ES2350436A1 - Material simbiotico microencapsulado. - Google Patents
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Abstract
Material simbiótico microencapsulado. La presente invención se refiere a un producto encapsulado que comprende compuestos probióticos y prebiótico y materiales poliméricos como material encapsulante. La estructura del encapsulado permite obtener un simbiótico que consigue alcanzar el tracto intestinal de una forma más eficiente que los simbióticos sin encapsular. Además la presente invención se refiere al uso de este material encapsulado, ya sea solo o incorporado a alimentos, para evitar o tratar disfunciones de la actividad intestinal.
Description
Material simbiótico microencapsulado.
La presente invención se refiere a un producto
encapsulado que comprende compuestos probióticos y prebiótico y
materiales poliméricos como material encapsulante. La estructura del
encapsulado permite obtener un simbiótico que consigue alcanzar el
tracto intestinal de una forma más eficiente que los simbióticos sin
encapsular. Además la presente invención se refiere al uso de este
material encapsulado, ya sea solo o incorporado a alimentos, para
evitar o tratar disfunciones de la actividad intestinal. Por lo
tanto, la presente invención está englobada dentro del campo de la
tecnología alimentaria.
Para que las bacterias probióticas proporcionen
beneficios saludables se ha recomendado que deben estar presentes
como mínimo 10^{6} UFC/g en el alimento o 10^{7} UFC/g en el
lugar de liberación o ingerir una cantidad suficiente para
proporcionar una toma diaria de 10^{8} UFC Varios estudios han
demostrado que ciertas cepas de bacterias ácido lácticas, tales como
Bifidobacterium bifidum y Lactobacillus gasseri,
previenen algunas enfermedades relacionadas con el tracto
gastrointestinal.
Los prebióticos, ingredientes alimentarios no
digeribles, afecta al huésped estimulando selectivamente el
crecimiento, la actividad, o ambos o un número limitado de especies
bacterianas que ya residen en el colon. La quercetina es el
flavonoide más abundante de la dieta de los seres humanos y se sabe
que es posible usarlo como nutraceutico para reducir los niveles de
colesterol en sangre. El consumo del prebiótico quercetina es
beneficioso para controlar el colesterol sanguíneo, y además tiene
propiedades antioxidantes, anticarcinogénicas, antiinflamatorias, y
cardioprotectoras.
La ventaja de combinar el prebiótico con el
probiótico ha dado lugar al concepto de simbiótico. La adición de
quercetina y las condiciones de empaquetado han mejorado el
equilibrio de la microflora del intestino. Sin embargo, un alto
porcentaje de las bacterias probióticas ingeridas pierde su
viabilidad durante su paso a través del tracto gastrointestinal.
Proveer a las células probióticas una barrera física contra
condiciones ambientales adversas es una propuesta que actualmente
tiene un considerable interés. Las tecnologías sobre
microencapsulación se presumen por ser una propuesta prometedora
para introducir bacterias probióticas viables en alimentos ya que la
matriz de encapsulación puede proporcionar una barrera física contra
condiciones ambientales adversas tales como la congelación y
aquellos que se encuentran durante el paso del jugo gástrico e
intestinal.
Aunque algunos estudios hayan utilizado ftalato
del acetato de celulosa, gelatina, goma vegetal, grasas o
\kappa-carragenano como agentes de encapsulación,
el alginato sigue siendo el bio-polímero más usado
para la microencapsulación. Las ventajas de usar el alginato como
agente de encapsulación incluyen: no tóxico, forma matrices con el
cloruro de calcio para atrapar de forma sencilla a las células
microbianas y es de bajo coste. El alginato está también aceptado
como aditivo alimentario y se puede utilizar con seguridad en los
alimentos. El uso del alginato es limitado debido a su baja
estabilidad en presencia de agentes quelantes y en condiciones
ácidas por debajo de pH 2.0. El recubrimiento de cápsulas de
alginato y su eficacia en la protección de bacterias probióticas se
ha estudiado extensivamente. La microencapsulación de probióticos en
cápsulas de alginato ha sido previamente probada para mejorar la
viabilidad de las bacterias probióticas en condiciones gástricas
simuladas (Ding, W.K., Shah, N.P., 2009. Effect of various
encapsulating materials on the stability of probiotic bacteria.
Journal of Food Science 74, M100-M107; Krasaekoopt,
W., Bhandari, B., Deeth, H., 2003. Evaluation of encapsulation
techniques of probiotics for yoghurt. International Dairy
Journal 13, 3-13. Krasaekoopt W., Bhandari B.,
Deeth H., 2004). Además, Yu y colaboradores (Yu, W., Yim, T., Lee,
K., Heo, T., 2001. Effect of skim milkalginate beads on survival
rate of bifidobacteria. Biotechnology and Bioprocess
Engineering 6, 133-138) encontraron que la tasa
de supervivencia de las bifidobacterias en cápsulas de alginato no
protege efectivamente los organismos de una elevada acidez. Si bien
algunos autores han señalado el efecto de la encapsulación con
alginato en la supervivencia de bacterias ácido lácticas en
condiciones gastrointestinales simuladas (Truelstrup Hansen, L.,
Jin, Y.L., Allan-Wojtas, P.M., Paulson, A.T., 2002.
Survival of Ca-alginate microencapsulated
Bifidobacterium spp. in milk and simulated gastrointestinal
conditions. Food Microbiology 19, 35-45), no existe
uniformidad en los procedimientos de encapsulación publicados.
Los investigadores anteriores han divulgado que
las microcápsulas de alginato recubiertas de quitosano habían
mejorado la estabilidad de las cápsulas de alginato, así como
también la viabilidad de los organismos probióticos encapsulados
(Krasaekoopt W., Bhandari B., Deeth H., 2004. The influence of
coating materials on some properties of alginate beads and
survivability of microencapsulated probiotic bacteria.
International Dairy Journal 14, 737-743). Se
sugirió que la degradación del quitosano ocurre en la microflora que
está disponible en el colon y la solubilización del gel de alginato
ocurre al producirse el secuestro de los iones de calcio.
La presente invención describe un producto
encapsulado que comprende compuestos probióticos y prebiótico y
materiales poliméricos como material encapsulante, con una
estructura diseñada para permitir obtener un simbiótico que consigue
alcanzar el tracto intestinal de una forma más eficiente que los
simbióticos sin encapsular y producir así de una forma más efectiva
el efecto beneficioso sobre la salud.
En un primer aspecto, la presente invención se
refiere a un material encapsulado que comprende un probiótico y una
sustancia prebiótica, y un material encapsulante que comprende una
sustancia polimérica.
El término "probiótico" se refiere a
microorganismos vivos que, al administrarse en cantidades adecuadas,
confieren un beneficio a la salud del huésped. Ejemplos no
limitantes de probióticos son: Lactobacillus bulgaricus,
Lactobacillus casei, Lactobacillus gasseri, Lactobacillus plantarum,
Propionibacterium schermani, Lactobacillus acidophilus,
Lactobacillus rhamnosus, Bifidobacterium longum, o
Bifidobacteríum bifidum.
En una realización preferida, el microorganismo
probiótico es Lactobacillus gasseri.
En otra realización preferida el microorganismo
probiótico es Bifidobacterium bifidum.
El término "prebiótico" se refiere a
sustancias no digeribles que proporcionan un efecto fisiológico
beneficioso al huésped, estimulando selectivamente el crecimiento
favorable o la actividad de las bacterias presentes en el colon.
Son, por lo tanto, el sustrato trófico del probiótico. Ejemplos no
limitantes de prebióticos son: fructooligosacáridos,
galactooligosacáridos, flavonoides, fibra soluble y dentro de estos
grupos, la inulina, la oligofructosa, la peptina, la quercetina, la
lactulosa, la maltodextrina, polidextrosa, etc.
En una realización preferida, el prebiótico es
quercetina. La quercetina es un flavonoides englobado dentro del
subgrupo de los flavonoles. Se encuentra presente en el té, la
cebolla, las coles etc. y presenta numerosas propiedades
beneficiosas para la salud: antiviral, antitumoral,
antiinflamatoria, inmunoestimulante, etc.
El término "simbiótico" se refiere a
productos que contienen tanto probióticos como prebióticos.
En una realización preferida, la sustancia
polimérica del recubrimiento se selecciona entre ceras y lípidos,
proteínas, hidratos de carbono y polímeros de grado alimentario. En
una realización más preferida, la sustancia polimérica de
encapsulación es alginato.
En otra realización preferida, el material
descrito además comprende un material de recubrimiento que es,
preferiblemente, quitosano, aunque pueden ser otros polímeros como
copolímeros de metacrilato, copolímeros de ácido metacrílico,
acetato de hidroxipropil metilcelulosa o cera de abeja.
En otra realización preferida, el material
descrito además comprende un absorbente, desecante, agente
crioprotector, antioxidante, etc.
En otra realización preferida, el material
descrito es sólido a temperatura ambiente.
La preparación en una forma seca es necesaria
para el almacenamiento prolongado y la aplicación de la bacteria
microencapsulada. Los procesos de secado sin agentes protectores
resultaron en una inactivación casi completa de la bacteria. Los
organismos probióticos son sensibles a la liofilización debido al
deterioro del estado fisiológico de las células. Un crioprotector es
una sustancia que se acumula en las células para reducir la
diferencia osmótica con el ambiente externo o una sustancia que
rodea las células para mejorar la tolerancia al frío. La cantidad de
crioprotector puede variar entre cultivos. La leche desnatada usada
como agente crioprotector se espera que prevenga el daño celular por
estabilización de los constituyentes de la membrana celular.
En otra realización preferida, el material
descrito tiene un tamaño de cápsula con un diámetro inferior a 600
\mum.
En otro aspecto, la presente invención se
refiere al uso del material descrito para la fabricación de un
producto para la mejora de la actividad intestinal.
En otro aspecto, la presente invención se
refiere al uso del material descrito para la fabricación de un
producto para la prevención de disfunción de la actividad
intestinal.
En otro aspecto, la presente invención se
refiere a un producto alimentario que comprende el material descrito
anteriormente.
Preferiblemente, el producto alimentario es un
producto lácteo o un zumo.
En otro aspecto, la presente invención se
refiere a una preparación nutracéutica que comprende el material
descrito anteriormente y un adyuvante o un vehículo
farmacéuticamente aceptable.
Preferiblemente, la preparación nutracéutica es
para administración oral.
En la presente invención se entiende como
"preparación nutracéutica" un suplemento dietético, presentado
en una matriz no alimenticia (píldoras, cápsulas, polvo, etc.), de
una sustancia natural bioactiva concentrada presente usualmente en
los alimentos y que, tomada en dosis superior a la existente en esos
alimentos, presumiblemente, tiene un efecto favorable sobre la
salud, mayor que el que podría tener el alimento normal. Por tanto,
se diferencian de los medicamentos en que éstos últimos no tienen un
origen biológico natural.
Como ejemplos de formas en la preparación
nutracéutica se incluye cualquier composición sólida (comprimidos,
píldoras, cápsulas, gránulos, etc.) o líquida (soluciones,
suspensiones o emulsiones) para administración oral.
Los "adyuvantes" y "vehículos
farmacéuticamente aceptables" que pueden ser utilizados en dichas
composiciones son los vehículos conocidos por los técnicos en la
materia.
En otro aspecto, la presente invención se
refiere a un procedimiento de obtención del material descrito
anteriormente que comprende formar una partícula o gota del
probiótico y/o prebiótico en una disolución o suspensión de la
sustancia polimérica para producir el atrapamiento.
Preferiblemente, dicho material se obtiene por
extrusión capilar.
A lo largo de la descripción y las
reivindicaciones la palabra "comprende" y sus variantes no
pretenden excluir otras características técnicas, aditivos,
componentes o pasos. Para los expertos en la materia, otros objetos,
ventajas y características de la invención se desprenderán en parte
de la descripción y en parte de la práctica de la invención. Los
siguientes ejemplos y dibujos se proporcionan a modo de ilustración,
y no se pretende que sean limitativos de la presente invención.
\vskip1.000000\baselineskip
Fig. 1. Estabilidad de L. gasseri y B.
bifidum libre y microencapsulado durante 4 semanas de
almacenamiento a 4ºC. Símbolos: (\ding{116}) L. gasseri
libre, (\medcirc) B. bifidum libre, (\blacksquare)
cápsulas de alginato recubiertas de quitosano con L. gasseri,
(\ding{115}) cápsulas de alginato recubiertas de quitosano con
B. bifidum. Media (n=5) \pm SD.
Fig. 2. Supervivencia de B. bifidum y
L. gasseri libre y encapsulada durante la exposición a la
simulación del jugo gástrico (pH 2.0) a 37ºC. Símbolos:
(\ding{116}) L. gasseri libre, (\medbullet) B.
bifidum libre, (\blacksquare) cápsulas de alginato recubiertas
de quitosano con L. gasseri y (\ding{115}) cápsulas de
alginato recubiertas de quitosano con B. bifidum. La
supervivencia (%) representa el porcentaje de células que sobreviven
en comparación con la población inicial. Media (n=10) \pm SD.
\vskip1.000000\baselineskip
A continuación se ilustrará la invención
mediante unos ensayos realizados por los inventores, que pone de
manifiesto la especificidad y efectividad del material de la
invención.
\vskip1.000000\baselineskip
Lactobacillus gasseri y
Bifidobacterium bifidum fueron compradas en forma liofilizada
a la Colección Española de Cultivos Tipo (CECT). Las bacterias
fueron crecidas en un medio rutinario en caldo MRS.
Las células liofilizadas fueron rehidratadas en
5 ml de caldo MRS e incubadas, para L. gasseri a 37ºC durante
24 horas en condiciones aerobias y para B. bifidum a 39ºC
durante 72 horas en condiciones anaerobias usando el sistema Gas Pak
Plus. Los cultivos fueron transferidas al caldo MRS e incubadas en
las mismas condiciones que antes para obtener una densidad celular
de cerca de 10^{10} UFC/mL. Los cultivos celulares fueron
centrifugados a 1500xg durante 5 minutos a baja temperatura (4ºC) y
el pellet celular fue lavado dos veces con solución salina estéril.
Las suspensiones celulares frescas fueron preparadas para cada
experimento y el recuento fue por extendido sobre placa de agar MRS.
Las placas fueron incubadas en las mismas condiciones que antes.
\vskip1.000000\baselineskip
Los organismos probióticos y el prebiótico
fueron incorporados en soluciones de alginato de sodio de
concentraciones entre 1 y 4%. La técnica de microencapsulación
consiste en la formación de microgotas de la solución de alginato
por extrusión capilar sobre una solución acidificada de cloruro de
calcio (0,1 M) y quitosano (0,3-0,6%). El proceso se
lleva a cabo en condiciones estériles y las cápsulas formadas son
tamizadas y lavadas. Las cápsulas lavadas son suspendidas o no en un
agente crioprotector para proceder a su secado en lecho fluido
(40ºC) o liofilización (-40ºC). Las cápsulas son conservadas en
envases cerrados opacos en condiciones de refrigeración a 4ºC.
\vskip1.000000\baselineskip
Las bacterias atrapadas en microesferas de
alginato sin recubrimiento fueron liberadas homogeneizando 0,1 g de
la mezcla filtrada de microesfera en 10 ml de citrato de sodio 0,1 M
durante 10 minutos con agitación. Las muestras homogeneizadas fueron
diluidas para conseguir una concentración apropiada para realizar el
recuento por extensión sobre placa de agar MRS. Las placas fueron
incubadas durante dos días a 37ºC y las bacterias encapsuladas
enumeradas como UFC/mL. El rendimiento de la encapsulación (EY), el
cual es una medida combinada de la eficacia del atrapamiento y de la
supervivencia de células viables durante el procedimiento de la
microencapsulación, era calculada como:
EY =
(N/N_{0}) X
100
donde N es el número de
células atrapadas viables liberadas de las microesferas, y
N_{0} es el número de células libres añadidas a la solución
del biopolímero durante la producción de las
microesferas.
\vskip1.000000\baselineskip
Los tamaños de partículas y la formación de
microesferas fueron medidos con un microscopio (Axioscop40, Carl
Zeiss). El análisis de datos fue realizado usando el software Ellix
5.0 (Microvision Instruments). Los diámetros medios de las
microesferas fueron calculados a partir de 100 cápsulas.
La simulación del jugo gástrico (SJG) consistió
en 9 g/l de cloruro sódico que contenían 3,0 g/l de pepsina con pH
ajustado a 2.0 usando ácido clorhídrico. 0,2 g de microcápsulas con
bacterias (B y/o L) o 0,2 ml de suspensión celular de B y/o de L,
así como sus combinaciones con quercetina, fueron añadidas a 10 ml
de SJG e incubadas durante 5, 30, 60 y 120 minutos a 37ºC con
agitación constante a 50 rpm.
La simulación del jugo intestinal (SJI) fue
preparado disolviendo la sal biliar en la solución intestinal (6,5
g/l del NaCl, 0,835 g/l del KCl, 0,22 g/l del CaCl_{2} y 1,386 g/l
NaHCO_{3}) a pH 7.5 y a una concentración final de 3,0 g/l. Las
muestras por triplicado fueron incubadas a 37ºC durante 60, 90 y 120
minutos después de añadir las cápsulas con las bacterias (B y/o L) o
las suspensiones de la célula de B y/o de L, así como sus
combinaciones con quercetina. El recuento de la suspensión bacteria
fue por extensión sobre placa de agar MRS en condiciones aerobias e
incubadas a 37ºC a las bacterias L y en condiciones anaerobias e
incubadas a 39ºC a las bacterias B, durante 2 días.
\vskip1.000000\baselineskip
Los resultados fueron presentados como la media
\pm desviación estándar (SD) de las determinaciones repetidas. Los
datos fueron sometidos a un análisis de varianza (ANOVA) y se
realizaron múltiples comparaciones según el test de Duncan. La
significancia estadística fue establecida a p<0,05. Todos los
análisis fueron realizados utilizando SPSS versión 17.0 para Windows
(SPSS, Chicago, Illinois, EEUU).
\vskip1.000000\baselineskip
La tabla 1 muestra los resultados para los
diámetros y los rendimientos de encapsulación de las microesferas de
alginato (2%) cubiertas de quitosano que contienen el prebiótico,
las bacterias B y/o L, así como una combinación de los probióticos y
el prebiótico.
\vskip1.000000\baselineskip
Las medias con letras diferentes en la misma
columna son diferencias significativas (p < 0,05).
Los diámetros de las microesferas producidas de
los productos prebiótico y simbiótico fueron significativamente
superiores (p<0,05) que las de microesferas probióticas. Los
promedios de los diámetros de las microesferas de alginato
recubiertas con quitosano del producto probiótico fue de 355 \mum
y las de prebióticas y simbióticas fueron 518 y 534 \mum,
respectivamente. Se produjo una mayor variación en el tamaño de las
cápsulas dependiendo de los presencia del compuesto prebiótico.
La microencapsulación en alginato de calcio
puede verse afectada por varios factores tales como el tamaño de
cápsula, la concentración de alginato, la cepa probiótica, y el
tiempo de endurecimiento en cloruro de calcio. En el presente
estudio, aunque se utiliza la misma concentración de alginato, la
carga másica de las microesferas con quercetina implica un mayor
tamaño de microesfera para la coencapsulación del probiótico y
prebiótico. Además, se produjeron diferentes tamaños de microesferas
entre los diferentes tipos de cápsula debido al contenido de
probiótico en el interior (Chandramouli, V., Kailaspathy, K.,
Peiris, P., Jones, M., 2004. An improved method of
microencapsulation and its evaluation to protect
Lactobacillus spp. in simulated gastric conditions. Journal
of Microbiological Methods 56, 27-35)..
Otros estudios mostraban que la coencapsulación
de diferentes bacterias probióticas con almidón
Hi-maize (prebiótico) y posteriormente recubierto
con quitosano aumentaban significativamente la supervivencia de las
bacterias probióticas encapsuladas (lyer, C. and Kailasapathy, K.,
2005. Effect of co-encapsulation of probiotics with
prebiotics on increasing the viability of encapsulated bacteria in
simulated gastrointestinal conditions and in yoghurt. J. Food
Science, 70(1): M18-M23). Además, las
bacterias probióticas coencapsuladas con Hi-maize
también sobrevivían mejor que las bacterias encapsuladas sin el
prebiótico. Nuestro estudio ensayó la coencapsulación del probiótico
con el prebiótico (quercetina). Si bien se observa una peor
eficiencia en la encapsulación, ha de ser considerada la diferencia
en el peso seco que se obtiene en función de la presencia del
prebiótico.
\vskip1.000000\baselineskip
La figura 1 muestra la estabilidad de las
bacterias probióticas libres y encapsuladas durante 4 semanas de
almacenamiento en la cámara a 4ºC. Después de 28 días, la
supervivencia de L. gasseri y B. bifidum en
microcápsulas separadas disminuye de 4,07x10^{9} a 3,09x10^{7}
UFC/mL y de 2,40x10^{9} a 1,38x10^{7} UFC/mL respectivamente.
Por otro lado, no hay diferencias significativas entre los
probióticos microencapsulados y libres a lo largo tiempo de
almacenamiento, por lo que la microencapsulación no modifica la
viabilidad de los probióticos.
\vskip1.000000\baselineskip
Para determinar la posibilidad de que sobrevivan
las bacterias probióticas microencapsuladas y libres al pasar a
través del estómago tras la administración oral, se estudio la
estabilidad de las bacterias probióticas microencapsuladas y libres
en fluidos gástricos simulados (Figura 2). La encapsulación en
microesferas de alginato recubierto de quitosano mejora
significativamente (p<0,05) la supervivencia de bifidobacteria y
lactobacilli. La supervivencia de las bacterias después de su
exposición al SJG durante 5 minutos fue del 95%, 94%, 78% y 66% de
la población inicial en las microesferas de alginato recubierto de
quitosano con B. bifidum, con L. gasseri, en L.
gasseri libre y en B. bifidum libre, respectivamente.
B. bifidum microencapsulado y L. gasseri
microencapsulado fueron resistentes a las condiciones gástricas
simuladas. Más de 10^{7} CFU/mL de B. bifidum encapsulado y
de L. gasseri encapsulado sobrevivieron después de 120
minutos, indicando que las cápsulas de B. bifidum disminuían
menos de una unidad logarítmica y las cápsulas de L. gasseri
disminuían un poco más de una unidad logarítmica. Se ha estimado que
10^{7} UFC/mL de células probióticas vivas son necesarias para
conferir beneficios saludables al consumidor. Sin embargo, existe
una rápida pérdida de bacterias probióticas en SJG a pH 2,0, de
10^{9} UFC/mL inicial de L. gasseri libre disminuía
rápidamente por debajo de 10 UFC/mL (límite de detección) después de
una exposición de 2 horas, pero en sólo 1 hora B. bifidum
libre disminuye por debajo de 10 UFC/mL.
En definitiva, la adición de recubrimiento
proporciona mejor protección a los organismos probióticos comparado
con microcápsulas sin recubrir en el mismo espacio de tiempo (Ding,
W.K., Shah, N.P., 2009. Effect of various encapsulating materials on
the stability of probiotic bacteria. Journal of Food Science
74, M100-M107). La encapsulación de bacterias
probióticas en microesferas recubiertas de quitosano mejoró la
supervivencia con respecto a las células libres (Figura 2).
\vskip1.000000\baselineskip
El efecto de la sal biliar en la viabilidad de
las bacterias probióticas microencapsuladas y libres se presenta en
la Tabla 2.
Las medias con letras diferentes en la misma
columna son diferencias significativas (p < 0.05).
En el caso de L. gasseri libre, la
viabilidad inicial fue de 7,58 log UFC/mL y después 90 minutos se
redujo a 2,24 log UFC/mL, y el promedio del número de unidades
viables se redujo posteriormente por debajo de 10 UFC/mL después de
120 minutos. Las células más susceptibles a la sal biliar fueron
B. bifidum libres con una viabilidad inicial de 8,08 log
UFC/mL, que se redujo por debajo de 10 UFC/mL después de 90 minutos
de incubación. La supervivencia de las bacterias microencapsuladas
después de su exposición a SJI durante 120 minutos fue 98,86% y 96,
72% de L. gasseri y de B. bifidum respectivamente.
Las microesferas de alginato recubiertas de
quitosano fueron más efectivas en la protección de las bacterias
probióticas frente a la sal biliar. El recubrimiento con quitosano
proporciona la mejor protección en una solución de sal biliar debido
a la reacción de intercambio de iones que ocurre cuando las cápsulas
absorben la sal biliar (Murata, Y., Toniwa, S., Miyamoto, E.,
Kawashima, S., 1999. Preparation of alginate gel beads containing
chitosan salt and their function. International Journal of
Pharmaceutics 176, 265-268). Por lo tanto, la
difusión de la sal biliar al interior de las cápsulas podría estar
limitada. Esto protegerá a los probióticos encapsulados de su
interacción con la sal biliar.
Los resultados obtenidos coinciden con otros
estudios que utilizan concentraciones similares de sal biliar, por
ejemplo Chandramouli y colaboradores (Chandramouli, V., Kailaspathy,
K., Peiris, P., Jones, M., 2004. An improved method of
microencapsulation and its evaluation to protect
Lactobacillus spp. in simulated gastric conditions.
Journal of Microbiological Methods 56, 27-35)
y Kailasapathy (2005; Survival of free and encapsulated probiotic
bacteria and effect on the sensory properties of yoghurt. Food
Science and Technology 1, 1-2), mostrando que
las bacterias probióticas encapsuladas pueden sobrevivir mejor que
las células probióticas libres.
Claims (21)
1. Material encapsulado que comprende un
probiótico y una sustancia prebiótica, y un material encapsulante
que comprende una sustancia polimérica.
2. Material según la reivindicación 1 donde el
microorganismo probiótico se selecciona entre Lactobacillus
acidophilus, Lactobacillus casei, Lactobacillus rhamnosus,
Bifidobacterium bifidus, Bifidobacterium longum, Lactobacillus
gasseri o Bifidobacterium bifidum.
3. Material según la reivindicación 2 donde el
microorganismo probiótico es Lactobacillus gasseri.
4. Material según la reivindicación 2 donde el
microorganismo probiótico es Bifidobacterium bifidum.
5. Material según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4 donde la sustancia prebiótica se selecciona
entre fructooligosacáridos, galactooligosacáridos, flavonoides o
fibra soluble.
6. Material según la reivindicación 5 donde la
sustancia prebiótica es quercetina.
7. Material según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 donde la sustancia polimérica del
recubrimiento se selecciona entre ceras y lípidos, proteínas,
hidratos de carbono y polímeros de grado alimentario.
8. Material según la reivindicación 7 donde la
sustancia polimérica de encapsulación es alginato.
9. Material según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 8 que además comprende un material de
recubrimiento.
10. Material según la reivindicación 9 donde el
material de recubrimiento es quitosano.
11. Material según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 10 que además comprende un absorbente,
desecante, agente crioprotector o antioxidante.
12. Material según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores donde se caracteriza porque es
sólido a temperatura ambiente.
13. Material según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores donde el tamaño de cápsula tiene un
diámetro inferior a 600 \mum.
14. Uso del material según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 13 para la fabricación de un producto para la
mejora de la actividad intestinal.
15. Uso del material según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 13 para la fabricación de un producto para la
prevención de disfunción de la actividad intestinal.
16. Producto alimentario que comprende el
material según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13.
17. Producto según la reivindicación 16,
caracterizado porque es un producto lácteo.
18. Producto según la reivindicación 16,
caracterizado porque es un zumo.
19. Preparación nutracéutica que comprende el
material según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13 y un
adyuvante o un vehículo farmacéuticamente aceptable.
20. Procedimiento de obtención de un material
según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 13 que comprende formar
una partícula o gota del probiótico y/o prebiótico en una disolución
o suspensión de la sustancia polimérica para producir el
atrapamiento.
21. Procedimiento según la reivindicación 20 en
el que el material encapsulado se obtiene por extrusión capilar.
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|---|---|---|---|
| ES201031122A ES2350436B1 (es) | 2010-07-21 | 2010-07-21 | Material simbiotico microencapsulado |
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