de procesamiento convencionales. Si se desea, puede
añadirse o retirarse un disolvente de reacción para optimizar la
concentración de la reacción. Preferiblemente, la concentración
final se ajusta a aproximadamente el 50% en peso, punto en el que
típicamente se forma una suspensión.
Puede ser preferible añadir disolventes
directamente al recipiente de reacción sin destilar la mezcla de
reacción. Los disolventes preferidos para este propósito son los
que participan en último lugar en la estructura reticular
cristalina, como se ha analizado anteriormente con respecto al
intercambio de disolvente. Aunque la concentración final puede
variar dependiendo de la pureza deseada, recuperación y similar, la
concentración final de la base libre en solución es preferiblemente
de aproximadamente el 4% a aproximadamente el 7%. La mezcla de
reacción puede agitarse seguido de adición del disolvente y
calentamiento simultáneo. A modo de ilustración, la mezcla de
reacción puede agitarse durante aproximadamente 1 hora mientras se
caliente a aproximadamente 70ºC. La reacción se filtra
preferiblemente mientras permanece caliente y se lava con el
disolvente de reacción, el disolvente añadido o una combinación de
los mismos. Pueden añadirse cristales seminales a cualquier solución
de cristalización para iniciar la cristalización.
Las diversas formas descritas en este documento
pueden distinguirse entre sí mediante el uso de varias técnicas
analíticas conocidas por un especialista en la técnica. Dichas
técnicas incluyen, pero sin limitación, difracción de rayos X en
polvo (PXRD), calorimetría diferencial de barrido (DSC) y/o análisis
termogravimétrico (TGA). Como alternativa, las formas pueden
caracterizarse y distinguirse usando difracción de rayos X de
monocristal, que se basa en mediciones de celdillas unitarias de un
monocristal de una forma dada a una temperatura analítica fija. Una
descripción detallada de celdillas unitarias se proporciona en Stout
& Jensen, X-Ray Structure Determination: A
Practical Guide, Macmillan Co., Nueva York (1968), Capítulo 3, que
se incorpora en este documento como referencia. Específicamente, la
disposición única de átomos en relación espacial dentro de la
estructura reticular cristalina puede caracterizarse de acuerdo con
las coordenadas atómicas fraccionarias observadas. Otro medio para
caracterizar la estructura cristalina es por análisis de difracción
de rayos X de polvo en el que el perfil de difracción observado se
compara con un perfil simulado generado a partir de los datos de la
estructura de monocristal. Las mediciones de difracción de rayos X
de polvo para la forma objeto se caracterizan como una serie de
valores 2\theta (normalmente cuatro o más).
Puede usarse otro medio para caracterizar la
forma, tal como espectroscopía por resonancia magnética nuclear en
estado sólido (SSNMR), calorimetría diferencial de barrido (DSC),
termografía y reconocimiento grueso de la morfología cristalina o
amorfa. Estos parámetros también pueden usarse en combinación para
caracterizar la forma objeto.
Un especialista en la técnica apreciará que un
patrón de difracción de rayos X puede obtenerse con un error de
medición que depende de las condiciones de medición empleadas. En
particular, generalmente se sabe que las intensidades en un patrón
de difracción de rayos X pueden fluctuar dependiendo de las
condiciones de medición empleadas y de la forma y morfología del
cristal. Debe entenderse también que las intensidades relativas
también pueden variar dependiendo de las condiciones experimentales
y, por consiguiente, no debe tenerse en cuenta el orden exacto de
la intensidad. Además, un error de ángulo de difracción para un
patrón de difracción de rayos X convencional es típicamente de
aproximadamente 0,2º en valores 2\theta o menos, preferiblemente
de aproximadamente 0,1º en valores 2\theta (como se analiza más
adelante en este documento), y dicho grado de error de medición
debe tenerse en cuenta como concerniente a los ángulos de difracción
mencionados anteriormente. Por consiguiente, debe entenderse que
las formas de cristal de la presente invención no se limitan a las
formas de cristal que proporcionan patrones de difracción de rayos
X completamente idénticos a los patrones de difracción de rayos X
representados en las Figuras adjuntas descritas en este documento.
Cualquier forma de cristal que proporcione patrones de difracción
de rayos X sustancialmente de idénticos a los descritos en las
figuras adjuntas está dentro del alcance de la presente invención.
La capacidad de determinar identidades sustanciales de patrones de
difracción de rayos X está dentro del ámbito de un especialista en
la técnica.
El siguiente Ejemplo es una realización de la
invención.
En su caso, las reacciones se realizaron en una
atmósfera de nitrógeno seco (o argón). Para las reacciones
anhidras, se utilizaron disolventes Dri-Solv de EM.
Para otras reacciones, se utilizaron disolventes de calidad
reactiva o de calidad HPLC. A menos que se indique otra cosa, todos
los reactivos que se obtuvieron en el mercado se usaron tal como se
recibieron.
Las mediciones de CL/EM se obtuvieron usando un
sistema de espectrómetro de masas cuadropolo único híbrido Shimadzu
HPLC/Waters ZQ. Los datos para el pico de interés se indican a
partir de ionización por electronebulización en modo positivo. Los
espectros RMN (resonancia magnética nuclear) se obtuvieron
típicamente en instrumentos Bruker o JEOL de 400 MHz y 500 MHz en
los disolventes indicados. Todos los desplazamientos químicos se
indican en ppm a partir de tetrametilsilano con la resonancia del
disolvente como patrón interno. Los datos espectrales RMN ^{1}H se
indican típicamente como sigue: desplazamiento químico,
multiplicidad (s = singlete, s a = singlete ancho, d = doblete, dd
= doblete de dobletes, t = triplete, c = cuadruplete, sept. =
septuplete, m = multiplete, ap. = aparente), constantes de
acoplamiento (Hz) e integración.
Un especialista en la técnica reconocerá las
abreviaturas convencionales utilizadas en este documento. Para
facilidad de referencia, las abreviaturas incluyen, pero no se
limitan necesariamente a: sat. = saturado, HPLC = cromatografía
líquida de alto rendimiento, PA = porcentaje de área, KF =
Karl-Fischer, TA = temperatura ambiente (a menos
que se especifique otra cosa, TA es una temperatura de
aproximadamente 22ºC), mmol = milimoles, EMAR = espectroscopía de
masas de alta resolución. TBTU = tetrafluoroborato de
O-benzotriazol-2-il-N,N,N',N'-tetrametiluronio,
MTBE = TBME = terc-butil metil éter, EDAC = clorhidrato de
N-(3-dimetilaminopropil)-N'-etilcarbodiimida,
EDC =
N-(3-dimetilaminopropil)-N'-etilcarbodiimida,
TEA = trietilamina, DPPA = difenil fosforil azida, IPA = alcohol
isopropílico, TFA = ácido trifluoroacético, DCM = diclorometano,
THF = tetrahidrofurano, DMF = N,N-dimetilformamida, BOP =
hexafluorofosfato de
(benzotriazol-1-iloxi)tris(dimetilamino)fosfonio,
EtOAc = acetato de etilo, DMSO = dimetilsulfóxido. ºC = grados
Centígrados, equiv. = equivalente o equivalentes, g = gramo o
gramos, mg = miligramo o miligramos, ml (o m) = mililitro o
mililitros, h = hora u horas, M = molar, N = normal, min = minuto o
minutos, MHz = megahercio, tlc = cromatografía de capa fina y v/v =
relación volumen a volumen.
"\alpha", "\beta", "R" y
"S" son designaciones estereoquímicas familiares para los
especialistas en la técnica.
Ejemplo 1, Etapa 1: Se disolvió
2-benciloxicarbonilamino-7-oxo-6-aza-biciclo[3.2.1]octano-6-carboxilato
de (1R, 2S, 5R)-terc-butilo (89,6 g, 0,24 mol,
véase: P. H. Carter, y col. solicitud PCT WO 2005/021500) en
acetato de etilo (1,5 l) y la solución resultante se lavó con
NaHCO_{3} sat. (2 x 0,45 l) y NaCl sat. (1 x 0,45 l). La solución
se secó (Na_{2}SO_{4}) y después se filtró directamente en un
matraz de fondo redondo de 3 l de 3 bocas. La solución se purgó con
una inyección de nitrógeno directa antes de cargarse con Pd al 10%/C
(13,65 g) en una atmósfera de nitrógeno. El matraz se evacuó y se
recargó con hidrógeno; esto se repitió dos veces más. Se burbujeó
hidrógeno a través de la solución durante 30 min y después la
reacción se agitó en una atmósfera de H_{2} durante 18 h. El
matraz se evacuó, se recargó con nitrógeno y se cargó con
catalizador fresco (6 g de Pd al 10%/C). Se burbujeó hidrógeno a
través de la solución durante 30 min y después la reacción se agitó
en una atmósfera de H_{2} durante 18 h. El matraz se evacuó y se
recargó con nitrógeno. La mezcla se filtró a través de Celite;
después, la capa de filtro se lavó con acetato de etilo. El
filtrado (volumen de \sim1,6 l de EtOAc) se diluyó con
acetonitrilo (0,3 l) y se cargó secuencialmente con
L-N-Cbz-metionina (68 g, 0,24
mol), TBTU (77 g, 0,24 mol) y N,N-diisopropiletilamina (42
ml, 0,24 mol). La reacción se agitó a la temperatura ambiente
durante 4 h, tiempo durante el cual cambió de una suspensión a una
solución transparente. La reacción se interrumpió con la adición de
NH_{4}Cl sat. (0,75 l) y agua (0,15 l); la mezcla se diluyó
adicionalmente con EtOAc (0,75 l). Las fases se mezclaron y se
separaron y la fase orgánica se lavó con Na_{2}CO_{3} sat. (2 x
0,9 l) y NaCl sat. (1 x 0,75 l). La solución se secó
(Na_{2}SO_{4}), se filtró y se concentró al vacío, dando
2-((S)-2-(benciloxicarbonilamino)-4-(metiltio)butanamido)-7-oxo-6-aza-biciclo[3.2.1]octano-6-carboxilato
de (1R,2S,5R)-terc-butilo en forma de un
aceite, que se recogió en la siguiente etapa sin purificación
adicional. CL/EM para el pico principal:
[M-Boc+H]^{+} = 406,3; [M+Na]^{+}
= 528,3. RMN ^{1}H (400 MHz, d_{4}-MeOH):
\delta 7,36 (m, 5H), 5,11 (s, 2H), 4,32 (m, 1H), 4,2 (m, 1H), 4,0
(m, 1H), 2,5-2,7 (m, 3H), 2,25 (m, 1H), 2,11 (s,
3H), 2,05 (m, 4H), 1,9 (m, 1H), 1,7 (m, 2H), 1,54 (s, 9H). También
están presentes EtOAc [1,26 (t), 2,03 (s), 4,12 (c)] y
N,N,N,N-tetrametilurea [2,83 (s)].
Ejemplo 1, Etapa 2: Una muestra de
2-((S)-2-(benciloxicarbonilamino)-4-(metiltio)butanamido)-7-oxo-6-aza-biciclo[3.2.1]octano-6-carboxilato
de (1R,2S,5R)-terc-butilo (0,24 mol supuesto;
véase el procedimiento previo) se disolvió en yodometano (1,250 g)
y se agitó durante 48 h a la temperatura ambiente. La reacción se
concentró al vacío. El residuo se disolvió en diclorometano y se
concentró al vacío. Esto se repitió dos veces más. El lodo
resultante se disolvió en diclorometano (0,4 l) y se vertió en una
solución en agitación rápida de MTBE (4,0 l). Los sólidos amarillos
resultantes se recogieron mediante filtración por succión y se
secaron a alto vacío, proporcionando la sal sulfonio (179 g). Este
material se recogió en la siguiente etapa sin purificación
adicional. CL/EM para el pico principal:
[M-Me_{2}S+H]^{+} = 458,4;
[M]^{+} = 520,4. RMN ^{1}H (400 MHz,
d_{4}-MeOH): \delta 7,35 (m, 5H), 5,09 (s, 2H),
4,33 (m, 1H), 4,28 (m, 1H), 3,98 (m, 1H), 3,3-3,45
(m, 2H), 2,97 (s, 3H), 2,94 (s, 3H), 2,78 (m, 1H),
2,0-2,3 (m, 4H), 1,7 (m, 2H), 1,52 (s, 9H). También
están presentes MTBE [1,18 (s), 3,2 (s)] y trazas de
N,N,N,N-tetrametilurea [2,81 (s)].
Ejemplo 1, Etapa 3: Toda la sal sulfonio de la
etapa anterior (0,24 mol supuesto) se disolvió en DMSO (2,0 l). La
solución resultante se agitó en una atmósfera de nitrógeno a la
temperatura ambiente y se cargó en porciones con carbonato de cesio
(216 g). La suspensión se agitó a la temperatura ambiente durante 3
h y después se filtró para retirar los sólidos. La solución se
dividió en porciones de \sim0,22 l y se trató como sigue: la
mezcla de reacción (\sim0,22 l) se diluyó con acetato de etilo
(1,5 l) y se lavó sucesivamente con agua (3 x 0,5 l) y salmuera (1 x
0,3 l). La fase orgánica se secó (Na_{2}SO_{4}), se filtró y se
concentró al vacío. El
2-((S)-3-(benciloxicarbonilamino)-2-oxopirrolidin-1-il)-7-oxo-6-azabiciclo[3.2.1]octano-6-carboxilato
de (1R,2S,5R)-terc-butilo deseado (90,8 g,
83%) se obtuvo en forma de una espuma microcristalina, libre de
impurezas de tetrametilurea. CL/EM para el pico principal:
[M-Boc+H]^{+} = 358,4; [M+Na]^{+}
= 480,4. RMN ^{1}H (400 MHz, d_{4}-MeOH):
\delta 7,35 (m, 5H). 5,12 (s, 2H), 4,35 (m, 2H), 4,2 (m, 1H), 3,6
(m, 1H), 3,3 (m, 1H), 2,64 (m, 1H), 2,28-2,42 (m,
2H), 2,15 (m, 1H), 1,7-2,0 (m, 5H), 1,55 (s, 9H). Si
se desea, este material se puede aislar en forma de un sólido
mediante disolución en MTBE (1 volumen), adición a heptano (3,3
volúmenes) y recogida del precipitado resultante.
Ejemplo 1, Etapa 4: Una solución en agitación de
2-((S)-3-(benciloxicarbonilamino)-2-oxopirrolidin-1-il)-7-oxo-6-azabiciclo[3.2.1]octano-6-carboxilato
de (1R,2S,5R)-terc-butilo (108 g, 0,236 mol)
en THF (1 l) se cargó con hidróxido de litio monohidrato (21,74 g,
0,519 mol). Se añadió lentamente agua (0,3 l), de tal manera que la
temperatura no excediera de 20ºC. La reacción se agitó a la
temperatura ambiente durante una noche y los volátiles se retiraron
al vacío. El pH se ajustó a un valor de \sim4 mediante la adición
de HCl 1 N (450 ml) y NaH_{2}PO_{4,} Los precipitados blancos
resultantes se recogieron por filtración y se lavaron con agua (2 x
1 l). El sólido se disolvió en diclorometano (1,5 l) y agua (1 l).
La fase orgánica se secó (Na_{2}SO_{4}), se filtró y se
concentró al vacío. El residuo se disolvió en EtOAc (0,7 l) y la
solución resultante se calentó a la temperatura de reflujo durante
1 h. Después de enfriar a la TA, los sólidos se separaron y se
recogieron mediante filtración. Estos sólidos se purificaron por
recristalización en isopropanol, proporcionando el ácido
(1R,2S,5R)-2-((S)-3-(benciloxicarbonilamino)-2-oxopirrolidin-1-il)-5-(terc-butoxicarbonilamino)ciclohexanocarboxílico
deseado en forma de un sólido de color blanco (104,5 g, rendimiento
del 93%). CL/EM para el pico principal:
[M-tBu+H]^{+} = 420,2;
[M-Boc+H]^{+} = 376,2; [M+H]^{+} =
476,2. RMN ^{1}H (400 MHz, d_{4}-MeOH):
\delta 7,35 (m, 5H), 5,11 (s, 2H), 4,35 (m, 2H), 3,71 (m, 1H),
3,45-3,6 (m, 2H), 2,99 (m, 1H), 2,41 (m, 1H), 2,15
(m, 1H), 2,0 (m, 2H), 1,6-1,9 (m, 4H), 1,46 (s,
9H).
Ejemplo 1, Etapa 5: Un matraz de fondo redondo
de 3 l se cargó con ácido
(1R,2S,5R)-2-((S)-3-(benciloxicarboni-
lamino)-2-oxopirrolidin-1-il)-5-(terc-butoxicarbonilamino)ciclohexanocarboxílico (75,5 g, 0,158 mol), EDC\cdotHCl
(33,5 g, 0,175 mol), 1-hidroxibenzotriazol (23,6 g, 0,175 mol) y diclorometano (1 l). La reacción se agitó a la temperatura ambiente durante 2 h, tiempo durante cual que cambió de una suspensión blanca a una solución transparente. Se burbujeó amoniaco (gas) a través de la solución hasta que el valor del pH fue fuertemente básico (papel) y la reacción se agitó durante 10 min; esta adición de amoniaco se repitió y la reacción se agitó durante 10 min más. Se añadió agua. Antes de concentrarse al vacío, la fase orgánica se lavó con NaHCO_{3} sat., NaH_{2}PO_{4} y salmuera. El residuo se suspendió con acetonitrilo (0,5 l) y después se concentró, dando (1R,2S,5R)-2-((S)-3-(benciloxicarbonilamino)-2-oxopirrolidin-1-il)-5-(terc-butoxicarbonilamino)ciclohexanocarboxamida en forma de un sólido de color blanco (75,9 g, \sim100%), que se usó en la siguiente etapa sin purificación adicional. CL/EM para el pico principal: [M-Boc+H]^{+} = 375,3; [M+H]^{+} = 475,4. [M-tBu+H]^{+} = 419,3, RMN ^{1}H (400 MHz, d_{4}-MeOH): \delta 7,35 (m, 5H), 5,11 (s, 2H), 4,25 (m, 2H), 3,70 (m, 1H), 3,6 (m, 1H), 3,45 (m, 1H), 2,91 (m, 1H), 2,38 (m, 1H), 2,12 (m, 1H), 1,9-2,05 (m, 2H), 1,65-1,9 (m, 4H), 1,46 (s, 9H).
lamino)-2-oxopirrolidin-1-il)-5-(terc-butoxicarbonilamino)ciclohexanocarboxílico (75,5 g, 0,158 mol), EDC\cdotHCl
(33,5 g, 0,175 mol), 1-hidroxibenzotriazol (23,6 g, 0,175 mol) y diclorometano (1 l). La reacción se agitó a la temperatura ambiente durante 2 h, tiempo durante cual que cambió de una suspensión blanca a una solución transparente. Se burbujeó amoniaco (gas) a través de la solución hasta que el valor del pH fue fuertemente básico (papel) y la reacción se agitó durante 10 min; esta adición de amoniaco se repitió y la reacción se agitó durante 10 min más. Se añadió agua. Antes de concentrarse al vacío, la fase orgánica se lavó con NaHCO_{3} sat., NaH_{2}PO_{4} y salmuera. El residuo se suspendió con acetonitrilo (0,5 l) y después se concentró, dando (1R,2S,5R)-2-((S)-3-(benciloxicarbonilamino)-2-oxopirrolidin-1-il)-5-(terc-butoxicarbonilamino)ciclohexanocarboxamida en forma de un sólido de color blanco (75,9 g, \sim100%), que se usó en la siguiente etapa sin purificación adicional. CL/EM para el pico principal: [M-Boc+H]^{+} = 375,3; [M+H]^{+} = 475,4. [M-tBu+H]^{+} = 419,3, RMN ^{1}H (400 MHz, d_{4}-MeOH): \delta 7,35 (m, 5H), 5,11 (s, 2H), 4,25 (m, 2H), 3,70 (m, 1H), 3,6 (m, 1H), 3,45 (m, 1H), 2,91 (m, 1H), 2,38 (m, 1H), 2,12 (m, 1H), 1,9-2,05 (m, 2H), 1,65-1,9 (m, 4H), 1,46 (s, 9H).
Ejemplo 1, Etapa 6: La reacción se realizó en
tres porciones iguales y se combinaron para el tratamiento acuoso.
Un matraz de fondo redondo de 3 bocas de 5 l se cargó con
(1R,2S,5R)-2-((S)-3-(benciloxicarbonilamino)-2-oxopirrolidin-1-il)-5-(terc-butoxicarbonilamino)ciclohexanocarboxamida
(25,3 g, 53 mmol), acetonitrilo (1,9 l) y 2,6 l de agua/hielo. La
mezcla se agitó y se enfrió a 0ºC. Se añadió diacetato de
yodobenceno (25,77 g, 80 mmol) y la reacción se agitó durante 2 h;
se añadieron otros 0,5 equiv. de diacetato de yodobenceno. La
reacción se agitó durante 9 h (temperatura de reacción < 10ºC).
La mezcla se cargó con 8 equiv. de N,N-diisopropiletilamina
y 2 equiv. de anhídrido acético. Durante los treinta minutos
siguientes, se añadieron 4 equiv. de N,N-diisopropiletilamina
y 2 equiv. de anhídrido acético cada diez minutos hasta que la
reacción se completó (HPLC). El acetonitrilo se retiró al vacío;
algo de líquido se separó del residuo y esto se recogió por
filtración. El residuo restante se extrajo con diclorometano (3 l,
después 1 l). La fase orgánica se lavó secuencialmente con agua,
NaHCO_{3} sat. y salmuera. Los sólidos recogidos se añadieron a la
fase orgánica, junto con carbón activado (15 g). La mezcla se agitó
durante 30 minutos a 40ºC antes de filtrarse y concentrarse al
vacío. El residuo se disolvió en EtOAc (1 l) y la solución
resultante se agitó a 75ºC durante 1 h antes de dejarse enfriar a la
temperatura ambiente. Se separó un sólido y se recogió por
filtración. Este sólido se purificó adicionalmente por
recristalización: primero se disolvió en 0,5 l de CH_{2}CI_{2},
después se concentró al vacío y después se recristalizó a partir de
1 l de EtOAc; esto se repitió tres veces. Los sólidos obtenidos a
partir de aguas madre de antes se recristalizaron tres veces usando
el mismo procedimiento. Los sólidos combinados se recristalizaron
dos veces más en acetonitrilo (0,7 l), proporcionando 66 g (84%) de
(1R,3R,4S)-3-acetamido-4-((S)-3-(benciloxicarbonilamino)-2-oxopirrolidin-1-il)ciclohexilcarbamato
de terc-butilo (con una pureza > 99,5% mediante HPLC).
CL/EM para el pico principal: [M+H]^{+} = 489,4;
[M-tBu+H]^{+} = 433,3. RMN ^{1}H (400
MHz, d_{4}-MeOH): \delta 7,3-7,4
(m, 5H), 5,11 (s, 2H), 4,35 (m, 1H), 4,15 (m, 1H), 4,04 (m, 1H),
3,8 (m, 1H), 3,6 (m, 2H), 2,44 (m, 1H), 2,12 (m, 1H),
1,87-2,05 (m, 4H), 1,87 (s, 3H),
1,55-1,7 (m, 2H), 1,46 (s, 9H). La fidelidad
estereoquímica de la transposición de Hofmann se confirmó a través
del análisis de la estructura de cristal de rayos X de este
compuesto, como se muestra en la Figura 1.
Ejemplo 1, Etapa 7: Una solución en agitación de
(1R,3R,4S)-3-acetamido-4-((S)-3-(benciloxicarbonilamino)-2-oxopirrolidin-1-il)ciclohexilcarbamato
de terc-butilo (66 g, 0,135 mol) en diclorometano (216 ml)
se cargó con ácido trifluoroacético (216 ml). La reacción se agitó
durante 2 h a la temperatura ambiente y se concentró al vacío. El
residuo se disolvió en metanol y la solución resultante se
concentró al vacío; esto se repitió una vez. Se obtuvo
(S)-1-((1S,2R,4R)-2-acetamido-4-aminociclohexil)-2-oxopirrolidin-3-ilcarbamato
de bencilo en forma de un aceite y se usó directamente en la Etapa
8 a continuación. CL/EM encontrado [M + H]^{+} = 389,4.
RMN ^{1}H (400 MHz, d_{4}-MeOH): \delta
7,3-7,4 (m, 5H), 5,12 (s, 2H), 4,41 (s a, 1H), 4,15
(m, 1H), 4,00 (t, J = 9,3 Hz, 1H), 3,8 1 (t, J = 9,1
Hz, 1H), 3,65 (c, J = 8,4 Hz, 1H), 3,3-3,4
(m, 1H), 2,45 (m, 1H), 1,95-2,24 (m, 5H), 2,00 (s,
3H), 1,6-1,8 (m, 2H).
Ejemplo 1, Etapa 8: Una solución en agitación de
(S)-1-((1S,2R,4R)-2-acetamido-4-aminociclohexil)-2-oxopirrolidin-3-ilcarbamato
de bencilo (\sim0,135 mol) en metanol (675 ml) se cargó
secuencialmente con acetona (37,8 g, 4 equiv.), acetato sódico
(33,2 g, 3 equiv.) y cianoborohidruro sódico (16,9 g, 2 equiv.). La
mezcla se agitó a la temperatura ambiente durante 6 h y se filtró.
El filtrado se disolvió en diclorometano (1 l); esta solución se
lavó con NaOH 1 N (1 l). Los sólidos recogidos en la filtración se
disolvieron en NaOH 1 N (1 l) a 0ºC y después, se extrajeron con
diclorometano (1 l). Los extractos orgánicos se combinaron y se
extrajeron con HCl acuoso (200 ml de HCl 1 N + 800 ml de agua). La
fase acuosa se basificó con NaHCO_{3} sat. (500 ml) y después con
NaOH 1 N (100 ml) hasta alcanzar un valor de pH de 11. La fase
acuosa se extrajo con diclorometano (2 l). Los extractos orgánicos
se combinaron, se secaron (Na_{2}SO_{4}), se filtraron y se
concentraron al vacío, dando
(S)-1-((1S,2R,4R)-2-acetamido-4-(isopropilamino)ciclohexil)-2-oxopirrolidin-3-ilcarbamato
de bencilo en forma de un aceite. CL/EM encontrado [M +
H]^{+} = 431,45. RMN ^{1}H (400 MHz,
d_{4}-MeOH): \delta 7,3-7,4 (m,
5H), 5,12 (s, 2H), 4,31 (m, 1H), 4,24 (t, J = 9,4 Hz, 1H),
4,11 (m, 1H), 3,61 (t, J = 9,1 Hz, 1H), 3,52 (c, J =
8,6 Hz, 1H), 3,04 (s a, 1H), 2,96 (sept, J = 6,3 Hz, 1H), 2,40 (m,
1H), 2,15 (m, 1H), 1,92 (s, 3H), 1,7-1,9 (m, 5H),
1,65 (m, 1H), 1,12 (dd ap., J = 6,3, 1,1 Hz, 6H).
Ejemplo 1, Etapa 9 (véase a continuación Etapa 9
alternativa): Una solución en agitación de
(S)-1-((1S,2R,4R)-2-acetamido-4-(isupropilamino)ciclohexil)-2-oxopirrolidin-3-ilcarbamato
de bencilo (\sim115 mmol) en diclorometano (600 ml) se enfrió a
0ºC y se cargó secuencialmente con formaldehído (18,6 g, solución
al 37% en peso), trietilamina (23 ml) y triacetoxiborohidruro sódico
(28,7 g). La mezcla se agitó a la temperatura ambiente durante 30
minutos y se diluyó con diclorometano (hasta alcanzar un volumen de
1,2 l). Esta solución se lavó tres veces con 500 ml de NaHCO_{3}
sat. + NaOH (NaHCO_{3} sat., pH a 11 con NaOH 1 N). La fase
orgánica se extrajo con HCl ac. (200 ml de HCl 1 N + 600 ml de
agua). La fase acuosa se basificó con NaHCO_{3} sat. (500 ml) y
después con NaOH 1 N (100 ml) hasta alcanzar un valor de pH de 11.
La fase acuosa se extrajo con diclorometano (1,2 l). Los extractos
orgánicos se combinaron, se secaron (Na_{2}SO_{4}), se
filtraron y se concentraron al vacío, dando
(S)-1-((1S,2R,4R)-2-acetamido-4-(isopropil(metil)amino)ciclohexil)-2-oxopirrolidin-3-ilcarbamato
de bencilo en forma de un aceite, que se usó directamente en la
Etapa 10 a continuación. CL/EM encontrado [M + H]^{+} =
445,4. RMN ^{1}H (400 MHz, d_{4}-MeOH): \delta
7,3-7,4 (m, 5H), 5,12 (s, 2H), 4,33 (s a, 1H), 4,25
(t, J = 9,2 Hz, 1H), 4,11 (s a, 1H), 3,5-3,6
(m, 2H), 2,77 (s muy a, 2H), 2,41 (m, 1H), 2,26 (s, 3H),
2,0-2,1 (m, 2H), 1,92 (s, 3H),
1,7-1,9 (m, 5H), 1,10 (dd ap., J = 17, 6,4
Hz, 6H).
\newpage
Ejemplo 1, Etapa 10: A una solución de
(S)-1-((1S,2R,4R)-2-acetamido-4-(isopropil(metil)amino)-ciclohexil)-2-oxopirrolidin-3-ilcarbamato
de bencilo (\sim0,115 mol) en metanol (600 ml) se le añadió Pd al
10%/C (6 g de catalizador al 50% en peso). El matraz se evacuó y se
volvió a filtrar con hidrógeno. La mezcla se agitó en una atmósfera
de H_{2} durante 2 h y el catalizador se retiró por filtración a
través de Celite. El filtrado se concentró al vacío, proporcionando
N-((1R,2S,SR)-2-((S)-3-amino-2-oxopirrolidin-1-il)-5-(isopropil(metil)amino)ciclohexil)acetamida
en forma de un aceite, que se trató en la siguiente etapa sin
purificación adicional. CL/EM encontrado [M + H]^{+} =
311,47. RMN ^{1}H (400 MHz, d_{4}-MeOH):
\delta 4,39 (s a, 1H), 4,00 (m, 1H), 3,3-3,5 (m,
4H), 2,73 (m, 1H), 2,38 (m, 1H), 2,25 (s, 3H),
2,0-2,2 (m, 3H), 1,94 (s, 3H),
1,6-1,75 (m, 4H), 1,07 (dd ap., J = 21, 6,4 Hz,
6H).
Ejemplo 1, Etapa 11: A una solución de
N-((1R,2S,SR)-2-((S)-3-amino-2-oxopirrolidin-1-il)-5-(isopropil(metil)amino)ciclohexil)acetamida
(\sim35 g, 0,115 mol) en isopropanol (600 ml) se le añadió
4-cloro-6-(trifluorometil)quinazolina
(32 g, 0,138 mol, 1,2 equiv., véase: P.H. Carter y col., solicitud
PCT WO 2005/021500). La mezcla se agitó a la temperatura ambiente
durante una noche antes de cargarse con trietilamina (46 g, 0,46
mol, 4 equiv.). La mezcla se agitó a 60ºC durante 10 h. El
disolvente se retiró a presión reducida, dando un aceite. Se realizó
destilación azeotrópica dos veces con isopropanol. El residuo se
disolvió en diclorometano (600 ml) y se extrajo con agua (250 ml,
que contenía 4 equiv. de ácido acético). Se añadió diclorometano
(600 ml) a los lavados acuosos combinados y la mezcla se enfrió a
0ºC. Se añadió con agitación NaOH acuoso (al 50% en peso) hasta que
el valor de pH alcanzó 11. La fase de agua se extrajo dos veces con
diclorometano (2 x 600 ml). Los extractos orgánicos combinados se
secaron (Na_{2}SO_{4}), se filtraron y se concentraron al vacío,
dando la base libre amorfa del compuesto del título (pureza del 99%
mediante HPLC). CL/EM encontrado [M+H]^{+} = 507,3. RMN
^{1}H (400 MHz, d_{4}-MeOH): \delta 8,82 (s,
1H), 8,59 (s, 1H), 8,05 (dd, J = 8,8, 1,8 Hz, 1H), 7,9 (d,
J = 8,7 Hz, 1H), 5,28 (t, J = 8,6 Hz, 1H), 4,58 (s a,
1H), 4,06 (m, 1H), 3,52-3,68 (m, 2H), 3,43 (m, 1H),
2,76 (s a, 1H), 2,55 (m, 1H), 2,28 (s, 3H), 2,1-2,3
(m, 3H), 2,0 (s, 3H), 2,0 (m, 1H), 1,65-1,8 (m, 3H),
1,09 (dd ap., J = 24, 6,4 Hz, 6 H).
Ejemplo 1, Etapa 9 alternativa
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Ejemplo 1, Etapa 9a^{i} alternativa: Se
cargaron en un hidrogenador sal 4-toluenosulfonato
de
(7R,8S-8-((S)-1-fenil-etilamino)-1,4-dioxa-espiro[4.5]decano-7-carboxilato
de etilo 1A (1417 g, 2,8 mol, consúltese: documento
WO2004098516, preparado de forma análoga a la patente de Estados Unidos 6.835.841), etanol (graduación del 100%, 11,4 l) y Pd al 10%/catalizador C (al 50% en peso, 284 g). La mezcla se hizo inerte con nitrógeno, después se presurizó con gas hidrógeno (45 psig) y se agitó vigorosamente a aprox. 40ºC hasta que el material de partida se consumió (HPLC). La suspensión se enfrió, se purgó con gas nitrógeno y el catalizador se retiró por filtración mientras se hacía inerte. El catalizador gastado se lavó con etanol (4,3 l). El filtrado y los lavados se combinaron y se concentraron al vacío hasta un volumen de 2-3 l, manteniendo mientras el lote entre 40º-60ºC. Se cargó acetato de isopropilo (5 l) y la mezcla se concentró hasta un volumen de \sim2 l hasta que la mayoría del etanol se eliminó (< 0,5%) y el contenido en humedad residual fue < 1.000 ppm. El volumen del lote se ajustó a \sim7,5 l mediante la adición de acetato de isopropilo. La mezcla se calentó a 80ºC hasta que se hizo transparente y después se enfrió a 65º-70ºC. Se añadieron cristales seminales de 1 (5 g) y el lote se enfrió a 50ºC durante 2 horas, después se enfrió a 20ºC durante 4 horas más y se mantuvo durante \sim10 horas. La suspensión resultante se filtró y la torta se lavó con acetato de isopropilo (2 l). El producto se secó al vacío a \sim35ºC hasta que los volátiles se redujeron por debajo del \sim1% (LOD). Se obtuvo sal 4-toluenosulfonato de (7R,8S)-8-amino-1,4-dioxa-espiro[4.5]decano-7-carboxilato de etilo 1 en forma de un sólido cristalino de color blanco (936 g, rendimiento del 83%, pureza mediante HPLC: 99,8%). RMN ^{1}H: (300 MHz, CDCl_{3}) 8,14-7,89 (s a, 3H), 7,75 (d, J 9,0 Hz, 2H), 7,15 (d, J 8,0 Hz, 2H), 4,22-4,04 (m, 2H), 4,01-3,77 (m, 4H), 3,55-3,43 (m, 1H), 3,20-3,13 (m, 1H), 2,40-2,27 (m, 4H), 2,21-1,94 (m, 2H), 1,81-1,51 (m, 3H), 1,23 (t, J 7,0 Hz, 3H); HPLC: Waters Xterra EM C18 4,6 mm x 150 mm d.i., tamaño de partículas de 3,5 \mum, NH_{4}OH al 0,05% (ACN al 5%, H_{2}O al 95%, disolvente A), a NH_{4}OH al 0,05% (ACN al 95%, H_{2}O al 5%, disolvente B), del 5% de B al 20% de B en 10 minutos, cambiado al 95% de B a los 25 minutos y después cambiado al 5% de B al 1 minuto; 11,1 minutos (aminoéster 1).
WO2004098516, preparado de forma análoga a la patente de Estados Unidos 6.835.841), etanol (graduación del 100%, 11,4 l) y Pd al 10%/catalizador C (al 50% en peso, 284 g). La mezcla se hizo inerte con nitrógeno, después se presurizó con gas hidrógeno (45 psig) y se agitó vigorosamente a aprox. 40ºC hasta que el material de partida se consumió (HPLC). La suspensión se enfrió, se purgó con gas nitrógeno y el catalizador se retiró por filtración mientras se hacía inerte. El catalizador gastado se lavó con etanol (4,3 l). El filtrado y los lavados se combinaron y se concentraron al vacío hasta un volumen de 2-3 l, manteniendo mientras el lote entre 40º-60ºC. Se cargó acetato de isopropilo (5 l) y la mezcla se concentró hasta un volumen de \sim2 l hasta que la mayoría del etanol se eliminó (< 0,5%) y el contenido en humedad residual fue < 1.000 ppm. El volumen del lote se ajustó a \sim7,5 l mediante la adición de acetato de isopropilo. La mezcla se calentó a 80ºC hasta que se hizo transparente y después se enfrió a 65º-70ºC. Se añadieron cristales seminales de 1 (5 g) y el lote se enfrió a 50ºC durante 2 horas, después se enfrió a 20ºC durante 4 horas más y se mantuvo durante \sim10 horas. La suspensión resultante se filtró y la torta se lavó con acetato de isopropilo (2 l). El producto se secó al vacío a \sim35ºC hasta que los volátiles se redujeron por debajo del \sim1% (LOD). Se obtuvo sal 4-toluenosulfonato de (7R,8S)-8-amino-1,4-dioxa-espiro[4.5]decano-7-carboxilato de etilo 1 en forma de un sólido cristalino de color blanco (936 g, rendimiento del 83%, pureza mediante HPLC: 99,8%). RMN ^{1}H: (300 MHz, CDCl_{3}) 8,14-7,89 (s a, 3H), 7,75 (d, J 9,0 Hz, 2H), 7,15 (d, J 8,0 Hz, 2H), 4,22-4,04 (m, 2H), 4,01-3,77 (m, 4H), 3,55-3,43 (m, 1H), 3,20-3,13 (m, 1H), 2,40-2,27 (m, 4H), 2,21-1,94 (m, 2H), 1,81-1,51 (m, 3H), 1,23 (t, J 7,0 Hz, 3H); HPLC: Waters Xterra EM C18 4,6 mm x 150 mm d.i., tamaño de partículas de 3,5 \mum, NH_{4}OH al 0,05% (ACN al 5%, H_{2}O al 95%, disolvente A), a NH_{4}OH al 0,05% (ACN al 95%, H_{2}O al 5%, disolvente B), del 5% de B al 20% de B en 10 minutos, cambiado al 95% de B a los 25 minutos y después cambiado al 5% de B al 1 minuto; 11,1 minutos (aminoéster 1).
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Ejemplo 1, Etapa 9^{ii} alternativa: El
aminoéster 1 (63 g, 0,16 M, 1 equiv..; el producto de desprotección
reductora de un compuesto conocido - (véase, por ejemplo, R. J.
Cherney, documento WO 2004/098516 y G. V. Delucca & S. S. Ko,
documento WO 2004/110993) se colocó en un matraz de fondo redondo y
se añadió MeCN (500 ml). Después, se añadieron EDAC (33,1 g, 0,17
M, 1,1 equiv.), HOBt-H_{2}O (21,2 g, 0,16 M, 1,0
equiv.) y N-Cbz-L-metionina
(46,7 g, 0,17 M, 1,05 equiv.) seguido de TEA (48,0 ml, 0,35 M, 2,2
equiv.). Se observó una exotermia a 38ºC. La masa de reacción se
dejó en agitación a TA. Después de 30 min, el análisis por HPLC
indicó que la conversión se había completado. La masa de reacción se
diluyó con EtOAc (2,5 l) y se lavó con KHCO_{3} (4 x 500 ml,
solución ac. al 20% en peso) y salmuera (500 ml). La fase orgánica
se separó, se secó sobre MgSO_{4} y se concentró. El residuo se
disolvió en TBME y se reconcentró, dando
(7R,8S)-8-{(2S)-2-benciloxicarbonilamino-4-metilsulfanil-butiril-amino}-1,4-di-oxa-espiro[4.5]decano-7-carboxilato
de etilo 2 en forma de un semisólido pegajoso (76,2 g, rendimiento
del 98%, pureza 93AP). RMN ^{1}H: (300 MHz, CDCl_{3}) \delta
7,36-7,30 (m, 5H), 7,03 (d, J 9,0 Hz, 1H),
5,66 (d, J 8,0 Hz) 1H), 5,10 (s, 2H),
4,35-4,25 (m, 2H), 4,19-4,04 (m,
2H), 3,98-3,86 (m, 4H), 2,87-2,80
(m, 1H), 2,55-2,45 (m, 2H), 2,18 (dd, J 14,0
Hz, 7,0 Hz, 1H), 2,08 (s, 3H), 2,05-1,67 (m, 6H),
1,26 (t, J 7,0 Hz, 3H). HPLC: YMC-Pack Pro C18 5
\mum 4,6 x 150 mm, TFA al 0,05% (MeOH al 20%, H_{2}O al 80%), al
TFA al 0,05% (MeOH al 20%, MeCN al 80%), gradiente de 10 min al
0-100%. 10,01 min (Compuesto 2,93.1 AP). EMAR:
m/z 495,2166 [Calc: C_{24}H_{35}N_{2}O_{7}S
495,2165].
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Ejemplo 1, Etapa 9b alternativa: Se disolvió la
metionina amida 2 (75,0 g. 0,15 M) en Mel (225 ml, 3 ml/g) - se
apreció algo de gasificación pero no exotermia. La masa de reacción
se dejó en agitación en la oscuridad durante 16,5 h. Después de
este tiempo, se había formado un precipitado de color amarillo claro
espeso. Después, el matraz se evacuó a 200 mmHg y se retiró algo
del Mel. El material restante se suspendió en TBME (500 ml),
después de 30 min en agitación, la suspensión se filtró y la torta
se lavó con TBME (500 ml). El análisis por RMN de este material
indicó una pequeña cantidad de Mel restante. La torta se volvió a
suspender en TBME (500 ml), se filtró, se lavó con TBME (500 ml) y
se secó al vacío, dando yoduro de
[(3S)-3-benciloxicarbonilamino-3-{(7R,8S)-7-etoxicarbonil-1,4-di-oxa-espiro[4.5]dec-8-ilcarbamoil}-propil]-dimetilsulfonio
3 en forma de un sólido fluido de color blanquecino (93,5 g, al
97%, pureza al 99% de área). RMNH: (300 MHz, CDCl_{3}) \delta
7,75 (d, J 9,0 Hz, 1H), 7,38-7,27 (m, 5H),
6,40 (d, J 7,0 HZ, 1H), 5,10 (s, 2H),
4,76-4,65 (m, 1H), 4,48-4,39 (m,
1H), 4,14-3,85 (m, 6H), 3,84-7,73
(m, 1H), 3,68-3,55 (m, 1H), 3,21 (s, 3H), 3,12 (s,
3H), 2,90-2,83 (s, 1H), 2,52-1,55
(m, 8H), 1,24 (t, J 7,0 Hz, 3H). HPLC:
YMC-Pack Pro C18 5 \mum 4,6 x 150 mm, TFA al
0,05% (MeOH al 20%, H_{2}O al 80%), al TFA al 0,05% (MeOH al 20%,
MeCN al 80%), gradiente de 10 min al 0-100%. 2,45
min. (1-), 8,14 min (Compuesto 3,43,6AP, l^{-} 54,6AP), EMAR: m/z
509,2341 [Calc: C_{25}H_{37}N_{2}O_{7}S 509,2321].
Ejemplo 1, Etapa 9c alternativa: Se colocó
Cs_{2}CO_{3} (61,5 g, 0,19 M, 1,5 equiv.) en un matraz de fondo
redondo y se añadió DMSO anhidro (2,4 l). Después, se añadió en
porciones la sal sulfonio 3 (80,0 g, 0,13 M, 1,0 equiv.). Una vez
que la adición se completó, la masa de reacción se dejó en agitación
en la oscuridad durante 20 h. Después, la masa de reacción se
dividió por la mitad y cada mitad se trató por separado: la masa de
reacción se diluyó con EtOAc (2,0 l) y se lavó con salmuera (2 l) y
la fase orgánica se lavó con salmuera (500 ml). Después, las fases
ac. combinadas se lavaron con EtOAc (500 ml). Después, las fases
orgánicas combinadas se lavaron con salmuera (3 x 750 ml). La
segunda mitad de la masa de reacción se trató de una manera idéntica
y los extractos orgánicos combinados se secaron sobre MgSO_{4} y
se concentraron, dando
(7R,8S)-8-{(3S)-3-benciloxicarbonilamino-2-oxo-pirrolidin-1-il}-1,4-dioxa-espiro[4.5]decano-7-carboxilato
de etilo 4 en forma de un aceite ligeramente coloreado (56,5 g,
0,13 M, pureza al 100% de área) puro mediante análisis por RMN.
RMNH: (300 MHz, CDCl_{3}) \delta 7,38-7,30 (m,
5H), 5,37 (d a, J 4,0 Hz, 1H), 5,11 (s, 2H),
4,27-4,18 (m, 1H), 4,17-3,82 (m,
8H), 3,32 (t d, J 10,0 Hz, 60,0 Hz, 1H), 3,23 (c, J
5,0 Hz, 1H), 2,63-2,57 (m, 1H),
2,42-2,25 (m, 2H), 1,94-1,68 (m,
5H), 1,25 (t, J 7,0 Hz, 3H). HPLC: YMC-Pack
Pro C18 5 \mum 4,6 x 150 mm, TFA al 0,05% (MeOH al 20%, H_{2}O
al 80%), al TFA al 0,05% (MeOH al 20%, MeCN al 80%), gradiente de
10 min al 0-100%. 8,99 min (Compuesto 5, producido
en una columna, 4,2AP), 9,48 (Compuesto 4, 74,3AP). EMAR: mlz
447,2127 [Calc: C_{23}H_{31}N_{2}O_{7} 447,2131].
Ejemplo 1, Etapa 9d alternativa: Se disolvió
pirrolidinona 4 (50,0 g, 0,11 M) en acetona (500 ml) y se añadió
HCl 1 N (500 ml). Después, la masa de reacción se calentó a 65ºC.
Después de 20 min, el análisis por HPLC indicó que la reacción se
había completado. La masa de reacción se dejó enfriar a la TA y la
acetona se retiró en un evaporador rotatorio. Durante esta
destilación, el producto precipitó a partir de la solución en forma
de un sólido de color blanco. Esto se aisló por filtración y la
torta se lavó con agua. Después, la torta se secó por destilación
azeotrópica con tolueno (3 x 300 ml), dando
(1R,2S)-2-((3S)-3-benciloxicarbonilamino-2-oxo-pirrolidin-1-il)-5-oxo-ciclohexanocarboxilato
de etilo 5 en forma de un sólido de color blanco (39,8 g, al 88%,
pureza al 97% de área). RMN ^{1}H: (300 MHz, CDCI_{3}) \delta
7,37-7,32 (m, 5H), 6,65 (d a, J 4,0 Hz, 1H),
5,12 (s, 2H), 4,54-4,47 (m, 1H),
4,34-4,26 (m, 1H), 4,18 (dc, J 11,0 Hz, 7,0
Hz, 1H), 4,09 (dc, J 11,0 Hz, 7,0 Hz, 1H),
3,36-3,20 (m, 3H), 2,70-2,35 (m,
6H), 2,05-1,96 (m, 1H), 1,81 (quint., J 1 1,0
Hz, 1H), 1,24 (t, J 7,0 Hz, 3H). HPLC:
YMC-Pack Pro C 18 5 \mum 4,6 x 150 mm, TFA al
0,05% (MeOH al 20%, H_{2}O al 80%), al TFA al 0,05% (MeOH 20%,
MeCN al 80%), gradiente de 10 min al 0-100%. 8,95
min (Compuesto 5). EMAR: mlz 403,1864 [Calc:
C_{21}H27N_{2}O_{6} 403,1869].
Ejemplo 1, Etapa 9e alternativa: Se colocaron en
un matraz de fondo redondo la ciclohexanona 5 (22,5 g, 0,06 M, 1
equiv.), DMSO (30 ml) y Ti(O-iPr)_{4} (33,7
ml, 0,11 M, 2,04 equiv.). Después, se añadió en una porción
N-isopropil-N-metilamina (11,6 ml, 0,1 1 M, 2,0
equiv.). La mezcla se dejó en agitación durante 30 min a la
temperatura ambiente antes de enfriarse a una temperatura < 3ºC
en hielo/agua. Después, se añadió MeOH (30 ml) seguido de la adición
en porciones de NaBH_{4} (4,33 g, 0,11 M, 2,04 equiv.) y se
mantuvo a una temperatura < 8ºC. 30 min después de que la
adición se completara, la masa de reacción se diluyó con cloruro de
metileno (300 ml) y después con NaOH (1 N, 40 ml). La suspensión
resultante se filtró a través de Celite y la torta se lavó con
cloruro de metileno (100 ml). Las aguas madre resultantes se
concentraron a presión reducida y el residuo se disolvió en EtOAc
(500 ml). Esta solución se extrajo con HCl 1 N (2 x 400 ml),
después las fases acuosas combinadas se basificaron con
Na_{2}CO_{3}. La extracción con EtOAc (4 x 250 ml) proporcionó
una fase orgánica transparente e incolora que se secó sobre
Na_{2}SO_{4} y se concentró, dando un polvo de color blanco
(24,6 g, al 96%, 7:1 de p.d.). Después, este material se suspendió
durante una noche en hexano (670 ml). El sólido se aisló por
filtración y se secó a presión reducida, dando
(1R,2S,SR)-2-((3S)-3-benciloxicarbonilamino-2-oxo-pirrolidin-1-il)-5-(isopropil-metil-amino)-ciclohexanocarboxilato
de etilo 6 en forma de un sólido de color blanco (20,9 g, al 81%,
24:1 p.d.). RMN ^{1}H: (300 MHz, CDCI_{3}) \delta
7,37-7,28 (m, 5H), 5,55 (d, J 4,5,1H), 5,10
(s, 2H), 4,42 (c, J 4,5,1H), 4,23-4,12 (m,
1H), 4,08 (dc, J 10,5, 7,0, 1H), 4,02 (dc, J 10,5,
7,0, 1H), 3,84 (t, J 9,0, 1H), 3,46-3,36 (m,
1H), 3,04 (septuplete, J 6,5, 1H), 2,86-2,80
(m, 1H), 2,63-2,48 (m, 2H), 2,17 (s, 3H, Me),
2,10-1,63 (m, 7H), 1,22 (t, J 7,0, 3H), 1,00
(d, J 6,5, 3H), 0,97 (d, J 6,5, 3H). HPLC:
YMC-Pack Pro C18 5 \mum 4,6 x 150 mm, NH_{4}O
Ac. 0,01 M (20:80 de MeOH:agua) a NH_{4}OAc 0,01 M (20:5:75 de
MeOH:agua:MeCN) gradiente de 15 min del 10 al 100%. 8,23 (Compuesto
6), 8,88 (5-epi-Compuesto 6). EMAR: 460,2798 [Calc:
C_{25}H_{38}N_{A}O_{5} 460,2811].
Ejemplo 1, Etapa alternativa 9f: El aminoéster 6
(9,76 g, 2,12 mmol) se disolvió en HCl 2 N (80 ml) y después se
calentó a \sim55ºC en una atmósfera inerte. La reacción se agitó
durante 20 h y después se enfrió a la temperatura ambiente. La
solución de reacción se lavó dos veces con tolueno (porciones de 25
ml), se neutralizó a un valor de pH de 6-7 mediante
la adición de gránulos de KOH y después se extrajo ocho veces con
cloruro de metileno (porciones de 100 ml). Los extractos combinados
se secaron (Na_{2}SO_{4}), se filtraron y se concentraron a
presión reducida hasta alcanzar un volumen total de 50 ml. Después,
la solución concentrada se añadió lentamente a terc-butil
metil éter de (300 ml) durante 15 min en un embudo de adición con
agitación vigorosa. La suspensión blanca resultante se agitó a la
temperatura ambiente durante 1 h, después se enfrió a 0ºC y se
agitó durante 1 h. El producto se filtró y se lavó dos veces con
metil terc-butíl éter (porciones de 25 ml). El agua de la
torta húmeda se retiró por destilación azeotrópica con acetonitrilo
(300 ml). El producto se secó a presión reducida, proporcionando
ácido
(1R,2S,5R)-2-((3S)-3-benciloxicarbonilamino-2-oxo-pirrolidin-1-il)-5-(isopropil-metil-amino)-ciclohexanocarboxílico
7, (7,69 g, rendimiento del 84%) en forma de una espuma de color
blanco. RMN ^{1}H: (400 MHz, 50ºC, CDCl_{3}) \delta
7,44-7,32 (m, 5H), 6,10 (s ancho, 1H), 5,19 (s ap.,
2H), 4,42 (dd, J = 15,6, 7,8 Hz, 1H),
4,29-4,23 (m, 1H), 3,68-3,60 (m,
2H), 3,33-3,27 (m, 2H), 3,20 (s ancho, 1H), 2,99 (s
ancho, 1H), 2,51 (s, 3H), 2,49-2,45 (m, 3H),
2,33-2,31 (m, 1H), 2,00 (ddd, J = 9,0, 8,6,
3,9 1H), 1,95-1,78 (m, 2H),
1,36-1,21 (m, 6H). CLEM: m/z 432,20 [Calc:
C_{23}H3_{4}N_{3}O_{5} 432,25].
Ejemplo 1, Etapa alternativa 9g: Se disolvió el
aminoácido 7 (6,3 g, 14,7 mmol, 1,0 equiv.) en THF (80 ml) en una
atmósfera de N_{2} y se añadió en porciones NaH (584 mg, 14,7
mmol, 1,0 equiv., dispersión al 60% en peso en aceite mineral).
Cuando la adición se completó y el desprendimiento de gas había
cesado, la masa de reacción se concentró a presión reducida y el
sólido resultante se destiló azeotrópicamente con tolueno (50 ml),
dando un sólido de color blanco (KF al 0,59% en peso). Este sólido
se suspendió en tolueno (100 ml) en una atmósfera de N_{2} y se
calentó a 90ºC. Se añadió gota a gota DPPA (3,32 ml, 15,3 mmol, 1,05
equiv.) durante 2 min. Después de \sim5 min, todos los sólidos se
habían disuelto y después de 10 min se observó la precipitación de
un sólido de color blanco. Después de 30 min, el análisis por HPLC
indicó que la reacción se había completado. La masa de reacción se
dejó enfriar a la TA antes de filtrarse y la torta se lavó con
tolueno. Después, los líquidos se añadieron lentamente en solución
de AcOH/Ac_{2}O (80/20,168 ml) a 90ºC. Después de 45 min, el
análisis por HPLC todavía indicaba algo de isocianato. Después de
1,15 h, la masa de reacción se enfrió a TA y se diluyó con tolueno
(100 ml) y agua (100 ml). La fase orgánica se retiró y el tolueno se
lavó con HCl 1 N (1 ml). Después, las fases ac. combinadas se
basificaron con K_{2}CO_{3}(s) y se llevaron a un valor
de pH de 12 con NaOH (IÓN), manteniendo la temperatura por debajo de
20ºC. Después, la fase ac. se extrajo con cloruro de metileno (4 x
150 ml) y las capas orgánicas combinadas se secaron sobre
K_{2}CO_{3} y se concentraron, dando
(S)-1-((1S,2R,4R)-2-acetamido-4-(isopropil(metil)amino)ciclohexil)-2-oxopirrolidin-3-ilcarbamato
de bencilo 8 en forma de una espuma de color blanco (4,5 g, al 70%,
pureza 94AP). La RMN ^{1}H fue idéntica al material obtenido a
partir de la ruta que se ha descrito anteriormente (Ejemplo 1, Etapa
9). HPLC: YMC-Pack Pro C18 5 \mum 4,6 x 150 mm,
TFA al 0,05% (MeOH al 20%, H_{2}O al 80%), al TFA al 0,05% (MeOH
al 20%, MeCN al 80%), gradiente de 10 min al
0-100%. 7,20 min (Compuesto 8), 7,85 min (dímero de
urea). EMAR: 445,2809 [Calc: C_{24}H_{37}N_{4}O_{4}
4445,2815].
Ejemplo 1, Preparación alternativa, Etapa 1: Se
combinó sal de 4-toluenosulfonato
(7R,8S)-8-amino-1,4-dioxa-espiro[4.5]decano-7-carboxilato
de etilo 1 (450,1 g) con clorhidrato de
1-etil-3-(3-dimetil-amino-propil)carbodiimida
(236,3 g), 1-hidroxi benzotriazol hidrato (171,9
g), N-carbobenciloxi-L-metionina (333,4 g) y
acetonitrilo (3,1 l). A la mezcla agitada se le añadió trietilamina
(249,5 g) por debajo de 30ºC. Después de que la reacción se
completara (HPLC), la mezcla se diluyó con acetato de etilo (8,2 l)
y se lavó con solución de bicarbonato potásico acuoso al 25% (2 x
4,5 l) seguido de agua (4,5 l). La fase orgánica se separó y se
concentró a presión reducida, obteniendo una solución de
(7R,8S)-8-((S)-2-benciloxicarbonilamino-4-metilsulfanil-butirilamino)-1,4-dioxaespiro[4.5]decano-7-carboxilato
de etilo 2 (1,4 l). Se añadió yoduro de metilo (2,39 kg), el
recipiente se protegió de la luz y la mezcla se mantuvo en
agitación lenta durante aprox. 24 h. Al precipitado amarillo espeso
se le añadió terc-butil metil éter (2,7 l) y la mezcla se
mantuvo durante aprox. 1 h. El producto se aisló por filtración y la
torta se lavó con terc-butil metil éter (2 x 1,4 l) y
después se secó al vacío, produciendo yoduro de
[(S)-3-benciloxi-carbonilamino-3-((7R,8S)-7-etoxicarbonil-1,4-dioxa-espiro[4.5]dec-8-ilcarbamoil)-propil]-dimetilsulfonio
3 (671,4 g, rendimiento de \sim94%) en forma de un sólido de
color blanquecino (pureza del 99% por HPLC).
Ejemplo 1, Preparación alternativa, Etapa 2: Se
combinaron en un reactor equipado con una torre de lavado la sal
sulfonio 3 (619,4 g), carbonato de cesio (416,8 g) y
dimetilsulfóxido anhidro (6,2 l) para neutralizar los sulfuros
volátiles. Se mantuvo en agitación vigorosa hasta que se obtuvo la
conversión completa (HPLC). Se añadió acetato de etilo (12,4 l),
seguido de salmuera al 20% (3 l). La fase orgánica se separó, se
lavó dos veces con salmuera (2 x 3 l) y se evaporó, obteniendo una
solución de
(7R,8S)-8-((S)-3-benciloxicarbonilamino-2-oxo-pirrolidin-1-il)-1,4-dioxa-espiro[4.5]decano-7-carboxilato
de etilo 4 en acetato de etilo (\sim0,8 l). Se añadió acetona
(2,55 l) seguido de solución acuosa 0,5 M de ácido clorhídrico (2,3
l). Con buen mezclado, la solución se calentó de 50 a 60ºC hasta que
se completó la conversión de 4 a
(1R,2S)-2-((S)-3-benciloxicarbonilamino-2-oxo-pirrolidin-1-il)-5-oxo-ciclohexanocarboxilato
de etilo 5 (HPLC). La mezcla se concentró a presión reducida
mientras permanecía por debajo de 40ºC, se enfrió a \sim30ºC y se
añadió agua (4,1 l). La suspensión resultante se enfrió de 5 a 10ºC
y se agitó durante \sim1 hora. El producto se filtró y la torta
se lavó con agua (2 x 2,5 l). Después de la destilación, la torta se
secó a un peso constante por debajo de 40ºC en un horno de vacío.
Se obtuvo ciclohexanona 5 (272 g, rendimiento del 70%) (pureza del
98,7% por HPLC).
Ejemplo 1, Preparación alternativa, Etapa 3: Se
disolvió la ciclohexanona 5 (206 g) en diclorometano (1,1 l) y se
cargó en un hidrogenador. Se añadieron tetraisopropóxido de titanio
(218,2 g) y N-isopropil N-metilamina (63,64 g) y la
mezcla se agitó a la temperatura ambiente (de 23 a 25ºC) durante al
menos 5 h. Se añadió catalizador de platino (Pt al 5%/S/C, 15 g,
aprox. al 7,5% con relación a 5) y se realizó la hidrogenación a
\sim30 psig durante al menos 6 h, produciendo una mezcla de
(1R,2S,5R)-2-((S)-3-benciloxicarbonilamino-2-oxo-pirrolidin-1-il)-5-(isopropil-metil-amino)-ciclohexanocarboxilato
de etilo 6 y su 5-epi-isómero (\sim7%). El catalizador se
retiró por filtración y el filtrado se concentró a presión reducida
hasta alcanzar un volumen de aprox. \sim600 ml. Se añadió acetato
de etilo húmedo (agua al \sim3%, 2,0 l) con agitación vigorosa
durante un periodo de al menos 1,5 h. La agitación se continuó
durante al menos 6 h más. La suspensión se filtró. La torta de
filtro se lavó con acetato de etilo (1,0 l) y se desechó. El
filtrado y los lavados combinados se concentraron hasta alcanzar un
volumen de \sim400 ml. Se añadió tolueno (2,0 l) y la solución se
lavó con ácido clorhídrico acuoso 2 M (2 x 400 ml). La fase acuosa
se calentó de 50º a 60ºC durante aprox. 20 h o hasta que la
hidrólisis de 6 se consideró completa (HPLC). Se añadió una solución
acuosa de hidróxido sódico hasta ajustar el pH a un valor de
\sim10 y la mezcla se extrajo con tolueno (3 x 600 ml). La fase
orgánica se descartó y el pH se reajustó a un valor de \sim6
mediante la adición de ácido clorhídrico acuoso. La fase acuosa se
concentró hasta alcanzar un volumen de \sim600 ml a presión
reducida y se extrajo con cloruro de metileno (al menos 3 x 2,0 l).
Las fases de cloruro de metileno combinadas se evaporaron a presión
reducida y se reemplazaron continuamente con THF, obteniendo una
solución de ácido
(1R,2S,5R)-2-((S)-3-benciloxicarbonilamino-2-oxo-pirrolidin-1-il)-5-(isopropil-metil-amino)-ciclohexano
carboxílico 7 (\sim14R g) en THF (\sim4 l). Se añadieron los
cristales seminales de 8, seguido de solución de metóxido sódico al
25% en metanol (81,24 g) por debajo de 25ºC. La suspensión se
mantuvo en agitación durante al menos 16 h más. El producto se aisló
por filtración y la torta se lavó con THF (4 x 200 ml) y se secó
hasta alcanzar un peso constante al vacío por debajo de 30ºC. Se
obtuvo sal sódica de
(1R,2S,5R)-2-((S)-3-benciloxicarbonilamino-2-oxo-pirrolidin-1-il)-5-(isopropil-metil-amino)-ci-clohexano-carboxilato
8 seco (139 g, rendimiento de \sim60% del 5).
Ejemplo 1, Preparación alternativa, Etapa 4: Se
combinaron la sal sódica de aminoéster 8 (100 g), fosfato de
difenilo (3,86 g), terc-BuOH (1275 ml) y tolueno (225 ml) y
se calentaron a reflujo a presión reducida. Se recogieron aprox.
500 ml del destilado y se descartaron mientras se reemplazaba
continuamente con una solución de tolueno en terc-BuOH. Se
retiró al vacío y el destilado se cambió por inactivó con percolato
a través de una columna cargada con tamices moleculares y se dejó
regresar al recipiente. Después de que se completara el secado, a
la suspensión se le añadió lentamente DPPA (52,4 ml; disuelto en 60
ml de tolueno) a 80ºC. Tras completarse la conversión (HPLC), el
terc-BuOH se retiró por destilación al vacío y se reemplazó
continuamente con tolueno. La mezcla se enfrió a la temperatura
ambiente y se lavó dos veces con K_{2}HPO_{4} acuoso al 10% (1
x 800 ml, 1 x 400 ml) y agua (400 ml). La fase orgánica se calentó y
se concentró al vacío hasta alcanzar un volumen de aprox. 270 ml.
Se retiró al vacío y se añadió lentamente heptano (1,1 l) a aprox.
80ºC, seguido de cristales seminales de 9 (\sim1 g). La
suspensión se enfrió lentamente a la temperatura ambiente y se
aisló por filtración
{(S)-1-[(1S,2R,4R)-2-terc-butoxicarbonilamino-4-(isopropil-metil-amino)-ciclo-hexil]-2-oxo-pirrolidin-3-il}-carbamato
de bencilo 9 en forma de un sólido de color blanco (86,76 g,
rendimiento del 78%).
Ejemplo 1, Preparación alternativa, Etapa 5: El
carbamato de terc-butilo 9 (50 g) se disolvió en Tolueno
(500 ml) e i-PrOH (150 ml). Después, la solución resultante
se calentó a 60ºC. Se añadió ácido metanosulfónico (19,6 ml) por
debajo de 65ºC. Después de que la reacción se completara (HPLC), la
mezcla se enfrió a la TA y se añadió lentamente trietilamina (69,4
ml) por debajo de 25ºC. Después, se añadió anhídrido acético por
debajo de 25ºC. Después de 1 h, se añadió ácido acético (250 ml) por
debajo de 25ºC. La fase de tolueno se descartó y a la fase acuosa
se le añadió 2-metil-THF (500 ml).
La mezcla se agitó vigorosamente y se basificó con NaOH (solución
acuosa al 25%) a un valor de pH de 12. La fase acuosa se descartó y
la fase orgánica se lavó con salmuera (250 ml). La fase orgánica se
concentró a presión reducida y se reemplazó continuamente con
i-PrOH. La solución se enfrió y se filtró, proporcionando
{(S)-1-[(1S,2R,4R)-2-acetilamino-4-(iso-propil-metil-amino)-ciclohexil]-2-oxo-pirrolidin-3-il}-carbamato
de bencilo 10 en solución de i-PrOH que se usó directamente
en la hidrogenación.
Ejemplo 1, Preparación alternativa, Etapa 6: A
una solución que contenía la acetamida 10 (\sim61 g) en
i-PrOH (\sim625 ml) se le añadió catalizador húmedo Pd al
10%/C (2,5 g) y la suspensión se hidrogenó a 30 psig y aprox. 25ºC
durante al menos 2 h. Después de que se completara (HPLC), el
catalizador se retiró por filtración y el filtrado se concentró
hasta alcanzar un volumen de aprox. 550 ml. Se añadió agua (8,8 ml)
seguido de ácido clorhídrico 5,6 N en solución de i-PrOH
(69,5 ml). La suspensión resultante se mantuvo a la temperatura
ambiente durante una noche. El producto se aisló por filtración y la
torta se aclaró con i-PrOH (2 x 100 ml) y se secó al vacío
hasta alcanzar un peso constante a \sim50ºC, dando
N-[(1R,2S,SR)-2-((S)-3-amino-2-oxo-pirrolidin-1-il)-5-(isopropil-metil-amino)-ciclohexil]-acetamida
11 (55,6 g, rendimiento del 97%) en forma de su sal de ácido
clorhídrico (ensayo de base libre al 73,6%, HPLC).
Ejemplo 1, Preparación alternativa, Etapa 7: Al
6-trifluorometil-quinazolin-4-ol
12 (20,1 g) en MeCN (400 ml) se le añadió una solución 5,5 M de
metóxido sódico en metanol (17,0 ml). La suspensión resultante se
destiló a presión reducida y se reemplazó continuamente por MeCN
para retirar el metanol. A la suspensión se le añadió DMF (1,4 g),
seguido de cloruro de oxalilo (13,0 ml) por debajo de 50ºC. Después
de que se completara la reacción (HPLC), el exceso de reactivo se
retiró a presión reducida, dando \sim400 ml de la suspensión. La
mezcla se enfrió a la temperatura ambiente y se lavó con
K_{2}HPO_{4} acuoso al 10% (1 x 1,0 l, 1 x 0,5 l),
proporcionando
4-cloro-6-trifluorometil-quinazolina
13 (\sim21,2 g) en aprox. 450 ml de solución húmeda de MeCN, que
se usó directamente en la reacción de acoplamiento posterior
(pureza del 99,8% por HPLC).
Ejemplo 1, Preparación alternativa, Etapa 8: A
una mezcla de acetamida 11 (28,5 g, sal HCl, ensayo de base libre
al 73,6%), acetonitrilo (100 ml),
N,N,-di-isopropil-N-etilamina (61 ml)
a la temperatura ambiente se le añadió una solución de 13
(\sim21,2 g) en MeCN (\sim450 ml). La mezcla homogénea se
mantuvo durante una noche. Después que se completara la reacción
(HPLC), la mezcla se concentró al vacío hasta alcanzar un volumen de
aprox. 125 ml. Se añadió una solución acuosa al 9,5% de ácido
acético (240 ml) y la fase acuosa se extrajo con cloruro de
metileno. La fase acuosa se separó y se añadió terc-butil
metil éter (450 ml), seguido de solución acuosa 2 N de hidróxido de
litio para ajustarla a un valor de pH > 11,5. La fase orgánica se
separó, se lavó con agua y se filtró. Aproximadamente, la mitad de
la fase de éter se diluyó con terc-butil metil éter
(\sim250 ml) y se concentró al vacío. Se añadió lentamente
heptano (45 ml) a menos de 60ºC, seguido de cristales seminales del
Ejemplo 1 (0,4 g). Se añadió más heptano (125 ml), la mezcla se
enfrió lentamente a la temperatura ambiente y la suspensión
resultante se mantuvo durante una noche. El producto se aisló por
filtración y la torta se lavó con heptano y se secó al vacío hasta
peso constante, dando
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropilamino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)-quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
14 (15,0 g, rendimiento del 85%).
Ejemplo 1, Producción de sal de
bis-ASB y purificación: La totalidad de la base
libre amorfa del ejemplo Ejemplo 1, Etapa 11 se disolvió en metanol
(600 ml). La solución resultante se calentó a 60ºC y se cargó con
ácido bencenosulfónico (2,5 equiv.). La mezcla se enfrió a la
temperatura ambiente y el solidó blanco resultante se recogió por
filtración, produciendo la sal del ácido bis-benceno
sulfónico del compuesto del título (95 g, al 86%). Este material
tenía una pureza > 99% por HPLC. Este material se purificó
adicionalmente por recristalización en 80/20 de EtOH/H_{2}O, que
proporcionó la sal libre de cualquier metanol residual. pureza por
HPLC = 99,8%. RMN ^{1}H (500 MHz, D_{2}0) \delta ppm 8,75 (1H,
s), 8,66 (1H, s), 8,25 (1H, d, J = 8,80 Hz), 7,90 (1H, d,
J = 8,80 Hz), 7,75 (4H, d, J = 8,25 Hz),
7,43-7,57 (6 H, m), 5,42 (1H, t),
4,33-4,44 (1H, m), 4,09-4,19 (1H,
m), 3,83-3,91 (1H, m), 3,74-3,83
(2H, m), 3,61 (1H, t, J = 1 1,55 Hz), 2,75 (3H, d, J
= 6,60 Hz), 2,61-2,70 (1H, m),
2,31-2,44 (1H, m), 2,20-2,27 (1H,
m), 2,17 (2H, d, J = 12,10 Hz), 1,94-2,04
(1H, m, J = 12,65 Hz), 1,90-1,95 (3H, m),
1,72 -1,91 (2H, m), 1,37 (3H, d, J = 6,05 Hz), 1,29 (3H, d,
J = 6,60 Hz). La calorimetría diferencial de barrido utilizó
una velocidad de calentamiento 10ºC/min y reveló una endoterma de
fusión/descomposición con una temperatura inicial de 297,6ºC y un
pico de temperatura a 299,1ºC.
Ejemplo 1, Cristalización de la Base Libre: Una
muestra de la base libre amorfa de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
(1 g) se disolvió en diclorometano (5 ml). La solución se cargó con
heptano (30 ml) y después se calentó para destilar el
diclorometano. La solución se enfrió a 40ºC y precipitó un sólido de
color blanco. La suspensión se calentó a 90ºC y se agitó durante 2
h. La suspensión se enfrió a la temperatura ambiente y se filtró,
proporcionando la base libre del compuesto del título. No quedó
evidencia de ningún disolvente residual por RMN ^{1}H.
Diversas formas de cristal de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
incluyendo la base libre y las formas de sal y solvatos de la
misma, se prepararon y se caracterizaron como se divulga a
continuación.
Los datos se recogieron en un difractómero
Bruker-Nonius (BRUKER AXS, Inc., 5465 East Cheryl
Parkway Madison. Documento Wl 53711 Estados Unidos) de serie CAD4.
Los parámetros de celdilla unitaria se obtuvieron a través de
análisis por mínimos cuadrados de los ajustes del difractrómetro
experimental de 25 reflexiones de ángulo elevado. Las intensidades
se midieron usando radiación Cu K\alpha (\lambda = 1,5418
\ring{A}) a una temperatura constante con la técnica de barrido
variable de \theta-2\theta y se corrigieron sólo
para los factores de polarización de Lorentz. Los recuentos de
fondo antecedentes se recogieron en los extremos del barrido para
la mitad del tiempo del barrido. Como alternativa, se recogieron los
datos de un monocristal en un sistema Bruker-Nonius
Kappa CCD 2000 usando radiación Cu K\alpha (\lambda = 1,5418
\ring{A}). La indexación y el procesamiento de los datos de
intensidad medidos se realizaron con el paquete de software HKL2000
(Otwinowski, Z. & Minor. W. (1997) en Macromolecular
Crystallography, eds. Carter, W.C. Jr & Sweet, R.M. (Academic.
Nueva York), Vol. 276, pp. 307-326) en el conjunto
de programas Collect. (Collect Data collection and processing user
interface: Collect: Data collection software, R. Hooft, Nonius B.V.,
1998,). Como alternativa, los datos de un monocristal se recogieron
en un sistema Bruker-AXS APEX2 CCD usando radiación
Cu K\alpha (\lambda = 1,5418 \ring{A}). La indexación y el
procesamiento de los datos de intensidad medidos se realizaron con
el paquete de software/conjunto de programas APEX2 (APEX2 Data
collection and processing user interface: APEX2 User Manual, v1.27;
BRUKER AXS, Inc., 5465 East Cheryl Parkway Madison, Wl 5371 Estados
Unidos).
Cuando se indicó, los cristales se enfriaron en
la corriente fría de un sistema Oxford cryo (Oxford Cryosystems
Cry-ostream cooler: J. Cosier and A.M. Glazer, J.
Appl. Cryst., 1986, 19, 105) durante la recogida de datos.
Las estructuras se disolvieron mediante
procedimientos directos y se refinaron en base a las reflexiones
observadas usando el paquete de software SDP (SDP, Structure
Determination Package, Enraf-Nonius, Bohemia NY
11716, Factores de dispersión, incluyendo f y f, en
el programa SDP se tomaron
"InternationalTablasforCrystallography", Kynoch Press,
Birmingham, England, 1974; Vol. IV, Tablas 2,2A and 2,3,1) con
pequeñas modificaciones locales o los paquetes cristalográficos
MAXUS (solución maXus y refinamiento de paquete de software: S.
Mackay, C.J. Gilmore, C. Edwards, M. Tremayne, N. Stewart, K.
Shankland. maXus: a computer program for la solución and refinement
of crystal structures from diffraction data o SHELXTL^{4}. Los
parámetros atómicos de derivación (factores de coordinación y
temperatura) se refinaron a través de una matriz de mínimos
cuadrados completa. La función minimizada en los refinamientos fue
\Sigma_{w}(|F_{O}| - |F_{C})^{2}R se
definió como \Sigma ||F_{O}| - |F_{C}||/\Sigma
|F_{O}| mientras R_{m} =
[\Sigma_{w}(|F_{O}| -
|F_{C}|)^{2}/\Sigma_{w}
|F_{O}|^{2}]^{1/2} en la que w es una función de
ponderación apropiada basada en los errores de intensidades
observados. Mapas diferentes se examinaron en todas las etapas de
refinamiento. Se introducieron hidrógenos en posiciones ideales con
factores de temperatura isotrópicos, pero no se variaron los
parámetros de hidrógeno.
Los datos PXRD se obtuvieron usando un Bruker C2
GADDS. La radiación era Cu K\alpha (40 KV, 50 mA). La distancia
entre la muestra y el detector era de 15 cm. Las muestras en polvo
se colocaron en capilares de vidrio sellados de 1 mm o menos de
diámetro; el capilar se hizo rotar durante la recogida de datos. Los
datos se recogieron durante 3 \leq 2\theta \leq 35º con un
tiempo de exposición de muestra de al menos 2000 segundos. Los
arcos de difracción bidimensionales resultantes se integraron para
crear un patrón PXRD unidimensional con un tamaño de etapa de 0,02
grados 2\theta en el intervalo de 3 a 35 grados 2\theta. Se
cargaron aproximadamente 200 mg en un portamuestras de difracción
de rayos X en polvo Philips (DPXRD). La muestra se transfirió a una
unidad Philips MPD (45 KV, 40 mA, Cu K\alpha). Los datos se
recogieron a la temperatura ambiente en el intervalo 2 a 32
2-theta (modo de barrido continuo, intervalo de
barrido 0,03 grados/s, divergencia automática y rendijas
antidispersión, rendija receptora: 0,2 mm, centrífuga de muestra:
conectada)
Los experimentos de DSC se realizaron en un
Instruments^{TM} TA modelo Q1000 ó 2920. La muestra
(aproximadamente 2-6 mg) se pesó en un recipiente
de aluminio y se registró con una precisión de una centésima de
miligramo y se transfirió al DSC. El instrumento se purgó con gas
nitrógeno a 50 ml/min. Los datos se recogieron entre la temperatura
ambiente y 300ºC a una velocidad de calentamiento de 10ºC/min. La
representación se hizo con los picos endotérmicos orientados hacia
abajo.
Los experimentos ATG se realizaron en un
Instruments^{TM} TA modelo Q500 ó 2950. La muestra
(aproximadamente 10-30 mg) se colocó en un
recipiente de platino previamente tarado. El peso de la muestra se
midió con precisión y se registró hasta milésimas de miligramo con
el instrumento. El horno se purgó con gas nitrógeno a 100 ml/min.
Los datos se recogieron entre temperatura ambiente y 300ºC a una
velocidad de calentamiento de 10ºC/min.
Los datos de celdilla unitaria y otras
propiedades de estos ejemplos se presentan en la Tabla 1. Los
parámetros de celdilla unitaria se obtuvieron a partir de análisis
cristalográfico por rayos X de un monocristal. Una explicación
detallada de celdillas unitarias se puede encontrar en el capítulo 3
de Stout & Jensen, X-Ray Structure
Determination: a Practical Guide, (MacMillian, 1968).
Las coordenadas atómicas fraccionarias para los
Ejemplos 2a, b, c, d, e, f, g y h, se presentan en las Tablas 2, 3,
4, 5, 6, 7, 8 y 9, respectivamente.
Además, las posiciones características de los
picos de difracción de rayos X en polvo (grados 2\theta \pm 0,1)
a TA para los Ejemplos 2a, b, d, e, f, g, y h, se presentan en la
Tabla 10, todo lo cual está basado en patrones de alta calidad
recogidos con un difractrómetro (CuK\alpha) con un capilar para
centrífuga con calibrado 2\theta con NIST de otro patrón
adecuado.
Finalmente, las Figuras 1, 2, 3, 4, 5, 6 y 7
presentan patrones de PXRD para los Ejemplos 2a, b, d, e, f, g y h,
respectivamente. Las Figuras 8 y 9 divulgan los análisis DSC y ATG,
respectivamente, del Ejemplo 2a y las Figuras 10, 11 y 12 divulgan
los de DSC, ATG y espectro de Isoterma de Absorción de Humedad del
Ejemplo 2f, respectivamente.
Ejemplo 2a, Forma N-1,
dibesilato:
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)
ciclohexil)acetamida, sal del ácido di-benceno sulfónico, se cristalizó a partir de acetato de etilo, etanol, metanol y acetona. La forma N-1, sal dibesilato, es la forma pura (sin moléculas de agua o disolvente) a partir de N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
sal del ácido di-benceno sulfónico. La forma N-1, dibesilato, se caracterizó por un patrón XRD que coincide con el patrón simulado generado a partir de la estructura de monocristal. La forma N-1, dibesilato, se caracterizó por un termograma DSC que tenía una endotermia de fusión/descomposición ajustada típicamente a aproximadamente 296ºC. La forma N-1, dibesilato, se caracterizó por una curva térmica ATG que tenía una pérdida de peso insignificante (consistente con una forma no solvatada) hasta alcanzar aproximadamente 280ºC.
ciclohexil)acetamida, sal del ácido di-benceno sulfónico, se cristalizó a partir de acetato de etilo, etanol, metanol y acetona. La forma N-1, sal dibesilato, es la forma pura (sin moléculas de agua o disolvente) a partir de N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
sal del ácido di-benceno sulfónico. La forma N-1, dibesilato, se caracterizó por un patrón XRD que coincide con el patrón simulado generado a partir de la estructura de monocristal. La forma N-1, dibesilato, se caracterizó por un termograma DSC que tenía una endotermia de fusión/descomposición ajustada típicamente a aproximadamente 296ºC. La forma N-1, dibesilato, se caracterizó por una curva térmica ATG que tenía una pérdida de peso insignificante (consistente con una forma no solvatada) hasta alcanzar aproximadamente 280ºC.
Ejemplo 2b, Forma DC-1:
Una muestra de base libre oleosa, de tipo gel
(amorfa) de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
(aprox. 0,5 g), después de extraerla de una muestra de la sal BSA,
se disolvió en diclorometano (aprox. 3 ml). A la solución se le
añadieron aprox. 5 ml de heptano y la mezcla oleosa resultante se
agitó vigorosamente mediante una barra de agitación magnética en un
vaso de precipitados abierto a 20-25ºC. Después de
que los disolventes se evaporaran se obtuvo un sólido blanco. El
sólido se resuspendió en la mezcla de aprox. 5 ml de heptano y 0,2
ml de diclorometano y se agitó a 25ºC durante 7 días. La suspensión
resultante se filtró y se secó al aire, proporcionando
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
Forma DC-1 como base libre. La Forma
DC-1 se caracteriza por un mol de diclorometano por
un mol de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre. La Forma DC-1, se caracterizó por un
patrón XRD que coincide con el patrón de simulación generado a
partir de los datos de la estructura de un monocristal.
Ejemplo 2c, Forma THOO-1:
Se disolvió 1 mg de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre, en 80 ul de TNF. El disolvente se retiró mediante
Speed-Vac (SpeedVac Plus, SC250DDA,
Savant/ThermoElectron Corp) a alto vacío a 22ºC durante 16 horas.
Un total de 100 ul de MIBK/Heptano (1/2 en volumen) se cargó a este
pocillo. Después de mantenerlo durante 2 semanas a la temperatura
ambiente (20-25ºC), se observaron cristales en este
pocillo. La Forma THOO se caracteriza por un mol de THF por un mol
de N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil
(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre.
Ejemplo 2d, Forma E-1:
N-((1R,2S,SR)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)
ciclohexil)acetamida, la base libre se cristalizó en una solución de etanol y heptano. La Forma E-1 se caracteriza por un mol de etanol por un mol de N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre. La Forma E-1 se caracterizó por un patrón XRD que coincide con el patrón generado a partir de los datos de estructura de un monocristal.
ciclohexil)acetamida, la base libre se cristalizó en una solución de etanol y heptano. La Forma E-1 se caracteriza por un mol de etanol por un mol de N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre. La Forma E-1 se caracterizó por un patrón XRD que coincide con el patrón generado a partir de los datos de estructura de un monocristal.
Ejemplo 2e, Forma A-1:
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)
ciclohexil)acetamida, base libre, se suspendió en una concentración en exceso de 150 mg/ml en acetona. La suspensión se dejó equilibrar a la temperatura ambiente, proporcionando suspensión un tanto diluida. Parte de la suspensión se filtró y, tanto el filtrado como la suspensión, se refrigeraron a 5ºC, proporcionando cristales de la mono acentona soluto (A-1). La Forma A-1 se caracteriza por un mol de acetona por un mol de N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre. La base libre de la Forma A-1 se caracterizó por un patrón XRD que coincide con el patrón de simulación generado a partir de los datos de estructura de monocristal.
ciclohexil)acetamida, base libre, se suspendió en una concentración en exceso de 150 mg/ml en acetona. La suspensión se dejó equilibrar a la temperatura ambiente, proporcionando suspensión un tanto diluida. Parte de la suspensión se filtró y, tanto el filtrado como la suspensión, se refrigeraron a 5ºC, proporcionando cristales de la mono acentona soluto (A-1). La Forma A-1 se caracteriza por un mol de acetona por un mol de N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida, base libre. La base libre de la Forma A-1 se caracterizó por un patrón XRD que coincide con el patrón de simulación generado a partir de los datos de estructura de monocristal.
Ejemplo 2f, Forma N-2:
Una muestra de la base libre oleosa (amorfa) de
tipo gel, de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
(aprox. 0,5 g), extraída de una muestra de la sal BSA, se suspendió
en heptano (aprox. 5 ml). El matraz se raspó con una espátula
metálica y la suspensión se agitó vigorosamente mediante una barra
de agitación magnética a 25ºC. Después de 24 horas de agitación, se
obtuvo una suspensión blanca de partículas cristalinas. La
suspensión se filtró y la torta húmeda se secó al vacío (40ºC),
proporcionando la forma N-2 pura (confirmada por
DPXRD) de la base libre. La Forma N-2 se
caracterizó por un patrón XRD que coincide con el patrón generado a
partir de los datos de la estructura de monocristal. La Forma
N-2 es la forma pura (sin moléculas de solvato o sin
moléculas de agua o disolvente) de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre. La Forma N-2, se caracterizó por un
termograma de DSC que tenía un inicio de endotermia en estado
fundido a aprox. 158ºC a aprox. 162ºC. La Forma N-2
se caracterizó por una curva térmica ATG que tenía una pérdida de
peso insignificante hasta aproximadamente 145ºC que coincide con los
datos de la estructura de un monocristal. La pérdida de peso
correspondía al disolvente adventicio. La isoterma de absorción de
humedad se caracterizó por una ganancia del 0,15% en peso en el
intervalo de aprox. 25% a aprox. 75% de H a 25ºC indicando que la
forma N-2 forma era ligeramente higroscópica (1
querría decir muy ligeramente o no higroscópica).
Ejemplo 2g, Forma AN-3:
Una suspensión de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-((6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre, a \sim200 mg/ml, se preparó en acetonitrilo y se dejó
equilibrar a la temperatura ambiente, proporcionando una suspensión
un tanto diluida. Parte de la suspensión se filtró y, tanto el
filtrado como la suspensión, se refrigeraron a 5ºC, proporcionando
cristales acetonitrilo solvato (AN-3). La Forma
AN-3 se caracteriza por un mol de acetonitrilo por
un mol de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
base libre. La Forma AN-3 se caracterizó por un
patrón XRD que coincide con el patrón generado a partir de los datos
de la estructura de monocristal.
Ejemplo 2h, Forma H4-1, HCl:
Una muestra de la base libre de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
(aprox. 0,2 g) se disolvió en etanol (aprox. 1 ml). A la solución
de base libre se le añadieron aprox. 310 \mul de solución de HCl
en etanol (concentración aprox. 1,25 M). La solución se sembró con
una pequeña cantidad de suspensión de cristales de la sal HCl. A la
solución turbia resultante se le añadieron 3 ml de heptano. Una
suspensión blanca se desarrolló gradualmente durante
1-2 horas mientras se agitaba a
20-25ºC. La suspensión se agitó a 20ºC durante 12
horas más, se filtró y se lavó con heptano. La torta húmeda se secó
al vacío (40ºC), proporcionando la sal HCl tetrahidrato, forma
H4-1, HCl. La Forma H4-1, HCl, se
caracteriza por tener 4 moles de agua por un mol de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
sal clorhidrato. La Forma H4-1, sal HCl
tetrahidrato, se caracterizó por un patrón SRD coincide con el
patrón generado a partir de los datos de la estructura de
monocristal.
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Las variables usadas en la Tabla 1 se definen a
continuación:
T = temperatura en grados Centrígrados para los
datos cristalográficos (TA es temperatura ambiente, que es
aproximadamente +22ºC)
V = volumen de celdilla unitaria
Z' = número de moléculas de fármaco por unidad
asimétrica
Vm = V (celdilla unitaria)/(Z moléculas de
fármaco por celdilla)
ge = Grupo espacial
dcalc = densidad de cristal calculada
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Posiciones características de los picos de
difracción de rayos X en polvo (grados 2\theta \pm 0,1) @ TA
para los Ejemplos 2a, b, d, e, f, g y h, basadas en un patrón de
alta calidad, recogidas con un difractrómetro (CuK\alpha) con un
capilar para centrífuga con calibrado 2\theta con un NIST de otro
patrón adecuado.
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Los ensayos y los datos que comparan las
características farmacológicas del Ejemplo 1 y los compuestos que
se encuentran en el documento WO2005021500 (que corresponde a la
Patente de Estados Unidos Nº 7.163.937 asignado al presente
Solicitante) se presentan a continuación.
\vskip1.000000\baselineskip
Véase también: Yoshimura y col., J. Immunol.
1990, 145, 292. El ensayo de unión a CCR2 humano se estableció con
células mononucleares de sangre periférica humana (CMSPh) usando
^{125}I-MCP-1 humana como el
ligando indicador. Las CMSPh se aislaron a partir del leukopak
humano (Biological Specialty Inc.) usando un protocolo convencional
con Ficoll-Hypaque (Mediatech Cellgro). Las CMSPh
aisladas se lavaron y diluyeron hasta 1 x 10^{7}/ml en tampón de
unión (RPMI-1640, 0,1% de ASB, Hepes 20 mM, pH 7,4).
^{125}I-MCP-1 (NEN/Perk Elmer) se
diluyó hasta 0,45 nM en tampón de unión. El compuesto se diluyó en
tampón de unión a 3 veces las concentraciones usadas en el ensayo
de unión. El ensayo de unión se realizó usando una placa de filtro
de 96 pocillos (Millipore). La unión total de
^{125}I-MCP-1 se evaluó de la
siguiente manera: a cada reacción de un volumen total de 150 \mul
se le añadieron 5 x 10^{5} células,
^{125}I-MCP-1 0,15 nM y compuestos
de modo que la concentración final varió desde 0 hasta 100 nM. Se
incubó la placa a temperatura ambiente durante 30 minutos seguido de
tres lavados con RPMI-1640, 0,1% de ASB, NaCl 0,4
M, Hepes 20 mM, pH 7,4 usando una filtración por colector de vacío
(Millipore). Después de lavar, la placa se secó por aire durante 60
minutos a temperatura ambiente. Después de esto, se añadió 25
\mul de Microscint 20 en cada pocillo. Se cerró la placa y se
contó en el Trilux durante 1 minuto. La unión no específica se
determinó en presencia de MCP-1 frío 300 nM
(PeproTech Inc.). El ^{125}I-MCP-1
específico se calculó como la diferencia entre la unión total y la
no específica. Todas las condiciones se ensayaron por duplicado. La
CI50 se define como la concentración de compuesto competidor que se
necesita para reducir la unión específica en el 50%.
\vskip1.000000\baselineskip
Se cultivaron las células HEK293 que expresaban
establemente los canales hERG (37ºC, al 5% de CO_{2}) en medio de
Eagle Modificado por Dulbecco suplementado con el 10% de suero
bovino fetal Sigma, aminoácidos no esenciales,
L-glutamina 2 mM y 500 \mug/ml de G418, en la
incubadora. El tampón de disociación celular se usó para extraer
las células de los matraces, que después se sembraron en placas
Corning blancas/negras de 384 pocillos recubiertas de
poli-D-lisina a una densidad de 2 x
10^{4} células por pocillo (20 \mul) en el 10% de medio de
suero y se incubaron durante 15-24 horas a 37ºC en
una incubadora con el 5% de CO_{2} hasta que se obtuvo una
monocapa de células confluentes.
Una solución madre de colorante
BTC-AM 2 mM (Molecular Probes, Eugene, OR) se
preparó en el 100% de DMSO y después se añadió 1:1 al 10% de ácido
plurónico (p/v) el día del ensayo. Después se diluyó el colorante en
tampón externo hERG EP (NaCl 140 mM, KCl 4,0 mM, CaCl_{2} 1,8 mM,
MgCl_{2} 1,0 mM), HEPES 10 mM, pH 7,3 y glucosa 10 mM; todos los
componentes del tampón se obtuvieron de Sigma Chemical). Esta mezcla
de colorante BTC (30 \mul) se añadió a las células y produjo una
concentración de carga final 2,5 \muM. Las células se incuban a
21ºC durante 45 minutos.
Los compuestos de ensayo se diluyeron hasta DMSO
10 mM en 60 \mul. Estos compuestos después se diluyeron en serie
a una proporción de 1:2 en DMSO en las columnas 1-10
y 11-20 de una placa de 384 pocillos. Las placas de
lectura de los ensayos se generaron mediante el estampado de 2,5
\mul de la placa diluida en serie de DMSO, que se preparó en el
Velocity 11 BioCel. Las placas acuosas se crearon añadiendo 48
\mul de tampón EP y después se diluyeron 30-45
minutos antes de que se leyera el ensayo en el FLIPR. Después de la
carga del colorante, los compuestos en dilución acuosa se añadieron
a las células de las tres placas replicadas (10 \mul) produciendo
un intervalo de concentración de diez puntos de 80 \muM a 0,156
nM. La concentración final de DMSO en el ensayo es del 1%. Las
placas acuosas de lectura del ensayo se prepararon y diluyeron en
un manipulador de líquidos Cybio.
Las células cargadas con el colorante se leyeron
en el FLIPR384 (Molecular Devices, Sunnyvale, CA), que excita el
colorante usando la longitud de onda de 488 nm de un laser de argón.
Se filtró la emisión usando un filtro de paso banda de 540 \pm 30
nm. Los canales hERG se estimulan para abrirse mediante la adición
de 20 \mul/pocillo de tampón EP que contiene K_{2}SO_{4} 66
mM y ThSO_{4} 1,3 mM (Sigma/Aldrich). Para cada placa, se
recogieron los datos cada segundo durante un periodo de 12
segundos, a los que se añadió el tampón que contiene TI^{+}
estímulo. La recogida de datos transcurrió cada segundo durante 48
segundos y después continuó cada tres segundos durante dos minutos
adicionales.
El intervalo dinámico del ensayo se determinó a
partir de blancos y pocillos totales. Los pocillos
totales (columnas 21 y 22) definen la máxima activación de
hERG para la placa (sin compuesto de ensayo presente) y los
pocillos blancos (columnas 23 y 24) definen el 100% de la
inhibición de hERG. Los pocillos blancos contienen 400 nM de
los inhibidores convencionales de hERG dofetilida (Ficker y col.,
1998) o E-4031. Los puntos de datos sin procesar de
cada pocillo de muestra se corrigieron primero para la variación de
la célula/señal, en fondo de control negativo (blancos) y se
normalizaron a los controles positivos (totales) usando el software
en línea FLIPR. Las curvas de respuesta de la concentración de los
compuestos de ensayo para el flujo de datos hERG Tl^{+} se
ajustaron después usando el Excel Fit (ID Business Solutions
Limited, Surrey, Reino Unido) con una ecuación logística de sitio
único, Y = A + ((B-A)/1 + ((C/X)^D))) en la que A =
máxima inhibición. Se analizaron los datos mediante el ajuste de las
amplitudes máximas de cambio en la fluorescencia para el flujo
TI^{+} para una condición dada de un compuesto de ensayo. Las
potencias (valores de CI_{50}) de los compuestos se calcularon a
partir de la media de pocillos triplicados.
\vskip1.000000\baselineskip
Véase también: W. A. Catterall, y col., J. Biol.
Chem. 1981, 256, 8922. El tampón de unión convencional contenía
HEPES 50 mM, Tris-HCl 50 mM, pH 7,4, Cloruro de
Colina 130 mM, KCl 5,4 mM, MgCl_{2} 0,8 mM, glucosa 5,5 mM, 40
\mug/ml de LqT. Las reacciones de unión se iniciaron mediante la
adición de sinaptosomas (preparado a partir de cerebro de rata
Wistar) a la mezcla de reacción que contenía
[^{3}H]-Batracotoxina 5 nM en un tampón de unión
convencional y el compuesto a ensayar a la concentración deseable.
Después se mezclaron las muestras y se incubaron a 37ºC durante 60
minutos. Se pararon las reacciones al añadir tampón de lavado helado
que contenía HEPES 50 mM, Tris-HCl 50 mM, pH 7,4,
CaCl_{2} 1,8 mM, MgCl_{2} 0,8mM y 1 mg/ml de albúmina de suero
bovino. Los sinaptosomas se recogieron de manera inmediata en
filtros de fibra de vidrio y se lavaron tres veces con tampones de
lavado. La radiactividad de [^{3}H]-Batracotoxina
que permaneció en los filtros se recontó usando espectrómetros de
centelleo líquido.
\vskip1.000000\baselineskip
El ensayo de permeabilidad de membrana
artificial paralelo (EPMAP) está constituido por una combinación
lipídica basada en lecitina especialmente formulada denominada como
el lípido del tracto gastrointestinal (TGI). El lípido de TGI se
usa para formar una membrana en un conjunto de placas en sándwich
similar a lo usado en los ensayos Caco-2. El lípido
de TIG se parece mucho a la composición y funcionamiento de la
membrana in vivo como se mide mediante los compuestos patrón
que se conoce que se absorben pasivamente en seres humanos. El
EPMAP se usa ampliamente como un modelo in vitro para la
exploración de la permeabilidad de los compuestos del
descubrimiento. El porcentaje de paso de los compuestos a través de
la membrana EPMAP se usa para determinar el coeficiente de
permeabilidad (Cp), que puede estar relacionado con la permeabilidad
pasiva in vivo del compuesto.
El coeficiente de permeabilidad (Cp) de un
compuesto particular se examina en un entorno dependiente de pH con
pH apical y basolateral de 7,4. Todos los experimentos se realizan
en determinaciones por triplicado.
Los compuestos (soluciones madre de 10 mM en el
100% de DMSO) se diluyeron 1:100 en tampón del pocillo donador pH
7,4 (pION CAT Nº110151), proporcionando una solución de ensayo de
100 \muM en el 1% de DMSO. El compuesto diluido en el tampón del
pocillo donador se transfirió a una placa Whatman Unifilter y se
filtró antes de dispensar 200 \mul en el pocillo donador de la
placa de ensayo (plON CAT Nº110163). La membrana EPMAP se formó
mediante la toma de 4 \mul con una pipeta de la solución lipídica
(plON CAT Nº110169) en la placa de filtro (VWR CAT Nº13503). La
membrana después se cubrió con 200 \mul de tampón del pocillo
aceptor a pH 7,4 (pION CAT Nº110139). La placa de ensayo EPMAP
(lado donador y lado aceptor) se combinó y se permitió incubar a
una temperatura ambiente durante 4 horas. La placa después se
desmontó y las placas del espectrofotómetro (VWR CAT Nº655801) se
rellenaron (150 \mul/pocillo). Las placas donadoras, aceptoras, de
referencia y blanco se leyeron en el lector de placas SpectraMax
UV. Se recogieron los datos con el software pION, que analiza el
espectro y genera valores de Cp.
El ensayo de quimiotaxis de CCR2 humano se
realizó con la línea celular monolítica humana
THP-1. Las células THP-1 se
marcaron primero con el colorante fluorescente
Calcein-AM en rojo fenol libre, ASB libre
RPMI-1640 (pH 7,4) a 37ºC durante 30 minutos con
mezclado suave cada 15 minutos. Las células marcadas se lavaron
después y se resuspendieron a 1 x 10^{5}/ml en tampón de
quimiotaxis (rojo fenol libre RPMI-1640, 0,1% de
ASB, pH 7,4). El compuesto de ensayo se diluyó en tampón de
quimiotaxis de modo que la concentración final del ensayo variaba
desde 0,01 nM a 1 \muM. El ligando MCP-1
(PeproTech Inc.) se diluyó hasta 20 nM en tampón de quimiotaxis.
Para realizar el ensayo se mezcló un volumen igual de diluciones de
compuestos de ensayo con un volumen igual de células marcadas
THP-1 (Mezcla 1) y un volumen igual de diluciones de
compuestos de ensayo se mezcló con un volumen igual de ligando
MCP-1 (Mezcla 2). Se incubaron ambas mezclas
independientemente a 37ºC durante 10 minutos seguido del mezclado
suave. La quimiotaxis inducida por MCP-1 se midió
después en una placa de quimiotaxis (Becton Dickinson) mediante la
colocación de 50 \mul de la Mezcla I en la cámara superior y 225
\mul de Mezcla 2 en la cámara inferior. Se cubrió la placa con una
capa y se incubó a 37ºC durante 30 minutos. 30 minutos más tarde,
se leyó la placa en un Cytofluor. Se ensayaron todas las condiciones
por duplicado. Para la señal de la determinación del ruido se
colocaron 50 \mul de células marcadas THP-1 solas
(5 x 10^{4}/pocillo) en la cámara superior y 225 \mul de
ligando MCP-1 solo se puso en la cámara inferior
(concentración final de 10 nM). La inhibición que se consiguió
mediante concentraciones diferentes de los compuestos de ensayo se
calculó como un porcentaje del control MCP-1 libre
de compuesto. La CI50 se define como la concentración de compuesto
de ensayo que se necesita para alcanzar el 50% de la inhibición de
la quimiotaxis celular.
El pinzamiento zonal celular total se usó para
medir directamente las corrientes de hERG en células
HEK-293 que expresaban establemente la subunidad
\alpha del canal de potasio de hERG clonado. Se ensayó el
compuesto en un tampón acuoso con pH 7,4 a temperatura ambiente.
Pulsos de ensayo repetitivos (0,05 Hz) se aplicaron a partir de un
potencial de reposo de -80 mV hasta +20 mV durante 2 segundos y las
corrientes de cola se indujeron después de los pulsos de ensayo
mediante el incremento del voltaje hasta -65 mV. Los efectos del
compuesto se calcularon midiendo la inhibición de la corriente de
cola pico.
El pinzamiento local celular total se usó para
medir directamente las corrientes de sodio entrantes en células
HEK-293 que expresaban el canal de sodio cardiaco
humano, SCN5A. Se ensayó el compuesto en un tampón acuoso libre de
proteínas. Para determinar la inhibición en el estado estacionario,
las corrientes de sodio se indujeron cada cinco segundos usando el
siguiente protocolo de voltaje: las células se mantuvieron a un
potencial de -90 mV y se aumentaron hasta -20 mV durante 60 ms. Se
calcularon los efectos midiendo la inhibición de la corriente de
pico durante el pulso de ensayo hasta -20 mV. La dependencia de la
tasa de inhibición se evaluó mediante estimulación a frecuencias de
1 Hz y 4 Hz.
Ratas macho Sprague-Dawley
(250-300 g) se usaron para los estudios
farmacocinéticos. Se mantuvieron las ratas en ayuno durante una
noche antes de la dosificación por vía oral y se alimentaron cuatro
horas después de la dosis. Las muestras de sangre (\sim0,3 ml) se
recogieron de la vena yugular en tubos que contenían K_{2}EDTA y
después se centrifugaron a 4ºC (1500-2000 xg) para
obtener plasma. En un estudio de biodisponibilidad oral, 2 grupos
de animales (N = 2-3 por grupo) recibieron el
compuesto de ensayo como infusión intravenosa (IV) (durante 10
min.) a través de la vena yugular o mediante una sonda oral. Las
muestras de sangre en serie se obtuvieron a 0,17 (sólo para IV),
0,25, 0,5, 0,75, 1, 2, 4, 6, 8 y 24 h después de la dosis. Las
muestras de plasma, que se obtuvieron mediante centrifugación a 4ºC
(1500-2000 xg), se almacenaron a -20ºC hasta el
análisis por LC/MS/MS.
La farmacocinética de varios compuestos de
ensayos se evaluó en monos Cynomolgus en un diseño cruzado. Se
mantuvieron en ayuno los monos durante una noche antes de la
dosificación por vía oral y se alimentaron 4 h después de la dosis.
Un grupo de 1-3 animales (3 a 5 kg) recibieron el
compuesto por infusión IV (durante 10 min.) mediante una vena
femoral y por sonda oral, con un descanso de 1 semana entre
tratamientos. Las muestras de sangre en serie (\sim0,3 ml) se
recogieron de una arteria femoral a 0,17 (sólo IV), 0,25, 0,5, 0,75,
1, 2, 4, 6, 8 y 24 h después de la dosis y se centrifugaron a 4ºC
(1500-2000 xg) para obtener plasma. Las muestras se
almacenaron a -20ºC hasta el análisis mediante LC/MS/MS.
Los parámetros farmacocinéticos se obtuvieron
mediante el análisis no compartimental de la concentración de
plasma frente a los datos de tiempo (software KINETICA^{TM},
Versión 4,2, InnaPhase Corporation, Filadelfia, PA). La
concentración de pico (Cmax) y el tiempo para Cmax se registraron a
partir de observaciones experimentales. El área bajo la curva desde
el tiempo cero al último tiempo de muestreo
(AUC(0-T)) se calculó usando una combinación
de las sumas trapezoidales lineales y logarítmicas. El aclaramiento
plasmático total (CLTp), el volumen de distribución del estado
estacionario (Vss), la semivida de eliminación aparente (T1/2) y el
tiempo medio de residencia (TMR) se estimaron después de la
administración IV. Las estimaciones del T1/2 se hicieron usando un
mínimo de 3 puntos de tiempo con concentraciones cuantificables. La
biodisponibilidad oral absoluta (F) se estimó como el porcentaje de
valores de AUC de dosis normalizadas después de las dosis orales e
IV.
A continuación se pueden encontrar datos para
cada compuesto como se mide en los ensayos descritos
anteriormente.
\vskip1.000000\baselineskip
Se muestra que los compuestos representativos de
los ejemplos son moduladores de la actividad del receptor de
quimiocinas usando ensayos que conocen aquellos especialistas en la
técnica. En esta sección, se divulgan estos ensayos y se dan sus
referencias bibliográficas. En este documento se divulgan más
ensayos en la sección denominada "Características Farmacológicas
Comparativas", anteriormente. Presentando la actividad en estos
ensayos del antagonismo de MCP-1, se espera que los
compuestos de los ejemplos sean útiles en el tratamiento de las
enfermedades humanas asociadas con las quimiocinas y sus receptores
afines. La definición de la actividad en estos ensayos es un
compuesto que demuestra una CI_{50} de 30 \muM o una
concentración menor cuando se mide en un ensayo particular.
(Yoshimura y col., J.
Immunol. 1990, 145,
292)
Al menos unos compuestos descritos en los
ejemplos tienen actividad en el antagonismo de la unión de
MCP-1 a las CMSP humanas (células mononucleares de
sangre periférica) descritas en este documento.
Las placas de filtro Millipore (NºMABVN 1250) se
tratan con 100 \mul de tampón de unión (0,5% de albúmina de suero
bovino, tampón HEPES 20 mM y cloruro de magnesio 5 mM en medio RPMI
1640) durante treinta minutos a temperatura ambiente. Para medir la
unión 50 \mul de tampón de unión, con o sin una concentración
conocida del compuesto, se combina con 50 \mul de
MCP-1 humana marcada con ^{125}I (para dar una
concentración final de 150 pM de radioligando) y 50 \mul de
tampón de unión que contiene 5 x 10^{5} células. Las células que
se usan para estos ensayos de unión pueden incluir células
mononucleares de sangre periférica humanas aisladas mediante una
centrifugación en gradiente Ficoll-Hypaque,
monocitos humanos, (Weiner y col., J. Immunol. Methods. 1980, 36,
89) o la línea celular THP-1 que expresa el receptor
endógeno. La mezcla de compuesto, células y radioligando se incuba
a temperatura ambiente durante treinta minutos. Las placas se
colocan en un colector al vacío, se aplica el vacío y las placas se
lavan tres veces con tampón de unión que contiene NaCl 0,5 M. Se
elimina el faldón de la placa, la placa se permite secar al aire, se
perforan los pocillos y se recuentan. El porcentaje de inhibición
de la unión se calcula usando los recuentos totales obtenidos en
ausencia de cualquier compuesto competidor y la unión de fondo se
determina mediante la adición de MCP-1 100 nM en la
placa del compuesto de ensayo.
(Sullivan, y col., Methods Mol.
Biol., 114,
125-133(1999)
Al menos unos compuestos descritos en los
ejemplos tienen actividad en el antagonismo del ensayo del flujo de
entrada de calcio inducido por MCP-1 descrito en
este documento.
La mobilización de calcio se mide usando el
colorante fluorescente indicador de Ca^{2+},
Fluo-3. Se incuban las células a 8 x 10^{5}
células/ml en solución salina tamponada con fosfato que contiene el
0,1% de albúmina de suero bovino, tampón HEPES 20 mM, glucosa 5 mM,
1% de suero bovino fetal, Fluo-3 AM 4 \muM y
probenecida a 2,5 mM durante 60 minutos a 37ºC. Las células usadas
para estos ensayos de calcio pueden incluir monolitos humanos
aislados como divulga Weiner y col., J. Immunol. Methods, 36,
89-97 (1980) o líneas celulares que expresan el
receptor endógeno CCR2 tales como THP-1 y la
MonoMac-6. Después se lavan las células tres veces
en solución salina tamponada con fosfato que contiene el 0,1% de
albúmina de suero bovino, HEPES 20 mM, glucosa 5 mM y probenecida
2,5 mM. Se resuspenden las células en solución salina tamponada con
fosfato que contiene un 0,5% de albúmina de suero bovino, HEPES 20
mM y probenecida 2,5 mM a una concentración final de
2-4 x 10^{6} células/ml. Se siembran las células
en microplacas de pared negra de 96 pocillos (100 \mul/pocillo) y
se centrifugan las placas a 200 x g durante 5 minutos. Se añaden
distintas concentraciones de compuestos a los pocillos (50
\mul/pocillo) y después de 5 minutos, se añaden 50 \mul/pocillo
de MCP-1 para dar una concentración final de 10 nM.
La movilización de calcio se detecta usando un lector de placas de
imágenes fluorescentes. La monocapa celular se excita con un laser
de argón (488 nM) y la fluorescencia asociada a las células se mide
durante 3 minutos, (cada segundo durante los primeros 90 segundos y
cada 10 segundos durante los siguientes 90 segundos). Se generan
los datos como unidades de fluorescencia arbitrarias y el cambio en
la fluorescencia para cada pocillo se determina como el diferencial
máximo-mínimo. La inhibición dependiente del
compuesto se calcula en relación a la respuesta de
MCP-1 solo.
(Bacon y col., Brit, J.
Pharmacol. 1988, 95,
966)
Al menos unos compuestos descritos en los
ejemplos tienen actividad en el antagonismo del ensayo de
quimiotaxis CMSP humana inducida por
MCP-1-descrito en este
documento.
La cámara de quimiotaxis Neuroprobe
MBA96-96-pocillos, placa de 96
pocillos Polyfiltronics MPC y los filtros de 8 micrones de
policarbonato libres de polivinilpirrolidona Neuroprobe PFD5 se
calientan en una incubadora a 37ºC. Las Células Mononucleares de
Sangre Periférica Humanas (CMSP) (Boyum y col., Scand. J. Clin. Lab
Invest. Suppl. 1968, 97, 31), recientemente aisladas mediante el
procedimiento convencional de separación por densidad ficoll, se
suspenden en DMEM a 1 x 10^{7} c/ml y se calientan a 37ºC. Una
solución de MCP-1 humana 60 nM también se calienta
a 37ºC. Las diluciones de los compuestos de ensayo se hacen 2x la
concentración necesaria en DMEM. La suspensión de CMSP y la
solución de MCP-1 60 nm se mezclan 1:1 en tubos de
polipropileno con DMEM precalentado con o sin una dilución de los
compuestos de ensayo. Estas mezclas se calientan en un calentador
de tubos a 37ºC. Para empezar el ensayo, añadir la mezcla
compuestos/MCP-1 en los pocillos de la placa de 96
pocillos que se ha colocado en la parte inferior de la cámara de
quimiotaxis Neuroprobe. El volumen aproximado es 400 \mul a cada
pocillo y debe haber un menisco positivo después de la distribución.
El filtro de 8 micrones se coloca suavemente en la parte superior
de la placa de 96 pocillos, se une una junta de goma a la parte
posterior de la cámara de arriba y se monta la cámara. Un volumen de
200 \mul de la mezcla compuestos/suspensión celular se añade a
los pocillos adecuados en la cámara de arriba. La cámara de arriba
se cubre con un sellador de placas y la unidad montada se pone en
una incubadora a 37ºC durante 45 minutos. Después de la incubación,
el sellador de placas se elimina y toda la suspensión celular
restante se aspira fuera. Se desmonta la cámara y se elimina el
filtro suavemente. Mientras que se mantiene el filtro a un ángulo de
90 grados, las células que no han migrado se eliminan usando un
chorro de solución salina tamponada con fosfato y la parte de arriba
del filtro se seca con la punta de un rodillo exprimidor de goma.
Se repite este lavado dos veces más. Se seca el filtro por aire y
después se sumerge completamente en tinte Wright Geimsa durante 45
segundos. Después se lava el filtro mediante su empapado en agua
destilada durante 7 minutos y después un lavado adicional de 15
segundos en agua destilada fresca. El filtro se seca de nuevo por
aire. Las células que han migrado al filtro se cuantifican mediante
microscopía visual.
Los receptores de quimiocinas de mamíferos
proporcionan una diana que interfiere o promueve la función celular
inmune en un mamífero, tal como un ser humano. Los compuestos que
inhiben o promueven la función del receptor de quimiocinas son
particularmente útiles para modular la función celular inmune para
fines terapéuticos. Por consiguiente, la presente invención se
dirige a compuestos que son útiles en la prevención y/o tratamiento
de una gran variedad de trastornos y enfermedades inflamatorios,
infecciosos e inmunoreguladores, incluyendo asma y enfermedades
alérgicas, infección por microbios patogénicos (que, por definición,
incluyen virus), así como patologías autoinmunes tales como la
artritis reumatoide y arterosclerosis.
Por ejemplo, un compuesto presente que inhibe
una o más funciones de un receptor de quimiocinas de mamíferos (por
ejemplo, un receptor de quimiocinas humanas) puede administrarse
para inhibir (es decir, reducir o prevenir) enfermedades
inflamatorias o infecciosas. Como resultado, uno o más
procedimientos inflamatorios, tales como la emigración de
leucocitos, la adhesión, la quimiotaxis, la exocitosis (por ejemplo,
de enzimas, histamina) o la liberación de mediadores inflamatorios,
se inhibe.
De manera similar, un compuesto presente que
inhibe una o más funciones del receptor de quimiocinas de mamíferos
(por ejemplo, un receptor de quimiocina humano) como se administra
para estimular (inducir o potenciar) una respuesta inmune o
inflamatoria, tal como la emigración de leucocitos, la adhesión, la
quimiotaxis, la exocitosis (por ejemplo de enzimas, histamina) o la
liberación de mediadores inflamatorios, lo que da como resultado
una estimulación beneficiosa de los procedimientos inflamatorios.
Por ejemplo, se pueden reclutar eosinófilos para combatir las
infecciones parasíticas. Además, el tratamiento de las enfermedades
inflamatorias, alérgicas y autoinmunes mencionadas anteriormente
puede contemplarse también para un compuesto presente que promueve
una o más funciones del receptor de quimiocinas de mamíferos si se
contempla el suministro de compuesto suficiente para producir la
pérdida de la expresión del receptor en células a través de la
inducción de la internalización del receptor de quimiocinas o del
suministro de compuestos de un modo que da como resultado la mala
dirección de la migración celular.
Además de los primates, tales como seres
humanos, se puede tratar a una variedad de otros mamíferos de
acuerdo con el procedimiento de la presente invención. Por ejemplo,
se pueden tratar mamíferos, incluyendo pero sin limitarse a, vacas,
ovejas, cabras, caballos, perros, gatos, cobayas, ratas u otras
especies bovinas, ovinas, equinas, caninas, felinas, de roedores o
murinas. Sin embargo, el procediendo también se puede practicar en
otras especies, tales como las especies aviares. El sujeto tratado
en los procedimientos anteriores es un mamífero, en macho o hembra,
en el que la modulación de la actividad del receptor de quimiocina
se desea. "Modulación" como se usa en este documento pretende
abarcar antagonismo, agonismo, antagonismo parcial y/o agonismo
parcial.
Derivación celular y cultivo celular: Un
grupo de células HT1080 que expresaban establemente el receptor de
quimiocinas endógeno CC 5 (CCR5) se desarrollaron usando los
procedimientos descritos por Harrimgtom, Sherf, y Rundlett (véanse
la patentes de Estados Unidos US 6.361.972 y US 6.410.266). Los
clones que tenían más expresión se aislaron usando citometría de
flujo repetitiva, seguida de la subclonación. Estas células se
cultivaron después en placas de 6 pocillos a 3 x 10^{5}
células/pocillos y se transfectaron con vector de ADN que contenía
la proteína quimérica G marcada con AH Gqi5 (Molecular Devices; 5
microgramos de vector de ADN linealizado en 15 microlitros de
Ex-Gen de Fermentes se usó para la transfección).
Dos días después de la transfección, las células se combinaron y se
sembraron en placas P 100. Siete días después de sembrarlas, las
colonias se eligieron, se expandieron y se analizaron respecto al
contenido de Gqi5 mediante transferencia de Western. Un clon
(denominado 3559.1.6) que tenía alta expresión de Gqi5 (de la
transfección) y de CCR5 (endógeno) se seleccionó y se usó para los
experimentos descritos a continuación. Las células HT1080 (clon
3559.1.6) se cultivaron con alfa-MEM suplementado
con el 10% de suero bovino fetal dializado, el 2% de
penicilina/estreptomicina/glutamina y 500 microgramos/ml de
higromicina B (concentración final) a 37ºC con el 5% de CO_{2} en
una atmósfera humidificada.
\newpage
Preparación de la Membrana: Un
precipitado celular que contenía 1 x 10^{8} células HT 1080 (clon
3559.1.5) se resuspendió en 5 ml de Tampón de Preparación de
Membrana helado (HEPES 50 mM, MgCl_{2} 5 mM, CaCl_{2} 1 mM) y
se homogeneizó a alta velocidad en el homogeneizador Polytron
durante 20 seg en hielo. El homogeneizado se diluyó con otros 25 ml
de Tampón de Preparación de Membrana y se centrifugó durante 12 min.
(48.000 x g a 4ºC). El precipitado celular se resuspendió en 5 ml
de Tampón de Preparación de Membrana antes de su rehomogeneización
como se divulga anteriormente. El homogeneizado se diluyó con 5 ml
de Tampón de Preparación de Membrana y se ensayó respecto a la
concentración de proteína CCR5.
Ensayo de unión: El homogeneizado
preparado recientemente a partir de la Preparación de Membrana
descrito anteriormente se diluyó en tampón de Unión (HEPES 50 mM,
MgCl_{2} 5 mM, CaCl_{2} 1 mM, 0,1% de ASB; una tableta completa
de inhibidor de proteasa se añadió antes del ensayo) para conseguir
una concentración final de proteínas de 10 microgramos/pocillo
(placas sólidas blancas de 96 pocillos de Coming, Inc.). Esta
preparación de membrana se mezcló con perlas
WGA-SPA (Amerhsam; preempapado en tampón de Unión)
para dar una concentración de 200 microgramos/pocillo. La mezcla
perlas SPA/membrana (100 microlitros/pocillo) se añadió después a
una placa que se había presalpicado con 2 microlitros de DMSO que
contenía distintas concentraciones de productos de ensayo (DMSO
puro para el control negativo; distintas concentraciones de ejemplos
de presente invención para los productos de ensayo;
MIP-1 beta 500 nM como un control positivo). El
ensayo de unión se inició a través de la adición de 50 microlitros
de [^{125}I]-MIP-1 beta (Perkin
Elmer; el material se diluyó en tampón de Unión de modo que la
adición de 50 microlitros/pocillo da una concentración final de 0,1
nM de [^{125}I]-MIP-1 beta). Se
cerró la placa y se permitió estar a temperatura ambiente durante
4-6 h antes de recontarse en un Packard TopCount.
El porcentaje de unión para el producto de ensayo se calculó, usando
controles negativos y positivos para definir el intervalo para cada
experimento.
Ensayo Funcional basado en el Lector de Placa
de Imagen Fluorométrica (FLIPR): Las células HT1080 (clon
3559.1.6) se sembraron en placas de 384 pocillos a 10.000
células/pocillo (30 microlitros) (Biocoat PDL de fondo negro/blanco,
Beckton Dickinson) y se cargaron con 30 microlitros/pocillo de
colorante fluorescente Fluro-4 AM (preparado por
disolución de 1 mg de Fluro-4 AM en 440 microlitros
de DMSO y diluyendo con 100 microlitros de solución plurónica antes
de diluir más con 10 ml de tampón de Hanks). Se incubaron las
células a 37ºC con el 5% de CO_{2} durante 30 minutos antes de
lavarse tres veces y suspenderse en Tampón de Ensayo (HEPES 20 mM,
CaCI_{2} 1,2 mM, MgCI_{2} 5 mM, Probenecida 2,5 mM, 0,5% de
ASB, 1x Hanks). El producto de ensayo se diluyó en serie en DMSO y
después se diluyó 1:10 con Tampón de Ensayo antes de añadirse a las
células (10 microlitros/pocillo). Usando FLIPR, se leyeron las
placas (10-70 s.) para la inducción del flujo (es
decir la actividad agonista). Se cargaron además las células con
Solución de Agonista (30 microlitros/pocillo; se prepararon mediante
la dilución de 30 microlitros de MIP-1 beta 100
microMolar en 100 ml de Tampón de Ensayo; este protocolo suministra
al ensayo una concentración final de 5 nM de MIP-1
beta) y las placas se leyeron usando FLIPR durante un minuto. La
actividad antagonista del producto de ensayo se determinó en
relación con el control negativo de 0,4% de DMSO/Tampón.
Las enfermedades o afecciones del ser humano u
otras especies que pueden tratase con inhibidores de la función del
receptor de quimiocinas, incluyen, pero no se limitan a:
enfermedades y afecciones inflamatorias o alérgicas, incluyendo
enfermedades alérgicas respiratorias tales como asma, rinitis
alérgica, enfermedades pulmonares por hipersensibilidad, neumonitis
hipersensible, celulitis eosinofílica (por ejemplo, el síndrome de
Well), neumonía eosinofílica (por ejemplo, el síndrome de Loeffler,
neumonía eosinofílica crónica), fastitis eosinofílica (por ejemplo,
síndrome de Shulman), hipersensibilidad de tipo retardado,
enfermedades pulmonares intersticiales (EPI) (por ejemplo, fibrosis
pulmonar idiopática o EPI asociada con artritis reumatoide, lupus
sistémico eritematoso, espondilitis anquilosante, esclerosis
sistémica, síndrome de Sjogren, polimiositis o dermatomiositis);
anafilaxis sistémica o respuestas de hipersensibilidad, alergia a
medicamentos (por ejemplo, a penicilina, cefalosporinas), síndrome
de eosinofilia mialgia debido a la ingesta de triptófano
contaminado, alergia a picaduras de insectos; enfermedades
autoinmunes, tales como artritis reumatoide, artritis psoriática,
esclerosis múltiple, lupus sistémico eritematoso, miastemia gravis,
diabetes juvenil; glomerulonefritis, tiroiditis autoinmune,
enfermedad de Behcet; rechazo de injertos (por ejemplo, en
trasplantes), incluyendo rechazo de aloinjertos o enfermedad del
injerto contra huésped; enfermedades inflamatorias del intestino,
tales como enfermedad de Crohn y colitis ulcerativa;
espondiloartropatías; esclerodermia; psoriasis (incluyendo psoriasis
mediada por linfocitos T) y dermatosis inflamatorias tales como
dermatitis, eczema, dermatitis atópica, dermatitis alérgica de
contacto, urticaria; vasculitis (por ejemplo, vasculitis
necrotizante, cutánea y por hipersensibilidad); miositis
eosinofílica, fascitis eosinofílica: cánceres con infiltración de
leucocitos de la piel u órganos. Otras enfermedades o afecciones en
las que respuestas inflamatorias indeseables deben inhibirse se
pueden tratar, incluyendo, pero no limitadas a, vasculitis, placas
vulnerables, hiperplasia neointimal venosa, daño por reperfusión,
hiperplasia neointimal de inserción de diálisis, hiperplasia
intimal de derivación arteriovenosa, ateroesclerosis, ciertos
desórdenes hematológicos, toxicidad inducida por citoquinas (por
ejemplo, choque séptico, choque endotóxico), polimiositis,
dermatomiositis. Las enfermedades o afecciones infecciosas de los
seres humanos u otras especies que se pueden tratar con inhibidores
de la función del receptor de quimiocina, incluyen, pero no se
limitan a, VIH.
Las enfermedades o afecciones del ser humano u
otras especies que se pueden tratar con promotores de la función
del receptor de quimiocina, incluyen, pero no se limitan a:
inmunosupresión, como la de individuos con síndromes de
inmunodeficiencia tales como el SIDA u otras infecciones virales,
individuos sometidos a terapia de radiación, quimioterapia, terapia
para enfermedades autoinmunes o terapia farmacológica (por ejemplo,
terapia de corticosteroides), que produce inmunosupresión,
inmunosupresión debida a la deficiencia congénita en la función del
receptor u otras causas y enfermedades infecciosas, tales como
enfermedades parasíticas, incluyendo, pero no limitadas a
infecciones por helmintos, tales como nematodos (gusano redondo);
(Trichuriasis, Enterobiasis, Ascariasis, Anquilostoma,
Estrongiloidiasis, Triquinosis, filariasis); trematodos (duela)
(Esquistosomiasis, Clonorquiasis), cestodos (tenia)
(Equinococcosis, Taeniasis saginata, Cisticercosis); gusanos
viscerales, larva migratoria visceral (por ejemplo, Toxocara),
gastroenteritis eosinofílica (por ejemplo, Anisaki sp.,
Phocanema sp.), larva migratoria cutánea (Ancylostona
braziliense, Ancylostoma caninum). Los compuestos de la
presente invención son por consiguiente útiles en la prevención y
tratamiento de una gran variedad de trastornos y enfermedades
inflamatorias, infecciosas e inmunoreguladoras.
Además, el tratamiento de las enfermedades
inflamatorias, alérgicas y autoinmunes mencionadas anteriormente
también se puede contemplar para promotores de la función de
receptores de quimiocinas si se contempla el suministro de
compuesto suficiente para provocar la pérdida de la expresión del
receptor en células a través de la inducción de la internalización
del receptor de quimiocina o suministro del compuesto de un modo que
da como resultado la mala dirección de migración celular.
En otro aspecto, la invención presente puede
usarse para evaluar los agonistas o antagonistas específicos
putativos de un receptor acoplado a proteínas G. La presente
invención se dirige al uso de estos compuestos en la preparación y
ejecución de ensayos de exploración para compuestos que modulan la
actividad de los receptores de quimiocinas. Además, los compuestos
de presente invención son útiles en el establecimiento o
determinación del sitio de unión de otros compuestos a los
receptores de quimiocinas por ejemplo, mediante inhibición
competitiva o como una referencia en un ensayo para comparar su
actividad conocida frente a un compuesto con una actividad
desconocida. Cuando se desarrollan nuevos ensayos o protocolos, los
compuestos de acuerdo con la presente invención se pueden usar para
ensayar su eficacia. Específicamente, estos compuestos se pueden
proporcionar en un kit comercial, por ejemplo, para el uso en la
investigación farmacéutica que implica las enfermedades mencionadas
anteriormente. Los compuestos de la invención presente también son
útiles para la evaluación de moduladores específicos putativos de
los receptores de quimiocina. Además, se podrían utilizar compuestos
de la presente invención para examinar la especificidad de
receptores acoplados a proteínas G que no se cree que sean
receptores de quimiocinas, sirviendo como ejemplos de compuestos que
no se unen o como variantes estructurales de compuestos activos en
estos receptores que pueden ayudar para definir los sitios
específicos de interacción.
Los compuestos que se divulgan en este documento
son útiles para tratar o prevenir trastornos seleccionados de
artritis reumatoide, osteoartritis, choque séptico, ateroesclerosis,
aneurisma, fiebre, efectos cardiovasculares, choque hemodinámico,
síndrome de sepsis, daño después de una reperfusión isquémica,
malaria, enfermedad de Crohn, enfermedades inflamatorias del
intestino, infección micobacteriana, meningitis, psoriasis, fallo
cardiaco congestivo, enfermedades fibróticas, caquexia, rechazo de
injertos, enfermedades autoinmunes, enfermedades inflamatorias de
la piel, esclerosis múltiple, daño por radiación, daño alveolar
hiperóxico, VIH, demencia por VIH, diabetes mellitus no dependiente
de insulina, asma, rinitis alérgica, dermatitis atópica, fibrosis
pulmonar idiopática, pemfigoide vesicular, infecciones parasíticas
helmínticas, colitis alérgica, eczema, conjuntivitis, trasplante,
eosinofilia familiar, celulitis eosinofílica, neumonías
eosinofílicas, fascitis eosinofílica, gastroenteritis eosinofílica,
eosinofilia inducida por fármacos, fibrosis quística, síndrome de
Churg-Strauss, linfoma, enfermedad de Hodgkin,
carcinoma del colon, síndrome de Felty, sarcoidosis, uveítis,
Alzheimer, Glomerulonefritis y lupus sistémico eritematoso,
carcinoma de células escamosas del esófago, dolor neuropático y
obesidad.
En otro aspecto, los compuestos son útiles para
tratar o prevenir trastornos inflamatorios seleccionados de
artritis reumatoide, osteoartritis, ateroesclerosis, aneurisma,
fiebre, efectos cardiovasculares, enfermedad de Crohn, enfermedades
inflamatorias del intestino, psoriasis, fallo cardiaco congestivo,
esclerosis múltiple, enfermedades autoinmunes, enfermedades
inflamatorias de la piel.
En otro aspecto, los compuestos se usan para
tratar o prevenir trastornos inflamatorios seleccionados de artritis
reumatoide, osteoartritis, aterosclerosis. La enfermedad de Crohn,
las enfermedades inflamatorias del intestino y la esclerosis
múltiple.
En otro aspecto, los ejemplos descritos en este
documento pueden ser útiles en el tratamiento de una variedad de
cánceres, incluyendo, pero no limitado a, los siguientes:
- carcinoma incluyendo el de vejiga (incluyendo el cáncer de vejiga acelerado y metastático), de mama, de colon (incluyendo el cáncer colorrectal), riñón, hígado, pulmón (incluyendo el cáncer de pulmón de células pequeñas y no pequeñas y el adenocarcinoma pulmonar), ovario, próstata, testículos, tracto génito urinario, sistema linfático, del recto, de la laringe, páncreas, (incluyendo carcinoma pancreático exocrino), esófago, estómago, vesícula biliar, cérvix, tiroides y piel (incluyendo el carcinoma de células escamosas);
- tumores hematopoyéticos de linaje linfoide incluyendo leucemia, leucemia linfocítica aguda, leucemia linfoblástica aguda, linfoma de células B, linfoma de linfocitos T, linfoma de Hodgkin, linfoma no-Hodgkin, tricoleucemia, linfoma histiocítico y linfoma de Burketts;
- los tumores hematopoyéticos de linaje mieloide incluyen leucemias mielógenas agudas y crónicas, el síndrome mielodiblástico, leucemia mieloide y leucemia promiolítica;
- los tumores del sistema nervioso central y periférico incluyen astrocitoma, neurolastoma, glioma y schwannomas;
- tumores de origen mesenquimal incluyen fibrosarcoma, rabdomiosarcoma y osteosarcoma; y
- otros tumores incluyen melanoma, xerodermia pigmentosa, queratoacantoma, seminoma, cáncer folicular de tiroides y teratocarcinoma.
En otra realización, descrita en este documento
están compuestos para su uso en el tratamiento contra el cáncer, en
el que el cáncer se selecciona de cáncer de mama, cáncer de hígado,
cáncer de próstata y melanoma. Adicionalmente, los compuestos
descritos en este documento pueden ser útiles en el tratamiento del
cáncer de ovarios y el mieloma múltiple.
La presente invención proporciona compuestos
para su uso en el tratamiento de una variedad de enfermedades
proliferativas no cancerosas.
La terapia combinada para prevenir y tratar
enfermedades y trastornos inflamatorios, infecciosos e
inmunoreguladores, incluyendo el asma y las enfermedades alérgicas,
al igual que la patología autoinmunes tales como artritis
reumatoide y arterosclerosis y aquellas patologías indicadas
anteriormente se ilustra por la combinación de compuestos de
presente invención y otros compuestos que se conocen para dichas
utilidades. Por ejemplo, en el tratamiento o prevención de la
inflamación, los compuestos presentes se pueden usar junto con un
agente antiinflamatorio o analgésico tal como un agonista opiáceo,
un inhibidor de lipoxigenasa, un inhibidor de ciclooxigenasa, un
inhibidor de interleucina, tal como un inhibidor de
interleucina-1, un inhibidor del factor de necrosis
tumoral, un antagonista de NMDA, un inhibidor u óxido nítrico o un
inhibidor de la síntesis de óxido nítrico, un agente
antiinflamatorio no esteroideo, un inhibidor de fosfodiesterasa o un
agente antiinflamatorio supresor de citoquina, por ejemplo con un
compuesto tal como acetominofeno, aspirina, codeína, fentanilo,
ibuprofeno, indometacina, ketorolac, morfina, naproxeno, fenacetina,
piroxicam, un analgésico esteroideo, sufentanil, sunlindac,
interferón alfa y similares. De manera similar, los compuestos
presentes se pueden administrar con un analgésico; un potenciador
tal como la cafeína, un antagonista de H2, simeticona, aluminio o
hidróxido de magnesio; un descongestivo tal como fenilefrina,
fenilpropanolamina, pseudofedrina, oximatazolina, epinefrina,
nafazolina, xilometazolina, propilhexedrina o levodesoxiefedrina; un
antitusivo tal como la codeína, hidrocodona, caramifen,
carbetapentano o dextrametorfano; un diurético; y una antihistamina
sedante o no sedante. De la misma manera, los compuestos descritos
en este documento pueden usarse en combinación con otros fármacos
que se usan en el tratamiento/prevención/supresión o mejora de las
enfermedades o trastornos para las que los compuestos de la
presente invención son útiles. Estos otros fármacos se pueden
administrar, por una vía y en una cantidad comúnmente usada por
tanto, contemporáneamente o secuencialmente con un compuesto de la
presente invención. Cuando un compuesto se usa contemporáneamente
con uno o más de otros fármacos, una composición farmacéutica que
contiene tales fármacos se puede usar además del compuesto de la
presente invención. Por consiguiente, las composiciones
farmacéuticas incluyen aquellas que también contienen uno o más
principios activos, además de un compuesto de la presente
descripción.
Los ejemplos de otros principios activos que
pueden combinarse con un compuesto de la presente invención,
administrado separadamente o en las mismas composiciones
farmacéuticas, incluyen, pero no se limitan a: (a) antagonistas de
integrinas tales como aquellos para selectinas, ICAM y
VLA-4; (b) esteroides tales como beclometasona,
metilprednisolona, betametasona, prednisona, dexametasona e
hidrocortisona; (c) inmunosupresores tales como ciclosporina,
tracolimus, rapamicina y otros inmunosupresores de tipo
FK-506; (d) antihistaminas (antagonistas de la
histamina H1) tales como bromofeniramina, clorfeniramina,
dexclorfeniramina, triprolidina, clemastina, difenhidramina,
difenilpiralina, tripelennamina, hidroxizina, methdilazina,
prometazina, trimeprazina, azatadina, ciproheptadina, antazolina,
feniramina pirilamina, astemizol, terfenadina, loratadina,
cetirizina, fexofenadina, descarboetoxiloratadina y similares; (e)
antiasmáticos no esteroideos tales como agonistas de b2
(terbutalina, metaproterenol, fenoterol, isoetarina, albuterol,
bitolterol y pirbuterol), teofillina, cromolin sódico, atropina,
bromuro de ipratropio, antagonistas de leucotrienos (zafirlukast,
montelukast, pranlukast, iralukast, pobilukast,
SKB-102.203), inhibidores de la biosíntesis de
leucotrienos (zileuton, BAY-1005); (f) agentes
antiinflamatorios no esteroideos (AINES) tales como los derivados
del ácido propiónico (alminoprofeno, benxaprofeno, ácido buclóxico,
carprofeno, fenbufeno, fenoprofeno, fluprofeno, flurbiprofeno,
ibuprofeno, indoprofeno, ketoprofeno, miroprofeno, naproxeno,
oxaprozina, pirprofeno, pranoprofeno, suprofeno, ácido triaprofénico
y tioxaprofeno), derivados del ácido acético (indometacina,
acemetacina, alclofenaco, clidanaco, diclofenaco, fenclofenaco,
ácido fenclózico, fentiazaco, furofenaco, ibufenaco, isoxepaco,
oxpinaco, sulindaco, tiopinaco, tolmetina, zidometacina y
zomepiraco), derivados del ácido fenámico (ácido flufenámico, ácido
meclofenámico, ácido mefenámico, ácido niflúmico y ácido
tolfenámico), derivados del ácido bifenilcarboxílico (diflunisal y
flufenisal), oxicams (isoxicam, piroxicam, sudoxicam y tenoxican),
salicilatos (ácido acetil salicílico, sulfasalazina) y las
pirazolonas (apazona, bezpiperilón, feprazona, mofebutazona,
oxifenbutazona, fenilbutazona); (g) inhibidores de la
ciclooxigenasa-2 (COX-2); (h)
inhibidores de la fosfodiesterasa de tipo IV
(PDE-IV); (i) otros antagonistas de los receptores
de quimiocinas; (j) agentes reductores de colesterol tales como los
inhibidores de la reductasa HMG-COA (lovastatina,
simvastatina y pravastatina, fluvastatina, atorvastatina y otras
estatinas), secuestrantes (colestiramina y colestipol), ácido
nicotínico, derivados del ácido fenofíbrico (gemfibrozilo,
clofibrato, fenofibrato y benzafibrato), y probucol; (k) agentes
antidiabéticos tales como insulina, sulfonilureas, biguanidas
(metformina), inhibidores de la glucosidasa a (acarbosa) y
glitazonas (troglitazona y pioglitazona); (1) preparaciones de
interferones (interferón alfa-2a,
interferón-2B, interferón alfa-N3,
interferón beta-1a, interferón
beta-1b, interferón gama-1b); (m)
compuestos antivirales tales como efavirenz, nevirapina, indinavir,
ganciclovir, lamivudina, famciclovir y zalcitabina; (o) otros
compuestos tales como el ácido 5-aminosalicílico y
profármacos del mismo, antimetabolitos tales como azatioprina y
6-mercaptopurina y agentes quimioterapéuticos
citotóxicos contra el cáncer. El porcentaje de peso del compuesto
de la presente invención respecto al segundo principio activo puede
ser variado y dependerá de las dosis eficaces de cada
ingrediente.
Generalmente, se usará una dosis eficaz de cada
uno. Por lo tanto, por ejemplo, cuando un compuesto se combina con
un AINES el porcentaje de peso del compuesto de la presente
invención respecto al variará generalmente de aproximadamente
1000:1 a aproximadamente 1:1000, o como alternativa de
aproximadamente 200:1 a aproximadamente 1:200. Las combinaciones de
un compuesto de la presente invención y otros ingredientes activos
también estarán generalmente dentro del intervalo mencionado
anteriormente, pero en cada caso, se debería usar una dosis eficaz
de cada ingrediente.
En el tratamiento contra el cáncer, una
combinación de agentes quimioterapeúticos y/u otros tratamientos
(por ejemplo terapia por radiación) es a menudo ventajoso. El
segundo (o tercer) agente puede tener el mismo o diferente
mecanismo de acción que el primer agente terapéutico. Puede ser
especialmente útil emplear combinaciones de fármacos citotóxicos en
las que los dos o más fármacos que se administran actúan de
diferente modo o en diferente fase de ciclo celular y/o en la que
los dos o más fármacos tienen toxicidades o efectos secundarios
solapantes y/o en la que el fármaco que se combina tiene una
eficacia demostrada en el tratamiento del estado particular de la
enfermedad manifestado por el paciente.
Por consiguiente, los compuestos descritos en
este documento (u otras fórmulas descritas en este documento) se
pueden administrar en combinación con otros agentes y tratamientos
anticáncer y citotóxicos útiles en el tratamiento contra el cáncer
u otras enfermedades proliferativas. La invención en este documento
comprende además el uso de compuestos del presente documento (u
otras fórmulas descritas en este documento), en la preparación de
medicamentos para el tratamiento contra el cáncer y/o comprende el
empaquetado de los compuestos del presente documento junto con
instrucciones de que los compuestos se utilizan en combinación con
otros agentes y tratamientos anticáncer o citotóxicos para el
tratamiento contra el cáncer. La presente invención comprende además
combinaciones de los compuestos de y uno o más agentes adicionales
en forma de kit, por ejemplo, en el que se empaquetan juntos o se
ponen en cajas separadas para venderse juntos como un kit o en el
que se empaquetan para formularse juntos.
Los segundos (o más) agentes anticáncer se
pueden seleccionar de uno cualquiera o más de los siguientes:
- agentes alquilantes, (incluyendo mostazas de nitrógeno, alquilsulfonatos, nitrosoureas, derivados de etileniminas y triazenos); antiangiogénicos (incluyendo inhibidores de metaloproteinasas de matriz); antimetabolitos (incluyendo inhibidores de la desaminasa de adenosina, antagonistas del ácido fólico, análogos de purina y análogos de pirimidina); antibióticos o anticuerpos (incluyendo anticuerpos monoclonales, anticuerpos CTLA-4, antraciclinas); inhibidores de aromatasa;
- modificadores de la respuesta del ciclo celular; enzimas; inhibidores de la proteína farnesil transferasa;
- agentes hormonales y antihormonales y esteroides (incluyendo análogos sintéticos, glucocorticoides, estrógenos/antiestrógenos [por ejemplo, MSRE], andrógenos/antiandrógenos, progestinas, agonistas de los receptores de progesterona y agonistas y antagonistas de la liberación de la hormona luteinizante [LHRH]); los moduladores del sistema de factor de crecimiento de tipo insulina (IGF)/receptor del factor de crecimiento de tipo insulina (IGFR) (incluyendo los inhibidores IGFR1 I); los inhibidores de la señalización por integrinas; inhibidores de quinasa (incluyendo multiquinasa y/o inhibidores de la quinasa Src o Src/abl, inhibidores de la quinasa dependiente de ciclinas [CDK], anticuerpos panHer, Her-1 y Her-2, inhibidores de VEGF, incluyendo anticuerpos anti-VEGF, inhibidores de EGFR, inhibidores de la proteína activada por mitógeno [MAP], inhibidores de MEK, inhibidores de quinasa Aurora, inhibidores de PDGF y otros inhibidores de tirosina quinasas o inhibidores de serina/treonina quinasas;
- agentes disruptores de microtúbulos, tales como ecteinascidinas o sus análogos o derivados: agentes estabilizantes de microtúbulos tales como taxanos y los epotilones que se producen de forma natural y sus análogos sintéticos y semisintéticos;
- agentes de unión y desestabilizantes de microtúbulos (incluyendo alcaloides de la vinca) e inhibidores de topoisomerasas; inhibidores de la proteína prenil transferasa; complejos coordinadores de platino; inhibidores de la transducción de la señal; y otros agentes usados como agentes anticáncer y citotóxicos tales como modificadores de la respuesta biológica, factores de crecimiento y moduladores inmunes.
Adicionalmente, los compuestos de la presente
invención se pueden formular o coadministrar con otros agentes
terapéuticos que se seleccionan por su utilidad al dirigir los
efectos secundarios asociados con las afecciones mencionadas
anteriormente. Por ejemplo, los compuestos de la invención pueden
formularse con agentes para prevenir las náuseas, la
hipersensibilidad y la irritación gástrica, tales como antieméticos
y antihistamínicos H_{1} y H_{2}.
Los otros agentes terapéuticos anteriores,
cuando se emplean en combinación con los compuestos de la presente
invención, se pueden usar, por ejemplo, en aquellas cantidades
indicadas en el Physicians' Desk Reference (PDR) o como se
determina de otra manera por un experto habitual en la materia.
Los compuestos se administran a un mamífero en
una cantidad terapéuticamente eficaz. Mediante "cantidad
terapéuticamente eficaz" se quiere decir una cantidad de un
compuesto de la presente descripción que, cuando se administra solo
o en combinación con un agente terapéutico adicional a un mamífero,
es eficaz para prevenir o mejorar el estado de la enfermedad o la
progresión de la enfermedad.
Los compuestos de esta descripción se pueden
administrar en formas farmacéuticas orales tales como comprimidos,
cápsulas (cada una de ellas incluyen formulaciones de liberación
prolongada o controlada), píldoras, polvos, gránulos, elixires,
tinturas, suspensiones, siropes y emulsiones. También se pueden
administrar en forma intravenosa (en embolada o infusión),
intraperitoneal, subcutánea o intramuscular, todas usando formas
farmacéuticas que conocen bien aquellos expertos habituales en la
técnica farmacéutica. Se pueden administrar solos, pero generalmente
se administrarán con un vehículo farmacéutico seleccionado en base
a la vía de administración elegida y la práctica farmacéutica
convencional.
El régimen de dosificación para los compuestos
de la presente invención variará, por supuesto, dependiendo de
factores conocidos, tales como las características farmacodinámicas
del agente particular y su modo y vía de administración; la
especie, edad, sexo, salud, condición médica y peso del receptor; la
naturaleza y extensión de los síntomas; el tipo de tratamiento
concurrente; la frecuencia de tratamiento; la vía de administración,
la función hepática y renal del paciente y el efecto deseado. Un
médico veterinario puede determinar y prescribir la cantidad eficaz
del fármaco que se necesita para prevenir, contrarrestar o detener
el progreso del trastorno.
A modo de orientación general, la dosis oral
diaria de cada principio activo, cuando se usa para los efectos
indicados, variará entre aproximadamente 0,001 a 1000 mg/kg de peso
corporal, o entre aproximadamente 0,01 a 100 mg/kg de peso corporal
por día o como alternativa, entre aproximadamente 1,0 a 20
mg/kg/día. Por vía intravenosa, las dosis variarán desde
aproximadamente 1 a aproximadamente 10 mg/kg/minuto durante una
infusión de velocidad constante. Los compuestos de presente
invención pueden administrarse en una dosis diaria única o la dosis
diaria total se puede administrar en dosis divididas de dos, tres o
cuatro veces al día. En una realización, la dosis oral diaria de el
principio activo está entre 3 y 600 mg cuando se administra una vez
al día o dividido en dosis administradas dos veces al día. Como
alternativa, el principio activo se puede administrar en dosis de
10-20 mg administrados dos veces al día o de 40 a
100 mg administrados una vez al día. Como alternativa, el principio
activo se puede administrar una dosis de 12,5 mg dos veces al día o
75 mg una vez al día. Como alternativa, el principio activo se puede
administrar en dosis de 3, 10, 30, 100, 300 y 600 mg administrados
una o dos veces a día.
Los compuestos de presente invención se pueden
administrar en una forma intranasal mediante el uso tópico de
vehículos intranasales adecuados o mediante vías transdérmicas,
usando parches transdérmicos. Cuando se administra de la forma de
un sistema de suministro transdérmico, la dosis de administración
será, por supuesto, continuo en lugar de intermitente a través de
el régimen de dosificación.
Los compuestos se administran típicamente en una
mezcla con diluyentes, excipientes o vehículos farmacéuticamente
adecuados (denominados colectivamente en este documento, como
vehículos farmacéuticos) seleccionados adecuadamente con respecto a
la forma de administración que se pretende, es decir, comprimidos
orales, cápsulas, elixires, siropes y similares, y coherentes con
las prácticas farmacéuticas convencionales.
Por ejemplo, para la administración oral en
forma de un comprimido o cápsula, el componente de fármaco activo
se puede combinar con un vehículo oral inerte farmacéuticamente
aceptable tal como lactosa, almidón, sacarosa, glucosa, metil
celulosa, estearato de magnesio, fosfato de dicalcio, sulfato de
calcio, manitol, sorbitol y similares; para la administración oral
en forma líquida, los compuestos de fármaco oral se pueden combinar
con cualquier vehículo oral inerte farmacéuticamente aceptable, no
tóxico, tal como etanol, glicerol, agua, y similares. Además,
cuando se desee o sean necesarios, se pueden incorporar a la mezcla
aglutinantes, lubricantes, agentes disgregantes y agentes
colorantes adecuados. Los aglutinantes adecuados incluyen almidón,
gelatina, azúcares naturales tales como glucosa o
beta-lactosa, edulcorantes de maíz, gomas naturales
o sintéticas tales como acacia, tragacanto o alginato de sodio,
carboximetilcelulosa, polietilenglicol, ceras y similares. Los
lubricantes que se usan en estas formas farmacéuticas incluyen
oleato de sodio, estearato de sodio, estearato de magnesio,
benzoato de sodio, acetato de sodio, cloruro de sodio y similares.
Los disgregantes incluyen, sin limitación, almidón, metil celulosa,
goma de agar, bentonita, goma xantano y similares.
Los compuestos de la presente invención también
se pueden administrar en la forma de sistemas de suministro de
liposomas, tales como vesículas unilamelares pequeñas, vesículas
unilamelares grandes y vesículas multilamelares. Los liposomas
pueden formarse a partir de una variedad de fosfolípidos, tales como
colesterol, estearilamina o fosfatidilcolinas.
Los compuestos de la presente invención también
pueden estar asociados con polímeros solubles como vehículos de
fármacos dirigibles. Tales polímeros pueden incluir
polivinilpirrolidona, copolímero de pirano,
polihidroxipropilmetacrilamida-fenol,
polihidroxietilaspartamidafenol o
polietilenoóxido-poli lisina sustituido con residuos
de palmito hilo. Además, los compuestos de la presente invención se
pueden asociar a una clase de polímeros biodegradables útiles en
conseguir la liberación controlada de un fármaco, por ejemplo, ácido
poli láctico, ácido poliglicólico, copolímeros del ácido poli
láctico y poliglicólico, poliepsilón caprolactona, ácido
polihidroxibutírico, poliortoésteres, poliacetales,
polidihidropiranos, policianoacilatos y copolímeros de bloque
entrelazados o antipáticos de
hidrogeles.
hidrogeles.
Las formas farmacéuticas (composiciones
farmacéuticas) adecuadas para la administración pueden contener
desde aproximadamente 1 miligramo a aproximadamente 100 miligramos
de principio activo por unidad de dosificación. En estas
composiciones farmacéuticas el principio activo estará presente
habitualmente en una cantidad de aproximadamente
0,5-95% en peso basado en el peso total de las
composiciones.
Las cápsulas de gelatina pueden contener el
principio activo y vehículos en polvo, tales como derivados de
lactosa, almidón, celulosa, estearato de magnesio, ácido esteárico y
similares. Se pueden utilizar diluyentes similares para fabricar
comprimidos comprimidos. Tanto comprimidos como cápsulas se pueden
fabricar como productos de liberación prolongada para proporcionar
una liberación controlada de medicación durante un periodo de horas.
Los comprimidos comprimidos pueden estar recubiertos por azúcar o
recubiertos por una película ,para enmascarar cualquier sabor
desagradable y proteger el comprimido de la atmósfera, o recubiertos
entéricamente para la desintegración selectiva en el tracto
gastrointestinal.
Las formas farmacéuticas líquidas para la
administración oral pueden contener colorantes y saborizantes para
aumentar la aceptación del paciente.
En general, el agua, un aceite adecuado,
solución salina, dextrosa acuosa (glucosa) y soluciones azucaradas
relacionadas y glicoles tales como propilenglicol o polietilenglicol
son vehículos adecuados para soluciones parenterales. Las
soluciones para la administración parenteral pueden contener una sal
soluble en agua del principio activo, agentes estabilizantes
adecuados, y si es necesario, sustancias tampón. Los agentes
antioxidantes tales como el bisulfito de sodio o ácido ascórbico,
solos o combinados, son agentes estabilizantes adecuados. También
se usan ácido cítrico y sus sales y EDTA de sodio. Además, las
soluciones parenterales pueden contener conservantes, tales como
cloruro de benzalconio, metil- o propilparabeno y clorobutanol.
Los vehículos farmacéuticos adecuados se
divulgan en Remington 's Pharmaceutical Sciences, Mack
Publishing Company, un texto de referencia convencional en este
campo.
Las formas de dosificación farmacéuticas útiles
representativas para la administración de los compuestos de
presente invención se pueden ilustrar de la siguiente manera:
Un gran número de unidades de cápsulas se pueden
preparar rellenando cápsulas convencionales de gelatina duras de
dos piezas cada una con 100 miligramos de principio activo en polvo,
150 miligramos de lactosa, 50 miligramos de celulosa y 6 miligramos
de estearato de magnesio.
Una mezcla de principio activo en un aceite
digerible tal como el aceite de soja, el aceite de la semilla de
algodón o el aceite de oliva se puede preparar e inyectar por medio
de una bomba de desplazamiento positivo en la gelatina para formar
cápsulas de gelatina blandas que contienen 100 miligramos del
principio activo. Las cápsulas se deberían lavar y secar.
Los comprimidos se pueden preparar mediante
procedimientos convencionales de modo que la unidad de dosificación
es 100 miligramos de principio activo, 0,2 miligramos de dióxido de
silicio coloidal, 5 miligramos de estearato de magnesio, 275
miligramos de celulosa microcristalina, 11 miligramos de almidón y
98,8 miligramos de lactosa. El revestimiento apropiado se puede
aplicar para aumentar el buen sabor o retrasar la absorción.
Una composición parenteral adecuada para la
administración por inyección se puede preparar agitando el 1,5% en
peso del principio activo en el 10% en volumen de propilenglicol y
agua. La solución debería hacerse isotónica con cloruro sódico y
esterilizarse.
Una suspensión acuosa se puede preparar para la
administración oral de modo que cada 5 ml contienen 100 mg de
principio activo dividido finamente, 200 mg de carboximetilcelulosa
de sodio, 5 mg de benzoato de sodio, 1,0 g de solución de sorbitol,
U.S.P. y 0,025 ml de vanilina.
Cuando los compuestos de presente invención se
combinan con otros agentes anticoagulantes, por ejemplo, una dosis
diaria puede ser aproximadamente de 0,1 a 100 miligramos del
compuesto de Fórmula I y aproximadamente de 1 a 7,5 miligramos del
segundo anticoagulante, por kilogramo de peso corporal del paciente.
Para una forma farmacéutica de comprimido, los compuestos de
presente invención generalmente pueden estar presentes en una
cantidad de aproximadamente 5 a 10 miligramos por unidad de
dosificación y el segundo anticoagulante en una cantidad de
aproximadamente 1 a 5 miligramos por unidad de dosificación.
\newpage
Cuando dos o más de los segundos agentes
terapéuticos anteriores se administran con el compuesto de los
ejemplos, generalmente la cantidad de cada componente en una dosis
diaria típica y forma farmacéutica típica se puede reducir en
relación a la dosis normal del agente cuando se administra solo, en
vista del efecto aditivo o sinérgico de los agentes terapéuticos
cuando se administra en combinación.
Particularmente cuando se proporciona como una
única unidad de dosificación, el potencial para una interacción
química entre los principios activos combinados existe. Por este
motivo, cuando el compuesto de los ejemplos y un segundo agente
terapéutico se combinan en una única unidad de dosificación se
formulan de modo que aunque los principios activos se combinen en
una única unidad de dosificación, el contacto físico entre los
principios activos se minimiza (es decir, se reduce). Por ejemplo
un principio activo puede estar revestido entéricamente.
Revistiendo entéricamente uno de los principio activos, es posible
no sólo minimizar el contacto entre los principios activos
combinados, pero también, es posible controlar la liberación de uno
de estos componentes en el tracto gastrointestinal de modo que uno
de estos componentes no se libera en el estómago sino más bien se
libera en los intestinos. Uno de los principio activos también puede
estar revestido con un material que afecte a la liberación
prolongada a través del tracto gastrointestinal y también sirve para
minimizar el contacto físico entre los principios activos
combinados. Además, el componente de liberación prolongada puede
estar revestido adicionalmente entéricamente de modo que la
liberación de este componente se produce sólo en el intestino.
Otros planteamiento implicaría la formulación de un producto de
combinación en el que uno de los componentes está revestido con un
polímero de liberación prolongada o entérica y el otro componente
también está revestido con un polímero tal como hidroxipropil
metilcelulosa de bajo grado de (HPMC) u otros materiales adecuados
como se sabe en la técnica, para separar más los componentes
activos. El revestimiento polimérico sirve para formar una barreara
adicional para la interacción con el otro componente.
Estas y otras maneras de minimizar el contacto
entre los componentes de los productos de combinación de la
presente invención, si se administran en una única forma
farmacéutica o se administran en formas separadas pero al mismo
tiempo de la misma manera, se pondrán de manifiesto a aquellos
especialistas en la técnica, una vez dispongan de la presente
descripción.
Adicionalmente, ciertos compuestos descritos en
este documento pueden ser útiles como metabolitos de otros
compuestos. Por lo tanto, en una realización, los compuestos pueden
ser útiles como un compuesto sustancialmente puro, que puede
también incorporarse después en una composición farmacéutica o puede
ser útil como metabolito que se genera después de la administración
del profármaco de ese compuesto. En una realización, un compuesto
puede ser útil como un metabolito siendo útil para el tratamiento de
trastornos como se divulga en este documento.
"Sustancialmente puro" como se usa en este
documento pretende incluir un compuesto que tiene una pureza mayor
de aproximadamente el 90 por ciento incluyendo aproximadamente 90,
91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98, 99 y 100 por ciento.
Como un ejemplo, un compuesto descrito en este
documento puede ser sustancialmente puro en tanto que tiene una
pureza mayor de aproximadamente el 90 por ciento (en peso), en el
que el menos de aproximadamente 10 por ciento restante de material
comprende otros metabolitos del compuesto, un profármaco del
compuesto y/o reacción y/o impurezas del procesamiento que surgen
de su preparación.
Obviamente, numerosas modificaciones y
variaciones de la presente invención son posibles en vista de los
contenidos anteriores. Debe entenderse por lo tanto que dentro del
ámbito de las reivindicaciones adjuntas, la invención debe
practicarse de otra manera que se divulga específicamente en este
documento.
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-(S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
(también denominado como "Ejemplo 1") se evaluó en los
siguientes ensayos in vivo como se divulga a
continuación.
Sección
1
La inyección intradérmica de
MCP-1 da como resultado la infiltración de células
mononucleares al sitio de inyección. Este modelo se desarrolló
inicialmente para evaluar el efecto inhibidor de los antagonistas de
CCR2 en la infiltración de células mononucleares al tejido de la
piel inyectado con MCP-1 humana.
Como se divulga a continuación, se dosificó a
cada mono con el Ejemplo I o su vehículo de control (0,5% [p/v]
carboximetilcelulosa) una vez al día durante tres días.
Inmediatamente después de la dosificación en el Día 3, todos los
animales recibieron al menos dos inyecciones intradérmicas de 10
\mug (50 \mul/inyección) de MCP-1 humana
(R&D Systems) y al menos 2 inyecciones intradérmicas de su
control DPBS (50 \mul/inyección) en sitios separado del tórax
dorsal. Las biopsias dérmicas de todos los sitios se tuvieron
aproximadamente 18 horas después de la exposición a
MCP-1 (o DPBS). Se procesaron las biopsias para la
evaluación histológica semicuantitativa. Las secciones
representativas de muestras de piel se examinaron mediante
microscopía óptica, las lesiones microscópicas y la infiltración
celular se apuntaron y sus incidencias se tabularon.
\newpage
En este Estudio 1, Ejemplo I se administró por
vía oral a dosis de 0, 6,5, 13 ó 26 mg/kg a grupos de 3 monos
cynomolgus (1 ó 2 por sexo por grupo). En el Estudio 2, los animales
sin tratamiento previo se usaron para evaluar el Ejemplo 1 a dosis
de 0-, 10- ó 30-mg/kg en grupos de 2 ó 4 animales
(1/sexo por grupo dosificado con vehículo; 2/sexo por Ejemplo I
-grupo dosificado).
Para ambos estudios, además del análisis por
biopsias, se recogió sangre y se evaluó para los recuentos totales
sanguíneos y diferenciales celulares. También se evaluaron las
muestras de plasma para las concentraciones de compuesto y las
muestras de suero para los niveles de mediador inflamatorio
sistémico.
\vskip1.000000\baselineskip
En el primer estudio, el reclutamiento de
células mononucleares a la piel de animales de control tratados con
vehículos inducido por MCP-1 fue 2,7 \pm 0,3 (en
una escala de 0 a 4, Tabla 13). A 26 mg/kg, el Ejemplo I inhibió la
infiltración (56%). Dos dosis más bajas de 13 y 6,5 mg/kg
consiguieron niveles más bajos de inhibición. El compuesto también
inhibió la infiltración de otros tipos celulares tales como
eosinófilos y neutrófilos. Las concentraciones de plasma del
compuesto a las 18 horas y su relación con los niveles de inhibición
y los valores de CI90 de quimiotaxis Cyno se resumen en la Tabla
13.
Se usaron dos procedimientos para determinar la
potencia inhibitoria del Ejemplo I en el ensayo de quimiotaxis in
vitro. El primero emplea CMSP de monos mientras que el segundo
emplea células L 1,2 transfectadas establemente con CCR2 de Cyno. Se
descubrió que el primero era altamente variable (CI50 = 5,5 \pm 10
nM), el segundo dio un valor medio más alto, pero más consistente
(CI50 = 11,4 \pm 8 nM). Basándose en este segundo valor, la dosis
de 26 mg/kg dio como resultado una concentración de plasma libre 18
horas después de la dosificación de 2X la CI90 de quimiotaxis
(Tabla 13).
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
Se realizó un segundo estudio en monos sin
tratamiento previo. Comparado con el primer estudio, el Ejemplo I
inhibió la infiltración de células mononucleares a un grado mayor
(91%) a 30 mg/kg (dosis alta) y dio inhibición del 87% a 10 mg/kg
(Tabla 14).
\vskip1.000000\baselineskip
En ambos estudios, la evaluación de los cambios
en los mediadores inflamatorios del suero mostró un aumento
(\sim3 veces) en el nivel de MCP-1 en los grupos
tratados con Ejemplo 1 en relación con el vehículo de control.
Además, el análisis del cuadro hemático completo (CHC) mostró un
aumento (\sim3 veces) en neutrófilos en los grupos tratados del
Ejemplo 1 en relación al vehículo de control.
Un estudio de ratones hCCR2 Kl se realizó para
evaluar el efecto del Ejemplo I en la infiltración de
monocitos/macrófagos en el modelo de peritonitis por tioglicolato
(TG) con procedimientos basados en el recuento diferencial de
células y la citometría de flujo.
\vskip1.000000\baselineskip
Sección
2
El ratón hCCR2 Kl se diseñó genéticamente
reemplazando el gen de ratón CCR2 con la secuencia codificante del
CCR2 humano. Se obtuvo del Instituto Gladstone de Enfermedades
Cardiovasculares de la Universidad de California San Francisco.
Procedimientos de RCP convencional (específicos
de genes y cuantitativos) se usaron para distinguir el tipo
silvestre (gen CCR2 de ratón) de los alelos dirigidos (gen CCR2
humano) y para determinar el número de copias del gen CCR2 humano y
el número de copias del gen CCR2 de ratón con muestras de oreja o
cola. El análisis RT-RCP del ARN total aislado de
los leucocitos de la sangre también se realizó para determinar el
nivel de expresión del ARNm de CCR2 humano y de ratón. El análisis
citométrico de flujo se usó para determinar la expresión
superficial de proteínas CCR2 humanas o de ratones en los monocitos
de la sangre. El análisis FACS de la acumulación de
monocitos/macrófagos en la cavidad peritoneal en modelos de
peritonitis inducida por TG (véase Sección 3) se usó para determinar
la funcionalidad de CCR2 en humanos en estos ratones.
\vskip1.000000\baselineskip
El ratón hCCR2 Kl se diseñó genéticamente
reemplazando el gen CCR2 de ratón con la secuencia codificante del
CCR2 humano. Antes del uso de estos animales para la evaluación
in vivo del Ejemplo 1, tanto la caracterización genotípica
como la fenotípica de estos ratones se realizó. Los estudios
genotípicos basados en la RCP (específicos de genes y
cuantitativos) de las muestras de oreja o cola detectaron dos copias
del gen CCR2 humano y cantidades variables de producto de la RCP lo
que sugiere la presencia de 0 a 2 copias del gen CCR2 de ratón. El
ARN celular total aislado de leucocitos de la sangre de estos
ratones KI, el análisis de RT-RCP cuantitativo
relativo detectó ARNm de CCR2 humano y niveles marginales del
producto de la RCP con el conjunto de cebadores diseñado para
detectar el ARNm de CCR2 de ratón. Cuando el análisis citométrico de
flujo se usó para detectar la expresión de proteínas de CCR2 KI de
ratones, CCR2 de humano, pero no CCR2 de ratón, la proteína de
superficie se detectó tiñendo los aislados de células de sangre
totales con anticuerpos específicos anti-CCR2 humano
y anti-CCR2 de ratón, respectiva-
mente.
mente.
Los antagonistas selectivos de hCCR2 bloquearon
la infiltración de monocitos en estos ratones hCCR2 KI, pero no en
ratones de tipo silvestre, cuando los niveles plasmáticos del estado
estacionario cubrieron la CI90 para la quimiotaxis de CCR2 humano
pero están por debajo de los niveles que se necesitan para inhibir
la quimiotaxis CCR2 en ratón. Además, en los ensayos in
vitro que imitan la configuración de hCCR2 KI
(MCP-1 de ratón/CCR2 humano), el Ejemplo I inhibe
la unión de MCP-1 de ratón al CCR2 humano que
expresa CMSPh (CI50 = 2,2 \pm 1,2 nM) y la quimiotaxis inducida
por MCP-1 de ratón/mediada por CCR2 humano de las
células THP-1 (CI50 = 0,6 \pm 0,3 nM).
\vskip1.000000\baselineskip
Sección
3
Se inyectó intraperitonealmente 1 ml de
tioglicolato (TG) (Hardy Diagnostics) a los ratones hCCR2 KI
(C57BL/(-SVJ129). Para cada estudio, se usaron ocho ratones macho
por grupo. El Ejemplo I se dosificó por vía oral 1 hora antes de la
inyección de TG. El vehículo que se usó fue HCl 0,01 N en agua.
Cuarenta y ocho horas después de la inyección de TG se realizaron
lavados peritoneales inyectando 5 ml PBS/EDTA 10 mM/10% de ASB en la
cavidad peritoneal.
Para el estudio de peritonitis por TG de 48
horas, se dosificó el Ejemplo 1 dos veces al día con la primera
dosis una hora antes de la inyección de TG. Los recuentos celulares
peritoneales totales se obtuvieron en células aisladas mediante un
contador celular. Los citocentrifugados se realizaron para
determinar los recuentos de leucocitos diferenciales. Se tiñeron
las células durante 3 minutos con tinción
Wright-Giemsa (Sigma-Aldrich) y
después se aclararon con agua desionizada durante 5 minutos. Los
recuentos diferenciales se calcularon basándose en un total de 200
células contadas por muestra. También se recogieron la sangre del
seno retroorbital al final de cada estudio en EDTA para determinar
la concentración de fármaco.
Para el análisis citométrico de flujo, las
células exudadas peritoneales (1 x 10^{6}) se lavaron una vez
con tampón FACS (PBS/0,5% de ASB) y se resuspendieron en tampón
FACS. Se incubaron las células con un anticuerpo bloqueante de Fc
(BD Pharmingen) en hielo durante 15 min. seguido de la adición de
los siguientes anticuerpos (BD Pharmingen):
anti-F4/80 conjugado con FE,
anti-Ly6C conjugado con FITC y
anti-hCCR2 conjugado con Alexa 647. Después de 45
min. en hielo, se fijaron las células mediante BD Cytofix durante 15
min. en hielo, se lavaron dos veces con tampón FACS y se
resuspendieron en 200 \mul de tampón FACS. Los acontecimientos
celulares (40.000) se obtuvieron para cada muestra y se analizaron
los datos usando el software FloJo (TreeStar). La puerta FSC/SSC se
configuró para incluir todos los monocitos (SSC bajo, FSC más alto)
mientras que se excluían los granulocitos del análisis. Esta
población acotada se analizó después para la expresión de Ly6C
(FITC) y F4/80 (PE). Los números de monocitos/macrófagos
peritoneales se determinaron multiplicando los recuentos celulares
peritoneales totales obtenidos mediante el contador celular y el
porcentaje de monocitos/macrófagos identificados mediante células
F4/80^{+} de la citometría de flujo. La significancia estadística
de las diferencias entre las medias se analizó usando el ensayo t
apareado de dos colas con significancia fijada a
p-valores por debajo de 0,05.
\vskip1.000000\baselineskip
El Ejemplo 1 se evaluó en el modelo de
peritonitis por TG de ratón hCCR2 KI para determinar su CE50 en la
inhibición de la infiltración de monocitos/macrófagos. Se administró
a los ratones tioglicolato y se dosificaron por vía oral con el
Ejemplo 1 a 1, 5 ó 25 mg/kg dos veces al día. Durante cuarenta y
ocho horas después del tratamiento con TG, se obtuvo el lavado
peritoneal para el análisis de infiltración celular. El Ejemplo 1
mostró una reducción dependiente de la dosis en el número de
leucocitos peritoneales totales obtenidos mediante el contador
celular (Figura 15). Basado en los recuentos de leucocitos
diferenciales mediante la evaluación morfológica de las muestras de
lavado, el Ejemplo I demostró una inhibición dependiente de dosis
del flujo de entrada de monocitos/macrófagos. Las dosis de 1, 5, 25
mg/kg dieron una inhibición del 20%, 62% y 69%, respectivamente. La
inhibición estadísticamente significativa se consiguió a 5 y 25
mg/kg (Figura 15). En dos estudios separados, la CE50 media para la
inhibición de la infiltración de monocitos/macrófagos se estimó que
era 3,0 \pm 0,9 nM.
También se cuantificó el infiltrado de
monocitos/macrófagos por citometría de flujo. Para distinguir entre
los monocitos/macrófagos reclutados frente a los macrófagos y
granulocitos residentes, la tinción de marcadores de superficie
tanto F4/80 como Ly6C se usó para definir los monocitos/macrófagos
reclutados. Una inhibición dependiente de dosis similar en la
infiltración de monocitos/macrófagos se observó por este
procedimiento con las tres dosis mostrando una inhibición
estadísticamente significativa (Figura 16). Las dosis de 1, 5 y 25
mg/kg dieron una inhibición del 38%, 71% y 86%, respectivamente. En
dos estudios separados la CE50 media para la inhibición de la
infiltración para monocitos/macrófagos mediante este análisis se
estimó que era 2,2 \pm 0,5 nM.
Para evaluar el nivel in vivo de la
ocupación de receptores por el Ejemplo 1 en el modelo de peritonitis
por tioglicolato de 48 horas usando el ratón knockin de hCCR2, los
niveles plasmáticos tanto del Ejemplo I como el ligando de CCR2 de
ratón MCP-1 se midieron. La advertencia para esta
estimación es que sólo CCR2 y su ligando principal el
MCP-1, se tuvieron en cuenta. La ocupación del
receptor por un ligando en presencia de un inhibidor competitivo se
define por la ecuación de Gaddum:
Puesto que el Ejemplo 1 es un inhibidor
competitivo de la unión de MCP-1 a CCR2, las
cantidades de tanto el complejo receptor MCP-1/CCR2
de ratón como el complejo receptor Ejemplo 1/CCR2 se pueden
determinar usando los niveles séricos de tanto el
MCP-1 de ratón como de la proteína no unida del
Ejemplo I en plasma. La K_{d} para la unión del
MCP-1 de ratón a hCCR2 es 0,91 +/- 0,08 nM (n = 8)
que se determinó en experimentos de competición de unión de ligando
en frío usando ^{125}I-MCP-1
humana. La Ki media para la unión del Ejemplo 1 a hCCR2 es 1,2 nM.
La fracción de complejo receptor de MCP-1/CCR2 de
ratón se determinó usando la forma de la ecuación descrita
anteriormente. Para determinar la fracción de complejos Ejemplo
1/CCR2 la ecuación se redefine como:
Finalmente, la cantidad de CCR2 libre se
determinó a partir de:
Como se muestra en la Tabla 15, el porcentaje de
inhibición de la infiltración de monocitos/macrófagos en el
peritoneo a las 48 h refleja el porcentaje de complejo receptor del
Ejemplo 1/CCR2 (CCR2 ocupado por Ejemplo 1).
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
Sección
4
Para estudiar el efecto del Ejemplo 1 en EAE
(encefalomielitis autoinmune experimental) un modelo de esclerosis
múltiple, se usaron 10 ratones por grupo. En el día 0, los ratones
hCCR2 KI se inmunizaron por vía subcutánea con un total de 200
\mul de 300 \mug de glicoproteína de la mielina de los
oligodendrocitos (MOG) 35-55 (Genemed Synthesis)
mezclado 1:1 con 300 \mug de Mycobacterium tuberculosis (H37Ra)
(Becton-Dickinson) en adyuvante de Freund
incompleto (AFI) (Sigma-Aldrich). En el día 0 (dos
horas después de la inmunización) y día 2, se inyectó
intraperitonealmente 100 \mul de 400 ng de toxina pertussis a
ratones. La puntuación clínica empezó el día 10, continuó tres
veces por semana a lo largo del estudio y se basó en una escala de
0-5: 0, ningún síntoma de enfermedad; 0,5,
debilidad parcial de la cola; 1, cola flácida o balanceo del paso
con tonicidad de cola; 1,5, balanceo de pato con debilidad parcial
de cola; 2, balanceo de paso con cola flácida (ataxia); 2,5 (ataxia
con parálisis parcial de miembro); 3, parálisis total de un miembro;
3,5, parálisis total de un miembro con parálisis parcial de un
segundo miembro; 4, parálisis de dos miembros; 4,5, moribundo; 5,
muerte. La dosificación oral del Ejemplo 1 a 55 mg/kg (dos veces al
día) se inició en el día 1
En dos de los tres estudios que se realizaron,
el Ejemplo 1 redujo significativamente la puntuación clínica
(p < 0,05) (Figura 17). La CI50 es 2,2 nM para el Ejemplo 1 en la unión de ^{125}I MCP-1 de ratón a las células que expresan hCCR2, CMSPh (imitando la configuración de hCCR2 KI). Basándose en este valor de CI50, las dosis de 55 mg/kg dieron como resultado una concentración de valle de plasma libre de \sim2 veces la unión de CI90. La evaluación histológica de la médula espinal el Día 22 no demostró una diferencia significativa en el infiltrado celular inflamatorio total entre ratones tratados con el Ejemplo I frente al vehículo. Un infiltrado de neutrófilos notable se observó en ratones tratados con el compuesto.
(p < 0,05) (Figura 17). La CI50 es 2,2 nM para el Ejemplo 1 en la unión de ^{125}I MCP-1 de ratón a las células que expresan hCCR2, CMSPh (imitando la configuración de hCCR2 KI). Basándose en este valor de CI50, las dosis de 55 mg/kg dieron como resultado una concentración de valle de plasma libre de \sim2 veces la unión de CI90. La evaluación histológica de la médula espinal el Día 22 no demostró una diferencia significativa en el infiltrado celular inflamatorio total entre ratones tratados con el Ejemplo I frente al vehículo. Un infiltrado de neutrófilos notable se observó en ratones tratados con el compuesto.
Claims (11)
1. Un compuesto,
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida,
o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo.
2. Un compuesto de la reivindicación 1 que es
una fórmula cristalina de
N-((1R,2S,5R)-5-(isopropil(metil)amino)-2-((S)-2-oxo-3-(6-(trifluorometil)quinazolin-4-ilamino)pirrolidin-1-il)ciclohexil)acetamida
o una sal farmacéuticamente aceptable del mismo.
3. La forma cristalina de la reivindicación 1 o
la reivindicación 2 caracterizada por parámetros de celdilla
unitaria sustancialmente iguales a los siguientes:
Dimensiones de la celdilla:
- a = 11,8427 (3)
- b = 18,1503 (7)
- c = 12,7923 (4)
- \alpha = 90
- \beta = 105,362 (2)
- \gamma = 90
Grupo espacial P2_{1}, Moléculas/unidad célula
2
en la que dicho cristal está a una temperatura
de aproximadamente +22ºC.
4. La forma cristalina de cualquiera de las
reivindicaciones 1-3 caracterizada por un
patrón de difracción de rayos X en polvo comprendiendo tres o más
valores de 2\theta (CuK\alpha \lambda = 1,541 \ring{A})
seleccionado de 7,2, 8,7, 9,7, 12,5, 12,8, 13,3, 16,0, 16,6, 18,2 y
18,8, a una temperatura de aproximadamente 22ºC.
5. La forma cristalina de cualquiera de las
reivindicaciones 1-4 además caracterizada por
un patrón de difracción de rayos X en polvo comprendiendo cuatro o
más valores de 2\theta(CuKa \lambda = 1,541 \ring{A})
seleccionado de un grupo constituido por 7,2, 8,7, 9,7, 12,5, 12,8,
13,3, 16,0, 16,6, 18,2 y 18,8, a una temperatura de aproximadamente
22ºC.
6. La forma cristalina de cualquiera de las
reivindicaciones 1-5 caracterizada por
coordienadas atómicos fraccionales sustancialmente como se indica
en la Tabla 7.
7. Una composición farmacéutica que comprende un
compuesto de cualquiera de las reivindicaciones 1-6
y un vehículo o diluyente farmacéuticamente aceptable.
8. Un compuesto de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1-6 para su uso en terapia.
9. Un compuesto de acuerdo con la reivindicación
8 para su uso en el tratamiento de una enfermedad seleccionada de
diabetes, obesidad, síndrome metabólico, accidente cerebrovascular,
dolor neuropático, cardiomiopatía isquémica, psoriasis,
hipertensión, esclerodermia, osteoartritis, aneurisma, fiebre,
enfermedad cardiovascular, enfermedad de Crohn, fallo cardiaco
congestivo, enfermedades autoinmunes, infección por VIH, demencia
asociada a VIH, psoriasis, fibrosis pulmonar idiopática,
arteriosclerosis de trasplante, trauma cerebral inducido física o
químicamente, enfermedad inflamatoria del intestino, alveolitis,
colitis, lupus sistémico eritomatoso, nefritis por suero
nemotóxico, glomerulonefritis, asma, esclerosis múltiple,
aterosclerosis, vasculitis, placas vulnerables, artritis
reumatoide, reestenosis, hiperplasia neointimal venosa, hiperplasia
neointimal de inserción de diálisis, hiperplasia intimal de
derivación arteriovenosa, trasplante de órganos, neuropatía de
aloinjerto crónico y cáncer.
10. Un compuesto de acuerdo con la
reivindicación 8 o la reivindicación 9 para su uso en el tratamiento
de una enfermedad se selecciona de diabetes, obesidad, enfermedad
de Crohn, lupus sistémico eritomatoso, glomerulonefritis,
esclerosis múltiple, aterosclerosis, reestenosis y trasplante de
órganos.
11. Un compuesto de acuerdo con cualquiera de
las reivindicaciones 8 a 10 para su uso en el tratamiento de una
enfermedad seleccionada de esclerosis múltiple, aterosclerosis,
enfermedad de Crohn y diabetes.
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