JP2000515165A

JP2000515165A - ホスファターゼ阻害剤およびその使用方法

Info

Publication number: JP2000515165A
Application number: JP10509128A
Authority: JP
Inventors: ラゾ，ジョン，エス．; ライス，ロバート，エル．; クニンガム，エイプリル; ワイプ，ピーター
Original assignee: University of Pittsburgh
Current assignee: University of Pittsburgh
Priority date: 1996-07-30
Filing date: 1997-07-30
Publication date: 2000-11-14
Anticipated expiration: 2017-07-30
Also published as: EP0959884A4; US5925660A; JP3268782B2; IL128217A0; WO1998004257A1; US5856506A; CA2261793A1; AU3820597A; US6040323A; US5700821A; AR008120A1; EP0959884A1; AU715546B2

Abstract

(57)【要約】本発明は式Ｉを有する化合物に関し、式中R、R'およびR'''は同一でも異なっていてもよく、好ましくは疎水性基であり、Zは１または２個の２価セグメントを表し、そしてYはHであるか、またはZが２個の２価セグメントを表す場合はYは存在しない。R''はR、R'およびR'''と同一でも異なっていてもよく、Zが２個の２価セグメントを表す場合はR''は存在しない。本発明はさらに、式Ｉの化合物の製造方法を提供する。本化合物はプロテインホスファターゼ（例えば、PP1、PP2A、PP3、CDC25A、CDC25BおよびCDC25C）の阻害剤として有用である。本発明はさらに、プロテインホスファターゼの阻害方法、細胞増殖の抑制方法、および本化合物を含有する医薬組成物に関する。

Description

【発明の詳細な説明】ホスファターゼ阻害剤およびその使用方法本出願は、1996年７月30日に出願された米国特許出願第08/688,530号の一部継続出願であり、それに基づく優先権を主張するものである。キナーゼとホスファターゼによるタンパク質リン酸化の調節は、シグナル伝達、細胞接着、遺伝子転写、細胞増殖を含めて、多くの真核細胞機能を制御している。したがって、キナーゼ、ホスファターゼおよびそれらの阻害剤を同定し特性決定することにより、さまざまな細胞機能の医薬による調節が可能となる。本発明はプロテインホスファターゼの阻害剤、並びに前記阻害剤を製造し使用する方法を提供する。本発明の化合物は例えば細胞増殖の抑制剤として有用である。発明の背景シグナル伝達、細胞接着、遺伝子転写、ＲＮＡスプライシング、アポトーシス、細胞増殖をはじめとする多くの真核細胞機能はタンパク質のリン酸化により制御されている。タンパク質のリン酸化はキナーゼとホスファターゼとの動的関係により調節される。合成化学において注目に値する研究はプロテインキナーゼに集中してきた。しかしながら、プロテインホスファターゼの多数の調節機能に関する最近の生物学的証拠により、更なるホスファターゼ研究が注目を集めるようになった。プロテインホスファターゼは小分子阻害および薬理学的介入のためのユニークで興味を引く標的である。真核生物のポリペプチドやタンパク質中のアミノ酸のリン酸誘導体は大部分がセリン、トレオニンおよびチロシン残基に見られる。真核生物のプロテインホスファターゼは基本的に３つのタイプが規定されており、すなわち、セリン／トレオニンプロテインホスファターゼ(PSTPアーゼ)、チロシンプロテインホスファターゼ(PTPアーゼ)、および二重特異性ホスファターゼ(DSPアーゼ)である。DSPアーゼは同一のポリペプチド基質上のチロシン残基とトレオニン残基を脱リン酸化する。セリン／トレオニンプロテインホスファターゼ(PSTPアーゼ)は基質特異性、金属イオン依存性および阻害に対する感受性によりサブファミリー(PP1，PP2A， PP2B，PP2CおよびPP3)にさらに類別される。このタイプの酵素はＤＮＡクローニングによって少なくとも40種類がこれまでに同定されている。セリン／トレオニンホスファターゼの強力な阻害剤が、インヒビター１、インヒビター２、DARPP- 32およびNIPP-1と称するタンパク質を含めて、同定されており、これらは例えば Honkanenら，Protein Kinase C，Kuo編，Oxford Univ．Press，Oxford，1994，p .305中に載っている。さらに、数種類の毒素（大部分は海洋生物由来）がセリン／トレオニンホスファターゼの強力な阻害剤として同定されている。天然物阻害剤は図１(a)および１(b)に示してあり、例えばFujikiら（1993）Gazz．Chim．It al．123:309に記述されている。数種の海洋渦鞭毛虫により産生されるポリエーテル脂肪酸であるオカダ酸は、セリン／トレオニンホスファターゼのサブタイプPPI1，PP2AおよびPP3の触媒サブユニットを可逆的に阻害する。しかし、オカダ酸は細胞膜に速やかに浸透せず、細胞内に徐々に蓄積して、この化合物の細胞内濃度は制御できなくなる。さらに、オカダ酸は化学的に非常に不安定である。より安定していて、いくつかの細胞型に良好に浸透し、より強力で、PSTPアーゼの種々のイソタイプに対して選択性を示す他の天然物阻害剤も同定されている。カリクリン(Calyculin)Ａは海綿Discodermia calyxの細胞毒成分である。これはPP1，PP2AおよびPP3に対してきわめて高い親和性を有し、約0.3nMの阻害濃度₅ ₀ （以後「ＩＣ₅₀」という）を有する（ＩＣ₅₀は未処理の対照調製物と比べて50 ％の阻害を引き起こす濃度を表す）。ミクロシスチン(microcystin)は一般構造：シクロ[D-Ala-X-D-erythro-b-メチル-iso-Asp-Y-Adda-D-iso-Glu-N-メチルデヒドロ-Ala]を有する強力な環状ヘプタ-およびペンタペプチド毒素であり、ここでXおよびYは変化しうるL-アミノ酸である。ミクロシスチンはin vivoにおいて腫瘍を進行させることが知られているが、肝細胞を除くほとんどの細胞にin vit roで不浸透性である。ノジュラリン(nodularin)系の化合物はPP1およびPP3に対してそれぞれ約２nMおよび約１nMのＩＣ₅₀を示す。ニューギニア海綿から最近単離されたモツポリン(Motuporin)はより一層強力であり、PP1に対して１nM未満のＩＣ₅₀を示す。タウトマイシン(Tautomycin)は陸生のストレプトミセス株により産生され、PP1，PP2AおよびPP3を無差別的に阻害して15nM範囲のＩＣ₅₀ を示す。残りの天然物阻害剤であるチルシフェラール-23-アセテート(thyrsif eral-23-acetate)およびカンタリジン(cantharidine)はやや選択的であるが、PP 2Aの弱い（0.16〜10μＭのＩＣ₅₀）阻害剤である。天然のセリン／トレオニンホスファターゼ阻害剤の場合は高い毒性、特に肝毒性が通常見られる。この高毒性はもともと非特異的ホスファターゼ活性に関係しているようであり、しばしば実施可能な薬理学的研究の範囲を狭めてしまう(Hon kanen（1994）Toxicon 32:339)。さらに、天然源から得られる化合物の化学的多様性(chemical complexity)は限られている。したがって、当技術分野では天然物の化学的複雑性を多様化し、かつ生化学的および薬理学的作用を最適化する必要性が存在している。しかしながら、天然のセリン／トレオニンホスファターゼ阻害剤に関しては、限られた構造−活性関係（以後「ＳＡＲ」という）の研究しか報告されていない。例えば、オカダ酸のＳＡＲ研究からは、カルボキシル基と４個のヒドロキシル基が活性にとって重要であることが示された(Nishiwkiら（1990）Carcinogenesi s 11:1837;Takaiら（1992）Biochem J．284:539;Sasakiら（1994）Biochem J．2 88:259)。天然ミクロシスチンの限定されたＳＡＲ研究がRinehartら（1994）J．Appl．P hycol．6:159により行われた。アルギニンをアラニンで置換するとホスファターゼ阻害効力がほとんどなくなるが、相対的な細胞毒性は相違することがわかった。デヒドロアミノ酸残基とN-メチル置換基も重要でないことが見いだされた。グルタミン酸残基のエステル化は不活性な化合物をもたらし、(6Z)Adda異性体は不活性であった。こうしたことはグルタミン酸単位とAdda残基の全体的な形状の重要性を示唆している。しかし、Adda単位のいくつかの変更、例えばO-ジメチルおよびO-ジメチル-O-アセチル類似体、は生物活性に対してほとんど影響を及ぼさなかった。ノジュラリン系の一般的ＳＡＲはミクロシスチンに類似しているようだが、試験には少数の化合物しか入手可能でない。カリクリンＡ、タウトマイシンまたはチルシフェリルアセテートに関するＳＡＲ研究はこれまで報告されていない。 DSPアーゼのクラスのホスファターゼが最近定義されて、そのメンバーは細胞周期の制御およびシグナル伝達の重要な調節物質として浮上してきた。最初に記述されたDSPアーゼであるVH1は、Guanら（1992）Proc．Natl．Acad．Sci．USA 8 9:12175に記載されるように、ワクシニアウイルスのH1オープンリーディングフレームに一致する。DSPアーゼのクラスの他のメンバーも同定され、これらは一般的に２つの基質モチーフ、すなわちVH1タイプとCDC25タイプに入る。哺乳動物細胞は少なくとも３種類のCDC25相同体(CDC25A，CDC25B，CDC25C)を含む。CDC25 ホスファターゼは細胞周期の進行の正の調節物質であり、Hunterら（1994）Cell :573に記載されている。さらに、CDC25ホスファターゼの過剰発現と癌遺伝子の形質転換の間には、特にヒト乳癌において、強い関連性がある(Galaktinovら（1 995）Science 269:1575)。天然源からは抗DSPアーゼ活性をもつ化合物が４種類単離されている。２つのベンゾキノイド抗腫瘍性抗生物質であるドナシンA1およびドナシンB1（図１(a)参照）は、それぞれ141および64μＭのＩＣ₅₀で、非競合的にCDC25B DSPアーゼ活性を阻害すると報告された(Horiguchiら（1994）Bioche m．Pharmacol．48:2139)。また、ダイシドリド(dysidolide)はCDC25Aによるp-ニトロフェノールホスフェートの脱リン酸化を9.4μＭのＩＣ₅₀で阻害することが報告された（図１(a)参照）。最近、ストレプトミセス分離株RK-682は二重特異性ホスファターゼＶＨＲの阻害剤であることが示された。そのＩＣ₅₀は１μＭであった。しかし、容易に合成でき、比較的分子量の低いDSPアーゼの強力な阻害剤は全く知られていない。その上、DSPアーゼを選択的に阻害するものも知られていない。ほとんど全ての形のヒト腫瘍形成では細胞周期の制御が改変されているので、細胞周期の制御におけるホスファターゼの役割は、これらの分子を薬学的介入のための魅力的な標的にしている。異常な細胞活性を妨げるホスファターゼ阻害剤の能力は実証済みである。例えば、天然のPSTPアーゼ阻害剤であるオカダ酸は、骨髄性白血病細胞において(Ishidaら（1992）J．Cell．Physiol．150:484)、また、ラット肝細胞、ラット下垂体腺癌細胞、ヒト乳癌細胞およびヒト神経芽細胞腫細胞において(Boeら（1991）Exp．Cell Res．195:237)、アポトーシスを誘導することが示された。かくして、有用な治療薬を同定するためにこのファミリーの酵素の選択的モジュレーターを設計し合成するという重大なニーズが存在する。発明の概要本発明は、式Ｉを有する化合物を提供し、式中、R，R'およびR'''は同一でも異なっていてもよく、好ましくは疎水性基である。Zは式Ｉに示す２個の中心窒素原子に結合された１個または２個の２価セグメントを表す。Zが１個の２価セグメントを表すとき、YはHである。Zが２個の２価セグメントを表すとき、Yは存在しない。R''は、Zが２個の２価セグメントを表すとき存在しない。Zが１個の２価セグメントを表すとき、R''はR，R'およびR'''と同一でも異なっていてもよく、好ましくは疎水性基である。別の実施態様において、本発明は、式Ｉを有する化合物の合成方法を提供する。この合成方法は、グルタメートを固相支持体にカップリングさせ、疎水性残基 R'''COX（ここでXは離脱基である）を添加し、式-NYZNH(R'')を有するジアミンを添加し、式II：（式中、RおよびR'は同一でも異なっていてもよく、好ましくは疎水性基である）を有するオキサゾールカルボン酸を添加し、そして得られた化合物を固相支持体から開裂する、ことを含んでなる。本発明はさらに、ホスファターゼを阻害するのに有効な量の式Ｉの化合物とプロテインホスファターゼとを、プロテインホスファターゼの活性を阻害する条件下で接触させることを含んでなる、プロテインホスファターゼの阻害方法を提供する。本発明はまた、細胞増殖を抑制する量の式Ｉの化合物を細胞に導入することを含んでなる、細胞増殖の抑制方法を提供する。好ましい実施態様において、細胞はヒト乳癌細胞またはマウスSCCVII/SF頭部頸部癌(head and neck cancer)細胞である。式Ｉの化合物および製薬上許容される担体を含有する医薬組成物も本発明により提供される。図面の簡単な説明図１(a)は、セリン／トレオニンホスファターゼの天然に存在する阻害剤の式を示す。図１(b)は、式Ｉ（ここでYはH、Zは２価エチレンセグメントである）の化合物の構造と、天然物ミクロシスチン-LRおよびカリクリンＡの構造との比較を示す。図２は、式Ｉの化合物の代表的な合成スキームを示す。図３は、モノ保護ジアミンへの代表的な合成経路スキームを示す。図４(a)は、N-ベンゾイルトレオニンからの複素環部分の合成スキームを示す。図４(b)は、複素環部分の別の合成スキームを示す。図５は、モデル化合物IIの液相合成スキームを示す。図６は、化合物1dによるPP2A活性の阻害を示すグラフである。PP2Aの触媒サブユニットをビヒクルのみ（対照）、カリクリンＡ（10nM）または化合物1d(100μ Ｍ)とインキュベートし、基質フルオレセインジホスフェートの脱リン酸化を分光光度分析により測定した。２回の独立した実験で得られた結果の平均を示す。図７は、CDC25AおよびCDC25B活性を阻害する化合物1(a)-(r)の能力を示すグラフである。結果は対照(100%)に対するパーセントで表してある。図８は、CDC25Aを阻害する化合物1fの能力の用量-応答曲線を示す。図９は、ヒトMDA-MB-231乳癌細胞に対する化合物1fの抗増殖作用を示すグラフである。図10A-Dは、フローサイトメトリーで測定した、化合物1fで処理した後のヒト乳癌細胞の細胞周期分布を示す。図10Aはビヒクルのみで処理したMDA-MB-231細胞のフローサイトメトリー分析を示す。図10Bは88μＭの化合物1fで処理した48 時間後のフローサイトメトリー分析を示す。蛍光チャンネルはＤＮＡ含量の指数である細胞内ヨウ化プロピジウム濃度を測定する。水平の棒は細胞周期分析を可能にするゲーティング位置(gating position)である。図10Cは88μＭの化合物1f による連続処理の48時間後のMDA-MB-231細胞周期分布を示し、これは一実験の結果である。白棒は対照細胞であり、黒棒は化合物1fで処理した細胞である。図10 Dは88μＭの化合物1fによる連続処理の72時間後の細胞周期分布を示す。３回の独立した測定から平均値を得た。白棒は対照細胞であり、黒棒は88μＭの化合物 1fで処理した細胞である。平均の標準誤差を表示する。図11は、本明細書に記載するコンビナトリアル法（Zが種々の２価セグメントを表す）で合成した式Ｉの化合物の一般式を示す。図12(a)-12(n)は、種々のZ置換を有する14の式Ｉの化合物の特定の構造式を示す。これらの化合物は本明細書に記載するコンビナトリアル法で合成した。図13は、表Ｉからの化合物1(a)-1(r)、化合物SC-ααδ9およびSC-αα69、および図12(a)-12(n)に示した化合物のPTP1B阻害能を示すグラフである。結果を阻害パーセントとして表す。図14は、図12(a)-12(n)に示した化合物、および化合物SC-ααδ9およびSC-α １δ9(すなわち、液相法で再合成された、表Ｉのそれぞれ化合物1fおよび1c)がC DC25C，PP-1，PP-2AおよびPTP1Bの活性を阻害する能力を示すグラフである。潜在的阻害剤を100μＭで試験した。図15(a)-15(d)は、それぞれSC-αα69およびSC-ααδ9である化合物1eおよび 1f、およびそれらの溶液化学類似体がCDC25AおよびCDC25Bを阻害する能力の濃度依存性を示すグラフである。図16は、マウスSCCVII/SF細胞に対する化合物1a-1rの細胞毒性を示すグラフである。指数的に増殖しているSCCVII細胞を、10倍異なる２つの濃度の各薬物に連続して48時間さらした。平均薬物濃度は80μＭ（黒棒）と800μＭ（白棒）とした。実施例IIIに記載したアッセイにより全細胞数を測定した。それぞれの数値は４回の反復実験の３つの測定値の平均である。図17は、SC-αα69（すなわち、溶液化学法により製造した表Ｉの化合物1e）およびSC-ααδ9（すなわち、溶液化学法により製造した表Ｉの化合物1f）に対する培養下のマウスSCCVII/SF細胞の濃度依存的細胞毒性応答を示すグラフである。図18は、化合物SC-αα69およびSC-ααδ9についてのSCCVII/SF腫瘍切除クローン原性アッセイの結果を示すグラフである。図19は、マウス胚性繊維芽細胞（以後「MEF」という）およびMEF/SV40細胞におけるSV-40ラージＴ抗原（パネルＡ）、CDC25B（パネルＢ）およびCDC25A（パネルＣ）発現のウエスタンブロットを示す。実施例XIIに記載するようにMEFおよびSV-40/MEF細胞から細胞溶解物を単離し、分離し、SV-40ラージＴ抗原（Ab-2， Oncogene）またはCDC25B（C-20，Santa Cruz）に対する抗体を用いてイムノブロットした。示したデータは３回の独立した実験を表す。図20(a)-20(c)は、オカダ酸、バナデートまたは化合物1(f)に対するMEFおよび MEF/SV40細胞の濃度依存的細胞毒性応答を表す。96ウェルプレートにMEFおよびM EF/SV40細胞をまいた。24時間後に種々の濃度のオカダ酸（パネルＡ）、バナデート（パネルＢ）またはSC-ααδ9を加えた。実施例XIIに記載するマイクロタイトレーションアッセイを用いて48時間後に細胞の生存度を調べた。それぞれの数値は４回反復して行った３〜４の独立した実験の平均である。バーはSEMを表す。図21は、化合物SC-ααδ9の濃度に対するコロニー形成率のグラフを示す。ME FおよびMEF/SV40細胞を３回反復して６ウェルプレートにまき、実施例XIIに記載するようにビヒクルまたは阻害剤で処理した。薬物に連続して10〜12日間さらした後、コロニーをクリスタルバイオレットで染色してカウントした。データは５つの独立した実験を表す。このデータは、化合物SC-ααδ9が形質転換細胞のクローン原性増殖を選択的に抑制したことを示す。発明の詳細な説明本発明は、次式Ｉを有する化合物を提供し、式中、R，R'およびR'''は同一でも異なっていてもよく、好ましくは疎水性基である。Zは式Ｉに示す２個の中心窒素原子に結合された１または２個の２価セグメントを表す。２個の中心窒素原子間のZを通る最短経路は好ましくは10原子未満である。Zが１個の２価セグメントを表すとき、YはHである。Zが２個の２価セグメントを表すとき、Yは存在しない。R''は、Zが２個の２価セグメントを表すときは存在しない。Zが１個の２価セグメントを表すとき、R''はR，R'およびR'' 'と同一でも異なっていてもよく、好ましくは疎水性基である。式Ｉに従う好ましい化合物では、YがHであり、Zがアルキレンセグメント、アルケニレンセグメント、アルキニレンセグメント、シクロアルキレンセグメント、芳香族炭化水素セグメント、およびこれらの２価セグメントのヘテロ原子置換体よりなる群から選択され、そしてR，R'，R''およびR'''が独立してH、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、フェニル(Ph)、オキセタニル、アゼチジニル、フラニル、ピロール、インドリル、オキサゾリル、イソキサゾリル、イミダゾリル、ピラゾリル、トリアゾリル、テトラゾリル、ピラニル、ピリジル、ピリドニル、ピペリジル、ピペラジニル、キノリル、アゼピニル、およびジアゼピニルである。より好ましくは、式Ｉの化合物において、YはHであり、Zはアルキレンセグメント、アルケニレンセグメント、アルキリデニレンセグメント、およびアルキニレン、シクロアルキレンセグメント、芳香族炭化水素セグメント、およびこれらの２価セグメントのヘテロ原子置換体よりなる群から選択され、RおよびR'''は独立してPh、CH₃、n-C₅H₁₁、n-C₇H₁₅、n-C₉H₁₉、PhCHCH、PhCH₂CH₂、Ph(CH₂)₂CC (CH₃)、(p-MeO)Ph、(p-MeNHCO)Ph、PhCHC(CH₃)CH₂CH₂、Ph(CH₂)₂CHCHCHC(CH₃)、 Ph(CH₂)₂CHCHCHCH、Ph(CH₂)₃CHC(CH₃)CHCH、C₆H₁₃CH(CH₃)CHC(CH₃)CHCHまたはC₄ H₉CH(CH₃)CHC(CH₃)CHC(CH₃)であり、R'はH、CH₃またはPhであり、そしてR''はH 、CH₃、ベンジル(Bn)、CH₂CH(CH₃)、n-C₆H₁₃、CH₂CH₂NHBn、CH₂CH₂Phまたは(CH₂ )₃Phである。最も好ましくは、YはHであり、Zは２価エチレンセグメント（すなわち、-CH₂C H₂-）であり、そしてRはPh、R'はPh、R''はBnまたはCH₃、R'''はn-C₉H₁₉である。別の実施態様において、Yは存在せず、R''も存在せず、Zは２個の２価セグメントであり、これらは一緒になって式Ｉに示す２個の中心窒素原子を取り込んだ縮合ピペリジン環を形成するのに必要な原子を構成し、そしてR、R'およびR''' は独立してH、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、フェニル( Ph)、オキセタニル、アゼチジニル、フラニル、ピロール、インドリル、オキサゾリル、イソキサゾリル、イミダゾリル、ピラゾリル、トリアゾリル、テトラゾリル、ピラニル、ピリジル、ピリドニル、ピペリジル、ピペラジニル、キノリル、アゼピニル、およびジアゼピニルである。本発明の化合物は固相コンビナトリアルケミストリー法により合成することができる。本発明は、各化合物の構造が知られている単一ビーズのコンビナトリアル戦略により本発明の化合物を合成する方法を提供する。したがって、本方法は従来の他のコンビナトリアル合成にもともと存在する難点、例えば合成した化合物を同定するための複雑なタギング(tagging)スキームまたは徹底的な分析技術の必要性、を排除できる。本発明化合物の合成方法は、ジ保護グルタメート成分を固相支持体にカップリングさせ、グルタメートのアミノ末端を脱保護し、疎水性残基R'''COX（ここで Xはクロリド、無水物、活性エステル、ペンタフルオロフェニル、ホスフェート誘導体またはホスホネート誘導体などの離脱基である）を添加し、グルタメートのカルボキシ末端を脱保護し、式A-NYZNH(R'')（ここでAは保護基である）を有する保護ジアミンを添加し、このジアミンのアミノ末端を脱保護し、式II：を有するオキサゾールカルボン酸を添加し、そして得られた化合物を固相支持体から開裂する、ことを含んでなる。大規模で保護グルタメートを固相支持体にカップリングさせ、伸長中の化合物のバッチをそれぞれの工程で（例えば、各保護基の除去後に）異なる容器に分配することによって、R、R'、R''およびR'''基を変えることで各反応中に多数の化合物を合成することができる。代表的な合成スキームを図２に示す。コンビナトリアル合成用の固相支持体は当業者に公知である。本発明の好ましい実施態様において、固相支持体はポリスチレン樹脂である。より好ましい実施態様では、固相支持体はWang（1973）J．Amer．Chem．Soc．95:1328に記載されたポリスチレン樹脂で、これはWang樹脂としても知られている。Wang樹脂は市販されており、例えばAdvanced Chemtechから入手可能である。その他の適当な固相支持体としては、ポリエチレングリコールーポリスチレングラフトまたはRink 樹脂がある。ジ保護グルタメートは当技術分野で公知の方法により製造しうる。当業者であれば、グルタメートのアミノ末端とカルボキシ末端に適した保護基について熟知しており、それらは例えばGreeneら，Protective groups in organic synthesis ，第２版，Wiley，New York，1991に記述されている。好ましい実施態様において、アミノ末端保護基はFmocであり、カルボキシ末端保護基はγ-アリルエステル基である。この好ましいジ保護グルタメートを合成するには、Belshawら（1990）S yn．Comm．20:3157に記載のようにカルボキシル官能基をアリルエステルで保護し、その後Fmoc-Clで処理する。Belshawらの方法によれば、無水アリルアルコール中のL-グルタミン酸の懸濁液にクロロトリメチルシランをN₂下で添加し、18時間攪拌し、次にエチルエーテルを添加する。ジ保護グルタメートは、所望の支持体に適した当業者に公知の方法で固相支持体にカップリングされる。好ましい実施態様では、大規模においてジ保護グルタメートをWang樹脂に1-エチル-3-[3-(ジメチルアミノ)プロピル]-カルボジイミド塩酸塩(EDC1)によりカップリングさせて、ジ保護グルタメートにカップリングした固相ビーズの供給材料を得る。その他の適当なカップリング法は例えばBodans zky，Principles of peptide synthesis，第２版，Springer，Berlin，1993に記述されており、DCC、HOBt、BOC試薬などを含む。グルタメートのアミノ末端は保護基に適した方法で脱保護される。例えば、Fm ocのような塩基に不安定な基はピペリジンとテトラヒドロフラン(THF)で処理することで除去しうる。この時点で樹脂を多数の別々の容器に分配し、異なるR''' 置換基をもつ化合物を製造できるようにする。例えば、定常的なバブリングを維持するための不活性ガス入口と吸引アダプターを設置した多数のフィルターに樹脂を分配する。溶媒の添加後、各フラスコに疎水性残基R'''COXを添加する。こうして異なるアミド誘導体が得られ、その数は樹脂を分配した容器の数と異なる R'''置換基の数で決まる。各容器に異なるR'''置換基をもつR'''COXを添加することにより、最終化合物を容易に同定することができる。R'''CO₂HまたはR'''CO Xは標準的な溶液合成で製造できるか、市販品として入手できる。固相支持体を濾過してすすいだ後、カルボキシ末端保護基を保護基に適した方法で除去する。例えば、アリルエステルはDanglesら（1987）J．Org．Chem．52: 4984に記載されるPd(O)化学により除去できる。この時点で樹脂を再度バッチに分け、上記フィルターのような別々の容器に分配して、異なるR''基を含む化合物を製造できるようにする。次に保護ジアミンを適当なカップリング剤と共に添加して、グルタメートの側鎖カルボキシル末端を伸長させる。好ましい実施態様では、ジアミンはエチレンジアミンであり、このジアミンの保護基はN-アリルオキシカルボニル基であって、ジアミンは式Alloc-NHCH₂CH₂NH(R'')を有する。適当なカップリング剤には例えばPyBroP⁶⁰およびCloP⁶¹が含まれる。Alloc-NH CH₂CH₂NH(R'')は、図３に示すように、クロロエチルアミンをカルバモイル化し、続いてヨウ化ナトリウムおよび市販のアミンR''NH₂で処理することにより簡便に製造できる。エチレンジアミン以外の保護ジアミンも同様に製造することができる。得られた化合物を脱保護し、この時点で化合物を再度、異なるRおよびR'置換基の添加のために別々の容器に分配する。式II：（式中、RおよびR'は式Ｉについて先に定義したとおり）を有するオキサゾールカルボン酸とCloPの存在下でカップリングさせ、次に溶媒ですすぐと、固相支持体に結合された本発明化合物が得られる。オキサゾールカルボン酸は、構造R-CO₂ H（ここでRは式Ｉについて先に定義したとおり）を有するカルボン酸およびセリンメチルエステル、トレオニンメチルエステル、およびフェニルセリンメチルエステルから液相で別途製造しうる。Wipfら（1993）J．Org．Chem．58:3604に記載され、図4(a)に示した酸化-シクロ脱水プロトコールとその後のけん化により、所望のカルボン酸セグメントが得られる。中間体オキサゾールエステルはSi O₂によるカラムクロマトグラフィーで精製することができる。 Vorbruggenら（1993）Tetrahedron 49:9353およびWilliamsら（1997）Tetrahe dron 38:331に記載されるプロトコールの変法である別の合成法では、カルボン酸とセリンメチルエステルのワンポット縮合／脱水により50%を超える収率でオキサゾールが得られる。C(5)位置での臭素化およびパラジウム触媒によるカップリングはこれらの成分の様々な置換パターンをもたらす。この合成法は図4(b)に示してある。 50%トリフルオロ酢酸を用いる完全または部分開裂によりカルボキシレートを支持体から解放すると、本発明の化合物が得られる。固相支持体の濾過およびその結果得られる母液の蒸発後に得られる式Ｉの化合物は化学的に純粋で、構造的に十分確定されたものである。本発明によると、式Ｉの化合物はセリン／トレオニンプロテインホスファターゼ阻害能があることが見いだされた。セリン／トレオニンプロテインホスファターゼの阻害は、本明細書では阻害剤化合物の濃度100μＭまたはそれ以下でPP1、 PP2AまたはPP3のうち１種以上の活性を阻害することと定義される。好ましい実施態様では、ホスファターゼの活性が少なくとも10%阻害される。より好ましい実施態様では、ホスファターゼの活性が少なくとも25%阻害され、さらにより好ましくは、少なくとも50%阻害される。PP1、PP2AまたはPP3の阻害は当業者に公知の方法で評価することができる。適当なアッセイは、例えばHonkanenら（1994 ）Toxicon 32:339およびHonkanenら(1990)J．Biol．Chem．265:19401に記述されており、これらの開示内容を参考としてここに組み入れる。簡単に述べると、ホスファターゼ活性を測定するには、ホスホヒストンまたはホスホリラーゼ-aなどの³²P-標識基質から放出される[³²P]を定量する。対照サンプルと比べて本発明化合物の存在下での[³²P]放出の低下は、その本発明化合物がPP1、PP2AまたはPP 3を阻害できることの指標を提供する。別の適当なアッセイでは、プロテインホスファターゼPP2Aの活性を阻害する本発明化合物の能力が評価される。ウシ心筋PP2A(Gibco-BRL，Gaithersburg，MD) の触媒サブユニットの活性は、基質としてフルオレセインジホスフェートを用いて96ウェルのマイクロタイタープレートで次のように測定する。阻害剤をDMSO（ビヒクル対照としても使用）中に懸濁する。25mM Tris，pH8.0，5mM EDTA，33μ ｇ/mL BSA，20μＭフルオレセインジホスフェートおよび100μＭ阻害剤またはDM SO対照を含有するインキュベーション混合物150μＬを調製する。0.2ユニットの PP2Aを添加して反応を開始させ、室温で一夜インキュベートする。生成物から発生する蛍光を分光蛍光分析で、例えばPerseptive Biosystems Cytofluor II（Fr amingham，MA）(励起フィルター485nm;発光フィルター530nm)を用いて測定する。脱リン酸化基質の生成による吸光度の増加率はホスファターゼ活性に比例する。したがって、対照サンプルに対する吸光度の低下は、本化合物がホスファターゼを阻害できることの指標を提供する。本発明の化合物はまた、二重特異性ホスファターゼ、例えばCDC25A、CDC25BおよびCDC25Cを阻害することもできる。ホスファターゼCDC25AおよびCDC25Bは米国特許第5,441,880号に記述されている。組換えGST-CDC25A、GST-CDC25B、GST-CDC 25Cワクシニアヒト関連ホスファターゼ（以後「VHR」という）およびマイトジェン活性化プロテインキナーゼホスファターゼ（以後「MAPKP」という）を単離する方法はBaratteら（1992）Anticancer Res．12:873に記述されており、その開示内容を参考としてここに組み入れる。二重特異性ホスファターゼの阻害は、本明細書では阻害剤化合物の濃度100μＭでCDC25A、CDC25BおよびCDC25Cの活性を阻害することと定義される。好ましい実施態様では、このホスファターゼの活性が少なくとも10%阻害される。より好ましい実施態様では、ホスファターゼの活性が少なくとも25%阻害され、さらにより好ましくは、少なくとも50%阻害される。本発明化合物のホスファターゼ阻害能は、CDC25A、CDC25B、CDC25C、VHRまたはMAPKPが基質を脱リン酸化するその能力に及ぼす本化合物の作用を測定することで確認できる。適当な方法は当業者に公知であり、例えば比色アッセイを含む。好ましいアッセイは米国特許第5,441,880号に記述されており、その開示内容を参考としてここに組み入れる。そこに開示されているように、試験すべき化合物をCDC25A、CDC25BまたはCDC25Cおよび適切なCDC25基質(例えばp-ニトロフェニルホスフェートまたは不活性なサイクリン/cdc2)と混合し、CDC25のホスファターゼ活性を阻害する化合物の能力を評価する。ホスファターゼ活性は公知の手法で評価することができ、例えば光学濃度を測定して、それを阻害剤不含の対照サンプルと比較する。このアッセイは高速比色マイクロタイトレーションプレートアッセイとして行うことができる。適当なアッセイでは、基質として3,6フルオレセインジホスフェートの20μＭ溶液を使用し、約250ngの組換えタンパク質および１mMのDTTと共に室温で60分インキュベートする。蛍光の発生を上記のようにモニターする。本発明の化合物はプロテインホスファターゼの阻害剤として有用である。プロテインホスファターゼの阻害はin vitroおよび細胞内でのタンパク質リン酸化を増加させる(Sassaら（1989）Biochem．Biophys．Res．Comm．159:939;Yatsunami ら（1991）Biochem．Biophys．Res．Commun．177:1165)。したがって、本化合物は、例えばリン酸化されたタンパク質を測定もしくは検出するin vitroアッセイにおいて、またはタンパク質をリン酸化により標識する方法において、タンパク質の脱リン酸化を阻害するために有用である。例えば、タンパク質は検出を容易にするために通常³²Pで標識する。本発明化合物の添加は内因性ホスファターゼによる脱リン酸化を防止するのに有用である。さらに、ホスファターゼはシグナル伝達、細胞接着、遺伝子転写、ＲＮＡスプライシング、アポトーシス、有糸分裂、細胞増殖を含むがこれらに限らない多数の機能をもつことが知られている。それゆえ、プロテインホスファターゼの阻害剤は様々な細胞機能の変更に有用である。特に、本化合物はアポトーシスの誘導物質および細胞増殖の阻害剤として有用である。したがって、本発明は、ホスファターゼを阻害するのに有効な量の式Ｉ：を有する化合物とプロテインホスファターゼとを、プロテインホスファターゼの活性が阻害される条件下で接触させることを含んでなる、プロテインホスファターゼの阻害方法を提供する。置換基Z，Y，R，R'，R''およびR'''は先に定義したとおりである。 R''位置に嵩高い基を有する化合物は優れた阻害剤であると考えられる。嵩高い基の例には、イソブチル、イソプロピル、ベンジル、ネオペンチルなどの置換基が含まれる。好ましい実施態様では、プロテインホスファターゼがセリン／トレオニンホスファターゼである。より好ましい実施態様では、プロテインホスファターゼがPP 1、PP2AまたはPP3である。他の好ましい実施態様では、ホスファターゼがCDC25A 、CDC25B、CDC25C、VHRおよびMAPKPなどを含む二重特異性ホスファターゼである。当業者であれば、プロテインホスファターゼを阻害するのに必要なホスファターゼ阻害剤の量を、阻害剤の存在下および非存在下でホスファターゼ活性を測定することにより簡単に決定しうる。ホスファターゼ活性を測定するには、上記のように基質の脱リン酸化を評価するか、ホスファターゼ活性から生起することが知られているパラメーターを測定する。例えば、本発明の化合物によるホスファターゼ阻害は、本化合物による細胞の処理に応答する細胞増殖の阻害を測定することにより評価しうる。本発明の化合物はまた、抗増殖剤としても有用である。CDC25酵素は細胞周期の進行の正の調節物質である。例えば、CDC25Cは有糸分裂誘導物質cdc2を脱リン酸化して活性化することにより有糸分裂に入るように働く。米国特許第5,294,53 8号には、CDC25ホスファターゼによるcdc2の脱リン酸は細胞周期のG2/M転移を開始させるM期促進因子(MPF)を活性化すること、そしてCDC25ホスファターゼ活性の阻害は細胞が有糸分裂に入るのを阻止することが記載されている。さらに、CD C25AおよびCDC25Bは癌遺伝子として作用し、しかもCDC25Bは原発ヒト乳癌の３分の１において過剰発現されており(Galaktionovら（1995）Science 269:1575)、その他のヒト腫瘍細胞型およびウイルスで形質転換された細胞でも上昇している (Nagataら（1991）New Biologist 3:959)。また、細胞増殖はサイクリン依存性キナーゼによって調節されており、キナーゼとホスファターゼの双方により厳格に制御されていることも知られている。CDC25の細胞周期調節活性はPP2Aにより制御されている(Hunterら（1994）Cell 79：573)。かくして、PP1またはPP2Aの阻害も細胞周期転移の妨害をもたらす可能性がある。本発明によると、本発明の化合物は、未処理細胞培養物に対して阻害剤処理細胞培養物において細胞の数を減らすことにより細胞増殖を阻止することが実証された。したがって、本発明はさらに、増殖阻止量の式Ｉの化合物を細胞に導入することを含んでなる細胞増殖の阻止方法を提供する。好ましい実施態様において、この化合物は式ＩにおいてZがエチレンセグメント、YがH、RがPh、R'がPh、R' 'がBn、そしてR'''がn-C₉H₁₉であるものである。別の好ましい実施態様では、細胞が腫瘍細胞である。さらに別の好ましい実施態様では、細胞がヒト乳癌細胞である。さらに別の好ましい実施態様では、細胞がマウスSCCVII/SF頭部頸部癌細胞であり、この癌細胞はマウスの腫瘍として急速に増殖し、CDC25A陽性であることがウエスタンブロット分析により示されている。本発明化合物の増殖阻止能は当業者に公知の方法で評価しうる。例えば、増殖中の細胞を本発明の化合物と接触させて、細胞数を数える。未処理細胞に対する処理細胞の細胞数の減少が本化合物の増殖阻止能の指標となる。好ましい実施態様では、処理すべき細胞が癌細胞、例えばアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（受託番号HTB-26）から入手可能なCDC25B陽性の乳癌細胞MDA-MB-231 のような乳癌細胞である。本化合物の抗増殖活性はLazoら（1995）J．Biol．Che m．270:5506に記載されるアッセイで測定することもでき、この文献の開示内容を参考としてここに組み入れる。マイクロタイターをベースとした比色アッセイは、生存細胞による3-[4,5-ジメチルチアゾール-2-イル]-2,5-ジフェニルテトラゾリウムブロミドの減少に基づき、マウス胚性繊維芽細胞およびヒトCDC25B陽性乳癌細胞において多数の化合物の細胞増殖抑制または細胞毒性作用を迅速に評価することを可能にする。簡単に述べると、指数増殖期のCDC25B陽性MDA-MB-231細胞を０〜100μＭの本発明化合物で連続的に処理し、3-[4,5-ジメチルチアゾール -2-イル]-2,5-ジフェニルテトラゾリウムブロミドを減少させる細胞の能力を評価することにより72時間後に細胞増殖を比色測定する。また、本発明化合物の抗増殖能はin vivo腫瘍縮小アッセイで測定することもできる。胸腺欠損(nu/nu)および重症複合型免疫不全(SCID)マウスが抗腫瘍活性の十分に確認されたモデルを提供する。マウスにリン酸緩衝溶液(PBS)100μ中の 10⁶個のMDA-MB-231細胞を皮下(s.c.)注射する。腫瘍が触知できる大きさ(100mm² )になったら、マウスを0、0.1、1、10または30mg/kgの本発明化合物で１日１回、５日間経口的(p.o.)、腹腔内(i.p.)または皮下(s.c.)処理する。腫瘍塊をvern ierカリパスで測定し、Janiら（1992）Cancer Res．52:2931に記載されるように計算する。未処理マウスに対する処理マウスの腫瘍塊の縮小は本発明化合物の抗増殖活性を示すものである。別のin vivo腫瘍アッセイでは、確立された皮下腫瘍（移植後14日）を有するC3/HeJマウスを、Fuら（1984）Int．Rad ical Oncol．Biol．Phys．10:1473に記載されるクローン原性生存アッセイに従って本発明の化合物で処理する。投与量および投与計画を最適にするため薬理学的原理を採用しうるが、これは当業者の知るところである。本発明はさらに、本発明の化合物および製薬上許容される担体または希釈剤を含有する医薬組成物を提供する。本明細書中で用いる「製薬上許容される担体または希釈剤」とは、活性成分と不適合性でない溶媒、分散媒、抗細菌剤および抗真菌剤、マイクロカプセル、リポソーム、カチオン性脂質担体、等張剤、吸収遅延剤などのいずれかまたは全部を意味する。医薬として活性な物質用の上記媒体および剤の使用は当技術分野で周知である。補助活性成分を本発明の組成物に配合しても、本発明の方法で使用してもよい。医薬組成物の処方は一般に当技術分野で公知であり、Remington'sPharmaceuti cal Sciences，第17版，Mack Publishing Co.，Easton，Paを参考にすることができる。本発明化合物の製剤は製造および保存の条件下で安定でなければならず、また、細菌や真菌などの微生物の汚染作用から防御されねばならない。微生物汚染からの防御は種々の抗細菌剤および抗真菌剤の添加により達成しうる。投与に適する本発明化合物の医薬形態は、無菌の水性溶液または分散液、および無菌の注射用溶液または分散液の用時調製のための無菌粉末剤を含む。典型的な担体としては、例えば、水、緩衝水溶液（すなわち、生物適合性緩衝液）、エタノール、ポリオール（例：グリセロール、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、これらの適当な混合物）、界面活性剤および植物油を含む溶媒または分散媒が挙げられる。糖や塩化ナトリウムなどの等張剤を組成物に配合することもできる。本発明の化合物は、適当な製薬上許容される担体と共に有効量で簡便かつ効果的に投与するために、好ましくは投薬単位剤形で、製剤化される。本明細書で用いる投薬単位剤形とは、処置すべき被験者のための単一投薬として適した、物理的に分離している単位をさし、各単位は必要な製薬上の担体と共に所望の治療効果を生ずるように計算された所定量の本発明化合物を含有する。本組成物は製剤と適合しうる方法で、治療的に有効な量で、医学的に許容されるやり方で投与される。可能な投与経路として、経口および非経口投与、例えば血管内、静脈内、動脈内、皮下、筋肉内、腫瘍内、腹腔内、心室内、硬膜内投与などがある。本組成物を組織表面に直接適用することも可能である。また、例えばデポー注射または浸食可能なインプラントによる、持続放出投与も含まれる。本発明は以下の特定の実施例によりさらに例示されるが、これらの実施例はいかなる場合も本発明の範囲を制限するものではない。実施例Ｉ式Ｉ（図２）の化合物のコンビナトリアル合成方法を、モデル化合物II（すなわち表Ｉの化合物１（ａ））の溶液相合成を最適化することによって開発した。モデル化合物IIの溶液相合成は図５に示されており、下記のようにして行われるガラス器具はすべて使用前にオーブン内で150℃にて乾燥した。ＴＨＦおよびジオキサンを窒素雰囲気下でNa／ベンゾフェノン上で蒸留することによって乾燥した。乾燥CH₂Cl₂、ＤＭＦおよびCH₃CNはCaH₂から蒸留することによって得られた。 L-グルタミン酸（３）を、下記のようにしてアリルアルコールおよびクロロトリメチルシランを用いてγ−アリルエステルとして収率62％で保護することにより、2-アミノ-ペンタン二酸5-アリルエスエル４を得た： 2.5ｇ（16.9mmol）のL-グルタミン酸（３）を40mLの乾燥アリルアルコールに加えた懸濁液に、攪拌しながら、5.4mL（42.3mmol）のクロロトリメチルシランを滴下した。この懸濁液を22℃で18時間攪拌し、300mLのEt₂Oに注いだ。得られた白色固体を濾取し、Et₂Oで洗浄し、減圧乾燥して3.80ｇ（62％）のエステル４を得た。下記のようにしてFmocで処理することにより2-(9-H-フルオレン-9-イルメトキシカルボニルアミノ)-ペンタン二酸5-アリルエステル５を得た。20mLのジオキサンに1.5g（6.7mmol）、のエステル４を加えた。得られた懸濁液を16.8mmolの炭酸ナトリウム（10％溶液17.7mL）で０℃にて処理し、５分間攪拌し、ジオキサン 10 mLに溶解した1.74ｇ（6.7mmol）のFmoc-Clで処理した。反応混合物を22℃まで加温して、３時間攪拌し、50mLのH₂Oに注いでEt₂O（2×25mL）で抽出した。水相を０℃に冷却し、濃HClでpH１にしてEtOAc（３×25mL）で抽出した。得られた有機相を乾燥し（Na₂SO₄）、減圧濃縮して粘性油として５を2.72g（99％）得た。 C₂₃H₂₃NO₆に対して計算したＨＲＭＳ（E1）：409.1525、実測値：409.1501。 Fmoc-Clで処理した後、1-エチル-3-[3-(ジメチルアミノ)プロピル]-カルボジイミド塩酸塩（ＥＤＣｌ）を用いてベンジルアルコールにカップリングすることによって2-(9H-フルオレン-9-イルメトキシカルボニルアミノ)-ペンタン二酸5- アリルエステル1-ベンジルエステル６を収率82％で得た。1.5g（36.6mmol）の５を５mLのCH₂Cl₂に溶かした溶液に0.42mL（40.3mmol）のベンジルアルコール、0. 912ｇ（47.6mmol）のＥＤＣｌおよび45mg（3.66mmol）のジメチルアミノピリジン（ＤＭＡＰ）を加えた。反応混合物を22℃で６時間攪拌し、20mLのCH₂Cl₂で希釈し、H₂O（１×15mL）、0.1ＭのHCl（２×15mL）およびブライン（２×10mL）で抽出した。有機相を乾燥し（Na₂SO₄）、減圧濃縮し、SiO₂（ヘキサン／EtOAc 、５：１）のクロマトグラフィーにかけて６を白色個体として1.83ｇ（82％）得た：その後、下記のようにして、Fmoc保護基をＤＭＡＰに曝すことによって除去し、遊離アミンを塩化デカノイルを用いてin situでアシル化して2-デカノイルアミノ-ペンタン二酸5-アリルエステル1-ベンジルエステル（７）を収率63％で得た。１ｇ（2.0mmol）の６を10mLのCH₂Cl₂に加えた懸濁液に、１ｇ（8.2mmol）のＤＭＡＰを加えた。反応混合物を22℃で24時間攪拌し、0.62mL（3.0mmol）の塩化デカノイルで処理し、22℃で２時間攪拌して、飽和重炭酸ナトリウム溶液（２ ×10mL）で抽出した。有機相を乾燥し（NaSO₄）、蒸発乾固し、残留物をSiO₂（ヘキサン／EtOAc、５：１）のクロマトグラフィーにかけて７を粘性油として548 mg（63％）得た：C₂₅H₃₇NO₅に対して計算したＨＲＭＳ（E1）m/z：431.2672、実測値：431.2673。アリルエステルのPd(O)−触媒脱保護を下記のようにして行って2-デカノイルアミノ−ペンタン二酸1-ベンジルエステル（８）を得た。752mg（1.74mmol）の2 -デカノイルアミノ−ペンタン二酸７を10mLのCH₂Cl₂に溶かした溶液に100mg（0. 087mmol）のテトラキストリフェニルホスフィンPd(O)を加えた後、0.52mL（1.9m mol）の水素化トリブチルスズを加えた。15分後、反応混合物を10mLの10％HCl溶液でクエンチした。水相を15mLのCH₂Cl₂で再抽出し、有機相を乾燥し（Na₂SO₄）、減圧濃縮し、SiO₂（ヘキサン／EtOAc、９：１）のクロマトグラフィーにかけて８を濃厚油として545mg（79.9％）得た。 C₂₂H₃₃NO₅に対して計算したＨＲＭＳ（E1）m/z：391.2358、実測値：391.2350。エチレンジアミン（９）にカップリングさせることにより、4-[(2-アリルオキシカルボニルアミノ−エチル)-メチル−カルバモイル]-2-デカノイルアミノ酪酸ベンジルエステル（１０）を得た。526mg（1.3mmol）の８を10mLのCH₂Cl₂に溶かした溶液に225μＬ（1.61mmol）のトリエチルアミンおよび320mg（2.0mmol）の第二級アミン９を加えた。溶液を22℃で５分間攪拌し、710mg（1.61mmol）のベンゾトリアゾール-1-イルオキシ−トリス（ジメチルアミノ）ホスホニウムヘキサフルオロホスフェート（ＢＯＰ試薬）で処理し、22℃で10分間攪拌し、減圧濃縮し、15mLのEtOAcに溶解し、２ＭのHCl溶液で抽出した。有機相をSiO₂（ヘキサン／EtOAc、１：３）のクロマトグラフィーにかけて１０を透明油として715mg（ 94％）得た： C₂₉H₄₅N₃O₆に対して計算したＨＲＭＳ（E1）m/z：531.3308、実測値：531.3316 。 2-クロロエチルアミン一塩酸塩（１２）のカルバモイル化、フィンケルスタイン(Finkelstein)反応、およびアミノリシスによってモノ保護(monoprotected)エチレンジアミン９を簡単に得た（図３）。 (2-クロロ-エチル)-カルバミン酸アリルエステル（１３）を下記のようにして合成した。2.5ｇ（22mmol）のクロロエチルアミン塩酸塩を10mLの６Ｍ NaOHに溶かした溶液を０℃に冷却し、６Ｍ NaOH溶液を加えることによりpHを９に保持しながら2.7mL（25.9mmol）のクロロギ酸アリルを滴下して処理した。次いで、反応物を22℃に加温し、２時間攪拌し、ＴＨＦで抽出した。有機相を乾燥し（Na₂S O₄）、減圧濃縮し、SiO₂（ヘキサン／EtOAc、９：１）のクロマトグラフィーにかけて１３を黄色油として3.1ｇ（88％）得た： (2-メチルアミノ-エチル)-カルバミン酸アリルエステル（９）を製造するために、14ｇ（86mmol）の１３および25ｇ（172mmol）のヨウ化ナトリウムを40mLのアセトンに溶かした溶液を18時間還流し、減圧濃縮し、H₂Oに溶解し、CH₂Cl₂で抽出した。有機相を乾燥し（Na₂SO₄）、０℃に冷却した。メチルアミンを反応混合物に溶液が飽和するまでバブリングした。反応混合物を22℃に加温し、36時間攪拌し、減圧濃縮し、SiO₂（EtOAc）のクロマトグラフィーにかけて９を黄色油として6.14ｇ（45％）得た：下記および図４に示したようにして複素環式部分１１をN-ベンゾイルトレオニン（１４）から調製した。 750mg（3.2mmol）の１４を10mLのCH₂Cl₂に溶かした溶液を1.61ｇ（3.8mmol）のデス−マーチン(Dess-Martin)試薬で処理することにより、5-メチル-2-フェニル−オキサゾール-4-カルボン酸メチルエステル（１５）を合成した。反応物を2 2℃で10分間攪拌し、減圧濃縮し、SiO₂（ヘキサン／EtOAc、３：２）のクロマトグラフィーにかけて658mg（89％）の2-ベンゾイルアミノ-3-オキソ-酪酸メチルエステルを得た。一方、9.12ｇ（38mmol）の１４を80mLのCH₂Cl₂に溶かした溶液を−23℃に冷却し、16.1mL（115mmol）のトリエチルアミンと、18.3ｇ（115mmol ）のSO₃−ピリジン錯体を60mLの乾燥ＤＭＳＯに溶かした溶液とで処理した。反応混合物を22℃に加温し、30分間攪拌し、次いで−48℃に冷却し、20mLの飽和Na HCO₃でクエンチした。溶液を50mLのヘキサン／EtOAc（２：１）で抽出した。水相をヘキサン／Et₂O（２：１）で再抽出し、有機相を一つにまとめてブラインで洗浄し、乾燥し（Na₂SO₄）、クロマトグラフィーにかけ（ヘキサン／EtOAc、３：２）、2-ベンゾイルアミノ-3-オキソ-酪酸メチルエステルを白色固体として7. 1ｇ（79％）得た： 277mg（1.06mmol）のトリフェニルホスフィン、268mg（1.06mmol）のヨウ素、および0.29mL（2.11mmol）のトリエチルアミンを５mLのCH₂Cl₂に溶かした溶液を −48℃に冷却し、124mg（0.528mmol）の2-ベンゾイルアミノ-3-オキソ-酪酸メチルエステルを５mLのCH₂Cl₂に溶かした溶液で処理した。反応混合物を22℃に加温し、20分間攪拌し、分液漏斗に移し、チオ硫酸ナトリウム水溶液で抽出した後飽和重炭酸ナトリウム水溶液で抽出した。有機相を減圧濃縮し、SiO₂（ヘキサン／ EtOAc、９：１）のクロマトグラフィーにかけて１５を白色固体として84.4mg（7 4％）得た： C₁₂H₁₁NO₃に対して計算したＨＲＭＳ（E1）m/z：217.0739、実測値：217.0729。 2.07ｇ（9.5mmol）の１５を20mLの３Ｍ NaOHおよび12mLのMeOHに溶かした溶液を22℃で２時間攪拌し、Et₂Oで抽出することによって5-メチル-2-フェニル−オキサゾール-4-カルボン酸１１を製造した。水相を濃HClでpH１にしてEtOAcで抽出した。有機相を乾燥し（Na₂SO₄）、減圧濃縮して１１をオフホワイトの固体として1.84ｇ（95％）得た： C₁₁H₉NO₃に対して計算したＨＲＭＳ：203.0582、実測値：203.0583。次いで、下記のようにして2-デカノイルアミノ-4-(メチル−{3-[5-メチル-2- フェニル−オキサゾール-4-カルボニル]-エチル}-カルバモイル)-酪酸ベンジルエステル（式II）を得た：193mg（0.363mmol）の10を15mLのCH₂Cl₂に溶かした溶液に、20mg（0.018mmol）のテトラキストリフェニルホスフィンPd(O)、127μＬ（0.472mmol）の水素化トリブチルスズ、および20μＬのH₂Oを加えた。反応混合物を22℃で５分間攪拌し、塩基性Al₂O₃のプラグによって濾過し、150mg（0.726m mol）のオキサゾール１１、60μＬ（0.436mmol）のトリエチルアミン、および19 2mg（0.436mmol）のＢＯＰ試薬で処理した。反応混合物を22℃で30分間攪拌し、 10mLのCH₂Cl₂で希釈し、飽和NaHCO₃溶液、１Ｍ HCl、およびブラインで抽出した。有機相を減圧濃縮し、SiO₂（ヘキサン／EtOAc、１：１）のクロマトグラフィーにかけて２を粘性油として131mg（57％）得た：C₃₆H₄₈N₄O₆に対して計算したＨＲＭＳ：632.3574、実測値：632.3572。実施例II 実施例Ｉにおける化合物1a（式II）の溶液相合成によって、固体担体上において式Ｉの化合物の構造変異体のライブラリーを調製するための必須の一般的プロトコルが確立された。ＹがＨであり、Ｚがエチレンジアミンに対応する２価のセグメントである式Ｉの化合物の代表的な固相合成は図２に示されており、下記のようにして行われる。ジ保護(diprotected)グルタミン酸塩５を、Wang(1973)，J．Am．Chem．Soc．9 5:1328に記載されたポリスチレンを基材とするWang樹脂にＥＤＣｌによって大規模にカップリングして固相ビーズを供給した。塩基不安定性Fmoc保護基をピペリジンおよびＴＨＦで処理することによって除去し、樹脂を、定常のバブリングを維持するための吸引アダプターおよび不活性ガス入り口を備えた特別にデザインした３つのシュレンク(Schlenk)濾過器に分配した。溶媒を加えた後、疎水性樹脂Ｒ'''COClを各フラスコに加えて、３つの異なるアミド誘導体１７を得た。樹脂を濾過し、すすいだ後、アリルエステル１７をPd(O)化学によって脱保護し、各バッチを３つの改良型シュレンク濾過器に分配することによって、アシル化のための９個の異なる反応部位が得られた。カップリング剤PyBroP³⁹またはCloP⁴⁰ の存在下で３つの異なるN-アリルオキシカルボニル保護ジアミンを添加することにより、グルタミン酸の側鎖カルボキシル末端を１における所望の複素環式部分に対して伸張させた。得られた９個の化合物１８のN-末端をそれぞれ脱保護し、最終的なセグメント縮合のために２個の追加のシュレンク濾過器に分配した。Cl oPの存在下で２個の異なるオキサゾールカルボン酸とカップリングさせ、溶媒ですすぐことによって最終精製することにより、固体担体に結合したままのホスファターゼライブラリー（式Ｉ）が得られた。50％トリフルオロ酸性酸を用いた完全または部分切断には、生物学的活性に要求されるカルボキシレートを放出させることが必要であった。固体担体を濾過し、得られた母液を蒸発させた後に、式Ｉの所望の化合物が、高速処理量生物学的スクリーニングのために用意された化学的に純粋で、構造的に十分規定された状態で得られた。各場合において、最終化合物の純度は分光分析（¹ＨＮＭＲ、ＭＳ）によれば＞60％であった。Alloc-N HCH₂CH₂NH(R")の立体障害をうけた第二級アミン部分への不完全カップリングから不純物が生じた。前記の合成は、より詳細には下記のようにして行われる：工程１，５→１６。中多孔度のシュレンク濾過器に750mgのWang樹脂（0.96mmo l／ｇ、0.72mmolの活性部位）を入れた。樹脂を12mlの乾燥ＤＭＦに懸濁し、窒素流を濾過器に溶媒が穏やかにバブリングされるような流量で強制的に流通させた。この反応混合物に、1.47ｇ（3.6mmol）の５を加えた。懸濁液を５分間攪拌し、26mg（0.216mmol）のＤＭＡＰおよび550mg（2.88mmol）のＥＤＣｌで処理し、22℃で18時間攪拌し、濾過し、樹脂をＤＭＦ（２×10mL）、H₂O（３×10mL）、ＴＨＦ（３×10mL）およびCH₂Cl₂（３×10mL）で洗浄した。樹脂を減圧乾燥し、樹脂に10mLのCH₂Cl₂および10mLの無水酢酸を26mg（2.88mmol）のＤＭＡＰとともに加えることによって残留している活性部位をキャップした。バブリングを22 ℃で３時間続けて、次いで樹脂をCH₂Cl₂（６×15mL）で洗浄し、減圧乾燥した。樹脂への添加量を試験するために、30mgの樹脂を取り出し、２mLのトリフルオロ酢酸に22℃で５分間懸濁し、濾過し、CH₂Cl₂で洗浄した（３×３mL）。濾液を減圧濃縮し、５を7.3mg（85％）得た。工程２、１６→１７。Wang樹脂１６に結合させた690mg（0.576mmol）の2-(9H- フルオレン-9-イルメトキシカルボニルアミノ)-ペンタン二酸5-アリルエステルを15mLのTHFに加えた懸濁液を、６mL（57.6mmol）のピペリジンで処理し、30分間バブリングすることによって攪拌し、濾過し、CH₂Cl₂（６×10mL）で洗浄した。樹脂を減圧乾燥した。この樹脂を10mLのCH₂Cl₂に加えた懸濁液を0.48mL（2.31 mmol）の塩化デカノイルおよび14mg（0.115mmol）のＤＭＡＰで処理した。反応混合物を22℃で６時間攪拌し、濾過し、樹脂をCH₂Cl₂（６×10mL）で洗浄し、減圧乾燥した。工程３、１７→１８。Wang樹脂に結合させた690mg（0.576mmol）の2-デカノイルアミノ-ペンタン二酸5-アリルエステル17を10mLのＴＨＦに加えた懸濁液を、6 7mg（0.0576mmol）のテトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム(O)および806mg（5.75mmol）のジメドンで処理し、22℃で18時間バブリングによって攪拌した。次いで、樹脂を濾過し、ＴＨＦ（２×10mL）、CH₂Cl₂（２×10mL）、ＭｅＯＨ（２×10mL）、H₂O（２×10mL）、１％酢酸溶液（２×10mL）、H₂O（２× 10mL）、ＭｅＯＨ（２×10mL）、CH₂Cl₂（２×10mL）で洗浄し、減圧乾燥した。 40mgの樹脂の切断および¹ＨＮＭＲによる試験によりアリルエステルは完全に脱保護されていることがわかった。この樹脂を12mLのＤＭＦに加えた懸濁液を0.22mL（1.572mmol）のトリエチルアミンおよび414.1mg（2.62mmol）のAlloc-NHCH₂CH₂NHMeで処理した。確実に適正混合させるために反応混合物を５分間攪拌した後、540mg（1.572mmol）のCloP を加えた。反応混合物を30℃で18時間バブリングにより攪拌し、22℃まで冷却し、樹脂を濾過し、ＤＭＦ（２×10mL）、CH₂Cl₂（２×10mL）、ＭｅＯＨ（２×10 mL）、H₂O（２×10mL）、THF（２×10mL）、およびCH₂Cl₂（２×10mL）で洗浄した。樹脂を減圧乾燥した後、40mgの樹脂をCF₃CO₂Hで切断した。残基の¹ＨＮＭＲによってカップリングはほぼ100％生じていたことが分かった。工程５、１８→１９。Wang樹脂に結合させた200mg（0.192mmol）の4-[(2-アリルオキシカルボニルアミノエチル)-メチル-カルバモイル]-2-デカノイルアミノ- 酪酸１８を６mLのCH₂Cl₂に加えた懸濁液を12mg（0.0096mmol）のテトラキストリフェニルホスフィンPd(O)、62μｌ（0.230mmol）の水素化トリブチルスズ、および10μｌの水で処理した。反応混合物を、Ｎ₂を15分間バブリングすることによって攪拌し、濾過し、樹脂を10mLずつのCH₂Cl₂、ＴＨＦ、アセトン、ＭｅＯＨ、 H₂O、アセトン、EtOAc、ヘキサン、ＴＨＦ、およびCH₂Cl₂で洗浄した。次いで、樹脂を減圧乾燥し、15mgを試験のために取り出した。ＴＦＡ−切断残基の¹ＨＮＭＲにより完全に脱保護されており、スズ副産物の全てが完全に除去されているということがわかった。 185mg（0.190mmol）のかかる樹脂を８mLのCH₂Cl₂に加えた懸濁液を、117mg（0 .576mmol）のオキサゾールカルボン酸、198mg（0.576mmol）のCloP、および80μ ｌ（0.576mmol）のトリエチルアミンで処理した。反応混合物を、Ｎ₂をバブリングすることによって３時間攪拌し、濾過し、20mLのCH₂Cl₂、アセトン、水、アセトンおよびCH₂Cl₂で洗浄した。樹脂を減圧乾燥して15mgを試験のために取り出した。その残基の¹ＨＮＭＲから、反応は60％完了まで行われていたことがわかった。続いて、樹脂を第２のカップリングサイクルに付した。工程６、１９→１。Wang樹脂に結合させた115mg（0.12mmol）の2-デカノイルアミノ-4-(メチル-{3-[5-メチル-2-フェニル-オキサゾール-4-カルボニル]-エチル}-カルバモイル)-酪酸１９を３mLのＴＦＡに加えた懸濁液を、５分間攪拌し、濾過し、５mLのCH₂Cl₂で洗浄した。抽出液を減圧濃縮して１を33.1mg（工程２〜工程６に対して100％）得た。¹ＨＮＭＲによって主な不純物として2-アシルアミノ-ペンタン二酸を含む、純度66％の生成物であることがわかった。酸1aを３m LのCH₂Cl₂に溶解し、0.016mL（0.138mmol）の臭化ベンジルおよび0.02mL（0.138 mmol）のＤＢＵで処理することにより、溶液相化学によって調製されたベンジルエステル２と同一の物質が得られた。また化合物1b〜1rも同様の一般的な方法によって調製した。溶液相合成と固体ビーズ合成との最も重要な違いは、2,2,2-トリクロロエトキシカルボニルおよびアリルオキシカルボニル保護基ならびにカップリング剤BopCl（＿）およびＤＰＰＡ（＿）とのアミドカップリングの使用にある。全てのコンビナトリアル化合物は、¹ＨＮＭＲおよび質量分光分析に基づく純度が最大60％であり、一方、溶液化学によって調製された対応する化合物は¹ＨＮＭＲ質量分光分析および¹³ＣＮＭＲ分析に基づく純度が＞90％であった。溶液化学によって調製された化合物はラセミ化合物であり、一方コンビナトリアル化合物はL-立体異性体富化であった。Ｚがエチレンでない化合物は、単に同保護基の代わりに異なる保護アミンを用いることによって上記の方法と同様の方法で調製され得る。また、Ｙが存在しない化合物も異なる保護アミンを代用することによって同様に調製される。実施例III Ｙ＝Ｈであり、Ｚが２価のエチレンセグメントである式Ｉに対応する下記の化合物1a〜r（表１）を、それらのＰＰ１、ＰＰ２およびＰＰ３を阻害する能力について試験した。表１の化合物のホスファターゼ活性および阻害活性は、Honkanenら，(1994)To xicon 32:339の方法によって測定した。簡単に言うと、ホスホリラーゼ−ａまたはホスホヒストンに対するホスファターゼ活性を遊離［³²Ｐ］の定量によって測定した。50ｍＭのトリス-HCl、pH7.4、0.5ｍＭのＤＴＴ、１ｍＭのＥＤＴＡ（アッセイ緩衝液）および［³²Ｐ］リンタンパク質（１〜２μＭのPO₄）を含む、合計容量80μｌのアッセイを以前に記載されたようにして行った（Honkanenら，19 91, Mol．Pharmac．40:577）。脱リン酸化反応を、基質としてホスホリラーゼ−ａを用いて５〜10分間、ホスホヒストンを用いて10〜20分間、ルーチン的に行った。全てのアッセイにおいて、基質の脱リン酸化を利用可能な全リン酸化基質の10％未満に維持し、反応を、酵素活性が酵素濃度および時間に対して確実に直線的になるように調節した。酵素によって遊離された［³²Ｐ］ホスフェートをリンモリブデン酸錯体として抽出し、Killileaら，（1978）Arch．Biochem．Biophys．19 1:638の方法にしたがって測定した。阻害物質によるタンパク質ホスファターゼ活性の阻害を、基質を添加することにより反応を開始する５〜10分前に酵素混合物に100μＭの阻害物質を加えることによって測定した。結果を、対照（100％）に対するパーセント阻害として表２に示す。さらに、化合物1d（Ｒ＝Ph、Ｒ’＝Ph、Ｒ”＝CH₃、Ｒ'''＝n-C₉H₁₉）を、そのＰＰ２Ａを阻害する能力について評価し、ＰＰ２Ａの公知の阻害物質であるカリキュリン(calyculin)Ａと比較した。ウシ心筋ＰＰ２Ａ（Gibco-BRL、ゲティスバーグ(Gaithersburg)、メリーランド州）の触媒サブユニットの活性を、96ウェルマイクロタイタープレート中で基質としてフルオレセイン二リン酸（Molecular Probes社、ユージーン(Eugene)、オレゴン州）を用いて測定した。最終インキュベーション混合物（150μＬ）は、25ｍＭのトリス（pH＝7.5）、５ｍＭのＥＤＴＡ、33μｇ/mlのＢＳＡ、および 20μＭのフルオレセイン二リン酸から構成されていた。阻害物質をＤＭＳＯ（ビヒクル対照としても使用される）に再懸濁した。0.2単位のＰＰ２Ａを添加することによって反応を開始させ、室温で一晩インキュベートした。生成物からの蛍光放出をPerseptive Biosystems CytoflourII（励起フィルター、485nm；放出フィルター、530nm）（フレーミンガム(Framingham)、マサチューセッツ州）を用いて測定した。図６に示したように、カリキュリンＡは10ｎＭでＰＰ２Ａ活性を阻害し、化合物1dは100μＭで50％阻害を引き起こした。上記のアッセイを、異なる起源から精製されたＰＰ１およびＰＰ２Ａの触媒サブユニットを用いて第２の試験系列において繰り返した。具体的には、ＰＰ１およびＰＰ２Ａの触媒サブユニットをカキから精製し、ホスファターゼ活性を放射能標識ホスホヒストン基質（ヒストンHI）を用いて、上記のように［³²Ｐ］の遊離によって測定した。オカダ酸（１ｎＭ）をいくつかのＰＰ１調製物中に含有せしめて内因性ＰＰ２Ａ活性を抑制した。オカダ酸は試験される化合物の阻害活性には識別できる影響を及ぼさなかった。［³²Ｐ］標識ヒストンの脱リン酸化を、 100μＭのコンビナトリアル化合物とともにまたはコンビナトリアル化合物なしで10〜20分間インキュベートした後、リンモリブデン酸錯体として抽出することによって測定した。反応は、これらの条件下で、酵素濃度および時間に直接依存していた。また、ＰＰ１およびＰＰ２Ａに対するＳＣ−ααδ９およびＳＣ−α α６９（すなわち、それぞれ、表Ｉの化合物1eと1fの溶液化学類似体）の阻害活性も、ウサギ骨格筋ＰＰ１およびＰＰ２Ａならびに基質として［³²Ｐ］標識ホスホリラーゼＡを用いて市販の方法（GIBCO、BRL）（グランドアイランド(Grand I sland）、ニューヨーク）によって測定した。第２の試験系列の結果を下記の表３に示す。各値は非処理の対照と比較した％阻害であり、３個の別個の試験の平均である。表２は化合物1dがウシ心筋由来のＰＰ２Ａ触媒サブユニットによる酵素活性の約50％阻害を引き起したことを示すものであるが、カキＰＰ１およびＰＰ２Ａの有意な阻害は観察されなかった（表３）。オカダ酸（100μＭ）およびカリキュリンＡ（10ｎＭ）はこのアッセイにおいて非常に効果的であり、ＰＰ１およびＰＰ２Ａ活性の＞99％阻害を引き起こした。100μＭでＰＰ１またはＰＰ２Ａの＞6 0％阻害を生じさせる化合物はないが（表３）、このファーマコホア(pharmacoph ore)を含むＲ”およびＲ'''に芳香族置換基を有する化合物がこれらのＰＳＴＰアーゼに対して浮上した。実施例IV 化合物1a〜1rを、ＣＤＣ２５ＡおよびＣＤＣ２５Ｂを阻害する能力について評価した。組換えヒトＣＤＣ２５Ａ、ＣＤＣ２５ＢおよびＣＤＣ２５Ｃを、ヒトｃＤＮＡおよび標準分子生物学的方法を用いてグルタチオン-S-トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）融合タンパク質として得た。ｃＤＮＡ構築物は、においてイソプロピル-β-D-チオガラクトシダーゼ（ＩＰＴＧ）の調節下で発現するプラスミド内にある。細菌ペレットを超音波処理によって破壊し、10,000×ｇで遠心分離した。グルタチオン−アガロースビーズを用いることにより、Baratteら，(1992)12: 873-880に記載されているようにして融合タンパク質をミクロソーム後(postmicr osomal)上清画分から精製した。ホスファターゼ活性を下記の条件下で蛍光分光光度計を用いてアッセイした：96ウェルマイクロタイタープレート内での25ｍＭのトリス（pH＝8.0）、５ｍＭのＥＤＴＡ、33μｇ/mlのＢＳＡおよび20μＭのフルオレセイン二リン酸を含んでなる最終インキュベーション混合物(150μＬ)中１単位（１Ｕ＝生成物についての33蛍光単位／分を誘発するタンパク質の量）の融合タンパク質。プレートを室温で０（対照）、0.3、１、３、10、30，100μＭの化合物とともに１時間予備インキュベートした。室温で１時間予備インキュベートした後、フルオレセイン生成物の蛍光（励起、485nm；放出、530nm）をBios ystems Cytofluor II（フレーミンガム、マサチューセッツ州）を用いて測定した。結果を、対照に対するパーセント阻害として図７および表４に示す。化合物1f についての用量応答曲線を図８に示す。前記の結果は、化合物1a〜1cおよび1e〜1rがＣＤＣ２５Ａおよび／またはＣＤＣ２５Ｂの活性を阻害する能力があるということを示すものである。第２系列のアッセイを、化合物1a〜1rに対して行ってこれらの実験を繰り返し、それらのＣＤＣ２５Ａ、ＣＤＣ２５Ｂ、ＣＤＣ２５ＣおよびＭＡＰＫＰを阻害する能力を評価した。特に、ＣＬ１００（ＭＡＰＫＰの１種である）を阻害するその化合物の能力を試験した。ＣＬ１００、ＣＤＣ２５Ａ、ＣＤＣ２５Ｂ、およびＣＤＣ２５Ｃは、上記の手順と同様の手順によって得られた。具体的には、イソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）の転写調節下でＧＳＴならびにＣＤＣ２５Ａ、ＢまたはＣをコードする融合構築物を含むプラスミドによるトランスフェクションにE. coli株BL21（DE3）を用いた。まず、E.coliを37℃で405時間増殖させた。次いで、ＩＰＴＧ（最終濃度１ｍＭ）を加えて、培養物を37℃でさらに３時間インキュベートした。細胞を3,500ｇ、４℃で10分間遠心分離することによって採取した。得られた細菌ペレットを抽出まで80℃で凍結し続けた。His₆をタグ付けしたＣＬ１００を、GL21（DE3）の代わりにE.coli株DH5αを用いた以外は同様にして産生させた。次に、タンパク質を下記のようにして精製した。細菌ペレットを10μｇ/mlのアプロチニン、10μｇ/mlのロイペプチン、100μｇ/mlのＡＥＢＳＦおよび10ｍＭのＤＴＴを含む溶解緩衝液中で４℃にて超音波処理することによって破壊した。次いで、ホモジネートを４℃、100,000ｇで10分間遠心分離した。得られた上清画分をただちに混合し、グルタチオンビーズ（溶解緩衝液で平衡化したもの）とともに４℃で１時間回転させた（上清５容／５０％ビーズスラリー１容）。グルタチオンビーズを10容の溶解緩衝液で２回洗浄し、次いで、10μｇ/mlのアプロチニン、10μｇ/mlのロイペプチン、100μｇ/mlのＡＥＢＳＦおよび10ｍＭのＤＴＴを含む10容の２×反応緩衝液（60ｍＭのトリス、pH8.5、145ｍＭのNaCl、 1.34ｍＭのＥＤＴＡ、0.066％のＢＳＡ）で２回洗浄した。融合タンパク質を10 ｍＭのグルタチオンを加えた２×反応緩衝液を用いて３連続洗浄で溶離させた。溶出の効率を下記のホスファターゼアッセイによって監視した。活性画分をプールし、−80℃で保存する前に20％グリセロールを補給した。His₆をタグ付けしたＣＬ１００を、精製工程全てに対してＤＴＴの代わりに20ｍＭのβ-メルカプトエタノールを使用し、溶出に対して10ｍＭのグルタチオンの代わりに100ｍＭのイミダゾールを使用した以外は同様の手順を用いて精製した。上記のＤＳＰアーゼの活性を、ＦＤＰ（Molecular Probes社、ユージーン、オレゴン州）（これは96ウェルマイクロタイタープレート内で容易に基質としてフルオレセイン一リン酸に代謝される）を用いて測定した。最終インキュベーション混合物（150ml）には、30ｍＭのトリス（pH8.5）、75ｍＭのNaCl、0.67ｍＭのＥＤＴＡ、0.033％のウシ血清アルブミン、１ｍＭのＤＴＴおよび20μＭのＦＤＰが含まれていた。阻害物質をＤＭＳＯに再懸濁し、対照を含む全ての反応を７％ＤＭＳＯの最終濃度で行った。〜0.25μｇの融合タンパク質を加えることによって反応を期始させ、周囲温度で１時間インキュベートした。生成物からの蛍光発光をマルチウェルプレートリーダー（Perseptive Biosystems CytoflourII ；フレーミンガム、マサチューセッツ州；励起フィルター、485/20；放出フィルター、530/30）を用いて測定した。全ての酵素について、反応は２時間のインキュベーションにわたって直線的であり、実験では１時間以内で十分であり、酵素濃度および基質濃度の両方に正比例していた。実験結果を下記の表５に示す。各値は非処理の対照と比較した％阻害であり、３個の試験の平均である。表４は、化合物が、100μＭでＣＤＣ２５Ａ、ＣＤＣ２５ＢおよびＣＤＣ２５Ｃホスファターゼ活性を有意に阻害したということを裏付けるものである。具体的には、化合物1eおよび1fは100μＭでＣＤＣ２５Ａの＞90％阻害を引き起こし、化合物1b、1cおよび1mはＣＤＣ２５Ａの＞80％阻害を引き起こした。これらの化合物もＣＤＣ２５ＢおよびＣＤＣ２５Ｃの＞50％阻害を生じさせた。しかしながら、ＭＡＰＫＰＣＬ１００の阻害は限定されていた。表３および表４のデータを比較することにより、ＰＰ２ＡおよびＣＤＣ２５をうまく阻害する物質と関連し得る構造特性が存在することがわかる。具体的には、Ｒ’位の修飾による変化は小さく、コンジナー(congener)中でメチルに対してフェニルが全体的に好ましいということは明らかではない。この系列の最良の阻害物質は、Ｒ”およびＲ'''が芳香族または長鎖アルキル種などの疎水性部分を含む場合であるということがわかった。化合物1eおよび1gは、100μＭでＣＬ１００活性の約30％阻害をもたらした。それとは対照的に、化合物1a〜1rからなるコンビナトリアルライブラリーのその他の化合物は、このＭＡＰＫＰＤＳＰアーゼにおいてほとんどまたは全く影響を及ぼさなかった。したがって、1fなどのいくつかの化合物は、ＭＡＰＫＰＤＳＰアーゼＣＬ１００またはＰＳＴＰアーゼと比べてＣＤＣ２５ＤＳＰアーゼに対して多少選択的であるようにみえる。さらに、明確な特異性がＰＰ２ＡとＣＤＣ２５の間に現れた。ノニル部分はフェネチル（logP＝3.15）またはスチリル（logP＝2.95）部分と比べてより嵩高く、より疎水性（logP＞４）である。Ｒ’にフェニルを、Ｒ'''にベンジルを含む化合物のＲ'''部位をノニル部分（これはフェネチルまたはスチリル部分よりも嵩高い）に置換することによって、Ｒ'''をフェニル部分またはスチリル部分に置換することと比較した場合、ＣＤＣ２５ホスファターゼ阻害の有意な増大とＰＳＴＰアーゼ阻害の完全な消失が引き起こされた。これは、活性部位付近のＣＤＣ２５上の疎水性領域を反映し得るものである。ＣＤＣ２５ホスファターゼとは対照的に、ＰＳＴＰアーゼはＲ'''における嵩高さ及び疎水性の置換の許容範囲がかなり小さく、Ｒ'''ノニル化合物はどれもＰＰ１またはＰＰ２Ａの効果的な阻害物質ではない一方、化合物1bおよび1cはＣＤＣ２５ＡおよびＢの相当な阻害物質である。実施例ＶＳＣ-ααδ９およびＳＣ−αα６９の阻害定数を、下記のようにして定常状態速度論によって測定した。ＧＳＴ−ＣＤＣ２５Ａ、ＢおよびＣとの反応を、30 ｍＭのトリス（pH8.5）、75ｍＭのNaCl、0.67ｍＭのＥＤＴＡ、0.033％のウシ血清アルブミンおよび１ｍＭのＤＴＴ中で行った。ＣＬ１００との反応を、30ｍＭのトリス（pH7.0）、75ｍＭのNaCl、0.67ｍＭのＥＤＴＡ、0.033％のＢＳＡ、１ｍＭのＤＴＴおよび20ｍＭのイミダゾール中で行った。反応混合物中のＤＭＳＯを７％に維持して化合物の溶解性を確保した。すべて室温で行い、生成物の形成は、マルチウェルプレートリーダー（Perseptive Biosystems CytoflourII；フレーミンガム、マサチューセッツ州；励起フィルター、485/20；放出フィルター、630/30）で測定した。データを10分間隔で１時間にわたって集めた。Ｖ₀を各基質濃度について測定し、次いでミカエリスーメンテンの式（方程式１）：Ｖ₀＝Ｖ_max［Ｓ］／Ｋ_m＋［Ｓ］（方程式１）にPrism2.0（GraphPad Software社）を用いて適合させた。各実験および基質についての相関係数は常に＞0.9であった。ＣＤＣ２５Ａ、ＢおよびＣについての定常状態速度を測定するのに用いた基質濃度は、それぞれ10、20、30、40、50、 75、100および200μＭＦＤＰであり、一方、ＣＬ１００については濃度は75、1 00、200、300、400、500、および750μＭＦＤＰであった。ＳＣ−ααδ９およびＳＣ−αα６９について０〜30μＭの範囲の少なくとも４つの濃度をＣＤＣ２５ＡまたはＢに用いた。ＣＤＣ２５ＣのＫ_iはＳＣ−αα δ９およびＳＣ−αα６９を、０〜100μＭの範囲の少なくとも４つの薬物濃度で用いて計算した。ＣＬ１００のＫ_iをＳＣ−ααδ９の３つの異なる濃度、30 、100および300μＭを用いて測定した。これらの実験の結果を下記の表６に示す。表６に示したように、ＣＤＣ２５Ａ、ＣＤＣ２５Ｂ、ＣＤＣ２５ＣおよびＣＬ１００に対してＦＤＰを用いて測定したＫ_mは、それぞれ、45±３（ＳＥＭ、-ｎ＝10）、12±３、22±１および192±72μＭであった。したがって、ＦＤＰはＭＡＰＫＰＣＬ１００よりもＣＤＣ２５ホスファターゼに対してすぐれた基質であった。ＣＤＣ２５ＢとともにＳＣ−ααδ９およびＳＣ−αα６９を用いる速度論研究は競合阻害モデルと非常に一致していた。また、ＳＣ−ααδ９はＣＤＣ２５Ａ、ＣＤＣ２５ＣおよびＣＬ１００を競合的に阻害し、ＳＣ−αα６９はＣＤＣ２５ＡおよびＣＤＣ２５Ｃを競合的に阻害することもわかった。ＳＣ−α α６９はＣＤＣ２５Ｂホスファターゼに対して７±３μＭのＫ_iを有していた。ＣＤＣ２５ＡおよびＣＤＣ２５Ｃに対するＫ_iは、それぞれ８±３μＭおよび11 ±２μＭであった。ＭＡＰＫＰホスファターゼＣＬ１００に対するＳＣ−ααδ ９のＫ_iは、229±115であった。実施例VI 化合物1eおよび1fならびに溶液化学によって調製されたそれらの類似体、すなわちＳＣ−αα６９およびＳＣ−ααδ９の阻害効果の濃度依存性を調べた。図１５Ａ〜Ｄに示したように、固相誘導1fおよび溶液相誘導ＳＣ−ααδ９はいずれも組換えヒトＣＤＣ２５ＡおよびＢ活性の濃度依存的阻害を示した。ＣＤＣ− ２５ＡおよびＢについての50％最大阻害濃度(half-maximal inhibitory concent ration)（ＩＣ₅₀）は、化合物1fで処理した場合75μＭであり、一方、ＳＣ−α αδ９はＣＤＣ２５ＡおよびＢに対して約15μＭのＩＣ₅₀を示した。したがって、溶液化学によって調製された化合物は、固相方法によって合成された化合物と比べて５倍の阻害活性を示し、これは純度の増大、ラセミ溶液化学化合物におけるＲ−立体異性体の包含、またはその両方を反映するものであり得る。同様に、化合物1eおよびＳＣ−αα６９試料によりＣＤＣ２５ＡおよびＢの濃度依存性阻害が生じ、ラセミ溶液化学化合物は約５〜６倍以上の能力を有していた（図１５（ｂ）および（ｄ））。広く用いられているＰＴＰアーゼ阻害物質バナジン酸塩は、このアッセイにおいてＣＤＣ２５ＡおよびＢに対して１μＭのＩＣ₅₀を有していた。実施例VII 図１２ａ〜１２ｎに挙げた化合物のいくつかを、それらがＰＰ１、ＰＰ２Ａ、ＣＤＣ２５ＣおよびＰＴＰ１Ｂの効果的な阻害物質であるかどうかを確認するために、実施例IIIおよびIVに記載した方法によっても試験した。Ｚが２価のエチレンセグメントではないこれらの化合物は、100μＭでの阻害活性において、抗ＣＤＣ２５Ｃ活性が欠けているＦＹ−αα６９、ＦＹ−α１０９、ＦＹ６−α１０９、ＦＹ９−α１０９およびＦＹ１０−α１０９と有意な相違を示した。また、これらの化合物は、３μＭでの抗ＰＴＰＩＢ活性においても有意な相違を示した。ＦＹ２−αα６９、ＦＹ２−α１０９、ＦＹ３−αα６９、ＦＹ−αα６９、ＦＹ７−αα６９、ＦＹ７−α１０９およびＦＹ８−αα６９などの窮屈な構造は、かかる低濃度でＣＤＣ２５Ｃ阻害活性を保持していた（図１４を参照されたい）。２つのシス−メタフェニル化合物、ＦＹ７−αα６９およびＦＹ７−α １０９は、100μＭでＰＰ１および／またはＰＰ２Ａの＞50％阻害を引き起こす唯一の化合物であった。実施例VIII 化合物1a〜1rをヒトＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳がん細胞に対する抗増殖活性について試験した。ヒトＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳がん細胞は、継代28でAmerican Type Culture Co llectionから入手し、20継代以下の間維持した。細胞を、１％ペニシリン（100 μｇ/mL）およびストレプトマイシン（100μｇ/mL）、１％L-グルタミン酸塩、ならびに10％ウシ胎児血清を補給したＲＰＭＩ−１６４０中で、湿潤インキュベータ内で37℃にてCO₂を５％含む空気下で増殖させた。細胞をマイコプラズマが含まれていないか定期的に観察した。継代またはフローサイトメトリー用に単層から細胞を取り出すために、細胞をリン酸緩衝液で２回洗浄し、0.05％トリプシン／２ｍＭＥＤＴＡで室温にて手短に（＜３分間）処理した。10％ウシ胎児血清を含む増殖培地を少なくとも２倍容量加えた後、細胞を1,000×ｇで５分間遠心分離した。ＤＭＳＯを用いて化合物を保存溶液にして、−20℃で保存した。すべての化合物および対照を加えることにより実験用の最終濃度0.1〜0.2％(v/v)の最終溶液を得た。化合物の抗増殖活性をLazoら(1995),:5506の方法によって測定した。簡単に言うと、細胞（6.5×10³細胞／cm²）を細胞毒性試験のために96ウェル平底プレートに入れて、37℃で48時間インキュベートした。平板培養培地を96ウェルプレートから吸引して、化合物を含む増殖培地をウェル当たり200μＬ加えた。化合物を、濃度０から、30〜100μＭの範囲の最大有効濃度で用いた。プレートを72時間インキュベートし、次いで血清を含まない培地で４×洗浄した。洗浄後、50μ Ｌの3-[4,5-ジメチルチアゾール-2-イル]-2,5-ジフェニルテトラゾリウムブロミド溶液（２mg／mL）を各ウェルに加えて、その後150μＬの完全増殖培地を加えた。次いで、プレートを37℃でさらに４時間インキュベートした。溶液を吸引し、200μＬのＤＭＳＯを加えてプレートを室温で30分間振盪させた。540nmにおける吸光度をTitertek Multiskan Plusプレートリーダーを用いて測定した。生物学的に活性な化合物を少なくとも３回別個に試験した。化合物1hの投与により、20μＭで50％増殖阻害が生じたが、より高い薬物濃度においてもさらなる細胞毒性はなかった。化合物1fは100μＭで50％増殖阻害を引き起こし、明らかな濃度依存性を有していた（図９）。実施例IX 化合物1fで処理した後のヒト乳がん細胞の細胞周期分布をフローサイトメトリーによって測定した。ＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞（6.5×10⁵／cm²）を平板に入れて、37℃で48時間インキュベートした。次いで平板培養培地を吸引し、約50％増殖阻害を引き起こす濃度の化合物1f（88〜100μＭ）を含む培地を48〜72時間加えた。同様の細胞密度の非処理細胞を対照集団として用いた。単一細胞調製物を氷冷した１％パラホルムアルデヒド中に固定し、1,000×ｇで５分間遠心分離し、Puck's生理食塩水に再懸濁し、遠心分離し、氷冷した70％エタノールに一晩再懸濁した。細胞を遠心分離（1,000×ｇ、５分間）によって固定液から取り出し、５μｇ/mLのヨウ化プロピジウムおよび50μｇ/mLのＲＮアーゼＡ溶液で染色した。フローサイトメトリー分析をBecton Dickinson FACS Starを用いて行った。単一パラメーターＤＮＡヒストグラムを10,000細胞について集めて細胞周期速度パラメーターをＤＮＡ細胞周期分析ソフトウェアバージョンＣ(Becton Dickinson)を用いて計算した。72時間での実験を、少なくとも３回別個に行った。結果を図１０Ａ〜Ｄに示す。指数関数的に増殖するヒトＭＤＡ−ＭＢ−２３１乳がん細胞集団（集団倍加時間約30〜35時間）は、典型的には、全細胞の約30％が細胞周期のＳ期またはＤＮＡ合成期にある（図１０ＡおよびＣ）。それとは対照的に、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞を88μＭの化合物1fとともに48時間インキュベートした場合、Ｇ１期に顕著に蓄積するとともにＳ期およびＧ２／Ｍ期の両方で同時に減少していた（図１０ＢおよびＣ）。ＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞を8８μＭの1fとともに72時間インキュベートすることによってもＧ１期において顕著な蓄積が生じた（図１０Ｄ）。これらの結果は、化合物1fがＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞の増殖において濃度依存性阻害を示し、Ｇ１チェックポイントで細胞周期進行における妨害があるということを示すものである。実施例Ｘ図１２（ａ）〜１２（ｎ）に挙げた化合物ならびにＳＣ−ααδ９およびＳＣ −α１δ９を、ＳＣＣVII／ＳＦ細胞に対する抗増殖活性について試験した。マウスＳＣＣVII／ＳＦ偏平上皮細胞がん腫を、Fuら(1984):1473に記載されているようにして（この開示は参照により本明細書に含まれるものである）、６週齢〜10週齢の雌C3/HeJマウスの右側腹部の培養物由来の５×10⁵の指数増殖期細胞を皮下接種することによって生じさせた。日常切開し、20％ウシ胎児血清、ペニシリン（100IU/ml）およびストレプトマイシン（100μｇ/ml）を含むダルベッコの最小必須培地中に、５％のＣＯを含む湿潤大気において37℃にて再懸濁することによって腫瘍からＳＣＣVII／ＳＦ細胞を作製した。指数増殖マウスＳＣＣVII／ＳＦ頭部および頚部がん細胞（これらの細胞はマウスにおいて腫瘍として急速に増殖し、ウェスタンブロッティングに基づいてＣＤＣ２５Ａ陽性である）を、ライブラリー化合物に48時間曝して、細胞数を実施例VIIIに記載したタイトレーション手順によって測定した（図１６を参照されたい）。80μＭにて、１２化合物の中の６個が＞50％増殖阻害を示した（例えば、化合物1eおよび1fを参照されたい）。したがって、ＳＣＣVII／ＳＦ腫瘍細胞は、実施例VIIIに記載したＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞よりもライブラリー化合物による増殖阻害に対する感受性が高い。化合物1eおよび1fの増殖阻害についてのＩＣ₅₀は、それぞれ20および25μＭであった（図１６）。ＳＣＣVII／ＳＦ細胞を3 0μＭのＳＣ−ααδ９に２４時間曝してから後、それらの細胞はＧ₁期で停止していることがわかった。ＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞を用いた研究において、ＦＹ８−α１０９およびＦＹ８−αα６９についてのＩＣ₅₀は約100μＭであり、ＦＹ７−αα６９についてのＩＣ₅₀は50μＭであった。図１２（ａ）〜１２（ｎ）に示したその他の化合物は、この最初の研究においてほとんどまたは全く増殖阻害を示さなかった。このことは、細胞毒性における何らかの選択性を示唆するものであり、図１２（ａ）〜１２（ｎ）に示した化合物の細胞への侵入を裏付けるものである。実施例XI in vivo抗腫瘍試験を、腫瘍を有するマウスを本発明の化合物で処理することによって行った。これらの試験を容易にするために、化合物ＳＣ−ααδ９（これはコンビナトリアル化合物1fに対応する）の毒性を測定した。予備試験において、３匹の同年齢の雌C571B/6マウス（平均体重＝24ｇ）に、１日１回５日間この薬物を０または30mg／kg腹腔内注射した。有意な体重の減少は観察されず、注射のほぼ２ヶ月後において死亡は全く見られなかった。腫瘍を有するマウスをＳＣ−ααδ９で処理してこの化合物が腫瘍を阻害するかどうかを確認した。使用した特定のクローン原性生存アッセイは、Fuら，(198 4):1473に記載されており、これは参照により本明細書に含まれるものである。樹立皮下（s.c.）腫瘍（移植の14日後）を有する雌マウス（３／４処理群）を、ＳＣ−ααδ９、ＳＣ−αα６９またはビヒクル（クレモホア(Cremophore)およびエタノール）のいずれかの腹腔内１回投与により処理した。次いで、腫瘍を 24時間後に採取して、クローン原性腫瘍細胞の数を測定した。図１８はいずれかの薬剤を１回投与した後のＳＣＣVII／ＳＦ腫瘍細胞のクローン原性における用量−依存性減少を示す。ＳＣ−ααδ９およびＳＣ−αα６９の両方について観察された最大の効果は、45mg／kgで50％減少であった。この減少は、この腫瘍モデルにおける30mg／kgのシクロホスファミド、30mg／kgのドキソルビシン、75mg ／kgのカルボプラチンまたは４mg／kgのシスジアミンジクロロ白金(cisdiamined ichloroplatinum)の１回投与で観察された効果に匹敵するものである。実施例XII ＳＣ−ααδ９を、それが形質転換細胞に対して選択的な細胞毒性を示すかどうかを確認するために試験した。まず、ＭＥＦ細胞を妊娠14.5日目のマウス（12901a×C57B1/6）の胎児から前に記載された方法を用いて単離した。細胞を20％ウシ胎児血清（HyClone、ローガン(Logan)、ユタ州）、ペニシリン（100IU/ml）、およびストレプトマイシン（100μｇ/ml）を含むデルベッコ最小必須培地（GIBCO、BRL）中に、５％のＣＯを含む湿潤大気において37℃で維持した。ＭＥＦ細胞の初代培養を継代15を超えないように行って危機(crisis)が入り込むのを回避した。製造業者の指示にしたがってＳＶ−４０ラージＴ抗原を含むプラスミドによりリプフェクタミン(lipfe ctamine)(GIBCO,BRL)を用いてＭＥＦ細胞を形質転換した。ウェスタンブロッティングを下記のようにして行った。細胞を、Sunら，(1995 ):4243（これは参照により本明細書に含まれるものである）に記載されているようにして100mm皿中でサブ集密的(subconfluency)に増殖させ、採取し、HEPES溶解緩衝液に溶解した。溶解物を４〜20％ＳＤＳ−ＰＡＧＥ上で電気泳動し、ニトロセルロースに移し、ＳＶ−４０ラージＴ抗原に対する抗体（Ab-2 Oncogene Sc ience，マンハセツト(Manhasset)、ニューヨーク州）、ＣＤＣ２５Ｂ（Ｃ−２０）、または抗ＣＤＣ２５Ａ（１４４）（Santa Cruz Biotechnology，サンタクルズ(Santa Cruz)、カリフォルニア州）抗体でイムノブロットした。陽性抗体反応をペルオキシダーゼ結合二次抗体およびVogtら(1995):660（これは参照によリ本明細書に含まれるものである）に記載されたような強化(enhanced)化学発光検出系を用いて視覚化した。コロニー形成アッセイを下記のようにして行った。ＭＥＦおよびＳＶ４０／ＭＥＦ細胞を６ウェルプレートに３組ずつ平板に入れ（それぞれ300および200細胞／ウェル）、翌日、ビヒクル（ＤＭＳＯ）またはＤＭＳＯに種々の濃度で加えたＳＣ−ααδ９で細胞接着過程を妨害しないように培地を交換せずに処理した。 10〜12日後、目に見えるコロニーが形成されたらコロニーを固定して結晶バイオレット／ホルムアルデヒド溶液で染色した。平板効率を、担体に接着し、直径１ mmよりも大きいコロニーに成長した細胞の割合として測定した。ウェスタンブロッティングの結果から、形質転換細胞はＣＤＣ２５Ｂのレベルを上昇させるということがわかった（図１９（ａ）〜（ｃ））。ＳＣ−ααδ９で処理した後、正常なおよび形質転換されたＭＥＦが選択的な細胞毒性を示すということがわかった（ＳＶ４０ＭＥＦのＩＣ₅₀：180μＭ；図２０Ｃ）。それとは対照的に、オカダ酸もバナジン酸塩も選択的には細胞増殖に影響を及ぼさなかった。これらの結果は、ＳＣ−ααδ９がＰＳＴＰ阻害物質および広範なＰＴＰ阻害物質バナジン酸塩とは異なる抗増殖活性を有するということを示すものである。また、ＳＣ−ααδ９への連続的な暴露は、非形質転換ＭＥＦ細胞と比べてＳＶ４０形質転換ＭＥＦのコロニー形成により大きな影響を及ぼすということもわかった。（図２１）

【手続補正書】【提出日】平成１２年４月２７日（２０００．４．２７）【補正内容】請求の範囲１．式Ｉを有する化合物。〔式中、 Zは式Ｉに示す２個の中心窒素原子に結合された１または２個の２価基を表し、２個の中心窒素原子間の最短路は10原子未満であり、 R，R'およびR'''はそれぞれが独立してH、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、フェニル、オキセタニル、アゼチジニル、フラニル、ピロール、インドリル、オキサゾリル、イソキサゾリル、イミダゾリル、ピラゾリル、トリアゾリル、テトラゾリル、ピラニル、ピリジル、ピリドニル、ピペリジル、ピペラジニル、キノリル、アゼピニル、およびジアゼピニルよりなる群から選択され、 R''は、Zが２個の２価基を表すときは存在せず、Zが１個の２価基を表すときは、R''はH、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、フェニル、オキセタニル、アセチジニル、フラニル、ピロール、インドリル、オキサゾリル、イソキサゾリル、イミダゾリル、ピラゾリル、トリアゾリル、テトラゾリル、ピラニル、ピリジル、ピリドニル、ピペリジル、ピペラジニル、キノリル、アゼピニル、およびジアゼピニルよりなる群から選択され、 Yは、Zが２個の２価基を表すときは存在せず、Zが１個の２価基を表すときは、YはHである。〕２．Zが１個の２価基を表し、RおよびR'''が独立してフェニル、CH₃、 n-C₅H₁₁、n-C₇H₁₅、n-C₉H₁₉、PhCHCH、PhCH₂CH₂、Ph(CH₂)₂CC(CH₃)、(p-MeO)Ph 、(p-MeNHCO)Ph、PhCHC(CH₃)CH₂CH₂、Ph(CH₂)₂CHCHCHC(CH₃)、Ph(CH₂)₂CHCHCHCH 、Ph(CH₂)₃CHC(CH₃)CHCH、C₆H₁₃CH(CH₃)CHC(CH₃)CHCHまたはC₄H₉CH(CH₃)CHC(CH₃ )CHC(CH₃)であり、R'がH、CH₃またはPhであり、そしてR''がH、CH₃、ベンジル、 CH₂CH(CH₃)、n-C₆H₁₃、CH₂CH₂NHBn、CH₂CH₂Phまたは(CH₂)₃Phである、請求項１に記載の化合物。３．Zが２価エチレン基であり、YがHであり、Rがフェニルであり、R'がフェニルであり、R''がベンジルまたはCH₃であり、そしてR'''がn-C₉H₁₉である、請求項１に記載の化合物。４．YがHであり、そしてZがアルキレン基、アルケニレン基、アルキニレン基、シクロアルキレン基、芳香族炭化水素基、およびこれらの２価基のヘテロ原子置換体よりなる群から選択される１個の２価基である、請求項１に記載の化合物。５．Zがアルキレン基、シクロヘキシレン基およびフェニレン基よりなる群から選択される、請求項４に記載の化合物。６．YがHであり、そしてZがアルキレン基、アルケニレン基、アルキニレン基、シクロアルキレン基、芳香族炭化水素基、およびこれらの２価基のヘテロ原子置換体よりなる群から選択される１個の２価基である、請求項２に記載の化合物。７．式Ｉを有する化合物の製造方法であって、 (a)ジ保護グルタメートを固相支持体にカップリングさせ、 (b)グルタメートのアミノ末端を脱保護し、 (c)R'''COX（ここでXは離脱基である）を添加し、 (d)グルタメートのカルボキシ末端を脱保護し、 (e)式 A-NYZNH(R'')（ここでAは保護基である）を有するジアミンおよびカップリング剤を添加し、 (f)前記ジアミンのアミノ末端を脱保護し、 (g) を添加し、そして (h)得られた化合物を固相支持体から開裂する、ことを含んでなる上記方法。８．固相支持体がポリスチレン樹脂である、請求項７に記載の方法。９．前記ジ保護グルタメートが2-(9-H-フルオレン-9-イルメトキシカルボニルアミノ)-ペンタン二酸5-アリルエステルである、請求項７に記載の方法。 10．AがN-アリルオキシカルボニル基である、請求項７に記載の方法。 11．前記化合物がトリフルオロ酢酸により固相支持体から開裂される、請求項７に記載の方法。 12．式Ｉを有する化合物の製造方法であって、 (a)ジ保護グルタメートを固相支持体にカップリングさせ、 (b)グルタメートのアミノ末端を脱保護し、 (c)前記固相支持体を多数の容器に分配し、 (d)R'''COX（ここでXは離脱基である）を各容器に添加し、 (e)グルタメートのカルボキシ末端を脱保護し、 (f)前記固相支持体を追加の多数の容器に分配し、 (g)式 A-NYZNH(R'')（ここでAは保護基である）を有するジアミンおよびカップリング剤を各容器に添加し、 (h)前記ジアミンのアミノ末端を脱保護し、 (i)前記固相支持体を追加の多数の容器に分配し、 (j) を添加し、そして (k)得られた化合物を固相支持体から開裂する、ことを含んでなる上記方法。 13．プロテインホスファターゼを、プロテインホスファターゼ阻害有効量の式Ｉ：〔式中、 Zは式Ｉに示す２個の中心窒素原子に結合された１または２個の２価基を表し、２個の中心窒素原子間の最短路は10原子未満であり、 R，R'およびR'''はそれぞれが独立してH、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、フェニル、オキセタニル、アゼチジニル、フラニル、ピロール、インドリル、オキサゾリル、イソキサゾリル、イミダゾリル、ピラゾリル、トリアゾリル、テトラゾリル、ピラニル、ピリジル、ピリドニル、ピペリジル、ピペラジニル、キノリル、アゼピニル、およびジアゼピニルよりなる群から選択され、 R''は、Zが２個の２価基を表すときは存在せず、Zが１個の２価基を表すときは、R''はH、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、フェニル、オキセタニル、アゼチジニル、フラニル、ピロール、インドリル、オキサゾリル、イソキサゾリル、イミダゾリル、ピラゾリル、トリアゾリル、テトラゾリル、ピラニル、ピリジル、ピリドニル、ピペリジル、ピペラジニル、キノリル、アゼピニル、およびジアゼピニルよりなる群から選択され、 Yは、Zが２個の２価基を表すときは存在せず、Zが１個の２価基を表すときは、YはHである〕を有する化合物と接触させることを含んでなる、プロテインホスファターゼの阻害方法。 14．前記プロテインホスファターゼがセリン／トレオニンプロテインホスファターゼである、請求項13に記載の方法。 15．前記プロテインホスファターゼがPP1、PP2AまたはPP3である、請求項14に記載の方法。 16．前記プロテインホスファターゼが二重特異性ホスファターゼである、請求項 13に記載の方法。 17．前記プロテインホスファターゼがCDC25AまたはCDC25Bである、請求項16に記載の方法。 18．前記プロテインホスファターゼがVHRまたはMAPKPである、請求項13に記載の方法。 19．増殖抑制量の式Ｉ：〔式中、YはH、Zはエチレン基、Rはフェニル、R'はフェニル、R''はベンジル、そしてR'''はn-C₉H₁₉である〕を有する化合物を細胞に導入することを含んでなる、細胞増殖の抑制方法。 20．前記細胞が腫瘍細胞である、請求項19に記載の方法。 21．前記細胞が乳癌細胞である、請求項19に記載の方法。 22．請求項１に記載の化合物および製薬上許容される担体を含有する医薬組成物。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＬ，ＡＵ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＣＡ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＥＥ，ＧＥ，ＨＵ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＰ，ＫＲ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＴ，ＬＶ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＲＯ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ (72)発明者クニンガム，エイプリルアメリカ合衆国 19438 ペンシルバニア州，ハーレイスヴィレ，フローレンスドライブ 239 (72)発明者ワイプ，ピーターアメリカ合衆国 15213 ペンシルバニア州，ピッツバーグ，テックビューテラス 135

Claims

【特許請求の範囲】１．式Ｉを有する化合物。〔式中、 Zは式Ｉに示す２個の中心窒素原子に結合された１または２個の２価セグメントを表し、２個の中心窒素原子間の最短路は10原子未満であり、 R，R'およびR'''はそれぞれが独立してH、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、フェニル、オキセタニル、アゼチジニル、フラニル、ピロール、インドリル、オキサゾリル、イソキサゾリル、イミダゾリル、ピラゾリル、トリアゾリル、テトラゾリル、ピラニル、ピリジル、ピリドニル、ピペリジル、ピペラジニル、キノリル、アゼピニル、およびジアゼピニルよりなる群から選択され、 R''は、Zが２個の２価セグメントを表すときは存在せず、Zが１個の２価セグメントを表すときは、R''はH、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、フェニル、オキセタニル、アゼチジニル、フラニル、ピロール、インドリル、オキサゾリル、イソキサゾリル、イミダゾリル、ピラゾリル、トリアゾリル、テトラゾリル、ピラニル、ピリジル、ピリドニル、ピペリジル、ピペラジニル、キノリル、アゼピニル、およびジアゼピニルよりなる群から選択され、 Yは、Zが２個の２価セグメントを表すときは存在せず、Zが１個の２価セグメントを表すときは、YはHである。〕２．Zが１個の２価セグメントを表し、RおよびR'''が独立してフェニル、CH₃、n -C₅H₁₁、n-C₇H₁₅、n-C₉H₁₉、PhCHCH、PhCH₂CH₂、Ph(CH₂)₂CC(CH₃)、(p-MeO)Ph 、(p-MeNHCO)Ph、PhCHC(CH₃)CH₂CH₂、Ph(CH₂)₂CHCHCHC(CH₃)、 Ph(CH₂)₂CHCHCHCH、Ph(CH₂)₃CHC(CH₃)CHCH、C₆H₁₃CH(CH₃)CHC(CH₃)CHCHまたは C₄H₉CH(CH₃)CHC(CH₃)CHC(CH₃)であり、R'がH、CH₃またはPhであり、そしてR'' がH、CH₃、ベンジル、CH₂CH(CH₃)、n-C₆H₁₃、CH₂CH₂NHBn、CH₂CH₂Phまたは(CH ₂)₃Phである、請求項１に記載の化合物。３．Zが２価エチレンセグメントであり、YがHであり、Rがフェニルであり、 R'がフェニルであり、R''がベンジルまたはCH₃であり、そしてR'''がn-C₉H₁₉ である、請求項１に記載の化合物。４．YがHであり、そしてZがアルキレンセグメント、アルケニレンセグメント、アルキニレンセグメント、シクロアルキレンセグメント、芳香族炭化水素セグメント、およびこれらの２価セグメントのヘテロ原子置換体よりなる群から選択される１個の２価セグメントである、請求項１に記載の化合物。５．Zがアルキレンセグメント、シクロヘキシレンセグメントおよびフェニレンセグメントよりなる群から選択される、請求項４に記載の化合物。６．YがHであり、そしてZがアルキレンセグメント、アルケニレンセグメント、アルキニレンセグメント、シクロアルキレンセグメント、芳香族炭化水素セグメント、およびこれらの２価セグメントのヘテロ原子置換体よりなる群から選択される１個の２価セグメントである、請求項２に記載の化合物。７．式Ｉを有する化合物の製造方法であって、 (a) ジ保護グルタメートを固相支持体にカップリングさせ、 (b) グルタメートのアミノ末端を脱保護し、 (c) R'''COX（ここでXは離脱基である）を添加し、 (d) グルタメートのカルボキシ末端を脱保護し、 (e) 式A-NYZNH(R'')（ここでAは保護基である）を有するジアミンおよびカップリング剤を添加し、 (f) 前記ジアミンのアミノ末端を脱保護し、 (g) を添加し、そして (h) 得られた化合物を固相支持体から開裂する、ことを含んでなる上記方法。８．固相支持体がポリスチレン樹脂である、請求項７に記載の方法。９．前記ジ保護グルタメートが2-(9-H-フルオレン-9-イルメトキシカルボニルアミノ)-ペンタン二酸5-アリルエステルである、請求項７に記載の方法。 10．AがN-アリルオキシカルボニル基である、請求項７に記載の方法。 11．前記化合物がトリフルオロ酢酸により固相支持体から開裂される、請求項７に記載の方法。 12．式Ｉを有する化合物の製造方法であって、 (a) ジ保護グルタメートを固相支持体にカップリングさせ、 (b) グルタメートのアミノ末端を脱保護し、 (c) 前記固相支持体を多数の容器に分配し、 (d) R'''COX（ここではX離脱基である）を各容器に添加し、 (e) グルタメートのカルボキシ末端を脱保護し、 (f) 前記固相支持体を追加の多数の容器に分配し、 (g) 式A-NYZNH(R'')（ここでAは保護基である）を有するジアミンおよびカップリング剤を各容器に添加し、 (h) 前記ジアミンのアミノ末端を脱保護し、 (i) 前記固相支持体を追加の多数の容器に分配し、 (j) を添加し、そして (k) 得られた化合物を固相支持体から開裂する、ことを含んでなる上記方法。 13．プロテインホスファターゼを、プロテインホスファターゼ阻害有効量の式Ｉ：〔式中、 Zは式Ｉに示す２個の中心窒素原子に結合された１または２個の２価セグメントを表し、２個の中心窒素原子間の最短路は10原子未満であり、 R，R'およびR'''はそれぞれが独立してH、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、フェニル、オキセタニル、アゼチジニル、フラニル、ピロール、インドリル、オキサゾリル、イソキサゾリル、イミダゾリル、ピラゾリル、トリアゾリル、テトラゾリル、ピラニル、ピリジル、ピリドニル、ピペリジル、ピペラジニル、キノリル、アゼピニル、およびジアゼピニルよりなる群から選択され、 R''は、Zが２個の２価セグメントを表すときは存在せず、Zが１個の２価セグメントを表すときは、R''はH、アルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、フェニル、オキセタニル、アゼチジニル、フラニル、ピロール、インドリル、オキサゾリル、イソキサゾリル、イミダゾリル、ピラゾリル、トリアゾリル、テトラゾリル、ピラニル、ピリジル、ピリドニル、ピペリジル、ピペラジニル、キノリル、アゼピニル、およびジアゼピニルよりなる群から選択され、 Yは、Zが２個の２価セグメントを表すときは存在せず、Zが１個の２価セグメントを表すときは、YはHである〕を有する化合物と接触させることを含んでなる、プロテインホスファターゼの阻害方法。 14．前記プロテインホスファターゼがセリン／トレオニンプロテインホスファターゼである、請求項13に記載の方法。 15．前記プロテインホスファターゼがPP1、PP2AまたはPP3である、請求項14に記載の方法。 16．前記プロテインホスファターゼが二重特異性ホスファターゼである、請求項 13に記載の方法。 17．前記プロテインホスファターゼがCDC25AまたはCDC25Bである、請求項16に記載の方法。 18．前記プロテインホスファターゼがVHRまたはMAPKPである、請求項13に記載の方法。 19．増殖抑制量の式Ｉ：〔式中、YはH、Zはエチレンセグメント、Rはフェニル、R'はフェニル、R''はベンジル、そしてR'''はn-C₉H₁₉である〕を有する化合物を細胞に導入することを含んでなる、細胞増殖の抑制方法。 20．前記細胞が腫瘍細胞である、請求項19に記載の方法。 21．前記細胞が乳癌細胞である、請求項19に記載の方法。 22．請求項１に記載の化合物および製薬上許容される担体を含有する医薬組成物。