JP2007332146A - ヒト抗Ｇａｌα（１，３）Ｇａｌ抗体を阻止する方法 - Google Patents

Abstract

【課題】ブタを主とする異種移植に於ける拒絶反応の低減。
【解決手段】ヒト抗Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ抗体を阻止する方法にして、当該抗体の反応性部位のコンホメーションを変化させて当該抗体のＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対する親和性を低下させることを含んでなる方法が提供される。ブタＧａｌα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼをコードするＤＮＡ配列並びに当該配列を含んだクローンが提供される。ブタＧａｌα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼはブタ細胞表面にＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープを生じさせる。このエピトープはヒト抗Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ抗体によって認識され、このヒト抗Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ抗体が異種移植されたブタの細胞、組織及び器官の超急性拒絶反応の原因となる。このような超急性拒絶を軽減する方法も提供される。
【選択図】なし

Description

発明の詳細な説明

本発明は異種移植（異なる生物種間の移植）に関するものであり、特に異種移植片拒絶反応を軽減する方法、動物個体内での異種移植組織の維持、異種移植治療に有用なヌクレオチド配列、拒絶反応耐性を示すトランスジェニック臓器並びにその組織が異種移植に際して拒絶反応耐性を示すようなトランスジェニック動物に関する。

人間の移植用の組織が不足している現状から、臓器源としての可能性をもつ異種移植片について綿密に調査されるようになってきた。しかし、ヒト以外の生物種の組織を人間に対して移植した場合、その生物種に存在する抗原に対して反応する自然抗体が人間の血清中に存在するために超急性拒絶反応を起こしてしまう。かかる超急性拒絶反応は移植して１０〜１５分以内に起こる。この現象は、一般に、抗体・補体・好中球・血小板その他の炎症メディエーターの幾つか又はこれらすべての存在に依存する。「不調和（ｄｉｓｃｏｒｄａｎｔ）」種間（自然抗体の生ずる種同士）での血管形成臓器の移植において、自然抗体に最初に遭遇する細胞は血管内壁の内皮細胞であり、抗体が異種抗原その他の因子に結合することによってこれらの細胞が活性化され、その結果超急性拒絶反応を引き起こしている可能性が高い。

異種移植組織上で標的となり得る異種抗原の素性については余り判然としていない。Ｐｌａｔｔ他（Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ ５０：８１７-８２２，１９９０）及びＹａｎｇ他（Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ．Ｐｒｏｃ．２４：５９３-５９４，１９９２）は様々な分子量の３つの糖タンパク質の組合せ（トリアド）がブタ内皮細胞の表面に存在する主要な標的であるとしている。他の研究者ら（Ｈｏｌｇｅｒｓｓｏｎ他，Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔ．Ｐｒｏｃ．２４：６０５-６０８，１９９２）は糖脂質が最も重要な異種抗原であるとしている。

今回、我々は、異種移植片拒絶反応、特にブタ組織についての異種移植片拒絶反応が、ガラクトースとα（1,3）結合したガラクトース（Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープ）に対する反応性抗体と関連していることを発見した。異種移植組織のＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対する反応性抗体の作用を変化させると拒絶反応に変化が生ずる。

本発明の最初の態様によれば、治療の対象たる動物における異種移植片拒絶反応を防止する方法にして、ガラクトースとα（1,3）結合したガラクトースをもつ異種移植抗原に結合する抗体のアンタゴニストの有効量を当該動物に投与することを含んでなる方法が提供される。

本発明は、別の態様では、動物個体内で異種移植組織を維持する方法にして、異種移植抗原エピトープＧａｌα（1,3）Ｇａｌに結合する抗体のアンタゴニストの移植片拒絶有効量を当該動物に投与することを含んでなる方法に関する。

本発明のまた別の態様では、Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープと抗体の結合を抑止する方法にして、Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対する抗体の結合を阻止（ブロック）するアンタゴニストを用いて、抗体とエピトープとの相互作用を変化させることを含んでなる方法が提供される。

好ましくは、異種移植の受容者は人間である。年齢は異種移植についての決定因子ではないが、７５歳を超える年配者に対しては移植は普通行われない。本発明は特に異種移植組織の人間への移植を主題とする。

異種移植する組織はブタ由来のものが好ましい。ブタ以外の哺乳動物由来の組織についても本発明での使用が見込まれる。異種移植する組織は、例えば腎臓・心臓・肺又は肝臓のような器官（臓器）であるのが好ましい。異種移植組織は、また、器官の一部・細胞集塊・腺などであってもよい。その具体例は、水晶体・ランゲルハンス島細胞・皮膚及び角膜組織などである。Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープをもつ抗原を発現する異種移植組織であればどんなものでも本発明に使用することができるので、異種移植組織の素性それ自体は決定的な重要性をもたない。

異種移植組織上にて発現するＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対して抗体が結合すると、体液性免疫のみならず細胞性免疫による組織片拒絶反応を引き起こして、非常に短時間のうちに（例えば、１時間も経たないうちに）組織片の拒絶をもたらす。抗体とＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープの結合反応に拮抗するアンタゴニストは抗体の結合を阻止して、異種移植片拒絶反応を阻害する。抗体の結合が阻止されるため、組織片拒絶反応を引き起こす免疫応答が抑止される。

本発明のさらに別の態様によれば、Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌに対する抗体の作用を変化させるアンタゴニストが提供される。

Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ結合に対する抗体の作用を変化させることのできるアンタゴニストであればどんなものでも本発明に利用し得る。ここでいう「変化」とは、抗体の結合を阻止すること或いはＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対する抗体の親和反応性を減少させることを意味する。種々の機構が、こうしたエピトープに対する抗体の結合の阻止又は抗体の親和性の減少と結び付き得る。そうした機構には、抗体反応性部位との結合又は会合並びに抗体反応性部位のコンホメーション変化などが含まれ、例えば、活性部位に関与する残基又は活性部位に隣接する残基又は活性部位から遠位にある残基との結合によって、活性部位のコンホメーションが変わり、その結果Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープと結合できなくなったり或いはエピトープに対する結合の親和性が低下する場合が挙げられる。例えば、当業者に周知の技術（Ｃｏｌｉｇａｎ他編，ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓ Ｉｎ Ｉｍｍｕｎｏlｏｇｙ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（ニューヨーク），１９９２；Ｈａｒｌｏｗ及びＬａｎｅ著，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（ニューヨーク），１９８８；並びにＬｉｄｄｅｌｌ及びＣｒｙｅｒ著，Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ ＧｕｉｄｅＴｏ Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ（英国ウェストサセックス州チチェスター），１９９１などを参照）によれば、自然抗体又はそのフラグメントに対して作製した抗イディオタイプ抗体を用いることによって、抗体反応部位のこうしたコンホメーション変化を引き起こすことができる。

同じく当業者に周知の事項であるが、かかる抗イディオタイプ抗体の臨床的有用性を高めるために、例えばＦａｂ′フラグメントの調製のような酵素的手法或いはキメラ抗体・人体適応抗体又は単鎖抗体の調製のような組換え技術を用いて、抗イディオタイプ抗体を修飾することもできる。

本発明は特定のアンタゴニストには限定されず、Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対する特異的抗体の相互作用を変化させるアンタゴニストで非毒性のものであればどんなものでも本発明に使用し得る。好適なアンタゴニストの具体例には、D-ガラクトース、メリビオース、スタキオース、メチル-α-D-ガラクトピラノシド、D-ガラクトサミン及びこれらの誘導体が含まれる。「誘導体」という用語には、例えば、アルキル・アルコキシ・アルキルコキシ・アラルキルアミン・ヒドロキシ・ニトロ・ヘテロ環・硫酸及び／又はシクロアルキル置換基を単独又はそれらの組合せとして含むもので、アンタゴニスト活性をもつ誘導体が包含される。アンタゴニスト活性の有無は本明細書中に記載された方法によって評価することができる。上記の炭水化物又は誘導体の１種類以上が構成成分として含まれる高分子炭水化物も本発明に利用し得る。

Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープとの反応性をもつ抗体の相互作用を変化させるのに有効なアンタゴニストの量は数多くの要因に左右される。かかる要因には、治療すべき動物の種類、移植される組織の生物種、移植受容者の体力（年齢・体重・性別及び健康状態）などが含まれる。人間の移植受容者に例えばブタなどの組織を移植する場合、アンタゴニストの投与量は一般に顧問医師の判断に委ねられるであろう。一例として、人間が被術者である場合のアンタゴニストの移植片拒絶有効量は、単位投与量にして０.０１ｍｇから１０００ｇｍのオーダーであり、好ましくは、単位投与量にして、１０ｍｇ〜５００ｍｇ、さらに好ましくは５０ｍｇ〜３００ｍｇ、さらに一段と好ましくは５０ｍｇ〜２００ｍｇである。

拒絶反応を防止して異種移植片を維持するためのアンタゴニストの投与スケジュールは上述の通り様々な要因に左右される。毎日、毎週或いは毎月といった具合に様々な投与体制が考えられる。

アンタゴニストの投与方式及びその投与量は本発明においては決定的な重要性をもたない。アンタゴニストは、非経口投与（静脈内、筋肉内又は臓器内注射）、経口投与、経皮投与、或いは膣腔又は肛門経由で投与してもよいし、或いは当業者に周知のその他の投与法で投与してもよい。アンタゴニストは固形でも液状でもよく、通常は医薬的又は獣医学的に許容される賦形剤及び／又は担体を含んでいる。本発明において用いることのできる投与形態の具体例は上述の通り当業者には周知であり、例えばＲｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ ＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ（Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ，１０ｔｈ Ｅｄｉｔｉｏｎ；この文献は文献の援用によって本明細書の内容の一部をなす）などに記載されている。

本発明のさらに別の態様では、α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列並びにその変異体が提供される。当該ヌクレオチド配列としてはブタのα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼをコードするものが好ましい。

ヌクレオチド配列はＤＮＡでもＲＮＡでもそれらの混合物であってもよい。当業者に周知の通り、ヌクレオチド配列又は単離核酸は、プラスミドやウイルスベクターなどの、複製用ＤＮＡ・ＲＮＡ又はＤＮＡ／ＲＮＡベクターに挿入することができる（Ｓａｍｂｒｏｏｋ他，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（ニューヨーク），Ｓｅｃｏｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，１９８９）。

α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列は、プロモーター、エンハンサー、及び発現・転写・翻訳に必要なその他の調節配列を含んでいてもよい。かかる配列を含むベクターは、追加遺伝子及び／又は選択マーカー（さらには細胞内でのベクターの増殖及び維持に必要な因子）の挿入のための制限酵素部位を含んでいてもよい。

α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼをコードするヌクレオチド配列の変異体が特に好ましい。その理由は、かかる変異体を当業者に周知の相同的組換え技術（Ｃａｐｅｃｃｈｉ Ｍ.Ｒ.，“Ａｌｔｅｒｉｎｇ ｔｈｅ Ｇｅｎｏｍｅ ｂｙ Ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓ Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ”，Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４４：１２８８-１２９２，１９８９；Ｍｅｒｌｉｎｏ Ｇ.Ｔ.，“Ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ Ａｎｉｍａｌｓ ｉｎ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ”，ＦＡＳＥＢ Ｊ．５：２９９６-３００１，１９９１；Ｃｏｓｇｒｏｖｅ他，“Ｍｉｃｅ Ｌａｃｋｉｎｇ ＭＨＣ Ｃｌａｓｓ ＩＩＭｏｌｅｃｕｌｅｓ”，Ｃｅｌｌ ６６：１０５１-１０６６，１９９１；Ｚｉｊｌｓｔｒａ他，“Ｇｅｒｍ-ｌｉｎｅ Ｔｒａｎｓｍｉｓｓｉｏｎ ｏｆ ａｄｉｓｒｕｐｔｅｄ Ｂ２-ｍｉｃｒｏｇｌｏｂｕｌｉｎ ｇｅｎｅｐｒｏｄｕｃｅｄ ｂｙ ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ ｉｎ ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ”，Ｎａｔｕｒｅ ３４２：４３５，１９８９）に利用すれば、野生型α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼ遺伝子を不活性化することができるからである。

変異型α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼのヌクレオチド配列には、野生型α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼに対して生成変異体が機能的ガラクトシルトランスフェラーゼをコードしなくなるようにヌクレオチドの欠失・挿入・置換・付加処理を行ったものが含まれる。こうした変異型ヌクレオチド配列を相同的組換え技術に利用することができる。こうした相同的組換え技術においては、変異型配列が、１〜約５００個の細胞からなる幹細胞・卵又は新受精細胞中の野生型ゲノム配列と組換えを起こす。相同的組換えに利用されるヌクレオチド配列は単離されたヌクレオチド配列であってもよいし、ベクターに組込まれた形であってもよい。組換えは無秩序に起こる事象であって、組換えに際して機能的遺伝子の破壊が起こる。

野生型遺伝子の機能を破壊するための相同的組換え及びその他の技術で生み出したトランスジェニック動物も、それから得られる器官と同様に、本発明の範囲に含まれる。一例として、非機能的なα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼゲノム配列を有するトランスジェニック動物を生み出すための相同的組換え技術を利用してトランスジェニックブタを作り出すことができる。こうしたトランスジェニック動物から得られる組織を人間の患者への異種移植に利用すれば、Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープとそれに対して反応性をもつ循環中のヒト抗体との免疫反応をなくすことができる。このような移植片は移植受容者によって十分に受け入れられると考えられる。移植組織にはＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープ関連抗原以外にも免疫反応を誘発する抗原が含まれている可能性があるが、かかる移植組織に対する免疫反応の主原因を取り除けば、普通の拒絶反応治療（シスロスポリンのような免疫抑制剤による治療）と併用することによって異種移植片は比較的十分に受け入れられるようになるはずである。

以下、本発明を非限定的な図面及び実施例を参照して説明する。

配列表の簡単な説明
配列番号：１ ブタＧａｌα（1,3）トランスフェラーゼの部分塩基配列及び部分予想アミノ酸配列。

配列番号：２ ブタＧａｌα（1,3）トランスフェラーゼの全塩基配列及び全予想アミノ酸配列。

配列番号：３ ＰＣＲプライマーαＧＴ-１の塩基配列。

配列番号：４ ＰＣＲプライマーαＧＴ-２の塩基配列。

配列番号：１及び配列番号：２に関して、本発明はこれらに示す特定の配列に限定されるものではなく、上述の変異体に加え、ブタα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼ遺伝子の天然に産する対立型変異体、さらにこれらの配列に示したアミノ酸配列を変えないような核酸変異（例えば、縮重コドンの３番目のヌクレオチドの変更）も含まれる。

実施例１
材料と方法
細胞
ブタの細胞と組織は屠殺場で屠殺直後の動物から入手した。全血を８００×ｇで遠心して、赤血球（ＲＢＣ）を得てリン酸塩類緩衝溶液（ＰＢＳ）で３回洗浄し、ブタ末梢血中リンパ球（ＰＢＬ）はＩＳＯＰＡＱＵＥＦＩＣＯＬＬを用いた密度勾配遠心法で単離した（Ｖａｕｇｈａｎ他，Ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ ３６：４４６-４５０，１９８３）。ブタ脾細胞は脾臓全体から得たもので、組織を篩に通すことでバラバラに細切して単細胞懸濁液とした。内皮細胞（ＥＣ）の培養は、無菌ブタ大動脈をコラゲナーゼ・タイプ４（Ｗｏｒｔｈｉｎｇｔｏｎ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐ．社製，米国ニュージャージー州）で処理した後、単離した細胞をゼラチン被覆平板上ダルベッコの修正イーグル培地（ＤＭＥＭ）（ＩＣＮ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌｓ Ａｕｓｔｒａｌａｓｉａ Ｐｔｙ Ｌｔｄ.社製，オーストラリア国ニューサウスウェールズ州セブンヒルズ）中３７℃で増殖させることにより、確立した。これらのＥＣ培養細胞が内皮細胞由来のものであることは、ウサギ抗ヒトフォンビルブランド因子抗体（Ｄａｋｏ Ａ/Ｓ社製，コペンハーゲン）及び間接免疫蛍光法で確認した。用いたＣＯＳ細胞は完全補足ＤＭＥＭ培地中で維持した。

抗体
ヒト血清は一群の健常献血者から得たもので、使用前に加熱不活化してプールしておいたものである。ｍＡｂ ＨｕＬｙ-ｍ３（ＣＤ４８）を陰性対照として用いた（上掲のＶａｕｇｈａｎ他の報文）。ＩｇＭの破壊には、ヒト血清を同じ体積の５〜２００ｍＭの2-メルカプトエタノールと３７℃で１時間インキュベートした。

吸収
プールしておいた血清を同体積の洗浄充填細胞に３７℃で１５分間、４℃で１５分間吸収させ、得られた血清について同じ操作を３回繰り返した。メリビオース-アガロース（Ｓｉｇｍａ社製，米国ミズーリ州セントルイス）及びセファロース（Ｐｈａｒｍａｃｉａ ＬＫＢ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社製，スウェーデン国ウプサラ）を用いた吸収の場合は、同体積の充填ビーズと血清を３７℃で１６時間インキュベートして、遠心でビーズを除去し、この吸収操作を数回繰り返した。

血清学的アッセイ
ａ）血球凝集反応：９６穴プレートに入ったヒト血清５０μｌに０．１％ブタＲＢＣを５０μｌ加え、３７℃で３０分間、室温で３０分間及び氷浴上で６０分間インキュベートしてから、血球凝集の有無について巨視的及び顕微鏡学的に判定した。ｂ）ロゼット形成：塩化第二クロムでヒツジ抗ヒトＩｇＧをヒツジＲＢＣにカップリングして、ロゼット形成アッセイ（Ｐａｒｉｓｈ他，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ２０：１７３-１８３，１９７８）に用いた。ｃ）サイトフルオログラフィ分析はＦＡＣＳｃａｎ（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ社製，米国カリフォルニア州サンホセ）で行った（Ｖａｕｇｈａｎ他，Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ３３：１１３-１１７，１９９１）。ｄ）間接免疫蛍光分析は、フルオレセイン標識ヒツジ抗ヒトＩｇＭ又はＩｇＧ（Ｓｉｌｅｎｕｓ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｐｔｙ Ｌｔｄ社製，オーストラリア国ヴィクトリア州ホーソーン）を用いて、６穴組織培養平板上の細胞単層で行った（上掲のＶａｕｇｈａｎの報文）。

糖阻害
次の２通りの糖阻害アッセイを行った。ａ）９６穴プレートに入ったヒト血清２倍稀釈系列５０μｌに５０μｌの糖を加え、４６℃で一晩インキュベートし、次いで０.１％ブタＲＢＣを５０μｌ加えて血球凝集アッセイを行った。ｂ）血球凝集力価が５０％となる稀釈率よりも低い稀釈率でＰＢＳ中に稀釈したヒト血清を糖２倍稀釈系列（３００ｍＭから開始）に加えて、４６℃で一晩インキュベートし、しかる後に０.１％ブタＲＢＣを５０μｌ加えて血球凝集アッセイを行った。

ネズミＧａｌα（1,3）トランスフェラーゼｃＤＮＡ構築体
マウスα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼの公知の配列（Ｌａｒｓｅｎ他，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６４：１４２９０-１４２９７，１９８９）及びポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）技術を利用して、マウスα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼをコードするｃＤＮＡクローンを生産した。簡単に述べると、成熟αＧＴの最初の６個のアミノ酸をコードしたセンスオリゴヌクレオチドであってＨｉｎｄIII制限酵素部位を含んでいるαＧＴ-１（５′-ＧＡＡＴＴＣＡＡＧＣ ＴＴＡＴＧＡＴＣＡＣ ＴＡＴＧＣＴＴＣＡＡＧ-３′）と、成熟αＧＴの最後の５個のアミノ酸とインフェーズ終結コドンをコードしたアンチセンスオリゴヌクレオチドであってＰｓｔＩ制限酵素部位を含んでいるαＧＴ-２（５′-ＧＡＡＴＴＣＣＴＧＣ ＡＧＴＣＡＧＡＣＡＴ ＴＡＴＴＣＴＡＡＣ-３′）の２種類のオリゴヌクレオチドを合成した。このオリゴヌクレオチド対を使用して、Ｃ５７ＢＬ/６脾細胞ｃＤＮＡライブラリー（Ｓａｎｄｒｉｎ他，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１９４：１６３６-１６４１，１９９２）から１１８５ｂｐフラグメントを増幅した。この１１８５ｂｐフラグメントを低ゲル化点アガロースゲルで精製し、ＨｉｎｄIII及びＰｓｔＩ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）制限エンドヌクレアーゼで消化して、Ｔ４リガーゼ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）を用いてＨｉｎｄIII／ｐｓｔＩ消化ＣＤＭ８ベクター（Ｓｅｅｄ，Ｂ.，Ｎａｔｕｒｅ ３２９：８４０-８４２，１９８７）に指向的にクローニングした。この連結産物でＭＣ１０６１/ｐ３を形質転換して、生成コロニーから以降の研究用ＤＮＡを調製した。以降の研究のために、１１８５ｂｐフラグメントを有する１種類のプラスミド（ｐａＧＴ-３）を選択した。プラスミドＤＮＡを調製して、正しいＤＮＡ配列であることを確認するためにその配列を決定し、ＤＥＡＥ/デキストランを利用したＣＯＳ細胞トランスフェクション実験（Ｖａｕｇｈａｎ他，Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ３３：１１３-１１７，１９９１；Ｓａｎｄｒｉｎ他，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１９４：１６３６-１６４１，１９９２；Ｓｅｅｄ，Ｂ.，Ｎａｔｕｒｅ３２９：８４０-８４２，１９８７）に使用した。

実施例２
ヒト抗ブタ抗体による各種細胞に存在するエピトープの検出
ヒト血清中にブタ細胞に対する抗体が含まれていて、それが主にＩｇＭクラスからなっていることを確認するために、ヒト血清のプール（１０人のドナーから得た）を調製し、ブタ赤血球（血球凝集テストによる）、ブタリンパ球（ロゼット形成テスト及びフローサイトメトリーによる）、ブタ脾細胞（ロゼット形成テストによる）及びブタ内皮細胞（フローサイトメトリーによる）と反応する抗体が含まれていることを見出だした（図１及び図２）。吸収試験の結果は、ＲＢＣ・脾細胞又はＰＢＬで吸収処理すると他の細胞との反応性が除かれることから（図１Ａ及び図２）、これらの組織すべてに同一の異種抗原が存在していることを示していた（図１及び図２）。ＥＣを用いて血清プールを吸収処理すると、ＥＣ反応性抗体がすべて除かれる（図２ａ）と同時に、すべてのＰＢＬ反応性抗体が完全に除かれ、かつＲＢＣ血球凝集性抗体がほとんどすべて除かれる（力価が１/１２８〜１/２に落ちる）（図１Ａ）。ＲＢＣで吸収処理するとＥＣ反応性抗体の７５％が除かれ（図２Ｂ）、脾細胞で吸収処理するとＥＣ反応性抗体が完全に除かれる（図２Ｃ）ことが、フローサイトメトリーで判明した。このようにブタの赤血球、ＰＢＬ、脾細胞及び内皮細胞には共通のエピトープが存在している。

プロテインＡ-セファロースカラム（ＩｇＭは結合しない）に血清を通しても血清の力価が変化せず（図３）、プロテインＡ-セファロースカラムから溶離したＩｇＧ抗体がほんのわずかしかＲＢＣと反応しないことから分かる通り、血清プール中の活性のほとんどはＩｇＧではなくてＩｇＭによるものであった。さらに、ＩｇＭは破壊するがＩｇＧを損なうことのない2-メルカプトエタノールで血清を処理すると、抗体活性が完全に失われた（図３）。血清をセファクリルゲルクロマトグラフィーで分画すると、高分子量画分（ＩｇＭ）はＲＢＣと反応性を有していたが、低分子量画分（ＩｇＧ）は反応性を有していなかった（データは示さず）。このように、様々なブタ細胞が同じようなエピトープを有しており、すべてがＩｇＭ抗体と反応し、我々のアッセイではブタ細胞に対するヒト血清中にはＩｇＧ活性は少ししか見出だせなかった。

実施例３
主に末端ガラクトース残基に対するヒト抗ブタ抗体の反応
様々な炭水化物による血球凝集反応の阻止能力を調べた（図４）。力価の減少で阻止能力を測定すると、テストした糖のうち、５００ｍＭのガラクトース、メチル-α-D-ガラクトピラノシド、メリビオース及びスタキオースで阻止が観察され（これらすべてについて血清プールの力価が７５％低下した）（図４）、３００ｍＭのD-ガラクトサミンで力価が５０％低下したのが観察された（図４）。これら以外のテストした単糖類（図４の中の説明に記載）では、いずれも、血球凝集力価には何の影響もなかった（図４）。メリビオースもスタキオースも末端ガラクトース残基を有していることから、上記の結果はガラクトースがエピトープの一部であることを示している。興味深いことに、α（メチル-α-D-ガラクトピラノシド、メリビオース及びスタキオース）型の立体配置とβ（メチル-β-D-ガラクトピラノシド）型の立体配置のガラクトースでは血清阻止能力に差がある（β型立体配置のものは血清を阻止する能力がない）。

凝集を阻止する糖に対する抗体の相対的な結合活性を、凝集力価を５０％阻止する糖の濃度から、評価した。こうした阻止は、D-ガラクトース及びメリビオースでは１.５ｍＭ未満で達成され、スタキオース及びメチル-α-D-ガラクトピラノシドでは４.７ｍＭで達成され、D-ガラクトサミンでは１８.７ｍＭで達成された（図５）。対照的に、D-グルコース及びメチル-β-D-ガラクトピラノシドでは３００ｍＭ濃度でも何の影響もみられなかった。このように、D-ガラクトースは低濃度（＜１.１５ｍＭ）でも異種抗体の強い阻害剤であるので、D-ガラクトースがエピトープの重要な部分である。また、メチル-α-D-ガラクトピラノシドが低濃度（＜１.１５ｍＭ）で凝集を阻止する能力をもち、それとは対照的にメチル-β-D-ガラクトピラノシド（３００ｍＭ）が阻止能力をもっていなかったことは、ガラクトース残基（これが末端糖残基である可能性が高い）が次の残基とβ結合ではなくてα結合で結合していることを示している。α結合した末端ガラクトース残基を有するメリビオース（Ｇａｌα（1,6）Ｇｌｃ）及びスタキオース（Ｇａｌα（1,6）Ｇａｌα（1,6）Ｇｌｃβ（1,2）Ｆｒｕ）で得られた結果は、この結論に一致する。ガラクトサミン（ガラクトースにアミン側鎖の付加したもの）で観察された血球凝集阻止（１８.７ｍＭにおいて力価の５０％が阻止）は、エピトープに関与する２番目の炭水化物によるためか或いはこの糖に対する異種抗体の親和性が低いことによるためであると考えられる。

ガラクトースとの反応をさらに詳しく調べるために、血清プールを同じ体積のメリビオースセファロース又はセファロース（対照）で４回吸収処理し、メリビオースセファロースで１回吸収処理すると抗体の力価が１/３２〜１/４まで下がり、２回連続して吸収処理するとそのさらに１/２まで低下した（図６）。セファロースビーズを用いても何の効果もみられなかった（図６）ことから分かる通り、このような吸収はメリビオースに特異的であった。このように、異種抗原と反応性をもつ抗体の大多数（＝９４％）はα結合したガラクトースと反応する。

実施例４
α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼでトランスフェクションしたＣＯＳ細胞とヒト抗ブタ抗体との反応
α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼ（末端の次のガラクトースにα（1,3）結合した末端ガラクトース残基を転移する酵素）をコードするｃＤＮＡは、マウス（Ｌａｒｓｅｎ他，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６４：１４２９０-１４２９７，１９８９）及びウシ（Ｊｏｚｉａｓｓｅ他，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６４：１４２９０-１４２９７，１９８９）の両方で既にクローニングされている。そのデータを利用して、我々はＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープの役割を調べるためのトランスフェクション実験を他の単離に用いた。マウストランスフェラーゼをＰＣＲ技術を用いてｃＤＮＡライブラリーから単離して、そのＰＣＲ産物をＣＤＭ８ベクターに指向的にクローニングしてＣＯＳ細胞中での発現実験を行った。このｃＤＮＡインサートは、報告されているヌクレオチド配列（Ｌａｒｓｅｎ他，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６４：１４２９０-１４２９７，１９８９）と同一であった。旧世界ザル由来のＣＯＳ細胞を選んだのは、この細胞がヒト血清ともＩＢ-４レクチン（このレクチンはＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対して特異的である）とも反応しないからである（表１）。α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼでＣＯＳ細胞をトランスフェクションした後、ＩＢ-４レクチンとの結合によって、その細胞表面にＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープが検出されたが（表１）、この細胞は血清プールとも強い反応性を有していた。ヒト血清をブタＲＢＣで吸収処理すると、Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ⁺ＣＯＳ細胞に対する反応性が除去された（表１）。血清をプロテインＡ-セファロースカラムに通しても、ＦＩＴＣ抱合ヒツジ抗ヒトＩｇＭを第２抗体として用いたときの血清のＧａｌα（1,3）Ｇａｌ⁺ＣＯＳ細胞に対する反応性には何の影響も現れなかった（この結果は反応性細胞の数、染色強度及び血清の力価が同じことに反映されている（表１））。この結果とは対照的に、上記カラムから溶離させた抗体はＧａｌα（1,3）Ｇａｌ⁺ＣＯＳ細胞とはほんの少ししか反応せず、そうした反応もＦＩＴＣ抱合ヒツジ抗ヒトＩｇＧ又はＦＩＴＣ抱合ヒツジ抗ヒトＩｇを第２抗体として用いたときにだけ観察され、ＦＩＴＣ抱合ヒツジ抗ヒトＩｇＭを用いたときには観察されなかった（表１）。このように、ヒト血清は、Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ⁺ＣＯＳ細胞で発現したＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対するＩｇＭ抗体を有している。ＣＤ４８⁺ＣＯＳ細胞が血清ともＩＢ-４レクチンとも反応しないこと（表１）から分かる通り、こうした血清とＧａｌα（1,3）Ｇａｌ⁺ＣＯＳ細胞の反応は特異的なものであり、トランスフェクション操作によるものではない。さらに、ブタのＲＢＣ（血球凝集法で検出）及びＥＣ（ＦＡＣＳ分析で検出）に対する反応性がＧａｌα（1,3）Ｇａｌ⁺ＣＯＳ細胞での吸収処理で除去されるのに対して、未トランスフェクションＣＯＳ細胞での吸収処理では除去されない。このように、ヒト血清プールにはＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対する反応性をもつＩｇＭ抗体が含まれている。

ヒト血清中に含まれるＧａｌα（1,3）Ｇａｌ反応性抗体のレベルは、ブタ異種移植片に対して患者が超急性拒絶を起こす傾向を求めるのに利用することができる。さらに、このような抗体レベルは、このような異種移植の前に患者に投与すべき抗体アンタゴニストの量の決定に利用することもできる。

こうした抗体のレベルは、上述のトランスフェクションＣＯＳ細胞及び未トランスフェクションＣＯＳ細胞をＧａｌα（1,3）Ｇａｌ⁺及びＧａｌα（1,3）Ｇａｌ^-吸収剤として用いて、次いでブタのＲＢＣ及び／又はＥＣに対する吸収処理血清の反応性を測定することによって、効果的に決定することができる。血清抗体のレベルが高いほど、Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ⁺吸収剤に吸収させた血清の反応性とＧａｌα（1,3）Ｇａｌ^-吸収剤に吸収させた血清の反応性との差が大きくなる。他の生物種由来の細胞（例えばヒトの細胞）もこうしたアッセイに使用することができる。また、ネズミのトランスフェラーゼをコードするＤＮＡ配列を用いる代りに、ブタのトランスフェラーゼをコードするＤＮＡ配列（実施例５参照）を用いることもできる。ネズミとブタのトランスフェラーゼではそれらの作用に差異（例えば、酵素のガラクトース基質の巨大分子環境に対する感受性の違い）がみられる可能性があり、ブタの異種移植に関して問題となるのはブタの巨大分子環境下でのＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対する抗体のレベルであるので、こうしたブタのトランスフェラーゼが好ましい。

上述の事項に加え、上記のトランスフェクションしたＧａｌα（1,3）Ｇａｌ^-細胞は、ヒト血清から抗Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ抗体を除去するための吸収剤として用いることもでき、例えば、こうした細胞を固体担体に結合して、その固定化細胞に血清を通せばよい。

実施例５
ブタα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼのクローニング
ネズミのα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼのｃＤＮＡクローンをハイブリダイゼーションプローブとして利用して、λＧＴ１１ブタ脾ｃＤＮＡライブラリー（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製，カリフォルニア州パロアルト）からＳａｍｂｒｏｏｋ他の文献（上掲）に記載された常法に従いブタα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼをクローニングした。このクローンｐＰＧＴ-４はＡＧＡＬに寄託されており、その受託番号はＮ９４/９０３０である。配列番号：１は、クローンｐＰＧＴ-４の配列解析によって決定したブタＧａｌα（1,3）トランスフェラーゼの部分塩基配列及び部分予想アミノ酸配列である。この配列は５′末端側が不完全である。

ｐＰＧＴ-４クローンのｃＤＮＡインサートをハイブリダイゼーションプローブとして利用して、λＧＴ１０中の５′ＳＴＲＥＣＨブタ肝ｃＤＮＡライブラリーからＳａｍｂｒｏｏｋ他の文献（上掲）に記載された常法に従いブタα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼの５′末端をクローニングした。上記インサートは、λオリゴヌクレオチド及びブタの配列に合わせて作製したオリゴヌクレオチドを用いたＰＣＲ技術で得た。このＰＣＲ産物をＳｍａＩ切断ｐＢＬＵＥＳＣＲＩＰＴＫＳ⁺にクローニングした。このクローンｐＰＧＴ-２はＡＧＡＬに寄託されており、その受託番号はＮ９４／９０２９である。

配列番号：２は、クローンｐＰＧＴ-４及びｐＰＧＴ-２の配列解析によって決定したブタＧａｌα（1,3）トランスフェラーゼの全塩基配列及び全予想アミノ酸配列である。このブタのトランスフェラーゼの配列はネズミ及びウシα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼ遺伝子のいずれとも高い相同性を示す。

配列番号：１及び配列番号：２の部分ｃＤＮＡ及び全ｃＤＮＡのいずれも、上述の異種移植治療に用いることができる。例えば、当業者に周知の技術を利用して、配列番号：１又は配列番号：２のいずれかのヌクレオチド配列の全体又は一部を、複製ＤＮＡ・ＲＮＡ又はＤＮＡ／ＲＮＡベクターに挿入すれば、これを用いてトランスジェニック細胞又は動物中でアンチセンスＲＮＡが発現するように仕向けることによって、ブタ細胞中でのＧａｌα（1,3）トランスフェラーゼの発現を低下させることができる。Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，６（１０）：９５８-９７６，１９８８などを参照。

さらに、次の実施例で説明する通り、配列番号：１又は配列番号：２の配列は、ブタα（1,3）トランスフェラーゼをコードするゲノムクローンの性状分析や単離のためのハイブリダイゼーションプローブとして用いることもできる。ゲノムヌクレオチド配列の変異体も、上述した通りブタ細胞中で機能的遺伝子の破壊を起こすような相同的組換え技術に用いることができる。

実施例６
α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼをコードするブタ遺伝子の性質並びにその単離
ブタ脾組織から調製したゲノムＤＮＡをＥｃｏＲＩ、ＢａｍＨＩ、ＰｓｔＩ、ＨｉｎｄIII、ＫｐｎＩ及びＢｓｔＥIIで消化して、０.８％アガロースゲル上で電気泳動し、ナイロンフィルターに移して、最終洗浄を０.１×ＳＳＣ，０.１％ＳＤＳ中６５℃で行った。図７に示す通り、ゲノムのサザーンブロッティングの結果は単純なパターンを示しており、この遺伝子がゲノムサイズ約２５ｋｂの単コピーとして存在していることが示唆される。

ｐＰＧＴ-４クローンのｃＤＮＡインサートをハイブリダイゼーション用のプローブとして利用して、ブタゲノムＤＮＡＥＭＢＬライブラリー（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製，カリフォルニア州パロアルト）からＳａｍｂｒｏｏｋ他の文献（上掲）に記載された常法に従いブタα（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼ遺伝子をクローニングした。このクローニングの結果、ブタトランスフェラーゼ遺伝子の異なる領域を含んだλＰＧＴ-ｇ１とλＰＧＴ-ｇ５の２つのλファージクローンを単離した。

上述の通り、相同的組換え技術を利用して目標とする酵素のネイティブな遺伝子を破壊するために、α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼの遺伝子を用いることができる。この技術で用いられる慣用技術によれば、このような遺伝子破壊は、この実施例で得られたようなゲノムクローンから得られるフラグメントを利用して行われる。遺伝子破壊は体細胞又は幹細胞で行うことができる（上掲のＣａｐｅｃｃｈｉの１９８９の報文参照）。このような遺伝子操作を施した細胞はＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープを産生しないので、こうした細胞自体又はその子孫はヒトの体内で超急性拒絶反応を誘起する可能性が少なく、人間の患者への異種移植に適している。

実施例７
ヒト抗Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ抗体に対する抗イディオタイプ抗体の生産
ヒト抗Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ抗体に対するポリクローナル抗イディオタイプ抗体は、上掲のＣｏｌｉｇａｎ他の１９９２年の報文、上掲のＨａｒｌｏｗ及びＬａｎｅの１９８８年の報文並びに上掲のＬｉｄｄｅｌｌ及びＣｒｙｅｒの１９９１年の報文に記載された手順にしたがって、調製される。プールしておいたヒト血清からヒト抗Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ抗体を実施例３に記載した通り固定化メリビオース（メリビオース-セファロース又はメリビオース-アガロース）に吸収させる。抗体を、常法（高ｐＨ）低ｐＨ、高塩濃度及び／又はカオトロピック試薬など）を用いて溶離する。適当な緩衝液中で透析した後Ｆａｂ′フラグメントを調製する。Ｆａｂ′フラグメントを慣用のアジュバントと共に用いてウサギ、ヤギその他の適当な動物を免疫する。

得られたポリクローナル抗血清がヒト抗体の反応性部位のコンホメーションを変えてＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対するその親和性を低下させる能力を有しているか否かについて試験する。そうした親和性を低下させる血清が所望の抗イディオタイプ抗体を構成する。

モノクローナル抗体は、同じＦａｂ′フラグメントをマウスの適当な株を免疫するための抗原として用いることによって生産される。こうして免疫したマウスの脾細胞をマウスのミエローマ細胞と融合することによってハイブリドーマを作る。上清を試験して、ヒト抗体の反応性部位のコンホメーションを変えてＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対するその親和性を低下させる能力をもつ抗体の有無を確認する。そうした親和性を低下させる抗体が所望のモノクローナル抗イディオタイプ抗体を構成する。

異種反応性ＩｇＭのほとんどが一種類のトランスフェラーゼに対するものであるという今回の知見から、相同的組換え技術を利用しての標的α（1,3）ガラクトシルトランスフェラーゼ遺伝子の破壊によって、当該エピトープを欠いたトランスジェニックブタを生産できる見込みが増した。このような遺伝的に改変したブタは移植に用いることができるはずである。上記遺伝子を破壊しても、通常は当該遺伝子がなくてもブタ及びヒトの生命には何の悪影響も及ぼさないであろう。

本発明を例示するために説明してきたが、本発明は本明細書中に記載された特定の実施例に限定されるものではない。

寄託
上記のクローンｐＰＧＴ-４、ｐＰＧＴ-２、λＰＧＴ-ｇ１及びλＰＧＴ-ｇ５は、それぞれ、受託番号Ｎ９４/９０３０、Ｎ９４/９０２９、Ｎ９４/９０２７、Ｎ９４/９０２８として、Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ Ｇｏｖｅｒｍｅｎｔ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（略号ＡＧＡＬ；住所：１Ｓｕａｋｉｎ Ｓｔｒｅｅｔ，Ｐｙｍｂｌｅ，Ｎ.Ｓ.Ｗ．２０７３，Ａｕｓｔｒａｌｉａ）に寄託されている。これらの寄託は、特許手続上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約（１９７７）に基づいて行われたものである。これらの寄託は１９９４年３月１１日になされた。

図１Ａは、プールしておいたヒト血清の、吸収処理の前後における力価である。力価は、ＲＢＣ（斜線を付した棒）に対する血球凝集反応並びにＰＢＬ（中抜きの棒）及び脾細胞（黒塗りの棒）に対するロゼット形成アッセイで得た。吸収試験の結果は、ＲＢＣ・脾細胞・ＰＢＬで吸収処理すると他の細胞との反応性が除かれることから（図１Ａ及び図２）、これらの組織すべてに同一の異種抗原が存在していることを示している（図１及び図２）。ＥＣを用いて血清プールを吸収処理すると、ＥＣ反応性抗体がすべて除かれる（図２Ａ）と同時に、すべてのＰＢＬ反応性抗体が完全に除かれ、かつＲＢＣ血球凝集性抗体がほとんどすべて除かれる（力価が１/１２８〜１/2に落ちる）（図１Ａ）。ＲＢＣで吸収処理するとＥＣ反応性抗体の７５％が除かれ（図２Ｂ）、脾細胞で吸収処理するとＥＣ反応性抗体が完全に除かれる（図２Ｃ）ことが、フローサイトメトリー（流動細胞計測法）で判明した。このようにブタの赤血球、ＰＢＬ、脾細胞及び内皮細胞には共通のエピトープが存在している。ＥＣで吸収処理した血清は、ＰＢＬ及び脾細胞に対しては試験しなかった。図１Ｂについては、図３参照。 吸収処理の前後における、プールしておいたヒト血清とブタＥＣの試験。各グラフにおいて、吸収処理した血清（点線）又は未吸収血清（実線）を用いてＥＣを試験した。血清の吸収処理は、ＥＣ（グラフＡ）、ＲＢＣ（グラフＢ）及び脾細胞（グラフＣ）を用いて行った。ヒト抗体の結合は、ヒツジ抗ヒトＩｇＭで検出し、フローサイトメトリーで分析した。 処理済ヒト血清及び未処理ヒト血清の血球凝集力価。未処理ヒト血清（Ａ）；プロテインＡ非結合免疫グロブリン（Ｂ）；プロテインＡ溶離免疫グロブリン（Ｃ）；2-メルカプトエタノールで処理した血清（Ｄ）。図１Ｂは、同じデータを示すとともに、高分子量免疫グロブリン画分を用いて得られた追加データも示してある。図１Ｂ：未処理ヒト血清（Ａ）：プロテインＡ非結合免疫グロブリン（Ｂ）；高分子量免疫グロブリン画分（Ｃ）；プロテインＡ溶離免疫グロブリン（Ｄ）；2-メルカプトエタノールで処理した血清（Ｅ）。 正常ヒト血清の血球凝集反応の炭水化物による阻止。ヒト血清の力価を各種の３００ｍＭ炭水化物溶液の存在下で測定した。 正常ヒト血清の血球凝集力価を５０％阻止する炭水化物濃度。図４で血球凝集を阻止した炭水化物だけをこの実験に使用し、グルコース及びメチル-β-ガラクトピラノシドを陰性対照として用いた。 メリビオースカラムによる吸収処理の前後におけるヒト血清の、ブタＲＢＣに対する血球凝集力価。同じ体積のメリビオースセファロース（黒塗りの棒）又はセファロース（中抜きの棒）でヒト血清を吸収させ、その吸収処理の回数を図の横軸に示す。 クローンｐＰＧＴ-４のｃＤＮＡインサートをプローブとして用いたブタゲノムＤＮＡのサザーンブロッティングの結果。

Claims (2)

1. ヒト抗Ｇａｌα（1,3）Ｇａｌ抗体を阻止する方法にして、当該抗体の反応性部位のコンホメーションを変化させて当該抗体のＧａｌα（1,3）Ｇａｌエピトープに対する親和性を低下させることを含んでなる方法。
2. 請求項１記載の方法において、前記抗体の反応性部位のコンホメーションを抗イディオタイプ抗体を用いて変化させることを特徴とする方法。

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