HUP0303902A2 - Interleukin-18-indukáló anyag - Google Patents

Interleukin-18-indukáló anyag Download PDF

Info

Publication number
HUP0303902A2
HUP0303902A2 HU0303902A HUP0303902A HUP0303902A2 HU P0303902 A2 HUP0303902 A2 HU P0303902A2 HU 0303902 A HU0303902 A HU 0303902A HU P0303902 A HUP0303902 A HU P0303902A HU P0303902 A2 HUP0303902 A2 HU P0303902A2
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
interleukin
whey protein
inducing
protein hydrolysate
hydrolysate
Prior art date
Application number
HU0303902A
Other languages
English (en)
Inventor
Hirotoshi Hayasawa
Tetsuya Kuhara
Hiroshi Miyakawa
Hiroshi Ochi
Yoshitaka Tamura
Akio Yamada
Original Assignee
Morinaga Milk Industry Co., Ltd.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Morinaga Milk Industry Co., Ltd. filed Critical Morinaga Milk Industry Co., Ltd.
Publication of HUP0303902A2 publication Critical patent/HUP0303902A2/hu
Publication of HUP0303902A3 publication Critical patent/HUP0303902A3/hu

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/01Hydrolysed proteins; Derivatives thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/01Hydrolysed proteins; Derivatives thereof
    • A61K38/012Hydrolysed proteins; Derivatives thereof from animals
    • A61K38/018Hydrolysed proteins; Derivatives thereof from animals from milk
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P33/00Antiparasitic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

A találmány tárgyát aktív összetevőként tejsavóprotein-hidrolizátumottartalmazó interleukin-18-indukáló anyag képezi. A találmány szerintihidrolizátum készítésekor a tejsavóproteint előnyösen 20-30%-osmértékig hidrolizálják, majd a hidrolizátumból egy 10 000 D fölöttimolekulatömegű frakciót eltávolítanak ultraszűréses eljárással, és akapott hidrolizátum IL-18-indukáló anyagként alkalmazható. Ó

Description

··
Interleukin-18-indukáló anyag
A találmány tárgyát aktív összetevőként tejsavóprotein-hidrolizátumot tartalmazó interleukin-18-indukáló anyag képezi.
A találmány szerinti hidrolizátum készítésekor a tej savóproteint előnyösen 20-30%-os mértékig hidrolizáljuk, majd a hidrolizátumból egy 10.000 D fölötti molekulatömegű frakciót eltávolítunk ultraszűréses eljárással, és a kapott hidrolizátum IL-18 idukáló anyagként alkalmazható.
Általánosságban elfogadott, hogy a hematopoetikus sejtek növekedéséhez és differenciálódásához specifikus növekedési- és differenciálódási faktorokra van szükség. Az érett vérsejtek, pl. a vörösvérsejtek, granulociták, makrofágok, acidofil sejtek, vérlemezkék és limfociták kialakulásához vezető folyamatban nagyszámú differenciálódási és növekedési faktor vesz részt.
Másrészt az élő szervezet immunválasszal reagál a baktériumok vagy vírusok okozta fertőzésre, a daganatképződésre, a citotoxikus hatásokra stb. Az immunválaszt a benne részt vevő immunsejtek közötti közvetett és közvetlen kölcsönhatások befolyásolják. Az utóbbi években a daganatterápiával kapcsolatos kutatásokban az immunrendszer működésére ható, az idegen anyagok elleni védekezőképességet javító immunmodulátor anyagokra terelődött a figyelem.
Az összefoglalóan „citokineknek” nevezett anyagokról [ide tartoznak pl. az interleukinok, a kolónia stimuláló faktorok, a tumomekrózis faktor (TNF) és az interferonok] egymás után kiderült, hogy részt vesznek a differenciálódásban, a növekedésben és az immunválaszfunkciókban. A citokinek gyógyászati készítményként történő alkalmazására szolgáló eljárások érdekében géntechnológiai úton történő előállításukra is kísérleteket tettek.
Az interleukin-18 (a továbbiakban esetenként „IL-18”) az immunrendszerbeli információátvivő anyagok egyike. Ezt a citokint az első leírásokban még interferon-γ indukáló faktornak nevezték [8-27189, 8-191098, 9-289896 számú japán nyitott szabadalmi bejelentések; Nature 378, 6552 (1995)], de a későbbiekben már az „IL-18” megnevezést alkalmazták rá [Journal of Immunology 156, 4274 (1996)].
Az interleukin-18 szerkezetileg az interleukin-1 családba tartozó protein, amely funkcionálisan az interleukin-12-vel rokon. Az interleukin-18 a T-sejtek és a „natural killer” sejtek interferon-γ termelésének erőteljes indukálószere. Emellett az interleukin-18 indukálni képes a
-2granulocita-makrofág kolónia stimuláló faktor, a tumornekrózis faktor, az interleukin-4, az interleukin-5, az interleukin-8, az interleukin-10 és az interleukin 13 termelését is. Az interleukin-18 mindezeken túl fokozza a „natural killer” sejtek citotoxicitását és proliferációját [Macrophage Journal 6, 5 (1999)]; Kohei Miyazono és Kazuo Sugamura: „Cytokine and Growth Factor, Revised Edition”, pp. 46-47. kiad.: Yodosha (1998)]. A interleukin emellett elnyomja az osteoclastok kialakulását és feltételezhetően közvetlenül szerepet játszik a csontképzés szabályozásában [New Function of Cytokine and Life Phenomenon”, Special Issue of „Experimental Medicine”, 18. kötet, pp. 178-179., szerk.: Atsushi Miyajima, kiad.: Yodosha (2000)]. A fenti jellemzőinek köszönhetően az interleukin-18 allergiaellenes-, gyulladáscsökkentő-, vírusellenes-, antimikrobiális-, daganatellenes ágensként és immunológiai megbetegedések terápiájára történő alkalmazásával kapcsolatban előrehaladott kutatások folynak.
A jelenlegi kutatások egy része az interleukin-18 erős interferon-γ indukáló hatásával kapcsolatos. Jelentős kutatásokat végeznek továbbá az immunológiai megbetegedések terápiájában és megelőzésében feltehetően lényegi szerepet betöltő, a citokin in vivo vagy in vitro indukálásáért vagy amplifikálásáért felelős faktorral kapcsolatban is. Ez idáig már számos citokin-indukáló faktorról beszámoltak. A kutatások eredményeként sikeresen meghatározták egyes citokin-indukáló faktorok szerkezetét és működését, és ezen alapulva különböző megbetegedések kezelésére szolgáló, kereskedelmi forgalomban kapható gyógyászati készítményeket hoztak létre, amelyek az orvoslásban jelenleg is alkalmaznak.
Ezzel szemben a fentiekben említett gyógyászati készítményekben alkalmazott indukáló faktorok szinte mindegyike csupán a készítmény parenterális beadásakor fejti ki hatását, így a gyógyászati kezelés alkalmazását a beadási mód és a vele járó esetleges nem kívánatos gyógyszerreakciók vagy mellékhatások korlátozzák.
A találmány tárgyát hatását szájon át történő beadás esetén kifejtő interleukin-18indukáló szer képezi, amely beadási mód csak elvétve vált ki nem kívánatos gyógyszerreakciót és amely pl. antiallergén hatással is rendelkezik.
A tejprotein citokin-képződésre gyakorolt hatására vonatkozó, a citokin indukáló faktorok keresésére irányuló kutatásaink eredményeként kimutattuk, hogy a tejsavóprotein-hidrolizátum elősegíti az interleukin-18 képződését.
A fentiekben felvetett problémára megoldást kínáló találmányunk tárgyát a következők képezik.
(1) Interleukin- 18-indukáló anyag, amely aktív összetevőként interleukin-18-indukáló hatású, tej savóprotein hidrolázzal végzett hidrolizálásával nyert tejsavóprotein-hidrolizátumot tartalmaz.
(2) Az (1) szerinti interleukin-18-indukáló anyag, amely anyag előállítására alkalmazott hidroláz a következők közül egy vagy több lehet: Bacillus subtilis proteáz, tejsavbaktériumproteáz, állati- vagy növényi eredetű proteáz.
(3) Az (1) vagy (2) szerinti interleukin-18-indukáló anyag, amely esetében a tejsavóprotein-hidrolizátum hidrolízisének aránya 20-30% közötti.
(4) Az (1) - (3) bármelyike szerinti interleukin-18-indukáló anyag, amelynek előállítása során egy 10.000 D molekulatömegű frakció eltávolításra került a tejsavóprotein-hidrolizátumból.
(5) A (4) szerinti interleukin-18-indukáló anyag, amelynek előállítása során a 10.000 D molekulatömegű frakció ultraszűréssel lett eltávolítva a tejsavóprotein-hidrolizátumból.
(6) Az (1)-(5) bármelyike szerinti interleukin-18-indukáló anyag, amely legalább 0,1 tömeg százalékban tartalmaz tejsavóprotein-hidrolizátumot.
(7) Eljárás interleukin-18-indukáló hatással rendelkező tejsavóprotein-hidrolizátum előállítására, amely során tej savóproteint hidrolázzal hidrolizálunk, majd az így nyert hidrolizátumból egy 10.000 D-nál nagyobb molekulatömegű frakciót ultraszüréssel eltávolítunk.
A leírásban ellenkező értelmű jelzés hiányában a hidrolízis fokát kivéve a százalékos arány tömégszázalékra vonatkozik.
Az alábbiakban részletesen ismertetjük a találmány szerinti megoldást.
A találmány szerinti interleukin-18-indukáló szer aktív hatóanyagként interleukin-18indukáló hatással rendelkező, tej savóprotein hidrolázzal végzett hidrolizálásával nyert tejsavóprotein-hidrolizátumot tartalmaz. A találmány szerinti interleukin-18-indukáló szer előállításához alapanyagként alkalmazott tej savóprotein tetszőleges eredetű lehet, amennyiben az alapanyag fő összetevőként tej savóproteint tartalmaz. Előnyös azonban kereskedelmi forgalomban kapható tej savóproteineket alkalmazni, amilyenek például a tejsavóprotein-kondenzátum (WPC) vagy a tejsavóprotein-izolátum (WPI). Alternatív módon, a tej savóprotein tejből, sovány tejből, teljes tejporból vagy sovány tejporból a hagyományos eljárásokkal állítható elő.
A következőkben a tej savóprotein hidrolázzal történő hidrolizálására szolgáló eljárást ismertetjük részletesebben. A tej savóprotein nyersanyagot vízben vagy meleg vízben diszpergáljuk és oldjuk. Az oldat koncentrációja a találmány szerinti megoldás szempontjából nem le
-4nyeges. A hatékonyság és működőképesség szempontjából ugyanakkor rendszerint előnyös, ha a proteintartalomra számított koncentráció 5-15% közötti.
A szaprofita baktériumok okozta szennyeződés előidézte romlás megelőzése szempontjából előnyös, ha a tej savóproteint tartalmazó oldatot 10 perc és 15 másodperc közötti időtartamban, 70-90°C közötti hőmérsékleten sterilizáljuk.
Előnyös továbbá, ha a tej savóproteint tartalmazó oldat pH-ját lúgos vagy savas természetű anyag hozzáadásával a hidroláz pH-optimumára vagy annak közeiére állítjuk be. A találmány szerinti megoldásban erre a célra tetszőleges sav vagy lúg igénybe vehető, amennyiben azok élelmiszeripari vagy gyógyászati célú felhasználása engedélyezett. A lúg lehet többek között nátrium-hidroxid, kálium-hidroxid, kálium-karbonát, a sav pedig pl. sósav, citromsav, foszforsav vagy ecetsav lehet.
A fentieket követően a tej savóprotein oldathoz hidroláz oldatot adunk. A találmány szerinti megoldásban a hidroláz pontos típusa nem korlátozó jelentőségű, amennyiben az protein hidrolizálására alkalmas. A hidroláz előnyösen endopeptidáz. Endopeptidázként számos enzim igénybe vehető, ilyenek pl. a szerinproteázok, pl. a tripszin és az elasztáz, valamint a cisztinproteázok, pl. a papain és a bromelain. Közelebbről, a találmány szerinti megoldásban előnyösnek tekintett proteázok a Bacillus subtilis proteáz, a tejsavbaktérium-proteáz, valamint az állati- vagy növényi eredetű proteázok. Az „eredetű” kifejezés arra utal, hogy eredetileg az említett szervezet tartalmazza a proteázt, és nem arra, hogy a proteáz belőle lett kinyerve. így pl. a Bacillus subtilis által termelt proteázt kódoló gént Escherichia coli-ba juttatva és ott expresszálva előállított proteáz Bacillus subtilis-bó\ „származik”.
A találmány szerinti megoldásban Bacillus subtilis-bó\ származó proteázként kereskedelmi forgalomban kapható termékek is igénybe vehetők. Ilyenek pl. a Protease N (Amano Enzyme Inc.) és a Bioprase (Nagase Chemtex Corporation). A Bacillus subtilis-bó\ származó proteázt 1 g tej savóproteinre számítva 100-5000 PUN egység mennyiségben alkalmazzuk (az említett egység pontos jelentését a későbbiekben részletezzük). A Bacillus subtilis-bó\ származó proteáz kazeinnel (Merck Ltd., Hammerstein) történő reagáltatásakor egy PUN egység a Folin-reagens 1 g tirozinnak megfelelő allil-aminosawal 30°C-on 1 percig tartó reakciója eredményeként kapott színreakcióval egyenértékű enzimaktivitást jelöl.
A tej savbaktériumból származó proteáz az 54-36235 számú japán szabadalmi irat „Alkalmazott enzimek” c. része 6. rovatának 4. sorában ismertetett eljárás szerint állítható elő. Ennek során tej savbaktériumot ismert eljárás szerint tenyésztünk (pl. 48-43878 számú japán szabadalmi irat), majd a tápközeg centrifugálásával tej savbaktériumból álló sejtüledéket nye- 5 rünk. A sejtüledéket sterilizált vízben szuszpendáljuk, majd a tej savbaktérium üledéket centrifugáljuk, ezt a folyamatot kétszer ismételjük. A sejtüledéket 20% koncentrációban sterilizált vízben szuszpendáljuk, majd sejtüledék-roncsoló berendezéssel (pl. „Dyno Mill”, KDL-típus; Willy Bachnfen Engineering Works) roncsoljuk, ezt követően liofilizálással a tej savbaktériumból származó proteázport hozunk létre belőle. A tej savbaktérium többek között Lactococcus nembe tartozó baktérium, pl. Lactococcus lactis, Lactobacillus nembe tartozó baktérium, pl. Lactobacillus helveticus vagy Lactobacillus bulgaricus, valamint Bifidobacterium nembe tartozó baktérium, pl. Bifidobacterium breve vagy Bifidobacterium longum lehet.
A fentiek szerint előállított enzimből 20-200 aktivitási egységet adunk 1 g tej savóproteinhez (az aktivitási egység magyarázatát Id. később). Az aktivitási egységet a következő eljárás szerint állapítjuk meg. Az enzimoldat előállításához a proteázt tartalmazó port 0,2 g/100 ml koncentrációban 0,1 M foszfátpufferben (pH - 7,0) diszpergáljuk vagy oldjuk. Ezzel párhuzamosan leucinil-p-nitroanilid („Leu-pNA”; Kokusan Chemical Co. Ltd.) 0,1 M foszfátpufferben (pH = 7,0) történő feloldásával 2 mM-os szubsztrátoldatot állítunk elő. A szubsztrátoldat és az enzimoldat 1-1 ml-ét 5 percig 37°C-on reagáltatjuk. Ezt követően a reakciót 2 ml 30%-os ecetsav hozzáadásával állítjuk le. A reakcióelegyet membránszűrőn átszűrjük, majd a kapott filtrátum abszorbanciáját 410 nm-en méljük. Az 1 pmol Leu-pNA 1 perc alatt történő lebontásához szükséges enzimmennyiséget 1 aktivitási egységnek nevezzük. A proteáz aktivitását a következő képlet szerint határozzuk meg.
Aktivitási egység (1 g porra) = 20 x (A/B)
A fenti kifejezésben az A és a B a minta és a 0,25 mM p-nitroanilin 410 nm-en mért abszorbanciáját jelenti.
Az állati- és vagy növényi eredetű proteáz lehet pl. tripszin, papain vagy bromelain.
A találmány szerinti megoldásban egy, vagy kettő vagy több hidroláz alkalmazható. Két vagy több enzim alkalmazása esetén az egyes enzimreakciók egyidejűleg vagy elkülönítve végezhetők.
Az oldatot, amelyhez az enzimet adjuk, a tej savóprotein enzim általi hidrolízisének megkezdéséhez megfelelő hőmérsékleten, pl. 30-60 C-on, előnyösen 45-55 C-on tartjuk. A reakciót az enzimatikus hidrolízis monitorozása mellett a hidrolízis kívánt arányának eléréséig folytatjuk. A találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag aktív hatóanyagaként alkalmazott tejsavóprotein-hidrolizátum kinyerése érdekében végzett hidrolízis aránya előnyösen 2030% közötti.
-6A protein hidrolízisének aránya a következőképpen számítható ki. A minta teljes nitrogéntartalmát a Kjeldahl-eljárás szerint számítjuk ki [„Method of Food Analysis”, p. 102, szerk.: Japanese Society for Food Science and Technology, kiad.: Korin Publishing Co., Ltd. (1984)], a mintabeli nitrogén által képzett formol mennyiségét a formoltitrálási eljárással állapítjuk meg [„Experiments of Food Engineering”, 1. kiadás, p. 547, szerk.: Mitsuda és mtsai., kiad.: Yokendo (1970)], a hidrolízis arányát pedig a fentiek szerint megállapított értékekből a következő képlet szerint számítjuk ki:
Hidrolízis aránya = (formol nitrogén mennyisége/összes nitrogén mennyiség) x 100.
Az enzimreakciót a hidrolízisoldatban lévő enzim inaktiválásával állítjuk le. Az enzimreakció leállítását a megszokott módon, melegítéses inaktiváló kezeléssel végezhetjük el. A sikeres inaktiváláshoz szükséges hőmérséklet és behatási idő az alkalmazott enzim hőstabilitásának figyelembe vételével állapítható meg. Az inaktiváláshoz elegendő például a 80130°C-on 30 perc és 2 másodperc közötti időtartamban végzett kezelés.
Előnyös, ha a fentiek szerint kapott reakcióoldat pH-ját savval, pl. citromsavval 5,5-7,0 közöttire állítjuk be.
Előnyösnek tekintjük, ha a fentiek szerint előállított tejsavóprotein-hidrolizátumból eltávolítjuk a 10.000 D-t meghaladó molekulatömegű frakciót. Az „eltávolítás” kifejezés a 10.000 D-t meghaladó molekulatömegű frakció egy részének és egészének eltávolítását egyaránt magában foglalja. Előnyös ugyanakkor, ha az említett frakciót teljes egészében eltávolítjuk. Amennyiben az interleukin-18-indukáló funkció megmarad, még az sem okoz problémát, ha a 10.000 D-t meghaladó molekulatömegű frakció eltávolítása eredményeként a 10.000 Dnál nem nagyobb molekulatömegű frakcióbeli nagy molekulatömegű összetevők mennyisége csökkent is. A 10.000 D-t meghaladó molekulatömegű frakció eltávolítása pl. ultraszűréssel oldható meg. Az ultraszűrés ismert berendezéssel pl. ultraszűrő modullal végezhető (Asahi Kaséi Corporation).
A tejsavóprotein-hidrolizátumot tartalmazó oldat kinyert állapotában is alkalmazható. Alternatív módon, amennyiben szükséges, a kapott oldatból ismert eljárás segítségével koncentrált oldat is kialakítható, majd a koncentrált oldat ismert eljárás segítségével történő kiszárításával port nyerhetünk.
A fentiek szerint előállított tejsavóprotein-hidrolizátum interleukin-18-indukáló hatással rendelkezik. Ennek megfelelően a tejsavóprotein-hidrolizátum előállításához alkalmazott feltételek a tejsavóprotein-hidrolizátum interleukin-18-at indukáló képessége alapján határozhatók
-7 meg. A találmány szerinti megoldásban az „interleukin-18-indukció” kifejezés alatt az interleukin- 18-at termelő sejtek interleukin-18 termelésének indukcióját értjük.
Az interleukin-18-at biológiai szövetek és sejtek termelik, ilyenek pl. a makrofágok, pl. a Kupffer-sejtek, a bélnyálkahártya hámsejtjei és a hám keratinocitái. A bélhámszövet interleukin-18 termelése különösen nagy mértékű. Az interleukin-18 in vivo termelésének nagy részéért feltehetően a bélhámsejtek felelősek. Ennek megfelelően a találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag által kiváltott interleukin-18 termelés legegyszerűbben a biológiai rendszerbeli expressziós rendszernek megfelelő környezetet biztosító sejtvonal alkalmazásával igazolható. Az interleukin-18 termelésére előnyösen vastagbél-eredetű sejtvonalat alkalmazunk. Ilyenek például a következő sejtvonalak: Caco-2, COLO205, SK-CO-1, SW48, T84, HT-29, HCT-15 és LSI80.
Az interleukin-18 termelése a találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag sejttenyészethez adásával érhető el. Ennek során előnyösnek tekintjük, ha az aktív hatóanyagként alkalmazott tejsavóprotein-hidrolizátum legalább 1 pg/ml koncentrációban van jelen a sejttenyészetben. A sejtvonal tenyésztésére megfelelő, kereskedelmi forgalomban kapható tenyésztőközeg, pl. RPMI-1640 vagy „Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium” (a továbbiakban szükség esetén „DMEM tápközeg”) alkalmazható. A tenyésztés folytatására alkalmas a „Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium” / „Ham’s F12 Medium” keveréke (a továbbiakban szükség esetén „DMEM/F12 tápközeg”). A fenti tápközeghez 5-20% emberi szérum, szarvasmarha szérum vagy magzati boíjúszérum is adható. Szükség esetén a tápközeg .emberi szérum· albuminnal, szarvasmarha szérumalbuminnal, antibiotikumokkal, ellenanyagokkal vagy 2merkaptoetanollal is kiegészíthető. A poliakrilamidgél-elektroforézissel szeparált interleukin-18 anti-IL-18 ellenanyag alkalmazásán alapuló westem-blot eljárással mutatható ki.
Ismert, hogy az immunglobulin E (IgE) ellenanyag általánosságban allergiás tüneteket, pl. bronchusasztmát, allergiás orrgyulladást, atópiás bőrgyulladást és táplálékallergiát okoz. Másrészről az is tudott, hogy az interleukin-18 in vivo elnyomja az IgE ellenanyag termelését [„Immune Rewievs 2001”, Special Issue of „Experimental Medicine”, 19. kötet, 5. szám, p. 189, szerk.: Hajime Toriyama, kiad.: Yodosha (2001); Clinical Immunology 30, 191 (1998)]. Ennek megfelelően a találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag szájon át történő beadásával előidézett interleukin-18-indukció az IgE ellenanyag-termelés elnyomásának vizsgálatával is igazolható.
Az interleukin-18 IgE ellenanyag termelésre gyakorolt gátlása előnyösen a ’’helper” Tsejtek közül a Th 1-nek a Th2 rovására történő indukálásán keresztül érvényesül. Kimutatták,
-8hogy az IgGl ellenanyag és IgG2a ellenanyag termelése a Thl és Th2 in vivo egyensúlyának indikátora [Cell Technology 19, 1828 (2000); Clinical Immunology 30, 191 (1998)]. Az interleukin-18 indukálásának hatása az ellenanyagok vérbeli koncentrációja arányának mérésén keresztül állapítható meg.
A tejsavóprotein-hidrolizátum, amely a találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag aktív összetevője tejből származó természetes termék, ennélfogva a szájon át történő felvétel után jelentős stabilitást mutat. A tejsavóprotein-hidrolizátum megtalálható pl. a naponta fogyasztott tehéntejben. A tejsavóprotein-hidrolizátum nem toxikus és hosszabb időn keresztül történő, folyamatos felvétele esetén is csak elvétve okoz kedvezőtlen gyógyszerhatást vagy mellékhatást. Ennek megfelelően a tejsavóprotein-hidrolizátum beadására bármely beadási mód igénybe vehető, ilyen pl. a szájon át történő beadás. A tejsavóprotein-hidrolizátumból ismert eljárások segítségével pl. tabletta, kapszula, pasztilla, szirup, granulátum, por vagy kenőcs állítható elő. A drog vagy gyógyászati készítmény előállításához a tejsavóprotein-hidrolizátum mellett a drogelőállításban általában igénybe vett egyéb összetevők, pl. vivőanyagok vagy töltőanyagok, pH-szabályozó anyagok, színezőanyagok, ízesítőszerek vagy ízjavító anyagok is alkalmazhatók. Emellett a készítmény bármely már ismert, vagy a jövőben megismerendő, interleukin-18-indukáló aktivitással rendelkező anyaggal is kombinálható.
A találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag egyik megvalósítási módjaként a tejsavóprotein-hidrolizátum élelmiszer aktív hatóanyaga is lehet és belőle interleukin-18-indukáló hatással rendelkező élelmiszer állítható elő.
A találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag interleukin-18-indukáláshoz szükséges aktív hatóanyaga, a tejsavóprotein-hidrolizátum a végső keverék legalább 0,1 tömegszázalékában keverhető be a készítményekbe.
A találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag alkalmazott adagja többek között a páciens korától és tüneteitől függ. Az interleukin-18-indukció elérése érdekében azonban előnyös, ha az interleukin-18-indukáló anyag napi adagja legalább a 100 mg/testtömeg kg adag egy része.
A találmány szerinti megoldást az alábbiakban példákkal illusztrálva részletesebben ismertetjük. A találmány szerinti megoldás azonban nem korlátozódik az alábbi példákra.
1. példa
Savóprotein-hidrolizátum előállítása
Kereskedelmi forgalomban kapható tej savóprotein kondenzátum (83% proteintartalom; Ária Foods Ingredients) 10 grammját 90 g, 106 mg nátrium-hidroxidot (San-Ei Gen F. F. I.
• · · · « ♦ * · · -··♦*> » ·< ** w *
-9Inc.) tartalmazó tisztított vízben oldva pH = 8,5 kémhatású tejsavóprotein-oldatot kaptunk. A tejsavóprotein-oldathoz 14940 aktivitási egység (1800 aktivitási egység /lg protein) „Protease N”-t (Amano Enzyme Inc.), 1660 aktivitási egység (200 aktivitási egység / 1 g protein) „Bioprase”-t (Nagase Chemtex Corporation), 830 aktivitási egység (100 aktivitási egység /lg protein) Lactobacillus helveticus roncsolt sejtüledéket, valamint 10375 aktivitási egység (1250 aktivitási egység / 1 g protein) tripszint (Novozymes) adtunk, majd a hidrolízis elősegítése érdekében az oldat hőmérsékletét 50°C-on tartottuk. Az enzimreakciót a hidrolízis aránya alapján monitoroztuk. Amikor a hidrolízis aránya elérte a 25,7%-ot, az oldat 10 percre 85°C-ra történő melegítésével inaktiváltuk az enzimeket. Ezután az oldatot 10°C-ra hűtöttük. A tejsavóprotein-hidrolizátumot 10.000 D molekulatömegnél frakcionáló ultraszűrő membránegységen (SLP-0053, Asahi Kaséi Corporation) bocsátottuk át. Az így nyert frakció liofilizálásával kb. 8,3 g por alakú tejsavóprotein-hidrolizátumot nyertünk.
2. példa
Interleukin-18-indukáló anyag előállítása (1)
Egy 1000 ml-es mozsárba (Nakashima Seisakusho Co. Ltd.) 20 g kristályos cellulózt (Wako Pure Chemical Industries) helyeztünk, majd a felvétel elősegítése érdekében 20 ml vizet adtunk hozzá. Ezt követően előzetesen 48-as méretű szűrőn (Wakamori) átszűrt laktóz (Meggle GmbH) 25 g-ját, majd az 1. példa szerint előállított tej savóprotein 55 g-ját adtuk a keverékhez. Az így kapott nedves anyagot 20-as méretű rozsdamentes acél szűrőre helyeztük (Wakamori), majd az anyagot kézzel átnyomva rozsdamentes acél tányérra juttattuk, az így képződött granulátumot a száradás érdekében gyorsan egyenletesen szétterítettük. A granulátumból ezután két napon át 25°C-on szárítógéppel végzett szárítással miniatűr granulátumot hoztunk létre. A granulátumot polietilénből készített 20-as méretű szűrőn (Wakamori) bocsátottuk át. A szűrőn átjutott granulátumot széles papírlapon egyenletesen szétterítettük. Ehhez az anyaghoz korábban 48-as szűrőn átbocsátóit 2 g magnézium-sztearátot (Kanto Kagaku) adtunk, majd az anyagokból kézi keveréssel homogén keveréket hoztunk létre. A keverékből tablettakészítő berendezéssel (KT-2, Kimura Seisakusho) 8 mm átmérőjű R-rúd alkalmazásával, 10 tabletta készítésének megfelelő nyomóerő mellett tablettákat hoztunk létre. A tabletták tömege 6,2 g, Monsanto-féle keménységük 3,5-5,0 kg volt. Ezen az úton 16 db interleukin-18indukáló hatású tablettát hoztunk létre, amelyek kb. 50% tejsavóprotein-hidrolizátumot tartalmaztak.
- 10’M .· . ί * * V · ♦ ·
J- ·· > «
3. példa
Interleukin- 18-indukáló anyag előállítása (2)
Hatszáz g laktózt (Meggle GmbH), 400 g kukoricakeményítőt (Nissin Seifun), 400 g kristályos cellulózt (Wako Pure Chemical Industries) és az 1. példa szerint előállított tejsavóprotein-hidrolizátum 600 g-ját 50-es méretű szűrön (Yamato Scientific Co., Ltd.) átbocsátva nyert por alakú anyagot 0,5 mm-es vastagságú polietilén zsákba töltöttük, majd többszöri fel-le forgatással összekevertük, végül az anyagot 275 mg-os adagokban teljesen automatizált kapszulatöltő berendezés („prés” típusú, Sesser Pedini) segítségével kapszulákba (Japan Elanco, No. 1 zselatinkapszula, Op. Yellow No. 6 test, üres tömeg 75 mg) töltöttük. A fentiek eredményeként 7000 db, interleukin-18-indukáló hatású kapszulát nyertünk.
1. példaértékű vizsgálat
Ebben a vizsgálatban az interleukin-18-indukáló hatást tanulmányoztuk.
(1) Vizsgálati minták
Az 1., 2., 3. és 4. minta elkészítéséhez az 1. példa szerint előállított tejsavóprotein-hidrolizátumot 0,1 pg/ml, 1 g/ml, 10 g/ml és 100 g/ml koncentrációban 5% magzati borjúszérumot (GIBCO) tartalmazó DMEM/F-12 tápközegben (ICN Biomedicals, Inc., katalógusszám: 1-800-854-0530) oldottuk. Kontroll mintaként 100 pg/ml koncentrációban 5% magzati boíjúszérumot tartalmazó DMEM/F-12 tápközegben szarvasmarha szérumalbumint oldottunk. Tejprotein kontroll minta előállítása érdekében az 1. példában a tej savóprotein kondenzátumot kazeinre cserélve hidrolízissel nyert kazein-hidrolizátumot 100 pg/ml koncentrációban 5% magzati boíjúszérumot tartalmazó DMEM/F-12 tápközegben oldottuk.
Az interleukin-18 indukálására Caco-2 (ATCC HTB-37) jelű bélhámsejt-vonalat alkalmaztunk.
(2) Vizsgálati eljárás
A Caco-2 jelű bélhámsejt-vonal sejtjeinek 1 x 104 mennyiségét 5% magzati boíjúszérumot tartalmazó DMEM/F-12 tápközegben szuszpendáltuk. Az így kapott szuszpenzióból 1-1 ml-t 12 üregű tenyésztőtálca (Falcon) üregeibe juttattunk, majd a sejteket hat napig, konfluens állapotuk eléréséig tenyésztettük. Ezt követően a sejteket két alkalommal DMEM/F-12 tápközeggel mostuk, majd az üregekbe az 1-4. minták, a kontroll minta, a tejprotein kontroll minta és az 5% magzati borjúszérumot tartalmazó DMEM/F-12 tápközeg 1-1 ml-ét mértük, majd az inkubálást további 8 órán át folytattuk. A tenyésztést követően a tenyészetek felülúszóját aspirátor berendezés segítségével leszívtuk, majd a sejteket 4°C-on két alkalommal Dulbecco- 11 féle foszfát-pufferolt sóoldattal (a továbbiakban „PBS”) mostuk. Ezután a sejteket 0,1% nátrium-dodecil-szulfátot (a továbbiakban „SDS”), 1% NP40-et, 0,5% nátrium-dezoxikolátot és 0,5 mM fenilmetánszulfonil-fluoridot tartalmazó PBS oldat 0,2 ml-ével lizáltuk. A sejtlizátumot a felülúszó kinyerése érdekében 10.000 fordulat/perc sebességgel 4°C-on 10 percen keresztül centrifugáltuk. Ebben a vizsgálatban az 1-4. minták, a kontroll minta, a tejprotein kontroll minta és az 5% magzati boíjúszérumot tartalmazó DMEM/F-12 tápközeg jelenlétében tenyésztett sejtek lizátumának felülúszóját 1-4. mintának, kontroll csoportnak, tejprotein kontroll csoportnak és negatív kontroli csoportnak neveztük.
Az egyes csoportok esetében megállapítottuk a minták proteintartalmát. Minden egyes csoportbeli proteinminta 10 μg-ját nem-redukáló állapotban 16%-os SDS poliakrilamid elektroforézis gélen (TEFCO) elektroforetizáltuk. Ezt követően a gélen szétválasztott proteineket blottoló membránra (Hybond-P, Amersham Pharmacia) vittük. A blottoló membránt 5%os koncentrációjú, PBS-ben hígított sovány tejjel (DIFCO) blokkoltuk. Ezt követően a membránt 0,5 pg/ml koncentrációjú primer emberi interleukin-18 ellenanyaggal (MBL) 4°C-on 12 órán át kezeltük. A blottoló membránt ezután mostuk, majd 1:5000 arányban hígított, peroxidázzal jelzett szekunder anti-egér IgG (MBL) oldatával 1 órán át inkubáltuk. A szekunder ellenanyaggal történt kezelés után a membránt mostuk, majd „ECL Plus” (Amersham Pharmacia) fluoreszcens szubsztrátoldattal kezeltük. Közvetlenül ez után a fluoreszcens reakciót röntgenfilm alkalmazásával mutattuk ki. Az így előállított képet denzitométer segítségével számszerű értékekké alakítottuk. A csoportok interleukin-18-indukáló aktivitását a negatív csoporthoz (mint 100%-hoz) viszonyított relatív aktivitásként határoztuk meg.
(3) Vizsgálati eredmények
A fentiekben részletezett vizsgálat eredményeit az 1. táblázat tartalmazza. Az 1. táblázatban az egyes csoportok interleukin-18-indukáló aktivitása látható. Amint az jól látható, a tejsavóprotein-hidrolizátum koncentrációjának emelésével az 1-4. kísérleti csoportok esetében nőtt az interleukin-18-indukáló aktivitás mértéke. Azt is megállapítottuk továbbá, hogy a fenti körülmények között a tejsavóprotein-hidrolizátum legalább 1 pg/ml-es tápközegbeli koncentrációjánál lehetett interleukin-18-indukáló aktivitást megfigyelni. A kontroll csoportként alkalmazott szarvasmarha szérumalbumin és a tejprotein kontroll csoportként alkalmazott kazeinhidrolizátum nem fokozta az interleukin-18 termelését. E vizsgálat eredményei alapján az interleukin-18-indukáló aktivitás a tejsavóprotein-hidrolizátumnak volt köszönhető.
1. táblázat
Vizsgálati csoport IL-18-indukáló aktivitás (%)
1. kísérleti csoport 95,7
2. kísérleti csoport 125,0
3. kísérleti csoport 147,7
4. kísérleti csoport 214,7
Kontroll csoport 90,3
Tejprotein kontroll csoport 92,3
2. példaértékű vizsgálat
Ezt, a szérumbeli IgE ellenanyag mennyiségének meghatározásán alapuló vizsgálatot a találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag hatékony adagjának megállapítása érdekében végeztük.
(1) Vizsgált minták
A vizsgálathoz az 1. példa szerint előállított tejsavóprotein-hidrolizátumot alkalmaztunk 30 mg/ml koncentrációban élettani sóoldatban (Otsuka Pharmaceutical Co. Ltd.) oldva. Az élettani sóoldatot (Otsuka Pharmaceutical Co. Ltd.) negatív kontrollként is igénybe vettük.
(2) Vizsgálati eljárás
Kísérleti állatként 50, véletlenszerűen 10 állatból álló kísérleti csoportokba sorolt hat hetes hímivarú BALB/c egeret (Charles River Japan) alkalmaztunk.
Antigénként 1 mg alumínium-hidroxid adjuvánshoz (Wako Pure Chemical Industries) adszorbeált 2,5 pg ovalbumint (Sigma) használtunk, amelyet intraperitoneális injektálással juttattunk a kísérleti állatokba. A beadás után az állatokat három napig nem kezeltük. A vizsgált mintákat három egymást követő napon gyomorszondán keresztül adtuk be, a tejsavóproteinhidrolizátum beadott adagja az egyes vizsgálati csoportok esetében 0 mg/testtömeg kg/nap (negatív kontroll), 30 mg/testtömeg kg/nap, 100 mg/testtömeg kg/nap és 300 mg/testtömeg kg/nap volt. Az állatokat ezután 4 napig nem kezeltük, majd három egymást követő napon újabb kezelést végeztünk. Egy nap elteltével az egerek szívéből vett vérből szérummintákat nyertünk.
A szérumminták IgE koncentrációját ELISA-val állapítottuk meg. Ennek során primer ellenanyagként R3 5-92 jelzésű anti-egér IgE monoklonális ellenanyag (PharMingen) oldatát 96 üregű mikrotiter tálcára (Nunc) jutattuk és egy éjszakán át 4°C-on adszorbeáltattuk. Ezután
- 13 szarvasmarha szérumalbuminnal blokkoló kezelést végeztünk, majd a lemez üregeibe jutattuk a vizsgált szérummintákat. Ezt követően szekunder ellenanyagként R35-118 jelzésű biotin-jelzett anti-egér IgE monoklonális ellenanyag (PharMingen) oldatát, majd peroxidázzal jelzett avidin D-t (Vector Laboratories) juttattunk az üregekbe. A színreakció kialakulását peroxidáz szubsztrátoldat (Kirkegaard & Perry Laboratories, Inc.) mint színreakciót okozó pufferoldat hozzáadásával értük el. Az IgE koncentrációt a reakcióoldat abszorbanciájának 405 nm-es hullámhosszon történő mérésével állapítottuk meg. A kísérleti csoportokba tartozó 10 állat esetében kapott értékek átlagolásával határoztuk meg az egyes kísérleti csoportokra jellemző IgE koncentrációt.
(3) Vizsgálati eredmények
A vizsgálat eredményeit a 2. táblázat tartalmazza. A 2. táblázatban az interleukin-18indukáló anyag beadott mennyisége és az IgE koncentráció közötti összefüggés látható. Amint a táblázat adataiból kiderül, a legalább 100 mg/kg testtömeg kg/nap adagban alkalmazott tejsavóprotein-hidrolizátum gátolta az IgE ellenanyag képződését. Ez az eredmény az IgE ellenanyag termelését gátló interleukin-18 sikeres in vivo indukálására utal.
2. táblázat
Az interleukin-18-indukáló anyag adagja (mg/ttkg/nap) IgE koncentráció (ng/ml)
0 3965,2
30 3543,1
100 2684,3
300 2015,1
3. példaértékű vizsgálat
Ezt, a szérumbeli IgGl és Ig2a ellenanyagok koncentrációja arányának meghatározásán alapuló vizsgálatot a találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag hatékony adagjának megállapítása érdekében végeztük.
(1) Vizsgált minták
A vizsgálathoz az 1. példa szerint előállított tejsavóprotein-hidrolizátumot alkalmaztunk 30 mg/ml koncentrációban élettani sóoldatban (Otsuka Pharmaceutical Co. Ltd.) oldva. Az élettani sóoldatot (Otsuka Pharmaceutical Co. Ltd.) negatív kontrollként is igénybe vettük.
(2) Vizsgálati eljárás
A szérumminták IgGl és IgG2a koncentrációját a 2. példaértékű vizsgálatban ismertetett ELISA-val határoztuk meg, azzal a különbséggel, hogy primer ellenanyagként A85-3 jelzésű anti-egér IgGl monoklonális ellenanyag (PharMingen) oldatát valamint RÍ 1-89 jelzésű anti5 egér IgG2a monoklonális ellenanyag (PharMingen) oldatát alkalmaztuk, szekunder ellenanyagként pedig A85-1 jelzésű, biotin-jelzett anti-egér IgGl monoklonális ellenanyag (PharMingen) oldatát valamint RÍ9-15 jelzésű biotin-jelzett anti-egér Ig2a monoklonális ellenanyag (PharMingen) oldatát vettük igénybe.
(3) Vizsgálati eredmények
A vizsgálat eredményét a 3. táblázatban foglaltuk össze. A 3. táblázatban az interleukin-18-indukáló anyag beadott mennyisége és az IgGl/Ig2a koncentráció aránya közötti összefüggés látható. Amint a táblázat adataiból kiderül, a találmány szerinti interleukin18-indukáló anyag beadott mennyiségének növelésével csökkent az IgGl/Ig2a koncentrációhányados értéke. Ilyen lényeges mértékű változás a legalább 100 mg/kg testtömeg kg/nap 15 adagban alkalmazott tejsavóprotein-hidrolizátum esetén volt megfigyelhető. A vizsgálat eredményei arra utalnak, hogy az interleukin-18 termelés indukálásával a Thl-et előnyben részesítő körülmények alakultak ki. Az interleukin-18 adagjának optimális mennyisége megegyezett a 2. példaértékű vizsgálatban megállapítottal.
3. táblázat
Az interleukin-18-indukáló anyag adagja (mg/ttkg/nap) IgGl/IgG2a koncentráció-hányados
0 0,664
30 0,593
100 0,435
300 0,419
Ipari alkalmazhatóság
A fentiekben részletezettek szerint a találmány tárgyát aktív összetevőként tejsavópro25 tein-hidrolizátumot tartalmazó interleukin-18-indukáló anyag képezi. A találmány szerinti megoldás a következőket igazolja.
(1) Lehetőség van az interleukin-18 hatékony indukálására.
(2) Mivel az interleukin-18-indukáló anyag tejproteinből származik, így csak elvétve okoz kedvezőtlen gyógyszerhatást. A találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag hosszú időn keresztül, folyamatosan alkalmazható.
(3) A találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag szájon át adagolható. A hagyományos injekciós gyógyszerformával szemben ez a kiszerelés kényelmesen és rendkívül sokoldalúan alkalmazható.
(4) A találmány szerinti interleukin-18-indukáló anyag viszonylag olcsó alapanyagból, tehéntejből állítható elő, és tömegtermelésre is alkalmas.

Claims (7)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Interleukin-18-indukáló anyag, amely aktív összetevőként interleukin-18-indukáló hatású, tej savóprotein hidrolázzal végzett hidrolizálásával nyert tejsavóprotein-hidrolizátumot tartalmaz.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti interleukin-18-indukáló anyag, amely anyag előállítására alkalmazott hidroláz a következők közül egy vagy több lehet: Bacillus subtilis proteáz, tejsavbaktérium-proteáz, állati- vagy növényi eredetű proteáz.
  3. 3. Az 1. vagy 2. igénypont szerinti interleukin-18-indukáló anyag, melynek esetében a tejsavóprotein-hidrolizátum hidrolízisének aránya 20-30% közötti.
  4. 4. Az 1-3. igénypontok bármelyike szerinti interleukin-18-indukáló anyag, amelynek előállítása során egy 10.000 D molekulatömegű frakció eltávolításra került a tejsavóproteinhidrolizátumból.
  5. 5. A 4. igénypont szerinti interleukin-18-indukáló anyag, amelynek előállítása során a 10.000 D molekulatömegű frakció ultraszűréssel lett eltávolítva a tejsavóprotein-hidrolizátumból.
  6. 6. Az 1-5. igénypontok bármelyike szerinti interleukin-18-indukáló anyag, amely teljes tömegére vonatkoztatva legalább 0,1 százalékban tartalmaz tejsavóprotein-hidrolizátumot.
  7. 7. Eljárás interleukin-18-indukáló hatású tejsavóprotein-hidrolizátum előállítására, azzal jellemezve, hogy az eljárás során tej savóproteint hidrolázzal hidrolizálunk, majd az így nyert hidrolizátumból egy 10.000 D-nál nagyobb molekulatömegű frakciót ultraszűréssel eltávolítunk.
    A meghatalmazott:
    DANUBIA
    Szabadalmi és Védjegy Iroda Kft.
    dr. Pc^o^Arpád szabadalmi ügyvivő
HU0303902A 2001-10-31 2002-10-29 Interleukin-18 inducing agent HUP0303902A3 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2001334120A JP2003137804A (ja) 2001-10-31 2001-10-31 インターロイキン−18誘導剤
PCT/JP2002/011228 WO2003037364A1 (fr) 2001-10-31 2002-10-29 Agent inducteur de l'interleukine-18 (il-18)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUP0303902A2 true HUP0303902A2 (hu) 2004-03-01
HUP0303902A3 HUP0303902A3 (en) 2010-01-28

Family

ID=19149304

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU0303902A HUP0303902A3 (en) 2001-10-31 2002-10-29 Interleukin-18 inducing agent

Country Status (10)

Country Link
US (2) US20040063633A1 (hu)
EP (1) EP1344530A4 (hu)
JP (1) JP2003137804A (hu)
KR (1) KR100575022B1 (hu)
AU (1) AU2002344421B2 (hu)
CA (1) CA2432289C (hu)
HU (1) HUP0303902A3 (hu)
NO (1) NO331608B1 (hu)
NZ (1) NZ526743A (hu)
WO (1) WO2003037364A1 (hu)

Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2005350452A (ja) * 2004-05-14 2005-12-22 Meiji Milk Prod Co Ltd IgE産生抑制作用を有する組成物およびIgE産生抑制方法
KR100979448B1 (ko) * 2008-03-06 2010-09-02 건국대학교 산학협력단 유청 단백질 가수분해물과 프로바이오틱(probiotic) 유산균을 첨가한 기능성 음료 및그의 제조방법
US20110130637A1 (en) * 2008-03-20 2011-06-02 University Of Dundee Protein product for modifying cardiovascular health
JP5969225B2 (ja) * 2012-03-09 2016-08-17 雪印メグミルク株式会社 骨強化剤
JP2013184961A (ja) * 2012-03-09 2013-09-19 Snow Brand Milk Products Co Ltd 骨強化剤
US9345741B2 (en) 2013-03-15 2016-05-24 Mead Johnson Nutrition Company Nutritional composition containing a peptide component with adiponectin simulating properties and uses thereof
US8889633B2 (en) 2013-03-15 2014-11-18 Mead Johnson Nutrition Company Nutritional compositions containing a peptide component with anti-inflammatory properties and uses thereof
US9138455B2 (en) 2013-03-15 2015-09-22 Mead Johnson Nutrition Company Activating adiponectin by casein hydrolysate
US9345727B2 (en) 2013-03-15 2016-05-24 Mead Johnson Nutrition Company Nutritional compositions containing a peptide component and uses thereof
US9352020B2 (en) 2013-03-15 2016-05-31 Mead Johnson Nutrition Company Reducing proinflammatory response
US9289461B2 (en) 2013-03-15 2016-03-22 Mead Johnson Nutrition Company Reducing the risk of autoimmune disease
KR101583888B1 (ko) 2013-12-19 2016-01-08 현대자동차주식회사 스파클 감이 향상된 도료 조성물과 그 도장방법

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3857966A (en) * 1973-08-16 1974-12-31 Gen Foods Corp Process for bland, soluble protein
US3970520A (en) * 1973-09-17 1976-07-20 General Foods Corporation Nutritionally improved foodstuffs
IE48036B1 (en) * 1977-10-18 1984-09-05 Nordstjernan Ab Process for the preparation of a hydrolysed product from whole corn,and such a product
CH635491A5 (fr) * 1979-01-26 1983-04-15 Nestle Sa Procede de desamerisation d'un hydrolysat de proteines et hydrolysat desamerise obtenu.
US4378376A (en) * 1981-01-09 1983-03-29 Ralston Purina Company Simulated milk protein replacer of improved suspension characteristics
SE459140B (sv) * 1986-11-25 1989-06-12 Albuglobe Ab Hydrolys av vassleprotein foer att underlaetta avskiljning av fett daerifraan
EP0321603A1 (fr) * 1987-12-23 1989-06-28 Societe Des Produits Nestle S.A. Procédé de préparation d'un hydrolysat de protéines de lactosérum et d'un aliment hypoallergéniques
JP3091772B2 (ja) * 1991-03-12 2000-09-25 カルピス株式会社 アンジオテンシン変換酵素阻害ペプチド組成物
JP3510639B2 (ja) * 1991-06-28 2004-03-29 カルピス株式会社 インターロイキン産生能を調節する機能を持たせた機能性食品又は健康食品
FR2688135B1 (fr) * 1992-03-09 1995-06-09 Oreal Composition cosmetique pour le maintien de la coiffure, contenant un proteine de lait et/ou un hydrolysat de proteine de lait et un hydrolysat de keratine.
US5405637A (en) * 1993-06-30 1995-04-11 Bristol-Myers Squibb Company Milk protein partial hydrolysate and infant formula containing same
FI104465B (fi) * 1995-06-14 2000-02-15 Valio Oy Proteiinihydrolysaatteja allergioiden hoitamiseksi tai estämiseksi, niiden valmistus ja käyttö
JPH09194393A (ja) * 1996-01-22 1997-07-29 Meiji Milk Prod Co Ltd 免疫寛容を誘導する方法、免疫寛容誘導食品キットおよび免疫寛容誘導剤キット
US5994511A (en) * 1997-07-02 1999-11-30 Genentech, Inc. Anti-IgE antibodies and methods of improving polypeptides
JPH1135468A (ja) * 1997-07-17 1999-02-09 Meiji Milk Prod Co Ltd 核酸とその成分を用いたi型アレルギー 抑制食品及び抑制剤
MY129566A (en) * 1999-01-19 2007-04-30 Nestle Sa A hypoallergenic composition containing tolerogenic peptides inducing oral tolerance

Also Published As

Publication number Publication date
US20070031506A1 (en) 2007-02-08
AU2002344421A1 (en) 2003-05-12
EP1344530A4 (en) 2005-03-16
JP2003137804A (ja) 2003-05-14
AU2002344421B2 (en) 2005-03-03
CA2432289C (en) 2011-02-22
KR20040019271A (ko) 2004-03-05
KR100575022B1 (ko) 2006-05-02
WO2003037364A1 (fr) 2003-05-08
NO20032979L (no) 2003-08-28
CA2432289A1 (en) 2003-05-08
NO331608B1 (no) 2012-02-06
HUP0303902A3 (en) 2010-01-28
NZ526743A (en) 2005-04-29
NO20032979D0 (no) 2003-06-27
US20040063633A1 (en) 2004-04-01
EP1344530A1 (en) 2003-09-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100494741B1 (ko) 알레르기의치료또는예방방법
BR122022016606B1 (pt) Lactobacillus paracasei mortos pelo aquecimento, medicamento, alimento ou bebida, ração, agente promotor da produção de il-12 e uso
Ashaolu et al. Immunomodulatory effects of pepsin-educed soy protein hydrolysate in rats and murine cells
CN1525863A (zh) 来自乳酸菌的脂磷壁酸及其调节革兰氏阴性菌、可能致病的革兰氏阳性菌介导的免疫应答的用途
HUP0303902A2 (hu) Interleukin-18-indukáló anyag
JP6637725B2 (ja) ウイルス感染症の予防及び/又は治療剤
CN1694954A (zh) 用于降低由螺杆菌引起炎症的乳酸菌的选择和应用
US7731955B2 (en) Interleukin-6 suppressive agent
US20220023360A1 (en) Composition for promoting antimicrobial peptide production
KR20130024960A (ko) 장관면역 조정제
Tanaka ANTIMICROBIAL ACTIVITY OF LACTOFERRIN AND
JP5515031B2 (ja) 経口免疫寛容を誘導するペプチド組成物およびその調製方法
JPH07179355A (ja) IgGおよびIgMクラスの抗体産生を促進する 免疫賦活剤
JP2009137982A (ja) インターロイキン−18誘導剤
RU2230113C1 (ru) Способ получения пробиотического бактериального препарата, содержащего структурные компоненты микробной клетки
KR20090115860A (ko) 면역 조절제
CN102753190B (zh) 血中尿酸值降低剂
JP2006213688A (ja) Nk活性増強剤
WO2025220685A1 (ja) 免疫賦活用組成物及び免疫賦活方法
WO2025018384A1 (ja) 新規乳酸菌、新規乳酸菌を含む組成物及びその製造方法
Meena et al. Effect of Lactobacillus helveticus and Dahi on β-Glucuronidase and β-Galactosidase Enzyme Activities in Mice against Infection of Salmonella enteritidis
TWI343260B (en) Novel antihypertensive peptide and use thereof
Коростелева Korosteleva MM

Legal Events

Date Code Title Description
FD9A Lapse of provisional protection due to non-payment of fees