ES2365572T3 - Tira reactiva para analito con deposición reactiva mejorada. - Google Patents
Tira reactiva para analito con deposición reactiva mejorada. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2365572T3 ES2365572T3 ES08252946T ES08252946T ES2365572T3 ES 2365572 T3 ES2365572 T3 ES 2365572T3 ES 08252946 T ES08252946 T ES 08252946T ES 08252946 T ES08252946 T ES 08252946T ES 2365572 T3 ES2365572 T3 ES 2365572T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- test strip
- block portion
- electrodes
- conductive material
- micrometers
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Active
Links
- 239000012491 analyte Substances 0.000 title claims abstract description 20
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 title description 24
- 230000008021 deposition Effects 0.000 title description 4
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims abstract description 103
- 239000000758 substrate Substances 0.000 claims abstract description 42
- 239000004020 conductor Substances 0.000 claims abstract description 32
- 238000004891 communication Methods 0.000 claims abstract 2
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 35
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 claims description 21
- 238000000576 coating method Methods 0.000 claims description 21
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 21
- 239000012530 fluid Substances 0.000 claims description 14
- 238000000151 deposition Methods 0.000 claims description 7
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims description 5
- 229940006193 2-mercaptoethanesulfonic acid Drugs 0.000 claims description 4
- ZNEWHQLOPFWXOF-UHFFFAOYSA-N coenzyme M Chemical compound OS(=O)(=O)CCS ZNEWHQLOPFWXOF-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 4
- 238000005259 measurement Methods 0.000 claims description 4
- 159000000000 sodium salts Chemical class 0.000 claims description 4
- 238000002679 ablation Methods 0.000 claims description 2
- 238000005553 drilling Methods 0.000 claims 1
- KJTLSVCANCCWHF-UHFFFAOYSA-N Ruthenium Chemical compound [Ru] KJTLSVCANCCWHF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 24
- 229910052707 ruthenium Inorganic materials 0.000 description 24
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 18
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 16
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 14
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 14
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 14
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 14
- 229910052737 gold Inorganic materials 0.000 description 13
- 239000010931 gold Substances 0.000 description 13
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 12
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 12
- MMXZSJMASHPLLR-UHFFFAOYSA-N pyrroloquinoline quinone Chemical compound C12=C(C(O)=O)C=C(C(O)=O)N=C2C(=O)C(=O)C2=C1NC(C(=O)O)=C2 MMXZSJMASHPLLR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- 239000004366 Glucose oxidase Substances 0.000 description 11
- 108010015776 Glucose oxidase Proteins 0.000 description 11
- 229940116332 glucose oxidase Drugs 0.000 description 11
- 235000019420 glucose oxidase Nutrition 0.000 description 11
- PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N gold Chemical compound [Au] PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 11
- 238000000608 laser ablation Methods 0.000 description 10
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 9
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 description 8
- 230000001070 adhesive effect Effects 0.000 description 8
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 8
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 8
- 239000000976 ink Substances 0.000 description 8
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 7
- 108010050375 Glucose 1-Dehydrogenase Proteins 0.000 description 6
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 6
- KDLHZDBZIXYQEI-UHFFFAOYSA-N palladium Substances [Pd] KDLHZDBZIXYQEI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 229920000728 polyester Polymers 0.000 description 6
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 description 5
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- BAWFJGJZGIEFAR-NNYOXOHSSA-N NAD zwitterion Chemical compound NC(=O)C1=CC=C[N+]([C@H]2[C@@H]([C@H](O)[C@@H](COP([O-])(=O)OP(O)(=O)OC[C@@H]3[C@H]([C@@H](O)[C@@H](O3)N3C4=NC=NC(N)=C4N=C3)O)O2)O)=C1 BAWFJGJZGIEFAR-NNYOXOHSSA-N 0.000 description 4
- 229920002023 Pluronic® F 87 Polymers 0.000 description 4
- RVGRUAULSDPKGF-UHFFFAOYSA-N Poloxamer Chemical compound C1CO1.CC1CO1 RVGRUAULSDPKGF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 4
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 4
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 4
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 4
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 4
- 235000019162 flavin adenine dinucleotide Nutrition 0.000 description 4
- 239000011714 flavin adenine dinucleotide Substances 0.000 description 4
- 229950006238 nadide Drugs 0.000 description 4
- 229910052763 palladium Inorganic materials 0.000 description 4
- 230000002093 peripheral effect Effects 0.000 description 4
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 4
- 229920002689 polyvinyl acetate Polymers 0.000 description 4
- 239000011118 polyvinyl acetate Substances 0.000 description 4
- 239000004354 Hydroxyethyl cellulose Substances 0.000 description 3
- 229920000663 Hydroxyethyl cellulose Polymers 0.000 description 3
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 3
- 229920002057 Pluronic® P 103 Polymers 0.000 description 3
- 238000013461 design Methods 0.000 description 3
- -1 for example Substances 0.000 description 3
- 230000002209 hydrophobic effect Effects 0.000 description 3
- 235000019447 hydroxyethyl cellulose Nutrition 0.000 description 3
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 3
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 3
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 3
- HDTRYLNUVZCQOY-UHFFFAOYSA-N α-D-glucopyranosyl-α-D-glucopyranoside Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OC1C(O)C(O)C(O)C(CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- IXPNQXFRVYWDDI-UHFFFAOYSA-N 1-methyl-2,4-dioxo-1,3-diazinane-5-carboximidamide Chemical compound CN1CC(C(N)=N)C(=O)NC1=O IXPNQXFRVYWDDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- SMZOUWXMTYCWNB-UHFFFAOYSA-N 2-(2-methoxy-5-methylphenyl)ethanamine Chemical compound COC1=CC=C(C)C=C1CCN SMZOUWXMTYCWNB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- JRBJSXQPQWSCCF-UHFFFAOYSA-N 3,3'-Dimethoxybenzidine Chemical compound C1=C(N)C(OC)=CC(C=2C=C(OC)C(N)=CC=2)=C1 JRBJSXQPQWSCCF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 description 2
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 description 2
- GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N Alpha-Lactose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)O[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N 0.000 description 2
- 239000005995 Aluminium silicate Substances 0.000 description 2
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 2
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 2
- FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N D-Mannitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N 0.000 description 2
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N Lactose Natural products OC[C@H]1O[C@@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 description 2
- 229930195725 Mannitol Natural products 0.000 description 2
- CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-N Methacrylic acid Chemical compound CC(=C)C(O)=O CERQOIWHTDAKMF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920003171 Poly (ethylene oxide) Polymers 0.000 description 2
- 239000004952 Polyamide Substances 0.000 description 2
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 description 2
- 239000004372 Polyvinyl alcohol Substances 0.000 description 2
- 239000004820 Pressure-sensitive adhesive Substances 0.000 description 2
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical group O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 2
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 2
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 2
- HDTRYLNUVZCQOY-WSWWMNSNSA-N Trehalose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-WSWWMNSNSA-N 0.000 description 2
- HDTRYLNUVZCQOY-LIZSDCNHSA-N alpha,alpha-trehalose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 HDTRYLNUVZCQOY-LIZSDCNHSA-N 0.000 description 2
- 235000012211 aluminium silicate Nutrition 0.000 description 2
- 239000002518 antifoaming agent Substances 0.000 description 2
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 2
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 2
- 239000004927 clay Substances 0.000 description 2
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 2
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 2
- 206010012601 diabetes mellitus Diseases 0.000 description 2
- YAGKRVSRTSUGEY-UHFFFAOYSA-N ferricyanide Chemical compound [Fe+3].N#[C-].N#[C-].N#[C-].N#[C-].N#[C-].N#[C-] YAGKRVSRTSUGEY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VWWQXMAJTJZDQX-UYBVJOGSSA-N flavin adenine dinucleotide Chemical compound C1=NC2=C(N)N=CN=C2N1[C@@H]([C@H](O)[C@@H]1O)O[C@@H]1CO[P@](O)(=O)O[P@@](O)(=O)OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)CN1C2=NC(=O)NC(=O)C2=NC2=C1C=C(C)C(C)=C2 VWWQXMAJTJZDQX-UYBVJOGSSA-N 0.000 description 2
- 229940093632 flavin-adenine dinucleotide Drugs 0.000 description 2
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 2
- ALBYIUDWACNRRB-UHFFFAOYSA-N hexanamide Chemical compound CCCCCC(N)=O ALBYIUDWACNRRB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229910052741 iridium Inorganic materials 0.000 description 2
- NLYAJNPCOHFWQQ-UHFFFAOYSA-N kaolin Chemical compound O.O.O=[Al]O[Si](=O)O[Si](=O)O[Al]=O NLYAJNPCOHFWQQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000008101 lactose Substances 0.000 description 2
- 238000010147 laser engraving Methods 0.000 description 2
- 239000004816 latex Substances 0.000 description 2
- 229920000126 latex Polymers 0.000 description 2
- 239000000594 mannitol Substances 0.000 description 2
- 235000010355 mannitol Nutrition 0.000 description 2
- 229930027945 nicotinamide-adenine dinucleotide Natural products 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 2
- 229910052697 platinum Inorganic materials 0.000 description 2
- 229920002647 polyamide Polymers 0.000 description 2
- 229920006393 polyether sulfone Polymers 0.000 description 2
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 description 2
- 239000002861 polymer material Substances 0.000 description 2
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 2
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 2
- 229920002451 polyvinyl alcohol Polymers 0.000 description 2
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 description 2
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 description 2
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 description 2
- 239000012255 powdered metal Substances 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 229910052703 rhodium Inorganic materials 0.000 description 2
- 238000007650 screen-printing Methods 0.000 description 2
- 150000004760 silicates Chemical class 0.000 description 2
- 239000000661 sodium alginate Substances 0.000 description 2
- 235000010413 sodium alginate Nutrition 0.000 description 2
- 229940005550 sodium alginate Drugs 0.000 description 2
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 2
- 238000004544 sputter deposition Methods 0.000 description 2
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 2
- 229910001220 stainless steel Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000010935 stainless steel Substances 0.000 description 2
- 239000008107 starch Substances 0.000 description 2
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 2
- 230000003068 static effect Effects 0.000 description 2
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 2
- 239000000454 talc Substances 0.000 description 2
- 229910052623 talc Inorganic materials 0.000 description 2
- XOLBLPGZBRYERU-UHFFFAOYSA-N tin dioxide Chemical compound O=[Sn]=O XOLBLPGZBRYERU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229910001887 tin oxide Inorganic materials 0.000 description 2
- 208000013016 Hypoglycemia Diseases 0.000 description 1
- 239000012298 atmosphere Substances 0.000 description 1
- 239000013060 biological fluid Substances 0.000 description 1
- 239000002800 charge carrier Substances 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 239000013256 coordination polymer Substances 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 201000001421 hyperglycemia Diseases 0.000 description 1
- 238000003475 lamination Methods 0.000 description 1
- 229920006267 polyester film Polymers 0.000 description 1
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 1
- YBCAZPLXEGKKFM-UHFFFAOYSA-K ruthenium(iii) chloride Chemical compound [Cl-].[Cl-].[Cl-].[Ru+3] YBCAZPLXEGKKFM-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 238000009718 spray deposition Methods 0.000 description 1
- 238000009827 uniform distribution Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/001—Enzyme electrodes
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
- G01N27/26—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
- G01N27/28—Electrolytic cell components
- G01N27/30—Electrodes, e.g. test electrodes; Half-cells
- G01N27/327—Biochemical electrodes, e.g. electrical or mechanical details for in vitro measurements
- G01N27/3271—Amperometric enzyme electrodes for analytes in body fluids, e.g. glucose in blood
- G01N27/3272—Test elements therefor, i.e. disposable laminated substrates with electrodes, reagent and channels
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/52—Use of compounds or compositions for colorimetric, spectrophotometric or fluorometric investigation, e.g. use of reagent paper and including single- and multilayer analytical elements
- G01N33/521—Single-layer analytical elements
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Pathology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Electrochemistry (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Investigating Or Analyzing Materials By The Use Of Electric Means (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Investigating Or Analyzing Non-Biological Materials By The Use Of Chemical Means (AREA)
- Measurement Of The Respiration, Hearing Ability, Form, And Blood Characteristics Of Living Organisms (AREA)
Abstract
Una tira reactiva (90) para analito que comprende: un sustrato (5) que tiene una superficie generalmente plana que se extiende desde un primer extremo (3) hasta un segundo extremo (4); un material electricamente conductivo dispuesto sobre la superficie generalmente plana para definir una pluralidad de electrodos (10, 12, 14) separados entre si; caracterizada por: una primera porcion de bloque (52) electricamente aislada de material conductivo, dispuesta entre al menos dos de la pluralidad de electrodos (10, 12) de manera que la primera porcion de bloque (52) electricamente aislada no esta en comunicacion electrica con la pluralidad de electrodos (10, 12, 14); y una capa reactiva (22) que cubre al menos parcialmente la pluralidad de electrodos (10, 12, 14) y la primera porcion de bloque (52) electricamente aislada.
Description
Los procedimientos y dispositivos electroquímicos para determinar concentraciones analíticas en muestras de fluidos encuentran una amplia aplicación en el tratamiento y la gestión de enfermedades médicas tales como la diabetes. Los individuos que sufren de diabetes monitorizan sus concentraciones de glucosa en la sangre usando tales procedimientos a menudo varias veces al día.
Los procedimientos electroquímicos generalmente dependen de la correlación entre una corriente, una carga potencial o acumulada y la concentración de analito, típicamente en conjunto con un reactivo que produce portadores de carga cuando es combinado con el analito. Los sensores biológicos electroquímicos para llevar a cabo las pruebas son típicamente tiras reactivas desechables con un reactivo dispuesto sobre las mismas que reacciona con un fluido biológico tal como la sangre. La tira reactiva está acoplada a un medidor reactivo de manera que el medidor reactivo pueda medir la reacción entre el analito y el reactivo para determinar la concentración del analito. En las tiras reactivas basadas en la electroquímica, la señal eléctrica es transferida al medidor a través de unas almohadillas de contacto eléctrico situadas sobre las tiras reactivas y de unos contactos dentro del conector.
Una técnica conocida para fabricar una tira reactiva implica usar una película polimérica metalizada y formar un patrón de electrodo conductivo sobre la película. El patrón de electrodo puede estar formado por un proceso de ataque adecuado, incluyendo la ablación por laser o el ataque químico, para eliminar material conductivo de la película dejando en el lugar un patrón de electrodo conductivo entrelazado con material de sustrato expuesto. Por lo tanto, el patrón de electrodo está definido por un espacio material expuesto de película o de sustrato entre el material conductivo.
Los solicitantes han descubierto que en ciertos prototipos de tira fabricados mediante los procesos de ablación por laser, la deposición del reactivo sobre el patrón de electrodo no resulta uniforme. Los solicitantes también han descubierto que en tales prototipos de tira reactiva, la capacidad de una muestra de analito para llenar consistentemente la zona del reactivo y de detección del electrodo mediante el efecto capilar era baja. Los solicitantes creen que estos problemas generan un bajo rendimiento de la tira reactiva.
El documento EP 1 783 486 A1 da a conocer una tira reactiva adecuada para su uso en un medidor reactivo. La tira reactiva incluye una capa conductiva que comprende porciones eléctricamente aisladas que están imprimidas convencionalmente sobre un sustrato. La capa conductiva incluye un primer contacto, un segundo contacto, un contacto de referencia, y una barra de detección de la tira. La capa conductiva también incluye un primer electrodo funcional, un segundo electrodo funcional y un electrodo de referencia que están eléctricamente conectados, respectivamente, al primer contacto, segundo contacto y contacto de referencia.
El documento WO 99/30152 A1 da a conocer una tira reactiva con sensor biológico con unas pistas eléctricamente conductivas que forman un electrodo funcional, un electrodo contador, y un electrodo de referencia.
Los solicitantes han resuelto estos problemas mediante la implementación de diversas características técnicas para proporcionar diversas realizaciones de la presente invención hasta ahora no disponibles en la técnica. En particular, la presente invención proporciona una tira reactiva para analito y un procedimiento para fabricar una tira reactiva para analito según lo recitado en las reivindicaciones.
Estas y otras realizaciones, características y ventajas serán aparentes para los expertos en la técnica al ser tomadas con referencia a la siguiente descripción más detallada de la invención en conjunto con los dibujos adjuntos, los cuales son primero descritos brevemente a continuación.
Los dibujos adjuntos, que están incorporados al presente documento y constituyen parte de la presente memoria, ilustran las realizaciones actualmente preferidas de la invención, y, junto con la descripción general ofrecida anteriormente y la descripción detallada ofrecida a continuación, sirven para explicar las características de la invención (en donde los mismos números representan los mismos elementos), de los cuales:
La FIG. 1A ilustra una realización ejemplar de la tira reactiva;
La FIG. 1B ilustra una vista en primer plano, de arriba abajo, de un extremo de la tira reactiva de la FIG. 1A;
La FIG. 1C es una vista en perspectiva despiezada de una tira reactiva de acuerdo con una realización ejemplar; La FIG. 1D es una vista superior de la tira reactiva ilustrada en la FIG. 1C una vez que ha sido montada;
La FIG. 1E es una vista superior de la capa conductiva de la tira reactiva ilustrada en las FIGS. 1A y 1B de acuerdo con una realización ejemplar;
La FIG. 2A es una vista en perspectiva despiezada de una tira reactiva de acuerdo con otra realización ejemplar;
La FIG. 2B es una vista superior de la tira reactiva ilustrada en la FIG. 2A una vez que ha sido montada;
La FIG. 3A es una fotomicrografía en color de un prototipo generalmente de acuerdo con el diseño de la FIG. 1A, que ilustra la distribución favorable del reactivo sobre los electrodos de la tira reactiva;
La FIG. 3B es una fotomicrografía en color de otro prototipo que ilustra una distribución del reactivo muy poco favorable en la que el espacio que expone el sustrato es mayor que el aquí descrito; y
La FIG. 4 es una vista superior de un medidor ejemplar que puede usarse con la tira reactiva mostrada en las FIGS. 1A-1E y en las FIGS. 2A-2B.
Las FIGS. 1A y 1B ilustran una realización ejemplar en la que una tira 90 reactiva está provista de un primer extremo 3 y un segundo extremo 4. El primer extremo 3, o extremo distal, incluye una porción de detección biológica mostrada en la FIG. 1B. El segundo extremo 4, o extremo proximal, incluye una porción de contacto eléctrico.
En la FIG. 1B la porción de detección biológica está provista de tres electrodos 10, 12, y 14, respectivamente. Los electrodos pueden ser generalmente del mismo material conductivo. Entre los electrodos 10 y 12 hay provisto un primer bloque 52 eléctricamente aislado. Similarmente, hay provisto un segundo bloque 54 eléctricamente aislado entre los electrodos 12 y 14. De manera similar, hay provisto un tercer bloque 56 eléctricamente aislado distalmente al tercer electrodo 14 y más cercano a la porción proximal 4. Cada uno de los bloques conductivos 52, 54, y 56 puede estar fabricado generalmente con el mismo material eléctricamente conductivo que uno o más de los electrodos. Adicionalmente, cada uno de los “bloques” pretende estar eléctricamente aislado de los electrodos 10, 12, y 14 de la tira 90 reactiva.
Tal como se muestra en la FIG. 1C, la tira 90 reactiva puede estar fabricada mediante capas de una pluralidad de componentes discretos sobre un sustrato. Específicamente, estas capas pueden incluir una capa conductiva 50, una capa reactiva 22, una capa separadora 60 y una capa superior o cubierta 80 con un recubrimiento adhesivo hidrófilo. La tira 90 reactiva puede ser fabricada mediante una serie de etapas en las que la capa conductiva 50 y la capa reactiva 22 son depositadas secuencialmente sobre el sustrato 5 usando, por ejemplo, un proceso de serigrafía como el descrito en la Publicación Preliminar Estadounidense Nº US20050096409A1 y las Solicitudes Internacionales publicadas Nº WO2004040948A1, WO2004040290A1, WO2004040287A1, WO2004040285A2, WO2004040005A1, WO2004039897A2, y WO2004039600A2. En una realización alternativa, puede usarse un proceso de chorro de tinta para depositar la capa reactiva 22 sobre el sustrato 5. En la Patente Estadounidense Nº
6.179.979 se describe un ejemplo de proceso por chorro de tinta. Aún otro proceso alternativo para depositar el reactivo 22 sobre la capa conductiva 50 incluye un proceso de goteo por demanda. La capa separadora 60 y la capa superior 80 pueden ser tomadas de un rollo y laminadas sobre el sustrato 5. En una realización alternativa, se usa un proceso de pulverización catódica para aplicar una capa conductiva 50 y se crean patrones sobre la capa conductiva 50 mediante la ablación por laser, el grabado por laser o la trazado por medios mecánicos de manera que se elimine menos de un 10% o, más típicamente, menos de un 6% de la capa conductiva 50 de la superficie. La tira 90 reactiva incluye un extremo distal 3 y un extremo proximal 4 tal como se muestra en las FIGS. 1C y 1D.
La tira 90 reactiva completamente montada, tal como se muestra en la FIG. 1D, incluye una entrada 82 por la que puede introducirse una muestra de sangre en una cámara 84 de recepción de muestras. La entrada 82 puede formarse cortando a través de una porción distal 3 de la tira 90 reactiva. Puede aplicarse una muestra de sangre en la entrada 82 para llenar la cámara 84 de recepción de muestras de manera que pueda medirse la glucosa. Cada uno de los bordes laterales de un orificio en forma de U de la capa separadora 60 situada adyacente a la capa reactiva 22 define una pared de la cámara 84 de recepción de muestras. Una porción inferior o “suelo” de la cámara 84 de recepción de muestras incluye una porción de sustrato 5 y de capa conductiva 50. Una porción superior o “techo” de la cámara 84 de recepción de muestras incluye una capa superior distal 80.
En la tira 90 reactiva, tal como se muestra en las FIGS. 1A, 1B, 1C y 1D, la capa conductiva 50 incluye un electrodo 10 de referencia, un primer electrodo funcional 12, un segundo electrodo funcional 14, una almohadilla 11 de contacto de referencia, una primera almohadilla 13 de contacto, una segunda almohadilla 15 de contacto y una almohadilla 17 de contacto de detección de la tira. La almohadilla 11 de contacto de referencia, la primera almohadilla 13 de contacto, la segunda almohadilla 15 de contacto y la almohadilla 17 de contacto de detección de la tira proporcionan conexión eléctrica a un medidor reactivo para permitir la recogida de datos y medidas.
La capa conductiva 50 también incluye una primera porción aislada 52, una segunda porción aislada 54 y una tercera porción aislada 56 opcional. La primera porción aislada 52 y la segunda porción aislada 54 facilitan un recubrimiento reactivo uniforme al minimizar el área de superficie expuesta del sustrato 5 que es hidrófila. La tercera porción aislada 54 puede tener cualquier forma (p. ej., triangular) y facilita el llenado de la tira 90 reactiva al proporcionar una fuerza capilar para atraer fluido dentro de la cámara 84 de recepción de muestras. La distancia entre el electrodo 10 de referencia y la primera porción aislada 52 está entre 2 micrómetros aproximadamente y 50 micrómetros aproximadamente, típicamente 20 micrómetros aproximadamente. En la Figura 1B, los espacios A1 y A2 están formados entre los bordes periféricos del electrodo 14 y los bordes periféricos de la porción aislada 56; los espacios A3 y A4 están formados entre los bordes de la porción aislada 54 y los bordes de los electrodos respectivos 12 y 14; los espacios “A5” y “A6” están formados entre los bordes periféricos de la porción aislada 5, y los bordes periféricos del electrodo 12, y miden entre 2 micrómetros aproximadamente y 50 micrómetros aproximadamente, típicamente 20 micrómetros aproximadamente. Cada uno de los espacios A1, A2, A3, A4, A5, A6 y en adelante mide entre 2 micrómetros aproximadamente y 50 micrómetros aproximadamente, típicamente 20 micrómetros aproximadamente. Aunque los espacios tienen preferiblemente la misma magnitud en la distancia de los espacios, otras realizaciones pueden utilizar una distancia de rebaje desigual siempre y cuando cualquiera de los espacios mida entre 2 micrómetros aproximadamente y 50 micrómetros aproximadamente.
La anchura de la primera porción aislada 52 y de la segunda porción aislada 54 es típicamente de entre 120 micrómetros aproximadamente y 200 micrómetros aproximadamente. Cuando se elimina una línea de material conductivo de aproximadamente 20 micrómetros de ancho mediante la ablación por láser para crear los patrones del electrodo y de la porción aislada sobre la capa conductiva 50, se elimina menos del 10% de la superficie de la capa conductiva 50 situada sobre el sustrato 5. Eliminar la menor cantidad posible de material conductivo como sea posible reduce la diferencia de energía superficial entre el sustrato 5 y la capa conductiva 50 sin cortocircuitar en los electrodos de la tira reactiva. La ventaja es que esto resulta en una mejor adherencia del reactivo 22 a la capa conductiva 50 de manera que el patrón de recubrimiento del reactivo y la durabilidad del reactivo seco 22 pueden ser controlados.
La capa conductiva 50 incluye adicionalmente una barra antiestática 58 en un extremo distal 3 de la tira 90 reactiva. La barra antiestática 58 ayuda a disipar la carga estática dentro de la capa conductiva 50 cuando la tira 90 reactiva está en contacto con el paciente durante el llenado de la tira 90 reactiva con sangre. La barra antiestática 58 también facilita el recubrimiento reactivo uniforme al minimizar el área de superficie expuesta del sustrato 5 que es hidrófila y facilita el llenado de la tira 90 reactiva al proporcionar una fuerza capilar para atraer un fluido dentro de la cámara 84 de recepción de muestras.
Con referencia nuevamente a la FIG. 1C, el electrodo 10 de referencia, el primer electrodo funcional 12 y el segundo electrodo funcional 14 están conectados a la almohadilla 11 de contacto de referencia, la primera almohadilla 13 de contacto, y la segunda almohadilla 15 de contacto, respectivamente, a través de unas extensiones del electrodo denominadas “trazas”. La traza 8 del primer electrodo funcional proporciona una ruta eléctricamente continua desde el primer electrodo funcional 12 hasta la primera almohadilla 13 de contacto. De manera similar, una traza 9 del segundo electrodo funcional proporciona una ruta eléctricamente continua desde el segundo electrodo funcional 14 hasta la segunda almohadilla 15 de contacto y la traza 7 del electrodo de referencia proporciona una ruta eléctricamente continua desde el electrodo 10 de referencia hasta la primera almohadilla 11 de contacto de referencia.
Puede utilizarse cualquier material eléctricamente conductivo para las capas conductivas, tal como, por ejemplo, Au, Pd, Ir, Pt, Rh, acero inoxidable, óxido de estaño dopado, carbono, y similares. En una realización, el material para la capa conductiva puede ser tinta de carbono como las descritas en la patente Estadounidense 5.653.918. En otra realización, el material para la capa conductiva puede ser un metal pulverizado tal como oro o paladio con un grosor de entre 15 nanómetros aproximadamente y 35 nanómetros aproximadamente. En las realizaciones que usan oro como capa conductiva, la capa conductiva pulverizada está típicamente recubierta con un material hidrófilo para facilitar el recubrimiento reactivo, tal como se muestra y se describe en la Patente Estadounidense Nº
6.716.577. Un material hidrófilo ejemplar incluye ácido 2-mercaptoetanolsulfónico, sal sódica, a una concentración de 0,05% aproximadamente a 0,2% aproximadamente. También puede añadirse a la solución de recubrimiento de oro un surfactante que contenga un material hidrófilo para facilitar un recubrimiento regular. Algunos surfactantes ejemplares incluyen Pluronic F87 a una concentración de 0,01% aproximadamente a 0,05% aproximadamente y Pluronic P103 a una concentración de 0,01% aproximadamente a 0,05% aproximadamente.
La capa reactiva 22 puede ser dispuesta sobre una porción de la capa conductiva 50 situada sobre la superficie del sustrato 5 tal como se muestra en la FIG. 1C. En una realización de la presente invención, la capa reactiva 22 puede incluir sustancias químicas tales como una enzima, que reacciona selectivamente con la glucosa, un mediador y un tampón para mantener un pH deseado. Algunos ejemplos de enzimas adecuadas para su uso con esta invención pueden incluir tanto la glucosa oxidasa como la glucosa deshidrogenasa. Más específicamente, la glucosa deshidrogenasa puede tener un co-factor de pirroloquinolina quinona (abreviada como PQQ y que puede ser denominada con su nombre común de metoxatina). Otros co-factores de glucosa deshidrogenasa pueden ser la nicotinamida adenina dinucleótido (abreviada como NAD) o flavina adenina dinucleótido (abreviada como FAD). Algunos ejemplos de mediador adecuado para su uso en la presente invención incluyen tanto el ferricianuro como el tricloruro hexamin de rutenio ([RuIII(NH3)6]CI que también puede denominarse simplemente hexamin de rutenio. Algunos ejemplos de tampones adecuados para su uso en diversas realizaciones pueden incluir fosfato o atraconato. Algunos ejemplos de formulaciones reactivas o de tintas adecuadas para su uso en las diversas realizaciones pueden encontrarse en las patentes Estadounidenses 5.708.247 y 6.046.051; y en las solicitudes internacionales publicadas WO01/67099 y WO01/73124.
En una realización, la formulación puede incluir un tampón de fosfato de 200 mM con un pH de 7 aproximadamente y un mediador de hexamin de rutenio con una concentración igual o superior al 5% aproximadamente, preferiblemente igual o superior al 10% aproximadamente, y aún más preferiblemente del 15% aproximadamente al 20% aproximadamente (porcentaje basado en peso de mediador / volumen de regulador). Se eligió un pH de alrededor de 7 porque la glucosa oxidasa tiene una actividad lo suficientemente elevada con este pH cuando se usa rutenio como mediador. El rango superior para la hexamin de rutenio se basa en su solubilidad. Cuando la tinta enzimática es formulada con una concentración de hexamin de rutenio mayor del 20%, en la capa reactiva 22 hay presentes partículas sólidas de hexamin de rutenio que no se disuelven durante la prueba. La presencia de hexamin de rutenio no disuelto genera un descenso en la precisión entre tira reactiva y tira reactiva. Cuando la tinta enzimática está formulada con una concentración de hexamin de rutenio inferior al 15%, la magnitud de los valores de la corriente de prueba disminuye con la concentración de hexamin de rutenio. En general, no resulta deseable que la magnitud de los valores de la corriente reactiva sea dependiente de la concentración de hexamin de rutenio debido a que los pequeños cambios en la concentración de hexamin de rutenio generarán una variabilidad en los valores de la corriente reactiva y, a su vez, aumentarán la variabilidad entre lotes.
En una realización, la formulación puede tener una actividad enzimática comprendida entre 1500 unidades/mL aproximadamente y 50000 unidades/mL aproximadamente, típicamente 18000 unidades/mL. El rango de la actividad enzimática puede ser seleccionado de manera que la corriente de glucosa no dependa del nivel de actividad enzimática en la formulación siempre y cuando el nivel de actividad enzimática esté dentro del rango mencionado anteriormente. La actividad enzimática debería ser lo suficientemente elevada como para asegurar que la corriente de glucosa resultante no será dependiente de las pequeñas variaciones en la actividad enzimática. Por ejemplo, la corriente de glucosa dependerá de la cantidad de actividad enzimática en la formulación si la actividad enzimática es menor de 1500 unidades/mL. Por otro lado, para niveles de actividad enzimática mayores de 50000 unidades/mL, pueden aparecer problemas de solubilidad cuando la glucosa oxidasa no pueda ser suficientemente disuelta en la formulación. Adicionalmente, demasiada enzima en la formulación resultará en un coste elevado de la tira. La glucosa oxidasa está disponible comercialmente en Biozyme Laboratories International Limited (San Diego, California, U.S.A.). La glucosa oxidasa puede tener una actividad enzimática de 250 unidades/mg aproximadamente cuando las unidades de la actividad enzimática están basadas en una muestra de ensayo de o-dianisidina con pH 7 y a 25º C.
Opcionalmente, la capa reactiva 22 incluye un material de matriz que ayuda a retener la capa reactiva 22 sobre la superficie de la capa conductiva 50 en presencia de una muestra de fluido y que tiene dominio tanto hidrófobo como hidrófilo. Algunos materiales de matriz útiles incluyen arcilla hidrófila, caolín, talco, silicatos, tierra o sílices de diatomeas tales como Cab-o-Sil® TS-610 o Cab-o-Sil® TS-530 (Cabot Corporation, Boston, USA). Sin pretender ceñirse a ninguna teoría en particular, se cree que, en presencia de la muestra, el sílice forma una red de gel que mantiene de manera efectiva el recubrimiento sobre la superficie del electrodo. Otros materiales de matriz útiles incluyen materiales poliméricos tales como alginato de sodio, glicol de polietileno, óxido de polietileno, alcohol de polivinilo, acetato de polivinilo, materiales de polímeros de látex, polietersulfonas, polímeros de ácido acrílico y metacrílico; polímeros derivados del almidón, celulosa y otros polisacáridos naturales, poliamidas o colágeno. En el Ejemplo 1 de la Patente Estadounidense Número 5.708.247 se da a conocer un ejemplo de una composición útil para recubrimiento. La capa reactiva 22 también puede incluir opcionalmente al menos un agente estabilizante tal como albúmina, sucrosa, trehalosa, manitol o lactosa, un agente tal como la hidroxietilcelulosa para ajustar la viscosidad, un agente antiespumante tal como el DC 1500, y al menos un agente humidificante tal como polivinilpirrolidona o acetato de polivinilo.
En realizaciones ejemplares, se aplica la capa reactiva 22 como una capa uniforme sobre la superficie expuesta de los electrodos. El grosor de la capa reactiva 22 previamente al contacto con la muestra de fluido no debería exceder los 50 micrómetros y normalmente no excede los 20 micrómetros. Para proporcionar un recubrimiento efectivo de la superficie del electrodo, el grosor de la capa no debería ser menor de 5 micrómetros aproximadamente y normalmente no es menor de 7 micrómetros aproximadamente.
Con referencia a la FIG. 1C, la capa separadora 60 está típicamente formada por un poliéster y está adherida a la capa conductiva 50 mediante un adhesivo de sellado térmico o un adhesivo piezosensible.
La capa superior 80 está situada sobre el extremo distal 3 de la tira 90 reactiva de manera que una porción distal (es decir una porción situada corriente abajo del segundo electrodo funcional 14) de la cámara 84 de recepción de muestras está expuesta a la atmósfera, creando una ventilación en la tira 90 reactiva. En una realización, la capa superior 80 es un material de poliéster que está adherido a la capa separadora 60 con un adhesivo hidrófilo tal como, por ejemplo, el ARflow 90128 de Adhesives Research Inc. La capa superior 80 está formada con poliéster transparente para permitir a un/a usuario/a confirmar que la cámara 84 de recepción de muestras está suficientemente llena.
Con referencia ahora a la FIG. 2A, se ilustra otra realización ejemplar de una tira 100 reactiva en una vista en perspectiva despiezada. La tira 100 reactiva incluye múltiples capas dispuestas sobre un sustrato 105. Estas capas pueden incluir una capa conductiva 150, una capa reactiva 122, una capa separadora 160 y una capa superior 180 con un recubrimiento adhesivo hidrófilo. La tira 100 reactiva puede ser fabricada mediante una serie de etapas en las que la capa conductiva 150 y la capa reactiva 122 son depositadas secuencialmente sobre el sustrato 105 usando, por ejemplo, un proceso de serigrafía como el descrito en la Publicación Estadounidense Preliminar Nº US20050096409A1 y las Solicitudes Internacionales publicadas Nº WO2004040948A1, WO2004040290A1, WO2004040287A1, WO2004040285A2, WO2004040005A1, WO2004039897A2, y WO2004039600A2. En una realización alternativa, puede usarse un proceso de chorro de tinta para depositar la capa reactiva 122 sobre el sustrato 105. En la Patente Estadounidense Nº 6.179.979 se describe un ejemplo de proceso por chorro de tinta. Aún otro proceso alternativo para depositar el reactivo 122 sobre la capa conductiva 150 incluye un proceso de goteo por demanda. La capa separadora 160 y la capa superior 180 pueden ser tomadas de un rollo y laminadas sobre el sustrato 105. En una realización alternativa, se usa un proceso de pulverización catódica para aplicar la capa conductiva 150 y se crean patrones sobre la capa conductiva 150 mediante la ablación por laser, el grabado por laser o la trazado por medios mecánicos de manera que se elimine menos de un 10% o, más típicamente, menos de un 6% de la capa conductiva 150. La tira 100 reactiva incluye un extremo distal 103 y un extremo proximal 104 tal como se muestra en las FIGS. 1A y 1B.
La tira 100 reactiva completamente montada, tal como se muestra en la FIG. 2B, incluye una entrada 182 por la que puede introducirse una muestra de sangre en una cámara 184 de recepción de muestras. La entrada 182 puede formarse cortando a través de una porción distal 103 de la tira 100 reactiva. Puede aplicarse una muestra de sangre en la entrada 182 para llenar la cámara 184 de recepción de muestras de manera que pueda medirse la glucosa. Cada uno de los bordes laterales de un orificio en forma de U de la capa separadora 160 situada adyacente a la capa reactiva 122 define una pared de la cámara 184 de recepción de muestras. Una porción inferior o “suelo” de la cámara 184 de recepción de muestras incluye una porción de sustrato 105 y de capa conductiva 150. Una porción superior o “techo” de la cámara 184 de recepción de muestras incluye una capa superior distal 180.
La tira 90 ó 100 reactiva se fabrica proporcionando un sustrato 5 sobre el que se deposita una capa generalmente uniforme de material conductivo, preferiblemente mediante deposición por pulverización, por toda la/s superficie/s del sustrato. Luego, se utilizó la ablación por laser para formar el patrón conductivo 150. En una técnica se controló el movimiento de un rayo laser para formar en la capa conductiva los patrones de electrodo que incluyen los espacios “A1”; “A2”; “A3”; “A4”; “A5”; “A6” y en delante de manera que estos espacios midan preferiblemente 50 micrómetros o menos y más preferiblemente 20 micrómetros aproximadamente. En otra realización, se interpuso una máscara con orificios, para definir el patrón de electrodo, entre el laser de ablación y el sustrato y la capa conductiva para erosionar la capa conductiva con una potencia y una densidad suficientes durante un tiempo adecuado tal como, por ejemplo, menos de 100 nanosegundos. Pueden utilizarse diversas técnicas para la ablación por láser tales como, por ejemplo, las descritas en “Técnicas de Fabricación y Sus Aplicaciones para Producir Dispositivos y Estructuras Micromaquinizados Novedosos Usando la Proyección por Láser Excimer”, por Erol C. Harvey y otros, Exitech Ltd., Hanborough Park, Long Hanborough, Oxford, G.B., SPIE Vol. 3223, 1997. Independientemente de la técnica utilizada, la capa conductiva 150 incluye un electrodo 110 de referencia, un primer electrodo funcional 112, un segundo electrodo funcional 114, una almohadilla 111 de contacto de referencia, una primera almohadilla 113 de contacto, una segunda almohadilla 115 de contacto y una almohadilla 117 de contacto de detección de la tira, que pueden estar formados en la capa conductiva o de oro, tal como se muestra en la FIG. 2A y 2B. La almohadilla 111 de contacto de referencia, la primera almohadilla 113 de contacto, la segunda almohadilla 115 de contacto y la almohadilla 117 de contacto de detección de la tira proporcionan una conexión eléctrica con un medidor reactivo para permitir la recogida de datos y medidas.
La capa conductiva 150 también incluye una primera porción aislada 152, una segunda porción aislada 154 y una tercera porción aislada 156 opcional. La primera porción aislada 152 y la segunda porción aislada 154 facilitan un recubrimiento reactivo uniforme al minimizar el área de superficie expuesta del sustrato 5 que es hidrófoba. La tercera porción aislada 156 puede tener cualquier forma (p. ej., triangular) y facilita el llenado de la tira 100 reactiva al proporcionar una fuerza capilar para introducir un fluido dentro de la cámara 184 de recepción de muestras. La tercera porción aislada 156 también incluye un orificio que atraviesa la capa conductiva 150 y el sustrato 105. El orificio 159 actúa como una ventilación para la tira 100 reactiva. El orificio 159 puede ser formado por perforación, ya sea mediante láser o mecánicamente. El orificio 159 puede ser formado tras la laminación de todos los componentes de la tira reactiva reduciendo de esta manera el coste y los fallos del montaje. El orificio 159 es preferiblemente un orificio circular de entre 40 micrómetros aproximadamente y 400 micrómetros aproximadamente.
La distancia entre el electrodo 110 de referencia y la primera porción aislada 152 es de entre 2 micrómetros aproximadamente a 50 micrómetros aproximadamente, típicamente 20 micrómetros aproximadamente. La distancia entre la porción aislada 152 y el primer electrodo funcional 112 es de 2 micrómetros aproximadamente a 50 micrómetros aproximadamente, típicamente 20 micrómetros aproximadamente. De la misma manera, la distancia entre el primer electrodo funcional 112 y la segunda porción aislada 154 y la distancia entre la segunda porción aislada 154 y el segundo electrodo funcional 114 es de 2 micrómetros aproximadamente a 50 micrómetros aproximadamente, típicamente 20 micrómetros aproximadamente. Además, la distancia entre el segundo electrodo funcional 114 y la tercera porción aislada 156 es de 2 micrómetros aproximadamente a 50 micrómetros aproximadamente, típicamente 20 micrómetros aproximadamente. La anchura de la primera porción aislada 152 y de la segunda porción aislada 154 es típicamente de 120 micrómetros aproximadamente a 200 micrómetros aproximadamente. Cuando se elimina una línea de material conductivo de aproximadamente 20 micrómetros de ancho mediante la ablación por láser para crear los patrones del electrodo y de la porción aislada sobre la capa conductiva 150, se elimina menos del 10% de la superficie de la capa conductiva 150 situada sobre el sustrato 105. Eliminar la menor cantidad posible de material conductivo como sea posible reduce la diferencia de energía superficial entre el sustrato 105 y la capa conductiva 150 sin cortocircuitar en los electrodos de la tira reactiva. La ventaja es que esto resulta en una mejor adherencia del reactivo seco a la capa conductiva 150 de manera que el patrón de recubrimiento del reactivo y la durabilidad de la almohadilla de reactivo seco pueden ser controlados.
La capa conductiva 50 ó 150 incluye adicionalmente una barra antiestática 158 en el extremo distal 103 de la tira 100 reactiva. La barra antiestática 158 ayuda a disipar la carga estática dentro de la capa conductiva 150 cuando la tira 100 reactiva está en contacto con el paciente durante el llenado de la tira 100 reactiva con sangre. La barra antiestática 158 también facilita el recubrimiento reactivo uniforme al minimizar el área de superficie del sustrato 105 expuesto que es hidrófila y facilita el llenado de la tira 100 reactiva al proporcionar una fuerza capilar para atraer un fluido dentro de la cámara 184 de recepción de muestras.
Con referencia nuevamente a la FIG. 2A, el electrodo 110 de referencia, el primer electrodo funcional 112 y el segundo electrodo funcional 114 están conectados a la almohadilla 111 de contacto de referencia, la primera almohadilla 113 de contacto, y la segunda almohadilla 115 de contacto, respectivamente, a través de unas extensiones del electrodo denominadas “trazas”. La traza 108 del primer electrodo funcional proporciona una ruta eléctricamente continua desde el primer electrodo funcional 112 hasta la primera almohadilla 113 de contacto. De manera similar, una traza 109 del segundo electrodo funcional proporciona una ruta eléctricamente continua desde el segundo electrodo funcional 114 hasta la segunda almohadilla 115 de contacto y la traza 107 del electrodo de referencia proporciona una ruta eléctricamente continua desde el electrodo 110 de referencia hasta la primera almohadilla 111 de contacto de referencia.
Algunos materiales adecuados que pueden usarse para la capa conductiva son Au, Pd, Ir, Pt, Rh, acero inoxidable, óxido de estaño dopado, carbono, y similares. En una realización, el material para la capa conductiva puede ser tinta de carbono como las descritas en la patente Estadounidense 5.653.918. En otra realización, el material para la capa conductiva puede ser un metal pulverizado tal como oro o paladio con un grosor de entre 15 nanómetros aproximadamente y 35 nanómetros aproximadamente. En las realizaciones que usan oro como capa conductiva, la capa conductiva pulverizada está típicamente recubierta con un material hidrófilo para facilitar el recubrimiento reactivo. Un material hidrófilo ejemplar incluye ácido 2-mercaptoetanolsulfónico, sal sódica, a una concentración de 0,05% aproximadamente a 0,2% aproximadamente. También puede añadirse a la solución de recubrimiento de oro un surfactante que contenga un material hidrófilo para facilitar un recubrimiento regular. Algunos surfactantes ejemplares incluyen Pluronic F87 a una concentración de 0,01% aproximadamente a 0,05% aproximadamente y Pluronic P103 a una concentración de 0,01% aproximadamente a 0,05% aproximadamente.
La capa reactiva 122 puede ser dispuesta sobre una porción de la capa conductiva 150 situada sobre la superficie del sustrato 105 tal como se muestra en la FIG. 2A. En una realización de la presente invención, la capa reactiva 122 puede incluir sustancias químicas tales como una enzima, que reacciona selectivamente con la glucosa, un mediador y un tampón para mantener un pH deseado. Algunos ejemplos de enzimas adecuadas para su uso con esta invención pueden incluir tanto la glucosa oxidasa como la glucosa deshidrogenasa. Más específicamente, la glucosa deshidrogenasa puede tener un co-factor de pirroloquinolina quinona (abreviada como PQQ y que puede ser denominada con su nombre común de metoxatina). Otros co-factores de glucosa deshidrogenasa pueden ser la nicotinamida adenina dinucleótido (abreviada como NAD) o flavina adenina dinucleótido (abreviada como FAD). Algunos ejemplos de mediador adecuado para su uso en la presente invención incluyen tanto el ferricianuro como el tricloruro hexamin de rutenio ([RuIII(NH3)6]CI que también puede denominarse simplemente hexamin de rutenio. Algunos ejemplos de tampones adecuados para su uso en diversas realizaciones pueden incluir fosfato o atraconato. Algunos ejemplos de formulaciones reactivas o de tintas adecuadas para su uso en las diversas realizaciones pueden encontrarse en las patentes Estadounidenses 5.708.247 y 6.046.051; y en las solicitudes internacionales publicadas WO01/67099 y WO01/73124.
En una realización, la formulación puede incluir un tampón de fosfato de 200 mM con un pH de 7 aproximadamente y un mediador de hexamin de rutenio con una concentración igual o superior al 5% aproximadamente, preferiblemente igual o superior al 10% aproximadamente, y aún más preferiblemente del 15% aproximadamente al 20% aproximadamente (porcentaje basado en peso de mediador / volumen de regulador). Se eligió un pH de alrededor de 7 porque la glucosa oxidasa tiene una actividad lo suficientemente elevada con este pH cuando se usa rutenio como mediador. El rango superior para la hexamin de rutenio se basa en su solubilidad. Cuando la tinta enzimática es formulada con una concentración de hexamin de rutenio mayor del 20%, en la capa reactiva 22 hay presentes partículas sólidas de hexamin de rutenio que no se disuelven durante la prueba. La presencia de hexamin de rutenio no disuelto genera un descenso en la precisión entre tira reactiva y tira reactiva. Cuando la tinta enzimática está formulada con una concentración de hexamin de rutenio inferior al 15%, la magnitud de los valores de la corriente de prueba disminuye con la concentración de hexamin de rutenio. En general, no resulta deseable que la magnitud de los valores de la corriente reactiva sea dependiente de la concentración de hexamin de rutenio debido a que los pequeños cambios en la concentración de hexamin de rutenio generarán una variabilidad en los valores de la corriente reactiva y, a su vez, aumentarán la variabilidad entre lotes.
En una realización, la formulación puede tener una actividad enzimática comprendida entre 1500 unidades/mL aproximadamente y 50000 unidades/mL aproximadamente, típicamente 18000 unidades/mL. El rango de la actividad enzimática puede ser seleccionado de manera que la corriente de glucosa no dependa del nivel de actividad enzimática en la formulación siempre y cuando el nivel de actividad enzimática esté dentro del rango mencionado anteriormente. La actividad enzimática debería ser lo suficientemente elevada como para asegurar que la corriente de glucosa resultante no será dependiente de las pequeñas variaciones en la actividad enzimática. Por ejemplo, la corriente de glucosa dependerá de la cantidad de actividad enzimática en la formulación si la actividad enzimática es menor de 1500 unidades/mL. Por otro lado, para niveles de actividad enzimática mayores de 50000 unidades/mL, pueden aparecer problemas de solubilidad cuando la glucosa oxidasa no pueda ser suficientemente disuelta en la formulación. Adicionalmente, demasiada enzima en la formulación resultará en un coste elevado de la tira. La glucosa oxidasa está disponible comercialmente en Biozyme Laboratories International Limited (San Diego, California, U.S.A.). La glucosa oxidasa puede tener una actividad enzimática de 250 unidades/mg aproximadamente cuando las unidades de la actividad enzimática están basadas en una muestra de ensayo de o-dianisidina con pH 7 y a 25º C.
Opcionalmente, la capa reactiva 122 incluye un material de matriz que ayuda a retener la capa reactiva 122 sobre la superficie de la capa conductiva 150 en presencia de una muestra de fluido y que tiene dominio tanto hidrófobo como hidrófilo. Algunos materiales de matriz útiles incluyen arcilla hidrófila, caolín, talco, silicatos, tierra o sílices de diatomeas tales como Cab-o-Sil® TS-610 o Cab-o-Sil® TS-530 (Cabot Corporation, Boston, USA). Sin pretender ceñirse a ninguna teoría en particular, se cree que, en presencia de la muestra, el sílice forma una red de gel que mantiene de manera efectiva el recubrimiento sobre la superficie del electrodo. Otros materiales de matriz útiles incluyen materiales poliméricos tales como alginato de sodio, glicol de polietileno, óxido de polietileno, alcohol de polivinilo, acetato de polivinilo, materiales de polímeros de látex, polietersulfonas, polímeros de ácido acrílico y metacrílico; polímeros derivados del almidón, celulosa y otros polisacáridos naturales, poliamidas o colágeno. En el Ejemplo 1 de la Patente Estadounidense Número 5.708.247 se da a conocer un ejemplo de una composición útil para recubrimiento. La capa reactiva 22 también puede incluir opcionalmente al menos un agente estabilizante tal como albúmina, sucrosa, trehalosa, manitol o lactosa, un agente tal como la hidroxietilcelulosa para ajustar la viscosidad, un agente antiespumante tal como el DC 1500, y al menos un agente humidificante tal como polivinilpirrolidona o acetato de polivinilo.
En realizaciones ejemplares, se aplica la capa reactiva 122 como una capa uniforme sobre la superficie expuesta de los electrodos. El grosor de la capa reactiva 122 previamente al contacto con la muestra de fluido no debería exceder los 50 micrómetros y normalmente no excede los 20 micrómetros. Para proporcionar un recubrimiento efectivo de la superficie del electrodo, el grosor de la capa no debería ser menor de 5 micrómetros aproximadamente y normalmente no es menor de 7 micrómetros aproximadamente.
Con referencia a la FIG. 2A, la capa separadora 160 está típicamente formada por un poliéster y está adherida a la capa conductiva 150 mediante un adhesivo de sellado térmico o un adhesivo piezosensible.
La capa superior o cubierta 180 cubre por completo la capa separadora 160. En una realización, la capa superior 180 es un material de poliéster que está adherido a la capa separadora 160 mediante un adhesivo hidrófilo tal como, por ejemplo, el ARflow 90128 de Adhesives Research Inc. La capa superior 80 está formada con poliéster transparente para permitir a un/a usuario/a confirmar que la cámara 84 de recepción de muestras está suficientemente llena.
5
10
15
20
25
30
35
40
45
Los solicitantes han descubierto que la distribución del reactivo en un prototipo (FIG. 3A) basado en un diseño similar al de la FIG. 1A tiende a ser más uniforme en comparación con un diseño alternativo (FIG. 3B) que permite una mayor exposición del sustrato 5 al reactivo 22, siendo mostrados ambos prototipos en las FIGS. 3A y 3B. Ambos prototipos respectivos de las FIGS. 3A y 3B fueron fabricados usando el mismo sustrato y material conductivo. En particular, se adquirieron rollos de película de CP Films de poliéster pulverizada con oro con un grosor de 0,18 milímetros aproximadamente. El grosor de la capa conductiva (oro en este caso) era de 15 nanómetros aproximadamente. La película fue cortada en tarjetas de 195 mm por 27,5 mm aproximadamente. En la capa conductiva 50 se formó el patrón de electrodo mediante trazado por láser o, preferiblemente, mediante la ablación por láser de campo amplio, es decir, ablación por láser usando un elemento de tipo máscara interpuesto entre el láser y el sustrato. Ambas superficies de los respectivos prototipos fueron tratadas con MESA y surfactante usando una técnica de aerógrafo previamente a la deposición del reactivo. Específicamente, para ambos tipos de tira reactiva, la capa conductiva 50 o no fue tratada o fue recubierta con 1, 2 ó 4 capas de una solución de 0,1% de sal sódica del ácido 2-mercaptoetanolsulfónico, (con una concentración dada en % basada en peso de compuesto químico por volumen de disolvente) y 0,025% de Pluronic F87 (o MESA/F87) para hacer que la superficie sea hidrófila. Una mezcla reactiva, tal como por ejemplo BioDot, que contenía 1% aproximadamente de hidroxietil celulosa, 10% aproximadamente de tricloruro hexamin de rutenio, 7,2% aproximadamente de glucosa oxidasa, 0,033% aproximadamente de Pluronic P103, 0,017% aproximadamente de Pluronic F87, y un regulador de fosfato de 0,2M aproximadamente con un pH de 6,9 fue depositada sobre la capa de electrodo por medio de un sistema sin contacto, de gota por demanda. A continuación se secó la tarjeta usando un calentador de Infrarrojos a unos 60º Celsius durante 3 minutos aproximadamente. Tras el secado, la tarjeta fue laminada con un separador y con una cinta hidrófila superior para formar un conjunto de sensores de glucosa.
En el primer prototipo de la FIG. 3A, el rebaje “A” entre los bordes de cualquiera de los electrodos 10, 12, ó 14 y los bordes de los bloques proximales, eléctricamente aislados, 52, 54, ó 56 es de 20 micrómetros aproximadamente. En contraste, el rebaje “B” del prototipo alternativo (FIG. 3B) es de 200 micrómetros aproximadamente, lo que permite exponer una mayor superficie del sustrato 5. La diferencia entre la separación A (~20 micrómetros) y B (~200 micrómetros) lleva a lo que se considera un resultado realmente sorprendente una vez que el reactivo es depositado sobre los patrones de electrodo en ambos prototipos. Comparando ambas FIGS. 3A y 3B, se puede observar este sorprendente resultado. En la FIG. 3A, puede observarse que el reactivo 22 es más uniforme que el reactivo 22’ de la FIG. 3B. Los solicitantes creen que la menor cantidad de material conductivo eliminado del prototipo de la FIG. 3A permitió una mayor uniformidad en la superficie con menos exposición del sustrato subyacente en comparación con la FIG. 3B. También se descubrió que la deposición uniforme de reactivo condujo a una mayor uniformidad en la distribución del fluido analítico. Por consiguiente, se cree que la distribución uniforme del reactivo en el prototipo 3A permite una mayor precisión en el proceso de medición del analito.
Para validar esta premisa se llevó a cabo un estudio de precisión comparando un prototipo de la tira reactiva mostrada en las FIGS. 1A-1C con unos bloques eléctricamente aislados (“CI”) 52 y 54 (o “tira reactiva CI”) con prototipos de tiras reactivas que no incluyeran los bloques eléctricamente aislados 52 y 54 (o tira reactiva no CI). La anchura de los bloques eléctricamente aislados 52 y 54 en las tiras reactivass CI era de 140 micrómetros y la distancia entre los electrodos de referencia o funcionales 10 ó 12 y el bloque conductivo era de 30 micrómetros. En las tiras reactivas no CI la distancia entre los electrodos era de 200 micrómetros.
Para probar únicamente la corriente de fondo de las tiras reactivas, tanto las tiras reactivas CI como las tiras reactivas no CI fueron montadas con todas las capas menos con la capa reactiva 22. El procedimiento reactiva incluyó aplicar a la tira reactiva un circuito abierto durante 2 segundos seguido de un potencial de 400 mV durante 3 segundos. Durante dos segundos se aplicó una solución de 151 mM de ferricianuro potásico / 19 mM de ferricianuro potásico a cada tira reactiva y se midió la corriente media durante 5,0 segundos. Los resultados de la precisión (o CV% de corriente) se muestran en la Tabla 1.
Tabla 1: Resultados de Precisión
- Caso
- Corriente Media durante 5,0 s CV% de corriente Número de réplicas
- CI Oro sin Tratar
- 19,85 3,66 24
- CI 1x MESA/F87
- 19,576 3,04 20
- CI 2x MESA/F87
- 19,83 2,21 20
- CI 4x MESA/F87
- 20,22 2,70 19
- No CI Oro sin Tratar
- 19,185 6,04 19
- No CI 1x MESA/F87
- 20,39 3,81 16
- No CI 2x MESA/F87
- 20,66 5,47 21
- No CI 4x MESA/F87
- 20,61 4,44 18
Los datos de la Tabla 1 indican que el CV% de corriente en las tiras reactivas CI ha mejorado significativamente en comparación con las tiras reactivas no CI.
Con referencia general a la FIG. 4, la tira 90 reactiva (o tira 100 reactiva) mostrada en las FIGS. 1A – 1C (o FIGS.
5 2A – 2B) está típicamente acoplada a un medidor 200 u otro dispositivo eléctrico a través de un conector eléctrico 202 que está configurado para acoplarse a, y estar en contacto con, el extremo de la tira 90 reactiva en las almohadillas de contacto 11, 13, 15 y 17. El medidor 200 incluye típicamente un potenciostato u otro componente para proporcionar un potencial y/o una corriente para los electrodos de la tira 90 reactiva. El medidor también incluye típicamente un procesador (p. ej. Un microprocesador o un hardware) para determinar la concentración de
10 analito a partir de las señales de la tira reactiva. El medidor también incluye típicamente una pantalla 204 para representar visualmente los resultados determinados a partir de las señales de la tira reactiva incluyendo, por ejemplo, la concentración del analito, la tasa de cambio de la concentración del analito, y/o la superación de un umbral de concentración del analito (que indique, por ejemplo, hipo o hiperglucemia).
Claims (22)
- REIVINDICACIONES1.-Una tira reactiva (90) para analito que comprende:un sustrato (5) que tiene una superficie generalmente plana que se extiende desde un primer extremo (3) hasta un segundo extremo (4);un material eléctricamente conductivo dispuesto sobre la superficie generalmente plana para definir una pluralidad de electrodos (10, 12, 14) separados entre sí; caracterizada por:una primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada de material conductivo, dispuesta entre al menos dos de la pluralidad de electrodos (10, 12) de manera que la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada no está en comunicación eléctrica con la pluralidad de electrodos (10, 12, 14); yuna capa reactiva (22) que cubre al menos parcialmente la pluralidad de electrodos (10, 12, 14) y la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada.
- 2.-La tira reactiva (90) de la reivindicación 1, en la que la distancia entre uno de la pluralidad de electrodos (10) y la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada y la distancia entre la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada y otro de la pluralidad de electrodos (12) es de 2 micrómetros aproximadamente a 50 micrómetros aproximadamente.
- 3.-La tira reactiva (90) de la reivindicación 1, en la cual se elimina menos del 10% del material conductivo para formar la pluralidad de electrodos (10, 12, 14).
- 4.-La tira reactiva (90) de la reivindicación 1, que incluye adicionalmente una segunda porción de bloque (54) eléctricamente aislada de material eléctricamente conductivo, distal tanto del primer extremo (3) como de uno de la pluralidad de electrodos (10) para asistir a la acción capilar durante el llenado de la tira reactiva con una muestra de fluido depositada sobre la tira reactiva.
- 5.-La tira reactiva (90) de la reivindicación 1, en la cual la pluralidad de electrodos (10, 12, 14) y la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada de material eléctricamente conductivo están recubiertas con un material hidrófilo.
- 6.-Un sistema de medición de un analito para medir la concentración de un analito en una muestra de fluido, comprendiendo el sistema:una tira reactiva para analito de acuerdo con cualquier reivindicación precedente, en la cual la pluralidad de electrodos incluye un electrodo de referencia (10) y un electrodo funcional (12) y la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada separa el electrodo de referencia (10) y el electrodo funcional (12) para asistir a la acción capilar durante el llenado de la tira reactiva con la muestra de fluido; yun medidor que comprende:un circuito electrónico para aplicar un voltaje reactiva entre el electrodo de referencia (10) y el electrodo funcional (12);un procesador de señales.
- 7.-El sistema de la reivindicación 6, en el cual la anchura de la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada es de 120 micrómetros aproximadamente a 200 micrómetros aproximadamente, y en el cual la distancia entre el electrodo de referencia (10) y la porción de bloque (52) eléctricamente aislada y la distancia entre la porción de bloque (52) eléctricamente aislada y el electrodo funcional (12) es de 2 micrómetros aproximadamente a 50 micrómetros aproximadamente.
- 8.-La tira reactiva (90) de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, para medir la concentración de un analito en una muestra de fluido, en la cual la pluralidad de electrodos (10) comprende:un electrodo de referencia (10) dispuesto sobre el sustrato (5);un primer electrodo funcional (12) dispuesto sobre el sustrato (5) próximo al electrodo de referencia (10); yun segundo electrodo funcional (14) dispuesto sobre el sustrato (5) próximo al primer electrodo funcional (12); yestando la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada próxima a uno del primer y el segundo electrodos funcionales (12, 14) y distal al electrodo de referencia (10).
- 9.-La tira reactiva (90) de la reivindicación 8, que comprende adicionalmente una segunda porción de bloque (54) eléctricamente aislada de material eléctricamente conductivo, en la cual la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada está situada entre el electrodo de referencia (10) y el primer electrodo funcional (12) y la segunda porción de bloque (54) eléctricamente aislada está situada entre el primer electrodo funcional (12) y el segundo electrodo funcional (14), y en la cual el electrodo de referencia (10), el primer electrodo funcional (12), el segundo electrodo funcional (14), la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada, y la segunda porción de bloque (54) eléctricamente aislada están recubiertos con un material hidrófilo.
- 10.-La tira reactiva (90) de la reivindicación 9, en la cual el material hidrófilo comprende sal sódica del ácido 2mercaptoetanolsulfónico.
- 11.-La tira reactiva (90) de la reivindicación 8, que comprende adicionalmente una tercera porción de bloque (56) eléctricamente aislada que tiene una porción de forma sustancialmente triangular.
- 12.-La tira reactiva (90) de la reivindicación 11, que comprende adicionalmente un orificio de ventilación (159) a través de la tercera porción de bloque (56) eléctricamente aislada de material eléctricamente conductivo y a través del sustrato (5).
- 13.-La tira reactiva (90) de la reivindicación 8 o el sistema de la reivindicación 6, en los cuales se elimina menos del 10% del material conductivo para formar la pluralidad de electrodos (10, 12, 14).
- 14.-La tira reactiva (90) de la reivindicación 1 o la reivindicación 8, en la cual la anchura de la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada es de 120 micrómetros aproximadamente a 200 micrómetros aproximadamente.
- 15.-La tira reactiva (90) de la reivindicación 8, en la cual la distancia entre el electrodo de referencia (10) y la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada y la distancia entre la primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada y el electrodo funcional (12) es de 2 micrómetros aproximadamente a 50 micrómetros aproximadamente
- 16.-Un procedimiento para fabricar una tira reactiva (90) para analito, comprendiendo el procedimiento:depositar una capa (50) de un material conductivo sobre el sustrato (5);eliminar porciones selectivas de la capa (50) de material conductivo para definir una pluralidad de electrodos (10, 12, 14) y estando caracterizado por:eliminar porciones selectivas de la capa (50) de material conductivo para definir al menos una primera porción de bloque (52) eléctricamente aislada del material conductivo separada de cualquiera de la pluralidad de electrodos (10, 12, 14) por una distancia de 50 micrómetros o menos para aislar eléctricamente la al menos una porción de bloque (52) eléctricamente aislada de los electrodos (10, 12, 14); ydepositar un agente reactivo (22) que cubra al menos parcialmente la pluralidad de electrodos (10, 12, 14) y la al menos una porción de bloque (52) eléctricamente aislada.
- 17.-El procedimiento de la reivindicación 16, en el cual el proceso de eliminación comprende la ablación de material conductivo mediante un láser de campo amplio con una duración de menos de 100 nanosegundos.
- 18.-El procedimiento de la reivindicación 16, que comprende adicionalmente recubrir la pluralidad de electrodos (10, 12, 14) y la al menos una porción de bloque (52) eléctricamente aislada con una capa de material para hacer que tales superficies sean hidrófilas.
- 19.-El procedimiento de la reivindicación 16, que comprende adicionalmente pegar una capa de cubierta (60) a la capa (50) de material conductivo.
- 20.-El procedimiento de la reivindicación 19, que comprende adicionalmente formar una cámara (84) definida por una superficie de la capa reactiva (22), una pared de la capa de cubierta (60) y una cubierta superior (80) sobre la cámara (84).
- 21.-El procedimiento de la reivindicación 20, en el cual la etapa de eliminación elimina menos del 10% de la capa(50) de material conductivo para formar la pluralidad de electrodos (10, 12, 14) y el al menos un bloque (52) eléctricamente aislado.
- 22.-El procedimiento de la reivindicación 21, que comprende adicionalmente perforar un orificio (159) a través del sustrato (5) y la capa (50) de material conductivo.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US849949 | 2001-05-04 | ||
| US11/849,949 US7943022B2 (en) | 2007-09-04 | 2007-09-04 | Analyte test strip with improved reagent deposition |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2365572T3 true ES2365572T3 (es) | 2011-10-07 |
Family
ID=40010986
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES08252946T Active ES2365572T3 (es) | 2007-09-04 | 2008-09-04 | Tira reactiva para analito con deposición reactiva mejorada. |
Country Status (8)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US7943022B2 (es) |
| EP (1) | EP2034301B1 (es) |
| JP (1) | JP2009063577A (es) |
| CN (1) | CN101551355A (es) |
| AT (1) | ATE513203T1 (es) |
| AU (1) | AU2008207543B2 (es) |
| CA (1) | CA2639302C (es) |
| ES (1) | ES2365572T3 (es) |
Families Citing this family (67)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6391005B1 (en) | 1998-03-30 | 2002-05-21 | Agilent Technologies, Inc. | Apparatus and method for penetration with shaft having a sensor for sensing penetration depth |
| US8641644B2 (en) | 2000-11-21 | 2014-02-04 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Blood testing apparatus having a rotatable cartridge with multiple lancing elements and testing means |
| US9795747B2 (en) | 2010-06-02 | 2017-10-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Methods and apparatus for lancet actuation |
| US7981056B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-07-19 | Pelikan Technologies, Inc. | Methods and apparatus for lancet actuation |
| ES2336081T3 (es) | 2001-06-12 | 2010-04-08 | Pelikan Technologies Inc. | Dispositivo de puncion de auto-optimizacion con medios de adaptacion a variaciones temporales en las propiedades cutaneas. |
| US8337419B2 (en) | 2002-04-19 | 2012-12-25 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
| US7041068B2 (en) | 2001-06-12 | 2006-05-09 | Pelikan Technologies, Inc. | Sampling module device and method |
| ATE485766T1 (de) | 2001-06-12 | 2010-11-15 | Pelikan Technologies Inc | Elektrisches betätigungselement für eine lanzette |
| US9226699B2 (en) | 2002-04-19 | 2016-01-05 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Body fluid sampling module with a continuous compression tissue interface surface |
| US9427532B2 (en) | 2001-06-12 | 2016-08-30 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
| AU2002348683A1 (en) | 2001-06-12 | 2002-12-23 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for lancet launching device integrated onto a blood-sampling cartridge |
| US7892183B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-02-22 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing |
| US7229458B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-06-12 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7976476B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-07-12 | Pelikan Technologies, Inc. | Device and method for variable speed lancet |
| US9314194B2 (en) | 2002-04-19 | 2016-04-19 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
| US8221334B2 (en) | 2002-04-19 | 2012-07-17 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7297122B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-11-20 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8372016B2 (en) | 2002-04-19 | 2013-02-12 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for body fluid sampling and analyte sensing |
| US8267870B2 (en) | 2002-04-19 | 2012-09-18 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for body fluid sampling with hybrid actuation |
| US7331931B2 (en) | 2002-04-19 | 2008-02-19 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8579831B2 (en) | 2002-04-19 | 2013-11-12 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US9248267B2 (en) | 2002-04-19 | 2016-02-02 | Sanofi-Aventis Deustchland Gmbh | Tissue penetration device |
| US7232451B2 (en) * | 2002-04-19 | 2007-06-19 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7175642B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-02-13 | Pelikan Technologies, Inc. | Methods and apparatus for lancet actuation |
| US7909778B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-03-22 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8702624B2 (en) | 2006-09-29 | 2014-04-22 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Analyte measurement device with a single shot actuator |
| US7901362B2 (en) | 2002-04-19 | 2011-03-08 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8784335B2 (en) | 2002-04-19 | 2014-07-22 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Body fluid sampling device with a capacitive sensor |
| US7674232B2 (en) | 2002-04-19 | 2010-03-09 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7491178B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-02-17 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7226461B2 (en) | 2002-04-19 | 2007-06-05 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a multi-use body fluid sampling device with sterility barrier release |
| US9795334B2 (en) | 2002-04-19 | 2017-10-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8360992B2 (en) | 2002-04-19 | 2013-01-29 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US7547287B2 (en) | 2002-04-19 | 2009-06-16 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for penetrating tissue |
| US8574895B2 (en) | 2002-12-30 | 2013-11-05 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus using optical techniques to measure analyte levels |
| EP1628567B1 (en) | 2003-05-30 | 2010-08-04 | Pelikan Technologies Inc. | Method and apparatus for fluid injection |
| EP1633235B1 (en) | 2003-06-06 | 2014-05-21 | Sanofi-Aventis Deutschland GmbH | Apparatus for body fluid sampling and analyte sensing |
| WO2006001797A1 (en) | 2004-06-14 | 2006-01-05 | Pelikan Technologies, Inc. | Low pain penetrating |
| EP1671096A4 (en) | 2003-09-29 | 2009-09-16 | Pelikan Technologies Inc | METHOD AND APPARATUS FOR PROVIDING IMPROVED SAMPLE CAPTURING DEVICE |
| US9351680B2 (en) | 2003-10-14 | 2016-05-31 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for a variable user interface |
| EP1706026B1 (en) | 2003-12-31 | 2017-03-01 | Sanofi-Aventis Deutschland GmbH | Method and apparatus for improving fluidic flow and sample capture |
| US7822454B1 (en) | 2005-01-03 | 2010-10-26 | Pelikan Technologies, Inc. | Fluid sampling device with improved analyte detecting member configuration |
| WO2006011062A2 (en) | 2004-05-20 | 2006-02-02 | Albatros Technologies Gmbh & Co. Kg | Printable hydrogel for biosensors |
| WO2005120365A1 (en) | 2004-06-03 | 2005-12-22 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for a fluid sampling device |
| US9775553B2 (en) | 2004-06-03 | 2017-10-03 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for a fluid sampling device |
| US8652831B2 (en) | 2004-12-30 | 2014-02-18 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Method and apparatus for analyte measurement test time |
| US9046480B2 (en) | 2006-10-05 | 2015-06-02 | Lifescan Scotland Limited | Method for determining hematocrit corrected analyte concentrations |
| WO2008040997A1 (en) * | 2006-10-05 | 2008-04-10 | Lifescan Scotland Limited | A test strip comprising patterned electrodes |
| WO2009126900A1 (en) | 2008-04-11 | 2009-10-15 | Pelikan Technologies, Inc. | Method and apparatus for analyte detecting device |
| US9375169B2 (en) | 2009-01-30 | 2016-06-28 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Cam drive for managing disposable penetrating member actions with a single motor and motor and control system |
| US8965476B2 (en) | 2010-04-16 | 2015-02-24 | Sanofi-Aventis Deutschland Gmbh | Tissue penetration device |
| US20120122197A1 (en) * | 2010-11-12 | 2012-05-17 | Abner David Jospeh | Inkjet reagent deposition for biosensor manufacturing |
| CN102507688B (zh) * | 2011-10-13 | 2014-03-12 | 中国科学院化学研究所 | 电化学生物传感器及其制备方法与应用 |
| US9535027B2 (en) * | 2012-07-25 | 2017-01-03 | Abbott Diabetes Care Inc. | Analyte sensors and methods of using same |
| WO2014062985A1 (en) * | 2012-10-17 | 2014-04-24 | University Of Maryland, Office Of Technology Commercialization | Device and methods of using device for detection of aminoacidopathies |
| US9121050B2 (en) | 2013-03-15 | 2015-09-01 | American Sterilizer Company | Non-enzyme based detection method for electronic monitoring of biological indicator |
| US8858884B2 (en) | 2013-03-15 | 2014-10-14 | American Sterilizer Company | Coupled enzyme-based method for electronic monitoring of biological indicator |
| US20160017399A1 (en) * | 2014-07-17 | 2016-01-21 | Lifescan Scotland Limited | Electrochemical-based analytical test strip with enzymatic reagent layer containing a naphthoquinone-based mediator and fad-gdh |
| CN105510391B (zh) * | 2014-09-22 | 2018-08-24 | 英科新创(厦门)科技有限公司 | 一种电极式血糖试条 |
| US10197522B2 (en) | 2015-03-18 | 2019-02-05 | Materion Corporation | Multilayer constructs for metabolite strips providing inert surface and mechanical advantage |
| US10378098B2 (en) | 2015-03-18 | 2019-08-13 | Materion Corporation | Methods for optimized production of multilayer metal/transparent conducting oxide (TCO) constructs |
| US20160290951A1 (en) * | 2015-03-31 | 2016-10-06 | Roche Diabetes Care, Inc. | Analyte meter with contoured strip port to improve electrochemical test strip reliability |
| GB201507506D0 (en) * | 2015-04-30 | 2015-06-17 | Inside Biometrics Ltd | Electrochemical test device |
| US10154809B2 (en) | 2015-06-24 | 2018-12-18 | University Of Virginia Patent Foundation | Test strip device and related methods thereof |
| JP2018036091A (ja) | 2016-08-30 | 2018-03-08 | アークレイ株式会社 | バイオセンサ、及びその製造方法 |
| CN108213719A (zh) * | 2018-01-06 | 2018-06-29 | 武汉吉事达科技股份有限公司 | 一种多电极血糖试纸的激光制作方法 |
| US20250127428A1 (en) * | 2023-10-19 | 2025-04-24 | Arkray, Inc. | Biosensor |
Family Cites Families (27)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPS55117726A (en) * | 1979-03-05 | 1980-09-10 | Hitachi Ltd | Manufacture of magnetic head |
| DE69500415T2 (de) | 1994-02-22 | 1998-02-05 | Philips Electronics Nv | Laserätzverfahren |
| AUPN661995A0 (en) * | 1995-11-16 | 1995-12-07 | Memtec America Corporation | Electrochemical cell 2 |
| US5653918A (en) * | 1996-01-11 | 1997-08-05 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Flexible thick film conductor composition |
| US5708247A (en) * | 1996-02-14 | 1998-01-13 | Selfcare, Inc. | Disposable glucose test strips, and methods and compositions for making same |
| US6046051A (en) * | 1997-06-27 | 2000-04-04 | Hemosense, Inc. | Method and device for measuring blood coagulation or lysis by viscosity changes |
| US6309526B1 (en) * | 1997-07-10 | 2001-10-30 | Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. | Biosensor |
| US5997817A (en) | 1997-12-05 | 1999-12-07 | Roche Diagnostics Corporation | Electrochemical biosensor test strip |
| JP3267933B2 (ja) * | 1998-01-27 | 2002-03-25 | 松下電器産業株式会社 | 基質の定量法 |
| US6338790B1 (en) * | 1998-10-08 | 2002-01-15 | Therasense, Inc. | Small volume in vitro analyte sensor with diffusible or non-leachable redox mediator |
| US7073246B2 (en) * | 1999-10-04 | 2006-07-11 | Roche Diagnostics Operations, Inc. | Method of making a biosensor |
| JP4197085B2 (ja) * | 2000-04-25 | 2008-12-17 | パナソニック株式会社 | バイオセンサ |
| EP2151683A3 (en) * | 1999-11-15 | 2010-07-28 | Panasonic Corporation | Biosensor, thin film electrode forming method, quantification apparatus, and quantification method |
| US6716577B1 (en) * | 2000-02-02 | 2004-04-06 | Lifescan, Inc. | Electrochemical test strip for use in analyte determination |
| US6733655B1 (en) | 2000-03-08 | 2004-05-11 | Oliver W. H. Davies | Measurement of substances in liquids |
| ATE406571T1 (de) | 2000-03-28 | 2008-09-15 | Diabetes Diagnostics Inc | Zeitmesser mit schnell ansprechenden glucose sensor |
| JP4120400B2 (ja) * | 2001-04-16 | 2008-07-16 | 松下電器産業株式会社 | バイオセンサ |
| EP2330407B1 (en) * | 2001-09-14 | 2013-05-29 | ARKRAY, Inc. | Method, tool and device for measuring concentration |
| JP4264478B2 (ja) * | 2001-09-28 | 2009-05-20 | アークレイ株式会社 | 測定用具および濃度測定装置 |
| JP3856436B2 (ja) * | 2002-03-01 | 2006-12-13 | 松下電器産業株式会社 | バイオセンサ |
| WO2004040287A1 (en) | 2002-10-30 | 2004-05-13 | Inverness Medical Limited | Method of manufacture of electrochemical sensors |
| MXPA05004644A (es) * | 2002-10-30 | 2005-06-08 | Inverness Medical Ltd | Composicion de tinta para uso en un procedimiento de banda continua para la fabricacion de sensores electroquimicos. |
| US8460523B2 (en) | 2002-12-02 | 2013-06-11 | Arkray, Inc. | Analysis instrument |
| AU2003289373A1 (en) | 2002-12-20 | 2004-07-29 | Arkray, Inc. | Thin analyzing device |
| CA2529300C (en) * | 2003-06-20 | 2011-10-18 | F.Hoffmann-La Roche Ag | Devices and methods relating to electrochemical biosensors |
| EP1642126A1 (en) * | 2003-06-20 | 2006-04-05 | Roche Diagnostics GmbH | System and method for coding information on a biosensor test strip |
| US8066866B2 (en) | 2005-10-17 | 2011-11-29 | Lifescan, Inc. | Methods for measuring physiological fluids |
-
2007
- 2007-09-04 US US11/849,949 patent/US7943022B2/en active Active
-
2008
- 2008-08-27 AU AU2008207543A patent/AU2008207543B2/en not_active Ceased
- 2008-09-03 JP JP2008225762A patent/JP2009063577A/ja active Pending
- 2008-09-03 CA CA2639302A patent/CA2639302C/en not_active Expired - Fee Related
- 2008-09-04 AT AT08252946T patent/ATE513203T1/de not_active IP Right Cessation
- 2008-09-04 CN CNA2008102127425A patent/CN101551355A/zh active Pending
- 2008-09-04 EP EP08252946A patent/EP2034301B1/en not_active Not-in-force
- 2008-09-04 ES ES08252946T patent/ES2365572T3/es active Active
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US20090057146A1 (en) | 2009-03-05 |
| AU2008207543A1 (en) | 2009-03-19 |
| AU2008207543B2 (en) | 2014-01-16 |
| ATE513203T1 (de) | 2011-07-15 |
| EP2034301A2 (en) | 2009-03-11 |
| HK1129457A1 (en) | 2009-11-27 |
| CA2639302C (en) | 2017-09-19 |
| US7943022B2 (en) | 2011-05-17 |
| EP2034301A3 (en) | 2010-01-13 |
| CN101551355A (zh) | 2009-10-07 |
| CA2639302A1 (en) | 2009-03-04 |
| EP2034301B1 (en) | 2011-06-15 |
| JP2009063577A (ja) | 2009-03-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| ES2365572T3 (es) | Tira reactiva para analito con deposición reactiva mejorada. | |
| CA2638239C (en) | Test strip and connector | |
| ES2343184T3 (es) | Medidor para usar en un metodo de reduccion de interferencias en un sensor electroquimico usando dos potenciales diferentes aplicados. | |
| ES2681398T3 (es) | Tira reactiva con cámara de recepción de muestra ensanchada | |
| ES2247094T3 (es) | Sensor de glucosa con respuesta rapida. | |
| US6977032B2 (en) | Biosensor | |
| US7056425B2 (en) | Biosensor | |
| EP2084292B1 (en) | A reagent formulation using ruthenium hexamine as a mediator for electrochemical test strips | |
| JP5236824B2 (ja) | 電気化学的バイオセンサでの酵素活性の安定化 | |
| TWI593962B (zh) | Biosensor and method of making the same | |
| WO2013059534A1 (en) | Glucose biosensor with improved shelf life | |
| JP2003042995A (ja) | 熱伝導性センサー | |
| US11851685B2 (en) | Zwitterion buffer containing compositions and uses in electroanalytical devices and methods | |
| US20040251132A1 (en) | Reduced volume strip | |
| HK1129457B (en) | Analyte test strip with improved reagent deposition | |
| HK1128094B (en) | Electrochemical measurement system comprising test strip and meter | |
| JP2014032017A (ja) | 生体試料測定センサとその製造方法 |