JP2012198225A - 標的分子の検出法 - Google Patents

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Abstract

【課題】核酸アプタマーと特異的に結合する標的分子を検出し定量する方法を提供する。
【解決手段】標的分子に結合しない核酸アプタマー、および、標的分子に特異的に結合する核酸アプタマーに標的分子を含むサンプルを加えた後、両者の核酸アプタマーを一緒にヌクレアーゼで処理し、両者の核酸アプタマーの量比を調べることにより、標的分子の定量を行うことを含む、標的分子の定量方法。
【選択図】なし

Description

本発明は、標的分子と特異的に結合し得るアプタマー群の配列情報を用いて標的分子を検出するための新規の方法に関する。
様々な疾患の診断や治療を行うためには、疾病マーカーとなりうるタンパク質等の検出は極めて重要になっていきている。タンパク質等の生体分子を検出する場合に、検出対象である標的分子と特異的に結合し得る検出用分子を用いて、当該検出用分子と標的分子との相互作用を利用して検出する方法が一般的に行われている。例えば、標的分子としての抗原と相互作用する抗体を用いて、免疫比濁法等の凝集法、沈降法、ＥＬＩＳＡ、イムノクロマトグラフィー法等の様々な方法が使用されている。
近年では、検出用分子として、抗体に換えて、標的分子と特異的に結合し得るアプタマーを用いて検出する試みが数多く行われている。アプタマーは、機能性一本鎖核酸であるため、自動核酸合成機等を用いて簡便に合成することが可能であり、かつ、主にタンパク質からなる抗体よりも安価であるという利点を有する。
アプタマーを用いて標的分子を検出するには、第一に、標的分子に特異的に結合するアプタマーを特定する必要がある。当該アプタマーを探索して特定するには、ＳＥＬＥＸ法（例えば、特許文献１又は２参照。）が知られているが、これは、標的分子に対して、ランダムな配列を持つ多数のオリゴヌクレオチドの混合物であるオリゴヌクレオチドライブラリーを接触させ、標的分子に対して親和性の高いオリゴヌクレオチド群を選抜し、増幅して、標的分子に特異的に結合するかどうかを確認する手法である。
しかし、標的分子に特異的に結合する、特定のアプタマーを得るためには、目的とするアプタマーが見つからないことを避けるために膨大な数のオリゴヌクレオチドからなるオリゴヌクレオチドライブラリーを準備し、その中から、親和性の高いアプタマーをＳＥＬＥＸ法により、何度も選抜、増幅を繰り返す必要がある。
近年、改良ＳＥＬＥＸ方法として、カウンターＳＥＬＥＸ方法（例えば、非特許文献１）や、選抜された親和性の高いオリゴヌクレオチド群を増幅生産して、再び標的分子に結合させる工程を、５〜１０回繰り返すことによって、標的分子に特異的に結合するアプタマーを特定する方法が開発されている（特許文献３）が、まだ、多くの労力を必要とし、簡便に当該アプタマーを探索できる手法になり得ていない。
また、標的分子に特異的に結合するアプタマーを見出すことができたとしても、標的分子の検出に用いるには、当該アプタマーを蛍光物質や放射性同位体等で標識しておく必要がある。標識されたアプタマーを標的分子に結合させ、この標識物質から発するシグナルを測定することで検出を行うためである。ところが、アプタマーに標識物質をつけると、標識物質の影響により、アプタマーと結合分子の結合性が低下し、正確な測定が困難となることが多く、リンカーを用いて行う（例えば非特許文献２または３）、アプタマーと複合体を形成する標識核酸を用いて行う（特許文献４）などの改良方法が開発されているが、アプタマーを効果的に標識する方法は確立されていない。また、１種類のアプタマーでは、精度良く特異的に標的物質を特定することは、難しい場合が多く、さらに精度の高い特異的な検出法の開発が必要とされている。
米国特許公報第５２７０１６３号 特開平８−２５２１００号公報 特開平８−２５２１００号公報 特開２０１０−４１９５１号公報
抗体エンジニアリングの最前線、伊藤嘉浩、シーエムシー出版、２００４年、第１１５−１２２頁（日本） 三輪佳宏（編集）、羊土社、「蛍光・発光試薬の選び方と使い方」、第６０〜６１頁（日本） コマツ（Komatsu, Y.）ら、バイオオーガニック・アンド・メディカル・ケミストリー（Bioorganic & Medicinal Chemistry）、２００８年、第１６巻、第２号、第９４１〜９４９頁
上記で述べたように、アプタマーを用いて標的分子を検出する場合（１）標的分子に特異的に結合するアプタマーを特定する工程と（２）当該アプタマーを標識して、標的分子に結合させることで、標的分子の検出を行う工程との２つの工程が必要となるが、いずれの工程についても上記で述べたように課題が多く、精度や感度において十分なものではない。
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究した結果、異なるランダム配列領域を持つ複数の核酸アプタマーからなるオリゴヌクレオチド集団を標的分子に接触させ、標的分子に結合したオリゴヌクレオチド集団を選抜し、該オリゴヌクレオチド集団の配列を調べることによって標的分子に親和性を有するオリゴヌクレオチド集団の特徴的な配列情報を取得し、これによって標的分子の検出を行うことができることを見出し、本発明を完成させた。
すなわち、本発明は、
〔１〕標的分子を検出する方法であって、該方法が下記の工程(a)〜(e):
(a)標的分子と、ランダマイズされた異なる配列を持つ複数の核酸アプタマーからなるオリゴヌクレオチド集団とを接触させる工程、
(b)上記標的分子と結合するオリゴヌクレオチド集団を選別する工程、
(c)上記選別したオリゴヌクレオチド集団のそれぞれの配列を調べる工程、
(d)上記選別したオリゴヌクレオチドの配列の中から、標的分子に親和性を有するオリゴヌクレオチド集団に特徴的な配列情報を抽出する工程、および
(e)上記配列情報を基にして、標的分子を特定する工程、
を含むことを特徴とする、方法。
〔２〕上記オリゴヌクレオチド集団が、一般式Ｘ１Ｎ１Ｘ２Ｎ２…Ｘｎ−１Ｎｎ−１Ｘｎ（ここで、各Ｘは特定の長さの特定の塩基配列であり、かつ、Ｘ１とＸｎを除く他の少なくとも１つのＸは欠失されていてもよく、各Ｎは長さ１塩基であり、かつ、Ｇ，Ａ，Ｃ，ＴもしくはＵまたはそれらの修飾ヌクレオチドのいずれかであり、ｎは２〜３０の整数である。）によって表される塩基配列を有することを特徴とする、上記〔１〕に記載の方法。
〔３〕Ｘ１とＸｎが相補的に結合することを特徴とする、上記〔２〕に記載の方法。
〔４〕上記オリゴヌクレオチド集団中の核酸アプタマーの個数が３以上１０9以下であることを特徴とする、上記〔１〕〜〔３〕のいずれかに記載の方法。
〔５〕上記一般式のｎが２〜３０の整数であることを特徴とする、上記〔２〕〜〔４〕のいずれかに記載の方法。
〔６〕標的分子と結合しているオリゴヌクレオチド集団を選別する工程（ｂ）が、固相化した標的分子、あるいは担体と結合した標的分子、を使用し、標的分子と結合していないオリゴヌクレオチド集団を洗浄によって除去し、標的分子と結合しているオリゴヌクレオチドを選択することを含むことを特徴とする、上記〔１〕〜〔５〕のいずれかに記載の方法。
〔７〕標的分子と結合しているオリゴヌクレオチド集団を選別する工程（ｂ）が、酵素を用いて、結合していないオリゴヌクレオチドを消化し、標的分子と結合しているオリゴヌクレオチドを選択することを含むことを特徴とする、上記〔１〕〜〔５〕のいずれかに記載の方法。
〔８〕選別したオリゴヌクレオチド集団の配列を調べる工程（ｃ）が、塩基配列決定を行うことを特徴とする、上記〔１〕〜〔７〕のいずれかに記載の方法。
〔９〕オリゴヌクレオチド集団の特徴的な配列情報を抽出する工程（ｄ）が、標的分子と結合するオリゴヌクレオチド集団の配列と、標的以外の分子または標的がない場合で得られたオリゴヌクレオチド集団の配列とを比較することにより、標的分子に親和性を有するオリゴヌクレオチド集団に特徴的な配列情報を抽出することを含むことを特徴とする、上記〔１〕〜〔８〕のいずれかに記載の方法。
〔１０〕上記〔８〕で配列決定して得られた特徴的なオリゴヌクレオチドの集団を使用することを特徴とする、上記〔１〕〜〔９〕のいずれかに記載の方法。
〔１１〕上記工程（ｂ）と上記工程（ｃ）の間に、（ｆ）上記選別したオリゴヌクレオチド集団を増幅する工程を含むことを特徴とする、上記〔１〕〜〔１０〕のいずれかに記載の方法。
〔１２〕上記オリゴヌクレオチド集団の一部の配列に修飾ヌクレオチドを含むことを特徴とする、上記〔１〕〜〔１１〕のいずれかに記載の方法。
〔１３〕上記修飾がメチル化であることを特徴とする、上記〔１２〕に記載の方法。
〔１４〕上記オリゴヌクレオチド集団の核酸アプタマーがペプチド、アミノ酸、糖、ポリアミンまたは脂質と結合していることを特徴とする、上記〔１〕〜〔１３〕のいずれかに記載の方法。
〔１５〕上記オリゴヌクレオチド集団の核酸アプタマーが、ＤＮＡとＲＮＡのキメラであることを特徴とする、上記〔１〕〜〔１４〕のいずれかに記載の方法。
〔１６〕上記〔１〕〜〔１５〕のいずれかに記載の方法を用いて、上記オリゴヌクレオチド集団から、標的分子に特異的に結合するアプタマーを探索する方法。
〔１７〕標的分子に結合しない核酸アプタマー、および、標的分子に特異的に結合する核酸アプタマーに標的分子を含むサンプルを加えた後、両者の核酸アプタマーを一緒にヌクレアーゼで処理し、両者の核酸アプタマーの量比を調べることにより、標的分子の定量を行うことを含む、標的分子の定量方法。
〔１８〕上記〔１６〕の方法によって得られた、標的分子に特異的に結合する、核酸アプタマーを用いて標的分子の定量を行う、上記〔１７〕に記載の方法。
本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願2010-151242号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
本発明は、ランダマイズされた異なる配列を持つ複数の核酸アプタマーからなるオリゴヌクレオチド集団を用いて標的分子を検出する新規な方法を提供するものであり、従来法の標的分子に特異的に結合するアプタマーを特定する工程を必要とせず、あるいは結合、分別、溶出および増幅を含む工程を繰り返してアプタマーを選別するＳＥＬＥＸ法と異なり何度も工程を反復する必要がなく１回のみでよく、さらにまた標的分子に親和性を有する複数の核酸アプタマーを用いて、効率的に高い精度で、標的分子を検出することを可能にするという利点がある。また、これまでＳＥＬＥＸ法では使用できなかった修飾塩基を用いた、または、物質の付加した、または、ＲＮＡとＤＮＡのキメラを有する核酸アプタマーからなるオリゴヌクレオチド集団を用いることができるという利点もある。
また、本発明は標的分子に特異的に結合するアプタマーを探索する方法を提供する。さらに、該アプタマーを標的分子に結合させ、ヌクレアーゼ処理をすることで、標的分子を定量する方法を提供する。
Ｓ１ヌクレアーゼとスプレプトアビジンアプタマーを用いたストレプトアビジンのゲル電気泳動による定量化の結果を示す。 図１の結果を数値グラフ化した図である。横軸がストレプトアビジンアプタマー対コントロールアプタマーの比率を表し、及び、縦軸がストレプトアビジン濃度（μｇ／ｍｌ）を表す。
以下、本発明の実施形態を示しつつ、本発明についてさらに詳説する。
１．定義
本明細書において用いられる用語は、基本的に、化学分野、生命科学分野、遺伝子工学分野などにおける標準的な意味に従って用いられるが、以下、本発明をより明確に説明するために、本発明を説明するための用語の一部について説明する。
本明細書において、「オリゴヌクレオチド」は、リン酸ジエステル結合によって結合されている少なくとも約２０、約５０または約１００個のヌクレオチド、好適には２００個以下のヌクレオチド、を含む核酸分子を意味する。ここで、ヌクレオチドは、グアニン（Ｇ），アデニン（Ａ），シトシン（Ｃ），チミン（Ｔ）もしくはウラシル（Ｕ）またはそれらの修飾ヌクレオチド(または、修飾塩基)を含む（各塩基は、リボヌクレオチド、デオキシリボヌクレオチドのいずれかでもよい。）。
また、オリゴヌクレオチド集団の核酸の種類、大きさ、配列などは、オリゴヌクレオチドと結合する標的分子の種類、性質、性状等に応じて適宜設計されうるものであり、例えば一本鎖部分や二本鎖部分の構造を有していてもよく、さらにステムループ構造、その他の安定構造、例えばバルジループ構造、ヘアピン構造、シュードノット構造、Ｇカルテット構造、三重螺旋構造などを有していてもよい。
本明細書においてオリゴヌクレオチド集団を表記する一般式「Ｘ１Ｎ１Ｘ２Ｎ２…Ｘｎ−１Ｎｎ−１Ｘｎ」とは、ランダマイズされた配列部分（Ｎ１，Ｎ２，…，Ｎｎ−１）を有する核酸アプタマーの塩基配列を表す。式中、Ｘ１，Ｘ２，Ｘ３，…，Ｘｎは、固定された、特定の（「所定の」ともいう）長さの特定の（「所定の」ともいう）塩基配列（ただし、少なくとも１つのＸが欠失されて、該Ｘを構成する塩基配列がない場合も含む。）であり、Ｘの長さは例えば１〜３０塩基が適当であり、特にＸ１とＸｎの長さは、増幅用プライマーのアニーリングが可能な程度の長さであり、例えば１０〜３０塩基である。Ｎは、オリゴヌクレオチドをランダマイズするために可変的であり、その長さは１塩基である。ＸおよびＮを構成するヌクレオチドは、グアニン（Ｇ）、アデニン（Ａ）、シトシン（Ｃ）、チミン（Ｔ）もしくはウラシル（Ｕ）またはそれらの修飾ヌクレオチド（または、人工的ヌクレオチド）のいずれのヌクレオチド（リボヌクレオチド、デオキシヌクレオチド、修飾ヌクレオチドのいずれも含みうる。）で構成されていてもよい。また、Ｘ１とＸｎは、相補的に結合する塩基配列を有してもよい。ここで、「特定の」とは、配列を特定の（もしくは、所定の）ものに固定することを意味し、ランダマイズされる配列部分と区別される。例えば、５’−ＧＵＵＧＡＧＮ１Ｎ２Ｎ３ＡＵＵＡＣＧＮ４Ｎ５ＣＵＣＡＧ−３’（配列番号２０）と表記されるオリゴヌクレオチドの集団では、５’末端からのＧＵＵＧＡＧがＸ１に相当し、Ｘ４がＡＵＵＡＣＧに相当し、Ｘ６がＣＵＣＡＧに相当する。この例では、Ｘ２、Ｘ３、Ｘ５は対応する塩基配列がなく、それぞれ、Ｎ１とＮ２、Ｎ２とＮ３、Ｎ４とＮ５が直接連結することを意味する。
上記の塩基配列において、「ｎ」は、例えば２以上３０以下の整数、好適には３以上１５以下の整数、例えば６以上１２以下の整数であるが、この範囲に限定されないものとする。
本明細書で使用する「相補的に結合する」とは、２つの塩基配列（ここでは、Ｘ１とＸｎ）が互いに塩基対を形成し相補的な二本鎖を形成することを意味する。塩基対は、水素結合によって、通常、ＡとＴ、ＡとＵ、ＣとＧ、ＧとＵの間で形成されるが、相補的な二本鎖の形成を崩さない条件で、ミスマッチ塩基対、バルジ塩基が含まれても構わない。そのような場合、５塩基あたり、１〜２塩基のミスマッチ又はバルジを含むことができる。
本明細書で使用する「修飾ヌクレオチド」（又は「修飾塩基」と称する）は、一般に、４種の天然のｄＮＴＰ（ここで、Ｎは、Ｇ，Ａ，ＣもしくはＴである。）またはＮＴＰ（ここで、Ｎは、Ｇ，Ａ，ＣもしくはＵである。）とは異なる人工的ヌクレオチドであって、糖部分、塩基部分またはリン酸ジエステル基が全体的にまたは部分的に化学修飾されたヌクレオチドを意味する。化学修飾には、低級アルキル化(例えばメチル化、エチル化、プロピル化など)、ハロゲン化（弗素化、塩素化、臭素化、沃素化）、チオール化（−ＳＨ）、ホスホロ化（−Ｓ−）、アミノ化（−ＮＨ２）、アミド化（−ＣＯＮＨ２）、アセチル化（−ＣＯＣＨ３）などが含まれるが、これらに限定されない。そのような修飾ヌクレオチドしては、２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチド、ホスホロチオエート結合を有するヌクレオチド、６−メチル修飾ヌクレオチド、Ｎ，Ｎ−ジメチルアデニン、２−プロピル修飾ヌクレオチド、２−アミノアデニン、架橋型核酸（ＢＮＡ（２'，４'−Ｂｒｉｄｇｅｄ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ；ＬＮＡ（Ｌｏｃｋｅｄ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ）ともいう。）； Ｓ． Ｏｂｉｋａ ｅｔ ａｌ．， Ｔｅｔｒｏｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔ．， ３９：５４０１−５４０４， １９９８）などが挙げられる。
本明細書において、「核酸アプタマー」とは、例えば約２０以上約２００以下のような短い配列を持つ核酸分子であって、所定の標的分子に対する親和性が高く、該標的分子と特異的に結合し得る核酸分子をいう。このような性質を有する核酸分子を核酸アプタマーといい、特に断らない限り、塩基配列、分子の大きさ、分子の立体構造などによって限定されるものではない。核酸アプタマーには、ＲＮＡアプタマー、ＤＮＡアプタマーまたはＤＮＡ−ＲＮＡハイブリッド型アプタマー（ＤＮＡ／ＲＮＡキメラ型アプタマーともいう。）が含まれる。
本明細書において、「ランダマイズされた異なる配列を持つ複数の核酸アプタマーからなるオリゴヌクレオチド集団」とは、以下に制限されないが、オリゴヌクレオチド集団中の核酸アプタマーの個数が、非限定的に３以上１０9以下、好適には１０以上１０7以下であり、その配列パターンが無作為に（ランダムに）作製された異なる配列を持つ核酸アプタマーオリゴヌクレオチドライブラリーを指す。しかし、１０9以上、例えば１０11のオーダーであってもよい。
本明細書において、「標的分子」とは、核酸アプタマーを利用した検出方法において、検出の標的となる分子のことをいう。標的分子の化学種は特に制限されず、低分子化合物、高分子化合物、および生体由来物質など様々な無機化学種または有機化学種が含まれる。標的分子としてより具体的には、例えば、糖類、脂質類、オリゴペプチド、タンパク質、および核酸などが挙げられる。また標的分子の対象となり得る機能種としては、例えば、抗原、抗体、リガンド、受容体、相互作用タンパク質、ウイルスなどが挙げられる。標的分子の具体例は、Ｒ． Ｓｔｏｌｔｅｎｂｕｒｇ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ２４：３８１−４０３， ２００７に記載されている。
本明細書において、標的分子とオリゴヌクレオチドが結合するとは、標的分子と特定のオリゴヌクレオチドが選択性または親和性をもって結合することを意味する。また、オリゴヌクレオチドと標的分子との特異的結合は、その結合様式には限定されず、共有結合、イオン結合、水素結合、電気的な吸着などの化学的な結合、および形状依存的な係合などの物理的な結合などが含まれる。
本明細書において、「オリゴヌクレオチドに特徴的な配列情報」とは、標的分子に親和性を有し、かつ特異性を有するオリゴヌクレオチドの配列に関する情報を意味する。
本明細書において、「増幅」とは、核酸クローンの増幅を指し、増幅方法としては、以下のものに限定されないが、例えばＰＣＲ法、ＬＡＭＰ法、ＳＭＡＰ法などが挙げられる。ＬＡＭＰ法(Loop-Mediated Isothermal Amplification)は、標的遺伝子の６つの領域に対して４種のプライマーを設定し、鎖置換反応を利用して一定温度（約６５℃）で反応させて増幅する方法であり、この方法では鎖置換ＤＮＡ合成酵素が利用される（Ｔ． Ｎｏｔｏｍｉ ｅｔ ａｌ．， Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ２８：Ｅ６３ （２０００））。ＳＭＡＰ法（SMart Amplification Process）は、等温核酸増幅法であり、鎖置換反応を利用した核酸の増幅法において、標的核酸が増幅された場合にのみステム−ループ形成可能なプライマーを特定の条件を満たすように設計し、このプライマーと５’末端部分に折返し配列を有するプライマーとを組み合わせて用いることにより、特異的かつ効率的に標的核酸を増幅する方法である（特開２００８−１６１１６５号公報）。
２．標的分子の検出方法
次に、本発明の標的分子の検出方法の実施形態について説明する。しかし、本発明は以下の記述によって限定されるものではなく、本発明の要旨を逸脱しない範囲において適宜変更可能である。
本発明における生物化学的なあるいは遺伝子工学的な手法を実施するにあたっては、例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ ＬＡＢＯＲＡＴＯＲＹ ＭＡＮＵＡＬ， 第３版、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ、Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ （２００１）、新遺伝子工学ハンドブック改訂第４版、村松ら編、羊土社、日本（２００３年）、タンパク質実験の進め方（岡田雅人、宮崎香編、羊土社、日本、第１版、１９９８年）、タンパク質実験ノート（岡田雅人、宮崎香編、羊土社、日本、第２版、１９９９年）などのような種々の実験マニュアルの記載が参照される。
本発明は、複数種の候補核酸アプタマーからなるオリゴヌクレオチド集団の中から、特定の核酸アプタマーと親和性の高い標的分子を検出する方法である。この方法はまた、該標的分子と親和性が高いかつ特異的結合性を有する核酸アプタマーの探索法としても使用しうる。この方法の各工程について具体的に説明する。
本発明の方法は、以下の（ａ）から（e）の工程を含む。
(a)標的分子と、ランダマイズされた異なる配列を持つ複数の核酸アプタマーからなるオリゴヌクレオチド集団とを接触させる工程
(b)上記標的分子と結合するオリゴヌクレオチド集団を選別する工程
(c)上記選別したオリゴヌクレオチド集団のそれぞれの配列を調べる工程
(d)上記選別したオリゴヌクレオチドの配列の中から、標的分子に親和性を有するオリゴヌクレオチド集団に特徴的な配列情報を抽出する工程
(e)上記配列情報を基にして、標的分子を特定する工程
２．１．工程（ａ）
この工程では、標的分子と、ランダマイズされた異なる配列を持つ複数の核酸アプタマーからなるオリゴヌクレオチド集団とを接触させる。
異なる配列を持つ複数の核酸アプタマーからなるオリゴヌクレオチド集団は、上記一般式において「Ｎ」をランダマイズした核酸配列のプールから得られる。配列のランダム化のために、天然型ヌクレオチドのみをランダムに配置してもよいし、人工的ヌクレオチドのみをランダムに配置してもよいし、あるいは、天然型ヌクレオチドと人工的ヌクレオチドをランダムに配置してもよくまたは交互に配置してもよい。このときのプールの大きさは、ランダマイズする塩基（Ｎ）の数で決まるが、例えば塩基配列決定のための次世代シークエンサーにより、核酸アプタマーのプールの多くを網羅するためには、上記一般式の「Ｎ」の数は、１以上２９以下、好適には２以上１４未満、例えば６以上１２以下であるが、２９を超えてもよく、例えば３０〜５０であってもよい。その理由は、Ｎの数が多い場合であっても、Ｎが例えばＧとＡのように２塩基の混合である場合もあり、その場合には、Ｎが多くても、全体のプールの数が限定されることによる。
オリゴヌクレオチド集団中の核酸アプタマーの個数は、非限定的に３以上１０9以下、好適には１０以上１０7以下であるが、１０9以上、例えば１０11のオーダーであってもよい。
オリゴヌクレオチド集団は、修飾ヌクレオチド含んでいてもよく、また、ペプチド、アミノ酸、糖、ポリアミン（スペルミン、スペルミジン等）または脂質が付加されていてもよい。
ランダマイズされたオリゴヌクレオチド集団の作製は、化学的核酸合成法、自動核酸合成機を利用した合成法、ＰＣＲ法などの増幅を利用した合成法、これらの方法の組合せなどによって行うことができる。ＤＮＡからＲＮＡの作製のために、二本鎖ＤＮＡライブラリーを鋳型にして例えばＴ７ ＲＮＡポリメラーゼなどのＲＮＡポリメラーゼによるインビトロ転写によってＲＮＡライブラリーを作製することもできる。ランダマイズされたオリゴヌクレオチド集団は、例えばＲ． Ｓｔｏｌｔｅｎｂｕｒｇ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ２４：３８１−４０３， ２００７に記載された手法によって作製することも可能である。
オリゴヌクレオチド集団と標的分子との結合は、オリゴヌクレオチド集団を標的分子に接触させることによって行うが、例えば、標的分子とオリゴヌクレオチド集団の水溶液とを混合し、インキュベートすることにより行なうことができる。水溶液は、必要に応じて緩衝化することができる。インキュベーションの条件は特に限定されないが、室温あるいは、３７℃の条件下で行なうことが簡便で好ましい。また、反応時間は、特に限定されないが、通常、１分間〜３０分間程度である。標的分子を固相もしくは担体に固定化してもよく、その場合、固定化標的分子をオリゴヌクレオチド集団と同時にまたは逐次的に接触させてもよい。
標的分子は、上述のとおり、低分子化合物、高分子化合物、生体由来物質、微生物由来物質、ウイルス由来物質、無機化学種、有機分子、無機イオンと有機分子の錯体などのいずれでもよく、その種類は制限されないものとする。標的分子としてより具体的には、例えば、糖類、脂質類、オリゴペプチド、タンパク質、アミノ酸、ポリアミン、核酸、ウイルスなどが挙げられる。また標的分子の対象となり得る機能種としては、例えば、抗原、抗体、リガンド、受容体、相互作用タンパク質、医薬物質、抗生物質、補因子などが挙げられる。標的分子の具体例は、Ｒ． Ｓｔｏｌｔｅｎｂｕｒｇ ｅｔ ａｌ．， Ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ２４：３８１−４０３， ２００７に記載されている。
２．２．工程（ｂ）
この工程では、上記標的分子と結合するオリゴヌクレオチド集団を選別する。
上記工程（ａ）で標的分子と結合したオリゴヌクレオチド集団は、上記の通り、例えば固定化標的分子を使用した場合、標的分子と結合されたオリゴヌクレオチド集団は、洗浄によって、標的分子と結合しなかったオリゴヌクレオチド集団から分離することができる。すなわち、標的分子と結合しなかった遊離のオリゴヌクレオチド集団は洗浄により除去され、一方、固定化標的分子と結合したオリゴヌクレオチド集団は単純な固液分離手段（例えばろ過、遠心分離等）などによって選択的に回収しうる。あるいは、洗浄に代わる手段として、ＤＮＡまたはＲＮＡを配列特異的に切断する酵素（例えば、ＲＮａｓｅＡ、ＲＮａｓｅＴ１、ＨａｅＩＩＩ、一本鎖核酸切断ヌクレアーゼ（例えば、Ｍｕｎｇ Ｂｅａｎ Ｎｕｃｌｅａｓｅ、Ｓ１ヌクレアーゼ、Ｐ１ヌクレアーゼなど）、ＤＮａｓｅＩ、一本鎖RNAに対する制限酵素［ＭａｚＦ等］、ウラシル−ＤＮＡグリコシラーゼ等）を用いて、結合していないオリゴヌクレオチドを消化することによっても遊離のオリゴヌクレオチドが効率的に除去される。このようにして、標的分子と結合しなかったオリゴヌクレオチド集団を除去後、標的分子に結合したオリゴヌクレオチド集団（核酸アプタマー群）を選別することができる。具体的には、後述の実施例２〜６に記載されている。
上記の固定化では、任意の形状または適切なサイズからなる固相または担体（もしくは支持体）に標的分子を結合する。固相または担体としては、金属（例えば、磁性金属、セラミックス等）、ポリマーもしくは樹脂（例えば、ラテックス、イオン交換樹脂、光架橋性ポリマー等）、多糖類（例えば、アガロース、カラギーナン等）、鉱物（例えばシリカゲル、多孔性ガラス等）などが非限定的に挙げられる。固定化方法には、例えば共有結合法、非共有結合法、包括法のいずれかが含まれる。
共有結合法では、標的分子がもつ官能基との結合を可能にする官能基を固相または担体の表面に存在させる必要がある。官能基の例は、アミノ基、ホルミル基、カルボキシル基、ヒドロキシ基、チオール基、Ｎ−ヒドロキシ琥珀酸イミジル基などを含むが、これらに限定されない。
非共有結合には、例えばイオン結合、疎水結合、物理的結合などが含まれる。イオン結合は、正電荷と負電荷の電気的誘引を利用する。疎水結合や物理的結合は、例えば多孔性の担体の場合、孔の内部表面に物質を吸着させるような結合である。
包括法は、例えば微細空間をもつゲルの内部に物質を封じ込める方法である。
上記のようにして選別された固定化標的分子と結合したオリゴヌクレオチド集団からオリゴヌクレオチド集団を溶出する手段として、例えば界面活性剤を使用したりイオン強度を高めたり、あるいは、温度を高めるなどの手段を利用することができる。
一方、標的分子を固定化しない場合のオリゴヌクレオチドの選別法としては、種々の分子量カットオフを有するメンブレン上での限外ろ過を行ったり、標的分子が担体に結合している場合には、担体を遠心分離により沈降させて、結合していないオリゴヌクレオチドを含む上清を除去したり、あるいは、磁気ビーズと標的分子が結合している場合には、磁性によって担体と標的分子および結合しているオリゴヌクレオチドを選別・洗浄することなどが挙げられる。
本発明においては、標的分子と結合するオリゴヌクレオチド集団として、修飾ヌクレオチド、ペプチド、アミノ酸、糖、ポリアミン（スペルミン、スペルミジン等）または脂質が付加したオリゴヌクレオチド集団またはＤＮＡ／ＲＮＡキメラのオリゴヌクレオチド集団を選別することが可能である。該オリゴヌクレオチド集団の選別は、本発明の特徴である、選別工程が一回であるということのみによって可能であり、ＳＥＬＥＸ法のような複数回繰り返し選別が必要な従来法によっては得ることができない。なぜなら２回目以降の選別工程により、オリゴヌクレオチド集団のＤＮＡ／ＲＮＡキメラ、修飾ヌクレオチド等、または、付加した物質の情報が失われてしまうからである。
上記のようにして選別され溶出されたオリゴヌクレオチドは、必要に応じて増幅することができる。本発明方法では増幅を必ずしも必要としないが、その理由は、増幅しなくても、アプタマーの配列情報を得ることができる場合があるからである。増幅するための方法として、ＰＣＲ法をはじめ、ＬＡＭＰ法、ＳＭＡＰ法等、種々の遺伝子増幅法を用いることができる。特にＰＣＲ法について説明する。
ＰＣＲは、一本鎖鋳型を作り出すための変性（鎖融解）、プライマーアニーリング、およびＴｈｅｒｍｕｓ ａｑｕａｔｉｃｕｓ （Ｔａｑ） ＤＮＡポリメラーゼのような耐熱性ＤＮＡポリメラーゼによるプライマー伸長の一連のステップの反復からなる。典型的な３段階ＰＣＲプロトコルは、９４〜９８℃で５秒間以上の変性、５０〜６５℃で１０〜６０秒間のプライマーアニーリング、およびポリメラーゼが高い活性を示す温度（Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼの場合は７２℃）で１５〜１２０秒間またはそれ以上の時間でのプライマー伸長を含みうる。増幅するには、上記３つのステップを１サイクルとして約２０〜４０サイクル実施する。１対のプライマーおよび増幅対象の核酸のほかに、反応混合物は、ｄＮＴＰ（ＮはＡ、Ｔ、Ｃ、Ｇ）、耐熱性ポリメラーゼ、２価カチオン（Ｍｇ２＋）、および緩衝剤を含有する。対象がＲＮＡの場合は逆転写酵素も加える。反応混合物の容量は一般に１０〜１００μｌである。サイクル条件、試薬濃度、プライマー設計、および典型的なサイクル増幅反応のための適切な装置（例えばサーマルサイクラー等）が市販されているので、そのような装置の利用が望ましい。また、ＰＣＲ技術については、例えば、Ａｕｓｕｂｅｌ， Ｆ． Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ （１９８８） Ｃｈａｐｔｅｒ １５： “Ｔｈｅ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ Ｃｈａｉｎ Ｒｅａｃｔｉｏｎ，” Ｊ． Ｗｉｌｅｙ （Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，ＵＳＡ）に詳細に記載されている。
上記ＰＣＲでのプライマーは、上記一般式のＸ１およびＸｎの固定された特定の配列に基づいて設計しうる。すなわち、ＰＣＲに際しては、これらの特定配列にアニーリング可能なプライマー配列が使用されうる。
また、修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチドを、ＰＣＲで増幅する場合には、アプタマーを鋳形として複製することが可能な修飾ヌクレオチド（メチル化塩基等）を使用すればよい。
また、PCR反応等の遺伝子増幅法で増幅を行うことが望ましいが、増幅を行わずに直接、配列解析を行うことも可能である。
２．３．工程（ｃ）
この工程では、上記選別したオリゴヌクレオチド集団のそれぞれの配列を調べる。この工程は、本発明を特徴付ける重要な工程の１つである。
上記の工程（ｂ）で選抜された標的分子に結合するオリゴヌクレオチド集団は、必要に応じて増幅されたのち、核酸の塩基配列を調べ解析する。
本明細書において、オリゴヌクレオチド集団のそれぞれの配列を「調べる」とは、各々のオリゴヌクレオチドの塩基配列を決定すること、あるいは、酵素等で切断することにより、配列の一部の情報を得ることなどを含む。核酸の塩基配列は、既知の方法または市販の配列分析装置等を用いて決定し得る。あるいは、核酸のマススペクトルを測定する方法、核酸を制限酵素で切断し、電気泳動方法などによって、配列情報を調べてもよい。いずれにしても、目的のオリゴヌクレオチドの親和性スペクトルを取ることが可能なすべての方法をこの工程で使用することが好ましい。本明細書で使用する「親和性スペクトル」は、標的分子と結合するオリゴヌクレオチドを特徴付けるスペクトルであり、これには、例えば、次世代シークエンシングによって得られる、それぞれのオリゴヌクレオチドの塩基配列（ランダマイズされている部分のみでもよい）とそのオリグヌクレオチドの個数との関係を示すスペクトルなどが包含される。
好ましい塩基配列決定法は、次世代シークエンサーを使用する方法である。このようなシークエンサーは、市販されており、例えば４５４ＦＬＸ（ロッシュ・ダイアグノスティクス）、Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｚｅｒ(イルミナ)、ＳｏｌｉＤ（アプライドバイオシステムズ）などがあり、これらの装置は例えば４００塩基、３６塩基などの塩基数（あるいは、これらを超える塩基数、例えば１，０００塩基以上でもよい。）を連続的に読むことができ、かつ１回に読める総塩基数は１億塩基、１０〜２０億塩基などである。ＤＮＡを増幅し、あるいはＲＮＡの場合には逆転写／ＰＣＲ（ＲＴ−ＰＣＲ）によってｃＤＮＡに変換し、次世代シークエンサーを使用して膨大な数の配列を決定する。概念的に、例えばＤｅｅｐ−Ｏｌｉｇｏ−ｃａｐ−ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇやＷｈｏｌｅ−ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｏｍｅなどが知られている（実験医学２７巻、１号、２００９年、羊土社、日本）。次世代シークエンサーを用いることは、標的分子に対する膨大な数のオリゴヌクレオチドの親和性スペクトルを得ることができるため、精密な検出、および特異的で、親和性の高いアプタマーの選別に、特に有利な方法であるといえる。
２．４．工程（ｄ）
この工程では、上記工程で選別し調べたオリゴヌクレオチドの配列の中から、標的分子に親和性の高いオリゴヌクレオチドに特徴的な配列情報を抽出する。
具体的には、この工程では、標的分子と結合するオリゴヌクレオチド集団の配列と、標的以外の分子または標的がない場合で得られたオリゴヌクレオチド集団の配列とを比較することにより、標的分子に親和性の高いオリゴヌクレオチドに特徴的な配列情報を抽出することを含む。
特徴的なオリゴヌクレオチドの情報を抽出するために、例えば、標的分子に結合したオリゴヌクレオチドに共通な配列を見出すための統計的な処理や、親和性スペクトルなどに基づいたスペクトル解析を行うなどの手法を用いることができる。
後述の実施例では、工程（ｂ）で得られた約１０００万〜２０００万個のオリゴヌクレオチドの配列を次世代シークエンサーで網羅的に解析し、それぞれのチューブに加えた核酸ＲＮＡのランダマイズされた部分に相当する配列を、どのチューブに相当するかを示すバーコード配列で整理することにより、解析を行った。具体的には、ＩｇＧ（標的分子）と、磁気ビーズに特異的に結合するオリゴヌクレオチド集団の親和性スペクトル、および磁気ビーズにのみ結合するオリゴヌクレオチド集団の親和性スペクトルを取り、これらの親和性スペクトル情報から、ＩｇＧに特異的に結合する核酸配列の集合を抽出した。
２．５．工程（ｅ）
この工程では、上記工程（ｄ）で親和性スペクトルから抽出された配列情報を基にして、標的分子を特定する。
標的分子と特異的に結合する核酸アプタマー群に特徴的な配列に基づいて、標的分子と、核酸アプタマーの配列との情報をデータベース化することによって、親和性スペクトルを取るだけで該データベースから標的分子を特定することが可能であるし、あるいは、標的分子に特異的に結合する核酸アプタマーをデータベースから特定することも可能である。
標的分子は、上述のとおり、低分子化合物、高分子化合物、生体由来物質、微生物由来物質、ウイルス由来物質、無機化学種、有機分子、無機イオンと有機分子の錯体などのいずれでもよく、例えば、糖類、脂質類、オリゴペプチド、タンパク質、アミノ酸、核酸など、例えば、抗原、抗体、リガンド、受容体、相互作用タンパク質、医薬物質、抗生物質、補因子などが挙げられる。
このような標的分子と結合する核酸アプタマーには、ペプチド、アミノ酸、糖、ポリアミンまたは脂質と特異的に結合する核酸アプタマーが含まれる。このような核酸アプタマーは、標的分子の分離、細胞内への標的分子の導入などのほかに、例えば、標的分子が抗体による認識が難しい低分子の化合物や、標的分子がウイルスであって短時間でウイルスの型を識別するような用途に関しても有効である。
３．核酸アプタマーの探索法
本発明はさらに、本発明の上記方法を用いて、オリゴヌクレオチド集団から、標的分子に特異的に結合する核酸アプタマーを探索する方法を提供する。
具体的には、この方法は、上記工程(a)〜(e):
(a)標的分子と、ランダマイズされた異なる配列を持つ複数の核酸アプタマーからなるオリゴヌクレオチド集団とを接触させる工程、
(b)上記標的分子と結合するオリゴヌクレオチド集団を選別する工程、
(c)上記選別したオリゴヌクレオチド集団のそれぞれの配列を調べる工程、
(d)上記選別したオリゴヌクレオチドの配列の中から、標的分子に親和性を有するオリゴヌクレオチド集団に特徴的な配列情報を抽出する工程、および
(e)上記配列情報を基にして、標的分子を特定する工程、
を含む方法によって標的分子を同定または特定し、上記オリゴヌクレオチド集団から、該標的分子に特異的に結合する核酸アプタマーを探索し選抜することを含む。
上記選抜では、例えば、標的分子に蛍光物質、放射性同位体などのラベルを標識し、そのシグナルを検出することによって行うことができる。そうようなラベルは、公知のものを使用できる。
４．標的分子の定量法
本発明はさらに、標的分子に結合しない核酸アプタマー、および、標的分子に特異的に結合する核酸アプタマーに標的分子を含むサンプルを加えた後、両者の核酸アプタマーを一緒にヌクレアーゼで処理し、両者の核酸アプタマーの量比を調べることにより、標的分子の定量を行うことを含む、標的分子の定量方法を提供する。
その実施形態において、本発明は、上記の核酸アプタマーの探索法によって得られた、標的分子に特異的に結合する、核酸アプタマーを用いて標的分子の定量を行うことを含む、標的分子の定量方法を提供する。
具体的には後述の実施例５に示すように、標的分子に結合しないアプタマーを比較コントロールとして、標的分子に特異的に結合する１または複数のアプタマーを標的分子と結合させた後、両方のアプタマーをヌクレアーゼで処理し、処理後、両方のアプタマーの量比を調べることにより、標的分子の定量を行うことができる。ヌクレアーゼは上に記載したようなヌクレアーゼである。
本発明の方法で得られた異なる特異性を持つ複数のアプタマーを用いることでより高い精度で特異的に定量することが可能となる。この定量法の工程では、核酸アプタマーと標的分子を結合させ、ヌクレアーゼで消化することにより、標的分子と親和性を有するアプタマーは消化されにくくなり、一方、標的分子に結合しないコントロールアプタマーは消化されるため、その比率をみることで、標的分子の量を調べることができる。実施例では、消化された核酸アプタマーはＰＣＲによる増幅は行っているが、必ずしも行わなくてもよい。
各アプタマーの量比は、実施例にあるように制限酵素で切断後、ゲル電気泳動によって調べてもよいし、あるいは、ＭＡＳＳスペクトル解析、シークエンス解析等によって調べてもよい。
本定量法では、複数の標的分子に対して、それぞれのアプタマーを入れることにより、同時に複数の標的分子を調べる等の応用が考えられる。また、１つの標的分子に対して、親和性を有する複数の異なる核酸アプタマーを用いることにより、高い特異性と精度を持って標的分子の定量が可能になる。
（実施例）
次に実施例を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明の範囲は以下の実施例に限定されるものではない。
ＩｇＧに特異的に結合するアプタマーの選抜
核酸ライブラリーは以下のＲＮＡを用いた。
5'- CGAUAGGUGUUGAGN1N2N3N4N5N6N7CUCAGCGCUUGUUG -3'（配列番号１）
5'- CGAUAGGUGUUGAGN1N2N3N4N5N6CUCAGCGCUUGUUG -3'（配列番号２）
5'- CGAUAGGUGUUGAGN1N2CGCUUCGGCGN3N4N5N6N7CUCAGCGCUUGUUG -3'（配列番号３）
（この場合のＮはＧ、Ａ、Ｕ、Ｃの混合したリボヌクレオチド配列を表している。）
８つのチューブを準備し、（チューブ１〜４：ネガティブコントロール用、チューブ５〜８：ＩｇＧ結合用）、それぞれのチューブに５０μｌのＤｙｎａＢｅａｄｓ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｇ（インビトロジェン社）を加え、１ｍｌの結合Ｂｕｆｆｅｒを加え、３７℃で、１時間、撹拌し、ブロッキング処理を行った。その後、チューブ５〜８に５μｌのマウスＩｇＧ（５ｍｇ／ｍｌ）を加え、さらに３７℃で、１時間、撹拌した。１ｍｌの結合Ｂｕｆｆｅｒで２回洗浄後、３７℃でプレインキュベーションした１ｍｌの結合Ｂｕｆｆｅｒおよび、５分間変性し、２分間氷冷した８μｌの核酸ライブラリー（１００μＭ）（配列番号１）または、１．２５μｌの核酸ライブラリー（１００μＭ）（配列番号２）、または、８μｌの核酸ライブラリー（１００μＭ）（配列番号３）を各チューブに加えた。３０分、３７℃で、撹拌後、１ｍｌの洗浄Ｂｕｆｆｅｒを用い、３７℃、３０分の洗浄条件で、５回洗浄処理を行った。１回、滅菌水で、洗浄を行った後、５０μｌの滅菌水を加え、９０℃で、３分、インキュベーションすることで、結合しているＲＮＡを溶出した。
各チューブ（チューブ１〜８）で、溶出したＲＮＡをテンプレートとして、ＤＮＡプライマー（5'- CAAGCAGAAGACGGCATACGAGCTCTTCCGATCTCAACAAGCGCTGAG -3'（配列番号４））を用いて、２０μｌの反応容量で、逆転写反応を行った。逆転写酵素にはリバトラエース（東洋紡社製）を用いた。さらにコントロールとして、選択する前のＲＮＡを薄めたもの（選択に用いたＲＮＡの１／１０6の量）を同様に４つの独立したチューブで逆転写を行った（チューブ９〜１２）。
１μｌのｃＤＮＡを用いて、ＤＮＡプライマー（配列番号４）、および、ＤＮＡプライマー（配列番号５〜１６の何れか）を用いて、ＰＣＲ反応を行った。
各チューブで、用いたプライマーの組み合わせは、以下の通りである。
チューブ１：配列番号４、配列番号５［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT aaa CGATAGGTGTTGAG -3'］
チューブ２：配列番号４、配列番号６［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT aat CGATAGGTGTTGAG -3'］
チューブ３：配列番号４、配列番号７［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT aag CGATAGGTGTTGAG -3'］
チューブ４：配列番号４、配列番号８［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT aac CGATAGGTGTTGAG -3'］
チューブ５：配列番号４、配列番号９［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT ata CGATAGGTGTTGAG -3'］
チューブ６：配列番号４、配列番号１０［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT att CGATAGGTGTTGAG -3'］
チューブ７：配列番号４、配列番号１１［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT atg CGATAGGTGTTGAG -3'］
チューブ８：配列番号４、配列番号１２［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT atc CGATAGGTGTTGAG -3'］
チューブ９：配列番号４、配列番号１３［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT aga CGATAGGTGTTGAG -3'］
チューブ１０：配列番号４、配列番号１４［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT agt CGATAGGTGTTGAG -3'］
チューブ１１：配列番号４、配列番号１５［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT agg CGATAGGTGTTGAG -3'］
チューブ１２：配列番号４、配列番号１６［5'- ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT agc CGATAGGTGTTGAG -3'］
小文字の配列は、後のシークエンスで、各ＰＣＲ産物を区別するためのバーコード配列に相当する。
ＰＣＲ反応は、バイオメトラ社のサーマルサーキュラーを用い、９５℃１分保温後、９５℃１５秒、５５℃３０秒、７２℃３０秒を３５サイクル行った。ＰＣＲ用試薬は、東洋紡社のＴＨＵＮＤＥＲＢＩＲＤ ｑＰＣＲ Ｍｉｘを用いた。
各チューブのＰＣＲ産物をアガロースゲル電気泳動で確認し、ほぼＰＣＲ産物が同量になるようにそれぞれを一つにまとめた。そのＰＣＲ産物１０ｎｇをテンプレートとし、さらに１０サイクルＰＣＲにより増幅した。この時用いたプライマーセットは、5'- AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT-3’（配列番号１７）、5'-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGCTCTTCCGATCT-3’（配列番号１８）である。
増幅したＰＣＲ産物をＩｌｌｕｍｉｎａ Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｚｅｒ（イルミナ社）により、ＤＮＡプライマー、5'-ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT-3’（配列番号１９）を用いて、配列解析を行った。
得られた約２０００万クラスター（約２０００万個のオリゴヌクレオチド）の配列を解析し、チューブに加えた核酸ＲＮＡのランダマイズされた部分に相当する配列と、どのチューブに相当するかを示すバーコード配列から、解析を行った。チューブ１〜４（ＤｙｎａＢｅａｄｓのみ）、チューブ５〜８（ＤｙｎａＢｅａｄｓ＋ＩｇＧ）、チューブ９〜１２（選択前の配列）のそれぞれについて、それぞれの配列に対する平均クラスター数（検出されたそれぞれのオリゴヌクレオチドの平均数）と、ｐ−ｖａｌｕｅを計算し、ＩｇＧに特異的に結合する核酸配列（チューブ５〜８特異的核酸配列）を抽出した。その結果を表１に示す。
Figure 2012198225
表１において、ＩｇＧ ＋ ＤｙｎａＢｅａｄｓのチューブと、ＤｙｎａＢｅａｄｓのみのチューブの間で、平均クラスター数が（ＩｇＧ ＋ ＤｙｎａＢｅａｄｓ）＞（ＤｙｎａＢｅａｄｓのみ）で、かつ、ｐ−ｖａｌｕｅが０．０５以下のものが多数見られる。これらの親和性スペクトルは、Ｂｅａｄｓのみの親和性スペクトル、および、選択前のスペクトルと、統計的に有意であり、ＩｇＧの存在を検出していることを意味している。また、この方法を使用することにより、簡便に任意の標的分子に対する特異的なアプタマーを選別することが可能であるし、あるいはアプタマーに高い親和性を持つ、もしくは特異的に結合する、標的分子を検出することも可能であることが分かる。
表１において、ランダマイズした部分の配列は次世代シークエンサーで読み取った配列を示しており、実際のアプタマーの配列においては、ＴはＵである。
核酸ライブラリーを用いた標的分子に対するセレクションと結合した核酸の配列解析
修飾核酸を有する核酸ライブリーとして、以下の核酸を用いた。
5’-cgcctctccgagagtgtNNNNNNNacaUtctUggagaggUg-3’ （配列番号２１）
5’-cgcctctccgagagtgtnnnnnnacactctcggagaggcg-3’ （配列番号２２）
5’-cgcctctccgagagtgtnnnnnnnacactctcggagaggcg-3’ （配列番号２３）
（この３つの配列において、大文字はＲＮＡを小文字はＤＮＡを意味する。この場合のＮはＧ、Ａ、Ｕ、Ｃの混合したリボヌクレオチド配列、ｎはｇ，ａ，ｔ，ｃの混合したヌクレオチド配列を示す。）
＜核酸ライブラリーの調製と物質への結合＞
それぞれの核酸ライブラリー２μｌ（１００μＭ）を２００μｌのＢｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ （１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ （ｐＨ ７．５）， １５０ｍＭ ＮａＣｌ， １０ｍＭ ＭｇＣｌ２， ０．０５％Ｔｗｅｅｎ ２）に加え、９８℃、２分で変性させた後、４℃で、１分静置し、その後、１０ｍｇ／ｍｌのｓｓＤＮＡ（ブロッキング剤）を加えた。その後、既にマウス ＩｇＧを結合させたプロテインＧ Ｂｅａｄｓ、あるいは、プロテインＧ Ｂｅａｄｓ、ストレプトアビジン Ｂｅａｄｓあるいは、末端をビオチン化したＦｌａｇペプチド（DYKDDDDKGG-Biotin）（ここでDYKDDDDKGG：配列番号39）を結合させたストレプトアビジン Ｂｅａｄｓ、あるいは、コントロールｂｅａｄｓを加え、室温で３０分、振とうすることにより、アプタマーを結合させた。その後、４回、Ｂｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒにより、洗浄を行った。Ｂｅａｄｓは、インビトロジェン社のＤｙｎａＢｅａｄｓを用いた。
＜溶出操作＞
プロテインＧ Ｂｅａｄｓ、およびコントロールｂｅａｄｓに結合した核酸ライブラリーの溶出は、２００μｌの蒸留水で一回洗浄後、１５μｌの蒸留水で懸濁後、９８℃、２分間熱することにより行った。
マウス ＩｇＧ、あるいは、Ｆｌａｇペプチド、あるいは、ストレプトアビジンに結合した核酸ライブラリーの溶出は、５０μｌのＢｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒと、マウス ＩｇＧ（２．５ｍｇ／ｍｌ）、あるいは、Ｆｌａｇペプチド（シグマ社）（１０ｍＭ）、あるいは、ストレプトアビジン（ロッシュ社）（２．５ｍｇ／ｍｌ）を５μｌ加え、３０分間振とうすることにより行った。溶出後、フェノールクロロホルム抽出、エタノール沈殿を行い、１５μｌの蒸留水に溶解した。
＜逆転写反応＞
ランダマイズした領域がＲＮＡ（配列番号２１）の核酸アプタマーに関しては、以下の逆転写反応を加えた。
逆転写プライマーとして5’-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGCTCTTCCGATCTCACCTCTCCAAGAATGT-3’ （配列番号２４）（終濃度１μＭ）を使用し、ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ ＩＩ １ｓｔ ｓｔｒａｎｄ ｃＤＮＡ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ Ｋｉｔ（タカラバイオ、日本）を用いて、４２℃， ６０分、５２℃， ３０分、９８℃， ５分の条件で逆転写および、酵素の不活性化を行った。サンプルはその後、エタノール沈殿を行い、１０μｌの蒸留水に溶解した。
＜ＰＣＲによる増幅操作＞
溶出した核酸アプタマーは、以下のプライマーセットを用いて増幅した。
5’-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT [Barcode配列] CGCCTCTCCGAGAGTGT-3’ （配列番号２５〜配列番号２８）
5’-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGCTCTTCCGATCTCACCTCTCCAAGA ATGT-3’ （配列番号２４）
（ここで、［Ｂａｒｃｏｄｅ配列］は、次世代シークエンサーでの解析の際にサンプルを見分けるための４〜７塩基の任意の配列である。サンプルごとに違うＢａｒｃｏｄｅ配列を有したプライマーを用いた。）
ＰＣＲ反応は、バイオメトラ社のサーマルサーキュラーを用い、９６℃１分保温後、９５℃１５秒、４６℃２０秒、７２℃６０秒を1サイクル、９５℃１５秒、７２℃６０秒を３５サイクル行った。ＰＣＲ用試薬は、東洋紡社（日本）のＫＯＤ−Ｎｅｏ−ｐｌｕｓを使用した。
増幅したＰＣＲ産物をＩｌｌｕｍｉｎａ Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｚｅｒ（イルミナ社）により、ＤＮＡプライマー、5'-ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT-3’（配列番号２９）を用いて、配列解析を行った。
得られた約１０００万〜２０００万クラスター（約１０００万〜２０００万個のオリゴヌクレオチド）の配列を解析し、チューブに加えた核酸ライブラリーのランダマイズされた部分に相当する配列と、どのチューブに相当するかを示すバーコード配列から、マウス ＩｇＧ、あるいは、Ｆｌａｇペプチド、あるいは、ストレプトアビジンに結合した核酸ライブラリー配列の解析を行った。それぞれの物質に特異的に結合する核酸配列と、それぞれの配列に対する平均クラスター数（検出されたそれぞれのオリゴヌクレオチドの平均数）を表２−１および表２−２に示す。
Figure 2012198225
Figure 2012198225
表２−１では、ストレプトアビジンBeads(左)、および、FlagペプチドBeads（右）に結合した核酸アプタマー（配列番号２１）のランダマイズ領域の配列とその個数をそれぞれの上位３０配列について示している。
表２−２では、ＩｇＧ Ｂｅａｄｓ（左）、および、Ｆｌａｇペプチド Ｂｅａｄｓ（右）に結合した核酸アプタマー（配列番号２２）のランダマイズ領域の配列とその個数をそれぞれの上位３０配列について示している。
それぞれの標的に特徴的なパターンが得られている。
ＤＮＡ核酸ライブラリーを用いたマウスＩｇＧとラットＩｇＧの識別
修飾核酸を有する核酸ライブリーとして、以下の核酸を用いた。
5’-cgcctctccgagagtgtNNNNNNNacaUtctUggagaggUg-3’ （配列番号２１）
（この３つの配列においては、大文字はＲＮＡを小文字はＤＮＡを意味する。この場合のＮはＧ、Ａ、Ｕ、Ｃの混合したリボヌクレオチド配列を示す。）
＜核酸ライブラリーの調製と物質への結合＞
それぞれの核酸ライブラリー２μｌ（１００μＭ）を２００μｌのＢｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ７．５），１５０ｍＭ ＮａＣｌ， １０ｍＭ ＭｇＣｌ２， ０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２）に加え、９８℃、２分で変性させた後、４℃で、１分静置し、その後、１０ｍｇ／ｍｌのｓｓＤＮＡ（ブロッキング剤）を加えた。その後、既にマウス ＩｇＧを結合させたプロテインＧ Ｂｅａｄｓ、あるいは、既にラット ＩｇＧを結合させたプロテインＧ Ｂｅａｄｓ、あるいは、プロテインＧ Ｂｅａｄｓを加え、室温で３０分、振とうすることにより、アプタマーを結合させた。その後、４回、Ｂｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒにより、洗浄を行った。
＜溶出操作＞
プロテインＧ Ｂｅａｄｓに結合した核酸ライブラリーの溶出は、２００μｌの蒸留水で一回洗浄後、１５μｌの蒸留水で懸濁後、９８℃、２分間熱することにより行った。
マウス ＩｇＧ、あるいは、Ｆｌａｇペプチド、あるいは、ストレプトアビジンに結合した核酸ライブラリーの溶出は、５０μｌのＢｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒと、マウス ＩｇＧ（２．５ｍｇ／ｍｌ）、あるいは、ラット ＩｇＧ（２．５ｍｇ／ｍｌ）を５μｌ加え、３０分間振とうすることにより行った。溶出後、フェノールクロロホルム抽出、エタノール沈殿を行い、１５μｌの蒸留水に溶解した。
＜逆転写反応＞
逆転写プライマーとして5’-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGCTCTTCCGATCTCACCTCTCCAAGAATGT-3’ （配列番号２４）（終濃度1μM）を使用し、ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ ＩＩ １ｓｔ ｓｔｒａｎｄ ｃＤＮＡ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ Ｋｉｔを用いて、４２℃， ６０分、５２℃， ３０分、９８℃， ５分の条件で逆転写および、酵素の不活性化を行った。サンプルはその後、エタノール沈殿を行い、１０μｌの蒸留水に溶解した。
＜ＰＣＲによる増幅操作＞
溶出した核酸アプタマーは、以下のプライマーセットを用いて増幅した。
5’-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT [Barcode配列] CGCCTCTCCGAGAGTGT-3’ （配列番号２５〜配列番号２８）
5’-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGCTCTTCCGATCTCACCTCTCCAAGAATGT-3’ （配列番号２４）
（ここで、［Ｂａｒｃｏｄｅ配列］は、次世代シークエンサーでの解析の際にサンプルを見分けるための４〜７塩基の任意の配列である。サンプルごとに違うＢａｒｃｏｄｅ配列を有したプライマーを用いた。）
ＰＣＲ反応は、バイオメトラ社（Ｂｉｏｍｅｔｒａ）のサーマルサーキュラーを用い、９６℃１分保温後、９５℃１５秒、４６℃２０秒、７２℃６０秒を1サイクル、９５℃１５秒、７２℃６０秒を３５サイクル行った。ＰＣＲ用試薬は、東洋紡社（日本）のKOD-Neo-plusを使用した。
増幅したＰＣＲ産物をＩｌｌｕｍｉｎａ Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｚｅｒ（イルミナ社）により、ＤＮＡプライマー、5'-ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT-3’（配列番号２９）を用いて、配列解析を行った。
得られた約１０００万〜２０００万クラスター（約１０００万〜２０００万個のオリゴヌクレオチド）の配列を解析し、チューブに加えた核酸ライブラリーのランダマイズされた部分に相当する配列と、どのチューブに相当するかを示すバーコード配列から、マウスＩｇＧ、あるいは、ラットＩｇＧ結合した核酸ライブラリー配列の解析を行った。それぞれに特異的に結合する核酸配列と、それぞれの配列に対する平均クラスター数（検出されたそれぞれのオリゴヌクレオチドの平均数）を表３に示す。
Figure 2012198225
表３では、ラットＩｇＧ Ｂｅａｄｓ（左）、および、マウスＩｇＧ Ｂｅａｄｓ（右）に結合した核酸アプタマーのランダマイズ領域の配列とその個数をそれぞれの上位３０配列について示している。
ラットＩｇＧとマウスＩｇＧのような近縁なタンパク質においてもそれぞれに特徴的なパターンを示している。
修飾核酸を有する核酸ライブラリーを用いたセレクションと配列解析
修飾核酸を有する核酸ライブリーとして、以下のＤＮＡ核酸を用いた。
5’-CGCCTCTCCGAGAGTGTCGCNNN[aminoC]NNNGCGACATTCTTGGAGAGGTG-3’ （配列番号３０）
5’-CGCCTCTCCGAGAGTGTCGCNNN[meC]NNNGCGACATTCTTGGAGAGGTG-3’ （配列番号３１）
（この場合のＮはＧ、Ａ、Ｔ、Ｃの混合したヌクレオチド配列を表している。［ａｍｉｎｏＣ］はＡｍｉｎｏ ｍｏｄｉｆｉｅｒ Ｃ６ ｄＣ（5'-Dimethoxytrityl-N-dimethylformamidine-5-[N-(trifluoroacetylaminohexyl)-3-acrylimido]-2'-deoxyCytidine,3'-[(2-cyanoethyl)-(N,N-diisopropyl)]-phosphoramidite）（グレンリサーチ社、米国）を、［ｍｅＣ］は５−ｍｅｔｈｙｌ−ｄＣ(5-Methyl deoxyCytidine)を表している。）
＜核酸ライブラリーの調製、ＩｇＧ、プロテインＧへの結合＞
それぞれの核酸ライブラリー２μｌ（１００μＭ）を２００μｌのＢｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ （１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ （ｐＨ ７．５）， １５０ｍＭ ＮａＣｌ， １０ｍＭ ＭｇＣｌ２， ０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２）に加え、９８℃、２分で変性させた後、４℃で、１分静置し、その後、１０ｍｇ／ｍｌのｓｓＤＮＡ（ブロッキング剤）を加えた。その後、既にマウス ＩｇＧを結合させたプロテインＧ、Ｂｅａｄｓ、あるいは、プロテインＧ Ｂｅａｄｓ（ＩｇＧ結合する前）を加え、室温で３０分、振とうすることにより、アプタマーを結合させた。その後、４回、Ｂｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒにより、洗浄を行った。
＜溶出操作＞
プロテインＧに結合した核酸ライブラリーの溶出は、２００μｌの蒸留水で一回洗浄後、１５μｌの蒸留水で懸濁後、９８℃、２分間熱することにより行った。
マウス ＩｇＧに結合した核酸ライブラリーの溶出は、５０μｌのＢｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒと、マウスＩｇＧ（０．５ｍｌ／ｍｌ）を５μｌ加え、３０分間振とうすることにより行った。さらに、フェノール-クロロホルム抽出、エタノール沈殿を行い、１５μｌの蒸留水に溶解した。
＜ＰＣＲによる増幅操作＞
溶出した核酸アプタマーは、以下のプライマーセットを用いて増幅した。
5’-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT [Barcode配列] CGCCTCTCCGAGA GTGT-3’ （配列番号２５〜配列番号２８）
5’-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGCTCTTCCGATCTCACCTCTCCAAGAATGT-3’ （配列番号２４）
（ここで、［Ｂａｒｃｏｄｅ配列］は、次世代シークエンサーでの解析の際にサンプルを見分けるための４〜７塩基の任意の配列である。サンプルごとに違うＢａｒｃｏｄｅ配列を有したプライマーを用いた。）
ＰＣＲ反応は、バイオメトラ社のサーマルサーキュラーを用い、９６℃１分保温後、９５℃１５秒、４６℃２０秒、７２℃６０秒を１サイクル、９５℃１５秒、７２℃６０秒を３５サイクル行った。ＰＣＲ用試薬は、東洋紡社（日本）のＫＯＤ−Ｎｅｏ−ｐｌｕｓを使用した。
増幅したＰＣＲ産物をＩｌｌｕｍｉｎａ Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｚｅｒ（イルミナ社）により、ＤＮＡプライマー、5'-ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT-3’（配列番号２９）を用いて、配列解析を行った。
得られた約１０００万〜２０００万クラスター（約１０００万〜２０００万個のオリゴヌクレオチド）の配列を解析し、チューブに加えた核酸ライブラリーのランダマイズされた部分に相当する配列と、どのチューブに相当するかを示すバーコード配列から、ＩｇＧおよびプロテインＧに結合した核酸ライブラリー配列の解析を行った。それぞれの核酸ライブラリーのＩｇＧおよびプロテインＧに特異的に結合する核酸配列と、それぞれの配列に対する平均クラスター数（検出されたそれぞれのオリゴヌクレオチドの平均数）を表４に示す。
Figure 2012198225
表４では、マウスIgG Beadsに結合した２つの異なる修飾を有する核酸アプタマーのランダマイズ領域の配列とその個数をそれぞれの上位３０配列について示している。核酸の修飾によって異なるパターンが得られている。
核酸に修飾を加えることにより、物質の検出の感度を高めることが可能であることを示している。
Ｓ１ Ｎｕｃｌｅａｓｅとストレプトアビジンアプタマーを用いたストレプトアビジンの定量
ストレプトアビジンに結合する、ストレプトアビジンアプタマーとして、以下のＤＮＡ核酸を用いた。
5’-TCTGTGAGACGACGCACCGGTCGCAGGTTTTGTCTCACAG-3’ （配列番号３２）
ストレプトアビジンに結合しないコントロールアプタマーとして、以下のＤＮＡ核酸を用いた。
5’-TCTGTGAGACGACGCACCGACCGCAGGTTTTGTCTCACAG-3’ （配列番号３３）
以下の溶液を調製し、３０分間、室温で静置し、アプタマーと各濃度のストレプトアビジンを結合させた。
１μｌ： ０．５％ ｔｗｅｅｎ−２０
１μｌ： １ｎＭ ストレプトアビジンアプタマー
１μｌ： １ｎＭ コントロールアビジンアプタマー
２μｌ： ５×Ｓ１ ｎｕｃｌｅａｓｅ ｂｕｆｆｅｒ
２μｌ： ストレプトアビジン（各々のチューブに０．５ｍｇ／ｍｌ、０．０２５ｍｇ／ｍｌ、０．０１２５ｍｇ／ｍｌ、０．０６２５ｍｇ／ｍｌ、なし）
２μｌ： 蒸留水
計 ９μｌ
（５×Ｓ１ ｎｕｃｌｅａｓｅ ｂｕｆｆｅｒ： ２５０ｍＭ ＮａＣｌ， １００ｍＭ ＭｇＣｌ２， ２５％グリセロール、２５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５）
その後、１μｌのＳ１ ｎｕｃｌｅａｓｅ ２２．５ｕｎｉｔ／μｌ（タカラ、日本）をそれぞれのチューブに加え、３７℃で、２０分間反応させ、９８℃で、３分熱することで反応を終結させた。
なお、S1ヌクレアーゼは一本鎖核酸を切断する酵素であり、ストレプトアビジンが結合したストレプトアビジンアプタマーでは切断が阻害されるため消化されにくいが、ストレプトアビジンが結合していないコントロールアプタマーは消化されやすい。
反応後のサンプルを以下のプライマーセットを用いて、ＰＣＲで増幅した。
5’-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCTAAAACGCCTCTCCGAGAGTGT-3’ （配列番号３４）
5’-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGCTCTTCCGATCTCGCCTCTCCGAGACCGCTGTGT-3’ （配列番号３５）
ＰＣＲ反応は、バイオメトラ社のサーマルサーキュラーを用い、９６℃１分保温後、９５℃１５秒、４６℃２０秒、７２℃６０秒を１サイクル、９５℃１５秒、７２℃６０秒を４０サイクル行った。ＰＣＲ用試薬は、東洋紡社（日本）のＫＯＤ−Ｎｅｏ−ｐｌｕｓを使用した。
ＰＣＲ後の産物を制限酵素ＭｓｐＩを用いて消化した。ストレプトアビジンアプタマーはＭｓｐＩサイトを有し、コントロールアプタマーはＭｓｐＩサイトを持たないので、消化後のサンプルをゲル電気泳動することによって、ストレプトアビジンアプタマーとコントロールアプタマーの量比を知ることができる。電気泳動の結果を図１に示す。また、バンドの濃度を読み取って定量化し、グラフ化したデータを図２に示す。図に示す通り、ストレプトアビジンの濃度依存的にストレプトアビジンアプタマー：コントロールアプタマーの量比が変化しており、本手法を用いて、ストレプトアビジンの量を定量することができることが判明した。
Ｓ１ Ｎｕｃｌｅａｓｅと、ランダマイズした核酸アプタマーを用いた、Ｆｌａｇ ペプチド、ビオチンに対する配列スペクトルの取得
ランダマイズ核酸アプタマーとして、以下のＤＮＡ核酸を用いた。
5’-CGCCTCTCCGAGAGTGTCGCNNNNNNNNNNNNNNNGCGACATTCTTGGAGAGGTG-3’ （配列番号３６）
以下の溶液を調製し、３０分間、室温で静置し、アプタマーと各濃度のストレプトアビジンを結合させた。
１μｌ： ０．５％ ｔｗｅｅｎ−２０
２μｌ： １０ｎＭ ランダマイズ核酸アプタマー
２μｌ： ５ｘ Ｓ１ ｎｕｃｌｅａｓｅ ｂｕｆｆｅｒ
２μｌ： Ｆｌａｇペプチド（１０ｍＭ）、あるいは、ビオチン（１０ｍＭ）
２μｌ： 蒸留水
計 ９μｌ
（５×Ｓ１ ｎｕｃｌｅａｓｅ ｂｕｆｆｅｒ： ２５０ｍＭ ＮａＣｌ， １００ｍＭ ＭｇＣｌ２， ２５％グリセロール、２５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ７．５）
その後、１μｌのＳ１ ｎｕｃｌｅａｓｅ １８０ｕｎｉｔ／μｌ（タカラ）をそれぞれのチューブに加え、３７℃で、２０分間反応させ、９８℃で、３分熱することで反応を終結させた。
S1ヌクレアーゼは一本鎖核酸を切断する酵素であり、標的が結合したアプタマーは、切断が阻害されるために、消化されにくいが、標的が結合しないアプタマーでは消化されやすい。
反応後のサンプルを以下のプライマーセットを用いて、ＰＣＲで増幅した。
5’-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT [Barcode配列] CGCCTCTCCGAGA GTGT-3’ （配列番号２５〜配列番号２８）
5’-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGCTCTTCCGATCTCACCTCTCCAAGAATGT-3’ （配列番号２４）
（ここで、［Ｂａｒｃｏｄｅ配列］は、次世代シークエンサーでの解析の際にサンプルを見分けるための４−７塩基の任意の配列である。サンプルごとに違うＢａｒｃｏｄｅ配列を有したプライマーを用いた。）
ＰＣＲ反応は、バイオメトラ社のサーマルサーキュラーを用い、９６℃１分保温後、９５℃１５秒、４６℃２０秒、７２℃６０秒を１サイクル、９５℃１５秒、７２℃６０秒を４０サイクル行った。ＰＣＲ用試薬は、東洋紡社（日本）のＫＯＤ−Ｎｅｏ−ｐｌｕｓを使用した。
増幅したＰＣＲ産物をＩｌｌｕｍｉｎａ Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｚｅｒ（イルミナ社）により、ＤＮＡプライマー、5'-ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT-3’（配列番号２９）を用いて、配列解析を行った。
得られた約１０００万〜２０００万クラスター（約１０００万〜２０００万個のオリゴヌクレオチド）の配列を解析し、チューブに加えた核酸ライブラリーのランダマイズされた部分に相当する配列と、どのチューブに相当するかを示すバーコード配列から、Ｆｌａｇペプチド、あるいは、ビオチン存在下で消化した後の核酸ライブラリー配列の解析を行った。表５に示すようにＦｌａｇペプチド、ビオチン、それぞれの物質に特徴的な核酸配列のパターンが見られた。
Figure 2012198225
表５では、Ｆｌａｇペプチド、あるいは、Ｂｉｏｔｉｎを加えて、Ｓ１ヌクレアーゼで処理後の核酸のランダマイズ領域の配列とその個数をそれぞれの上位３０配列について示している。標的分子を入れない場合、Ｆｌａｇペプチドを入れた場合、Ｂｉｏｔｉｎ加えた場合、それぞれの標的分子に特徴的なパターンを示している。本方法を用いることで、標的分子をＢｅａｄｓ等の担体に結合せずに、標的分子を検出・定量することが可能である核酸アプタマーを容易に見出すことが可能である。
核酸ライブラリーを用いたストレプトアビジンに対するセレクションと結合した核酸の配列解析: セレクション条件によるパターンの違い
修飾核酸を有する核酸ライブリーとして、以下の核酸を用いた。
5’- cgcctctccgagaccgctgtgtnnnnnnacactctcggagaggcg-3’ （配列番号３７）
（nはｇ，ａ，ｔ，ｃの混合したヌクレオチド配列を示す。）
＜核酸ライブラリーの調製と物質への結合＞
それぞれの核酸ライブラリー２μｌ（１００μＭ）を２００μｌのＢｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒ （１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ （ｐＨ ７．５）， １５０ｍＭ ＮａＣｌ， １０ｍＭ ＭｇＣｌ２， ０．０５％ Ｔｗｅｅｎ ２）に加え、９８℃、２分で変性させた後、４℃で、１分静置し、その後、１０ｍｇ／ｍｌのｓｓＤＮＡ（ブロッキング剤）を加えた。その後、ストレプトアビジン Ｂｅａｄｓあるいは、コントロールｂｅａｄｓを加え、室温で３０分、振とうすることにより、アプタマーを結合させた。その後、４回、Ｂｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒにより、洗浄を行った。
＜溶出操作＞
ストレプトアビジンおよび、コントロールｂｅａｄｓに結合した核酸ライブラリーの溶出を、２００μｌの蒸留水で一回洗浄後、１５μｌの蒸留水に懸濁後、９８℃、２分間熱することにより行った。
一方、溶出条件によるパターンの違いをみるために以下の条件でも溶出を行った。
ストレプトアビジンに結合した核酸ライブラリーの溶出を、５０μｌのＢｉｎｄｉｎｇ ｂｕｆｆｅｒと、マウスＩｇＧ（２．５ｍｇ／ｍｌ）、あるいは、ｆｌａｇペプチド（１０ｍＭ）、あるいは、ストレプトアビジン（２．５ｍｇ／ｍｌ）を５μｌ加え、３０分間振とうすることにより行った。溶出後、フェノール−クロロホルム抽出、次いでエタノール沈殿を行い、１５μｌの蒸留水に溶解した。
＜ＰＣＲによる増幅操作＞
溶出した核酸アプタマーは、以下のプライマーセットを用いて増幅した。
5’-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT [Barcode配列] CGCCTCTCCGAGA GTGT-3’ （配列番号２５〜配列番号２８）
5’-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGCTCTTCCGATCTCGCCTCTCCGAGACCGCTGTGT-3’ （配列番号３８）
（ここで、［Ｂａｒｃｏｄｅ配列］は、次世代シークエンサーでの解析の際にサンプルを見分けるための４〜７塩基の任意の配列である。サンプルごとに違うＢａｒｃｏｄｅ配列を有したプライマーを用いた。）
ＰＣＲ反応は、バイオメトラ社のサーマルサーキュラーを用い、９６℃１分保温後、９５℃１５秒、４６℃２０秒、７２℃６０秒を1サイクル、９５℃１５秒、７２℃６０秒を３５サイクル行った。ＰＣＲ用試薬は、東洋紡社のKOD-Neo-plusを使用した。
増幅したＰＣＲ産物をＩｌｌｕｍｉｎａ Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｚｅｒ（イルミナ社）により、ＤＮＡプライマー、5'-ACACTCTTTCCCTACACGACGCTCTTCCGATCT-3’（配列番号４）を用いて、配列解析を行った。
得られた約１０００万〜２０００万クラスター（約１０００万〜２０００万個のオリゴヌクレオチド）の配列を解析し、チューブに加えた核酸ライブラリーのランダマイズされた部分に相当する配列と、どのチューブに相当するかを示すバーコード配列から、ストレプトアビジンに結合し、それぞれの条件で溶出した核酸ライブラリー配列の解析を行った。それぞれの物質に特異的に結合する核酸配列と、それぞれの配列に対する平均クラスター数（検出されたそれぞれのオリゴヌクレオチドの平均数）を表６に示す。
Figure 2012198225
表６では、ストレプトアビジンビーズに結合したアプタマーを、ストレプトアビジンを加えて溶出した場合と、９８℃で溶出した場合の得られる核酸配列のパターンの違いを示している。
この違いは、Ｋｏｎ、Ｋｏｆｆのようなアプタマーと標的の間の物理的結合状態が異なることが起因していると考えられ、この情報を用いることにより、より厳密に物質の特定を行うことができる。
次世代シークエンサーと、数塩基がランダマイズされた限られた核酸プールを用いることにより、網羅的に、ターゲット分子に対する全ての核酸アプタマーの親和性スペクトルを取得し、ターゲット分子を検出・定量するという、まったく新しい発想の検出システムが提供される。この手法が確立されたことにより、あらゆる化合物、タンパク質、ウイルス型等を検出・定量するシステムを短時間で構築できることになり、検出の分野において、革新的な技術となり得る。
配列番号１〜３、２０〜２３、３０〜３１、３６：ランダマイズした核酸アプタマー
配列番号１〜１９、２４〜２９、３２〜３５、３７、３８：プライマー
配列番号３９：Ｆｌａｇペプチド

Claims (17)

  1. 標的分子に結合しない核酸アプタマー、および、標的分子に特異的に結合する核酸アプタマーに標的分子を含むサンプルを加えた後、両者の核酸アプタマーを一緒にヌクレアーゼで処理し、両者の核酸アプタマーの量比を調べることにより、標的分子の定量を行うことを含む、標的分子の定量方法。
  2. 標的分子に特異的に結合する核酸アプタマーを用いて標的分子の定量を行う、請求項１に記載の方法。
  3. 前記核酸アプタマーが、下記の工程(ａ)〜(ｄ):
    (ａ)標的分子と、ランダマイズされた異なる配列を持つ複数の核酸アプタマーからなるオリゴヌクレオチド集団とを接触させる工程、
    (ｂ)前記標的分子と結合するオリゴヌクレオチド集団を選別する工程、
    (ｃ)前記選別したオリゴヌクレオチド集団のそれぞれの配列を調べる工程、および
    (ｄ)前記選別したオリゴヌクレオチドの配列の中から、標的分子に親和性を有するオリゴヌクレオチド集団に特徴的な配列情報を抽出する工程、
    を含む方法を用いて、上記オリゴヌクレオチド集団から、標的分子に特異的に結合する核酸アプタマーを探索することによって得られるものである、請求項１または２に記載の方法。
  4. 前記オリゴヌクレオチド集団が、一般式Ｘ１Ｎ１Ｘ２Ｎ２…Ｘｎ−１Ｎｎ−１Ｘｎ（ここで、各Ｘは特定の長さの特定の塩基配列であり、かつ、Ｘ１とＸｎを除く他の少なくとも１つのＸは欠失されていてもよく、各Ｎは長さ１塩基であり、かつ、Ｇ，Ａ，Ｃ，ＴもしくはＵまたはそれらの修飾ヌクレオチドのいずれかであり、ｎは２〜３０の整数である。）によって表される塩基配列を有することを特徴とする、請求項３に記載の方法。
  5. Ｘ１とＸｎが相補的に結合することを特徴とする、請求項４に記載の方法。
  6. 前記オリゴヌクレオチド集団中の核酸アプタマーの個数が３以上１０9以下であることを特徴とする、請求項３〜５のいずれか１項に記載の方法。
  7. 前記一般式のｎが５〜１０の整数であることを特徴とする、請求項４〜６のいずれか１項に記載の方法。
  8. 標的分子と結合しているオリゴヌクレオチド集団を選別する工程（ｂ）が、固相化した標的分子、あるいは担体と結合した標的分子、を使用し、標的分子と結合していないオリゴヌクレオチド集団を洗浄によって除去し、標的分子と結合しているオリゴヌクレオチドを選択することを含むことを特徴とする、請求項３〜７のいずれか１項に記載の方法。
  9. 標的分子と結合しているオリゴヌクレオチド集団を選別する工程（ｂ）が、酵素を用いて、結合していないオリゴヌクレオチドを消化し、標的分子と結合しているオリゴヌクレオチドを選択することを含むことを特徴とする、請求項３〜７のいずれか１項に記載の方法。
  10. 選別したオリゴヌクレオチド集団の配列を調べる工程（ｃ）が、塩基配列決定を行うことを特徴とする、請求項３〜９のいずれか１項に記載の方法。
  11. オリゴヌクレオチド集団の特徴的な配列情報を抽出する工程（ｄ）が、標的分子と結合するオリゴヌクレオチド集団の配列と、標的以外の分子または標的がない場合で得られたオリゴヌクレオチド集団の配列とを比較することにより、標的分子に親和性を有するオリゴヌクレオチド集団に特徴的な配列情報を抽出することを含むことを特徴とする、請求項３〜１０のいずれか１項に記載の方法。
  12. 前記工程（ｄ）において、請求項１０で配列決定して得られた特徴的なオリゴヌクレオチドの集団を使用して、標的分子に親和性を有するオリゴヌクレオチド集団に特徴的な配列情報を抽出することを特徴とする、請求項３〜１１のいずれか１項に記載の方法。
  13. 前記工程（ｂ）と前記工程（ｃ）の間に、前記選別したオリゴヌクレオチド集団を増幅する工程を含むことを特徴とする、請求項３〜１２のいずれか１項に記載の方法。
  14. 前記オリゴヌクレオチド集団の一部の配列に修飾ヌクレオチドを含むことを特徴とする、請求項３〜１３のいずれか１項に記載の方法。
  15. 前記修飾がメチル化であることを特徴とする、請求項１４に記載の方法。
  16. 前記オリゴヌクレオチド集団の核酸アプタマーがペプチド、アミノ酸、糖、ポリアミンまたは脂質と結合していることを特徴とする、請求項３〜１５のいずれか１項に記載の方法。
  17. 上記オリゴヌクレオチド集団の核酸アプタマーが、ＤＮＡとＲＮＡのキメラであることを特徴とする、請求項３〜１６のいずれか１項に記載の方法。

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Families Citing this family (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8981075B2 (en) * 2010-07-02 2015-03-17 National University Corporation Tokyo University Of Agriculture And Technology PSA binding aptamer and method for diagnosis of prostate cancer
WO2013140629A1 (ja) 2012-03-23 2013-09-26 Ｎｅｃソフト株式会社 Ａｔｐまたはａｍｐの分析用デバイスおよび分析方法
WO2013141291A1 (ja) * 2012-03-23 2013-09-26 Ｎｅｃソフト株式会社 ストレプトアビジンの分析用デバイスおよび分析方法
WO2013161964A1 (ja) * 2012-04-27 2013-10-31 キリンホールディングス株式会社 リガンドを高感度に検出する核酸分子並びに該核酸分子のスクリーニング方法および該核酸分子の感度の最適化方法
EP2912182B1 (en) 2012-10-23 2021-12-08 Caris Science, Inc. Aptamers and uses thereof
US10942184B2 (en) 2012-10-23 2021-03-09 Caris Science, Inc. Aptamers and uses thereof
EP2935628B1 (en) 2012-12-19 2018-03-21 Caris Life Sciences Switzerland Holdings GmbH Compositions and methods for aptamer screening
US9828599B2 (en) 2013-09-18 2017-11-28 General Electric Company Methods of selecting binding-elements and uses thereof
US10359419B2 (en) 2013-10-02 2019-07-23 General Electric Company Methods for detection of target using affinity binding
JP6128621B2 (ja) * 2013-12-04 2017-05-17 国立研究開発法人産業技術総合研究所 マイクロベシクルに対する核酸アプタマー
CN105483267B (zh) * 2016-01-15 2018-12-04 古博 血浆游离DNA双分子标记、标记和检测血浆cfDNA的方法及其用途
EP4083278A4 (en) 2019-11-15 2024-02-28 Kao Corporation METHOD FOR CREATING A SEQUENCING LIBRARY
JP7146839B2 (ja) * 2019-11-15 2022-10-04 花王株式会社 シーケンシング用ライブラリの調製方法
CN113699215B (zh) * 2021-08-13 2024-06-14 东南大学 一种核酸适体筛选方法

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1997038134A1 (en) * 1996-04-05 1997-10-16 Nexstar Pharmaceuticals, Inc. Method for detecting a target compound using a nucleic acid ligand
JP2008102675A (ja) * 2006-10-18 2008-05-01 Nec Soft Ltd 塩基配列の同定方法及び核酸分子の二次構造取得方法、並びにこれらを実行する装置及びプログラム
WO2009053691A1 (en) * 2007-10-22 2009-04-30 Pronota Nv Method of selecting aptamers
JP2009189310A (ja) * 2008-02-15 2009-08-27 Olympus Corp 高親和性核酸フラグメント群の塩基配列決定方法および核酸アプタマーのスクリーニング方法
WO2009107803A1 (ja) * 2008-02-27 2009-09-03 ソニー株式会社 標的物質の定量方法

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5270163A (en) 1990-06-11 1993-12-14 University Research Corporation Methods for identifying nucleic acid ligands
EP1493825A3 (en) 1990-06-11 2005-02-09 Gilead Sciences, Inc. Method for producing nucleic acid ligands
US20090053138A1 (en) * 2002-11-21 2009-02-26 Preiss Jeffrey R Stabilized Aptamers to Platelet Derived Growth Factor and their Use as Oncology Therapeutics
JP2008161165A (ja) 2006-12-28 2008-07-17 Dnaform:Kk 競合オリゴヌクレオチドを用いた遺伝子検出法
WO2009047526A1 (en) * 2007-10-12 2009-04-16 Pronota Nv Use of aptamers in proteomics
CN102066562A (zh) * 2008-03-12 2011-05-18 雪城大学 结构限定的适配子的直接选择
JP2010041951A (ja) 2008-08-11 2010-02-25 Olympus Corp 標的分子の検出方法
KR101769743B1 (ko) * 2008-08-15 2017-08-21 코넬 유니버시티 특이적 화학적 타겟과 결합하는 핵산의 신속한 확인을 위한 장치
JP5256016B2 (ja) 2008-12-25 2013-08-07 コスモ工機株式会社 管接続部材の脱着装置
JP5419145B2 (ja) * 2009-07-24 2014-02-19 Ｎｅｃソフト株式会社 アプタマー分類装置、アプタマー分類方法、プログラムおよび記録媒体

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO1997038134A1 (en) * 1996-04-05 1997-10-16 Nexstar Pharmaceuticals, Inc. Method for detecting a target compound using a nucleic acid ligand
JP2008102675A (ja) * 2006-10-18 2008-05-01 Nec Soft Ltd 塩基配列の同定方法及び核酸分子の二次構造取得方法、並びにこれらを実行する装置及びプログラム
WO2009053691A1 (en) * 2007-10-22 2009-04-30 Pronota Nv Method of selecting aptamers
JP2009189310A (ja) * 2008-02-15 2009-08-27 Olympus Corp 高親和性核酸フラグメント群の塩基配列決定方法および核酸アプタマーのスクリーニング方法
WO2009107803A1 (ja) * 2008-02-27 2009-09-03 ソニー株式会社 標的物質の定量方法

Non-Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
JPN6012011892; ＢＭＣ　Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ Ｖｏｌ．９, 2008, ｄｏｉ：１０．１１８６／１４７１-２１０５-９-１７６ *
JPN6012011894; Ｇｅｎｏｍｅ　Ｒｅｓ． Ｖｏｌ．２０，　Ｎｏ．６, 201006, ｐｐ．８６１-８７３ *
JPN6012011896; ＢＭＣ　Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ Ｖｏｌ．７，　Ｓｕｐｐｌ．２, 2006, ｄｏｉ：１０．１１８６／１４７１-２１０５-７-Ｓ２-Ｓ６ *
JPN6012011898; Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．　Ｌｅｔｔ． Ｖｏｌ．３２，　Ｎｏ．３, 201003, ｐｐ．３７９-３８５ *
JPN6012011901; Ｂｉｏｍｏｌ．　Ｅｎｇ． Ｖｏｌ．２４，　Ｎｏ．２, 2007, ｐｐ．１７９-１８９ *
JPN6012011907; Ｃｌｉｎ．　Ｃｈｅｍ． Ｖｏｌ．５５，　Ｎｏ．９, 200909, ｐｐ．１６８６-１６９３ *
JPN6014045886; 第１１回日本ＲＮＡ学会年会（第１１回ＲＮＡミーティング）要旨集 , 20090727, ｐ．１６０ *

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