JP2014001148A - 線維芽細胞増殖促進剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】海洋細菌の産生する酸性ムコ多糖類またはその生理学的に許容される塩もしくは誘導体を有効成分として含有する線維芽細胞増殖促進剤、抗老化剤、シワ・たるみ改善剤、および保湿剤。
【選択図】図1
Description
(上記の構造式において、GlcNAcpはピラノース型N-アセチルグルコサミン残基を、GlcUApはピラノース型グルクロン酸残基を、Gluはグルタミン酸を、DはD型を、LはL型を、nはゲル濾過クロマトグラフィーで測定した平均分子量がプルランを標準として100万〜150万であることを示す繰り返しの数をそれぞれ表す。)
また、本発明の線維芽細胞増殖促進用経口用組成物は、有効成分である本酸性ムコ多糖類と、経口用組成物に一般的に用いられている各種成分、例えば、賦形剤、防腐剤、色剤、香料などとを、その剤形に合わせ、本発明の効果を損なわない範囲で適宜配合することにより調製される。
また、本発明の線維芽細胞増殖促進用経口剤の剤型は任意であり、例えば錠剤、カプセル剤、液剤、シロップ剤、粉末剤、ゼリー剤などの剤型をとることができる。
こうして所望の線維芽細胞増殖促進効果、例えば顔などのシワの発生を防ぐことができ、また既に生成しているシワの改善に使用できる線維芽細胞増殖促進剤が提供される。
本発明で使用される本酸性ムコ多糖類は、医薬として使用できる程度に精製されたものであれば、種々の方法で調製されたものを用いることができる。本酸性ムコ多糖類の調製方法としては、各種の方法が知られている。例えば、海洋微生物を炭素源として蔗糖、窒素源としてペプトン、酵母エキスを含有し海水で調製した培地で培養して産生する多糖類を採取、精製して得ることができる。
次に、本発明の線維芽細胞増殖促進剤の有効成分である本酸性ムコ多糖類の製造方法について、好ましい実施形態を挙げて説明する。尚、本酸性ムコ多糖類の生産方法は以下の製法に限定されない。
好ましい一実施形態としての本酸性ムコ多糖類の製造方法は、(a)培地において微生物を培養し多糖類を産生する工程と、(b)産生された本酸性ムコ多糖類を抽出・回収する工程とを有する。
上述した本発明の線維芽細胞増殖促進剤の有効成分である本酸性ムコ多糖類の製造に適した培地を用いることが望ましく、その際に炭素源として蔗糖、窒素源としてペプトン、酵母エキスを用いることがより望ましい。
(a)培地において微生物を培養し多糖類を産生する工程
上述のようにして調製した培地を用いて微生物を培養して目的の多糖類を産生させるわけであるが、本酸性ムコ多糖類を得るためには微生物としてコベチア(Cobetia)属の細菌を用いることが好ましい。さらに好ましくはコベチア(Cobetia)属に属し寄託番号がFERM P-21297として寄託されている菌株またはその変異株を用いることが望ましい。微生物として該菌株またはその変異株を用いることで、本酸性ムコ多糖類を効率的に産生することができる。
そして、以下に説明する抽出・回収工程を経ることにより高純度の本酸性ムコ多糖類を高収率で得ることが可能となる。
上記製造方法で得られた培養液から本酸性ムコ多糖類を抽出する方法としては、当技術分野において知られている方法を用いることができる。例えば、培養液をそのまま、あるいは高温で殺菌した後で、遠心分離により菌体を除去し、これをそのまま、あるいは濃縮してから、2〜3倍量のエタノール、イソプロパノール、あるいはアセトン等を加え、沈殿を生じさせる。この沈殿物を再度、水あるいは1〜15%塩化ナトリウム溶液に溶解させた後で、アルコール等による沈殿を2〜3回繰り返し、水で透析を行い、噴霧乾燥や凍結乾燥機等を用いて乾燥させることにより、本酸性ムコ多糖類を得る。これ以外にも電気透析法や限外濾過法も利用することができる。さらに精製するためには、イオン交換、ゲル濾過等の各種クロマトグラフィーや、第4級アンモニウム塩による沈殿や塩析などを用いることができる。
(上記の構造式において、GlcNAcpはピラノース型N-アセチルグルコサミン残基を、GlcUApはピラノース型グルクロン酸残基を、Gluはグルタミン酸を、DはD型を、LはL型を、nはゲル濾過クロマトグラフィーで測定した平均分子量がプルランを標準として100万〜150万であることを示す繰り返しの数をそれぞれ表す。)
ペプトン0.5%、酵母エキス0.1%、蔗糖3%の組成を有し海水で調製した培地を、温度121℃としたオートクレーブ中で15分間滅菌し、本菌株(FERM P-21297)の斜面培養から、1白金耳を試験管中の上記滅菌培地(10ml)に接種し、25℃の温度で24時間静置培養を行い、次いでこの前培養液を500ml容の三角フラスコ中に上記組成の培地100ml(121℃、15分間滅菌)に接種し、25℃の温度で3日間の静置培養を行った。培養後培養液を遠心分離した後濾過助剤(ラヂオライト#500)を用いてGF-75濾紙(Advantec社製)で濾過し、菌体を除いた培養濾過液から分子量5万カットの中空糸UF膜モジュール(Spectrum社製)を備えた膜濾過装置により得られる高分子画分を短時間のうちに濃縮、脱塩回収し、活性炭処理し、凍結乾燥により粉末化した。膜濾過装置は東洋紡エンジニアリング社製SYLS-SB04型を用いた。
このようにして得られた多糖画分については、セルロースアセテート膜電気泳動を用いて均一性を確認すると共に、DEAE-セルロースイオン交換カラムクロマト分析、化学分析、核磁気共鳴分析により、公知の本酸性ムコ多糖類であることを確認した。
前培養までは実施例1と同様に処理し、次いでこの前培養液を500ml容の三角フラスコ中に上記組成を有する海水から調製した滅菌培地100ml(121℃、15分間)に接種し、25℃の温度で3日間振とう培養を行った。次いで培養液を遠心分離した後濾過助剤(ラヂオライト#500)を用いてGF-75濾紙(Advantec社製)で濾過し、菌体を除いた培養濾液から分子量5万カットの中空糸UF膜モジュール(Spectrum社製)を備えた膜濾過装置により得られる高分子画分を短時間のうちに濃縮、脱塩回収し、活性炭処理し、凍結乾燥により粉末化した。膜濾過装置は東洋紡エンジニアリング社製SYLS-SB04型を用いた。このようにして得られた多糖画分については、セルロースアセテート膜電気泳動を用いて均一性を確認すると共に、DEAE-セルロースイオン交換カラムクロマト分析、化学分析、核磁気共鳴分析により、公知の本酸性ムコ多糖類であることを確認した。
前培養までは実施例1と同様に処理し、上記実施例2で述べた培地に寒天を1.5%添加した寒天平板培地250mlを平板(18×26cm)に広げて前培養液を塗沫し、25℃の温度で4日間培養を行った。寒天平板の表面に生じた粘質物をかきとり、1%フェノール液に懸濁させ、遠心分離した後濾過助剤(ラヂオライト#500)を用いてGF-75濾紙で濾過し、菌体を除いた上澄液にエタノールを加えて沈殿する画分を集め、水に溶解後再度エタノールを加えて沈殿する画分を集め、水に溶解後透析した。次いで活性炭処理し、凍結乾燥により多糖画分を得た。このようにして得られた多糖画分については、セルロースアセテート膜電気泳動を用いて均一性を確認すると共に、DEAE-セルロースイオン交換カラムクロマト分析、化学分析、核磁気共鳴分析により、公知の本酸性ムコ多糖類であることを確認した。
(ヒト線維芽細胞培養細胞株による細胞増殖試験)
実施例1で得られた本酸性ムコ多糖類を使用して、線維芽細胞に対する細胞増殖におよぼす影響を調べ、試料無添加の場合(対照)およびヒアルロン酸ナトリウム(HA)添加の場合と比較して試料添加系での細胞増殖率を求めた。
(1)前培養したヒト線維芽細胞(クラボウ社製)を96穴マルチウェルプレートの各ウェルに1.0x104細胞/ウェルの細胞数に播種した。播種24時間後、所定濃度の被験物質を含むDMEM+10%FBS培地に交換した。被験物質の濃度は、0mg/ml(対照)、2.5mg/ml、5.0mg/mlに設定した。また、比較試料として、ヒアルロン酸ナトリウム(HA;5.0mg/ml、分子量100万、和光純薬社製)も用いた。各試料濃度毎に3ウェルを割り当てアッセイに供した(N=3)。細胞増殖計数用のプレート2枚を1組として各試料のアッセイに使用した。培地交換後、72時間培養を続けた。
(2)各ウェル内の細胞数(相対値)をMTT法を用いマイクロプレートリーダー(BIO RAD社製)で570-630nmの吸光度を測定することにより、細胞の生育度を測定した。被験物質を含まない対照の値を100とした時の各試料の値(相対値)を求めた。これらの結果を図1に示す(平均値±SE)。
実施例1で得られた本酸性ムコ多糖類を使用して、常法により、処方例1に示す化粧水を調製した。また、比較例として比較例1に示す化粧水を調製した。
(角質水分保持試験)
処方例1および比較例1で調製した化粧水を用いて角質水分保持試験を行った。
20歳代〜50歳代の健常人5名のモニターを任意に抽出したのち、被験者を室温25℃、湿度50%の人工環境室に60分間馴化後、5名の前腕内側部に2cm角の正方形を2つずつ書き、皮表角質水分量計(I.B.S.製SKICON-200EX)で各正方形において3回ずつ電気伝導度を測定した。その後、各正方形に処方例1および比較例1で調製した化粧水をそれぞれ20μl塗布した。塗布前および塗布3時間後に電気伝導度(μS)を測定し、角質水分保持増加量の平均値を求めた。肌の水分量が多いほど電気伝導度(μS)の値が大きくなる。これを利用して角質水分保持量を評価し表2に示した(平均値±SE)。
下記成分Aを充分に混合粉砕した粉末部Aとし、成分BをB液、成分CをC液とする。C液を加温攪拌後、Aを添加しホモミキサー処理し、さらに加温混合したB液を加えてホモミキサー処理する。攪拌しながら室温まで冷却して乳化型ファンデーションを調製した。
Claims (10)
- 皮膚外用剤である請求項1に記載の線維芽細胞増殖促進剤。
- 美容用飲食品である請求項1に記載の線維芽細胞増殖促進剤。
- シワ・たるみ改善剤である請求項4に記載の抗老化剤。
- 皮膚外用剤である請求項4または5に記載の抗老化剤。
- 美容用飲食品である請求項4または5に記載の抗老化剤。
- 皮膚外用剤である請求項8に記載の保湿剤。
- 美容用飲食品である請求項8に記載の保湿剤。
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