ES2350436A1 - Material simbiotico microencapsulado. - Google Patents

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Material simbiótico microencapsulado. La presente invención se refiere a un producto encapsulado que comprende compuestos probióticos y prebiótico y materiales poliméricos como material encapsulante. La estructura del encapsulado permite obtener un simbiótico que consigue alcanzar el tracto intestinal de una forma más eficiente que los simbióticos sin encapsular. Además la presente invención se refiere al uso de este material encapsulado, ya sea solo o incorporado a alimentos, para evitar o tratar disfunciones de la actividad intestinal.

Description

Material simbiótico microencapsulado.
La presente invención se refiere a un producto encapsulado que comprende compuestos probióticos y prebiótico y materiales poliméricos como material encapsulante. La estructura del encapsulado permite obtener un simbiótico que consigue alcanzar el tracto intestinal de una forma más eficiente que los simbióticos sin encapsular. Además la presente invención se refiere al uso de este material encapsulado, ya sea solo o incorporado a alimentos, para evitar o tratar disfunciones de la actividad intestinal. Por lo tanto, la presente invención está englobada dentro del campo de la tecnología alimentaria.
Estado de la técnica anterior
Para que las bacterias probióticas proporcionen beneficios saludables se ha recomendado que deben estar presentes como mínimo 10^{6} UFC/g en el alimento o 10^{7} UFC/g en el lugar de liberación o ingerir una cantidad suficiente para proporcionar una toma diaria de 10^{8} UFC Varios estudios han demostrado que ciertas cepas de bacterias ácido lácticas, tales como Bifidobacterium bifidum y Lactobacillus gasseri, previenen algunas enfermedades relacionadas con el tracto gastrointestinal.
Los prebióticos, ingredientes alimentarios no digeribles, afecta al huésped estimulando selectivamente el crecimiento, la actividad, o ambos o un número limitado de especies bacterianas que ya residen en el colon. La quercetina es el flavonoide más abundante de la dieta de los seres humanos y se sabe que es posible usarlo como nutraceutico para reducir los niveles de colesterol en sangre. El consumo del prebiótico quercetina es beneficioso para controlar el colesterol sanguíneo, y además tiene propiedades antioxidantes, anticarcinogénicas, antiinflamatorias, y cardioprotectoras.
La ventaja de combinar el prebiótico con el probiótico ha dado lugar al concepto de simbiótico. La adición de quercetina y las condiciones de empaquetado han mejorado el equilibrio de la microflora del intestino. Sin embargo, un alto porcentaje de las bacterias probióticas ingeridas pierde su viabilidad durante su paso a través del tracto gastrointestinal. Proveer a las células probióticas una barrera física contra condiciones ambientales adversas es una propuesta que actualmente tiene un considerable interés. Las tecnologías sobre microencapsulación se presumen por ser una propuesta prometedora para introducir bacterias probióticas viables en alimentos ya que la matriz de encapsulación puede proporcionar una barrera física contra condiciones ambientales adversas tales como la congelación y aquellos que se encuentran durante el paso del jugo gástrico e intestinal.
Aunque algunos estudios hayan utilizado ftalato del acetato de celulosa, gelatina, goma vegetal, grasas o \kappa-carragenano como agentes de encapsulación, el alginato sigue siendo el bio-polímero más usado para la microencapsulación. Las ventajas de usar el alginato como agente de encapsulación incluyen: no tóxico, forma matrices con el cloruro de calcio para atrapar de forma sencilla a las células microbianas y es de bajo coste. El alginato está también aceptado como aditivo alimentario y se puede utilizar con seguridad en los alimentos. El uso del alginato es limitado debido a su baja estabilidad en presencia de agentes quelantes y en condiciones ácidas por debajo de pH 2.0. El recubrimiento de cápsulas de alginato y su eficacia en la protección de bacterias probióticas se ha estudiado extensivamente. La microencapsulación de probióticos en cápsulas de alginato ha sido previamente probada para mejorar la viabilidad de las bacterias probióticas en condiciones gástricas simuladas (Ding, W.K., Shah, N.P., 2009. Effect of various encapsulating materials on the stability of probiotic bacteria. Journal of Food Science 74, M100-M107; Krasaekoopt, W., Bhandari, B., Deeth, H., 2003. Evaluation of encapsulation techniques of probiotics for yoghurt. International Dairy Journal 13, 3-13. Krasaekoopt W., Bhandari B., Deeth H., 2004). Además, Yu y colaboradores (Yu, W., Yim, T., Lee, K., Heo, T., 2001. Effect of skim milkalginate beads on survival rate of bifidobacteria. Biotechnology and Bioprocess Engineering 6, 133-138) encontraron que la tasa de supervivencia de las bifidobacterias en cápsulas de alginato no protege efectivamente los organismos de una elevada acidez. Si bien algunos autores han señalado el efecto de la encapsulación con alginato en la supervivencia de bacterias ácido lácticas en condiciones gastrointestinales simuladas (Truelstrup Hansen, L., Jin, Y.L., Allan-Wojtas, P.M., Paulson, A.T., 2002. Survival of Ca-alginate microencapsulated Bifidobacterium spp. in milk and simulated gastrointestinal conditions. Food Microbiology 19, 35-45), no existe uniformidad en los procedimientos de encapsulación publicados.
Los investigadores anteriores han divulgado que las microcápsulas de alginato recubiertas de quitosano habían mejorado la estabilidad de las cápsulas de alginato, así como también la viabilidad de los organismos probióticos encapsulados (Krasaekoopt W., Bhandari B., Deeth H., 2004. The influence of coating materials on some properties of alginate beads and survivability of microencapsulated probiotic bacteria. International Dairy Journal 14, 737-743). Se sugirió que la degradación del quitosano ocurre en la microflora que está disponible en el colon y la solubilización del gel de alginato ocurre al producirse el secuestro de los iones de calcio.
Descripción de la invención
La presente invención describe un producto encapsulado que comprende compuestos probióticos y prebiótico y materiales poliméricos como material encapsulante, con una estructura diseñada para permitir obtener un simbiótico que consigue alcanzar el tracto intestinal de una forma más eficiente que los simbióticos sin encapsular y producir así de una forma más efectiva el efecto beneficioso sobre la salud.
En un primer aspecto, la presente invención se refiere a un material encapsulado que comprende un probiótico y una sustancia prebiótica, y un material encapsulante que comprende una sustancia polimérica.
El término "probiótico" se refiere a microorganismos vivos que, al administrarse en cantidades adecuadas, confieren un beneficio a la salud del huésped. Ejemplos no limitantes de probióticos son: Lactobacillus bulgaricus, Lactobacillus casei, Lactobacillus gasseri, Lactobacillus plantarum, Propionibacterium schermani, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus rhamnosus, Bifidobacterium longum, o Bifidobacteríum bifidum.
En una realización preferida, el microorganismo probiótico es Lactobacillus gasseri.
En otra realización preferida el microorganismo probiótico es Bifidobacterium bifidum.
El término "prebiótico" se refiere a sustancias no digeribles que proporcionan un efecto fisiológico beneficioso al huésped, estimulando selectivamente el crecimiento favorable o la actividad de las bacterias presentes en el colon. Son, por lo tanto, el sustrato trófico del probiótico. Ejemplos no limitantes de prebióticos son: fructooligosacáridos, galactooligosacáridos, flavonoides, fibra soluble y dentro de estos grupos, la inulina, la oligofructosa, la peptina, la quercetina, la lactulosa, la maltodextrina, polidextrosa, etc.
En una realización preferida, el prebiótico es quercetina. La quercetina es un flavonoides englobado dentro del subgrupo de los flavonoles. Se encuentra presente en el té, la cebolla, las coles etc. y presenta numerosas propiedades beneficiosas para la salud: antiviral, antitumoral, antiinflamatoria, inmunoestimulante, etc.
El término "simbiótico" se refiere a productos que contienen tanto probióticos como prebióticos.
En una realización preferida, la sustancia polimérica del recubrimiento se selecciona entre ceras y lípidos, proteínas, hidratos de carbono y polímeros de grado alimentario. En una realización más preferida, la sustancia polimérica de encapsulación es alginato.
En otra realización preferida, el material descrito además comprende un material de recubrimiento que es, preferiblemente, quitosano, aunque pueden ser otros polímeros como copolímeros de metacrilato, copolímeros de ácido metacrílico, acetato de hidroxipropil metilcelulosa o cera de abeja.
En otra realización preferida, el material descrito además comprende un absorbente, desecante, agente crioprotector, antioxidante, etc.
En otra realización preferida, el material descrito es sólido a temperatura ambiente.
La preparación en una forma seca es necesaria para el almacenamiento prolongado y la aplicación de la bacteria microencapsulada. Los procesos de secado sin agentes protectores resultaron en una inactivación casi completa de la bacteria. Los organismos probióticos son sensibles a la liofilización debido al deterioro del estado fisiológico de las células. Un crioprotector es una sustancia que se acumula en las células para reducir la diferencia osmótica con el ambiente externo o una sustancia que rodea las células para mejorar la tolerancia al frío. La cantidad de crioprotector puede variar entre cultivos. La leche desnatada usada como agente crioprotector se espera que prevenga el daño celular por estabilización de los constituyentes de la membrana celular.
En otra realización preferida, el material descrito tiene un tamaño de cápsula con un diámetro inferior a 600 \mum.
En otro aspecto, la presente invención se refiere al uso del material descrito para la fabricación de un producto para la mejora de la actividad intestinal.
En otro aspecto, la presente invención se refiere al uso del material descrito para la fabricación de un producto para la prevención de disfunción de la actividad intestinal.
En otro aspecto, la presente invención se refiere a un producto alimentario que comprende el material descrito anteriormente.
Preferiblemente, el producto alimentario es un producto lácteo o un zumo.
En otro aspecto, la presente invención se refiere a una preparación nutracéutica que comprende el material descrito anteriormente y un adyuvante o un vehículo farmacéuticamente aceptable.
Preferiblemente, la preparación nutracéutica es para administración oral.
En la presente invención se entiende como "preparación nutracéutica" un suplemento dietético, presentado en una matriz no alimenticia (píldoras, cápsulas, polvo, etc.), de una sustancia natural bioactiva concentrada presente usualmente en los alimentos y que, tomada en dosis superior a la existente en esos alimentos, presumiblemente, tiene un efecto favorable sobre la salud, mayor que el que podría tener el alimento normal. Por tanto, se diferencian de los medicamentos en que éstos últimos no tienen un origen biológico natural.
Como ejemplos de formas en la preparación nutracéutica se incluye cualquier composición sólida (comprimidos, píldoras, cápsulas, gránulos, etc.) o líquida (soluciones, suspensiones o emulsiones) para administración oral.
Los "adyuvantes" y "vehículos farmacéuticamente aceptables" que pueden ser utilizados en dichas composiciones son los vehículos conocidos por los técnicos en la materia.
En otro aspecto, la presente invención se refiere a un procedimiento de obtención del material descrito anteriormente que comprende formar una partícula o gota del probiótico y/o prebiótico en una disolución o suspensión de la sustancia polimérica para producir el atrapamiento.
Preferiblemente, dicho material se obtiene por extrusión capilar.
A lo largo de la descripción y las reivindicaciones la palabra "comprende" y sus variantes no pretenden excluir otras características técnicas, aditivos, componentes o pasos. Para los expertos en la materia, otros objetos, ventajas y características de la invención se desprenderán en parte de la descripción y en parte de la práctica de la invención. Los siguientes ejemplos y dibujos se proporcionan a modo de ilustración, y no se pretende que sean limitativos de la presente invención.
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Descripción de las figuras
Fig. 1. Estabilidad de L. gasseri y B. bifidum libre y microencapsulado durante 4 semanas de almacenamiento a 4ºC. Símbolos: (\ding{116}) L. gasseri libre, (\medcirc) B. bifidum libre, (\blacksquare) cápsulas de alginato recubiertas de quitosano con L. gasseri, (\ding{115}) cápsulas de alginato recubiertas de quitosano con B. bifidum. Media (n=5) \pm SD.
Fig. 2. Supervivencia de B. bifidum y L. gasseri libre y encapsulada durante la exposición a la simulación del jugo gástrico (pH 2.0) a 37ºC. Símbolos: (\ding{116}) L. gasseri libre, (\medbullet) B. bifidum libre, (\blacksquare) cápsulas de alginato recubiertas de quitosano con L. gasseri y (\ding{115}) cápsulas de alginato recubiertas de quitosano con B. bifidum. La supervivencia (%) representa el porcentaje de células que sobreviven en comparación con la población inicial. Media (n=10) \pm SD.
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Ejemplos
A continuación se ilustrará la invención mediante unos ensayos realizados por los inventores, que pone de manifiesto la especificidad y efectividad del material de la invención.
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A. Preparación 1. Obtención de cepas bacterianas y condiciones de cultivo
Lactobacillus gasseri y Bifidobacterium bifidum fueron compradas en forma liofilizada a la Colección Española de Cultivos Tipo (CECT). Las bacterias fueron crecidas en un medio rutinario en caldo MRS.
Las células liofilizadas fueron rehidratadas en 5 ml de caldo MRS e incubadas, para L. gasseri a 37ºC durante 24 horas en condiciones aerobias y para B. bifidum a 39ºC durante 72 horas en condiciones anaerobias usando el sistema Gas Pak Plus. Los cultivos fueron transferidas al caldo MRS e incubadas en las mismas condiciones que antes para obtener una densidad celular de cerca de 10^{10} UFC/mL. Los cultivos celulares fueron centrifugados a 1500xg durante 5 minutos a baja temperatura (4ºC) y el pellet celular fue lavado dos veces con solución salina estéril. Las suspensiones celulares frescas fueron preparadas para cada experimento y el recuento fue por extendido sobre placa de agar MRS. Las placas fueron incubadas en las mismas condiciones que antes.
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2. Procedimientos de la microencapsulación y del recubrimiento
Los organismos probióticos y el prebiótico fueron incorporados en soluciones de alginato de sodio de concentraciones entre 1 y 4%. La técnica de microencapsulación consiste en la formación de microgotas de la solución de alginato por extrusión capilar sobre una solución acidificada de cloruro de calcio (0,1 M) y quitosano (0,3-0,6%). El proceso se lleva a cabo en condiciones estériles y las cápsulas formadas son tamizadas y lavadas. Las cápsulas lavadas son suspendidas o no en un agente crioprotector para proceder a su secado en lecho fluido (40ºC) o liofilización (-40ºC). Las cápsulas son conservadas en envases cerrados opacos en condiciones de refrigeración a 4ºC.
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3. Análisis de la supervivencia y recuento de las bacterias microencapsuladas
Las bacterias atrapadas en microesferas de alginato sin recubrimiento fueron liberadas homogeneizando 0,1 g de la mezcla filtrada de microesfera en 10 ml de citrato de sodio 0,1 M durante 10 minutos con agitación. Las muestras homogeneizadas fueron diluidas para conseguir una concentración apropiada para realizar el recuento por extensión sobre placa de agar MRS. Las placas fueron incubadas durante dos días a 37ºC y las bacterias encapsuladas enumeradas como UFC/mL. El rendimiento de la encapsulación (EY), el cual es una medida combinada de la eficacia del atrapamiento y de la supervivencia de células viables durante el procedimiento de la microencapsulación, era calculada como:
EY = (N/N_{0}) X 100
donde N es el número de células atrapadas viables liberadas de las microesferas, y N_{0} es el número de células libres añadidas a la solución del biopolímero durante la producción de las microesferas.
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Los tamaños de partículas y la formación de microesferas fueron medidos con un microscopio (Axioscop40, Carl Zeiss). El análisis de datos fue realizado usando el software Ellix 5.0 (Microvision Instruments). Los diámetros medios de las microesferas fueron calculados a partir de 100 cápsulas.
La simulación del jugo gástrico (SJG) consistió en 9 g/l de cloruro sódico que contenían 3,0 g/l de pepsina con pH ajustado a 2.0 usando ácido clorhídrico. 0,2 g de microcápsulas con bacterias (B y/o L) o 0,2 ml de suspensión celular de B y/o de L, así como sus combinaciones con quercetina, fueron añadidas a 10 ml de SJG e incubadas durante 5, 30, 60 y 120 minutos a 37ºC con agitación constante a 50 rpm.
La simulación del jugo intestinal (SJI) fue preparado disolviendo la sal biliar en la solución intestinal (6,5 g/l del NaCl, 0,835 g/l del KCl, 0,22 g/l del CaCl_{2} y 1,386 g/l NaHCO_{3}) a pH 7.5 y a una concentración final de 3,0 g/l. Las muestras por triplicado fueron incubadas a 37ºC durante 60, 90 y 120 minutos después de añadir las cápsulas con las bacterias (B y/o L) o las suspensiones de la célula de B y/o de L, así como sus combinaciones con quercetina. El recuento de la suspensión bacteria fue por extensión sobre placa de agar MRS en condiciones aerobias e incubadas a 37ºC a las bacterias L y en condiciones anaerobias e incubadas a 39ºC a las bacterias B, durante 2 días.
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3. Análisis estadístico
Los resultados fueron presentados como la media \pm desviación estándar (SD) de las determinaciones repetidas. Los datos fueron sometidos a un análisis de varianza (ANOVA) y se realizaron múltiples comparaciones según el test de Duncan. La significancia estadística fue establecida a p<0,05. Todos los análisis fueron realizados utilizando SPSS versión 17.0 para Windows (SPSS, Chicago, Illinois, EEUU).
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B. Resultados 1. Características de las microesferas. Tamaño y eficiencia de la encapsulación
La tabla 1 muestra los resultados para los diámetros y los rendimientos de encapsulación de las microesferas de alginato (2%) cubiertas de quitosano que contienen el prebiótico, las bacterias B y/o L, así como una combinación de los probióticos y el prebiótico.
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TABLA 1 Tamaño y rendimiento de la encapsulación de las diferentes microcápsulas
1
Las medias con letras diferentes en la misma columna son diferencias significativas (p < 0,05).
Los diámetros de las microesferas producidas de los productos prebiótico y simbiótico fueron significativamente superiores (p<0,05) que las de microesferas probióticas. Los promedios de los diámetros de las microesferas de alginato recubiertas con quitosano del producto probiótico fue de 355 \mum y las de prebióticas y simbióticas fueron 518 y 534 \mum, respectivamente. Se produjo una mayor variación en el tamaño de las cápsulas dependiendo de los presencia del compuesto prebiótico.
La microencapsulación en alginato de calcio puede verse afectada por varios factores tales como el tamaño de cápsula, la concentración de alginato, la cepa probiótica, y el tiempo de endurecimiento en cloruro de calcio. En el presente estudio, aunque se utiliza la misma concentración de alginato, la carga másica de las microesferas con quercetina implica un mayor tamaño de microesfera para la coencapsulación del probiótico y prebiótico. Además, se produjeron diferentes tamaños de microesferas entre los diferentes tipos de cápsula debido al contenido de probiótico en el interior (Chandramouli, V., Kailaspathy, K., Peiris, P., Jones, M., 2004. An improved method of microencapsulation and its evaluation to protect Lactobacillus spp. in simulated gastric conditions. Journal of Microbiological Methods 56, 27-35)..
Otros estudios mostraban que la coencapsulación de diferentes bacterias probióticas con almidón Hi-maize (prebiótico) y posteriormente recubierto con quitosano aumentaban significativamente la supervivencia de las bacterias probióticas encapsuladas (lyer, C. and Kailasapathy, K., 2005. Effect of co-encapsulation of probiotics with prebiotics on increasing the viability of encapsulated bacteria in simulated gastrointestinal conditions and in yoghurt. J. Food Science, 70(1): M18-M23). Además, las bacterias probióticas coencapsuladas con Hi-maize también sobrevivían mejor que las bacterias encapsuladas sin el prebiótico. Nuestro estudio ensayó la coencapsulación del probiótico con el prebiótico (quercetina). Si bien se observa una peor eficiencia en la encapsulación, ha de ser considerada la diferencia en el peso seco que se obtiene en función de la presencia del prebiótico.
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2. Estabilidad de las bacterias probióticas microencapsuladas durante el almacenado a 4ºC
La figura 1 muestra la estabilidad de las bacterias probióticas libres y encapsuladas durante 4 semanas de almacenamiento en la cámara a 4ºC. Después de 28 días, la supervivencia de L. gasseri y B. bifidum en microcápsulas separadas disminuye de 4,07x10^{9} a 3,09x10^{7} UFC/mL y de 2,40x10^{9} a 1,38x10^{7} UFC/mL respectivamente. Por otro lado, no hay diferencias significativas entre los probióticos microencapsulados y libres a lo largo tiempo de almacenamiento, por lo que la microencapsulación no modifica la viabilidad de los probióticos.
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3. Supervivencia de B. bifidum y L. gasseri libre y encapsulado en simulación del jugo gástrico (SJG)
Para determinar la posibilidad de que sobrevivan las bacterias probióticas microencapsuladas y libres al pasar a través del estómago tras la administración oral, se estudio la estabilidad de las bacterias probióticas microencapsuladas y libres en fluidos gástricos simulados (Figura 2). La encapsulación en microesferas de alginato recubierto de quitosano mejora significativamente (p<0,05) la supervivencia de bifidobacteria y lactobacilli. La supervivencia de las bacterias después de su exposición al SJG durante 5 minutos fue del 95%, 94%, 78% y 66% de la población inicial en las microesferas de alginato recubierto de quitosano con B. bifidum, con L. gasseri, en L. gasseri libre y en B. bifidum libre, respectivamente. B. bifidum microencapsulado y L. gasseri microencapsulado fueron resistentes a las condiciones gástricas simuladas. Más de 10^{7} CFU/mL de B. bifidum encapsulado y de L. gasseri encapsulado sobrevivieron después de 120 minutos, indicando que las cápsulas de B. bifidum disminuían menos de una unidad logarítmica y las cápsulas de L. gasseri disminuían un poco más de una unidad logarítmica. Se ha estimado que 10^{7} UFC/mL de células probióticas vivas son necesarias para conferir beneficios saludables al consumidor. Sin embargo, existe una rápida pérdida de bacterias probióticas en SJG a pH 2,0, de 10^{9} UFC/mL inicial de L. gasseri libre disminuía rápidamente por debajo de 10 UFC/mL (límite de detección) después de una exposición de 2 horas, pero en sólo 1 hora B. bifidum libre disminuye por debajo de 10 UFC/mL.
En definitiva, la adición de recubrimiento proporciona mejor protección a los organismos probióticos comparado con microcápsulas sin recubrir en el mismo espacio de tiempo (Ding, W.K., Shah, N.P., 2009. Effect of various encapsulating materials on the stability of probiotic bacteria. Journal of Food Science 74, M100-M107). La encapsulación de bacterias probióticas en microesferas recubiertas de quitosano mejoró la supervivencia con respecto a las células libres (Figura 2).
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4. Supervivencia de las bacterias probióticas en SJI
El efecto de la sal biliar en la viabilidad de las bacterias probióticas microencapsuladas y libres se presenta en la Tabla 2.
TABLA 2 Supervivencia celular (log UFC/mL) para L. gasseri y B. bifidum libre y encapsulado durante la incubación (37ºC) en la simulación del jugo intestinal (pH 6.0)
2
Las medias con letras diferentes en la misma columna son diferencias significativas (p < 0.05).
En el caso de L. gasseri libre, la viabilidad inicial fue de 7,58 log UFC/mL y después 90 minutos se redujo a 2,24 log UFC/mL, y el promedio del número de unidades viables se redujo posteriormente por debajo de 10 UFC/mL después de 120 minutos. Las células más susceptibles a la sal biliar fueron B. bifidum libres con una viabilidad inicial de 8,08 log UFC/mL, que se redujo por debajo de 10 UFC/mL después de 90 minutos de incubación. La supervivencia de las bacterias microencapsuladas después de su exposición a SJI durante 120 minutos fue 98,86% y 96, 72% de L. gasseri y de B. bifidum respectivamente.
Las microesferas de alginato recubiertas de quitosano fueron más efectivas en la protección de las bacterias probióticas frente a la sal biliar. El recubrimiento con quitosano proporciona la mejor protección en una solución de sal biliar debido a la reacción de intercambio de iones que ocurre cuando las cápsulas absorben la sal biliar (Murata, Y., Toniwa, S., Miyamoto, E., Kawashima, S., 1999. Preparation of alginate gel beads containing chitosan salt and their function. International Journal of Pharmaceutics 176, 265-268). Por lo tanto, la difusión de la sal biliar al interior de las cápsulas podría estar limitada. Esto protegerá a los probióticos encapsulados de su interacción con la sal biliar.
Los resultados obtenidos coinciden con otros estudios que utilizan concentraciones similares de sal biliar, por ejemplo Chandramouli y colaboradores (Chandramouli, V., Kailaspathy, K., Peiris, P., Jones, M., 2004. An improved method of microencapsulation and its evaluation to protect Lactobacillus spp. in simulated gastric conditions. Journal of Microbiological Methods 56, 27-35) y Kailasapathy (2005; Survival of free and encapsulated probiotic bacteria and effect on the sensory properties of yoghurt. Food Science and Technology 1, 1-2), mostrando que las bacterias probióticas encapsuladas pueden sobrevivir mejor que las células probióticas libres.

Claims (21)

1. Material encapsulado que comprende un probiótico y una sustancia prebiótica, y un material encapsulante que comprende una sustancia polimérica.
2. Material según la reivindicación 1 donde el microorganismo probiótico se selecciona entre Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus casei, Lactobacillus rhamnosus, Bifidobacterium bifidus, Bifidobacterium longum, Lactobacillus gasseri o Bifidobacterium bifidum.
3. Material según la reivindicación 2 donde el microorganismo probiótico es Lactobacillus gasseri.
4. Material según la reivindicación 2 donde el microorganismo probiótico es Bifidobacterium bifidum.
5. Material según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4 donde la sustancia prebiótica se selecciona entre fructooligosacáridos, galactooligosacáridos, flavonoides o fibra soluble.
6. Material según la reivindicación 5 donde la sustancia prebiótica es quercetina.
7. Material según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6 donde la sustancia polimérica del recubrimiento se selecciona entre ceras y lípidos, proteínas, hidratos de carbono y polímeros de grado alimentario.
8. Material según la reivindicación 7 donde la sustancia polimérica de encapsulación es alginato.
9. Material según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 8 que además comprende un material de recubrimiento.
10. Material según la reivindicación 9 donde el material de recubrimiento es quitosano.
11. Material según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 10 que además comprende un absorbente, desecante, agente crioprotector o antioxidante.
12. Material según cualquiera de las reivindicaciones anteriores donde se caracteriza porque es sólido a temperatura ambiente.
13. Material según cualquiera de las reivindicaciones anteriores donde el tamaño de cápsula tiene un diámetro inferior a 600 \mum.
14. Uso del material según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13 para la fabricación de un producto para la mejora de la actividad intestinal.
15. Uso del material según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13 para la fabricación de un producto para la prevención de disfunción de la actividad intestinal.
16. Producto alimentario que comprende el material según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13.
17. Producto según la reivindicación 16, caracterizado porque es un producto lácteo.
18. Producto según la reivindicación 16, caracterizado porque es un zumo.
19. Preparación nutracéutica que comprende el material según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13 y un adyuvante o un vehículo farmacéuticamente aceptable.
20. Procedimiento de obtención de un material según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13 que comprende formar una partícula o gota del probiótico y/o prebiótico en una disolución o suspensión de la sustancia polimérica para producir el atrapamiento.
21. Procedimiento según la reivindicación 20 en el que el material encapsulado se obtiene por extrusión capilar.
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